Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Септориоз зерновых культур в различных регионах Российской Федерации

Диссертация: Септориоз зерновых культур в различных регионах Российской Федерации
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Выявлены разные типы взаимодействия in vitro изолятов Septoria spp. Основными из них являются тип, А (совместимость) и С (легкое ингибирование). При совместной инокуляции разными по патогенности изолятами S. nodorum, взаимодействующих in vitro по типу С, отмечалось снижение степени поражения растений. В отношении S. tritici снижение уровня патогенности не коррелировало с типом взаимодействия… Читать ещё >

Содержание

  • Глава 1. Обзор литературы
    • 1. 1. Распространение и вредоносность септориоза
    • 1. 2. Систематическое положение, видовой состав и морфологические особенности грибов рода Septoria
    • 1. 3. Жизненный цикл и биологические особенности патогенов
    • 1. 4. Внутривидовая изменчивость грибов рода Septoria
    • 1. 5. Проблемы и перспективы поиска сортов зерновых культур, устойчивых к септориозу
  • Глава 2. Материалы и методы
  • Материалы исследований
  • Методы исследований
    • 2. 1. Изучение видового состава возбудителей септориоза
      • 2. 1. 1. Обследование посевов и сбор инфекционного материала
      • 2. 1. 2. Анализ образцов пораженных растений
    • 2. 2. Изучение внутривидовой структуры возбудителей септориоза
      • 2. 2. 1. Выделение изолятов Septoria spp. в чистую культуру
      • 2. 2. 2. Изучение культурально-морфологических признаков гриба
      • 2. 2. 3. Оценка in vitro интенсивности споруляции изолятов Septoria spp
      • 2. 2. 4. Получение спорового материала изолятов Septoria spp
      • 2. 2. 5. Оценка патогенных свойств изолятов Septoria spp
    • 2. 3. Изучение биологических особенностей возбудителей септориоза
    • 2. 4. Хранение и поддержание культур коллекционных изолятов Septoria spp
      • 2. 4. 1. Поддержание коллекционных культур
      • 2. 4. 2. Методы длительного хранения культур
      • 2. 4. 3. Проверка жизнеспособности хранящихся культур
    • 2. 5. Изучение взаимодействия изолятов Septoria spp
  • Эксперимента пьная часть
  • Глава 3. Изучение видовой структуры популяций возбудителей септориоза пшеницы и ячменя в различных регионах России
    • 3. 1. Видовая структура возбудителей септориоза пшеницы
    • 3. 2. Видовая структура возбудителей септориоза ячменя
  • Глава 4. Изучение ряда биологических свойств возбудителя септорио-за пшеницы и ячменя S. nodorum
    • 4. 1. Изучение влияния температуры и продолжительности влажного периода на прорастание спор патогена
    • 4. 2. Изучение влияния температуры и продолжительности влажного периода на заражение растений пшеницы и ячменя изолятами S. nodorum
  • Глава 5. Внутривидовая дифференциация возбудителей септориоза по культурально-морфологическим признакам и патогенности
    • 5. 1. Внутривидовая дифференциация изолятов Septoria spp. по культурально-морфологическим признакам
    • 5. 2. Отбор сортов-дифференциаторов для оценки патогенных свойств изолятов возбудителя септориоза ячменя S. nodorum
    • 5. 3. Изучение корреляции между патогенными свойствами изолятов Septoria spp. и их спорулирующей активностью на питательной среде
  • Глава 6. Поддержание и длительное хранение коллекционных культур изолятов Septoria spp
    • 6. 1. Влияние последовательных пересевов на споруляцию изолятов S. nodorum
    • 6. 2. Методы длительного хранения культур изолятов Septoria spp
  • Глава 7. Изучение взаимодействия in vitro и in vivo изолятов Septoria
    • 7. 1. Взаимодействие изолятов одного вида септории
    • 7. 2. Взаимодействие изолятов разных видов септории
  • Выводы

Септориоз зерновых культур в различных регионах Российской Федерации (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность темы

.

Септориоз — широко распространенное и вредоносное заболевание зерновых культур. В последние 30 лет он занял прочное место в списке экономически важных болезней. В связи с этим фитопатологи и селекционеры уделяют ему такое же внимание, как ржавчине и мучнистой росе. В соответствии с Федеральной целевой программой «Упреждение и ликвидация эпифитотий и нашествий вредителей и их последствий» на 1998;2000 г, септориоз внесен в перечень особо опасных вредных организмов, вызывающих чрезвычайные ситуации в растениеводстве (Захаренко и др., 2001). На Европейской территории России в 50−80% случаев возникновение листовых инфекций на посевах зерновых культур вызвано именно им (цит. по Л. М. Супрун, 1990). Частота вспышек массового развития заболевания составляет 5−7 случаев из каждых 10 лет (Санин, 1997). Наиболее вредоносен септориоз на пшенице. Потери урожая при его умеренном развитии находятся на уровне 10−15%, а при эпифитотиях -30−40% (Санин, 2000). Мировые потери урожая этой культуры от септориоза оцениваются в девять миллионов тонн ежегодно (Bruno, Nelson, 1990). В последние 10−15 лет, особенно в годы с повышенной влажностью воздуха и частым выпадением осадков, наблюдается повсеместное распространение и развитие септориоза на ячмене, однако его вредоносность на этой культуре недооценивают, так как симптомы поражения часто относят к другим заболеваниям (Коваленко, 1986; Пересыпкин, 1989, Ашмарина, Горобей, 1998).

Одной из причин повсеместного распространения септориоза является отсутствие сортов, устойчивых к заболеванию. В настоящее время этой проблеме уделяется большое внимание. Много работ посвящено оценке устойчивости существующего сортимента к возбудителям септориоза и поискам доноров устойчивости. Важным звеном в селекционном процессе является создание искусственных инфекционных фонов, необходимых при оценке сортов на устойчивость. Для обоснования состава инфекционных фонов требуется углубленное изучение видовой структуры и внутривидового разнообразия популяций патогена, особенностей их формирования в разных агроклиматических зонах России, а также выявление биологических особенностей возбудителей септориоза, в первую очередь таких, которые могут быть использованы в селекционной работе. Для достоверной оценки устойчивости сортов важным моментом является знание характера взаимодействия компонентов, входящих в состав синтетических популяций, и его влияния на проявление заболевания в целом.

Цель и задачи исследований.

Целью исследований являлось изучение видового и внутривидового разнообразия возбудителей септориоза пшеницы и ячменя на территории различных регионов Российской Федерации и обоснование состава искусственных инфекционных фонов для оценки сортов на устойчивость к патогену. В связи с этим были поставлены следующие задачи :

— определение видового состава возбудителей септориоза на посевах пшеницы и ячменя в различных регионах России и составление карт их распространения;

— изучение ряда биологических особенностей патогенов;

— изучение внутривидовой структуры популяций наиболее распространенных видов рода Septoria по морфолого-культуральным признакам и па-тогенности;

— пополнение коллекции патогенных изолятов основных видов септории и изучение методов поддержания и длительного хранения коллекционных культур;

— обоснование состава искусственных инфекционных фонов для иммунологических исследований в различных регионах РФ.

Научная новизна исследований.

Впервые проведены многолетние систематические исследования по изучению видовой структуры популяций возбудителей септориоза на посевах пшеницы и ячменя на территории различных регионов европейской и азиатской части Россиисоставлены и опубликованы карты распространения основных видов септории.

Проведено сравнительное изучение влияния температуры и влажного периода на прорастание спор изолятов S. nodorum двух разных форм — пшеничной и ячменной, и на заражение ими соответствующих растений-хозяев.

Исследована внутривидовая изменчивость видов S. nodorum, S. tritici и S. avenae f.sp.triticea по морфолого-культуральным признакам и патогенности. Для дифференциации по патогенности изолятов возбудителя септориоза ячменя S. nodorum впервые подобран набор сортов-тестеров. f Пополнена и поддерживается коллекция чистых культур изолятов возбудителей септориоза. Усовершенствованы и разработаны методы, позволяющие длительное время хранить культуры изолятов гриба без существенной потери их свойств.

Исследована совместимость in vitro изолятов разных видов рода Septoria и влияние характера их взаимодействия на патогенность при совместной инокуляции растений.

Практическая значимость работы и реализация результатов исследований.

Обоснован состав искусственных инфекционных фонов для оценки сортов на устойчивость к заболеванию в различных агроклиматических регионах РФ. Для создания синтетических популяций в конкретных регионах отобраны наиболее патогенные изоляты Septoria spp., выделенные с пораженных образцов растений из этих регионов. После массовой наработки инфекционный материал рассылался в селекционные и научно-исследовательские учреждения для проведения иммунологических испытаний. Кроме того, биоматериал септории использовался при выполнении научно-исследовательских работ в ряде лабораторий ВНИИФ.

