Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Морфофункциональная характеристика лимфоцитов крови и лимфоидных органов у крыс с генетической предрасположенностью к каталепсии

Диссертация: Морфофункциональная характеристика лимфоцитов крови и лимфоидных органов у крыс с генетической предрасположенностью к каталепсии
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

У крыс с нормальной поведенческой реакцией на стресс активность всех исследуемых ферментов утром достоверно выше, чем вечером (р<0,05). В тимусе достоверных суточных колебаний обнаружено не было. В селезенке крыс Vistar достоверные суточные колебания зарегистрированы только для количества спленоцитов — С08+ Количество клеток в лимфоузле имеет минимальное значение в утреннее время и достоверно… Читать ещё >

Содержание

  • ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Психонейроиммунные взаимодействия
    • 1. 2. Морфофункциональная характеристика клеток иммунной системы
      • 1. 2. 1. Характеристика поверхностного фенотипа различных субпопуляций клеток иммунной системы
    • 1. 3. Суточные биоритмы иммунной системы
      • 1. 3. 1. Суточные биоритмы морфофункциональных характеристик лимфоцитов крови
      • 1. 3. 2. Суточные вариации морфофункциональных параметров клеток лимфоидных органов
    • 1. 4. Суточные биоритмы иммунных функций
    • 1. 5. Кататония у крыс. Крысы с генетической предрасположенностью к каталепсии (ГК), как модель психопатологических состояний человека
      • 1. 5. 1. Кататония
      • 1. 5. 2. Крысы с генетической предрасположенностью к каталепсии (ГК)
      • 1. 5. 3. Моноаминэргические системы мозга у крыс ГК
      • 1. 5. 4. Особенности стресса у крыс ГК
    • 1. 6. Анаболические стероиды и их влияние на психоэмоциональное состояние, стрессреактивность и иммунную систему
  • ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
  • Методика определения активности оксидоредуктаз
  • ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 3. 1. Суточные вариации клеточного состава лимфоидных органов и крови у интактных крыс Vistar
    • 3. 2. Суточные вариации клеточного состава лимфоидных органов и крови у интактных крыс ГК
    • 3. 3. Сравнительный анализ морфологических показателей лимфоидных органов и крови у интактных крыс Vlstar и ГК
    • 3. 4. Морфологические показатели и субпопуляционный состав лимфоидных органов и крови у крыс Vistar и ГК после введения ретаболила
    • 3. 5. Влияние ретаболила на кататонические реакции (время застывания) у крыс с генетической предрасположенностью к каталепсии (ГК) и у крыс ^й^аг
  • ГЛАВА 4. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ

Морфофункциональная характеристика лимфоцитов крови и лимфоидных органов у крыс с генетической предрасположенностью к каталепсии (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность проблемы.

Известно, что нарушения психической сферы человека и животных, часто сопровождаются изменениями иммунного статуса, что ведет к снижению резистентности к инфекциям, повышению риска развития опухолевого процесса, преждевременному старению, с другой стороны, есть данные о том, что биологически активные вещества (цитокины и нейромедиаторы), вырабатываемые иммунокомпетентными клетками, влияют на функции головного мозга (Девойно JI.B., Илыочонок З. Ю., 1993; Крыжановсекий Г. Н., 2002; Гусев Е. И., Крыжановский Г. Н., 2009; Restak R, 2006; Goodvin G. et al., 2009; Freudenreich O. et al, 2010). Нарушение выработки нейротропных биологически активных веществ в условиях психонейроиммунопатологии может привести к прогрессированию и поддержанию психических сдвигов. В связи с этим исследование психонейроиммунных взаимодействий на моделях психопатологии у животных представляет актуальную научную проблему.

Об актуальности подобных исследований говорит формирование нового научного направления — психонейроиммунологии.

Для эффективного изучения механизмов развития психосоматических и психоиммунологических нарушений, а также возможностей их комплексной коррекции, необходимы адекватные модели подобных состояний у животных.

В этом отношении представляют интерес крысы неинбредной линии ГК, с генетически обусловленными нарушениями функции центральной нервной системы (генетическая предрасположенность к каталепсии), выведенной в ИЦиГ СО РАН. У этих животных обнаруживается сходство целого ряда нейрофизиологических и нейропсихических параметров с характеристиками некоторых патологических состояний нервной системы у человека, в частности, с тем, что известно о шизофрении и депрессии (Колпаков В.Г., 1999). Особый интерес представляет то, что крысы ГК обнаруживают патологическую реакцию на стресс, как в поведенческом, так и нейроэндокринном аспекте. Кроме того, в предварительных исследованиях нами были обнаружены особенности морфоцитохимической характеристики лимфоцитов данных животных по сравнению с крысами Wistar, позволяющие предположить, что у крыс ГК имеются нарушения иммунного гомеостаза, вероятно обусловленные, сдвигами в деятельности нервной и эндокринной систем (Грязева Н.И. и др., 1994; 1998; 1999; Пантелеева Н. Г. и др., 2001; 2007; 2010).

Каталептический тип реагирования представляет собой широко распространенный в животном мире способ адаптации. В настоящее время имеются данные, позволяющие предположить, что сниженный порог этого типа реагирования может рассматриваться как биологическая основа для развития психопатологии (Колпаков В.Г., 1990; Kolpakov V.G. et al., 1996). Можно предполагать, что и в обычных условиях у человека существует тип нервно-психической адаптации, эволюционно восходящий к каталептическому. Как бы то ни было, широкое распространение его в животном мире определяет интерес к исследованию его характеристик и механизмов.

Результаты ряда исследований указывают на существование связи между активностью моноаминергических систем мозга и гипофизарно-надпочечниковой системы с одной стороны и состоянием иммунитета — с другой (Девойно JI.B., Илыочонок З. Ю., 1983; Девойно Л. В., Идова Г. В., Альперина E. JL, 2009). Однако, практически отсутствуют сведения о характере функционирования иммунной системы у этих животных. Изучение морфофункциональных характеристик лимфоцитов крыс ГК в сравнении с исходной популяцией Wistar могло бы пролить свет на некоторые аспекты иммунонейроэндокринных взаимодействий, особенно, в связи с развитием психопатологических проявлений.

Известно, что функциональное состояние иммунной системы тесно связано с ее структурно-временной организацией (Козлов В.А. и др., 1978; 1982; Бородин Ю. И. и др., 1992; 2000; 2007; Труфакин В. А и др., 2004; 2005; 2008; 2012; Шурлыгина A.B. и др., 1992; 2000; 2008; 2011). Поэтому, исследование морфоцитохимических параметров лимфоидных клеток во временном аспекте даст более полную информацию об особенностях иммунного гомеостаза. В связи с этим было предпринято изучение суточных вариаций клеточного состава лимфоидных органов и активности ферментов окислительно-восстановительного метаболизма лимфоцитов крови.

Учитывая имеющуюся у самцов ГК андрогенную недостаточность (Шульга В.А. и др., 1996; Колпаков В. Г. и др., 2004), представляет интерес исследовать характер влияния на поведенческие и иммунных параметры анаболических стероидов, в частности, ретаболила.

Известны стресспротекторные, анксиолитические и иммуномодулирующие свойства анаболических стероидов (Грундинг П., Бахман М., 2011). Показано, что анаболические стероиды являются самым активным классом соединений, из всех известных анаболических средств. При правильном применении они дают значительный прирост массы тела, увеличивают силу мышц, нормализуют липидный обмен, снижают уровень холестерина (Грундинг П., Бахманн М., 2011). В геронтологии анаболические стероиды применяют для замедления развития возрастных заболеваний (Sheffield-Moore М., 2000; Rudolph I., Palombo-Kinne Е. et al., 2004). Анаболические стероиды используются и для лечения нервной депрессии. В самых тяжелых случаях их комбинируют с психотропными препаратами и добиваются хороших результатов (Sinitskii T.N., Usherenko L.S., Zapotochnyi В.А., Kryzhanovskii L.A., 1988).

Анаболические стероиды оказывают влияние и на иммунную систему. В последнее время появились исследования, подтверждающие способность анаболических стероидов повышать все виды иммунитета и соответственно возможность их использовать в комплексной терапии хронических воспалительных заболеваний (Yoshida S. et al., 1988; Johns К. et al., 2005).

Поэтому, мы предположили, что ретаболил окажется эффективным в комплексном воздействии на нейроиммунные нарушения у крыс с генетической предрасположенностью к каталепсии.

Цель и задачи исследования

.

Цель настоящей работы — дать сравнительную морфоцитохимическую характеристику лимфоцитов с учетом суточных вариаций показателей у интактных крыс ГК и Vistar и оценить влияние ретаболила на поведенческие и иммуноморфологические параметры у этих животных.

