Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Применение микроводорослей для оценки качества морской воды и действия детергентов

Диссертация: Применение микроводорослей для оценки качества морской воды и действия детергентов
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Загрязнение морской воды является комплексным и, следовательно, оценку его характера и действия можно провести только с помощью биотестирования, которое средством получения принципиально новой информации о загрязнении (Флеров, 1983; Крайнюкова, 1988; Жмур, 1997; Черкашин, 2001; Терехова, 2003). Одноклеточные водоросли, вследствие круглогодичной доступности и высокой чувствительности, широко… Читать ещё >

Содержание

  • Глава 1. Обзор литературы
    • 1. 1. Состав детергентов, классификация поверхностно-активных веществ
    • 1. 2. Источники и объемы поступления детергентов в водную среду
    • 1. 3. Содержание поверхностно-активных веществ в морских водах
    • 1. 4. Микроводоросли как объекты экотоксикологических исследований
    • 1. 5. Влияние анионных ПАВ и детергентов на динамику численности микроводорослей в экспериментах
    • 1. 6. Физиологические и биохимические реакции микроводорослей на действие анионных ПАВ и детергентов
  • Глава 2. Материалы и методы
  • Глава 3. Результаты
    • 3. 1. Оценка чувствительности микроводорослей с помощью бихромата калия
    • 3. 2. Токсичность додецилсульфата натрия для Dunaliella salina в зависимости от начальных показателей культуры микроводоросли
    • 3. 3. Влияние поверхностно-активного вещества додецилсульфата натрия на Dunaliella salina
    • 3. 4. Влияние детергентов на Dunaliella salina
    • 3. 5. Влияние поверхностно-активного вещества додецилсульфата натрия на Attheya ussurensis
    • 3. 6. Влияние детергентов на Attheya ussurensis
    • 3. 7. Влияние поверхностно-активного вещества додецилсульфата натрия на Plagioselmis prolonga
    • 3. 8. Влияние детергентов на Plagioselmis prolonga
    • 3. 9. Оценка качества прибрежных морских вод залива Петра Великого с помощью микроводорослей Dunaliella salina и Plagioselmis prolonga
  • Глава 4. Обсуждение
  • Выводы

Применение микроводорослей для оценки качества морской воды и действия детергентов (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Одноклеточные водоросли — важный компонент морских экосистем. Они одни из первых страдают от воздействия токсических веществ, что приводит к нарушению функционирования всей экосистемы (Патин, 1979; Эколого-токсикологические., 1985; Blasco et al., 2003). В морскую среду попадают различные токсиканты, в том числе детергенты и их основной компонент — поверхностно-активные вещества (ПАВ). Действие этих веществ на микроводоросли является многофакторным, что выражается в изменении функционирования клеток и их гибели. С другой стороны, наличие в составе детергентов фосфорных компонентов способствует евтрофикации, последствия которой ведут к увеличению числа клеток отдельных видов водорослей при одновременном снижении видового разнообразия (Lewis, Hamm, 1986; Брагинский и др., 1987; Паршикова, Негруцкий, 1988; Belanger et al., 2002; Lizotte et al., 2002; Wong et al., 2003).

В настоящее время в исследованиях с микроводорослями оценивается только влияние ПАВ, а не детергентов в целом (Aidar et al., 1997; Utsunomia et al., 1997a, bHampel et al., 2001; Morreno-Garrido et al., 2001; Sun et al., 2004 и др.). В связи с этим, наряду с изучением воздействия отдельных ПАВ необходимо оценивать воздействие детергентов (Патин, 1979; Lewis, 1992; Жмур, 1997; Pettersson et al., 2000; Остроумов, 2001). При этом важно исследовать действие токсических агентов как на рост, так и на физиологическое состояние одноклеточных водорослей.