Апробация работы и публикация результатов исследований.

Материалы диссертации были представлены: на Всероссийском съезде защиты растений, посвященном проблемам оптимизации фитосанитарного состояния в растениеводстве (С-Петербург, 1995 г.) — на 1-м съезде микологов России (Москва, 2002 г.) — на первой Всероссийской конференции по иммунитету растений к болезням и вредителям, посвященной 300-летию С-Петербурга (С-Петербург, 2002 г.);

По теме диссертации опубликовано 7 печатных работ.

Выводы.

1. Проведен микологический анализ видовой структуры популяций возбудителей септориоза пшеницы и ячменя на территории различных регионов Российской Федерации, в результате которого выявлены три основных вида рода Septoria: S. nodorum, S. tritici и S. avenae f.sp.triticea. Из них на пшенице наиболее распростра.

• ненными являются S. nodorum и S. tritici, на ячмене — S. nodorum и S. avenae f.sp.triticea. На частоту встречаемости отдельных видов основное влияние оказывают агроклиматические условия региона.

2. В результате изучения биологических особенностей возбудителя S. nodorum установлено, что прорастание спор изолятов пшеничной и ячменной форм этого вида и заражение растений возможно в широком диапазоне температуры и влажного периода. Оптимальной для прорастания спор является температура +25°С. Заражение растений пшеницы интенсивнее происходит при температуре +20−25°С, а ячменя — при +25−30°С. Оптимальный влажный период для прорастания спор составляет 12 часов, для заражения растений — 48 часов.

3. Выявлена внутривидовая изменчивость изолятов S. nodorum, S. tritici и.

• S. avenae f.sp.triticea по скорости роста колоний на питательной среде, их морфологии и интенсивности спорообразования. Установлена корреляция между морфологическим типом колоний и спорулирующей активностью изолятов.

4. Для оценки патогенных свойств изолятов S. nodorum — одного из наиболее распространенных и вредоносных возбудителей септориоза ячменя подобраны сорта-тестеры, позволяющие дифференцировать изоляты по уровню патогенности на три группы: I — слабопатогенныеII — среднепатогенныеIII — высокопатогенные. Уро.

• вень патогенности изолятов не коррелировал со степенью их споруляции на питательной среде.

5. Показана возможность длительного хранения коллекционных изолятов S. nodorum и S. tritici при +4−8°С: в почве от 7 до 10 и более лет, в гербарных образцах и на косяках под слоем стерильной воды до 10 лет. В замороженном состоянии — от 3 до 5 лет.

6. Выявлены разные типы взаимодействия in vitro изолятов Septoria spp. Основными из них являются тип, А (совместимость) и С (легкое ингибирование). При совместной инокуляции разными по патогенности изолятами S. nodorum, взаимодействующих in vitro по типу С, отмечалось снижение степени поражения растений. В отношении S. tritici снижение уровня патогенности не коррелировало с типом взаимодействия изолятов in vitro. При совместной инокуляции изолятами S. nodorum и S. tritici во всех случаях наблюдалось значительное подавление образования пикнид S.tritici.

7. Для обоснования состава искусственного инфекционного фона для конкретного региона следует учитывать частоту встречаемости видов и внутривидовую изменчивость, отбирать изоляты, имеющие высокий уровень патогенности (II и (II группа), высокоспорулирующие на питательной среде и совместимые при оценке in vitro. Оценку сортов на устойчивость к S. nodorum и S. tritici рекомендуется проводить отдельно для каждого вида.

8. В результате многолетних исследований по видовому составу патогенного комплекса грибов рода Septoria впервые составлены карты распространения видов на европейской и азиатской территории РФ и обоснован состав искусственных инфекционных фонов для различных регионов страны.

Научно-практические рекомендации.

При создании искусственного инфекционного фона для каждого региона РФ рекомендуется отбирать изоляты наиболее распространенных на его территории видов септории согласно картированию, проведенному на основании многолетних исследований видовой структуры популяций патогена.

При оценке сортов пшеницы на устойчивость к септориозу в Северо-Западном. Северном и Волго-Вятском регионах европейской части страны следует использовать главным образом изоляты S. nodorumв Центральном регионе — S. nodorum и S.tritici. В Центрально-Черноземном регионе селекционную оценку сортов пшеницы рекомендуется проводить прежде всего к S.tritici. В Северо-Кавказском регионе, характеризующемся благоприятными условиями для развития септориоза, необходимо знать реакцию сортов как к S. tritici, так и к S. nodorum и S. avenae f.sp.triticea. В Поволжье также рекомендуется применять биоматериал всех трех видов септории, поскольку тот или иной вид доминирует в разных областях. В Уральском регионе оценку сортов пшеницы следует проводить на устойчивость ку сортов пшеницы следует проводить на устойчивость главным образом к S. nodorum и S. avenae f.sp.triticea. В Западной Сибири — к S. nodorum и S. triticiв Восточной Сибири — к S. nodorum и S. avenae f.sp.triticea.

Для оценки сортов ячменя на устойчивость к септориозу в Центральном регионе в качестве инфекционного фона рекомендуется использовать ячменные изоляты S. nodorum и S. avenae f.sp.triticea, а в северных регионах ETC — S.nodorum.

Изоляты по своему географическому происхождению должны соответствовать зоне проведения испытаний, иметь высокий уровень патогенности (11−111 группа) и обладать высокой репродуктивной способностью на питательной среде (иметь уровень споруляции не ниже II группы).

Для достоверной оценки септориозоустойчивости испытываемого материала в качестве искусственного инфекционного фона рекомендуется использовать в равных соотношениях смесь 3−4 изолятов, дополняющих друг друга по патогенности и не обладающих антагонистическим эффектом.

На основании этих рекомендаций проводилось ежегодное обеспечение биоматериалом септории селекционных и научно-исследовательских учреждений. За период с 1992 по 2002 гг. согласно разнарядке Госкомиссии по сортоиспытанию и по индивидуальным заявкам учреждений (в том числе ВНИИФ) передано около 10 кг биоматериала различных изолятов S. nodorum, S. tritici, S. avenae f.sp.triticea возбудителей септориоза пшеницы и ячменя.

Работы, опубликованные по теме диссертации.

1. Пахолкова Е. В. Динамика развития септориоза на короткостебельных сортах озимой пшеницы на фоне естественной эпифитотии в Московской области. П Сб. трудов Всероссийского съезда по защите растений, С-Петербург, 1995, с. 114.

2. Пахолкова Е. В. Развитие септориоза на сортах озимой пшеницы. // Защита растений, 1999, № 4, с. 28.

3. Коваленко Е. Д., Санина А. А., Пахолкова Е. В. Иммунологические методы создания болезнеустойчивых сортов зерновых культур. 2. Видовая и внутривидовая структура популяций возбудителей септориоза на посевах пшеницы. // Агро XXI, 2000, № 5, с.10−11.

4. Санина А. А., Пахолкова Е. В. Видовая структура популяций возбудителей септориоза пшеницы в различных регионах России. // Сборник трудов 1-го съезда микологов России, Москва, 2002, Разд. 7, с. 221.

5. Санина А. А., Пахолкова Е. В. Биологические особенности Septoria avenae Frank f.sp. triticea Johns. — возбудителя септориоза пшеницы. // Сборник трудов первой Всероссийской конференции по иммунитету растений к болезням и вредителям, С-Петербург, 2002, с. 114.

6. Коваленко Е. Д., Макаров А. А., Коломиец Т. М., Жемчужина А. И., Киселева М. И., Санина А. А., Пахолкова Е. В., Кряжева Н. Н., Жукова Л. В. Государственная коллекция фитопатогенных грибов. II Сборник трудов 1-го съезда микологов России, Москва, 2002, Разд. 4, с. 134.