Для достижения поставленной цели сформулированы следующие задачи:

1. Изучить общее количество и субпопуляционный состав лимфоцитов в тимусе, селезенке и паховом лимфоузле у крыс ГК и Wistar.

2. Изучить активность ферментов энергетического метаболизма лимфоцитов крови у крыс ГК и Vistar.

3. Изучить особенности суточных вариаций иммуноморфологических параметров у крыс ГК и.

4. Изучить морфоцитохимические параметры лимфоцитов (субпопуляционный состав клеток тимуса и селезенки, активность дегидрогеназ лимфоцитов крови) у крыс ГК и Wistar после введения ретаболила.

5. Оценить влияние ретаболила на поведенческие характеристики крыс ГК и Vistar.

Научная новизна полученных данных.

1. Получены новые данные об особенностях клеточного состава лимфоидных органов и крови, а также активности дегидрогеназ лимфоцитов крови у крыс ГК в сравнении с.

2. Впервые обнаружено, что у крыс ГК изменены суточные вариации иммуноморфологических параметров по сравнению с крысами Vistar, что свидетельствует об изменении временной организации иммунной системы и согласуется с данными об особенностях суточных вариаций метаболизма моноаминов в головном мозге этих животных.

3. Впервые показано, что ретаболил по разному влияет на лимфоциты крови и лимфоидных органов крыс ГК и Yistar, что свидетельствует о межлинейных особенностях эндокринно-иммунных взаимоотношений.

4. Получены ранее неизвестные факты о том, что крысы ГК и Vistar различаются по характеру комплексной реакции поведенческих параметров и показателей иммунокомпетентных клеток в ответ на введение ретаболила. Гормон оказал разнонаправленное действие на выраженность каталептической реакции у этих животных, однако у крыс ГК при выраженном корригирующем эффекте на поведенческий статус ретаболил почти не изменил характеристики иммунокомпетентных клеток.

Научнопрактическая значимость работы.

1. Результаты проведенных исследований дополняют знания об особенностях структурно-метаболических характеристик клеток иммунной системы при различных психоэмоциональных состояниях и поведенческих расстройствах, с учетом временного фактора.

2. Выявленные межлинейные особенности реакции нервной и иммунной системы у крыс ГК и Vistar на гормональное воздействие, позволяет использовать данную модель для изучения механизмов психонейроиммунных взаимодействий и для разработки методов их персонифицированной коррекции.

Положения, выносимые на защиту.

1. Крысы ГК и значительно различаются по ряду морфологических и цитохимических показателей клеток иммунной системы, что позволяет предполагать единый генез психонейроиммунных нарушений у крыс ГК.

2. Крысы ГК и Vistar значительно различаются по суточным вариациям морфологических и цитохимических показателей лимфоцитов, что свидетельствует об измененной суточной временной организации нейроиммунных взаимоотношений у крыс ГК.

3. У крыс ГК и Vistar существуют различия в способности нервной ситемы и иммунокомпетентных клеток реагировать на гормональный стимул, что проявляется в разнонаправленных эффектах введения ретаболила на клетки иммунной системы и поведенческие параметры у этих животных.

Апробация результатов диссертации.

Результаты работы обсуждены на Всероссийской конференции «Нейроиммунология», Москва, 1999; VI Российский национальный конгресс «Человек и лекарство «, Москва, 1999; IV съезд физиологов Сибири, Новосибирск, 2002; Научная конференция с международным участием «Проблемы лимфологии и интерстициального массопереноса», Новосибирск, 2004; Международный конгресс «Эндоэкологическая медицина», Новосибирск, 2007; Международная конференция «Фундаментальные проблемы лимфологии и клеточной биологии», Новосибирск, 2008.

Объем и структура диссертации.

ВЫВОДЫ.

1. У крыс ГК и Wistar обнаружены различия в характере суточных вариаций клеточного состава тимуса и селезенки: а). Общее количество клеток в тимусе и селезенке крыс ГК максимально вечером, а у крыс Wistar утром. б). У крыс Wistar достоверные различия между утренними вечерними значениями и обнаружены только для количества CD8 спленоцитов (вечерние значения ниже утренних). в). У крыс ГК достоверные суточные вариации выявлены для количества CD8±тимоцитов, активированных лимфоцитов и CD4+ -спленоцитов, причем, вечерние значения этих параметров оказались достоверно повышенными по сравнению с утренними.

2.0бщее количество клеток в паховом лимфоузле достоверно повышается в вечернее время и у крыс Wistar и у крыс ГК.

3. У крыс Wistar определяются достоверные суточные вариации всех исследованных дегидрогеназ: утренние значения параметров выше вечерних. У крыс ГК активности дегидрогеназ снижены во всех исследованных точках, и достоверные суточные вариации определены только для ЛДГ (утром ее активность несколько выше, чем вечером).

4. Клеточный состав тимуса и крови крыс Wistar и ГК по-разному реагирует введение ретаболила. У ГК в тимусе общее количество клеток и тимоцитов-CD8+ после введения гормона достоверно уменьшается, клеточный состав крови не изменяется. У крыс Wistar происходит увеличение общего количества клеток в тимусе и тимоцитов — CD4+ .Количество тимоцитов — CD8+ достоверно уменьшается. Количество лейкоцитов и эозинофилов в крови достоверно снижается.

5.

Введение

ретаболила оказывает прямо противоположное влияние на поведение крыс ГК и Wistar: у крыс ГК время застывания уменьшается, а у крыс Wistar, наоборот, увеличивается.

6.

Введение

ретаболила привело к нормализации поведенческого статуса крыс ГК, но в очень малой степени повлияло на исследованные параметры их лимфоцитов, что свидетельствует об отсутствии прямой связи между нейроэндокринной системой и состоянием иммунокомпетентных клеток у животных этой линии.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

В настоящей работе установлено, что у крыс «ЭД^аг и ГК имеются различия в клеточном составе лимфоидных органов, энергетическом метаболизме лимфоцитов и в суточных ритмах этих показателей.

У крыс с нормальной поведенческой реакцией на стресс активность всех исследуемых ферментов утром достоверно выше, чем вечером (р<0,05). В тимусе достоверных суточных колебаний обнаружено не было. В селезенке крыс Vistar достоверные суточные колебания зарегистрированы только для количества спленоцитов — С08+ Количество клеток в лимфоузле имеет минимальное значение в утреннее время и достоверно увеличивается к вечеру, что совпадает с часами наибольшей физической активности крыс. В крови интактных крыс Wistar общее количество лейкоцитов имело достоверные различия в утренние и вечерние часы. Утром этот показатель был выше. Абсолютное количество нейтрофилов вечером было достоверно больше, чем утром.

У крыс ГК, реагирующих на стресс проявлением кататонического синдрома, и обладающих особенностями нейроэндокринного статуса, получены противоположные результаты. Так, наименьшее количество клеток в тимусе отмечено утром, а к вечеру оно достоверно увеличивается. Абсолютное число клеток с фенотипом СЭ4+ не имеет достоверных суточных колебаний. Количество С08+ -тимоцитов и количество активированных лимфоцитов достоверно возрастает в вечернее время. Абсолютное количество клеток в селезенке и количество всех исследованных клеточных субпопуляций у крыс ГК не имеет достоверных суточных колебаний. Анализ активности СДГ, ЛДГ и альфа — ГФДГ лимфоцитов крови показал, что у крыс ГК, только активность ЛДГ имеет достоверные суточные колебания.

Таким образом, у крыс ГК выявленое снижение показателей характеризующих функциональное состояние лимфоидных клеток активности дегидрогеназ лимфоцитов крови и изменения субпопуляционного состава лимфоидных органов и клеточного состава крови, разной степени выраженности, указывает на возможное снижение функций иммунитета у этих животных, что может быть обусловлено изменениями метаболизма моноаминов головного мозга (Kolpakov V.G. et al., 1996; Уколова Т. Н., 2012).

Клетки иммунной системы и поведение крыс ГК и Wistar по-разному реагируют на введение ретаболила. У крыс ГК в тимусе ретаболи приводит к уменьшению исследованных параметров с различной степенью выраженности, относительно активного контроля: общее количество клеток в органе и CD8+ -тимоцитов под влиянием ретаболила становится достоверно меньше, количество СБ4±тимоцитов и количество активированных лимфоцитов достоверно не изменятся. У крыс Wistar, наоборот, приводит к достоверному увеличению количества клеток в органе и CD4+ - тимоцитов. Количество CD8+ -тимоцитов достоверно уменьшается. Количество активированных лимфоцитов не изменяется.

