Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Преобразования системы двигательное окончание — мышечное волокно скелетных мышц различного происхождения в постнатальном онтогенезе

Диссертация: Преобразования системы двигательное окончание — мышечное волокно скелетных мышц различного происхождения в постнатальном онтогенезе
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Таким образом, MB по активности СДГ составляют общую популяцию, где имеется большое число переходных, промежуточных типов. Однако крайним типам MB будут соответствовать основные формы сложных ФАЗ НМС. Так, в мышцах, производных вентральных миотомов, которые являются быстро утомляемыми (за исключением прямой мышцы бедра), преобладают гликолитические MB и трабекулярные сложные ФАЗ НМС. В прямой… Читать ещё >

Содержание

  • Глава I. Материал и методы исследования
  • Глава II. Система «двигательное окончание — мышечное волокно» скелетной мышцы в постнатальном онтогенезе
    • 2. 1. Обзор литературы
    • 2. 2. Результаты собственных исследований
      • 2. 2. 1. Преобразования ферментоактивных зон нейромышеч-ных синапсов двуглавой мышцы плеча в постнатальном онтогенезе
      • 2. 2. 2. Ферментоактивные зоны нейромышечных синапсов двуглавой мышцы плеча на поперечных срезах
      • 2. 2. 3. Ферментоактивные зоны нейромышечных синапсов двуглавой мышцы плеча крысы и человека

Преобразования системы двигательное окончание — мышечное волокно скелетных мышц различного происхождения в постнатальном онтогенезе (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность проблемы. Условия жизни человека б современном обществе обусловлены постоянно растущим научно-техническим прогрессом и урбанизацией. За последние десятилетия во многих странах увеличивается средняя продолжительность жизни человека, что, одновременно, подразумевает несомненное стремление индивидуума сохранить активный и творческий образ существования до старческого возраста. Это требует понимания ожидаемого снижения нервно-мышечных функций и возможности дифференцировать результат старения от влияния физической бездеятельности и болезни (Bemben M.G., 1998; Andersen J.L., 2003; Ito J. et al., 2003; Mattiello-Sverzut, A.C. et al., 2003). Функциональная и структурная инволюция в нейромы-шечной системе вследствие возрастных изменений была признана причиной ухудшения физической работоспособности. Изменения в мотонейронах спинного мозга и в нервно-мышечном соединении идентифицируются как признаки денервации скелетных мышц стареющих млекопитающих, включая людей. Однако взаимовлияние нейронов на экспрессию гена в мышце и мышцы на возрастную нейродегенерацию плохо поняты, и, в результате, вмешательства, нацеленные на задержку или предотвращение дегенерации нервного компонента в стареющей мышце были в значительной степени неудачны (Delbono О., 2003).

Темп жизни современного человека, несомненно, приводит к изменению функций, обменных процессов и адаптации опорно-двигательной системы к естественным и экстремальным нагрузкам, что может проявляться ростом травматизации, длительно текущими заболеваниями и их хронизацией. Уделяется внимание состоянию мышечной системы при вынужденной физической разгруженности вследствие соблюдения постельного режима (Desplanches D. et al., 1998). В последнее время наблюдается увеличение числа врожденных (Ishigaki К. et al., 2003; Strozzi S., Steinlin M., 2003) и приобретенных нарушений мышечной системы. Изучается состояние скелетной мускулатуры при врожденном миастеническом синдроме (Maselli R.A. et al., 2003; Maselli R.A., Chen D., Mo D., 2003), митохондриальной миопатии (Olsen D.B. et al., 2003), спинальной мышечной атрофии (Haddad H. et al., 2003), алкогольной миопатии (Ohlendieck К. et al., 2003). Нередки такие наследственные мышечные дистрофии, являющиеся следствием отсутствия или аномального строения мышечных белков (дистрофина), как дистрофия Дюшена и дистрофия Беккера (Мак-Комас А.Дж., 2001; Hosaka Y. et al., 2002). Морфологические, биохимические, физиологические и генетические методы исследования позволяют находить новые подходы к лечению мышечных дистрофий (Martin Р.Т., 2003).

Важно учитывать возможные воздействия на мышечную ткань различных лекарственных и гормональных веществ. В частности установлено, что при гормональной терапии после пересадки почки отмечается снижение физической выносливости за счет изменения соотношения типового состава волокон скелетной мышцы, отражающего переход от углеводного к липидному метаболизму и уменьшение плотности миофиламентов (Торр K.S. et al., 2003).

Не менее важны вопросы спортивной адаптации и увеличения эффективности спортивных тренировок, поставленные перед морфологией, для решения которых необходимо использование современных методов ультраструктурного и гистохимического изучения процессов, происходящих в нервно-мышечной системе (Кузнецов С.Л., 1999; Fluck М., 2003 и др.). Вопросы адаптации и пластичности мышечной ткани актуальны и для космической морфологии (Belozerova I.N. et al., 2003).

Проблема нервно-мышечного соединения и взаимодействия всегда определялась на стыке интересов анатомии и гистологии. Видимый макроскопически контакт нерва, входящего в ворота мышцы, не давал четкого представления о механизме физиологической реакции — сокращении мышцы и выполнении ею специфической функции. Этот интерес определил внимание морфологов XIX века к вопросу нервно-мышечного соединения, которое в последующем определялось уже как система «двигательное окончание — мышечное волокно».

Одним из первых морфологов, в 1841 году описавших двигательные окончания, был Doyere. В последующем появились работы (Gerlach I., 1874- Langley J., 1905, 1906), представляющие двигательное окончание нерва на мышце как продолжение нервных терминалей вглубь мышечных волокон (MB) с последующим непрерывным переходом в миофибриллы. Эти представления развивал и Boecke J. (1932), описавший «перитерминальную сеть», разветвления которой пронизывают все мышечное волокно, являясь материальным субстратом «рецептивной субстанции» Ленгли.

Однако, наряду с представлением о непрерывном нервно-мышечном контакте, формируется точка зрения (Лавдовский М.Д., 1884, 1885- Арнштейн К. А., 1898) о раздельном существовании мышечной и нервной субстанции в зоне их контакта. Эти данные находят подтверждение в последующих работах с использованием методов импрегнацией серебром (Лаврентьев Б.И., 1928; Cajal R., 1928; Фалин Л. И., 1938 и др.). С использованием электронной микроскопии (Сои-teaux, 1955; Robertis Е. de., 1959, 1964; Gray E.G., 1970) определены такие неотъемлемые атрибуты синапса, как преи постсинаптическая мембраны и синаптическая щель.

В 1929 году Шеррингтон вводит термин синапс (аксомышечный синапс — для нервно-мышечного соединения) и понятие motor unitsдвигательная единица, под которой понимается отдельное двигательное волокно и колония MB, которую оно обслуживает. Двигательная единица является функциональная единицей, так как всякий раз, когда нервное волокно посылает импульс, происходит возбуждение всей колонии MB (Sherrington C.S., 1929). В образовании нервно-мышечного соединения выделяется три компонента: нервный, глиальный и мышечный (Португалов В .В., 1955; Couteaux R., 1958, 1960; Csillik В., 1963; Coers С., 1967; Загребин A.M., 1972; Женевская Р. П., 1974; и др.). В современной литературе нейромышечное соединение, включающее окончание мотонейрона и иннервируемое мышечное волокно рассматривается как единая система «двигательное окончание — мышечное волокно» (Персон Р.С., 1976; Филимонов В. И., 1992, 1998; Данилов Р. К., 1996 и др.). К настоящему времени можно считать наиболее изученным нервный компонент указанной системы.

Одновременно с исследованием морфологии нейромышечного синапса (НМС) предпринимались усилия по расшифровке передачи импульса с нерва на мышцу. Еще Langley J. (1905, 1906) указывал, что нервный импульс действует не прямо на контрактильное вещество мышцы, а на промежуточную субстанцию — специальную химически активную область MB («рецептивную субстанцию») — путем секреции специфического вещества. В дальнейшем было установлено, что в процессе перехода возбуждения через синапс с аксона мотонейрона на MB к компоненту нервного импульса электрической природы присоединяется значительно его усиливающий компонент химической природы, выделяемый окончанием аксона (Гинецинский А.Г., 1947; Португалов В. В., 1955). Передача в НМС осуществляется, как и в синапсах между нейронами автономной нервной системы, при помощи ацетил-холина (АХ), влияние которого на ионную проницаемость постсинап-тической мембраны осуществляется через АХ-рецепторы (AChRs) (Гинецинский А.Г., 1947, 1970; Кибяков А. В., 1959; Marney A., Nachman-sohn D., 1937, 1938; Nachmansohn D., 1959; Экклс Дж., 1966; Глебов Р. Н., Крыжановский Г. Г., 1978 и др.). Материальным носителем квантов АХ являются светлые агранулярные пузырьки терминального расширения нервного волокна, выброс медиатора из которого обеспечивает его контакт с АХ-рецепторами постсинаптической мембраны и гидролиз истинной холинэстеразой — ацетилхолинэстеразой (АХЭ) на хо-лин и уксусную кислоту. АХЭ заполняет со стороны саркоплазмы складки, расположенные в области синаптической щели (Couteaux R., Nachmannsohn D., 1942; Португалов В. В., Яковлев В. А., 1951; Couteaux R., 1955; CsillikB., 1960, 1967 и др.).

Существенным для понимания общебиологических закономерностей реализации нейро-тканевых отношений является выделение из мышечного компонента НМС «субневрального аппарата», где локализуется совокупность определяемых гистохимическими и иммуногисто-химическими методами АХ-рецепторов и различных ферментов — истинной и ложной холинэстераз, неспецифических ацетилэстераз, локализация которых в постсинаптической мембране, синаптических складках и синаптической щели обеспечивает гидролиз квантов АХ с последующей деполяризацией постсинаптической мембраны и поддержание метаболизма саркоплазмы (Birks R.I., Broun L.M., 1960; Zacks S.I., Blumberg G.M., 1960; Teravainen H., 1969; De la Porte S. et al., 1986).

С учетом наличия в области контакта нерва с MB трофогенов, НМС приближается к секреторным органам с многогранной функцией. Однако, гистоэнзимохимическая характеристика субневрального аппарата НМС по основному маркеру его функционального состоянияАХЭ — до настоящего времени не имеет полной картины и во многом является односторонней, либо спорной. Это обусловлено тем, что во многих работах применяется метод определения АХЭ с использованием солей АХ, который часто дает артифициальные картины распределения ферментативной активности, либо выявляемая активность АХЭ не позволяет приурочить ее к какой-либо структуре (Gomori G., 1948; Koelle G., Friedenwald J., 1949; Koelle G., 1950; Португалов B.B., 1955; Miledi R., 1960; Манолов С., 1965; Поздняков O.M., 1968; Miledi R. et al., 1968; Teravainen H., 1969; Фогельман В. Ф., 1972; Шилкин B.B., 1983; Tabuchi M. et al., 1991 и др.).

Результаты применения альтернативных методов определения активности АХЭ в области НМС в последние годы сосредоточены преимущественно в публикациях исследователей, работающих в Ярославской и Ижевской медицинских академиях (Николаев Г. М., Шилкин В. В., 1983; Шилкин В. В., Емельянов И. Д., 1983; Шилкин В. В., Филимонов В. И., 1996а, 1997аФилимонов В.И., 1992, 1998; Огнетов С. Ю., Сабельников Н. Е., Чучков В. М., 2002 и др.). С использованием тиоук-сусной кислоты для выявления ферментативной активности в области НМС можно попытаться дать ответы на следующие вопросы гистоэн-зимохимии: соответствует ли картина ферментативной организации субневрального аппарата морфологическим типам двигательных окончанийодинакова ли характеристика АХЭ-позитивной зоны НМС в мышцах, различных по происхождению, топографии, выполняемой функциикак отражаются процессы постнатальной дифференцировки двигательного окончания на преобразование его ХЭ-позитивной зоныразнятся ли процессы онтогенетического становления ферментативной активности в области НМС в различных мышцах?

Таким образом, актуальность гистохимического исследования НМС, позволяющего выявить структурную приуроченность ферментов и определить уровень их активности в целостном объекте исследования, установить конструктивные формы ферментоактивной зоны (ФАЗ) НМС в мышцах, отличающихся по происхождению, функции и характеру метаболизма, является несомненной.

Целью работы явилось установление закономерностей преобразования системы «двигательное окончание — мышечное волокно» скелетных мышц различного происхождения в постнатальном онтогенезе.

Задачи исследования. В ходе исследования в соответствии с поставленной целью были определены следующие задачи:

1. Описать гистохимические характеристики и возрастные преобразования области нейромышечного синапса скелетной мышцы белой крысы в постнатальном онтогенезе.

2. Сравнить топографию и активность ацетилхолинэстеразы в области нейромышечного синапса скелетной мышцы лабораторного животного и человека.

3. Определить соотношение мышечных волокон различных типов, образующих скелетные мышцы крысы, имеющие различное происхождение.

4. Изучить возрастную перестройку системы «двигательное окончание — мышечное волокно» различных скелетных мышц крысы на протяжении постнатальной жизни.

5. Провести сравнительный анализ гистохимических и мофро-метрических параметров системы «двигательное окончание — мышечное волокно» скелетных мышц, имеющих различное происхождение.

Научная новизна.

Впервые получена гистотопографическая характеристика мышц производных вентральных и головных миотомов, висцеральных дуг, трункофугальных, трункопетальных и аутохтонных мышц. Доказана гетерогенность их волокон по толщине, реакции на антитела против быстрого миозина, субстрату определения ключевого фермента цикла Кребса — сукцинатдегидрогеназы, по составу пучков мышечных волокон и топографии последних. На основе проведенных исследований представлена морфофункциональная характеристика изученных мышц, установлены общие черты и особенности их организации.

Впервые гистохимическим методом с использованием тиоуксус-ной кислоты исследована область нейромышечного синапса скелетных мышц различного происхождения, топографии, функции на протяжении жизни лабораторного животного начиная с раннего молочного до старческого периода постнатального онтогенеза. На гистотопографических срезах мышц выявлены закономерности расположения нейро-мышечных синапсов в каждой изученной мышце, установлены области концентрации в ней двигательных окончаний.

На основании качественных и морфометрических характеристик показаны общие закономерности преобразования ферментоактивной зоны нейромышечных синапсов в постнатальном онтогенезе, обоснована периодичность изменений качественных и морфометрических характеристик системы «двигательное окончание — мышечное волокно», установлены ее органные особенности.

Сопоставление характеристик изученных мышц с выявляемыми в них ХЭ-позитивными зонами нейромышечных синапсов позволяет связать конструктивные особенности последних с морфо-функциональным статусом мышцы.

Впервые проведенные сравнительные исследования конструкции ферментоактивных зон нейромышечных синапсов в мышцах человека и белой крысы сопоставимых возрастов позволили обосновать возможность экстраполяции полученных данных на человека.

Положения, выносимые на защиту.

1. Гистоэнзимотопография в изученных мышцах свидетельствует о гетерогенности состава их волокон по диаметру сечений, по типу волокон, по характеристике метаболизма.

2. Независимо от скорости сокращения (быстрые, смешанные) изученные мышцы имеют различную характеристику по утомляемости (быстро утомляемые, медленно утомляемые, мало утомляемые).

3. Область НМС скелетных мышц, имеющих различное происхождение и топографию, на протяжении постнатального онтогенеза характеризуется общими и специфическими особенностями, связанными с метаболическим профилем и функциональной характеристикой мышцы.

4. Гистохимические и морфометрические изменения мышечного волокна и ФАЗ НМС в постнатальном онтогенезе свидетельствуют о последовательном становлении системы «двигательное окончание — мышечное волокно», развитии естественной возрастной дегенерации и компенсаторной регенерации НМС, приводящих в изученных мышцах независимо от их морфо-функциональной характеристики практически к ее новой структуры.

5. Органные особенности возрастных изменений НМС в скелетных мышцах, имеющих различное происхождение, топографию и функциональную характеристику, проявляются выраженностью и динамикой развития.

6. Система «двигательное окончание — мышечное волокно» млекопитающих (лабораторных животных и человека) имеет общие черты организации и отличается, главным образом, по морфометрическим параметрам.

Теоретическая и практическая значимость работы.

Настоящее исследование системы «двигательное окончаниемышечное волокно» 19-ти скелетных мышц, имеющих различное происхождение, топографию, функциональные и метаболические характеристики на протяжении постнатального онтогенеза с момента рождения животного до старческого периода жизни с использованием современных гистохимических методик, направлено на решение фундаментальной проблемы нейроморфологии — организации нервно-мышечного контакта. В работе проводится гистохимический и морфо-метрический анализ преобразований области НМС с учетом метаболического профиля и качественного состава миозина скелетных мышц, позволяющий выявить основные стадии становления, стабилизации и возрастной перестройки, включающей естественную дегенерацию и регенерацию, нервно-мышечного контакта.

Данные исследования могут быть включены в лекционный материал морфологических кафедр по разделам миологии, периферической нервной системы. Полученные сведения позволяют детально описать возрастную динамику преобразований гистохимических и морфомет-рических параметров системы «двигательное окончание — мышечное волокно» скелетных мышц, имеющих различное происхождение, топографию, функциональную нагрузку.