7. Захаренко В. А., Овсянкина А. В., Санин С. С., Ибрагимов Т. З., Рулева О. М., Коваленко Е. Д., Коломиец Т. М., Жемчужина А. И., Санина А. А., Пахолкова Е. В. и др. Карты распространения вредных организмов, патотипов, генов вирулентности возбудителей болезней, фитофагов, энтомопатогенов на территории Российской Федерации. Выпуск 5., Москва, 2003.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Т.В. Особенности развития некоторых видов рода Septoria Sacc. в культуре. // Микол. и фитопат., 1986, т. 20, вып.1, с. 5−11.
  2. Л.Ф., Горобей И. М. Проверено на практике. // Защита растений, 1998, № 7, с. 17.
  3. Т.И., Васецкая М. Н. О реакции сортообразцов злаковых и бобовых растений на поражение их септориозом. // НИ с-х институт, Гвардейский, 1989.
  4. Т.И., Васецкая М. Н., Судникова Б. П., Алипбекова Ч. А. Видовой состав возбудителей септориоза на территории Казахстана, Западной Сибири, Южного Урала и Кыргызстана. // Сиб. вестн. с.-х. науки, 1991, № 3, с. 106−108.
  5. К. Паразитные грибы культивируемых растений Литовской ССР.• Вильнюс, 1961.
  6. Бурхардт З.И. Septoria nodorum Berk, на зерновых культурах в условиях Московской области и меры борьбы с ним. //Автореферат. 1955.
  7. М.Н., Борзионова Т. И. Роль эпифитотии с/х культур. Их прогноз и профилактика. Сборник докл. научн. конф. посвящ. памяти проф. К. М. Степанова // Кобулети, 1983 а, С. 143−152.
  8. М.Н., Борзионова Т. И. Роль дикорастущих и культивируемых• злаков и двудольных растений в резервации инфекции септориоза пшеницы. // Сб. докладов научн. конф., посвящ. памяти проф. Степенова К. М., Кобулети, 19 836, с.143−152.
  9. М.Н., Борзионова Т. И. Специализация и патогенные свойства Septoria nodorum Berk, и S.avenae f.sp.triticea T.John. // НИ с-х институт. Гвардейский, 1989, с. 5.
  10. М.Н., Куликова Г. Н., Борзионова Т. И. Виды септориальных грибов, распространенные на сортах пшеницы в СССР. // Микол. и фитопат. 1983, 17, 3, с. 210−213.
  11. М.П. Болезни зерновых. К чему надо готовиться агроному. И Защита растений, 1998, № 2, с. 2−3.
  12. Демидова 3. Наблюдения над видами Septoria на злаках. // Материалы по микол. и фитопат., 1926, V, вып. 2, с. 133−157.
  13. А.И. Септориоз озимой пшеницы и возможности борьбы с ним в Псковской области. //Автореферат дис. канд. с-х наук., Тарту, 1970, 20 с.
  14. Л., Калашникова Е. А. Влияние гриба S.nodorum и его метаболитов на прорастание семян пшеницы. // Изв. ТСХА, 1996, № 4, с. 150−155.
  15. Е.В. От чего зависит развитие септориоза яровой пшеницы. // Защита растений, 1997, № 2, с. 12.
  16. С.А. Устойчивость сортов озимой и яровой пшеницы к болезням и вредителям. // Защита растений, 1998, № 8, с. 24−26.
  17. Н.Н., Монастырная Э. И., Остапенко Н. Н. Влияние агротехнических приемов возделывания озимой пшеницы на развитие болезней. // Научн. тр.: Юбилейный выпуск, посвященный 100-летию со дня рождения акад. М. И. Хаджинова. Майкоп, 1999, с. 118−124.
  18. В.А., Плотников В. Ф., Санин С. С., Филлипов А. В. и др. Фито-санитарный мониторинг и системы защиты зерновых колосовых культур, картоф феля и подсолнечника от наиболее опасных болезней. // Защита растений, 2001, № 8, стр. 5−7.
  19. Н.А. Иммунологически надежные сорта. // Защита растений, 1987, № 1, с. 11−12.
  20. М. Основные болезни яровой пшеницы, вызываемые грибами из класса Deuteromycetes, в Казахстане. // Тезисы докладов: I съезд микологов России, 2002, с. 189.
  21. О. В. Видовой состав и вредоносность возбудителей септориоза яровой пшеницы. // Болезни с/х культур и б-ба с ними в Сибири, 1989, с. 50−55.
  22. Кирай 3., Клемент 3., Шаймоши Ф., Вереш Й. Методы фитопатологии. // М., «Колос», 1974, 343 с.
  23. Г. И. Фитоалексины и патогенность возбудителя септориоза пшеницы гриба S.nodorum Berk. // Тезисы докладов: I съезд микологов России, 2002, с. 187−188.
  24. Г. И., Герцог Н. М. Морфолого-культуральные особенности мутантов гриба Septoria nodorum Berk. // Вест, с-х науки Казахстана, 1991, № 8, с. 53−57.
  25. С.Н. Влияние некоторых факторов на продолжительность инкубационного периода септориоза озимой пшеницы в Лесостепи Украины. // Вест, с-х науки, 1976, № 9, с. 31−33.
  26. С.Н. Источники инфекции возбудителей септориоза пшеницы. // Интегрированная защита растений от вредителей и болезней зерновых и кормовых культур, Киев, 1981.
  27. С.Н. Изучение септориоза ячменя на Украине. // Защита с/х культур от вредителей и болезней, 1986, с. 25−29.
  28. .Ж. Морфолого-культуральные особенности видов рода Septoria Sacc. // Микология и фитопатология, 1991, т. 25, вып. 6, с. 502−507.
  29. .Ж. Полиморфные виды родов Mycosphaerella johans и Leposphaeriia Ces. et de Not. // Вестник М-ва науки, 1996, № 3, с. 53−60.
  30. Л.Н. Септориоз яровой пшеницы в Новосибирской области и меры б-бы с ним. // Автореферат дис. на соискание уч. степ, к.б.н., Харьков, 1964.
  31. М.М. Значение исследований по генетике фитопатогенных грибов для селекции болезнеустойчивых сортов. // 4-ый съезд Всесоюзн. общества генетиков и селекционеров им. Н. И. Вавилова. Тезисы симпоз. докл., 1982, с. 170 171.
  32. М.М., Михайлова Л. А., Афанасенко О. С. Методические указания по изменчивости популяций фитопатогенных грибов. Л., 1981
  33. М.М., Федорова М. В. Генетика фитопатогенных грибов. // Л., «Наука», 1972.
  34. В., Лисинова В. Сорта против болезней. // Захист рослин, 1996, № 1, с. 11.
  35. А.Ю., Валуевич Е. А., Булайчик А. А. Влияние плазмона на наследование устойчивости к S.nodorum Berk, у мягкой пшеницы. // Цитология и генетика, 2000, 34, № 3, с. 15−20.
  36. В.Ю. Септориозы растений в Литовской ССР. (I Культивируемые растения). // Труды Ак. Лит. ССР, 1978, № 4/84, с. 33−40.
  37. А.Г. Критический обзор рода Septoria применительно к флоре Эстонии. // Научные записки Тартуского унив-та, 1948 г.
  38. Е.А. Устойчивость озимой пшеницы к септориозу. // Защита растений, 1990, № 12, с. 11.
  39. Э.И., Застежко Н. Н., Остапенко Н. Н. Влияние агротехники на развитие комплекса болезней озимой пшеницы. // Защита растений, 1999, № 10, с. 11−12.
  40. Н.А. Динамика развития и распространения основных листовых болезней на озимой пшенице сорта Руфа. // Тр. Кубан. гос. аграр. ун-та, 1999. № 377, с. 53−60, 228−229.
  41. Т.И. Септориоз одно из наиболее распространенных и вредоносных заболеваний в Лесостепи УССР. // Технол. воздел, зерн. Колосов, культур и пробл. их селекции. ВАСХНИЛ. Мирон. НИИ селекции и семеновод, пшеницы. Мироновка, 1990, с.91−94.
  42. Л.Н., Соколова Е. А. Прогрессирующие болезни зерновых культур. //Агро XXI, 2000, № 4.
  43. .Г., Гогаева Т. И., Мепаришвили С. У., Пыжикова Г. В., Горгиладзе Л. А. Методические аспекты оценки устойчивости пшеницы к септориозу. //Сообщ. АН ГССР, 1989, 136, № 3,с. 685−688.
  44. Нгуен Ван Тхань. Обзор видов Septoria Sacc. на злаках в Ленинградской области. // Вестник Лен. Унив., 1976, № 21.
  45. В.Ф. Сельскохозяйственная фитопатология. // М., 1989.
  46. В.Ф., Коваленко С. Н. Устойчивость районированных и перспективных сортов озимой пшеницы к септориозу. // Доклады ВАСХНИЛ, 1974, № 7, с. 4.
  47. В.Ф., Коваленко С. Н. Симптомы септориоза озимой пшеницы в условиях Лесостепи Украины. // Микол. и фитопат., 1977, Т. 11, вып. 5, с. 441−444.