В селезенке крыс ГК и Wistar наблюдается различная картина: у крыс ГК введение ретаболила приводит к слабому увеличению общего количества клеток в тимусе и CD4-+ и CD8± спленоцитов, количество активированных лимфоцитов под влиянием ретаболила увеличиватся достоверно. На селезенку крыс Wistar ретаболил не оказал никакого влияния (слабое уменьшение количества клеток всех исследованных субпопуляций). Количество клеток в лимфоузле при введении ретаболила у крыс и ГК и Wistar достоверно не изменятся (незначительное снижение). На клеточный состав крови крыс ГК ретаболил не оказывает никакого влияния, а у крыс Wistar, напротив, наблюдается достоверное уменьшение общего количества лейкоцитов и абсолютного количества эозинофилов (р < 0,05). Количество лимфоцитов и нейтрофилов достоверно не изменяется. Активность оксидоредуктаз лимфоцитов у крыс Wistar так же, как и у крыс ГК под влиянием ретаболила достоверно не изменяется.

Исходя из полученных результатов, можно говорить о разной направленности реакции иммунной системы на гормональное воздействие ретаболила у крыс ГК и ДМЫаг.

Поведение крыс ГК и Vistar также по-разному изменялось после однократного введения ретаболила: у крыс ГК время застывания снижается относительно активного контроля, что можно расценивать как коррекцию поведенческой аномалии Введение ретаболила крысам Vistar, напротив, приводит к увеличению времени застывания относительно активного контроля (но остается в пределах нормы).

Полученные результаты свидетельствуют о том, что лимфоидные клетки крыс ГК с генетически обусловленной каталептической реакцией на стресс имеют характеристики, позволяющие предположить снижение функций иммунной системы, которое может быть вызвано особенностями нейроэндокринного статуса этих животных. Лимфоидные клетки крыс Wistar и ГК характеризуются различной реакцией на гормональное воздействие ретаболила, что позволяет предположить наличие изменений рецепторного аппарата лимфоцитов крыс ГК.