Перспективность изучения НМС определяется не только интересом изучения мышцы как органа, но и для расшифровки результатов экспериментальных исследований, внешних и внутренних воздействий. Полученные данные о топографии НМС в мышцах различного происхождения, функции и топографии могут способствовать решению вопросов микрохирургии при выборе лоскута при свободной и несвободной пересадке мышц. Описанная характеристика ХЭ-позитивных зон НМС в различных мышцах может использоваться в научных исследованиях при моделировании поражений опорно-двигательного аппарата, при разработке эффективных способов лечения ряда нейромышечных заболеваний (миопатии, миастении, спинальные и невральные амио-трофии).

Данная работа является частью комплексного исследования, поддержанного грантом РФФИ № 04−04−96 018.

Апробация работы.

Основные положения работы доложены и обсуждены на IV и V Съездах анатомов, гистологов и эмбриологов России (Ижевск, 1999; Казань, 2004) — международной конференции нейроморфологов «Современные проблемы нейробиологии. Исследования висцеральных систем и их регуляции в возрастном аспекте» (Саранск, 2001) — Всероссийской научно-практической конференции, посвященной 80-летию проф. В. Г. Петрухина (Москва, 2001) — VI и VII Конгрессах Международной ассоциации морфологов (Уфа, 2002; Казань, 2004) — международной научной конференции, посвященной 70-летию со дня рождения проф. Б. А. Никитюка (Москва, 2003) — III и IV Межвузовских конференциях молодых ученых и студентов (Ижевск, 2003, 2004) — межвузовской конференции Удмуртского отделения ВрНОАГЭ (Ижевск, 2005).

Реализация результатов исследования.

По материалам диссертации опубликовано 39 работ в местной и центральной печати (монография — 1, статьи — 28, тезисы — 10). Результаты исследования включены в лекционные курсы кафедр гистологии и анатомии человека Ижевской, Ярославской, Тюменской, Астраханской государственных медицинских академий, Самарского, Башкирского, Саратовского, Казанского государственных медицинских университетов.

Структура и объем диссертации

.

Диссертация изложена на 371 стр. машинописи, состоит из введенияглавы, характеризующей материл и методы исследования- 3 глав собственных исследований, включающих обзор литературы и обсуждениязаключения и выводов.

Список литературы

содержит 520 источников, из них 204 отечественных и 316 зарубежных. Работа включает 60 таблициллюстрирована 91 рисунком, обобщающим 280 микрофотографий и 2 схемы.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Проведенное изучение возрастной перестройки системы «двигательное окончание — мышечное волокно» скелетных мышц, имеющих различное происхождение гистохимической методикой в модификации Г. М. Николаева и В. В. Шилкина (1983), позволяет говорить о воспроизводимости результатов. Одномоментность методики позволяет подбирать оптимальное время для каждого среза каждого объекта.

Установлено, что для проведения реакции в большинстве случаев достаточно 15−20 минут. Исключение составляют мышцы 3-х суточных животных и двуглавая мышца плеча человека, где время инкубации составило 40 — 45 минут. Это указывает на меньшую активность фермента у человека и у новорожденных крыс. Выявляемая активность фермента приурочена в мышцах исключительно к области НМС: ни в приводящем нервном волокне, ни в MB большинства мышц интактных половозрелых млекопитающих активность фермента метод не выявляет. Исключение составляют MB щечной и дорсальной прямой мышцы глаза, по ходу которых определяется внесинаптическая активность АХЭ и у взрослых животных. Связано это явление, по-видимому, с особенностями иннервации и типом метаболизма указанных мышц.

Область НМС скелетной мышцы крысы и человека имеет ряд отличий. Помимо более низкой активности АХЭ (временя инкубации в рабочем растворе, характер конечного продукта реакции) в системе «двигательное окончание — мышечное волокно» мышцы человека при большем диаметре MB отмечаются меньшие мофрометрические параметры ФАЗ НМС и преобладание сложных глобулярных конструкций над трабекулярными в сравнении с мышцей лабораторного животного. Однако, общие признаки, характеризующие область НМС скелетной мышцы, как животного, так и человека (организация ФАЗ НМС по одному из двух основных типов — гомогенному или сложному — с преобладанием в периоде первой зрелости сложных конструкцийчеткие контуры ФАЗ НМС и отсутствие внесинаптической активности АХЭ за пределами НМСестественные возрастные дегенеративные изменения НМСпоказатель иннервации MB) позволяют говорить об универсальности гистохимической организации области НМС и возможности экстраполяции полученных результатов возрастных изменений системы «двигательное окончание — мышечное волокно» скелетных мышц лабораторного животного на исчерченную мускулатуру представителей класса млекопитающих, в том числе и человека.

На поперечных срезах полигональные MB характеризуются расположением ФАЗ НМС у какого-либо края или угла MB и никогда в центральной его части. Толщина ФАЗ НМС не превышает 1/6 — 1/8 толщины MB, средняя площадь составляет от 67,22±52,68 (3 месяца) до 129,0±72,75 (12 месяцев) мкм", в отличие от площади ФАЗ НМС, определяемой на продольных срезах (78,83±68,38/274,4±79,7 -122,3±86,75/471,4±188,5 мкм" простых и сложных ФАЗ в 3 и 12 месяцев соответственно). Таким образом, можно считать, что пространственно ФАЗ НМС расположены в поверхностных слоях MB и соответствуют формированию в области нервно-мышечного контакта двигательной концевой пластинки.

Топография окончаний двигательных нервов соответствует анатомической организации мышцы и ее сосудисто-нервным воротам. Гистотопография во многих изученных мышцах определяется достаточно четко с момента рождения и окончательно устанавливается к пубертатному периоду онтогенеза. Те мышцы, которые не имеют четкой локализации НМС (жевательная, щечная), имеют сложные пространственные взаиморасположения MB и характеризуются, по-видимому, рассыпным типом иннервации. Во всех возрастных группах в каждой из изученных мышц можно наблюдать две ФАЗ НМС на одном MB. Наиболее часто данное явление встречается на первом месяце жизни животного, что соответствует полинейрональной иннервации MB. В более поздние периоды онтогенеза парную ФАЗ НМС на одном MB чаще можно видеть в дорсальной прямой мышце глаза. Являются ли данные ФАЗ НМС окончаниями одного или разных мотонейронов нами не устанавливалось.

В ходе проведенного типирования MB, входящих в состав скелетных мышц различного происхождения получены данные о скоростных и обменных характеристиках изученных мышц. По качественному составу миозина, определяемому иммуногистохимическим методом с использованием AT к быстрому миозину, становится очевидным, что практически все мышцы являются быстрыми или же смешанными с преобладанием быстрых волокон (большая поясничная, дорсальная прямая мышца глаза и диафрагма). Однако, организация ФАЗ НМС изученных мышц более вариабельна, что особенно хорошо заметно в образовании разнообразных сложных конструкций. С чем может быть связано большая вариабельность сложных ФАЗ? В мышцах можно видеть все три типа MB, определяемых по активности СДГ, причем даже в волокнах одного типа (оксидативных, оксидативно-гликолитических и гликолитических) активность фермента может быть различна, на что указывает интенсивность окрашивания продукта реакции в различных мышцах.

Таким образом, MB по активности СДГ составляют общую популяцию, где имеется большое число переходных, промежуточных типов. Однако крайним типам MB будут соответствовать основные формы сложных ФАЗ НМС. Так, в мышцах, производных вентральных миотомов, которые являются быстро утомляемыми (за исключением прямой мышцы бедра), преобладают гликолитические MB и трабекулярные сложные ФАЗ НМС. В прямой мышце бедра, грудино-ключично-сосцевидной, трункопетальных, межреберных мышцах и диафрагме наблюдаются все 3 типа MB или некоторое преобладание оксидативно-гликолитических волокон, что указывает на медленную утомляемость данных мышц. Во всех этих мышцах, наряду с трабеку-лярными конструкциями, определяется большое число глобулярных сложных ФАЗ. Наконец, в висцеральных мышцах и дорсальной прямой мышце глаза, практически не утомляемых из-за заметного преобладания оксидативных и оксидативно-гликолитических волокон с высокой активностью СДГ, преобладают глобулярные ФАЗ и трабекулярные ФАЗ, имеющих незначительную ФНЗ. Особенно отличаются сложные ФАЗ НМС в щечной и дорсальной прямой мышце глаза (наибольшее содержание высокоактивных оксидативных MB малого диаметра), где ФНЗ выражена не четко, имеется некоторая активность АХЭ как по всей площади НМС, так и за пределами синапса. В прямой мышце глаза, помимо этого, определяются и «гроздьевидные» ФАЗ НМС. Исходя из вышеизложенного, становится очевидно, что форма ФАЗ НМС зависит от функциональной особенности и типа энергетического обмена иннервируемого MB.

Исходя из того, что на первом месяце жизни в мышцах превалирует доля простых конструкций, а в дальнейшем — сложных, следует считать, что гомогенная ФАЗ — более примитивная организация области НМС. Однако, простые формы ФАЗ типичны для любой возрастной группы, в первую очередь, вследствие того, что данная форма является матричной, для последующей трансформации в более сложную конструкцию. Идет данная трансформация следующими способами. На первом месяце постнатального онтогенеза — формирование в центральной части ФАЗ некоторого просветления — будущей ФНЗ. Начиная с 6-го месяца и далее — 3 пути естественной регенерации нервно-мышечного соединения. Взамен разрушающихся сложных ФАЗ из простых формируются новые: 1) за счет формирования боковых ХЭ-позитивных ответвлений и замыкания ФНЗ- 2) за счет формирования в центральной части ХЭ-негативного просветления. Третий способ — образование за счет процесса спраутинга НМС de novo: нервные терминали образуют гомогенную ХЭ-позитивную глобулу на некотором расстоянии от старой области нервно-мышечного контакта. В дальнейшем глобула трансформируется либо в простую, либо в сложную конструкцию (с образованием в центральной части ХЭ-негативного просветления). Отличие гомогенных глобул в поздних периодах онтогенеза от простых конструкций первого месяца заключаются в отсутствии внесинаптиче-ской активности АХЭ, четких наружных контурах, имеющих иногда неправильную форму и некоторые дополнительные выросты. Для всех изученных мышц образование новых ФАЗ НМС за счет гомогенных глобул следует считать универсальным. Усложнение гомогенных ФАЗ вследствие образования дополнительных ответвлений или центрального просветления — процесс более специфичный, и, по-видимому, зависит от происхождения мышцы и преобладания в ней того или иного типа MB.

В возрастной перестройке системы «двигательное окончаниемышечное волокно», универсальной в целом для любой скелетной мышцы, можно выделить 4 основных этапа. Первый этап: становление системы «двигательное окончание — мышечное волокно» на протяжении первого месяца жизни (молочный период). Второй этап: область НМС приобретает дефинитивные черты строения к 3-м — 6-ти месяцам (предпубертатный — репродуктивный периоды онтогенеза). Третий этап: появление признаков естественной возрастной дегенерации НМС — с 6 — 12 месяцев и в дальнейшем (с репродуктивного периода и периода первой зрелости и в последующие периоды онтогенеза). Четвертый этап: появление естественных возрастных регенераторных изменений, приводящих в итоге к формированию новых нервно-мышечных контактов, протекающий с конца первого и на втором году жизни.

Во всех изученных мышцах указанные этапы становления и возрастной перестройки системы «двигательное окончание — мышечное волокно» имеют место, но могут отличаться по скорости проявления тех или иных признаков. Так, мышцы производные вентральных миотомов, грудино-ключично-сосцевидная, трункопетальные и межреберные отличаются более ранним становлением области нервно-мышечного контакта, соответственно в данных мышцах более быстрыми темпами появляются возрастные дегенеративные и регенеративные процессы. Отстают по временным параметрам от других мышц производные висцеральных дуг. Указанные отличия зависят не только от функциональной нагрузки на мышцу, но и от особенностей ее иннервации и происхождения.

Среди морфометрических параметров, позволяющих проследить динамику преобразований системы «двигательное окончание — мышечное волокно», наибольшее значение имеют показатели иннервирован-ности MB. Во всех изученных мышцах прослеживается логическая и четкая динамика возрастных изменений метрических параметров. Однако, морфометрические показатели системы «двигательное окончание — мышечное волокно» в норме достаточно вариабельны в скелетных мышцах животных в пределах одной возрастной группы, на что указывают значения стандартного отклонения, и данное обстоятельство не позволяет более точно судить о различиях мерных характеристик НМС скелетных мышц, имеющих различное происхождение.