Среди огромного разнообразия микроводорослей наиболее часто для оценки действия веществ применяются обитающие в планктоне водоросли отдела Chlorophyta, в то время как представители других отделов остаются малоизученными (Lewis et al., 1990а, Hampel et al., 2001), что особенно касается бентосных микроводорослей (Morreno-Garrido et al., 2003а, b).

Загрязнение морской воды является комплексным и, следовательно, оценку его характера и действия можно провести только с помощью биотестирования, которое средством получения принципиально новой информации о загрязнении (Флеров, 1983; Крайнюкова, 1988; Жмур, 1997; Черкашин, 2001; Терехова, 2003). Одноклеточные водоросли, вследствие круглогодичной доступности и высокой чувствительности, широко применяются в качестве тест-объектов при биотестировании (Walsh, Games, 1983; Крайнюкова, 1988; Lewis, 1995; Жмур, 1997; Руководство, 2002). В то же время микроводоросли для биотестирования вод зал. Петра Великого Японского моря до настоящего времени не использовали.

В связи с вышеизложенным очевидна актуальность исследования влияния ПАВ и детергентов на микроводоросли, а также возможность применения данных организмов в качестве тест-объектов для биотестирования прибрежных морских вод.

Цель работы заключалась в изучении действия детергентов и прибрежных вод зал. Петра Великого Японского моря на микроводоросли разных систематических групп.

Для достижения поставленной цели было необходимо решить следующие задачи:

1. Исследовать чувствительность микроводорослей Dunaliella salina.

Teod. (Chlorophyta), Plagioselmis prolonga Butch. (Cryptophyta), Attheya ussurensis Stonik, Orlova & Crawford (Bacillariophyta) к модельному токсиканту бихромату калия.

2. Выявить, используя в качестве модельного объекта D. salina, оптимальные условия опыта (возраст, численность клеток, время введения токсиканта) для изучения влияния ПАВ и детергентов и оценки качества вод.

3. Исследовать действие поверхностно-активного вещества и детергентов на динамику численности клеток, скорость их роста, изменение рН культуральной среды, содержание хлорофилла, а и каротиноидов и кислородную продуктивность микроводорослей D. salina, A. ussurensis, Р. prolonga.

4. Исследовать действие поверхностно-активного вещества и детергентов на подвижность клеток Р. prolonga и скорость их движения.

5. Показать возможность биотестирования прибрежных вод зал. Петра.

Великого с помощью микроводорослей D. salina и Р. prolonga.

Личное участие в получении научных результатов. Личное участие заключалось в планировании опытов. Самостоятельно проводила экспериментальные работы, интерпретировала полученные данные и формулировала научные выводы. Все заимствованные данные, использованные в работе, имеют ссылки на их источники.

Научная новизна: впервые оценена степень чувствительности микроводорослей D. salina, Р. prolonga и A. ussurensis по их реакции на модельный токсикант бихромат калия. Исследовано применение новых тест-объектов: микроводорослей Р. prolonga и A. ussurensis при изучении действия ПАВ и детергентов, а также качества морских вод на примере зал. Петра Великого Японского моря. Установлено, что подвижность клеток Р. prolonga — наиболее чувствительный показатель к действию ПАВ и детергентов, который может быть использован для тестирования морской воды.

Практическая значимость: полученные сведения пополняют знания о действии ПАВ и детергентов на микроводоросли. Эти данные могут быть использованы при разработке систем оценки действия ПАВ и детергентов. Данные, полученные в ходе биотестирования прибрежных вод зал. Петра Великого с помощью микроводорослей, дают дополнительную информацию о свойствах загрязнения прибрежных вод залива и их действия на морскую биоту. Они могут быть использованы при проведении мониторинга качества морских вод и при оценке среды в районах развития марикультурных хозяйств. Разработанные методики по определению действия ПАВ и детергентов применяли на практических работах в курсе «Большой практикум» для студентов-экологов.

Защищаемые положения:

1. ПАВ и детергенты оказывают влияние на D. salina, A. ussurensis и Р. prolonga в концентрациях 0.1, 1 и 10 мг/л. Воздействие токсикантов усиливается с возрастанием их концентраций.