Ретаболил приводит к нормализации поведенческого статуса крыс ГК, но практически не влияет на исследованные параметры их лимфоцитов. Это может свидетельствовать об относительной независимости свойств нервной и иммунной систем у данных животных.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Т.А., Штильман Н. И., Никулина Э.М.и др. Агрессия и обучение у линии крыс, предрасположенных к каталепсии.// Журн. выс. нерв, деятельности им. И. И. Павлова. -1987.-Т.37, N3.-С.537−541.
  2. Э.Б., Бейер Э. В. Взаимосвязь психоэмоционального состояния и иммунной системы.// Успехи физиол. наук.-2004.-Т.35, N4.-C.49−64.
  3. Э.Б., Бейер Э. В. Хронобиологическое сходство специфического действия анксиолитических и антидепрессивных средств //Эксперим. и клинич. фармакология. 2007. — Т.70, № 5. — С. 52−58.
  4. H.H., Чугуй В. Ф., Алехина Т. А., Рязанова М. А., Уколова Т. Н. Сахаров Д.А., Колпаков В. Г. Обучение крыс, предрасположенных к кататоническим состояниям, в водном тесте Морриса.// Журн. высш. нерв, деятельности 2009, Т.59, N6. — С. 728−735.
  5. М.А., Лубоцкая Л. С., Токалов С. В., Гущин В. А., Корытова Л. И., Ягунов A.C. Влияние тотального облучения на выживаемость крыс с лимфосаркомой Плиса.//Восстановительные и компенсаторные процессы при лучевых повреждениях. СПб — 1992. — С. 17.
  6. М.А., Рябых Т. П. Хроноонкология.// Хронобиология и хрономедицина. Под ред. Комарова Ф. И., Раппопорта С. И., Москва: Триада-Х. 2000. — С.329−356.
  7. Ю.И., Труфакин В. А., Летягин А. Ю., Шурлыгина A.B. Циркадные биоритмы иммунной системы Новосибирск: РИПЭЛ.-Новосибирск. РИПЭЛ.- 1992 С. 208.
  8. Ю.И., Труфакин В. А., Шурлыгина A.B. Основы хронобиологии и хрономедицины. Научно-методическое пособие для врачей.- Новосибирск, СО РАМН, 2000.- С. 70.
  9. Буланов Ю. Б Анаболические средства 1993. — 30с.
  10. О.С. Иммунитет и различные стадии стрессорного воздействия.//Успехи современного естествознания. -2011, N6. С.31−35
  11. Т.П. Иммунная система при шизофрении Томск: МГП «РАСКО». 2000−112с.
  12. Т.П., Лобачева O.A., Найденова H.H., Семке A.B. Клинико-диагностические аспекты психонейроиммунологии (на модели шизофрении). //Патология психических расстройств- Томск: НИИ психического здоровья ТНЦ СО РАМН, 2006.- С. 143−154.
  13. И.А., Долгушин И. И., Колесников О. Л. Роль иммунной системы в выборе адаптационной стратегии организма. Челябинск, Наука, 1998.-128с.
  14. Е.А., Шабанова Л. Ф. Стресс-индуцированные нарушения иммунной функции и их психокоррекция.// Физиология человека — 1998.-Т.24, N1. С.123−130.
  15. Л.Х., Квакина Е. Б., Уколова М. А. Адаптационные реакции и резистентность организма. Ростов-на-Дону: Издательство Ростовского университета, 1990.-. 224с.
  16. П., Бахманн М. Анаболические стероиды. Москва, Спорт, 2011.-92с.
  17. Е.И., Крыжановский Г. Н. Дизрегуляционная патология нервной системы. МИА, 2009. 512с.
  18. Л.В., Идова Г. В., Альперина Е.Л Психонейроиммуномодуляция: поведение и иммунитет. Новосибирск, Наука, 2009.-168с.
  19. Л.В., Илыочонок З. Ю., Моноаминергические системы в регуляции иммунных реакций. Новосибирск, Наука, Сиб. отделение, 1983−234 с.
  20. Л.В., Илыочонок Р. Ю. Нейромедиаторные системы в психонейроиммуномодуляции: допамин, серотонин, ГАМК, нейропептиды. Новосибирск, ЦЗРИС, 1993.- 240с.
  21. В.П., Труфакин В. А., Козлов В. А., Шурлыгина A.B., Борукаева Л. А. Суточные колебания клеточного состава периферической крови у мышей разных генотипов // Физиологич. журнал СССР.- 1973-N 11.- С.1575−1579.
  22. И.Г., Оганесян Г. А., Физиология и патология цикла бодрствование сон. Эволюционные аспекты. СПб: Наука, 1994— 200с.
  23. С.А. Роль Т-хелперов 1 и 2 в регуляции клеточного и гуморального иммунитета. //Иммунология 2002. — № 2. — С. 77−79.
  24. С.А., Симбирцев A.C. Цитокины. Фолиант, 2008. 552с.
  25. Клиническая иммунология и аллергология.// Ред. Г. Лолор-мл., Т. Фишер, Д. Адельман. М., 2000. 806 с.
  26. Л.В., Ганковская Л. В., Хорева М. В. и др. Система цитокинов, современные методы иммунного анализа. М., Медицина, 2001.-200с.
  27. . B.A., Шурлыгина A.B., Костерина Л. П., Волкова Л. Г., Летягин А. Ю. Реакции иммунной системы на стрессорные воздействия в зависимости от биоритмов лимфоэндокринных функций.// Вести. АМН СССР. 1985. -№ 8. — С. 34−38.
  28. В.А., Труфакин В. А., Шурлыгина A.B., Вотчин И.С.//Регуляция иммунного гомеостаза. Тезисы доклада Всесоюзного симпозиума.
  29. В.Г. Кататония у животных. Новосибирск, 1990. 169с.
  30. Крапивкин А. И Патогенетическая характеристика важнейших клинических форм нарушения психологического развития у детей и оптимизация их лечения. Автореф. дис. док.мед. наук. -Моска-2012. -26с.
  31. Г. Н. Дизрегуляционная патология. Москва, 2002. -632с.
  32. Г. Н., Магаева C.B. Патология ЦНС в патогенезе иммунодефицитных состояний.// Нейроиммунология. Нейроинфекция. Нейроимидж. Тез. докл. конф., 25−27 мая 1995 в С- Петербурге С-П., 1995. «Лики России», 1995.-С.53−54.
  33. Г. Н., Магаева C.B., Макаров C.B. Нейроиммунопатология. Москва, 1997 263с
  34. А. Основы биохимии. М. Мир, 1985. Зт. — С. 1054.
  35. А. Ю. Экспериментальная перестройка синхронизирующими факторами суточных биоритмов органов лимфоидной системы: Автореф. дис. канд. мед. наук. Новосибирск — 1984. — 16с
  36. Г. И. Морфоцитохимические особенности лимфоцитов крови человека в разные фазы суточного и годового циклов в норме ипри развитии иммунодефицитного состояния: Автореф. дис. канд. мед. наук. Новосибирск — 1998. — 27с.
  37. Г. И., Нимаев В. В., Хабаров Д. В., Шурлыгина A.B., Труфакин В. А. Суточные вариации чувствительности дегидрогеназ лимфоцитов крови больных лимфедемой к перфузату ксеноселезёнки in vitro. // Бюлл СО РАМН 2001. -N4. С. 108−109.
  38. В.П., Шергин С. М. Структурно-функциональная организация иммунной системы. Новосибирск: Наука, 1981. — 224с.
  39. X. Основы гистохимии. Москва: Мир, 1980. — 343с.
  40. В.В., Майданник И. В. Справочник современных лекарственных средств Харьков: ACT Фолио. — 2005 — 1022с.
  41. Методы общей бактериологии. Справочник. Под ред. Ф. Герхардта и др., Москва: Мир, 1984. -264с.
  42. A.A., Базанов Г. А., Покровский В. И. и др. Профилактическая иммунология. -М., Медицина, 2004. 154с.
  43. К.Г. Суточная периодичность митотической активности, синтеза ДНК и длительности митоза в клетках костного мозга мышей.//Бюлл. эксп. биол. и мед. 1976. — T81.-N5-C. 594−596.
  44. Р.П. Применение р-нитротетразолия фиолетового для количественной цитохимии дегидрогеназ лимфоцитов человека. // Арх. анат. гистол. и эмбриол. 1969. — № 5. — С. 85−91.
  45. Р.П. Прогностические возможности цитохимии. // Сов педиатрия. МАН СССР, вып. 2, под ред. М. Я. Студеникина. — М.: Медицина, 1984: 2 — С. 267−275.
  46. М. А. Кветной И.М. Руководство по нейроиммуноэндокринологии. Москва, 2006 — 382с,
  47. Н.Г., Шурлыгина A.B., Труфакин В. А. Влияние ретаболила на клеточный состав лимфоидных органов у крыс ВИСТАР и ГК (генетическая предрасположенность к каталепсии).// Бюлл. эксп. биол. СО РАМН.- 2010.- Т. ЗО, N4.-C.51−56.
  48. Д.М., Ван Норден С. Введение в иммуноцитохимию: современные методы и проблемы. Москва, 1987. -74с.
  49. В.А., Трубников В. И. Клинико-иммунологические корреляции при шизофрении с разным типом течения болезни (на модели B-лимфоцитов).// Журн. невропатол. и психиатр. 1987 — Т.87, вып.5.-С. 727−732.
  50. А. Основы иммунологии. М. 1991 — 328с.
  51. В.П. Психиатрия. Семферополь. Феникс, 2002 — 324с.
  52. С.Ф., Осколкова, Вилков Г.А., Сизякина Л. В. Клинико-иммунологическая характеристика больных шизофренией по данным нейроцитотоксического теста.// Журн. невропатол. и психиатр-1984-Т. 87 вып.7 — С. 1069−1073.
  53. A.C. Цитокины новая система регуляции защитных реакций организма.// Цитокины и воспаление — 2002. — Т. 1. — N1. — С. 9−17.
  54. В. В. Изменения суточного ритма митотической активности лимфоцитов тимуса и периферических лимфоузлов после иммунизации.// Бюлл. эксп. биол. и мед. 1971. — Т. 72- 10. — С. 97−99.