Показать весь текст

Список литературы

  1. , М.С. Пренатальная миелинизация в нервах, снабжающих исчерченные и неисчерченные мышцы / М. С. Абдулов, З. Д. Насирова // Тезисы докладов III Конгресса международной ассоциации морфологов: Морфология. -1996. — Т.109,-№ 2.-С28.
  2. , Г. Г. Медицинская морофометрия. Руководство / Г. Г. Автандилов. -М.: Медицина, 1990. -384с.
  3. , А.Е. Преобразования структуры холинэстераз- позитивной зоны нейромышечного синапса на протяжении 1-го месяца в ответ на введение гуанетидина / А. Е. Ардашев // Рос. морфол. ведомости. -2000. -№ 1−2. -С.22−24.
  4. , К.А. Опыт систематизации нервных окончаний. Отчет о докладе, прочитанном 30.11. 1897 г. / К. А. Арнштейн // Неврологический вестник. -1898. -т.6, в.1.
  5. , Р.А. Некоторые возрастные особенности мышц кисти и иннервирующих их нервов / Р. А. Аскеров, А. Г. Дамиров // Морфология. -2000. -т.117, № 3. -С.14.
  6. , Д.В. Пищевод человека. Структура и функция / Д. В. Баженов, Д. В. Никитюк. -Тверь, 1997. -161с.
  7. , Д.В. Закономерности эмбрионального развития мышечной оболочки пищевода человека / Д. В. Баженов // Морфол. ведомости (приложение). -2004. -№ 1−2. -С.9.
  8. , Д.В. Сравнительный морфологический анализ развития и структурной организации мышц головы человека / Д. В. Баженов, И. О. Благонравова, А. А. Медведева // К 80-летию проф. П. Ф. Степанова: Сб. науч. трудов. -Смоленск, 2004. -С.29−31.
  9. , О.П. Сравнительная организация нервно-мышечных синапсов фазных скелетных мышц позвоночных / О. П. Балезина // Успех, физиол. наук. -1989. -Т.20, -№ 1. -С.68−89.
  10. , О.П. Двигательная иннервация шейной скелетной мышцы млекопитающих / О. П. Балезина, М. А. Посконова // Ж. эвол. биохим. физиол. -1990. -Т.26, -№ 5. -С.26−30.
  11. , Г. Ф. Эффективность применения антиоксидантов при травме мышц / Г. Ф. Батыршина, А. Р. Батыршин // Морфол. ведомости (приложение). -2004. -№ 1−2. — С П .
  12. , О.Е. Морфологические изменения нейромышечных синапсов поверхностной жевательной мышцы белых крыс под влиянием гиподинамии / О. Е. Беззубенкова, В. Ф. Сыч // Морфол. ведомости (приложение). -2004. -№ 1−2. -С.11−12.
  13. , А.Я. Гистохимическая характеристика мышечных волокон диафрагмы млекопитающих / А. Я. Березиня, К. К. Юршан // Структурно-функциональные взаимоотношения в норме и патологии. -Рига: Зинатне, 1978. -С.73−80.
  14. , И.О. Биометрическое исследование мышечных волокон, как метод выявления функциональной характеристики мышцы / И. О. Благонравова // Тезисы докладов III Конгресса международной ассоциации морфологов: Морфология. -1996. — Т.109,-№ 2.-С35.
  15. , И.О. Особенности иннервации различных типов мышечных волокон челюстно-лицевой области / И. О. Благонравова, Н. В. Блинова, А. А. Медведева, А. И. Сергеев // Морфология. -2004. -т. 126, № 4. -С.20.
  16. , Н.В. Сравнительный морфогистохимический анализ наружного уретрального сфинктера и прямой мышцы живота человека / Н. В. Блинова, Л. А. Смирнова, И. О. Благонравова, А. А. Шевченко // Морфология. -2000. -т.117, № 3. -С.23−24.
  17. , Г. И. Электрофизиологическое и морфологическое исследование синаптической организации тонических мышечных волокон лягушки / Г. И. Блохина, А. Л. Зефиров //Физиол. ж. СССР им. Сеченова. -1984. -Т.70, -№ 2. -С.157−165.
  18. , Г. И. Сопоставление морфологических характеристик тонических и фазных мышечных волокон лягушки / Г. И. Блохина, А. Л. Зефиров // Функции двигательного аппарата человека и животных. -Казань: Изд. Казанского ун-та, 1986. -С.30−38.
  19. , И.И. Изменения ультраструктуры мышечных волокон диафрагмы при физических нагрузках (морфометрический анализ) / И. И. Бузуева, Е. Е. Филюшкина, М. Д. Шмерлинг // Архив анат., гистол. и эмбриол. -1986. -№ 6, -Т.ХС. -С.45−53.
  20. , В.В. Нейротрофический контроль и гуморальная регуляция пластичности скелетной мышцы: Автореф. дис... д.б.н. /В.В. Валиуллин- Саранск, 1996. -46с.
  21. , В.В. Нервная и гуморальная регуляция пластичности скелетной мышцы / В. В. Валиуллин, P.P. Исламов, В. М. Чучков // XVIII Съезд физиологического общества им. И. П. Павлова: Тез. Докл. -Казань, 2001. -С.47−48.
  22. , В.В. Влияние трансферрина на экспрессию миозинов в медленной скелетной мышце при нарушении нейротрофического контроля / В. В. Валиуллин, Н. В. Бойчук, P.P. Исламов // Морфол. ведомости (приложение). -2004. -№ 1−2. -С. 18.
  23. , М.Е. Роль нейротрофического контроля и гормональная регуляция синтеза миозинов скелетных мышц: Автореф. дис.к.б.н. / М.Е. Валиуллина- Казань, 1996. -22с.
  24. , Т.В. Реактивные изменения поврежденных поперечнополосатых мышечных волокон в обычных условиях и при гиперфункции скелетной мускулатуры / Т. В. Видик // Архив анат., гистол. и эмбриол. -1957. -Т.34, -№ 3. -С.83−94.
  25. , Н.Н. Развитие различных типов мышечных волокон наружного сфинктера прямой кишки / Н. Н. Вологдина, Г. Н. Суворова // Морфология. -2002. -т. 121, № 2−3. -С.ЗЗ.
  26. , П.П. Крыса / П. П. Гамбарян, Н. М. Дукельская. -М.: Советская наука, 1955. -246с.
  27. , М.Б. Вторичная контрактура мимической мускулатуры (Клинические, нейрофизиологические и морфогистохимические аспекты. Патогенез. Лечение): Автореф. дис.д.м.н. / М.Б. Гарифьянова- Казань, 1997. -47с.
  28. , Ф.Б. Морфологическая характеристика прямой мышцы бедра / Ф. Б. Гибадуллина // Морфология. -2004. -т. 126, № 4. -С.35.
  29. , А.Г. Электрический и химический факторы в процессе нервно-мышечного проведения / А. Г. Гинецинский // Физиол. журн. СССР им. И. М. Сеченова. -1947. -Т.ЗЗ, -№ 6. — 763−771.
  30. , А.Г. Холинэргическая структура мышечного волокна / А. Г. Гинецинский // Физиол. журн. СССР им. И. М. Сеченова. -1947. -Т.ЗЗ, -№ 4. -С.413−428.
  31. , А.Г. Реакция на ацетилхолин изолированных волокон скелетной мышцы / А. Г. Гинецинский, Т. Н. Несмеянова // Материалы по эволюционной физиологии. -1956. -Т.1. -С.98- 103.
  32. , А.Г. Химическая передача нервного импульса и эволюция мышечной функции / А. Г. Гинецинский. -Л.: Наука, 1970.-203c.
  33. , Р.А. Сравнение действия АТФ на моторные и сенсорные нервные окончания / Р. А. Гиниатуллин, Е. М. Соколова, А. Нистри // XVIII Съезд физиологического общества им. И. П. Павлова: Тез. Докл. -Казань, 2001. -С.66−67.
  34. Гланц, Медико-биологическая статистика / Стентон Гланц. — М.: Практика, 1999. -459с.
  35. , Р.Н. Функциональная биохимия синапсов / Р. Н. Глебов, Г. Н. Крыжановский. -М.: Медицина, 1978. -326с.
  36. , Р. Основы регуляции движений / Рагнар Гранит. -М.: Мир, 1973. -367 с.
  37. , Д.С. Ксимедон подавляет синтез быстрого миозина в медленной мышце крысы / Д. С. Гусева, Ю. А. Челышев, В. В. Валиуллин, P.P. Исламов // XVIII Съезд физиологического общества им. И. П. Павлова: Тез. Докл. -Казань, 2001. -С.74.
  38. , Р.К. Источники развития и классификации мышечных тканей и миоидных клеточных комплексов / Р. К. Данилов // Мышечная активность и жизнедеятельность человека и животных: Ин-т эволюц. морф, и экол. животных АН СССР. -М., 1986.-С.46−48.
  39. , Р.К. Пролиферация и дифференцировка в развитии мионейральной ткани у птиц / Р. К. Данилов, З. Б. Ишемеева // Арх. анатомии, гистол. и эмбриол. -1989. -Т.97, -№ 10. -С.56−62.
  40. , Р.К. Очерки гистологии мышечных тканей / Р. К. Данилов. -Уфа, 1994. -49с.
  41. , Р.К. Гистогенетические основы нервно-мышечных взаимоотношений / Р. К. Данилов. -СПб., 1996. -132с.
  42. , A.M. Влияние сенсибилизации на диафрагмальную мышцу морской свинки / A.M. Девятаев, И. М. Рахматуллин, Р. И. Винтер, В. В. Валиуллин // Морфол. ведомости (приложение). — 2004.-№ 1−2.-С.31.
  43. , Р.П. Нервно-трофическая регуляция пластической активности мышечной ткани / Р. П. Женевская. -М.: Наука, 1974. — 239с.
  44. , Е.К. Очерки по нервно-мышечной физиологии / Е. К. Жуков.-Л.: Наука, 1969. -287с.
  45. , A.M. Организация нервного аппарата скелетной мускулатуры и его динамика при некоторых экстремальных воздействиях: Автореф. дис… д.м.н. / A.M. Загребин- Куйбышев, 1972. -32с.
  46. , И.П. Различия в моторной иннервации красных и белых мышц птиц / И. П. Иванов // Закономерности морфогенеза скелетной и сердечной мускулатуры: Межвузовский сб. — Куйбышев, 1980. -С.49−52.
  47. Ильина-Какуева, Е. И. Влияние искусственной силы тяжести на скелетную мускулатуру крыс в условиях космического полета / Е.И. Ильина-Какуева, В. В. Португалов // Архив анат., гистол. и эмбриол. -1979. -T.LXXVI, -№ 3. -С.22−27.
  48. , P.P. Ксимедон изменяет качественный состав миозинов в медленной скелетной мышце крысы / P.P. Исламов, Д. С. Гусева, Ю. А. Челышев, В. В. Валиуллин // Рос. морфол. ведомости. -2001. -№ 3−4. -С.95−97.
  49. , P.P. Посттравматическая пластичность мотонейронов: Автореф. дис… д.м.н. / P.P. Исламов- Казан, гос. мед. унив. — Казань, 2004. -44с.
  50. , Н.Р. Сравнительное исследование устройства афферентных и эфферентных нервно-мышечных соединений в скелетных мышцах щенков / Н. Р. Карымов, Н. К. Чикорина // Рос. морфол. ведомости. -1999. -№ 1−2. —С.79.
  51. , А.Ш. Гистохимические показатели в мускулах хомяков в онтогенезе / А. Ш. Кереселиадзе // Морфология. -2002. — т.121,№ 2−3.-С.68−69.
  52. , А.В. Современное состояние теории химической передачи возбуждения / А. В. Кибяков // Усп. совр. биол. -1959. — Т.47,-№ 3.-С.265−276.
  53. , А.А. Эмбриогенез нервных элементов соматической мускулатуры человека / А. А. Клишов // Арх. анат., гистол., эмбриол. -1960. -Т.39, -№ 8. -С.76−87.
  54. , А.А. Вопросы гистогенеза регенерации и малигнизации соматической мускулатуры: Автореф. дис… д.м.н. /А.А. Клишов- Л., 1965. -28с.
  55. , А.А. Холинэстеразная активность белых и красных скелетных мышечных волокон при действии ФОС и холинолитиков / А. А. Клишов, А. Вашурина, В. А. Романушко, А. Д. Качанов // Морфоадаптация мышц в норме и патологии. — Саратов, 1975.-С.123−129.
  56. , А.К. Влияние измененной деятельности мышц на двигательные нервные окончания / А. К. Ковешникова // Известия естест.-науч. ин-та им. П. Ф. Лесгафта. -1954. -Т.26. -С.190−207.
  57. , Т.Р. Характеристика нейромышечного синапса икроножной и камбаловидной мышцдеафферентированной белой крысы / Т. Р. Ковригина, В. И. Филимонов, В. В. Шилкин // Рос. морфол. ведомости. -2000. -№ 3−4. -С.69−74.
  58. , Т.Р. Энзимохимическая характеристика нейромышечного синапса икроножной мышцы деафферентированной белой крысы: Автореф. дис.к.б.н. / Т.Р. Ковригина- -Петерб. гос. пед. мед. акад. -С.-Петербург, 2001. — 23с.
  59. , Т.Р. Постнатальная дифференцировка ХЭ-позитивной зоны НМС некоторых мышц голени белой крысы / Т. Р. Ковригина, В. В. Шилкин // Морфол. ведомости. -2002. -№ 1−2. — 148−151.
  60. , Т.Р. Развитие нейромышечного синапса скелетной мышцы после химической десимпатизации / Т. Р. Ковригина // Морфология. -2004. -т. 125, № 3. -С.28−32.
  61. , И.А. Этапы становления и функции скелетных мышц в онтогенезе / И. А. Корниенко, В. Д. Сонькин, Р. В. Тамбовцева // XVIII Съезд физиологического общества им. И. П. Павлова: Тез. Докл. -Казань, 2001. -С.529−530.
  62. , Л.Н. Регенерация скелетной мышечной ткани голени при ее удлинении в эксперименте / Л. Н. Кочурина // Развитие, морф., функция двигат. аппарата. Достиж., пробл., задачи: Куйбышев, мед. ин-т. -Куйбышев, 1986. -С.49−52.
  63. , В.А. Посттравматическая регенерация скелетных мышц у взрослых и старых животных / В. А. Кудрова, Л. П. Сидельникова, Л. Н. Кирсанова // Рос. морфол. ведомости. -1999. — № 1−2.-С88.
  64. , Л. Функциональная морфология и гистохимия волокон скелетной мышечной ткани / Л. Кузнецов. — М., 1999. -138c.
  65. , Х.Т. Жевательная мускулатура домашних овец и свиней в онтогенезе / Х. Т. Кушхов // Арх. анат., гист. и эмбр. -1991. — Т. 100, -№ 1.-88−93.
  66. , М.Д. Новые данные для гистологии, истории развития и физиологии периферических нервов и нервных концевых приборов- П. О нервных окончаниях мышц и кожного снаряда / М. Д. Лавдовский // Военно-медицинский журн. -1884. — ч.151,-кн.11,12.
  67. , Б.И. Об иннервации поперечнополосатой мышцы лягушки / Б. И. Лаврентьев // Тр. III Всесоюз. съезда зоол., анатом. и гистол. -Л., 1928.
  68. , Ю.С. Принципы морфологической деструкции в эмбриональном развитии и регенерации скелетных мышц /Ю.С. Ларин // Развитие, морф., функция двигат. аппарата. Достиж., пробл., задачи: Куйбышев, мед. ин-т. -Куйбышев, 1986. -С.83−86.
  69. , Г. Г. Функциональная анатомия мышц глазодвигательного аппарата у пушных зверей из отряда хищных / Г. Г. Левкин, О. А. Коротковская, Г. А. Хонин, В. В. Семченко // К 80-летию проф. П. Ф. Степанова: Сб. науч. трудов. -Соленск, 2004. -С. 106−111.
  70. , Д.И. Влияние мерказолила на некоторые характеристики скелетных мышц / Д. И. Липартелиани // XVIII Съезд физиологического общества им. И. П. Павлова: Тез. Докл. — Казань, 2001.-С. 139−140.
  71. , Л.Ф. Возрастные изменения двигательных нервных окончаний в скелетных мышцах человека / Л. Ф. Мавринская // Тр. Куйбышевского мед. ин-та, 1960. -Т11. -С. 182−191.
  72. , Л.Ф. Эволюционно-морфологические изменения мионеврального синапса в ряду позвоночных / Л. Ф. Мавринская // Арх. анат., гистол., эмбриол. -1962. -№ 12. -С.3−22.
  73. , Л.Ф. Развитие чувствительных и двигательных нервных окончаний скелетных мышц в эмбриогенезе человека: Автореф. дис… д.б.н. /Л.Ф. Мавринская- Москва, 1965. -35с.
  74. , Л.Ф. Экстрафузальные мышечные волокна, их типы и биологическая характеристика / Л. Ф. Мавринская, Н. П. Резвяков // Архив анат., гистол. и эмбриол. -1978. -№ 11. -С.23−40.
  75. , Л.Ф. «Гетерогенность» скелетных мышц / Л. Ф. Мавринская // Закономерности морфогенеза скелетной и сердечной мускулатуры: Межвузовский сб. -Куйбышев, 1980. — 23−32.
  76. , Ю.Ф. Исследование ацетилхолинэстеразы и холинэстеразы в поперечно-полосатых мышцах животных и человека / Ю. Ф. Малахов // Сб. научн. работ Архангельского отд. ВНОАГЭ, 1970. -Т.2. -С. 117−121.
  77. Манолов, Цитохимични изследования върху постсинаптичната част на мионевральия синапс / Манолов // Изв. Ин-та морфол. Бълг. АН. -1964. -9/10. -С.213−226.
  78. Манолов, Холинэстеразная активность и чувствительные нервные окончания в поперечнополосатой мускулатуре / Манолов // Архив анат., гист. и эмбр. -1965. -№ 11. -С. 19−22.
  79. , Д.П. О наличии фазных и тонических нейромоторных единиц в глазодвигательном аппарате кролика / Д. П. Матюшкин // Физиол. ж. СССР им. Сеченова. -1961. -Т.47. -С.960−976.
  80. , Д.П. Две моторные системы в глазодвигательном аппарате у высших животных / Д. П. Матюшкин //Физиол. ж. СССР им. Сеченова. -1963. -Т.49. -С.600−608.
  81. , В.И. Константы роста и функциональные периоды развития в постнатальной жизни белых крыс / В. И. Махинько, В. Н. Никитин // Молекулярные и физиологические механизмы возрастного развития. -Киев: Наукова Думка, 1975. -С.308−326.