  48. В.Ф., Коваленко С. Н. Изменение некоторых физиологических процессов в листьях озимой пшеницы под воздействием возбудителя септориоза. // Научн. труды УСХА, 1978, № 209, с. 67−70.
  49. В.Ф., Коваленко С. Н. Развитие Septoria tritici Rob. et Desm. в тканях листьев озимой пшеницы. // Микол. и фитопат., 1981, Т. 15, вып. 3, с. 242 245.
  50. Н.М. Грибы паразиты культурных растений. Определитель. Том 1. Киев, 1977 г.
  51. Н.М. Грибы паразиты культурных растений. Определитель. Том 3. Пикнидиальные грибы, Киев, 1978 г.
  52. Н.А. Септориозы на зерновых злаках в условиях Ленинградской области. // Зап. Ленингр. с-х института, 1971, Т. 156, с. 91−94.
  53. Г. В. Септориозы зерновых культур.Обзор, информация, 1984 г.
  54. Г. В. О некоторых особенностях развития основных возбудителей септориоза пшеницы. // С-х биол., 1985, № 8, с .69−71.
  55. Г. В., Санина А. А., Супрун Л. М., Курахтанова Т. И. и др. Методы оценки устойчивости селекционного материала и сортов пшеницы к септорио-зу. Методические указания. М., 1989 г.
  56. Г. В., Туров Г. С. Образцы пшеницы, устойчивые к септориозу. //Селекция и семеноводство., 1990, № 4, с.22−23.
  57. Р. Полиморфизм при M.graminicola (Fuckel) Schraeter. Конидий-на форма Septoria tritici Rob. Ex Desm. // Почвознание, агрохимия и растительна защита, 1987, XXII, № 5, с. 53−57.
  58. С.С. Фитосанитарный мониторинг особо опасных фитопатоген-ных объектов важная общегосударственная задача. //Агро XXI, 1997, № 5, с. 3−5.
  59. С.С. Повысить уровень фитосанитарной безопасности страны. // Защита растений, 2000, № 12, стр. 3−7.
  60. А.А. Физиологическая специализация Septoria tritici Rob. et Desm. // Микол. и фитопат., 1991, Т 25, Вып. 4, С.338−341.
  61. А.А., Анциферова Л. В. Способы выделения и хранения возбудителей септориоза пшеницы. // Микол. и фитопат., 1989, Т. 23, Вып. 2, С. 172 175.
  62. А.А., Анциферова J1.В. Видовой состав грибов рода Septoria Sacc. на пшенице в европейской части СССР. // Микол. и фитопат., 1991а, Т. 25, Вып. З, С. 250−252.
  63. А.А., Анциферова А. А. Определение патогенных свойств изолятов Septoria nodorum (Berk) Berk, и Septoria tritici Rob et Desm. на пшенице. // Микол. и фитопат., 19 916, Т. 25, Вып. 2, С.155−160.
  64. Ф 69. Смирнова Л. А., Пыжикова Г. В., Назарова Л. Н. Эпифитотийные аспектыотбора образцов пшеницы к разным типам устойчивости к ржавчине и септориозу. // Слекция и семеноводство, 1990, № 2, с. 9−12.
  65. К.М. Грибные эпифитотии. М., 1962.
  66. В.П., Артемова С. В. Видовой состав грибов рода Septoria на зерновых культурах в Центрально-Черноземных областях России. // Тезисы докладов: I съезд микологов России, 2002, с. 209.
  67. Л.М. Видовая структура возбудителей септориоза пшеницы на Европейской территории СССР в 1987 г. // Биол. н., 1990, № 2, С. 76−80.
  68. Тетеревникова-Бабаян Д. Н. Обзор грибов из рода Septoria. Ереван, 1962, 159 с.
  69. Ф 74. Тетеревникова-Бабаян Д. Н. Грибы рода септория в СССР. // Ереван, 1987.
  70. Тетеревникова-Бабаян Д. Н, Бохян М. В. Обзор возбудителей септорио-зов пшеницы в Советском Союзе. // Академия наук Арм. ССР. Биолог, журнал Армении, 1967, XX, № 10.
  71. М.К., Потлайчук В. И., Семенов А. Я., Элбакян М. А. Определитель болезней с/х культур. Л., «Колос», 1984 г.
  72. Ф 77. Цветкова Н. А., Симон A.M. Вредоносность септориоза колоса озимойпшеницы в Нечерноземье. // Микол. и фитопат., 1994, Т. 28, № 4, с. 70−74.
  73. С.М., Васецкая М. Н. Развитие септориоза на посевах яровой пшеницы в Северном Казахстане. // Вопрося защиты с-х растений и животных от болезней: Сб. науч. тр. 4.1, Алма-Ата, 1989, с. 40−44.
  74. Л.Е., Минкевич И. И., Власов Ю. И., Гаврилова Е. А. Основные методы фитопатологических исследований. //М., «Колос», 1974.
  75. Н.А. Устойчивость видов пшеницы к Septoria nodorum Berk. // Изв. Тимиряз. с-х академии, 1989, № 6, с. 186−192.
  76. З.И., Полозова Н. А. Мучнистая роса и пятнистости яровых зерновых культур. М. «Колос», 1973, 56 с.
  77. Штайн Н. Н, Угрозу посевам представляет септориоз. // Защита растений, 1997, № 5, с. 39−40.
  78. О.Ю. Микрофлора семян ячменя в 1979 и 1980 гг. В кн.: «Экология низших растений». Минск, 1982.
  79. А.В. Состояние исследований и некоторые проблемы фенети-ки популяций. // В кн.: Фенетика популяций. М., Наука, 1982, с. 3−14.
  80. А.А. Определитель грибов. Т.2. Несовершенные грибы. // Петроград, 1917.
  81. Adolf В., Schofl U., Verreet J.A. Effect of infection with Septoria tritici of different growth stages of wheat (GS 25 to GS 59) an dry matter production, nitrogen up take and yield. // Meded. Jc. landbauw wetensch, 1993, 53, № 3, 1167−1174.
  82. Ahmed H.U., Mundt C.C., Coakley S.M. Host-pathogen relationship of geographically diverse isolates of S. tritici and wheat cultivars. // Plant Pathol., 1995, 44, № 5, 838−847.
  83. Allingham E.A., Jacson L.F. Variation in Pathogenicity virulence and agressiveness of Septoria nodorum in Florida. // Phytopathology, 1981, V. 71, № 10, pp. 1080−1085.
  84. Amelung D., Schwiemann H. Befallsentwicklung von Septoria Arven aut Weizenblattern. // Nachrbl. Pflzschutz in DDR, 1986, 40, 2, 32−35.
  85. Anon. Weizenkrankeiten mil zunehmender Bedeutung. // Rflzchutz-Kurier, 1987, 32, 1: 8−10.
  86. Anon. Septorioses des cereales, prevoir les dates de traitement. // Cultivar-2000, 1989,246:42−47.
  87. Arseniuk E., Stefanowska G., Czembor H.J. Analysis of resistance to Staganospora nodorum blotch in hybrids of Aegilops spp. with durum (Tr. durum) and bread (T. aestivum) wheat. // Plant Breed, and Seed Sci., 1999, 43, № 1, pp. 13−24.
  88. Babodoost M., Hebert T.T. Factors affecting infection of wheat seedling by septoria nodorum. H Phytopathology, 1984, 74 (5), 592−595.
  89. Bahat A., Gelemter I., Brown M.B., Eyal Z. Factors affecting the vertical progression of Septoria leaf blotch in short-statured wheats. // Phytopathology, 1980, 70: 179−184.
  90. Baker C.J. Influence of environmental factors on development of symptoms on wheat seedlings grown from seed infected with Septoria nodorum. // Trans Br. Mycol. Soc., 1970, 55 (3), 443−447.
  91. Baker C.J. Reaction of wheat varieties in the fild to ear and subsequent seedling infection by Septoria (Leptosphaeria) nodorum. // J. nat. Inst. Agric. Bot., 1971, 12, 279−285.
  92. Baker E.A. Septoria the lurking tread to wheat yields. // Eppo Bull., 1978, 8 (1): 9−20.
  93. Baker E.A., Smith J.M. Development of resistant and susceptible reactions in wheat on inoculation with Septoria nodorum. // Trans. Br. Mycol. Soc., 1978, 71 (3), 475−482.
  94. Bannon E.A. A method of detecting Septoria nodorum on symptomless leaves of wheat. // Irish j. of Agric. Research. 1978, V.17, № 3, p.323−325.
  95. Bayles R.A., Parry D.W., Priestley R.H. Resistence of winter wheat varietes to Septoria tritici. // J. Nat. Inst. Agr. Bot., 1985, 17, № 1, 21−26.
  96. Beck J.J., Ligon J.M. Polymerase chain reaction assays for the detection of S. nodorum and S. tritici in wheat. // Phytopathology, 1995, 85, № 3, 319−324.