2. Наиболее чувствительным показателем действия ПАВ и детергентов является подвижность клеток Р. prolonga, что позволяет использовать ее для оценки качества морских вод.

Апробация работы. Результаты и основные положения работы докладывались на V, VI, VII Региональных конференциях по актуальным проблемам морской биологии, экологии и биотехнологии (Владивосток, 2002; 2003; 2004), VII и IX международной Пущинской школе-конференции молодых ученых (Пущино, 2004, 2005), Международной конференции «Bridges of science between north America and the Russian Far East: past, present and future» (Владивосток, 2004), IX и X дальневосточных молодежных школах-конференциях по актуальным проблемам химии и биологии (Владивосток, 2005; 2006), II Международной конференции «Современные проблемы физиологии и биохимии водных организмов» (Петрозаводск, 2007) и ежегодных конференциях ИБМ ДВО РАН (2003; 2004; 2005; 2006; 2007; 2008).

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 19 научных работ.

Работа выполнена при финансовой поддержке гранта Фонда содействия отечественной науке (2007; 2008 гг.).

Структура и объем работы. Диссертационная работа изложена на 122 страницах и состоит из введения, четырех глав, выводов и списка литературы (191 источник, из них 87 иностранных). Работа включает 6 таблиц и 23 рисунка.

Выводы.

1. Показано, что по убыванию чувствительности к бихромату калия исследованные одноклеточные водоросли можно расположить в следующий ряд Attheya ussurensis>Plagioselmis prolonga>Dunaliella salina.

2. Установлено, что проведение оценки токсичности ПАВ и. детергентов должно проводиться с использованием маточной культуры водоросли в экспоненциальной фазе роста в засевной концентрацию клеток 4×104 кл/млс введением токсиканта в день постановки опыта.

3. Наиболее негативное воздействие ПАВ и детергенты в опытах с D. salina и Р. prolonga оказывают на содержание хлорофилла, а и каротиноидов и кислородную продуктивность, наименее — на изменение рН культуральной среды, численность клеток и скорость роста популяции. Подвижность клеток Р. prolonga и скорость их движения под действием токсикантов изменялась уже в начале опыта.

4. Наиболее отрицательное воздействие ПАВ и детергенты в опытах с A. ussurensis оказывают на численность клеток, скорость их роста и кислородную продуктивность микроводоросли, наименее — на изменение рН культуральной среды и содержание фотосинтетических пигментов.

5. ПАВ и детергенты оказывают влияние на D. salina, A. ussurensis и Р. prolonga при всех исследованных концентрациях. Воздействие токсикантов усиливается с увеличением уровня их содержания в среде.

6. Тестируемая вода из зал. Петра Великого во всех случаях вызывала отклонение числа клеток D. salina от контрольного, что подтверждает факт неблагополучного состояния акваторий залива.