  82. , A.M. Сравнительное и экспериментальное исследование строения и гистохимии двигательных и чувствиетльных приборов в скелетной мускулатуре: Автор… к.м.н. /A.M. Махмудов- Андижан, 1966. -18с.
  83. , А.А. Морфогистохимический анализ мышц мягкого неба человека / А. А. Медведева, А. А. Блохин, К. Э. Крючков // Морфология. -2000. -т.117, № 3. -С.80.
  84. , Л.М. Морфо-гистохимические изменения в скелетных мышцах животных при действии импульсного электромагнитного поля: Автор… к.м.н. / Л.М. Меркулова- Казань, 1975. -15с.
  85. , Н.В. Гистохимическая характеристика нейромышечных синапсов дыхательных мышц белой крысы в возрасте 15 суток / Н. В. Милёхина, Л. И. Наумова, В. М. Чучков // Морфол. ведомости. -2003. -№ 1−2. -С.26−28.
  86. , Н.В. Преобразования области нейромышечного синапса скелетных мышц, участвующих в акте дыхания: Автореф. дис… к.м.н. / Н.В. Милёхина- Тюм. гос. мед. акад. -Тюмень, 2004 (а). -23с.
  87. , Б.Ш. Оценка состояния скелетных мышц в динамике спинно-мозговой травмы / Б. Ш. Минасов, А. Р. Батыршин, Г. Ф. Батыршина // Морфология. -2000. -т.117, № 3. -С.81.
  88. , К.С. Ультраструктура скелетных мышц человека / К. С. Митин, СМ. Секамова, Н. А. Соколина // Арх. анат., гист. и эмбр. -1973. -T.LXIV, -№ 2. -13−19.
  89. , Н.Н. Различия в источниках иннервации жевательной мышцы человека и ее нервных ворот / Н. Н. Мосолов, В. У. Макоев, Н. И. Елкин // Морфология. -2004. -т. 126, № 4. -С.82.
  90. , Л.С. Сравнительный морфологический анализ состояния иннервации скелетных и глазодвигательных мышц при боковом амиотрофическом склерозе (БАС) / Л. С. Мусаева, А. В. Сахарова, Т. С. Гулевская // Морфология. -2004. -т. 126, № 4. -С.85.
  91. , Д.А. Эмбриогенез скелетных мышц у некоторых позвоночных животных / Д. А. Наджафов // Мышечная активность и жизнедеятельность человека и животных: Ин-т эволюц. морф, и экол. животных АН СССР. -М., 1986. -С. 124−129.
  92. , Л.Б. Гистофизиология сокращения скелетной мышцы / Л. Б. Наурбиева // Гистологическая наука России в начале XXI века: итоги, задачи, перспективы: Мат. Всерос. науч. конф. — Москва, 2003.-С. 174−175.
  93. , В.Е. Рост мышц крупного рогатого скота / В. Е. Никитченко // Тезисы докладов III Конгресса международной ассоциации морфологов: Морфология. -1996. -Т. 109, -№ 2. -С.74.
  94. , В.Г. Нервно-мышечное соединение диафрагмальной мышцы крысы при экспериментальном гипопаратйреозе / В. Г. Никулин, B.C. Смирнов, О. М. Поздняков // Бюл. эксперим. биол. и мед. -1988. -Вып. 105, -№ 6. -С.757−759.
  95. , СЮ. Состояние ферментоактивных зон нейромышечных синапсов мышц плеча белой крысы / С Ю. Огентов//Рос. морфол. ведомости. -2001. -№ 3−4. -С.51−53.
  96. , СЮ. Возрастная морфология нейромышечных синапсов скелетных мышц производных висцеральных дуг и вентральных миотомов: Автореф. …к.м.н., -Саранск, 2002 (а). -20с.
  97. , СЮ. Нейромышечный синапс: органная характеристика, возрастные преобразования (гистоэнзимохимическое исследование) / СЮ. Огентов, Н. Е. Сабельников, В.М. Чучков- Под ред. проф. В. В. Шилкина. — Ижевск, 2002.-163с.
  98. , Т.В. Конституциональные особенности состава мышечных волокон в скелетных мышцах молодых мужчин / Т. В. Панасюк, Р. В. Тамбовцева // Актуальные проблемы морфологии: Сб. научн. трудов- под ред. Н. С Горбунова. -Красноярск, 2003. — 161−163.
  99. , Р.С. Двигательные единицы и мотонейронный пул / Персон Р. С // Физиология движений. -Л.: Наука, 1976. -С.69−101.
  100. , СВ. Руководство по иммуногистохимической диагностике опухолей человека / Под ред. СВ. Петрова, Н. Т. Райхлина. -Казань, 2000. -288с.
  101. , О.М. Электронно-гистохимическое исследование холинэстразы в нервно-мышечном синапсе крысы / О. М. Поздняков //Бюлл. экспер. биол. и мед. -1968. -№ 8. -С.112−115.
  102. , М.А. Гетерогенность мышц возвышения большого пальца у человека / М. А. Позднякова, О. В. Серова // Закономерности морфогенеза скелетной и сердечной мускулатуры: Межвузовский сб. -Куйбышев, 1980. -С.92 — 96.
  103. , В.В. Локализация холинэстеразы в поперечнополосатых мышцах / В. В. Португалов, В. А. Яковлев // Доклады АН СССР, новая серия. -1951. -№ 5. -С. 1021−1024.
  104. , В.В. Очерки гистофизиологии нервных окончаний / В. В. Португалов. -М.: Медгиз, 1955. -224с.
  105. , М.А. Формирование нервно-мышечного контакта / М. А. Посконова, О. П. Балезина // Нервный контроль структурно- функциональной организации скелетных мышц. -Л.: Наука, 1980. -С.52−68.
  106. , Л.Г. Динамика морфофункциональных изменений жевательных мышц нижней челюсти при дистракционном воздействии в эксперименте / Л. Г. Прошина, О. Н. Сорокина, О. И. Заря //Морфол. ведомости. -2004. -№ 1−2. -С.29−31.
  107. , Л.А. Морфофункциональное преобразование скелетной мышцы вследствие электростимуляционной тренировки / Л. А. Ралене, А. С. Думчюс, Р. А. Стропус и др. //Арх. анат., гистол., эмбриол. -1991. -Т.100, -№ 35. -С.73−78.
  108. , И.Ш. Гистохимическая характеристика ферментоактивной зоны нейромышечного синапса некоторых мышц таза и бедра белой крысы / И. Ш. Рахимов // Морфол. ведомости. -2002. -№ 3−4. -С.41−43.
  109. , И.Ш. Гистохимическая характеристика АХЭ- позитивной зоны нейромышечного синапса некоторых мышц таза и бедра белой крысы / И. Ш. Рахимов // III межвузовская конференциямолодых ученых и студентов: Мат. конф. -Ижевск, 2003(а).-С.67−68.
  110. , И.Ш. Характеристика АХЭ-позитивной зоны нейромышечного синапса некоторых мышц таза и бедра белой крысы / И. Ш. Рахимов // Морфол. ведомости. -2003 (б). -№ 3−4. — 33−35.
  111. , И.Ш. Оценка метаболического профиля мышц таза и бедра крыс по активности СДГ / И. Ш. Рахимов // IV межвузовская конференциямолодых ученых и студентов: Мат. конф. -Ижевск, 2004.-С.61−64.
  112. , Н.П. Морфометрическое и гистохимическое изучение «трофического» влияния нервов на скелетные мышцы и вкусовые луковицы: Автор… к.м.н. /Н.П. Резвяков- Казань, 1973. -22с.
  113. , Н.П. Дифференцировка портняжной мышцы лягушки в онтогенезе / Н. П. Резвяков, Р. И. Винтер // Арх. анат., гист. и эмбр. -1980.-Т.78,-№ 2.-53−58.
  114. , Н.П. Морфологическая и гистохимическая характеристика скелетных мышц цесарок / Н. П. Резвяков, Р. А. Богомолова // Закономерности морфогенеза скелетной и сердечной мускулатуры: Межвузовский сб. -Куйбышев, 1980. — 37−40.
  115. , Н.П. Ультраструктура скелетных мышечных волокон крыс при длительной статической нагрузке / Н. П. Резвяков, Р. И. Винтер, Ф. А. Абдулхаев, А. Р. Абдуллин // Арх. анат., гист. и эмбр. -1981. -T.LXXX, -№ 3. -53−58.
  116. , Т.А. Изменения структур нервной системы при химической десимпатизации / Т. А. Румянцева, Т. Р. Ковригина, М. Н. Невзорова с соавт. // Морфология. -2002. -т. 121, № 2−3. — 133−134.
  117. , Н.А. Особенности онтогенетического становления структуры мышц челюстного аппарата в условиях гиподинамии / Н. А. Рябченюк, В. Ф. Сыч // Морфология. -2000. -т. 117, № 3. — 104.
  118. , Н.Е. Возрастные изменения нейромышечных синапсов мышц предплечья в условиях дефицита симпатической иннервации: Автореф. дис… к.м.н. / Н.Е. Сабельников- Ярославская гос. мед. акад. -Ярославль, 2000. -20с.
  119. , Н.Е. Гистохимическая характеристика области нейромышечного синапса мышц гортани и глотки крысы / Н. Е. Сабельников, В. М. Чучков, B.C. Шумилов, Г. В. Шумихина // Рос. морфол. ведомости. -2001. -№ 3−4. -С.59−60.
  120. , Н.Е. Сравнительный анализ ферментоактивной зоны нейромышечного синапса двуглавой мышцы плеча белой крысы и человека в период первой зрелости / Н. Е. Сабельников // Морфологические ведомости. -2004. -№ 3−4. -С. 126−127.
  121. , Р.Б. Функциональные различия нервно-мышечных синапсов быстрых и медленных мышц теплокровных животных и физиологическая роль ацетилхолина: Автореф. дис.к.м.н. / Сагдеев Р.Б.- Казань, 1971. -25с.
  122. , В.А. Морфологическая характеристика мионов жевательной мышцы млекопитающих и человека / В. А. Соловьев // Арх. анат, гист. и эмбр. -1982. -T.LXXXIII, -№ 10. -65−71.
  123. , В.А. Морфологические перестройки в ишемезированных мышечных волокнах при восстановлении кровоснабжения / В. А. Соловьев, Т. В. Шинкаренко // Рос. морфол. ведомости. -1999. -№ 1−2. -С. 138.
  124. , В.А. Субмикроскопические изменения жевательных мышц при иммобилизации нижней челюсти / В. А. Соловьев // П <Ч о
  125. J J Гистологическая наука России в начале XXI века: итоги, задачи, перспективы: Мат. Всерос. науч. конф. -Москва, 2003. -С.266- 267.
  126. , В.Д. Метаболические и регуляторные факторы мышечной работоспособности / В. Д. Сонькин, И. А. Корниенко // XVIII Съезд физиологического общества им. И. П. Павлова: Тез. Докл. -Казань, 2001. -С.579−580.
  127. Сыч, В. Ф. Основные этапы развития морфологических исследований мускулатуры грудной конечности птиц / В. Ф. Сыч // Ученые записки Ульяновск, гос. универ. Серия Биология и медицина. -Ульяновск. -2001 (а). -Вып. 1(5). -53−60.
  128. Сыч, В. Ф. Сравнительная морфология и функциональные особенности прободенных сгибателей пальцев тазовой конечности птиц / В. Ф. Сыч // Ученые записки Ульяновск, гос. универ. Серия Биология и медицина. -Ульяновск. -2001 (б). -Вып. 1(5). -61−74.
  129. Сыч, В. Ф. Морфологические особенности нейромышечных синапсов двубрюшной мышцы белых крыс в условиях гиподинамии / В. Ф. Сыч, О. Е. Беззубенкова // Морфология. -2004. -т.126,№ 4.-С120.
  130. Сыч, В. Ф. Морфогенез микроциркуляторного русла поверхностной жевательной и двубрюшной мышц белых крыс в условиях гиподинамии челюстного аппарата / В. Ф. Сыч, Е. В. Анисимова, Н. А. Курносова, Е. В. Слесарева // Морфол. ведомости. -2005. -№ 1−2. -С.53−55.
  131. , Р.В. Гистохимическая характеристика мышечных волокон двуглавой и трехглавой мышц плеча в онтогенезе человека / Р. В. Тамбовцева // Арх. анатом., гистол. и эмбриол. — 1988. -Т.95, -№ 5. -С.59−63.
  132. , Э.Г. Нейротрофический контроль скелетной мышцы: состояние проблемы / Э. Г. Улумбеков // Закономерности морфогенеза скелетной и сердечной мускулатуры: Межвузовский сб.-Куйбышев, 1980. — С Ю — 2 3 .
  133. , Н. Преобразования ферментоактивных зон нейромышечных синапсов щечной мышцы крысы на первом месяце постнатального развития / Н. Усманова // Морфол. ведомости. -2004 (а). -№ 3−4. -С. 138−139.
  134. , Н. Становление системы «двигательное окончание — мышечное волокно» грудино-ключично-сосцевидной мышцы белой крысы в молочном периоде онтогенеза / Н. Усманова // Морфол. ведомости. -2005. -№ 1−2. -С.59−60.
  135. , Л.И. Об изменении моторных нервных окончаний при экспериментальной атрофии поперечнополосатой мышцы. Сообщение 1. / Л. И. Фалин // Архив биол.наук. -1938 (а). -Т.69, — вып.2.-С.162−182.
  136. , Л.И. Об изменении моторных нервных окончаний при экспериментальной атрофии поперечнополосатой мышцы. Сообщение 2. / Л. И. Фалин // Архив биол.наук. -1938 (б). -Т.39, — вып.З.-С.134−146.
  137. , В.И. Закономерности постнатальной дифференцировки ХЭ-позитивной зоны нейромышечного синапса и ее преобразования после хирургической денервации и шва нерва: Автореф. дис.к.м.н. / В.И. Филимонов- Ярославль, 1992. — 22с.
  138. , В.И. Конструкция ферментоактивной зоны нейромышечного синапса и ее преобразования в эксперименте: Автореф. дис.д.м.н. /В.И. Филимонов- Москва, 1998. -40с.
  139. , В.И. Морфометрическая характеристика ферментоактивной зоны двинательного окончания икроножной мышцы деафферентированной белой крысы / В. И. Филимонов, Т. Р. Ковригина, В. В. Шилкин // Рос. морфол. ведомости. -1999. — № 1−2.-С. 153.
  140. , В.И. Гистохимическая характеристика моторной бляшки при дефиците афферентации / В. И. Филимонов, В. В. Шилкин, Т. Р. Ковригина // Рос. морфол. ведомости. -2000. -№ 1−2. -С.141−144.
  141. , В.И. Изменения нейромышечного синапса скелетной мышцы десимпатиизрованной белой крысы после гипокинетического стресса / В. И. Филимонов, Д. В. Говоровский // Рос. морфол. ведомости. -2001. -№ 1−2. -С.95−99.
  142. , В.Ф. К методике гистохимического выявления холинэстераз в нервной ткани / В. Ф. Фогельман // Архив анат., гистол. и эмбриол. -1972. -T.LXII, -№ 5. -С.39−47.
  143. , Н.К. Нервно-мышечный синапс как возможная мишень для действия медиаторов воспаления / Н. К. Хабибуллина, Р. А. Гиниатуллин // Морфология. -2002. -т. 121, № 2−3. -С. 164.
  144. , В.А. Изучение гистохимических типов экстрафузальных и интрафузальных мышечных волокон амфибий / В. А. Чурсов // Закономерности морфогенеза скелетной и сердечной мускулатуры: Межвузовский сб. -Куйбышев, 1980. -С.32 — 36.
  145. , В.М. Гистотопография и качественная характеристика ферментоактивных зон нейромышечных синапсов некоторых мышц глазного яблока / В. М. Чучков, И. В. Шамшурина // Морфол. ведомости. -2002. -№ 3−4. -С.66−67.
  146. , Н.М. Синаптическая передача в тонических и нетонических мышцах / Н. М. Шамарина. -М.: Наука, 1971. -283с.
  147. , И.В. Характеристика ферментоактивных зон нейромышечных синапсов латеральной прямой мышцы глаза белой крысы / И. В. Шамшурина // III межвузовская конференциямолодых ученых и студентов: Мат. конф. -Ижевск, 2003 (а). -С.78−79.
  148. , И.В. Качественная и морфометрическая характеристика ферментоактивных зон нейромышечных синапсов латеральной прямой мышцы глаза / И. В. Шамшурина // Морфол. ведомости. -2003 (б). -№ 3−4. -С.49−50.
  149. , И.В. Гистохимическое определение типов мышечных волокон наружных мышц глаза по активности СДГ / И. В. Шамшурина // IV межвузовская конференциямолодых ученых и студентов: Мат. конф. -Ижевск, 2004 (а). -С.74−76.
  150. , И.В. Гистохимическая характеристика наружных мышц глазного яблока: Автореф. дис.к.м.н. / И.В. Шамшурина- Мордов. гос. универ. -Саранск, 2004 (б). -18с.
  151. , Н.В. Роль вегетативной иннервации в заживлении поврежденных тканей гортани и формировании ее рубцового стеноза (клинико-экспериментальное исследование): Автореф. дис… к.м.н. /Н.В. Швалев- СПб, 1997. -22с.
  152. , Б.С. Этапы адаптации скелетных мышц к условиям гипокинезии и физической нагрузки / Б. С. Шенкман, Т. Л. Немировская, И. Н. Белозерова, М. Г. Мазин // XVIII Съезд физиологического общества им. И. П. Павлова: Тез. Докл. — Казань, 2001.-С.598.
  153. , В.В. Энзимохимическая организация рецепторов аортальной рефлексогенной зоны в онтогенезе собаки / В. В. Шилкин // Архив анат., гистол. и эмбриол. -1983. -T.LXXXV, -№ 7. -C.36−40.
  154. B.B., Емельянов И. Д. Морфометрический анализ нейромышечного синапса // Проблемы морфогенеза периф. нервов. Сб.науч.тр.ЯГМИ-Ярославль, 1983, с.73−77
  155. В.В., Филимонов В. И., Кривов В. А., Рицков С В . Изменения АХЭ-позитивной зоны нейромышечного синапса после реиннервации мышцы // В сб.: «Актуальные вопр.мед.морф.», Ижевск, 1992, с. 141−145
  156. , В.В. Влияние функционального состояния мышцы на ХЭ-позитивную зону нейромышечного синапса /В.В. Шилкин, В. И. Филимонов // Рос. морфол. ведомости. -1995. -№ 3. -С.117- 123.