  97. Benedict W.G., Mappledoram C.J., Scott P.R.A. A laboratory technique for screening cereals for resistance to Septoria nodorum using deteched seedling leaves. // Trans. Brit. Mycol. Soc., 1981, V. 77, № 3, pp. 667−669.
  98. Bird P.M., Ride J.P. The resistance of wheat to S. nodorum: fungal development in relation to host lignificathion. // Physiological Plant Pathology, 1981, 19, 289−299.
  99. Broennimann A. Entwieklund der Kenntnisse uber Septoria nodorum Berk, in Hinblick auf die Toleranz der Resistenzzuhtung bei Weizen. // Neth. J. Agr. Sci., 1982, 30, № 1, s. 47−61.
  100. Broennimann A., Sally B.K., Sharp E.L. Investigations on S. nodorum in spring wheat in Montana. // PI. Dis. Reptr., 1972, 56: 188−191.
  101. Brokencshiere T. Wheat seed infection by Septoria tritici. // Trans. Brit. Mycol. Soc., 1975, V. 64, № 2, pp. 331−334.
  102. Brokenshire T. The reaction of wheat genotypes to Septoria tritici. II Ann. appl. Biol., 1976, 82, 415−423.
  103. Brown J.K.M., Arraiano J.S., Brading P.A., Foster E.M. Field resistansce of wheat varieties to septoria tritici leaf blotch. //Annu. Rept., 1998, p.63.
  104. Bruno H.H., Nelson L.R. Partial Resistanse to septoria glume blotch analyzed in winter wheat seedlings. // Crop science., 1990, V. 30, № 1, p.54−59.
  105. Buschbell T. Charakteristika des Befallsverlaufes von S. nodorum an Weizen. // Mitt. Biol. Bundesanst. Land und Forstwirt. Berlin Dahlem., 1988, № 245, s.416.
  106. Cagneyil P., Claude J.P. Detection pre-symptomatique, par methode ELISA, dupietinverse et des septorioses et preconisations raisonnces des traitements fongicides. // Meded. Fac. landbow wetensch., 1993, 58, № 38, 1397−1400.
  107. Calpouzos L., Lapis. Effect of Light on Pycnidium Formation, Sporulation and Tropism by Septoria nodorum. // Scientific j. Senes Paper № 7063, 1969.
  108. Carlos O.A.M., Fuentes S., De Brauer L.J. Etudio sobre Septoria tritici Rob et Desm. // Agrociencia, 1975, V. 22, pp. 71−83.
  109. Caron D, Lambert Y. Septorioses. Epoques dintervention valeur ecilaboussante des pluies et decisions de traitement. // Perspect. Agr., 1988, 131, 4249.
  110. Carpentiez F., Lemaire J.M., Jouan B. Comparison de la reaction de differentes varietes de ble a Septoria nodorum par une techique d infiltration du parasite dans les Feuilles. // Sciences Agron. Rennes, 1976, V.9, pp. 49−57.
  111. Ceynowa J. Geziette Bekampfung der Blattdurre (S.tritici) in Winterweizen // Mitt. Biol. Bundesanst. Land und Forstwirt., 1992, № 283, 50.
  112. Chungu C., Gilbert J., Townley-Smith F. Grain yield and kernel weigth reductions in spring wheat genotypes inoculated with Septoria tritici. // Can. J. Plant Pathol., 1999,21, № 3, p. 315.
  113. Clear R.M., Patric S.K., Gaba D. Prevalence of fungi and fusariototoxins on barley seed from Western Canada, 1995 to 1997. // Can. J. Plant Pathol., 2000, 22, № 1, pp. 44−50.
  114. Cooke B.M., Jones D.G. The epidemiology of S. tritici and S.nodorum. II. Comparative studies of head infection by S. tritici and S. nodorum on spring wheat. // Trans. Br. Mycol. Soc., 1970, 56: 121−125.
  115. Cooke B.M., Jones D.G. Epidemiology of S. tritici and S.nodorum. III. The reaction of spring and winter wheat varietes to infection by Septoria tritici and S.nodorum. //Trans. Br. Mycol. Soc., 1971, 56: 121−135
  116. Cooke B.M., Fitzgerald W. Use of detection leaves for screening barley cultivars to Septoria nodorum. // Ann. Appl. Biol., 1982, Suppl, 100, pp. 98−99.
  117. Cordo C.A. Mancha de la hoja del Trigo (Septoria tritici) en la Republica Argentina. // Informes comis. ivvest. cient, 1979, № 29: 27.
  118. Cordo C.A., Marechal L.R. Accion toxica de filtrados de Septoria tritici. // Rev. Fac. Agron. Univ. nac. La Plata, 1987, 63, № 1−2, p.25−34.
  119. Cornish P. S., Baker G.R., Murray G.M. Physiological responses of wheat (Triticum aestivum) to infection with Mycosphaerella graminicola cousing Septoria tritici blotch. //Aust. J. Agric. Res., 1990, 41, 317−327.
  120. Cosic J. Pojava najznacajnijih bolesti psenice u 1997 godini. // Poljoprivreda, 1997, 3, № 2, c. 73−76.
  121. Cowger C., Mundt C.C. Variation for virulence of Mycosphaerella graminicola on wheat. // Phytopathology, 1998, V. 88, № 9.
  122. Cunfer B.M., Johnson J.W., Brown A.R. Resistance in semihardy winter barley to leaf and glume blotch coused by St. nodorum. // Plant Disease., 1992, 76, № 12, 1227−1230.
  123. Danon Т., Sacks J.M., Eyal Z. The relationships among plant stature, maturity class and susceptibility to Septoria leaf blotch of wheat. // Phytopathology, 1982, 72, 1037−1042.
  124. Eyal Z., Brown M.B. A quantitative method for estimating density of Septoria tritici. Pycnidia on wheat leaves. // Phytopathology, 1976, 66, 1: 11−14.
  125. Eyal Z., Brown J.F., Krupinsky J.M., Scharen A.L. The effect of postinoculation periods of leaf wetness on the response of wheat cultivars to infection by S.nodorum. // Phytopathology, 1977, № 67, 874−878.
  126. Eyal Z., Danon Т., Levi E., Yechilevich-Auster M. Genetic protection to Septoria leaf blotch of wheat. // In: La Selection des Plantes pour la resistance aux maladies, 1982, № 11, pp. 105−119.
  127. Eyal Z., Scharen A.L. A quantitative method for the inoculation of wheat seedling with pycnidiospores of Septoria nodorum. // Phytopathology, 1977, V.67, № 5, p. 712−714.
  128. Eyal Z., Scharen A.L., Huffman M.D., Prescott J.M. Global Insights into Virulence Frequencies of Mycosphaerella graminicola. // Phytopathology. 1985, 75: 1456−1462.
  129. Ezrati S., Schuster S., Eshel A., Eyal Z. Interactions between isolates of Septoria tritici varying in virulence following inoculation of wheat genotypes with a mixture of isolates. // Phytoparasitica, 1998, 26, № 26, pp. 162−163.
  130. Faulkner M.J., Colhoun J. An autonatic spore trop for collecting pycnidiospores of L. nodorum and other fungi from the air during rain and maintaining themin a viable condition. II Phytopatol. Z., 1977, 89, № 1, 50−59.
  131. Fitzgerald W., Cooke B.M. Response of wheat and barley isolates of Septoria nodorum to passage through barley and wheat cultivars. // Plant Pathol., 1982, 31, 315−324.
  132. Fitzgerald W., Cooke B.M. A sudlinds Blight of Barley caused by Septoria nodorum. // Plant Pathol., 1983, 2, 32.
  133. Fokkema N. J. The role of saprophytic fungi in antagonist Drechslera sorokiniana (Helminthosporium sativum) on agar plates and on rye leaves with pollen. // Physiol. Plant Pathol., 1973, 3, № 2, 195−205.
  134. Foranii C., Zitelli G. Preliminary result of studients on resistance sources to Septoria tritici in wheat. // Genet. Agr., 1979, V. 33, № 2−4, pp. 33−392.
  135. Forrer H.R., Zadoks J.C. Yield reduction in wheat in relation to leaf necrosis coused by Septoria tritici. // Neth. J. PI. Path., 1983, 89, 87−98.
  136. Fraaije B.A., Lovell D.J., Rohel E.A., Hollomon D.W. Rapid detection and diagnosis of Septoria tritici epidemics in wheat using a polymerase chain reaction. // J. appl. microbiol., 1999, V. 86 (4), pp. 701−708.
  137. Garcia C., Marshall D. Observations on the ascogenous stage of Septoria tritici in Texas. // Mycol. Res., 1992, 96, 1, 65−70.