  55. Система цитокинов: Теоретические и клинические аспекты.// Под ред. В. А. Козлова, С. В. Сенникова. Новосибирск: Наука, 2004. — 140 с
  56. Стандартизация методов иммунофенотипирования клеток крови и костного мозга человека (рекомендации рабочей группы СПб. РО РААКИ). // Мед. иммунология. -1999.- Т. 1. -N5. С. 21−43.
  57. А.П., Рябых Т. П. Пульсация лифоидных органов.// Бюлл. эксп. биол. и мед. 1981. — Т. 92. -N7. — С. 85−87
  58. М., Матага Н., Такасима М. Исследования психопатологии при шизофрении с использованием лабораторных животных. //Сейси игаку.- 1983. Т.25, N3. — С.283−293.
  59. A.A., Фрейдлин И. С. Клетки иммунной системы. СПб., 2000. -231с.
  60. В.А., Кривощеков A.B., Шурлыгина A.B., Пасынкова Н. Р. Биоритмологические аспекты экологии человека.//Новости медико-биологических наук 2005. -N1. — С. 116−122.
  61. В.А., Шурлыгина A.B., Дергачёва Т. И., Литвиненко Г. И. Суточные вариации метаболической реакции лимфоцитов крови людей на гормональные стимулы в норме и при развитии иммунодефицита.// Бюлл. эксперим. биол. и мед. 1995. -N2. — С. 181 -183.
  62. В.А., Шурлыгина A.B., Литвиненко Г. И., Дергачёва Т. И. Структурно-временная организация иммунной системы.// Бюл. СО РАМН. 1997. -N2. — С. 36−41.
  63. В.А., Шурлыгина A.B., Мичурина С. В. Лимфоидная система- циркадная временная организация и десинхроноз.//Бюллетень СО РАМН 2012.-N1- С. 5−12.
  64. В.А., Шурлыгина A.B., Мичурина С. В. Экология, биоритмы и иммунитет.// Вестник Российской Военно-медицинской академии-2008. -N3(23) Прил. 2, ч.1. — С. 16.
  65. Т.Н. Постурально моторные реакции и содержание моноаминов мозга в неонатальном периоде развития у крыс с наследственной кататонией: Автореф. дис. канд. мед. наук. -Новосибирск — 2012. — 17с.
  66. Физиология эндокринной системы. Под редакцией Дж. Гриффина, С. Охеды. Москва: БИНОМ, Лаборатория знаний, 2010. С. 496.
  67. И.С. Клетки иммунной системы: развитие, активация, эффекторные функции.// Russian J. Immunol. 1999. — V.4. -sup.l. -P. 9−15.
  68. И.С., Назаров П. Г. Регуляторные функции провоспалительных цитокинов и острофазных белков.// Вестник РАМН. -1999. -N 5. -С. 28−32.
  69. P.M., Пинегин Б. В. Иммуномодуляторы и некоторые аспекты их клинического применения.// Клинич. медицина. 1996. — N 8. — С. 7−12.
  70. P.M. и др. Иммунология. М., Медицина, 2002. — 536с.
  71. Ю. Л.//Учен. зап. Тартус. ун-та. Вып. 350. Тарту. -1975. -С. 8189.
  72. К., Асакура М., Нагатанигава К. Функция норадреналина при остром и хроническом введении дезипрамина: исследование роли альфа-норадреналина в развитии каталепсии, вызванной галоперидолом./УСинкэй сэйси якури.-1981.-Т.З. С. 27.
  73. Н. И., Донецкова А. Д., Топтыгина А. П. и др. Экспрессия цитокиновых генов и секреция цитокинов эпителиальными и лимфоидными клетками тимуса человека.// Иммунология. 2008. — Т. 29,-N6.-С. 329—334.
  74. A.B. Биоритмы и возраст.// Профилактическая и восстановительная медицина: Материалы научного совета ЦЭЭР. Новосибирск: ЗАО ИПП «Офсет».- 2011. Вып.5. — С.58−65.
  75. A.B. Структурно-временная организация лимфоидной системы в норме и при некоторых формах иммунопатологии : Автореф. дисс д.м.н. Новосибирск, 1992. — 50с.
  76. A.B., Вербицкая Л. В., Ковшик И. Г., Труфакин В. А. Биоритмологические аспекты иммунорегуляции и иммунокоррекции. // Проблемы экспериментальной, клинической и профилактической лимфологии. Мат. междунар. симп Новосибирск, 2000. — С.324
  77. А.В., Труфакин В. А. Хронобиологические аспекты структурно-функциональной организации иммунной системы.// Усп. совр. биол. 1987. — Т. 104. -N.2(5). — С.268−280.
  78. А.А. Основы иммунологии. М., Медицина, 1999. — 201с,
  79. А.А. Цитокины в тимусе. Биологическая активность и функции цитокинов в тимусе.// Цитокины и воспаление. 2003. — Т.2. -N2.-C3−12.
  80. А.А., Никонова М. Ф., Ярилина А. А., Варфоломеева М. И., Григорьева Т. Ю. Апоптоз, роль в патологии и значимость его оценки при клинико-иммунологическом обследовании больных.// Мед. Иммунология. -2000. Т.2. -N1. -С. 7−16.
  81. Aardal N. Circannual variations of circadian periodicity in murine colony-forming cells.// Exptt. Hematol. -1984. -V. 12. -N 1. P. 61−67.
  82. A., Lichtman A., Pober L. // J. Cellular and molecular immunology. -New York. 1991. — 580p.
  83. Abbas A., Murphy K., Sher A. Functional diversity of helper T lymphocytes.// Nature. 1996. — V.383. -N 6603. — P.787−793.
  84. Ader R. On the development of psychoneuroimmunology.// Eur. J. Pharmacol. 2000 — Sep — V. 29. — N 405(1−3). — P. 167−176.
  85. Alekhina Т., Shul’ga V., Lopatina N., Shiriaeva N., Vaido A. The neurohormonal characteristics of rats selected for the duration of the passive defense reaction and for the threshold of neuromuscular excitability.// Zh.
  86. Vyssh. Nerv. Deiat. Im. I. P. Pavlova. 1994. — Jul-Oct -V.44. N.5. — P. 837−841.
  87. Alekhina T.A., Ukolova T.N., Kuznetsova N.V., Palchikova N.A., Rjazanova MA. Effect of imipramine on nerve excitability in GC rats.// Bull. Exp. Med. 2009. — Jun- 147(6). — P 722- 725.
  88. Anichini A., Scarito A., Molla A., Parmiani G., Mortarini R. Differentiation of CD8+ T cells from tumor-invaded and tumor-free lymph nodes of melanoma patients: role of common gamma-chain cytokines.// J. Immunol. -2003.-V. 171.-N4.-P. 2134−2141.
  89. Dardenne M, Smaniotto S, de Mello-Coelho V, Villa-Verde D. Savino W. Growth hormonemodulates migration of developing T cells.// Ann N Y Acad Sci. 2009. — Feb. — V. 1153. — P. 1 -5.
  90. Aruga A., Aruga E., Cameron M.J., Chang A.E. Different cytokine profiles released by CD4+ and CD8+ tumor-draining lymph node cells involved in mediating tumor regression.// J. Leukoc. Biol. 1997. — V. 61. — N 4. — P. 507−516.
  91. Ase AR, Reader TA, Hen R, Riad M, Descarries L. Altered serotonin and dopamine metabolism in the CNS of serotonin 5-HT (lA) or 5-HT (lB) receptor knockout mice.// J Neurochem. 2000, Dec. — V. 75. — N 6. — P. 2415−2426.
  92. Avery P., Hoover E. Gamma interferon/interleukin 10 balance in tissue lymphocytes correlates with down modulation of mucosal feline immunodeficiency virus infection.// J. Virol. 2004. — V. 78. — N 6. — P. 409−4011.
  93. Baba Y., Kuroiwa F., Uitti R., et al. Alterations of T-lymphocyte populations in Parkinson disease.// Parkinsonism Relat. Disord. 2005. -Dec. — V. 11. — N 8. — P. 493−498.
  94. Bachmann M., Ohashi P. The role of T-cell receptor dimerization in T-cell activation //Immunol. Today 1999. -V. 20. -N 12. -P. 568—576.
  95. Bardelli M., Simonetti E. Experimental progressive muscular dystrophy and its treatment with high doses anabolizing agents.// Ital. J. Orthop. Traumatol. 1978. Apr — V. 4. N 1. — P. 115−27.
  96. Barykina N., Chugui V., Alekhina T., Kolpakov V., Ivanova E., Maksyutova A., Kulikov A. Thyroid hormone deficiency determines predisposition to catalepsy in rats.// Bull. Exp. Biol. Med. 2001. — Jul -V. 132.-Nl.-P. 620−621.
  97. Basaria S., Wahlstrom J., Dobs A. Anabolic-androgenic steroid therapy in the treatment of chronic diseases.// J. Clin. Endocrinol. Metab. 2001. — V. 86 — P. 5108−5117.
  98. Baschant U., Tuckermann J. The role of the glucocorticoid receptor in inflammation and immunity.// J. Steroid. Biochem. Mol. Biol. 2010, May V.31.-N. 120(2−3).-P. 69−75.
  99. Basu S., Dasgupta P. Dopamine, a neurotransmitter, influences the immune system.//J. Neuroimmunol. -2000, Jan V.24.-N. 102(2).-P. 113−124.
  100. Benjamin E., Sunshine G., Leskowitz S. Immunology, a short course. New York, 1996. -451p.
  101. Benloucif S, Galloway MP. Facilitation of dopamine release in vivo by serotonin agonists: studies with microdialysis.// Eur. J. Pharmacol. 1991.- Jul V. 23. — N. 200(1). — P. 1−8.
  102. Berger J. A two-clock model of circadian timing in the immune system of mammals.// Biol. (Paris). 2008 — Jul. — V. 56. — N 5. — P.286−291.
  103. Blach-Olzewska Z. Innate immunity: cell, receptors and signaling pathways// Arch.Immunol. The. Exp. 2005. — N 3. — P.245−253.