  157. , В.В. Денервационные изменения икроножной мышцы белой крысы на фоне химической десимпатизации гуанетидином / В. В. Шилкин, В. И. Филимонов // Рос. морфол. Ведомости. -1996 (а). -№ 1(4). -С.135−139.
  158. , В.В. Регенерация нейромышечного синапса после нейрорафии на фоне десимпатизации / В. В. Шилкин, В. И. Филимонов // Тезисы докладов III Конгресса международной ассоциации морфологов: Морфология. -1996 (б). -Т. 109, -№ 2. — 106.
  159. , В.В. Зависят ли размеры нейромышечного синапса от диаметра мышечного волокна? /В.В. Шилкин, В. И. Филимонов // Рос. морфолог, ведомости. -1996 (в). -№ 2(5). -С.135−139.
  160. , В.В. Влияние однократной чрезмерной физической нагрузки на состояние двигательного окончания скелетной мышцы / В. В. Шилкин, В. И. Филимонов // Рос. морфол. ведомости. -1996 (г). -№ 1(4). -С. 130−135.
  161. , В.В. Возможности структурной перестройки нейро- мышечного синапса / В. В. Шилкин, В. И. Филимонов // Рос. морфол. Ведомости. -1997 (а). -№ 1(6). -С. 153−159.
  162. , В.В. Закономерности конструкции нейро-мышечного синапса некоторых скелетных мышц белой крысы / В. В. Шилкин, В. И. Филимонов // Рос. морфол. Ведомости. -1997 (б). -№ 1(6). — 159−165
  163. , В.В. Перестройка нейромышечного синапса при изменении афферентной иннервации / В. В. Шилкин, Т. Р. Ковригина // Морфология. -2000. -т.117, № 3. -С. 139.
  164. , В.В. Конструкция нейромышечного синапса при различных видах денервации икроножной мышцы белой крысы / В. В. Шилкин, В. И. Филимонов // Рос. морфол. ведомости. -2001. — № 1−2.-С.117−120.
  165. , В.В. Характеристика нейро-мышечного синапса при моделировании сочетанной химической денервации мышцы /В.В. Шилкин, Т. Р. Ковригина // Морфология. -2002. -т. 121, № 2−3. — 182.
  166. М.Д., Филюшина Е. Е., Бузуева И. И. Изменения ультраструктуры скелетных мышечных волокон под влиянием острого физического напряжения // Арх. анат. -1981. -Т.80, -вып. 2. -С.43−49.
  167. , Е.А. Мышечные ткани / Е. А. Шубникова, Н. А. Юрина, Н. Б. Гусев и др.- под ред. Ю. С. Ченцова. -М.: Медицина, 2001.-240с.
  168. , Г. Х. К функциональному строению наружных глазных мышц человека / Г. Х. Шумахер, И. Фангхэнель, В. Бринкман, Р. Фангхэнель // Арх. анат., гист. и эмбр. -1971. -T.LX, -№ 5. -89−93.
  169. , Г. В. Морфологическая характеристика голосовой мышцы гортани человека в онтогенезе / Г. В. Шумихина // Рос. морфол. ведомости. -1997. -№ 1(6). -С. 166−167.
  170. , Г. В. Иммуногистохимический профиль мышц гортани при десипатизации / Г. В. Шумихина, В. Н. Ярыгин, В. М. Чучков // Рос. морфол. ведомости. -1998. -№ 3−4. -С.96−98.
  171. , Г. В. Типы мышечных волокон в поперечной черпал ОБИДНОЙ мышце гортани у детей / Г. В. Шумихина // Рос. морфол. ведомости. -1999 (а). -№ 1−2. -С. 171.
  172. , Г. В. типы мышечных волокон в голосовой мышце гортани человека / Г. В. Шумихина // Рос. морфол. ведомости. — 1999 (б). -№ 3−4. -С. 182−186.
  173. , Г. В. Иммуногистохимическая характеристика мышц гортани в период полового созревания / Г. В. Шумихина, А. Е. Ардашев, СВ. Зубкова, Н. Е. Сабельников // Морфология. -2000. — т.117,№ 3.-СЛ41.
  174. , Р.Г. Морфометрическая характеристика мышечных волокон диафрагмы млекопитающих / Р. Г. Щетина // Информатив. количеств, методов в морфол.: Куйбышев, мед. ин-т. -Кубышев, 1987. -С.76−78.
  175. , Дж. Физиология синапсов / Экклс Дж. -М.: Мир, -1966.
  176. , Е.А. Исследование симпатических структур интра- и экстрафузальных мышечных волокон лягушки / Е. А. Юркянец // Бюлл. эксп. биол. мед. -1980. -№ 8. -С.235−238.
  177. , Е.С. Функциональные особенности анатомического строения мышц предплечья у некоторых видов семейства беличьих / Е. С. Яковлева // Арх. анат., гист. и эмбр. -1963. — T. XLIV, -№ 5.-117−127.
  178. Aalhus, J.L. The effects of porcine somatotropin on muscle fibre morphology and meat quality of pigs of known stress susceptibility / Aalhus J.L., Best D.R., Costello F., Schaefer, A.L. // Meat Science. — 1997. -v.45, -N3. -P.283−295.
  179. Adams, C.W.M. Neurohistochemistry / Adams C.W.M. (ed.). — Amsterdam-London-New-York, 1965. -753p.
  180. Anapol, F. Fiber Architecture of the Intrinsic Muscles of the Shoulder and Arm in Semiterrestrial and Arboreal Guenons / Anapol F., Gray J. Patrick // American J. of Physical Anthropol. -2003. -V. 122, -Nl. — p.51−66.
  181. Andersen, J.L. Muscle fibre type adaptation in the elderly human muscle / Andersen Jesper L. // Scan. J. of Med. & Science in Sports. — 2003.-V.13,-Nl.-p.40−47.
  182. Arora R., Talesara C. Correlation of morphological diversity of motor end-plates with the muscle function in certain vertebrates //Proc.Indian Nat.Sci.Acad.- 1990.-V.56,N4.-P.339−342.
  183. Auda-Boucher, G. Acetylcholine Receptor Formation in Mouse-Chick Chimera / Auda-Boucher Gwenola, Jarno Valerie, Fournier-Thibault Claire et al. // Experimental Cell Research. -1997. -v.236, -Nl. -P.29- 42.
  184. Auld, D.S. Perisynaptic Schwann cells at the neuromuscular junction: nerve- and activity-dependent contributions to synaptic efficacy, plasticity, and reinnervation / Auld D.S., Robitaille R. // Neuroscientist. -2003. -v.9, -N2. -P. 144−157.
  185. Babiuk, R.P. Embryological origins and development of the rat diaphragm / Babiuk R.P., Zhang W., Clugston R. et al. // J. Сотр. Neurol. -2003. -v.455, -N4. -P.477−487.
  186. Bae, K.A. Muscle fibre size and capillarity in Korean diving women / Bae К A., An N.Y., Kwon Y.W. et al. // Acta Physiol. Scand. -2003. — v. l79,-N2.-P.167−172.
  187. Baker, L.P. Induction of acetylcholine receptor clustering by native polystyrene beads / Baker L.P., Chen O., Peng H.B. // J. Cell Biology. -1992.-V.102.-P.543−555.
  188. Barnard, E. The numbers of molecular of the cholin-esterases at individual motor end plates in various muscle types / Barnard E., Wieckowski J, Rymaszewska T. // J. Cell. Biol. -1970. -v.47, -N2. — P.2−13.
  189. Barnett, R. The fine structural localisation of acetylcholinesterase at the myoneural junction / Bamett R. // J. Cell. Biol. -1962. -v. 12, -N2. — P.247−262.
  190. Bemben, M.G. Age-Related Alterations in Muscular Endurance / Bemben M.G. // Sports Med. -1998. -V.25, -N4. -p.259−269.
  191. Bennet, M. The formation of synapses in striated muscle during development / Bennet M., Pettigrev A. // J. Physiol. -1974. -v.241. — P.515−545.
  192. Berendse, M. Myoblast structure affects subsequent skeletal myotube morphology and sarcomere assembly / Berendse M., Grounds M.D., 1. loyd CM. // Exp. Cell Res. -2003. -v.291, -N2. -P.435−450.
  193. Birks, R.I. A method for locating the cholin esterase of a mammalian myoneural junction by electron microscopy / Birks R.I., Brown L.M. // J. Physiol. -1960. -v.152. -P.5−7.
  194. Bishop, D.L. Ectopic endplates induce localized changes in skeletal muscle ultrastructure / Bishop D.L., Milton R.L. // Muscle Nerve. — 2002. -v.26, -N6. -P.791−797.
  195. Boecke, J. Nerve endings, motor and sensory / Boecke J. // Cytology and cellular pathology of the nervous system. -N.-Y., 1932. -v.l. — P.243−315.
  196. Boesiger, B. Histologic, histochimie et innervation compares des fibers musculaires striees du muscle peroneus longus / Boesiger Berthe // Acta anat. -1986. -v. 126, -N2. -C. 103−109.
  197. Bontemps, C. The persistence of ontogenic characteristics in the adult masseter muscle / Bontemps C, Cannistra C, Michel P. et al. // Bull. Group Int. Rech. Sci. Stomatol. Odontol. -2002. -v.44, -N2. -P.61−67.
  198. Bozyczko, D. Integrin on developing and adult skeletal muscle / Bozyczko Donna, Decker Cindi, Muschler John, Horwitz Alan F. // Exp. Cell. Res. -1989. -v.183, -Nl. -C.72−91.
  199. Brandon, E.P. Aberrant patterning of neuromuscular synapses in choline acetyltransferase-deficient mice / Brandon E.P., Lin W., D’Amour K.A. et al. // J. Neurosci. -2003. -v.23, -N2. -P.539−549.
  200. Brasseur, J.E. Systematic distribution of muscle fiber types in the medial gastrocnemius of the laboratory mouse: a morphometric analysis / Brasseur J.E., Curtis R.L., Mellender J.W. et al. // Anat. Rec. -1987.-v.218, -N4.-P.396−401.
  201. Briggs, M.M. The superfast extraocular myosin (MYH13) is localized to the innervation zone in both the global and orbital layers of rabbit extraocular muscle / Briggs M.M., Schachat F. // J. Exp. Biol. -2002. — v.205(20).-P.3133−3142.
  202. Buckingham, M. The formation of skeletal muscle: from somite to limb / Buckingham M., Bajard L., Chang T. et al. // J. Anat. -2003. — v.202,-Nl.-P.59−68.
  203. Bussieres, M.D. Changes in Skeletal Muscle Morphology and Biochemistry After Cardiac Transplantation / Bussieres M.D., Bussieres Ph.D., Lizanne M. et al. // The American Journal of Cardiology. -1997. -v.79, -N5. -P.630−634.
  204. Buttner-Ennever, J.A. Motor and sensory innervation of extraocular eye muscles / Buttner-Ennever J.A., Eberhorn A., Horn A.K. // Ann. NY Acad. Sci. -2003. -v.1004. -P.40−49.
  205. Cajal, R. Degeneration and regeneration the nervous system / Cajal R. 1. ondon: Oxford Univ. Press, 1928. -342p.
  206. Callaway, E. Differential loss of neuromuscular connection according to activity level fnd spinal position of neonatal rabbit soleus motor neurons / Callaway E., Soha J., Van Essen D. //J. Neurosci. -1989. -v.9, -№ 5.-P. 1806−1824.
  207. Carlson, B.M. Concentration of caveolin-3 at the neuromuscular junction in young and old rat skeletal muscle fibers / Carlson B.M., Carlson J.A., Dedkov E.I., McLennan I.S. // J. Histochem. Cytochem. — 2003.-v.51,-N9.-P.ll 13−1118.
  208. Choi, R.C. ATP acts via P2Y1 receptors to stimulate acetylcholinesterase and acetylcholine receptor expression: transduction and transcription control / Choi R. C, Siow NX., Cheng A.W. et al. // J. Neurosci. -2003. -v.23, -Nl 1. -P.4445−4456.
  209. Close, R. Dynamic properties of mammalian sceletal muscles / Close R. //Physiol. Rev. -1972. -v.52, -№ 1. -P.129−197.
  210. Coers, С Structure and organization of the myoneural junction / Coers С // Internat. Rev. Cytol. -1967. -v.22. -P.239−267.
  211. Cohen, M.W. Active zones on motor nerve terminals contain alpha 3beta 1 integrin / Cohen M.W., Hoffstrom B.G., DeSimone D.W. // J. Neurosci. -2000. -v.20, -N13. -P.4912−4921.
  212. Colman, H. Interactions between nerve and muscle: synapse elimination at the developing neuromuscular junction / Colman H., 1. ichtman J. //Dev. Biol. -1993. -v. 156, -№ 1. -P. 1−10.
  213. Couteaux, R. Recherches histochimiques sur la distribution des activites cholines-terasiques au niveau de la synapse myoneural / Couteaux R., Taxi J. // Arch. Anat. Micr. -1952. -v.41, -N4. -P.252- 392.
  214. Couteaux, R. Localization of cholinesterases et neuromuscular junction / Couteaux R. // Internat. Rev. Cytol. -1955. -v.4. -P.355−375.
  215. Couteaux, R. Morphological and cytochemical observations on the post synaptic membrane at motor end-plates and ganglionic synapses / Couteaux R. //Exptl. Cell. Res. -1958. -v.5. -P.294−322.
  216. Couteaux, R. Motor end-plate structure / Couteaux R. // Structure and function of muscle. -N.Y.-London: Acad. Press, -1960. -v.l. -P.337- 380.
  217. Couteaux, R. La cholinesterase des plagues motrice apres section du nerf moteur / Couteaux R., Nachmannsohn D. // Bull.Biol.France Belg. -1942. -v.76, -№ 1. -P. 14−57.
  218. Green, H.J. Inter- and intraspecies comparison of fiber type distribution and of succinate dehydrogenase activity in type 1, A and В fibers of mammalian diaphragms / Green H.J., Reichman H., Petter D. // Histochem. -1984. -v.81. -P.67−73.
  219. Crevier, M. Simple method for histochtmical detections of esterase activity / Crevier M., Belanger L. // Science. -1955. -v.122, -№ 3169. — P.556−557.
  220. Crne, N. Influence of innervation on molecular forms of acetylcholinesterase in regenerating fast and slow skeletal muscles / Crne N., Sketelj J., Brzin M. // J. Neurosci. Res. -1991. -v.28, -N3. — p.315−323.
  221. Csillik, B. Contribution to the development of the myoneural synapses, ontogenetic aspects of the subneural apparatus / Csillik B. // Z. Zellforsch. -1960. -v.52. -S.150−162
  222. Csillik, B. Submicroscopic organization of the postsynaptic membrane in the myoneural junction. A polarization optical study / Csillik B. // J. Cell. Biol. -1963. -v.17, -№ 3. -P.571−586.
  223. Csillik, B. Functional structure of the post-synaptic membrane in the myoneural junction / Csillik B. // Acad. Kiado Publ. House Hung. Acad. Sci. -Budapest, 1967.
  224. Csillik, B. Structural localization of calcium binding sites in the neuromuscular junction after supramaximal stimulation / Csillik В., Knyihar-Csillik E. // Z. Mikrosk. Anat. Forsch. -1980. -v.94, -N6. — P.974−984.
  225. Delbono, O. Neural control of aging skeletal muscle / Delbono O. // Aging Cell. -2003. -v.2, -Nl. -P.21−29.
  226. Deschenes, M.R. Unlike myofibers, neuromuscular junctions remain stable during prolonged muscle unloading / Deschenes Michael R., Will Kristin M., Booth Frank W., Gordon Scott E. // J. of the Neurolog. Sci. -2003. -v.210, -Nl-2. -P.5−10.
  227. Desplanches, D. Effects of bedrest on deltoideus muscle morphology and enzymes / Desplanches D., Mayet M.H., Hoppeler H. et al. // Acta Physiol. Scan. -1998. -V.162, -N2. -p.135−140.
  228. De Troyer, A. Synergism between the canine left and right hemidiaphragms / De Troyer A., Cappello M., Meurant N., Scillia P. // J. Appl. Physiol. -2003. -v.94, -N5. -P.1757−1765.
  229. Devreotes, P.N. Acetylcholine receptor turnover in membranes of developing muscle fibers / Devreotes P.N., Fambrough D.M. // J. Cell Biology. -1975. -v.65. -P.335−358.
  230. Dhoot, G.K. Evidence for the presence of a distinct embryonic isoform of myosin heavy chain in chicken skeletal muscle / Dhoot Gurtej K. // Differentiation. -1989. -v.40, -N3. -C. 176−183.
  231. Ditter, D.D. Distribution of different fiber types in whole cross- sections of human platysma: A histological and morphometric study / Dittert Dag Daniel, Bardosi Attila // Acta anat. -1989. -v. 134, -N3. — C.206−211.
  232. Doi, T. Masticatory function and properties of masseter muscle fibers in microphthalmic (mi/mi) mice during postnatal development / Doi Т., Abe S., Ide Y. //Ann Anat. -2003. -v. 185, -N5. -P.43 5−440.
  233. Draeger, A. Membrane segregation and downregulation of raft markers during sarcolemmal differentiation in skeletal muscle cells / Draeger A., Monastyrskaya K., Burkhard F.C. et al. // Dev. Biol. -2003. -v.262, -N2. -P.324−334.
  234. Eccles, J. La physiologie des synapses / Eccles J.5 Meulders M. // Rev. med. Louvain. -1964. -v.83, -Nl 1. -P.389−400.
  235. Ekmark, M. Myogenin induces higher oxidative capacity in pre existing mouse muscle fibres after somatic DNA transfer / Ekmark M., Gronevik E., Schjerling P., Gundersen K. // J. Physiol. -2003. — v.548(l). -P.259−269.