  138. Gilbert J., Tekauz A. Reaction of Canadian spring wheats to Septoria nodorum and the relationship between disease severity and yield component. // Plant Disease, 1993, 77, № 4, pp. 398−402.
  139. Gough F.J. Effect of wheat host cultivars on picnidiospore production by Septoria tritici. H Phytopathol., 1978, V 68, № 9, p. 1343−1345.
  140. Gough F., Merkle O. The effect of specked leaf blotch on root and shoot development of wheat. // Plant disease rep. 1977, V.61, № 7, p.597−599.
  141. Griffiths E., Ao H.C. Variation in Septoria nodorum. //Ann Appl. Biol., 1980, V.94, № 2, p.294−296.
  142. Griffiths E., Peverett H. Effect of humidity and cirrhus extract on survival of Septoria nodorum spores. // Trans. Br. Mycol. Soc., 1980, 75 (1), 147−150.
  143. Griffiths H., Jones D.G., Akers A. A bioassay for predicting the resistance of wheat leaves to Septoria nodorum. // Ann. appl. Biol., 1985, 107, 293−300.
  144. Grove W.B. British Stem and leaf fungi. Vol.I. Sphaeropsidales. Vol.II. Sphaerops. and Melanconiales. Cambridge, 1935.
  145. Halama P. The occurence of M. graminicola, teleomorph of S. tritici in France. // Plant Pathol., 1996, 45, № 1, 135−138.
  146. Hansen L.R., Magnus H.A. Bladflekkspper pa bygg i Norge. // Forskning og Forsok i Landbruket, 1969, 20, 95−105.
  147. Harrower K.M. The micropicnidiospores of Leptosphaeriia (Septoria nodorum). //Trans. Brit. Mycol. Soc., 1976, V.67, № 2, p.335−356.
  148. Haugen L.G., Wilcoxson R.D. Effect of fungicides and cultivar genotypes on population of Septoria spp. on spring wheat in Minnesota. // Plant Disease, 1985, V.69, № 2, p.162−163.
  149. Hewett P.D. Seed-borne diseases on wheat harvested from variety trials. // J.Natn. Inst. Agr.Bot. 1966, 10, 602−608.
  150. Hilu H.M., Bever W.M. Inoculation, oversummering and suscept pathogen relationship of Septoria tritici on Triticum species. // Phytopathology, 1957, V.47, № 1, p. 474−480.
  151. Hogenson R.O., Hosford R.M. Sexual reproduction in Leptosphaeria avenaria f.sp.triticea induced by wave length of light greater thon 560 mm. // Mycologia, 1971, 63, 958−963.
  152. Holmes S.J., Colhoun J. Septoria nodorum as a pathogen of barley. // Trans. Br. Mycol. Soc., 1970, 55 (2).
  153. Holmes S.J., Colhoun J. Infection of wheat by Septoria nodorum and S. tritici in relation to plant age, air temperature and relative humidity. // Trans. Br. Mycol. Soc., 1974, 63 (2), 329−338.
  154. Horellou A., Dawson M., Durand R.N. Contamination artificelle et experimentation en plein champ cas de la septoriose et de la fusariose des cereals. // Phytiat.-phytopharm., 1979, 28, № 2, 71−78.
  155. Hosford R.M., Hagenson R.O., Huguelet J.E., Kiesling R.L. Studies of Leptosphaeria avenaria f.sp.triticea on wheat in North Dacota. // Plant Disease Reporter, 1969, V.53, 5, 378−381.
  156. Hughes G.R. Wheat disease research. Measurement of resistance to Septoria nodorum blotch. // Crop. Dev. Center Res. Pep. 1992−1993, Saskatoon, 1994, p. 21.
  157. Jaczewska-Kalicka A. Wplyw chorob na straty plonu pszenicy ozimej. // Mater. 35 Ses. nauk. Inst. ochr. rosl. Poznon, 1995, c. 224−227.
  158. James W.S. An illustrated series of assessment for diseases preparation and usage. // Can. Plant Diseases Survey, 1971, V. 51, № 2, pp. 36−65.
  159. Jaczewska-Kalica A. Wplyw chorob na straty polonu pszenicy ozimei. // Mater. 35 Ses. nauk. Inst. ochr. rosl., Poznan, 1995, c. 224−227.
  160. Janczak C., Lawecki Т., Powlak A. Rozwoj i szkdliwose choral grzybotwych na rozhych odmianach pszemey ozimej w 1996 roku. // Post. ochr. rosl., 1997, 37, № 2, 294−296.
  161. Jeger M.J., Jones D.G., Griffiths E. Components of partial resistance of wheat seedling to Septoria nodorum Berk. // Euphytica, 1983, 32: 575−584.
  162. Jeger M.J., Jones D.G., Griffiths E. Sporulation of S. nodorum (and S. tritici) on spring wheat cvs Kolibri and Maris Butler in relation to growth stage, plant part and time of season. // Ann. appl. Biol., 1984, 104, 31−39.
  163. Jenkins P.D., Jones D.G. The effect of dual inoculation of wheat cultivars with S. tritici and S.nodorum. // Phytopath. Z" 1981, V. 101 (3), 210−221.
  164. Jenkins J.E.E., Morgan W. The effect of Septoria diseases on the yield of winter wheat. IIP I. Path. 1969, 18: 152−156.
  165. Joerger M.C., Hirata L.T., Baxter M.A. Research and development of enzyme-linked immunosorbent assays for the detection of the wheat pathogens S. nodorum and S.tritici. // Brighton crop protection conference Pests and diseases, 1992, 7A.
  166. Johnson T. A form of Leptosphaeria avenaria on wheat in Canada. // Can. J.Res. Sect., 1947, p.259−270.
  167. Johnston H.W., Nass H.G. Determining components of resistance to S. nodorum. // Can. J. Plant Sci., 1992, 72, № 3, p. 975.
  168. Jones D.G. Partial resistance, cultural mixture and development in the Septoria nodorum Wheat association. // Jn: Septoria of cereals, Montana. 1985, V.12, p.3−9.
  169. Karjalainen R. Genetics of resistance of wheat to Septoria nodorum. U Nordisk Jordbrugs forskning, 1984, V. 66, № 3, 348−350.
  170. Karjalainen R., Karjalainen S. Yield reduction of spring wheat in relation to disease development caused by Septoria nodorum. // J. Agr. Sci. Finl., 1990, 62, № 3, 225−263.
  171. Karjalainen R., Lounatmaa K. Ultrastructure of penetration and colonization of wheat leaves by S.nodorum. // Physiol, and Mol. Plant Pathol., 1986, 29, № 2, 263 270.
  172. Kellaniyangoda D.B., Dofel H. Befall-Schadens-Relationen fur das Wirt-Parasit-Pear Weizen Septoria nodorum Berk. // Schaderreger in der Getreideproduktion, 1985, 225−253.
  173. King J.E., Cook R. J., Melvielle S.C. Review of Septoria diseases of wheat and barley. //Ann. Appl. Biol. 1983, 103: 345−373.
  174. Kristiansson B. Skilllnader mellan alika isolat av Septoria nodorum. // Nordisk Jordbrugsforskning, 1977, 59, № 3, 432−433.
  175. Kruger J., Hoffman G.M. Differenzierung von Septoria nodorum Berk, und Septoria avenae Frank f.sp.triticea T.Johnson. // Zeitschr fur Pflanzenkrank und Pflanzensechutz, 1978a, 11: 645−650.
  176. Kruger J., Hoffman G.M. Zur Uberlebensdauer von Septoria nodorum and S. avenae F.sp.triticea on Sommerweizensaatgut unter Einfluss der Lagertemperatur. // Z. Pflanzenkrank und Pflanzensechutz, 1978b, 85, 7, 413−418.
  177. Krupinsky J.M. Isolates of Staganospora. nodorum from alternative hosts offer passage through wheat. // Phytophatology, 1994, 84, № 10, p.1073.
  178. Krupinsky J.M., Scharen A.L., Schillinder J.A. Pathogenic variation in Septoria nodorum (Berk) Berk, in relation to organ specificity, apparent photosynthetic rate and yield of wheat. // Physiological Plant Pathology, 1973, 3, 187−194.
  179. Lancashire P.D., Jones D.G. Components of partial resistance to Septoria nodorum in winter wheat. // Ann. appl. Biol., 1985, 106, 541−553.
  180. Lee N.P., Jones D.G. Rapid method for spore production in three Septoria species. // Trans. Br. mycol. Soc., 1974, 62 (1), 208−211.
  181. Leonard K.J. Sporulation patterns of Septoria nodorum wheat in relation to quantitative resistance. //J.of Plant Diseases and Protection, 1988, 95 (4), 337−346.