7. В воде из Амурского залива наблюдали выраженное ингибирование популяции Р. prolonga. Подвижность клеток — наиболее чувствительна к действию тестируемой воды. Р. prolonga является перспективным тест-объектом для оценки качества среды.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Н.А. Влияние детергентов и совместное действие детергентов и опреснения на Pseudonitzshia pungens (Grun.) Hasle (Bacillariophyta) // Альгология. 2000. Т. 10, № 2. С. 139 145.
  2. Н.А., Малынова С. И., Христофорова Н. К. Влияние детергентов на рост микроводорослей // Биол. моря. 1999. Т. 25, № 3. С. 234— 238.
  3. Н.А., Маркина Ж. В. Токсическое действие детергентов на водоросль Plagioselmis prolonga (Cryptophyta) // Биол. моря. 2006. Т. 32, № 1. С. 50−54.
  4. Н.А., Реунова Ю. А. Влияние детергентов на рост диатомовой водоросли Thalassiosira pseudonarta в культуре // Биол. моря. 2002. Т. 28, № 5. С. 362 365
  5. Т. И., Капустина А. А. Практическое использование химических веществ и материалов. Владивосток: Изд-во Дальневосточного государственного университета. 1998. С. 92— 105.
  6. Л.М., Буджиашвили Д. М., Мурза Л. И., Найдич В. И., Богданов Г. Н., Эмануэль Н. М. Изменения парамагнитных свойств хлореллы подвлиянием токсичных химических соединений // Докл. АН СССР. 1976. Т. 228, № 3. С. 723−725.
  7. В.И., Дмитриева А. Г., Филенко О. Ф., Изцюнь Ч. Влияние бихромата калия на динамику роста культуры и размеры клеток Scenedesmus quadricauda (Тиф.) Breb. в различные сезоны года // Альгология 1996. Т. 6., № 1.С. 26−34.
  8. В.И., Дмитриева А. Г., Филенко О. Ф., Изцюнь Ч. Последствие действия бихромата калия на культуру Scenedesmus quadricauda (Тиф.) Breb. (Chlorophyta) при изменениях токсической нагрузки // Альгология. 1996. Т. 6., № 2. С. 142 149.
  9. В.И., Дмитриева А. Г., Филенко О. Ф., Изцюнь Ч. Изменения динамики роста культуры и размеров клеток культуру Scenedesmus quadricauda (Тиф.) Breb. при действии бихромата калия // Изв. Ан. Сер. Биол. 1997, № 3. С. 280 286.
  10. А.А. Состав, количественные характеристики и сезонная динамика микроводорослей планктона и перифитона в зал. Петра Великого (Японское море). Дисс.канд. биол. наук. Владивосток, 2006 24 с.
  11. Н.В., Журавель. Е.В., Христофорова Н. К. Влияние опреснения и детергента додецилсульфата натрия на раннее развитие плоского морского ежа Scaphechinus mirabilis //Биол. моря. 2004. Т. 30, № 3. С. 208 214.
  12. А.Е., Стом Д. И. Метод биотестирования по обездвиживанию клеток водорослей дуналиеллы // Методы биотестирования вод. Черноголовка. 1988. С. 26 30.
  13. А.И. Ограничения в использовании водорослей как объектов биохимических исследований и экотоксикологического тестирования // Альгология. 1999. Т. 9, № 2. С. 18.
  14. Л.П., Величко И. М., Щербань Э. П. Пресноводный планктон в токсической среде. Киев: Наукова думка. 1987. 180 с.
  15. К., Остроумов С. А. Воздействие загрязнения водной среды CMC «Био-С» на эвглену // Гидробиол. журн. 1990. Т. 26, № 6. С. 78 79.
  16. A.M., Ляхин Ю. И., Матвеев Л. Т., Орлов В. Г. Охрана окружающей среды. Л.: Гидрометеоиздат. 1991. 423 с.
  17. М.А. Влияние дисперсантов на эмбриональное развитие морского ежа Strongylocentrotus nudus II Биол. моря. 1978. № 5. С. 56 62.
  18. М.А. Загрязнение залива Петра Великого Японского моря и его биологические последствия // Биол. моря. 2000. Т. 26, № 3. С. 149 — 159.