  236. El-Rimawi, A.S. Quantitative morphometric analyses of the exercised extensor digitorum longus muscle of the mouse / El-Rimawi A.S., James N.T. // Acta anat. -1989. -v.134. -N3. -C.191−198.
  237. Fahim, M.A. Rapid neuromuscular remodeling following limb immobilization / Fahim Mohamed A. // Anat. Rec. -1989. -v.224, -Nl. -C.102−109.
  238. Fambrough, D.M. Control of acetylcholine receptors in skeletal muscle / Fambrough D.M. // Physiological Reviews. -1979. -v.59. -P. 165- 227.
  239. Farchi, N. Chronic acetylcholinesterase overexpression induces multilevelled aberrations in mouse neuromuscular physiology / Farchi N., Soreq H., Hochner B. //J. Physiol. -2003. -v.546(l). -P.165−173.
  240. Fawcett, P.R. W. Structure and function of the neuromuscular junction in human neuromuscular disease / Fawcett P.R.W., Schofield I.S., Slater C.R., Walls T.J. // J. Physiol. (Gr. Brit.) -1987. -v.391. -p.12.
  241. Fernand, V.S.V. The occurrence structure and muscle fibers in the tensor tympani and stapedius of the cat / Fernand V.S.V., Hess A. // J. Physiol. (London). -1969. -v.200. -P.547−554.
  242. Fluck, M. Molecular mechanisms in muscle adaptation / Fluck M. // Ther. Umsch. -2003. -v.60, -N7. -P.371−381.
  243. Fluck, M. Molecular basis of skeletal muscle plasticity — from gene to form and function / Fluck M., Hoppeler H. // Rev. Physiol. Biochem. Pharmacol. -2003. -v. 146. -p. 159−216.
  244. Fontaine, B. Localization of nicotinic acetylcholine receptor a-subunit transcripts during myogenesis and motor endplate development in the chick / Fontaine Bertrand, Changeux Jean-Pierre // J. Cell. Biol. -1989. -v. 108, -N3.-C. 1025−1037.
  245. Ford, B.D. Differentiation-dependent regulation of skeletal myogenesis by neuregulin-1 / Ford B.D., Han В., Fischbach G.D. // Biochem. Biophys. Res. Commun. -2003. -v.306, -Nl. -P.276−281.
  246. Friday, B.B. Calcineurin initiates skeletal muscle differentiation by activating MEF2 and MyoD / Friday B.B., Mitchell P.O., Kegley K.M., Pavlath G.K. //Differentiation. -2003. -v.71, -N3. -P.217−227.
  247. Gary, C. Muscle fiber type distribution and architecture of cat diaphragm / Gary C, Roy Roland R., Powell Perry et al. // J. Appl. Physiol.: Respir., Environ, and Exercise Physiol. -1983. -55, -N5. — 1386−1392.
  248. Gauthier, G.F. Cytological studies of fiber types in skeletal muscle / Gauthier G. F, Padycula H.A. // J. Cell Biol. -1966. -v.28, -N2. — P.333−354.
  249. Gauthier, G.F. On the relationship of ultrastructural and cvtochemical features to color in mammalian ' skeletal muscle / Gauthier G.F. // Z. Zellforsch. -1969. -v.95, -№ 3. -P.462−482.
  250. Gerlach, I. Das Verhaltniss der Nerven zu den Muskeln / Gerlach I. // 1. eipzig, 1874.
  251. G. Электронная гистохимия / Geyer G. -M.: Мир, 1974. — 484c.
  252. Giniatullin, R.A. The effects of carbachol on the proximal and distal parts of frog motor nerve endings / Giniatullin R. A, Samigullin D. V, Grishin S. N, Bukharaeva E.A. // Neurosci. Behav. Physiol. -2002. — v.32,-N6.-P.589−593.
  253. Glicksman, M.A. Differentiation of motor nerve terminals formed in the absence of muscle fibres / Glicksman M. A, Sanes J.R. // J. Neurocytol. -1983. -v. 12, -N4. -P.661−671.
  254. Gordon, Т. Organization of motounits following cross-reinnervation of antagonistic muscles in the cat hind limb / Gordon Tessa, Stein Richard В., Thomas Christine K. // J. Physiol. (Gr. Brit.) -1986. — v.374. -p.443−456.
  255. Gramsbergen, A. Regression of polyneural innervation in the human psoas muscle / Gramsbergen A., Ijkema-Paassen J., Nikkels, P.G.J., Hadders-Algra M. // Early Human Development. -1997. -v.49, -Nl. — P.49−61.
  256. Grinnell, A.D. Direct measurement of ACh release from exposed frog nerve terminals: constraints on interpretation of non-quantal release / Grinnell A.D., Gundersen СВ., Meriney S.D., Young S.H. // J. Physiol. -1989. -v.419. -P.225−251.
  257. Grinnell, A. Dinamics of nerve-muscle interaction in development and nature neuromuscular junctions / Grinnell A. // Physiol.Rev. -1995. — v.75, -N4. -P.789−834.
  258. Gomori, G. Histochemical demonstration of sites of cholinesterase activity / Gomori G. // Proc. Soc. Exper. Biol. a. Med. -1948. -v.68, — № 2.
  259. Gottschall, J. The diaphragm of the rat and its innervation. Muscle fiber composition. Pericaria and axons of efferent neurons / Gottschall J.//Anat. Embriol. -1981.-v. 161, -N4.-P.405−419.
  260. Gray, E.G. The fine structure of nerve / Gray E.G. // Сотр. Bioch. Physiol. -1970. -v.36. -P.413−446.
  261. Gregory, CM. Human and rat skeletal muscle adaptations to spinal cord injury / Gregory СМ., Vandenborne K., Castro M.J., Dudley G.A. // Can. J. Appl. Physiol. -2003. -v.28, -N3. -P.491−500.
  262. Gueritaud, J.-P. Histochemical identification of two fibre types in the retractor bulbi muscle of the cat / Gueritaud J.-P., Horcholle-Bossavit G., Jami L. et al. // Neurosci. Lett. -1986. -v.66, -N3. -P.346−350.
  263. Haddad, H. Riluzole attenuates spinal muscular atrophy disease progression in a mouse model / Haddad H., Cifuentes-Diaz C, Miroglio A. et al. // Muscle Nerve. -2003. -v.28, -N4. -p.432−437.
  264. Hall, Z.W. Synaptic structure and development: The neuromuscular junction / Hall Z.W., Sanes J.R. // Cell. -1993. -v.72. -P.99−121.
  265. Hand, D. Activity and distribution of tissue transglutaminase in association with nerve-muscle synapses / Hand D., Campoy F.J., Clark S. et al. //J. ofNeurochemistry. -1993. -v.61, -N3. -P.1064−1072.
  266. Hansen, S. Distribution of fibre types in thirty-seven muscles of Didelphis virginiana / Hansen S., Cutts J. Harry, Krause W.J., Cutts III James H. //Anat. Anz. -1987. -v.164, -N2. -p.153−158.
  267. Happak, W. Comparative histochemistry of human and sheep laryngeal muscle / Happak W., Zrunek M., Pechmann U., Streinzer W. //Acta oto-laryngol. -1989. -v. 107, -N3−4. -C.283−288.
  268. Heeroma, J.H. Development of the mouse neuromuscular junction in the absence of regulated secretion / Heeroma J.H., Plomp J.J., Roubos E.W., Verhage M. //Neuroscience. -2003. -v.120, -N3. -P.733−744.
  269. Henriksson-Larsen, K. Distribution of fibre sizes in humanskeletal muscle. An enzyme histochemical study in m. tibialis anterior / Henrikkson-Larsen K., Friden J., Wretling M-L. // Acta physiol. scand. -1985. -v.123, -N2. -C.171−177.
  270. Hess, A. The structure of extrafusal muscle fibres in the frog and their innervation studied by the cholinesterase technique / Hess A. // Amer. J. Anat. -1960. -v.107. -P.129−151.
  271. Hess, A. Two kinds of extrafusal muscle fibres and their nerve endigs in the garter snake / Hess A. // Amer. J. Anat. -1963. -v. 113. -P.347- 363.
  272. Hess, A. Vertebrate slow muscle fibres / Hess A. //Physiol. Rev. -1970. -v.50,-Nl.-P.40−62.
  273. Hopkins, W.G. Effect of age and muscle type on regeneration of neuromuscular synapses in mice / Hopkins W.G., Liang J., Barrett E J. //BrainRes. -1986. -V.372, -Nl. -P.163−166.
  274. Hoppeler, H. Design of the mammalian respiratory system: 6. Distribution of mithochondria and capillaries in various muscles / Hoppeler H., Mathieu O., Krauer R. et al. // Respir. Physiol. -1981. — v.44,-Nl.-P.87−112.
  275. Hoppeler, H. Structure and function of skeletal muscles / Hoppeler H., Billeter R. // Ther. Umsch. -2003. -v.60, -N7. -P.363−370.
  276. Hosaka, Y. Alphal-syntrophin-deficient skeletal muscle exhibits hypertrophy and aberrant formation of neuromuscular junctions during regeneration / Hosaka Y., Yokota Т., Miyagoe-Suzuki Y. et al. // J. Cell Biol. -2002. -v. 158, -N6. -P. 1097−1107.
  277. Hua, J. Microscopic changes at the neuromuscular junction in free muscle transfer / Hua J., Kumar V.P., Tay S.S., Pereira B.P. // Clin. Orthop. -2003. -N411. -P.325−333.
  278. Huard, J. A light and electron microscopic study of dystrophin at the mouse neuromuscular junction / Huard J., Fortier L.-P., Dansereau G. et al. // Synapse. -1992. -N.10. -P.83−93.
  279. Inanlou, M.R. A significant reduction of the diaphragm in mdx: MyoD- /-(9th) embryos suggests a role for MyoD in the diaphragm development / Inanlou M.R., Dhillon G.S., Belliveau A.C. et al. // Dev. Biol. -2003. -v.15, -N261(2). -P.324−236.
  280. Ishigaki, K. Two novel mutations in the COLQ gene cause endplate acetylcholinesterase deficiency / Ishigaki K., Nicolle D., Krejci E. et al. //Neuromuscul. Disord. -2003. -v.13, -N3. -P.236−244.
  281. Ishihara, A. Effects of age on the number and histochemical properties of muscle fibers and motoneurons in the rat extensor digitorum longus muscle / Ishihara Akihiko, Araki Hideo // Mech. Ageing and Dev. — 1988. -v.45, -N3. -p.213−221.
  282. Ito, J. Human lower limb muscles: an evaluation of weight and fiber size / Ito J., Moriyama H., Inokuchi S., Goto N. // Okajimas Folia Anat. Jpn. -2003. -v.80, -N2−3. -P.47−55.
  283. Jeffery, S. Thyroidectomy significantly alters carbonic anhydrase III concentration and fiber distribution in rat muscle / Jeffery S., Carter N.D., Smith A. // J. Histochem. and Cytochem. -1987. -v.35, -N6. — P.663−668.
  284. Jones, S.P. Rat muscle during postnatal development: evidence in favour of no interconversion between fast- and slow-twitch fibers / Jones S.P., Ridge R.M.A.P., Rowlerson A. // J. Physiol. (Gr. Brit.) — 1987.-v.386.-p.395−406.
  285. Jozsa, L. Glycogen-enzymes containing bodies in type 2 fibers of tenotomized muscles in the rat / Jozsa Laszlo, Kvist Martti, Lehto Matti et al. // Gegenbauers morphol. Jahrb. -1989. -v.135, -N3. — C.519−528.
  286. Kadi, F. The effects of physical activity and estrogen treatment on rat fast and slow skeletal muscles following ovariectomy / Kadi F., Karlsson C, Larsson B. et al. // J. Muscle Res. Cell Motil. -2002. — v.23, -N4. -P.335−339.
  287. Kahl, J. A role for the juxtamembrane domain of beta-dystroglycan in agrin-induced acetylcholine receptor clustering / Kahl J., Campanelli J.T. // J. Neurosci. -2003. -v.23, -N2. -P.392−402.
  288. Kannus, P. Effects of immobilization and subsequent low-and high- intensity exercise on morphology of rat calf muscles / Kannus P., Jozsa 1., Kvist M. et al. // Scand. J. of Med. & Science in Sports. -1998. — V.8,-N3.-p.l60−171.
  289. Kasri, M. Effects of unilateral and bilateral labyrinthectomy on rat postural muscle properties: the soleus / Kasri M., Picquet F., Falempin M. //Exp. Neurol. -2004. -v. 185, -Nl. -P. 143−153.
  290. Kayar, S.R. The similarity of mitochondrial distribution in equine skeletal muscles of differing oxidative capacity / Kayar S.R., Hoppeler H., Essen-Gustavsson В., Schwerzmann K. // J. Exp. Biol. -1988. — v. l37.-p.253−263.
  291. Ketelbant, R. Analyse structurale des muscles masticatoreus (Deuxime partie) / Ketelbant R., Brichard M., Lauge M. // Bull, group, int rech. sci. stomatol. et odontol. -1980. -v.23. -P. 173−181.
  292. Khaitlina, S.Y. Functional specificity of actin isoforms / Khaitlina Sofia Yu. // International Review of Cytology: Acad. Press. -2001. — V.202.-P.35−98.
  293. Kharma, S. Comprehensive expression profiling by muscle tissue class and identification of the molecular niche of extraocular muscle / Khanna S., Merriam A.P., Gong B. et al. // FASEB J. -2003 (a), -v. 17, -N10.-P.1370−1372.
  294. Kimura, M. Acetylcholin sensitivity in myotubes of nerve-muscle co- culture cultured with anti-muscle antibodies, a-bungarotoxin and D- tubocurarine / Kimura M., Shikada K., Nojima H., Kimura I. // Int. J. Dev. Neurosci. -1986. -v.4, -Nl. -P.61−67.
  295. Kinirons, S.A. Effect of artificial rearing on the contractile properties and myosin heavy chain isoforms of developing rat tongue musculature / Kinirons S.A., Shall M.S., McClung J.R., Goldberg S.J. //J. Neurophysiol. -2003. -v.90, -Nl.-P. 120−127.
  296. Kjellgren, D. Myosin heavy chain isoforms in human extraocular muscles / Kjellgren D., Thornell L.E., Andersen J., Pedrosa-Domellof F. // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. -2003. -v.44, -N4. -P. 1419−1425.
  297. Klein, C.S. Muscle fiber number in the biceps brachii muscle of young and old men / Klein C.S., Marsh G.D., Petrella R.J., Rice C.L. // Muscle Nerve. -2003. -v.28, -Nl. -P.62−68.
  298. Koelle, G. A histochemical method for localising cholinesterase activity / Koelle G., Friedenwald J. // Proc. Soc. Exper. Biol. a. Med. — 1949. -v.70, -№ 4.
  299. Koelle, G. The histochemical differentiation of types of cholinesterases and their localisation in tissues of the cat / Koelle G. // J. Pharmac. a. Exper. Therapie. -1950. -v. 100, -№ 2.
  300. Koelle, G.B. Citological distributions and physiological functions of cholinesterases / Koelle G. // Handb. Parmacol. -1963. -v. 15, -Nl. — P. 187−298.
  301. Korfage, J.A. Myosin heavy-chain isoform composition of human single jaw-muscle fibers / Korfage J.A., Van Eijden T.M. // J. Dent. Res. -2003. -v.82, -N6. -P.481−485.
  302. Kowalewski, V.R. Histochemische Muskelfasercharakterisierung der Kaumuskulatur der Wistarratte (Rattus norvegicus Berkenhout) / Kowalewski Von R., Miltzow M. // Anat. Anz. -1989. -v. 169, -N2. — C.157−160.
  303. Kozaric, Z. Histochemical observations on some muscles of the European brown bear (Ursus arctos L.) / Kozaric Z., Gomercic H., Huber D., Jukic-Brestovec Vera // Vet. arh. -1989. -v.59, -N2. -C.77- 85.
  304. Krenacs, T. Fibre typing using sarcoplasmic reticulum Ca2±ATPase and myoglobin immunochemistry in rat gastrocnemius muscle / Krenacs Т., Molnar E., Dobo E., Dux L. // Histochem. J. -1989. -v.21, -N3.-C. 145−155.
  305. Kuffler, S.W. A second motor nerve system to frog sceletal muscle / Kuffler S.W. // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. -1946. -v.63. -P.21−33.
  306. Langley, J.N. On nerve endings and special exitable substances in cells /Langley J.N. // Proc. Roy. Soc. Biol. -1906. -v.78. -P.170−184.
  307. Langley, J.N. On the reaction of cells and of nerve endings to certain poisons, chiefly as regards the reaction of striated muscle to nicotine and curare / Langley J.N. // J. Physiol. -1905. -v.33. -P.374.
  308. Larkin, L.M. Effects of age and nerve-repair grafts on reinnervation and fiber type distribution of rat medial gastrocnemius muscles / 1. arkin L.M., Kuzon W.M., Halter J.B. // Mech. Ageing. Dev. -2003. — V.124,-N5.-P.653−61.
  309. Lateva, Z.C. Electrophysiological evidence of adult human skeletal muscle fibres with multiple endplates and polyneuronal innervation / 1. ateva Z. C, McGill K.C., Johanson M.E. // J. Physiol. -2002. — v.544(2). -P.549−565.
  310. Lateva, Z.C. Increased jitter and blocking in normal muscles due to doubly innervated muscle fibers / Lateva Z. C, McGill K. C, Johanson M.E. //Muscle Nerve. -2003. -v.28, -N4. -p.423−431.