  104. Bona C., Bonilla F. Textbook of immunology. Amsterdam, 1996. 406 p
  105. Budantsev Aiu., Azarashvili A., Zharikov S., Arkhipov V. Monoaminergic systems of the brain and behavior.// Usp. Fiziol. Nauk. 1977 — Apr-May -V. 8.-N2.-P. 53−74.
  106. Burns E., Scheving L., Pauly J., Tsai H. Effect of altered lighting regimes, time limited feeding and presence of Ehrlich ascites carcinoma on the circadian rhythm in DNA synnthesis of mouse spleen.// Cancer/ Res. -1976. -/V. 36.-N3.-P. 1538−1544.
  107. Caille V., Bossi P., Grimaldi D., Vieillard-Baro A. Physiopathology of severe sepsis.//J. Autoimmun. 2004. — V. 22. -N 3. -P.227−233.
  108. Cantrell D.A. Smith K.A. The interleukin-2 T-cell system: a new cell growth model.// Science 1984. — V. 224. — N 4655. — P. 1312−1316.
  109. Carandente F., Angeli A., De Vecchi A., Dammacco F., Halberg F. Multifrequency rhythms of immunological functions.// Chronobiologia. -1988.-V. 15.-N 1−2.-P. 7−23.
  110. Ceskova E, Prikryl R, Kasparek T. Testosterone in first-episode schizophrenia.// Neuro. Endocrinol. Lett. 2007. — Dec. — V. 28. -N 6. — P. 811−814.
  111. Chattopadhyay U. Tumour immunotherapy: development and strategies.// Immunol. Today. -1999. -V. 20. -N 11. -P. 480−482.
  112. Cheng L., Wang Z., Locksley R. Murine B cells regulate serum IgE levels in a CD23-dependent manner.// J. Immunol. 2010, Nov — V. 1. -N. 185(9).-P. 5040−5047.
  113. Clark A., Henderson L. Behavioral and physiological responses to anabolic-androgenic steroids.// Neurosci. Biobehav. Rev. 2003. — V. 27. P. 413−436.
  114. Cohen J.J. Thymus-derived lymphocyte sequestrated in the bone marrow of hydrocortisone- treated mice.// J. Immunol. 1972. -V. 108. — P. 841−850.
  115. Cove-Smith J., Kalber P., Pownall R., Knapp M. Circadian variations in an immune response in man.// Brit. Med. J. 1978. — V. 2 (6132). — P. 253 254.
  116. Dardenne M., Smaniotto S., de Mello-Coelho V., Villa-Verde DM., Savino W. Growth hormone modulates migration of developing T cells.// Ann N Y Acad Sci. 2009. — Feb — V. l 153. — P. 1−5.
  117. Daynes R., Araneo BA., Hennebold J., Enioutina E., Mu HH. Steroids as regulators of the mammalian immune response.// J.Invest. Dermatol-1995.-Jul-V. 105(1 Suppl). P. 14−19.
  118. Depres-Brummer P., Bourin P., Pages N., Metzger G., Levi F. Persistent T lymphocyte rhythms despite suppressed circadian clock outputs in rats.// Am. J. Physiol. 1997. -V. 273. — N 6 Pt 2. — P. 1891−1899.
  119. Dwyer-Nield L., Dinsdale D, Cohen J., Squier M., Malkinson A. Morphological assessment of apoptosis in human lung cells.//Methods. Mol. Med. 2003. — V. 74. — P. 283−297.
  120. Elias A., Kumar A. Testosterone for schizophrenia.//Cochrane. Database. Syst. Rev. 2007. — Jul — V. 18. — N 3.
  121. Escola J., Frey H., Molnar G., Soppi E. Biological rhythm of cell-mediated immunity in man.// Clin, and Exptl. Immunol. 1976. — V. 26. — N 2- P. 253−257.
  122. Evans D.L., Pedersen C., Folds J. Major depression and immunity: preliminary evidence of decreased natural killer cell populations.// Prog. Neuropsychopharmacol. Biol. Psychiatry. 1988 — V. 12. — N 5. — P. 73 948.
  123. Fernandes G., Caradente F., Halberg E., Halberg F., Good R. A. Circadian rhythm in activity of lymphocytic natural killer cells from spleen in frisher rat // J. Immunol. 1979. — V. 123. — N 2. -P. 622−625.
  124. Fernandes G., Yunis E., Halberg F. Circadian aspects of immune responses in the mouse.// Chronobiology in Allergology and Immunology. Charles C. Thomas, Springfield, Illinois, USA .- 1977.-P. 233.
  125. Filipski E., Delaunay F., King V., Wu M., Claustrat B., Grechez-Cassiau A., Guettier C., Hastings M. Effects of chronic jet lag on tumor progression in mice.// Cancer Res. 2004. — Nov- V.64.- N — 21.- P. 7879−7885.
  126. Filipski E., King V., Li X., Granda T., Mormont M., Liu X., Claustrat B., Hastings M., Levi F. Host circadian clock as a control point in tumor progression.// J. Nat. l Cancer. Inst. 2002. — V. 94. -N 9. — P. 690−697.
  127. Folsch E., Briigger W., Brands W. Modification of hematotoxic effects of cyclophosphamide by anabolid steroids.// Arzneimittelforschung. 1975-Jan-V.-25.-Nl.-P. 59−66.
  128. Garsia-Sevilla J. Extraversionand neuroticism in rat.// Personn. and Individ. Differ. 1984. — Vol. 5, N 5. — P. 551−532.
  129. Girard J., Paychere M., Cuevas M., Fernandes B. Cell-mediated immunity in an ageing population.// Clin. Exp. Immunol. -1977. Jan — V. 27. — N 1. P. 85−91.
  130. Girard M., Hjaltadottir S., Fejes-Toth A., Guyre P. Glucocorticoids enhance the gamma-interferon augmentation of human monocyte immunoglobulin G Fc receptor expression.// J. Immunol. 1987 — May -V. 15. — N. 138(10). -P. 3235−3241.
  131. Glezer I, Rivest. Glucocorticoids: protectors of the brain during innate immune responses.// Neuroscientist. 2004. — Dec — V. 10. — N 6. — P. 538 552.
  132. Gorobets L., Matrosova M. Specialties of prolactin secretion and peripheral reproductive sex hormones in patients with of first episode of schizophrenia.// Nevrol. Psikhiatr. Im. S. S. Korsakova. 2010. — V. l 10. -N 10.-P. 17−22.
  133. Harada T., Hamaguchi Y., Sakakura Y., Myoshi Y. Circadian variation of secretory IgA in nasal secretion from normal subjects.// Acta otolaringol. -1984. V. 97. — N 3−4. — P. 359- 362.
  134. Haupt H., Rovere G. Anabolic steroids: a review of the literature.// Am. J. Sports. Med. 1984. — Nov-Dec — V. 12. — N 6. — P. 469−484.
  135. Haus E. Biologic rhythms in hematology.// Pathol. Biol. (Paris). 1996. -Sep — V.44. — N 7. — P. 618−630.
  136. Hsu H., Mountz J. Metabolic syndrome, hormones, and maintenance of T cells during aging.// Curr. Opin. Immunol. 2010. — Aug — V. 22. — N 4. -P. 541−548.
  137. Infante J., Peran F., Martinez M., Poyatos R., Roidan A., Ruitz C., Garrido F. Lymphocyte subpopulations: daytime variations and relationship.//Rev. Exp. Fisiol. 1996. — V. 52. — N 3. — P. 143−148
  138. Janeway C., Travers P., Walport M., Capra J. Immunobiology. The immune system inn haelth ad disease. — Current biology lim. — 1999.
  139. Jauregui-Huerta F., Ruvalcaba-Delgadillo Y., Gonzalez-Castaneda R., Garcia-Estrada J., Gonzalez-Perez O., Luquin S. Responses of glial cells to stress and glucocorticoids.// Curr Immunol Rev. 2010 — Aug — V.l. — N. 6(3).-P. 195−204.
  140. Jeckel C., Lopes R., Berleze M., Luz C., Feix L., Argimon I., Stein L., Bauer M. Neuroendocrine and immunological correlates of chronic stress in 'strictly healthy' populations.// Neuroimmunomodulation. 2010.-17. -V. l.-P. 9−18.
  141. Johns K., Beddall M., Corrin R. Anabolic steroids for the treatment of weight loss in HIV-infected individuals. // Cochrane Database Syst Rev. -2005.-Oct-V. 19.-N4.
  142. Joos L., Docx L., Schmaal L., Sabbe B., Dom G. Modafinil in psychiatric disorders: the promising state reconsidered.// Tijdschr Psychiatr. 2010.-V. 52.-N 11. — P.763−773.
  143. Kamyshanskaia N., Gorkin V., Voltenko N. Multiple forms of monoaminoxidase in the rat brain during experimental catatonia.// Vopr Med Khim. 1990. — Sep-Oct —V.36. -N 5. — P. 32−34.
  144. Katz D., Pope H. Anabolic-androgenic steroid-induced mental status changes.// NIDA Res. Monogr. 1990 N 102. — P. 215−223.
  145. Kelland M., Freeman A., Chiodo L. Serotonergic afferent regulation of the basic physiology and pharmacological responsiveness of nigrostriatal dopamine neurons // J. Pharmacol. Exp. Ther. -1990. May — V. 253. — N 2.-P. 803−811.
  146. Kicman A. Pharmacology of anabolic steroids.// Br. J. Pharmacol. 2008. -Jun — V. 154. — N 3. — P. 502−521.
  147. Kirk H. Mitotic activity and cell degeneration in the mouse thymus over a period of 24 hours//Z. Zellforsch. 1972. -Bd. 129 -N 2. — P. 188−196.
  148. Knapp M., Pownall R. Circadian rhythm in immune response and the effect of endogenous glucocorticoids.// Allergology. 1980. — V. 3. — N 4. — P. 226−230.