  182. Luke H.H., Barnett R.D., Pfanler P.L. Development of Septoria nodorum blotch on wheat from infected and treated seed. // Plant Disease. 1986, 70, № 3, 252 254.
  183. Luthra J.C., Sattar A., Ghani M.A. Acomparative study of species of Septoria occurring on wheat. // Indian J. Agricultural Science. 1937, 7: 271−289.
  184. Luz W.C., Bergstron G.C. Septoria avenae spot as on additional of the fungal leaf spot syndrome of spring wheat in New York. // Plant Disease, 1985, V.69, № 8, p.724−725.
  185. Makela K. Leaf spot fungi on barley in Finland. // Svomen Maataloustieteallisen Sevran Julkaisvja. 1972, 124, 1−23.
  186. Makela K. Occurence of Septoria species on cereals in Finland in 19 711 973. // J. of Scientific Agricultural Society of Finland, 1975, 47, 218−244.
  187. Murphy N.E., Loughman R., Appels R., Lagudah E.S., Jones M.G.K. Genetic variability in a collection of Stag, nodorum isolates from Western Australia. II Austral. J. Agr. Res., 2000, 51, № 6, pp. 679−684.
  188. Mielke H. Untersuchunger zur Anfallighkeit inlandischer Weizensorten gegenuber der Braunfleckigkeit, Septoria nodorum (Berk) Berkeley. // Mitt. Biol. Bundesanst. Land und Forstwirt. 1994, № 301, 79.
  189. Mielke H., Meien-Vogeler F.von. Zur Anfalligheit inlandischer Weizensarten gegenuber Septoria tritici. II Mitt. Biol. Bundesanst. Land und Forstwirt., 1992,283,60.
  190. Mittermeler L., Hoffmann G.M. Untersuchungen zur Populationsentwicklung von Septoria nodorum im Feldbestand von Weizen. // Z. Pflanzenkrankh. und Pflanzenschutz, 1984, 91, 6, 629−639.
  191. Nelson J.R., Holmes M.R., Cunfer B.M. Multuple regression accounting for wheat yield reduction by Septoria nodorum and other pathogens. // Phytopathology, 1976, V. 66, № 12, pp. 1375−1379.
  192. Nolan S., Cooke B.M., Monahan F.J. Studies on the interaction between Septoria tritici and Staganospora nodorum in wheat. // Eur. j. Plant Pathol., 1999, V. 105 (9), pp. 917−925.
  193. Obst A. Unersuchungen zur Epidemiologie, Schadwirkung und Prognoses der Spelzenbraune des Weizens. // Bayer landwirtsch. Z., 1977, 54, № 1, s. 72−117.
  194. Obst A. Septoria Erfahrungen und Empfehlungen. // Pflanzenschutz-Praxis. 1987, 1: 14, 16, 18.
  195. O' Reilly P., Downes M.J. Form of survival of S. nodorum on symptomless winter wheat. // Trans. Brit. Mycol. Soc., 1986, 86, 3, 381−385.
  196. Onogur E. Vergleiellende untersucchunger uber olie Pathogenese ofer von Septoria tritici verursachten Blattfleckenkrankheit on weizensorten unterschiedliclaer Aufalligheit. // Juangua Diss., Bonn, 1977.
  197. Parello A., Cordo C.A., Alipii H.E. Caracteristicas morfologicas у patogenicas de aislamientas de Septoria tritici Rob. et. Desm. // Agronomie, 1990, 10, № 8, 641−648.
  198. Parello A., Cordo C.A., Arriga H.O., Alipii H.E. Variation in virulence of Septoria tritici Rob. ex Desm. isolates on wheat. // Agronomie, 1991, 11, № 7, 571 579.
  199. Peters J. Prufung von Weizen auf Resistenz gegen S. nodorum Berk. // Scharder-regen in der industriemassigen. 1992, 2: 475−481.
  200. Poettges E. Untersuchungen zur partiellen Resistenz von Weizen gegenueber Septoria nodorum. // Diplomarbeit. Univ. of Goettingen, 1986.
  201. Pokacka Z. Badania nad plamistosciami lisci pszenicy ze szczegolnym uwzglednieniem roli Septoria nodorum Berk. II Pr. nauk. Inst. Ochr. Rosl., 1985, 27, № 2, 5−31.
  202. Polley R.W., Thomas M.R. Surveys of disease of winter wheat in England and Wales, 1976−1988. II Ann. Appl. Biol., 1991, 119, № 1, 1−20.
  203. Porter C.L. Concerning the characters of certain fungi as exhibited by their growth in the presence of other fungi. // American J. of Botany, 1924, V. XI, pp. 168 188.
  204. Prestes A.M., Fernandes J.M. Sourees of resistance to Septoria nodorum in Brazil. // Proceeding, 1985.
  205. Rapilly F., Skaiennikoff M. Etudes sur Г inoculum de Septoria nodorum Berk., agent de la Septoriose du ble. II.- Les pycniospores. // Annales Phytopathologiques, 1974, 6, 1: 71−82.
  206. Rapilly F., Zemaire J.M., Cassini R. Les maladies des cereals. Les Septorioses. //1973, 108−118.
  207. Richards G.S. Factors influencing sporulation by S.nodorum. // Phytopathology, 1951, V.41, № 7, 571−578.
  208. Richardson M.I., Noble M. Septoria species on cereals a note to aid their Identification. // Plant Pathology, 1970, 19, 4, 159−163.
  209. Rillo A.O., Caldwell R.M., Glover D.V. Cytogenetics of resistance to wheat leaf blotch (Septoria tritici) in backcross derivatives of an Agrotricum line. // Crop Sci., 1970, V. 10, pp.223−227.
  210. Robert M., Hosford J. Identification and prevalence of several wheat leaf sport diseases. // Procced., 1985, p.48−50.
  211. Rosielle A.A., Brown A.Y.P. Selection for renstance to Septoria nodorum in wheat. // Euphytica, 1980, 29, № 2, 337−346.
  212. Rudiger G., Dietrich A. Untersuchungen zur Prazisierung der Bekampfungsentschcidung bei Septoria nodorum Befall in Winterweizen. // Pflanzenschutz DDR, 1989, 43, 10, 207−209.
  213. Rufty R.C., Hebert T.T., Murphy C.F. Variation in virulence in isolates of septoria nodorum. // Ecology and Epidemiology, 1981a, V.71, № 6, p.593−595.
  214. Rufty R.C., Murphy C.F., Hebert T.T. Methods for long-term storage of Septoria nodorum cultures. // Cereal. Res. Communications, 1981b, 9: 259−264.
  215. Saadaoui E.M. Physiologic specialization of Septoria tritici in Marocco. Plant Dis., 1987, V.71, № 2, p.153−155.
  216. Sanchez M.J.P., Berruezo J. Biologia у epidemiologia de las septoriosis del trigo en andalucia occidental. // Biol. Sanid. Vog. Plagos., 1986, 12, № 2, 313−318.
  217. Sanderson F.R., Hampton J.G. Role of the prefect states in the epidemiologi of the common Septoria diseases of wheat. // N.Z.J.Agr. Res., 1978, 21, № 2, 277−281.
  218. Sanderson F.R., Scharen A.J., Scott P.R. Sources and importance of primary infection and identifices of associated pronagules. // Procced., 1985, p.57−64.
  219. Scharen A.L. Biology of the Septoria / Stagonospora pathogenes: an overview. II Proceedings of the Fifth International Septoria workshop, 1999, CIMMYT, Mexico.
  220. Scharen A.L., Krupinsky J.M. Cultural and Inoculation studies of S. nodorum, couse of glume blotch of wheat. // Phytophatology, 1970, V.60, № 10, 1480−1485.
  221. Scharen A.L., Krupinsky J.M. Detection and manipulation of resistance to Septoria nodorum in wheat. // Phytophatology. 1978, 68: 245−248.
  222. Schnieder F., Tiedemann A., Fehrmann H. Infektionsverlauf von Septoria tritici auf anfalligen und teilresistenten Weizensorten. // Mitt. Biol. Bundesaust. Lond und Forstwirt, 1992, № 283, s.62.
  223. Scott D.B. Leaf spot diseases on small grain cereals in South Africa: symptoms and causative fungi. // Phytophylactica, 1988, V.20, 1, p.77−81.
  224. Scott P.R., Benedikz P.W. Field techniques for assesing the reaction of winter wheat cultivars to Septoria nodorum. II Ann. appl. Biol., 1977, 85, 345−358.
  225. Scott P.R., Benedikz P.W., Cox C.J. Agentic study of the relationship between heigh, time of ear emergence and resistance to S. nodorum in wheat. // Plant Pathol., 1982, V. 31, № 1, pp. 45−60.