  311. Lautrau, A. Organisation architecturale du plan pterygoidien de la musculature chez le chat (Felis catus L.) / Lautrau A., Laison F. // J. Biol, buccale. -1975. -N3. -P.209−221.
  312. Lentz, T.L. Cytochemical localization of acetylcholine receptors at the neuromuscular junction by means of horseradish peroxidase-labeled alpha-bungarotoxin / Lentz T.L., Mazurkiewicz J.E., Rosenthal J. // Brain Res. -1977. -v. 132, -N3. -P.423−442.
  313. Letinsky, V. Structure of developing frog neuromuscular junctions / 1. etinsky V., Morrison-Graham K. // J. Neurocytol. -1980. -v.9. -P.321- 342.
  314. Leu, M. Erbb2 regulates neuromuscular synapse formation and is essential for muscle spindle development / Leu M., Bellmunt E., Schwander M. et al. // Development. -2003. -v. 130, -Nil. -P.2291- 2301.
  315. Lexell, J. Variability in muscle fibre areas in whole human quadriceps muscle. How much and why? / Lexell J., Taylor C.C. // Acta physiol. Scand. -1989. -v.136, -N4. -C.561−568.
  316. , R.D. Патологическая техника и практическая гистохимия / 1. illie R.D. -М.: Мир, 1969. -625с.
  317. , Z. Гистохимия ферментов / Lojda Z., Gossran R., Schiedler Т.Н. -M.: Мир, 1982. -270с.
  318. Lopez-Lirola, A. Protein deficiency and muscle damage in carbon tetrachloride induced liver cirrhosis / Lopez-Lirola A., Gonzalez- Reimers E., Martin Olivera R. et al. // Food Chem. Toxicol. -2003. — v.41,-N12.-P.1789−1797.
  319. Luff, A.R. Plasticity of muscle activation / Luff Antony R. // Proc. Austrial. Physiol. And Pharmacol. Soc. -1987. -v.18, -N2.-p.l24−128.
  320. Ma, J. Juvenile and adult rat neuromuscular junctions: density, distribution, and morphology / Ma J., Smith B.P., Smith T.L. et al. // Muscle Nerve. -2002. -v.26, -N6. -P.804−809.
  321. Maffulli, N. L’agobiopsia muscolare: tecniche e metodiche / Maffulli N., Capasso G., Auzino G. // Ital. J. Sports Traumatol. -1987. -v.9, — Nl.-P.l-6.
  322. Magill-Solc, C. Agrin-like molecules in motor neurons / Magill-Solc C, McMahan U.J. // J. de Physiologic -1990 (a), -v.84. -P.78−81.
  323. Magill-Solc, Synthesis and transport of agrin-like molecules in motor neurons / Magill-Solc C, McMahan U.J. // J. of Experimental Biology. -1990 (6). -v.153. -P. 1−10.
  324. Maier, A. Degeneration-regeneration as a mechanism contributing to the fast to slow conversion of chronically stimulated fast-twitch rabid muscle / Maier Alfred, Gambke Brigitte, Pette Dirk // Cell and Tissue Res. -1986. -v.244, -N3. -P.635−643.
  325. Maier, A. Contours and distribution of sites that react with antiacetylcholinesterase in chicken intrafusal fibers / Maier Alfred // Amer. J. Anat. -1989. -v. 185, -Nl. -C.33−41.
  326. Majerczak, J. The effect of innervation, hormonal and mechanical factors on expression of myosin isoforms in human skeletal muscle / Majerczak J., Duda K., Zoladz J.A. // Folia Med. Cracov. -2001. -v.42, -N3.-P.89−104.
  327. Manolow, S. Certaines particularites de Г innervation motorice de la musculature striee / Manolow S. // Bull. Assoc, anat. -1966. -v. 132. — 687−695.
  328. Manolov, S. Regeneration of neuromuscular synapses / Manolov S. // Ontogen. Funct. Merch. Peripheral Synapses: Proc. INSERM Sympos. -Paris, 1979-Amsterdam, 1980. -P.239−250.
  329. Marechal, G. Regeneration of mammalian striated muscle / Marechal G. // Biomed. biochim. acta. -1986. -v.45, -Nl-2. -P. 125−130.
  330. Marney, A. Cholinesterase in voluntary frog’s muscle / Marney A., Nachmansohn D. // J. Physiol. -1937. -v.89. -P.359−367.
  331. Marney, A. Cholinesterase in voluntary muscle / Marney A., Nachmansohn D. // J. Physiol. -1938. -v.92. -P.37−47.
  332. Mars, T. Functional innervation of cultured human skeletal muscle proceeds by two modes with regard to agrin effects / Mars Т., King M.P., Miranda A.F. //Neuroscience. -2003. -v.l 18, -Nl. -P.87−97.
  333. Marthiens, V. Cadherin-based cell adhesion in neuromuscular development / Marthiens V., Gavard J., Lambert M., Mege R.M. // Biol. Cell. -2002. -v.94, -N6. -P.315−326.
  334. Martin, P.T. Role of transcription factors in skeletal muscle and the potential for pharmacological manipulation / Martin P.T. // Curr. Opin. Pharmacol. -2003. -v.3, -N3. -P.300−308.
  335. Maselli, R.A. Choline acetyltransferase mutations in myasthenic syndrome due to deficient acetylcholine resynthesis / Maselli R.A., Chen D, Mo D. // Muscle Nerve. -2003. -v.27, -N2. -P. 180−187.
  336. Maselli, R.A. Presynaptic failure of neuromuscular transmission and synaptic remodeling in EA2 / Maselli R.A., Wan J., Dunne V. et al. // Neurology. -2003. -v.61, -N12. -P. 1743−1748.
  337. Maselli, R.A. Rapsyn mutations in myasthenic syndrome due to impaired receptor clustering / Maselli R.A., Dunne V., Pascual-Pascual S.I. et al. // Muscle Nerve. -2003. -v.28, -N3. -P.293−301.
  338. Matolin, S. Histochemical analysis of muscle biopsies in top athletes / Matolin Syatopluk, Horak Vratislav // Histochem. J. -1988. -v.20, — N12.-C.738.
  339. Mattiello-Sverzut, A. С The effects of aging on biceps brachii muscle fibers: a morphometrical study from biopsies and autopsies / Mattiello- Sverzut A.C., Chimelli L., Moura M.S. et al. // Arq Neuropsiquiatr. — 2003. -v.61, -N3A. -P.555−560.
  340. Maxwell, L.C. Regional distribution of fiber types in developing baboon diaphragm muscles / Maxwell Leo C, Kuehl Thomas J., McCarter Roger J.M., Robotham James L. // Anat. Rec. -1989. -v.224, -N1.-C.66−78.
  341. Mc Vean, A. Muscle fibre types in the external eye muscles of the pigeon, Columba livia / Mc Vean Alistair, Stelling John, Rowlersson Anthea//J. Anat. -1987. -v.l54. -p.91−101.
  342. Mendler, L. mRNA levels of myogenic regulatory factors in rat slow and fast muscles regenerating from notexin-induced necrosis / Mendler 1. uca, Zador Erno, Dux Laszlo, Wuytack Frank // Neuromuscular Disorders. -1998. -v.8, -N8. -P.533−541.
  343. Merrifield, P.A. Temporal and tissue-specific expression of myosin heavy chain isoforms in developing and adult avian muscle / Merrifield Peter A., Sutherland William M., Litvin Judith, Konigsberg Irwin R.//Dev. Genet. -1989. -v. 10, -N5.-C.372−385.
  344. Miledi, R. The acetylcholine sensitivity of frog muscle fibers after complete and partial denervation / Miledi R. // J. Phisiol. -1960. — V.151.-P.1−23.
  345. Miledi, R. Neural control of acetylcholine-sensitivity in rat muscle fibers / Miledi R., Stefani E., Zelena J. // Nature. -1968. -v.220. — P.497−498.
  346. Minatel, E. Acetylcholine receptor distribution and synapse elimination at the developing neuromuscular junction of mdx mice / Minatel E., Neto H.S., Marques M.J. // Muscle Nerve. -2003. -v.28, — N5. -P.561−569.
  347. Misgeld, T. Roles of neurotransmitter in synapse formation: development of neuromuscular junctions lacking choline acetyltransferase / Misgeld Т., Burgess R.W., Lewis R.M. et al. // Neuron. -2002. -v.36, -N4. -P.635−648.
  348. Mizoguchi, A. Localization of smg p25A/rab3A p25, a small GTP- binding protein, at the active zone of the rat neuromuscular junction / Mizoguchi A., Arakawa M., Masutani M. et al. // Biochem Biophys Res Commun. -1992. -v. 186, -N3. -P.1345−1352.
  349. Mondet, F. Organization and innervation of striated muscle fibers of the striated sphincter in the rat / Mondet F., Sebe P., Sebille A. et al. // Prog. Urol. -2003. -v.13, -N4. -P.629−635.
  350. Moore, R.L. Response of ventilatory muscles of the rat to endurance training / Moore R.L., Gollnick P.D. // Pflugers Arch. -1982. -v.392, — N3.-P.268−271.
  351. Moransard, M. Agrin regulates rapsyn interaction with surface acetylcholine receptors, and this underlies cytoskeletal anchoring and clustering / Moransard M., Borges L.S., Willmann R. et al. // J. Biol. Chem. -2003. -v.278, -N9. -P.7350−7359.
  352. Morgan, D.L. Vertebrate slow muscle: its structure, pattern of innervation, und mechanical properties / Morgan D.L., Proske U. // Physiol. Rev. -1984. -v.64, -Nl. -p. 103−169.
  353. Morita, S. Histochemical localization of myoglobin in skeletal muscle of rabbit, pig and ox / Morita S., Cassens R.G., Briskey E.J. // J. Histochem. Cytochem. -1970. -v. 18, -№ 5. -P.364−366.
  354. Moustafa, F.A. Succinic dehydrogenase and cholinesterase activities in the skeletal muscles of the desert rat and the albino rat / Moustafa FatmaA. //Actaanat. -1989.-v.135, -Nl. -C.31−40.
  355. Mufti, S.A. Effects of tenotomy on gastrocnemius muscle in pigeons / Mufti Shahzad A., Ahmad Khawaja Raees // Pakistan J. Zool. -1988. — v.20,-Nl.-C.65−88.
  356. Mulroy, S. Effects of gender and functional overload on plantaris muscle morphology in the dwarf (Hsd01a:dw-4) Lewis rat / Mulroy Sean, Blough Eric R., Mehta Erika K. et al. // Life Sciences. -1999. — v.65,-N23.-P.2489−2496.
  357. Nachmansohn, D. Chemical and molecular basis of nerve activity / Nachmansohn D. -N.Y., London: Acad. Press, 1959.
  358. Naik, Y.M. Some findings on the differentiation of fibre-types in the diaphragm of rat during pre-natal, neo-natal and post-natal development / Naik Y.M. // J. Anim. Morphol. And Physiol. -1984. — v.31,-Nl-2.-p.259−264.
  359. Namba, T. Motor nerve endings in extraocular muscles / Namba Т., Nakamura Т., Takahachi A., Grob D. // J. Compar. Neurol. -1968. — V.134.-P.385−396.
  360. New, H.V. Calcitonin gene-related protein regulates muscle acetylcholinreceptor synthesis / New H.V., Mudge A.W. // Nature. — 1986.-V.323.-P.809−811.
  361. Nystrom, B. Post-natal development of motor nerve terminals in «slow-red» and «fast-white» cat muscles / Nystrom B. // Acta neurol. scand. -1968. -v.44, -N3. -P.363−383.
  362. Nystrom, R.R. Disruption of active zones in frog neuromuscular junctions following treatment with proteolytic enzymes / Nystrom R.R., Ко C.-P. // J. of Neurocytology. -1998. -V.17, -№ 1. -P.63−71.
  363. Ogata, F. An electron microscopic study on the red, white and intermediate muscle fibres of mouse. / Ogata F. // Acta Med. Okayama. -1964. -v. 18. -P.271−280.
  364. Ogata, T. Structure of motor endplates in the differant fiber types of vertebrate sceletal muscles / Ogata T. // Arch. Hist. Cytol. -1988. — v.51,-N5.-P.3 85−424.
  365. Ohira, Y. Gravitational unloading effects on muscle fiber size, phenotype and myonuclear number / Ohira Y., Yoshinaga Т., Nomura T. et al. // Adv. Space Res. -2002. -v.30, -N4. -P.777−781.
  366. Ohlendieck, K. Ca2±regulatory muscle proteins in the alcohol-fed rat / Ohlendieck K., Harmon S., Koll M. et al. // Metabolism. -2003. — v.52,-N9.-P.1102−1112.
  367. Olsen, D.B. Muscle structural changes in mitochondrial myopathy relate to genotype / Olsen D.B., Langkilde A.R., Orngreen M.C. et al. //J.Neurol.-2003.-v.250,-Nil.-P.1328−1334.
  368. Oki S., Vatsuda Y., Kitaoke К et. al. Scrining electrone microscope study of neuromuscular junctions in different muscle fiber types in the zedra finch and rat //Arch.Histol. Cytol.-1990.-V.53,N3.-P.327−332.
  369. , A.G. (Пирс, А.) Гистохимия / Pearse A.G. -M.: И.Л., 1962. — 963c.
  370. Pongaj, I. Emergence of fibre types in rat fast and slow muscles during development / Pongaj I., Hoh J.F.Y. // Proc. Austral. Physiol, and Pharmacol. Soc. -1988. -v. 19, -N8. -c.65.
  371. Powell, J.A. IP3 receptors and associated Ca2+ signals localize to satellite cells and to components of the neuromuscular junction in skeletal muscle / Powell J.A., Molgo J., Adams D.S. et al. // J. Neurosci. -2003. -v.23, -N23. -P.8185−8192.
  372. Punkt, K. The correlation between histophotometrical and biochemical myosin-ATPase measurements in the myocardium and striated muscle of the rat / Punkt Karla, Krug Henner, Punkt Jurgen et al. // Acta histochem. -1986. -v.78, -N2. -P. 105−109.
  373. Quattrocchi, C.C. Reelin promotes peripheral synapse elimination and maturation // Quattrocchi C. C, Huang C, Niu S. et al. // Science. — 2003. -v.301, -N5641. -P.1849.
  374. Radice, G.P. Expression of myosin heavy chain transcripts during Xenopus laevis development / Radice Gaiy P., Malacinski George M. // Dev. Biol. -1989. -v. 133, -N2. -C.562−568.
  375. Raftery, M.A. Acetylcholine receptor: complex of homologous subunits / Raftery M.A., Hunkapiller M.W., Strader CD., Hood L.E. // Science. -1980. -v.208. -P.1454−1457.
  376. Reddy, L.V. Glial cells maintain synaptic structure and function and promote development of the neuromuscular junction in vivo / Reddy 1.V., Koirala S., Sugiura Y. et al. // Neuron. -2003. -v.40, -N3. — P.563−580.
  377. Reid, B. Activity-dependent plasticity of transmitter release from nerve terminals in rat fast and slow muscles / Reid В., Martinov V.N., Nja A. et al. // J. Neurosci. -2003. -v.23, -N28. -P.9340−9348.
  378. Renault, V. Regenerative potential of human skeletal muscle during aging / Renault V., Thornell L.E., Eriksson P.O. et al. // Aging Cell. — 2003.-V.2,-Nl.-P.71.
  379. Richards, D.A. Synaptic vesicle pools at the frog neuromuscular junction / Richards D.A., Guatimosim C, Rizzoli S.O., Betz W.J. // Neuron. -2003. -v.39, -N3. -P.529−541.
  380. Rico-Sanz, J. Familial resemblance for muscle phenotypes in the HERITAGE Family Study / Rico-Sanz J., Rankinen Т., Joanisse D.R. et al. // Med. Sci. Sports Exerc. -2003. -v.35, -N8. -P.1360−1366.
  381. Robbins, N. Progression of age changes in mature mouse motor nerve terminals and its relation to locomotor activity / Robbins N., Fahim M.A. //J. Neurocytol. -1985. -v. 14, -N6. -P. 1019−1036.
  382. Robertis, E. de. Histophysiology of synapses and neurosecretion / Robertis E. de. -Oxford: Pergamon Press, 1964.
  383. Robertis, E. de. Submicroscopic morphology of the synapse / Robertis E. de. //Internat. Rev. Cytol. -1959. -v.8. -P.61−96.
  384. Roque, D.D. Morphometry and histochemistry of the semitendinosus muscle of tufted capuchin monkeys (Cebus apella Linnaeus, 1758) / Roque D.D., Andreo J.C., De Oliveira J.A. // Anat. Histol. Embryol. — 2003. -v.32, -N4. -P.207−211.
  385. Rosen, K.M. Downregulation and increased turnover of beta-amyloid precursor protein in skeletal muscle cultures by neuregulin-1 / Rosen K.M., Ford B.D., Querfurth H.W. // Exp. Neurol. -2003. -v. 181, -N2. — P.170−180.
  386. Rosenbleuth, J. Structure of amphibian motor end-plate. Evidence for a granular component projecting from the outer surface of the receptive membrane / Rosenbleuth J. // J. Cell Biology. -1974. -v.62. -P.755- 766.
  387. Ross, A. Long-Term Metabolic and Skeletal Muscle Adaptations to Short-Sprint Training: Implications for Sprint Training and Tapering / Ross A., Leveritt M. // Sports Med. -2001. -V.31, -N15. -p. 1063−1082.