  149. Knapp M., Pownall R., Cove-Smith J. Circadian variations in cell-mediated immunity and the timing of human allograft rejection.// Chronopharmacology and chronothera-peuts. Tallahassee (Florida). -1981. -P. 228−329.
  150. Konusova A, Popova N. Role of central and peripheral serotoninergic mechanisms.// Fiziol. Zh. SSSR. Im. I. M. Sechenova. 1982 — Oct — V. 68. -N 10. -P.1416−1420.
  151. Kotera Y., Kougen Y., Aruga A., Yamamoto M. Dendritic cell vaccine for intrahepatic cholangio cellular carcinoma—a study of relationship between immuno-reaction and clinical outcome.// Gan To Kagaku Ryoho. 2009 -Nov — V. 36. — N 12. — P. 1964−1966.
  152. Krahn M., Anderson J. Anabolic steroid treatment increases myofiber damage in mdx mouse muscular dystrophy.// J. Neurol. Sci. 1994. -Sep -V.125 — N2-P. 138−146.
  153. Kronfol Z., Nair M., Zhang Q., Hill E., Brown M. Circadian immune measures in healthy volunteers: relationship to hypothalamic-pituitary-adrenal axis hormones and sympathetic neurotransmitters.// Psychosom. Med. 1997. — V. 59. — N 1. — P.42−50
  154. Ksendzovsky A., Feinstein D., Zengou R., Sharp A., Polak P., Lichtor T., Glick RP. Investigation of immunosuppressive mechanisms in a mouse glioma model. // J. Neurooncol. 2009. — May — V. 93. — N. 1. — P. 107−114.
  155. Kulikov A., Barykina N., Tikhonova M., Chuguy V., Kolpakov V., Popova N. Effect of chronic thyroxine treatment on catalepsy in rats.// Neurosci. Lett. 2002. — Sep — V. 20. -V. 330. — N 2. — P. 207−209.
  156. Kulikov A., Kozlachkova E., Popova N. Activity of tryptophan hydroxylase in brain of hereditary predisposed to catalepsy rats. // Pharmacol. Biochem. Behav.- 1992.-Dec.-V. 43.-N4.-P. 999−1003.
  157. Li H., Zhang Y., Zuo SF., Lian ZX., Li N. Effects of methyltestosterone on immunity against Salmonella Pullorum in dwarf chicks.// Poult. Sei. 2009 — Dec — V. 88. — N 12. — P. 2539−2548.
  158. Li MC., Wang HY., Wang HY., Li T., He SH. Liposome-mediated IL-28 and IL-29 expression in A549 cells and anti-viral effect.// Acta. Pharmacol. Sin. 2006. — Apr — V.27. — N 4. — P. 453−459.
  159. Li X.Q., Zhou X.Y., Sheng W.Q., Xu Y.X., Zhu X.Z. Indolent CD8+ lymphoid proliferation of the ear: a new entity and possible occurrence of signet ring cells.// Histopathology. 2009. — Oct — V. 55. — N 4. — P.468−470.
  160. Lichtor T., Glick R. Cytokine immuno-gene therapy for treatment of brain tumors.// J. Neurooncol. 2003. — V. 65. -N 3. — P. 247−259.
  161. Losel R., Falkenstein E., Feuring M., Schultz A., Tillmann H., Rossol-Haseroth K., et al. Nongenomic steroid action: controversies, questions, and answers.//Physiol. Rev. -2003. -V. 83. P. 965−1016.
  162. Marchant A., Appay V., Van Der Sande M., Dulphy N., et al. Mature CD8+ T lymphocyte response to viral infection during fetal life.// J. Clin. Invest. -2003. Jun-V.lll. -N 11. — P. 1747−1755.
  163. Martin R., Ruddle N., Reingold S. T-helper cell differentiation in multiple sclerosis and autoimmuity.// Immuol. Today. 1998. — V. 19. — N 11. — P. 495−498.
  164. Marusic-Galesic S., Pavelic K., Pokric B. Cellular immune response to the antigen administered as an immune complex.// Immunology. 1991 — Apr-V.72.-N4.-P. 526−531
  165. Mason S. Chronic administration of type A monoamine oxidase inhibitors increases duration of thiopentone anaesthesia in the rat.// Physiol. Behav. -1985. Aug — V.35. — N 2. — P. 201−203.
  166. Mason S. Noradrenaline in the brain: progress in theories of behavioural function. // Prog. Neurobiol. 1981. — V. 16. — N 3−4. — P. 263−303.
  167. Matsumoto T., Takeyama K., Sato T., Kato S. Androgen receptor functions from reverse genetic models.// J. Steroid. Biochem. Mol. Biol. 2003 — V. 85.-P. 95−99.
  168. Mazzoccoli G., Bianco G., Correra M., Carella AM., Balzanelli M., Giuliani A., Tarquini R. Circadian variation of lymphocyte subsets in health subjects// Recenti. Prog. Med. 1998. — Nov — V. 89. — N 11. — P. 569−572.
  169. McEwen B., Albeck D., Cameron H., Chao H., Gould E., Hastings N., Kuroda Y., Luine V., Magarinos A., McKittrick C., et al. Stress and the brain: a paradoxical role for adrenal steroids.// Vitam. Horm. 1995. — N 51.-P. 371−402.
  170. McGillis J., Hall N., Goldstein A. Circadian rhythm of thymosin-alpha 1 in normal and thymectomized mice.// J. Immunol. 1983 — Jul — V. 131. — N l.-P. 148−151.
  171. Meyers J. H, Ryu A, Monney L, Nguyen K, Greenfield E. A, Freeman G. J, Kuchroo V.K. Cutting edge: CD94/NKG2 is expressed on Thl but not Th2 cells and costimulates Thl effector functions.// J. Immunol. 2002. -V.169. -N 10. -P. 5382−5386.
  172. Missale C, Nash S, Robinson S, Jaber M, Caron M. Dopamine receptors: from structure to function. // Physiol. Rev. 1998. — Jan -V.78. — N 1. — P. 189−225.
  173. Miyawaki T, Taga K- Nagucki T. Circadian changes of T-lymphocyte subsets in human peripheral blood.// Clin, and Exptl. Immunol. 1984. -V. 55.-N3-P. 618−622.
  174. Mohan PF, Cleary M. Short-term effects of dehydroepiandrosterone treatment in rats on mitochondrial respiration.// J. Nutr. 1991. — Feb-V. 121.-N 2.-P. 240−250.
  175. Mortarini R, Scarito A, Nonaka D, Zanon M. Constitutive expression and costimulatory function of LIGHT/TNFSF14 on human melanoma cells and melanoma-derived microvesicles.// Cancer Res. 2005 — Apr- V.15- N 8. -P. 3428−3436.
  176. Moskvitina T, Kamyshanskaya N, Garishvili T, Gorkin V. On preparative separation of brain mitochondrial monoamine oxidases.// Prep. Biochem. -1979.-V. 9.-N2.-P. 171−96.
  177. Mosmann T., Cherwinski H, Bond M, Giedlin M, Coffman R. Two types of murine helper T cell clone. I. Definition according to profiles oflymphokine activities and secreted proteins.// J. Immunol. 1986. — V.136. -N7.-P. 2348−2357.
  178. Muller J., Isele U., Metzger E., Rempel A., Moser M., Pscherer A., et al. FHL2, a novel tissue-specific coactivator of the androgen receptor.// EMBO J. 2000. — V. 19. — P. 359−369.
  179. Murphy W., Longo D. Growth hormone as an immunomodulating therapeutic agent // Immunol. Today. 2000. — V. 21. — N 5. — P. 211−213.
  180. Nadeau S., Rivest S. Glucocorticoids play a fundamental role in protecting the brain during innate immune response.// J. Neurosci. 2003. — Jul — V. 2. -N.23 (13). — P.5536−5544.
  181. Nelson B., Willerford D. Biology of the interleukin-2 receptor.// Adv. Immunol.- 1998.-V. 70.-P. 1−81
  182. Nestle F., Burg G., Dummer R. New perspectives on immunology and immuotherapy of melanoma.// Immuol. Today. 1999. — V. 20. — N 1. — P. 5−7.
  183. Niehaus G., Ervin E., Patel A., Khanna K., Vanek V., Fagan D. Circadian variation in cell-adhesion molecule expression by normal human leukocytes.// Can. J. Physiol. Pharmacol. 2002. — V. 80. — N 10. — P. 935 940.
  184. O’Gorman W., Dooms H., Thorne S., Kuswanto W., Simonds E., Krutzik P., Nolan G., Abbas A. The initial phase of an immune response functions to activate regulatory T cells.// J. Immunol. 2009. — Jul — V.l. — N 183(1). -P. 332−339.
  185. Ohdo S., Wang D-Sh., Koyagi S., Takane H., Inoue K., Aramaki H., Yukawa E., Higuchi S. Basis for Dosing Time-Dependent Changes in the
  186. Antiviral Activity of Interferon- in Mice.// Pharmacol, and Exp. Ther. -2000. V. 294. — Issue 2. — P. 488−493.
  187. Palm S., Postler E., Hinrichsen H., Maier H., Zabel P., Kirch W. Twenty-four-hour analysis of lymphocyte subpopulations and cytokines in healthy subjects.// Chronobiol. Int. 1996. -V. 13. -N 6. — P. 423−434.
  188. Pauly J. E., Scheving L. E., Burns E. R., Tien-Hu Tsai. Circadian rhythm in DNA synthesis in mice thymus: effect of altered lighting regimens, restricted feeding and presence of Ehrlich ascite tumor.// Anat. Rec. 1976. -V. 184.-N3.-P. 275−284.
  189. Pelegri C., Vilaplana J., Castellote C., Rabanal M., Franch A., Castell M. Circadian rhythms in surface molecules of rat blood lymphocytes.// Am. J. Physiol. Cell Physiol. 2003. — V. 284. -N 1. — P. 67−76.