  19. Вода. Методика спектрофотометрического определения хлорофилла, а // Гос. стандарт СССР. Гос. ком. СССР по охране природы. М.: Изд-во стандартов. 1990. 15 с.
  20. Л.Н., Титова H.H., Громов Б. В. Влияние ионов тяжелых металлов на движение клеток Ochromonas ovalis Dolf. (Chrysophyta) II Альгология. 1996. Т. 6, № 3. С. 242−248.
  21. О.И., Мудрый И. В. Гигиеническое значение поверхностно-активных веществ. Киев: Здоров’я. 1991. 173 с.
  22. Л.Д. Об адаптации водорослей. М.: МГУ. 1981. 80 с.
  23. Л.Д., Веселаго И. А., Левина М. З. Адаптивные реакции популяций водорослей на воздействие токсических веществ // Биол. науки. 1987. № 3. С. 74−80
  24. Л.Д., Шавырина О. Б. Популяционные аспекты устойчивости микроводорослей к токсическим воздействиям // Альгология. 1999. Т. 9, № 2. С. 31.
  25. Государственный доклад «О состоянии окружающей природной среды Российской Федерации в 1998 году». М.: Государственный комитет РФ по охране окружающей среды. 1999. С 44 50.
  26. В. И., Крутько О. Ф., Монина Л. Т., Рябинин А. И., Шибаева С. А. Состояние загрязнения и гидрохимические условия вод взморья у реки Дунай // Метеорология и гидрология. 1996. № 2. С. 78−85.
  27. Долговременная программа охраны природы и рационального использования природных ресурсов Приморского края до 2005 г. Экологическая программа. Часть 2. Владивосток: Дальнаука. 1992. 276 с.
  28. С.Е., Петросян А. Г. Норма реакции лабораторной культуры Phaeodactylum tricornutum Bohl. на абиотические факторы. 1. чувствительность к стандартному токсиканту бихромату калия // Альгология.2000. Т. 10, № 1.С. 32−35.
  29. Н.И., Мощенко А. В., Пропп Л. Н., Фельдман K.JL Изучение водного переноса и гидрохимических условий северной части акватории, прилегающей к устью реки Туманной // Изв. ТИНРО. 1998. Т. 123. С. 423 -430.
  30. Н.И., Христофорова Н. К. Эколого-гидрологические черты западной части залива Петра Великого // Проблемы региональной экологии.2001. № 5. С. 49−58.
  31. Ежегодник качества морских вод по гидрохимическим показателям (Японское море) за 1985 год. Владивосток. 1986. 106 с.
  32. Ежегодник качества морских вод по гидрохимическим показателям (Японское море) за 1987 год. Владивосток. 1988. 162 с.
  33. Ежегодник качества морских вод по гидрохимическим показателям (Японское море) за 1988 год. Владивосток. 1989. 48 с.
  34. Н.С. Государственный и производственный контроль токсичности вод методами биотестирования в России. М.: Международный дом сотрудничества. 1997. 117 с.
  35. Зимина Л. М, Сазыкина Т. Г. Выделение экзометаболитов микроводорослями как механизм регуляции плотности популяции // Гидробиол. журн. 1987. Т. 23, № 4. С. 50−55.
  36. Э.А. Циркуляция вод залива Петра Великого // География исследования шельфа Дальневосточных морей. Владивосток: Изд-во Дальневосточного Государственного университета. 1993. С. 31 61.
  37. Ю.Г. О культивировании в лабораторных условиях морских планктонных диатомовых и перидиниевых водорослей // Тр. ИО АН СССР. 1961. Т. 47. С. 203−216.
  38. В.И. Метод определения хронической токсичности сточных вод с использованием зеленых водорослей // Методы биотестирования вод. Черноголовка. 1988. С. 89−94.
  39. A.A., Акимова Т. И. Практическое использование химических веществ и материалов. Владивосток: Изд-во Дальневосточного государственного университета. 1998. С. 92- 105.
  40. В.П. Биологическая станция Восток // Биологические исследования зал. Восток. Владивосток: ДВНЦ АН СССР. 1976. № 5. С. 5 -11.