  388. Rossi, G. Multi-motor end-plate muscle fibres in the human vocalis muscle / Rossi G., Cortesina G. // Nature. -1965. -v.206, -N4984. — P.629−630.
  389. Rowlerson, A.M. Histochemical and immunohistochemical properties of skeletal muscle fibres from Rana and Xenopus / Rowlerson A.M., Spurway N.C. // Histochem. J. -1988. -v.20, -N12. -C.657−673.
  390. Russell, A.P. UCP3 protein regulation in human skeletal muscle fibre types I, Ha and IIx is dependent on exercise intensity / Russell A.P., SommE, PrazM. etal. //J. Physiol. -2003. -v.550(3). -P.855−861.
  391. Sadanger, A.M. The so-called tonic muscle fibre type in cyprinid axial muscle: their morphology and response to endurance exercise training* 1 / Sadanger A.M. // Journal of Fish Biology. -1997. -v.50, — N3. -P.487−497.
  392. Saitou, K. Innervation zones of the upper and lower limb muscles estimated by using multichannel surface EMG / Saitou K., Masuda Т., Michikami D. et al. // J. Hum. Ergol. (Tokyo). -2000. -v.29, -Nl-2. — P.35−52.
  393. Sakakima, H. Effects of short duration static stretching on the denervated and reinnervated soleus muscle morphology in the rat / Sakakima H., Yoshida Y. // Arch. Phys. Med. Rehabil. -2003. -v.84, •- N9.-P.1339−1342.
  394. Sanes, J.R. Reinnervation of muscle fiber basal lamina after removal of myofiers. Differentiation of regenerating axons at original synaptic sites / Sanes J.R., Marshall L.M., McMahan U.J. // J. Cell Biology. — 1978.-V.78.-P.176−198.
  395. Santos, D.A. ATP is released from nerve terminals and from activated muscle fibres on stimulation of the rat phrenic nerve / Santos D.A., Salgado A.I., Cunha R.A. //Neurosci. Lett. -2003 -v.338, -N3. -P.225- 228.
  396. Sartore, S. Fiber types in extraocular muscles: a new myosin isoform in the fast fibers / Sartore S., Mascarello F., Rowlerson A. et al. // J. Muscle Res. and Cell Motil. -1987. -v.8, -N2. -P.161−172.
  397. Sauleda, J. Skeletal muscle changes in patients with obstructive sleep apnoea syndrome / Sauleda J., Garcia-Palmer F.J., Tarraga S. // Respir. Med. -2003. -v.97, -N7. -P.804−810.
  398. Savay, G. The effect of denervation on the cholinesterse activity of motor endplates / Savay Gy, Csillik B. // Acta Morph. Hung. -1955. — B.6, -f.3. -S.289−297.
  399. Savay, G. Beitrage zur Methodik der histochemischen cholinesterase reaction / Savay Gy, Csillik B. //Acta Histochemica. -1959. -B.6, -N5/8.-S.307−314.
  400. Scapolo, P.A. Sex differences in the histochemical characteristics of the stemotrachealis muscle of the duck / Scapolo P.A., Lalatta Costerbosa G., Barazzoni A.M. et al. // Boll. Soc. ital. biol. sper. — 1988. -v.64, -N9. -C.831−834.
  401. Schiaffino, S. Calcineurin signaling and neural control of skeletal muscle fiber type and size / Schiaffino S., Serrano A. // Trends Pharmacol. Sci. -2002. -v.23, -N12. -P.569−575.
  402. , H. «Rote» Muskelfasern / Schmalbruch H. // Z. Zellforsch. -1971. -v.119, -№ 1. -P.120−146.
  403. Schumacher, G-H. Innervation pattern in jaw muscles of various mammalian chewing types / Schumacher Gert-Horst // Acta morphol. nurl.-Scand. -1989. -v.27, -Nl-2. -C.139−147.
  404. Sciote, J.J. Specialized cranial muscles: how different are they from limb and abdominal muscles? / Sciote J.J., Horton M.J., Rowlerson A.M., Link J. // Cells Tissues Organs. -2003. -v. 174, -Nl-2. -P.73−86.
  405. Sealock, R. Talin is a post-synaptic component of the rat neuromuscular junction / Sealock Robert, Pascal Bryce, Beckerle Mary, Burridge Keith // Exp. Cell Res. -1986. -v.163, -Nl. -P.143- 150.
  406. Sharp, P. S. Manipulating transmitter release at the neuromuscular junction of neonatal rats alters the expression of ChAT and GAP-43 in motoneurons / Sharp P. S., Dekkers J., Dick J.R., Greensmith L. // Brain Res. Dev. -2003. -v. 146, -Nl-2. -P.29−38.
  407. Shelton, G.D. Expression on fibre type specific proteins during ontogeny of canine temporalis muscle / Shelton G. Diane, Cardinet George H., Bandman Everett // Muscle and Nerve. -1988. -v.l 1, -N2. -p.124−132.
  408. Sheppert, A.D. Three-dimensional reconstruction of immunolabeled neuromuscular junctions in the human thyroarytenoid muscle / Sheppert A.D., Spirou G.A., Berrebi A.S., Garnett J.D. // 1.aryngoscope. -2003. -v.113, -Nl 1. -P.1973−1976.
  409. Sherrington, C.S. Some functional problems attaching to convergence / Sherrington C.S. // Proceedings of the Royal Society of London. — 1929. -Series B, -N105. -P.332−362.
  410. Silver, A. A histochemical investigation of cholinesterases at neuromuscular junctions in mammalian and avin muscle / Silver A. // J. Physiol. -1963. -V.169. -P.386−393.
  411. Simon, M. Effect of NT-4 and BDNF delivery to damaged sciatic nerves on phenotypic recovery of fast and slow muscles fibres / Simon M., Porter R., Brown R. et al. // Eur. J. Neurosci. -2003. -v. 18, -N9. — P.2460−2466.
  412. Smit, L.M.E. Immunohistochemical localization of acetylcholine receptors at human endplates using a monoclonal antibody / Smit Leo M.E., Veldman Henk, Jennekens Frans G.I. // J. Histochem. and Cytochem. -1987. -v.35, -N5. -p.613−617.
  413. Sorrentino, V. Structure and molecular organisation of the sarcoplasmic reticulum of skeletal muscle fibers / Sorrentino V., Gerli R. // Ital J. Anat. Embryol. -2003. -v. 108, -N2. -P.65−76.
  414. Soukup, T. Fibre type composition of soleus and extensor digitorum longus muscles in normal female inbred Lewis rats / Soukup Т., Zacharova G., Smerdu V. // Acta Histochem. -2002. -v. 104, -N4. — P.399−405.
  415. Strozzi, S. Suspected muscular disease: what to do? / Strozzi S., Steinlin M. // Ther. Umsch. -2003. -v.60, -N7. -P.399−406.
  416. Sun, W. Neuromuscular development after the prevention of naturally occurring neuronal death by Bax deletion / Sun W., Gould T.W., Vinsant S. et al. // J. Neurosci. -2003. -v.23, -N19. -P.7298−7310.
  417. Swatland, H.J. Growth-related changes in the, intracellular distribution of succinate dehydrogenase in turkey muscle / Swatland H.J. // Growth. -1985. -v.49, -N4. -P.409−416.
  418. Szabo, M. Transients in acetylcholine receptor site density and degradation during reinnervation of mouse sternomastoid muscle / Szabo M., Salpeter E.E., Randall W., Salpeter M.M. // J. Neurochem. — 2003. -v.84, -Nl. -P. 180−188.
  419. Tabuchi, M. Histochemistry of acetylcholine receptors and acetylcholinesterase during the formation of neuromuscular junction in the urodele Hynoblus nigrescens / Tabuchi M., Fujikura K., Inone S. // J. Morphol. -1991. -v.207, -№ 1. -P. 1−8.
  420. Tam, S.L. Neuromuscular activity impairs axonal sprouting in partially denervated muscles by inhibiting bridge formation of perisynaptic Schwann cells / Tam S.L., Gordon T. // J. Neurobiol. -2003. -v.57, — N2. -P.221−234.
  421. Tasic, D. The use of cationic dyes for the demonstration of myofibrillar ATPase and alkaline phosphatase / Tasic D., Dimov D. // Pathol. Res. andPract. -1989. -v. 185, -Nl. -C.159.
  422. Taylor LaVentrice, D. Distribution of fast myosin heavy chain isoforms in thick filaments of developing chiken pectoral muscle / Taylor LaVentrice D., Bandman Everett // J. Cell. Biol. -1989. -v. 108, -N2. -C.533−542.
  423. Те, K.G. Skeletal muscle fibre type specification during embryonic development / Те K.G., Reggiani C. // J. Muscle Res. Cell. Motil. — 2002.-v.23,-Nl.-P.65−69.
  424. Teng, H. Clathrin-mediated endocytosis near active zones in snake motor boutons / Teng H., Wilkinson R.S. // J. of Neuroscience. -2000/ -V.20,-N21.-P.7986−7993.
  425. Teravainen, H. Develjpment of the myoneural junctijn in the rat / Teravainen H. // Z. Zeilforsch. -1968. -v.87, -N2. -P.249−265. '
  426. Teravainen, H. Effect of nerve compression on the morphogenesis of the cholinesterase containing structures of the rat myoneural junction / Teravainen H. //Histochemie. -1968. -V.13,-N3. -P.223−265.
  427. Teravainen, H. Localization of acetylcholinesterase in the rat myoneural junction / Teravainen H. // Histochem. -1969. -v. 17. — P.162−169.
  428. Thesleff, S. Different kinds of acetylcholine release from the motor nerve /ThesleffS. // Int. Rev. Neurobiol. -1986. -v.28. -p.59−88.
  429. Timson, B.F. Skeletal muscle fibre number in the rat from youth to adulthood / Timson Benjamin F., Dudenhoeffer Gregory A. // J. Anat. -1990.-V.173.-C.33−36.
  430. Tomasi, J. Size-related differences in the branching pattern of the motor nerve terminals in triangularis sterni muscle of the mouse / Tomasi Josep, Fenol Rosa, Santafe Manel, Mayayo Emili // Biol. Cell. -1989. -v.65, -N3. -C.271−280.
  431. Totsuka, T. Muscular dystrophic mice: cross sectional images of muscle fibers are not round / Totsuka Tsuyoshi // Neuro Sci. Res. — 1987−1988. -v.5,-N7.-S.63.
  432. Tremblay, J.P. Proximodistal gradients of the postjunctional folds at the frog neuromuscular junction: a scanning electron microscopic study / Tremblay J.P., Robitaille R., Martineau O. et al. // Neuroscience. -1989. -v.30, -N2. -P.535−550.
  433. Tsujihata, M. Effect of myasthenic immunoglobulin G on motor end- plate morphology / Tsujihata M., Satoh A., Yoshimura T. et al. // J. Neurol. -2003. -v.250, -Nl. -P.75−82.
  434. Tuxen, A. Comparative data from young men and women on masseter muscle fibres, function and facial morphology / Tuxen A., Bakke M., Pinholt E.M. // Archives of Oral Biology. -1999. -v.44, -N6. -P.509- 517.
  435. Tzahor, E. Antagonists of Wnt and BMP signaling promote the formation of vertebrate head muscle / Tzahor E., Kempf H., Mootoosamy R.C. et al. // Genes Dev. -2003. -v. 17, -N24. -P.3087- 3099.
  436. Usami, A. Myosin heavy chain isoforms of the murine masseter muscle during pre- and post-natal development / Usami A., Abe S., Ide Y. // Anat. Histol. Embryol. -2003. -v.32, -N4. -P.244−248.
  437. Usdin, T.B. Purification and characterization of a polypeptide from chick brain that promotes the accumulation of acetylcholine receptors in chick myotubes / Usdin T.B., Fishbach G.D. // J. Cell Biology. — 1986.-v. 103.-P.493−507.
  438. Van Dijk, J. Characterization of three regulatory states of the striated muscle thin filament / Van Dijk J., Knight A.E., Molloy J.E., Chaussepied P. // J. Mol. Biol. -2002. -v.323, -N3. -P.475−489.
  439. Van der Kloot, W. Quantal acetylcholine release at the vertebrate neuromuscular junction / Van der Kloot W., Molgo J. // Physiological Reviews. -1994. -v.74, -N4. -P.899−991.
  440. Van der Laarse, W.J. Relationship between myoglobin and succinate dehydrogenase in mouse soleus and plantaris muscle fibres / Van der 1. aarse W.J., Maslam Suharti, Diegenbach P. С // Histochem. J. -1985. -17, -Nl. -1−11.
  441. Van Der Laarse, WJ. Method of quenching of muscle fibres affects apparent succinate dehydrogenase activity / Van Der Laarse W.J., Diegenbach P.C. // Histochem. J. -1988. -v.20, -Nl 1. -C.642−644.
  442. Velleman, S.G. Possible maternal inheritance of breast muscle morphology in turkeys at sixteen weeks of age / Velleman S.G., Anderson J., Nestor K.E. // Poult. Sci. -2003. -v.82, -N10. -P. 1479- 1484.
  443. Vercelli, A. Influence of testosterone on the development of the ischiocavernosus muscle of the rat / Vercelli A., Cracco C. // Acta anat. -1989. -v.134,-N3.-C.177−183.
  444. Verma, V. Structure and distribution of neuromuscular junctions on slow muscle fibers in the frog / Verma V., Reese T.S. // Neuroscience. -1984. -v.l2, -N2. -P.647−62.
  445. Vita, G. Expression of plectin in muscle fibers with cytoarchitectural abnormalities / Vita G., Monici M.C., Owaribe K., Messina C. // Neuromuscul. Disord. -2003. -v. 13, -N6. -P.485−492.
  446. Wang, J. Regulation of acetylcholine receptor clustering by the tumor suppressor APC / Wang J., Jing Z., Zhang L. et al. // Nat. Neurosci. — 2003. -v.6, -N10. -P.1017−1018.
  447. Wang, Z.Z. Aberrant development of motor axons and neuromuscular synapses in MyoD-null mice / Wang Z.Z., Washabaugh C.H., Yao Y. etal. //J. Neurosci. -2003. -v.23, -N12. -P.5161−5169.
  448. Washio, H. Choline acetyltransferase and acetylcholinesterase activities in muscle of aged mice / Washio PL, Imazato-Tanaka C., Kanda K., Nomoto S. // Brain Res. -1987. -v.416, -Nl. -p.69−74.
  449. Wernig, A. Regeneration capacity of skeletal muscle / Wernig A. // Ther. Umsch. -2003. -v.60, -N7. -P.383−389.
  450. Weston, Cooperative regulation by Rac and Rho of agrin-induced acetylcholine receptor clustering in muscle cells / Weston C, Gordon C, Teressa G. // J. Biol. Chem. -2003. -v.278, -N8. -P.6450−6455.
  451. Winckler, G. Mise en evidence simultanee des plaques motrices et de Tappareil sub-neural / Winckler G., Foroglou Ch. // Arch, anat., histol. et embryol. -1965. -v.48, -N5−8.
  452. Xia, B. Overexpression of the CT GalNaC transferase in skeletal muscle alters myofiber growth, neuromuscular structure, and laminin expression / Xia В., Hoyte K., Kammesheidt A. et al. // Developmental Biology. -2002. -V.242, -Nl. -P.58−73.
  453. Yang, S. Histochemical identification of skeletal muscle fiber type — skeletal muscle in normal men and rats / Yang Shuzhen, Lu Danyun, 1. i Sufan, Chen Gang // Acta Histochem. et Cytochem. -1990. -v.23, — N6. -p.825−830.
  454. Yellin, H. Differences in histochemical attributes between diaphragm and hindleg muscle of the rat / Yellin H. // Anat. Rec. -1972. -v. 173. — P.333−340.
  455. Yu, F. Human single masseter muscle fibers contain unique combinations of myosin and myosin binding protein С isoforms / Yu F., Stal P., Thornell L.E., Larsson L. // J. Muscle Res. Cell Motil. — 2002. -v.23, -N4. -P.317−326.
  456. Zacks, S.I. The fine structure of neuromuscular junction in mouse and human intercostal muscle with observations on the localization of acetylcholinesterase / Zacks S.I., Blumberg G.M. // J. Histochem. Cytochem. -1960. -v.8. -P.337−345.
  457. Zador, E. Expression of SERCA2a is independent of innervation in regenerating soleus muscle / Zador E., Wuytack F. // Am. J. Physiol. Cell Physiol. -2003-V.285, -N4. -C853−861.
  458. Zammit, P. S. Kinetics of myoblast proliferation show that resident satellite cells are competent to fully regenerate skeletal muscle fibers / Zammit P. S., Heslop L., Hudon V. et al. // Exp. Cell Res. -2002. — v.281,-Nl.-P.39−49.
  459. Zelena, J. Neurally induced changes of ultrastructure in slow muscle fibres of the chick / Zelena J., Jirmanova I. // Folia morphol. -1973. -v.21,-N2.-P.146−147 371 / / f a *
  460. Zelena, J. Ultrastructure of motor end plates in slow and fast chiken muscles during development / Zelena J., Sobotkova M. // Folia morphol. -1973. -v.21, -N2. -P. 144−145.
  461. Zito, K. The flip side of synapse elimination / Zito K. // Neuron. -2003. -v.37, -Nl.-P.l-2.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!