  226. Scott P.R., Benedikz P.W., Jones H.G., Ford M.A. Sovne effect of canopy struture and microclimate one infection of tall and short wheats by S.nodorum. II Plant Pathol., 1985, 34, 4, 578−593.
  227. Shah D., Bergstrom G.C. Assessment of seedborne Staganospora nodorum in New York soft white winter wheat. // Plant Disease, 1993, V.77, № 5, p.468−471.
  228. Shah D., Bergstrom G. C, Ueng P.P. Initiation of Septoria nodorum blotch epidemics in winter wheat by seedborne Stag, nodorum. // Phytopathology, 1995, 85, № 4, 452−457.
  229. Shaner G., Finney R. Resistance in soft red winter wheat to Mycosphaerella graminicola. // Phytopathology, 1982, V. 72, № 1, pp. 154−158.
  230. Sharma H.S.S., Brown A.E. The assessment of susceptibility or resistance of spring and winter barley cultivars to Septoria nodorum. H Rec. Agr. Res., 1983, 31, 55−57.
  231. Shaw D.E. Studies on Leptosphaeria avenaria f.sp.triticea on cereals and grasses. // Can. J. Botany. 1957, V.35, № 1.
  232. Shaw M.W., Royle D.J. Factors determining the severity of epidemics of Mycosf. gr. (S.tritici) on winter wheat in the UK. // Plant Pathol., 1993, 42, № 6, 882 899.
  233. Shearer B.L., Calpouzos L. Relative prevalence of Septoria avenae f.sp.triticea, Septoria nodorum and Septoria tritici on spring wheat in Minnesota. // Plant Dis. Reporter., 1973, V.57, № 2, p.99−103.
  234. Shearer B.L., Wilcoxon R.D. Pathogenicity and development of Septoria avenae f.sp.triticea on winter and spring rye and on spring barley and wheat. // Plant. Dis. Rep., 1977, V.61, p.438−442.
  235. Shearer B.L., Zeyen R.J., Ooka J.J. Storage and behaviour in soil of Septoria species isolated from cereals. // Phytopathology, 1974, 64, 163−167.
  236. Shearer C.A., Zare-Maivan H. In vitro hyphal interactions among wood and leaf-inhabiting ascomycetes and fungi imperfecti from freshwater habitats. II Mycologia, 1988, 80 (1), pp. 31−37.
  237. Shipton W.A., Boyd W.R.J., Rosielle A.A., Shearer B.L. The common Septoria diseases of wheat. // Botanical Review, 1971, 37, 231−262.
  238. Skidmore A.M., Dickinson C.H. Colony interaction and hyphal interference between Septoria nodorum and Phylloplane fungi. // Trans. Br. mycol. Soc., 1976, V. 66, № 1, pp. 57−64.
  239. Smedegard-Petersen V. Leptosphaeria nodorum (S.nodorum). A new pathogen on barley in Denmark and its physiologic specialisation on barley and wheat. // Friesia X, 1974, 4, 251−264.
  240. Sowa W., Arseniuk E., Krusiak H., Wegrzyn S. Odziedrichzalnose i ilociowe efekty drialania genow odpornosci na Septoria nodorum (Berk) w pszenzycie ozimym (x Triticasecale Wittmack). // Biul. Inst. hod. i akeim. rosl., 1999, № 211, c. 185−189.
  241. Spadafora H., Cole lr., Frank I .A. Effects of leaf and glume blotch cause by Leptosphaeria nodorum on yield and yield components of soft red winter wheat in Pensylvania. // Phytopathology, 1987, 77: 1326−1329.
  242. Stahle-Csech U., Kuhl H. Septoria Watch Erfahrungen mitdem Fruhwarnsystem fur den Septoria Befall. // Mitt. Biol. Bundesanst Land und Forstwirt, 1994, 301, 429.
  243. Stein Т., Schuster S., Zilberstein A., Phini-Cohen S., Eval Z. The supression of pycnidial production of wheat following challenge inoculation by Septoria tritici isolates. // Phytopathology, 1994, 84, № 10, pp. 1099−1100.
  244. Stewart S.J., Jehan-Byers R. Development of a rapid on the site test for the presymptomatic detection of S. tritici and S.nodorum. // Brighton Crop Prot. Conf.: Pests and Diseases, 1996, V.1, p.215−220.
  245. Stuchlikova E. Septoria and fusarioses of the ear. // Res. Inst, of Crop Prod. Annu. Rep., 1994, p. 18.
  246. Sutherland R.A., Reed S.L., Duczek I.J., Bailey K.I., Lafond Y.P. The survival of leaf spot pathogens on crop residues of wheat and barley. // Can.j. Plant Pathol. 1998, V.20, № 1, p. 130.
  247. Tischner H., Bouer G. Monitoring fur Getreidekrankneiten in Bayern-Bewehrte Hilfe zum gezielten Fungizideinsotz. // Gesunde Pflanz., 2000, 52, № 7−8, pp. 254−260.
  248. Tvaruzek L. The utilization of coloured photoselective plastic foil in testing winter wheat for resistance to Septoria nodorum Berk. // Ochr. Rostl. 1991, 27, № 2, 101−109.
  249. Tvaruzek L., Klem K. Assessment of Stag, nodorum Berk, disease severity in winter wheat after inoculation. // Ochr. rostl., 1994, 30, № 4, 245−250.
  250. Van Ginkel M., Scharen A.L. Host-pathogen relationships of wheat and Septoria tritici. // Phytopathology, 1988, 78, 6, 762−766.
  251. Verreet J. A. Grundlagen der Schadenswirkung des Blatt und Ahrenbefalles durch Septoria nodorum (Berk) Berk, weizen. // Diss. Dokt. Agrarueiss Fak. Landwirt und Gartchbau Techn. Univ. Munchen., 1985.
  252. Verreet J. A., Hoffmann G.M., Amberger A. Septoria nodorum Berk. Physiologische Auswirkungen des Befalls von S. nodorum Berk, und Weizen. // Tagungsber., 1988, № 271, 303−313.
  253. Voloshchuk S.I., Voloshchuk A.D., Girko V.S. In vitro selection of winter wheat genotypes for resistance to some fungal pathogenes. // Bulg. J. Plant Physiol., 1998, Spec, issue., p. 298.
  254. Wainshilboum S.J. Effect of temperature and growth stage of wheat on development of leaf and glume blotch caused by Septoria tritici and S.nodorum. // Plant Disease, 1991, V.75, № 10, p. 993−998.
  255. Wal A.F. van der, Luuring B.B. Leptosphaeria nodorum Muller (Septoria nodorum Berk)// Techn. Beb. (Nederlands graan-centrum), 1976, 22, 915.
  256. Watkins J.E., Doupnik B.L., Kerr E., Carlson R.R. Uncheked wheat diseases can cause million in losses. // J. Form, ranch and home uarterly, 1979, T. 25, 4, pp.16−18.
  257. Weber G.F. Septoria diseases of cereals. II. Septoria diseases of wheat. // Phytopath. 1922, 12, 537−585.
  258. Weber G.F. Septoria diseases of cereals. III. Septoria diseases of rye, barley and certain grasses. // Phytopath. 1923, Vol. XIII, № 1, p. 1−28.
  259. Wiese M.V. Compendium of wheat diseases. 1977.
  260. Wilkinson C.A., Murphy J.P. A comparison of preservation methods for Septoria nodorum isolates. // Cereal Res. Commun., 1990, 18, № 1−2, 33−39.
  261. Wilkinson C.A., Murphy J.P., Rufty R.C. Diallel analysis of components of partial resistance to Septoria nodorum in wheat. // Plant Disease. 1990, 74, № 1, 47−50.
  262. Zamorski C., Nowicki B. Uwagi о wystepowaniu Septoriozy paskowanej lisei (Mycosphaerella graminicola) na pszenicy ozimej w Poise. // Bui. Inst. Hod. I aklim. Rosl., 1997, 204, 267−275.
  263. Ф 272. Zelikovitch N., Eyal Z. Reduction in pycnidial coverage after inoculation ofwheat with mixtures of isolates of S.tritici. // Plant Diseases, 1991, V. 75, № 9, p. 907 910.
  264. Zelikovitch N., Levy E., Eyal Z. The effects of mixtures of Mycosphaerella graminicola isolates on the expression of symptoms of wheat seedling leaves. // Phytopathology, 1986, V. 78, № 10, p. 1061.
  265. Ziv O., Eyal Z. Assessment of yield component losses caused in plants of ^ spring wheat cultivars by selected isolates of Septoia tritici. // Phytopathology, 1978,68, 791−796.4 • Ф Ф
Заполнить форму текущей работой

На отлично!