  190. Pellegrino T., Bayer B. In vivo effects of cocaine on immune cell function.// J Neuroimmunol. 1998. — Mar — 15. — V.83. — N 1−2.- P. 139−147.
  191. Piccinni M., Bani D., Beloni M., Manuelli C., Mavilia C., Vocioni F., Bigazzi M., Sacchi T., Romagnani S., Maggi E.// Eur. J. Immunol. 1999. -V.29.-N7.-P. 2241−2247
  192. Pinna G., Agis-Balboa R., Pibiri F. Neurosteroid biosynthesis regulates sexually dimorphic fear and aggressive behavior in mice.// Neurochem. Res. -2008.-Oct-V.33.-N 10.-P. 1990−2007.
  193. Plytycz B., Seljelid R. Rhythms of immunity.// Arch. Immunol. Ther. Exp. (Warsz). 1997. — V. 45. — N 2−3. — P. 157−162.
  194. Pope H., Katz D. Psychiatric and medical effects of anabolic-androgenic steroid use. A controlled study of 160 athletes.// Arch. Gen.Psychiatry. -1994. May — V. 51. — N 5. — P. 375−82.
  195. Pope H., Kouri E., Powell K., Campbell C., Katz D. Anabolic-androgenic steroid use among 133 prisoners.// DL Compr Psychiatry. 1996 — Sep-Oct -V. 37.-N5.-P. 322−327.
  196. Pownall R., Kalber P. Knapp M. The time of day of antigen encounter ifluences the magnitude of the immune response.// Clin, and Expti Immunol. 1979. — V. 36. — N 2. P. 347−354.
  197. Pritezel M., Markowitsch H. Tierversuche: eine Stellungsnahme aus der Sicht des physiolgischen Psychologen.// Psychol. Rdsch 1985 — Bd.36. N1-P. 16−25.
  198. Rambotti P., Davis S. Lactic dehydrogenase in normal and leukemia lymphocyte subpopulations: evidence for the presence of abnormal T cells and B cells in chronic lymphocytic leukemia.// Blood. 1981. Feb V. 57. N2.-P. 324−327.
  199. Ramer J, Benson K, Morrisey J, O’Brien R, Paul-Murphy J. Effects of melatonin administration on the clinical course of adrenocortical disease in domestic ferrets.// J. Am Vet. Med.Assoc. 2006. Dec V.l. — N. 229(11). P. 1743−1748.
  200. A., Goldstein L., Deutch A., Bunney B. Roth R. 5-HTla agonist -8-OH-DPAT modulates basal and stress-induced changes in medial prefrontal cortical dopamine.// Synapse. 1994. — Nov V.18. — N 3. P. 218−224.
  201. Restak R. Alice in migraineland. // Headache. 2006. Feb Nelson BH, Willerford DM. Biology of the interleukin-2 receptor.//Adv. Immunol. -1998.-V. 46(2).-P. 306−311.
  202. Revillard J., Adorini L., Goldman M., Kabelitz D., Waldmann H. Apoptosis: potential for disease therapies.// Immunol. Today. 1998. — V. 19.-N7.-P. 291−293.
  203. Richter C. Experimentally produced behavior reactions to food poisoning in wild and domesticated rats.// Ann. N. Y. Acad. Sci. 1953. — V 56. N 2. -P. 225−239.
  204. Riddell S, Greenberg P. T-cell therapy of cytomegalovirus and human immunodeficiency virus infection.// J. Antimicrob. Chemother. 2000 -Apr- V. 45. — Suppl T 3 .- P. 35−43.
  205. Robb R., Munck A, Smith K. T cell growth factor receptors. Quantitation, specificity, and biological relevance.// J. Exp. Med. 1981. — V. 154. — P.1455−1474.
  206. Ruckert R, Brandt K, Bulanova E, Mirghomizadeh F., Paus R, Bulfone-Paus S. Dendritic cell-derived IL-15 control the induction of CD8 T cell immune response.// Eur. J. Immunol. 2003. — V.33. — N 12. — P.3493−3503
  207. Rudolph I, Palombo-Kinne E, Kirsch B, Mellinger U, Breitbarth H, Graser T. Influence of a continuous combined HRT (2 mg estradiol valerate and 2 mg dienogest) on postmenopausal depression.//Climacteric. 2004 -Sep-V.7. -N 3. — P. 301−311.
  208. Salkowitz J, Sieg S, Harding C, Lederman M. In vitro human memory CD8 T cell expansion in response to cytomegalovirus requires CD4+ T cell help.// J. Infect. Dis. 2004. — V. 189. — N 6. — P. 971−1083.
  209. Sarkar C, Basu B, Chakroborty D, Dasgupta PS, Basu S. The immunoregulatory role of dopamine an update.// Brain Behav. Immun. -2010 May- V. 24. — N 4. — P. 525−528.
  210. Sato T., Matsumoto T., Kawano H., Watanabe T., Uematsu Y., et al. Brain masculinization requires androgen receptor function.// Proc. Natl. Acad .Sci. USA.-2004.-V. 101.-P. 1673−1678.
  211. Savino W. Intrathymic T cell migration is a multivectorial process under a complex neuroendocrine control.// Neuroimmunomodulation. 2010. — V. 17.-N3.-P. 142−145.
  212. Scordalakes E., Rissman E. Aggression in male mice lacking estrogen receptor.// Behav. Neurosci. 2003 — V. 117. — P. 38−45.
  213. Shahidi N. A review of the chemistry, biological action, and clinical applications of anabolic-androgenic steroids.// Clin. Ther. 2001. — V. 23. -P. 1355−1390.
  214. Sheffield-Moore M. Androgens and the control of skeletal muscle protein synthesis.// Ann. Med. 2000. — Apr -V. 32. — N 3. — P. 181 -186
  215. Sierakowski S., Goodwin JS. Mechanism of action of glucocorticoid-induced immunoglobulin production: II. Requirement for fetal calf serum.// Clin. Exp. Immunol. 1988. Jan V. 71.-N 1. P. 198−201.
  216. Simon NG. Hormonal processes in the development and expression of aggressive behavior. In: Pfaff DW, Arnold AP, Etgen AM, Farhbach SE, Rubin RT, editors. Hormones, Brain and Behavior. Vol. 1. San Diego: Academic Press. 2002. -P. 339−392.
  217. Skaper SD., Debetto P., Giusti P. The P2X7 purinergic receptor: from physiology to neurological disorders.// FASEB J. 2010. — Feb-- V. 24. -N2.-P. 337−345.
  218. Sletvold O., Laerum O.D. Multipotent stem cell (CFU-5) numbers and circadian variation in aging mice.// Eur. J. Haematol. -1988. V. 41. — N 3. -P. 230−236.
  219. Smaaland R., Sothern R.B., Lote K., Sandberg S., Aakvaag A., Laerum O.D. Circadian phase relationship between peripheral blood variables and bone marrow proliferative activity in clinical health.// In Vivo. 1995. — V. 9.-N4.-P. 379−389.
  220. Stanger BZ. The biology of organ size determination.// Diabetes Obes. Metab. 2008. — Nov — V. 10. — Suppl 4. — P. 16−22.
  221. Steiniger F. Ist eine tierpsyhologishe Betrachtung der sogenannten tierischen Hypnose berechtigt?// J.f. Ornitol. -1938-Bd.86. S. 516−528.
  222. Strauss RH, Yesalis CE Anabolic steroids in the athlete.// Annu. Rev. Med. -1991. V. 42.-P. 449−57.
  223. Neuropsychopharmacol. Biol. Psychiatry. -2010. Aug-V. 16. -N. 34(6). -P. 1007−1010.
  224. Terao K., Suzuki J., Ohkura S. Circadian rhythm in circulating CD16-positive natural killer (NK) cells in macaque monkeys, implication of plasma Cortisol levels.// Primates. 2002. — V. 43. — N 4. — P.329−338.
  225. Topp M.S., Riddell S.R., Akatsuka Y., Jensen M.C., Blattman J.N., Greenberg P.D. Restoration of CD28 expression in CD28- CD8+ memory effector T cells reconstitutes antigen-induced IL-2 production.// J. Exp. Med. 2003. — V. 198. — N 6. — P. 947−955.
  226. Trenton A J, Currier GW Behavioural manifestations of anabolic steroid use.// CNS Drugs. -2005.-V. 19.-N7.-P. 571−595.
  227. Viegas L., Hoijman E., Beato M., Pecci A. Mechanisms involved in tissue-specific apopotosis regulated by glucocorticoids.// J.Steroid. Biochem. Mol. Biol. 2008.-Apr-V. 109. — N 3−5. — P.273−278.
  228. Vuillermot S., Pescatore A., Holper L., Kiper D., Eng K. An extended drawing test for the assessment of arm and hand function with a performance invariant for healthy subjects.// J. Neurosci. Methods. 2009. Mar V.15. N. 177(2). P. 452−460.
  229. Wirz-Justice A. Biologic rhythms and depression.// Ther. Umsch. 1983 -Sep — V. 40. — N 9. — P. 763−768.
  230. Wolf S, Obendorf M. Selective androgen receptor modulators Testosterone.// Cambridge University Press. UK. 2004 — P. 623−640.
  231. Yoshida S., Sanui H., Ohhara R., Nomoto K., Takeya K. Restorative effects of nandrolone decanoate on the mononuclear phagocyte system in tumor-bearing mice.// Gann. 1981 — Jun — V. 72. — N 3. — P.435−439.
  232. Yoshida S., Sanui H., Ohhara R., Nomoto K., Takeya K. Restorative effects of nandrolone decanoate on the mononuclear phagocyte system in tumor-bearing mice. Gann.-1981.-Jun-V. 72.-N3. -P. 435−439.
  233. Zola H. Markers of cell lineage, differentiation and activation.//Biol. Regul. Homeost. Agents. 2000. — V. 14. — N 3. — P. 218−219.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!