  41. Л.Т., Симоконь М. Н. Тенденции изменения химико-экологической ситуации в прибрежных акваториях Приморья. Токсичные элементы в донных отложениях и гидробионтах // Известия ТИНРО. 2004. Т. 137. С. 310−320.
  42. Г. В., Орлова Т. Ю., Паутова Л. А. Атлас фитопланктона Японского моря. Л.: Наука, 1989. 160 с.
  43. Г. В. «Красные приливы» и «цветение» воды в дальневосточных морях России и прилегающих акваториях // Биол. моря. 1999. Т. 25, № 4. С. 263 273.
  44. М.Е., Тапочка JI. Д. О токсическом действии детергентов на культуру Synechocystis aquatilis II Вестн. МГУ. Сер. биол. 1976. № 4. С.73−77.
  45. А.Н. Биотестирование в охране вод от загрязнения // Методы биотестирования вод. Черноголовка. 1988. С. 4 — 21.
  46. Н.С. Исследования токсического действия фунгицида купороксата на Platymonas viridis Rouch. (Chlorophyta) II Альгология. 2004. Т. 14, № 2. С. 127−136.
  47. В.А., Омельяненко В. А., Тарасов В. Г. Меропланктон бухты Гайдамак (зал. Восток, Японское море) в условиях загрязнения // Экология. 2004. № 2. С. 113−120.
  48. Л.И., Ставская С. С., Ратушная М. Я. Влияние додецилсульфата натрия на одноклеточные зеленые водоросли рода Chlorella II Гидробиол. журн. 1980. Т. 16, № 3. С. 83−87.
  49. Г. П., Паршикова Т. В., Топалова Е. К. Влияние хлорного додецилсульфата натрия на рост хлореллы и макроцистиса в культуре // Гидробиол. журн. 1989. Т. 25, № 2. С. 63−66.
  50. Лоция северо-западного берега Японского моря от реки Туманная до мыса Белкина. М.: ГУНиО. 1984. 316 с.
  51. О.Н. Молекулярные биомаркеры энергетического метаболизма мидий при антропогенном загрязнении зал. Петра Великого Японского моря // Экология. 2006. № 3. С. 227 231.
  52. В.А., Тихомирова Е. А., Круц A.A. Океанографический режим вод залива Петра Великого (Японское море) // Известия ТИНРО. 2005. Т. 140. С. 130−169.
  53. .В. Использование микроводоросли Plagioselmis prolonga для оценки качества воды из Амурского залива и залива Находка (Японское море) // Биол. моря. 2008. Т. 34, № 1. С. 35 41.
  54. .В., Айздайчер H.A. Dunaliella salina как тест-объект для оценки загрязнения морской среды детергентами // Биол. моря. 2005. Т. 31, № 4. С. 274−279.
  55. .В., Айздайчер H.A. // Влияние детергентов на динамику численности и физиологическое состояние бентосной микроводоросли Attheya ussurensis (Bacillariophyta) в лабораторной культуре IIБиол. моря. 2007. Т. 33. № 6. С. 432 439
  56. Н.П. Морфология, систематика, экология, географическое распространение рода Dunaliella Teod. Киев: Наукова думка. 1973. 241 с.
  57. Н.П., Посудин Ю. И. Влияние pH среды на параметры фотодвижения Dunaliella salina Teod. (Chlorophyta) II Альгология. 2007. Т. 17, № l.C. 14−20.
  58. M.B. Экотоксикологическая оценка донных отложений загрязняемых водных объектов. Автореферат дисс. канд. биол. наук. Москва. 2007. 25 с.
  59. В.В., Канаев А. И., Джасохова Н. Г. Водная токсикология. М.: Колос. 1971.247 с.
  60. Методические указания по установлению эколого-рыбохозяйственных нормативов (ПДК и ОБУВ), загрязняющих веществ для воды, водных объектов, имеющих рыбохозяйственное значение. М.: ВНИРО. 1998. 148 с.
  61. Методы физиолого-биохимического исследования водорослей в гидробиологической практике. Под ред. А. В. Топачевского. Киев: Наукова думка. 1975. 247 с.
  62. В.И. Поверхностно-активные вещества на границе океан-атмосфера // Тр. ГОИН. Вып. 203. М.: Гидрометеоиздат. 1992. С. 33 39.
  63. И.В. Охрана источников водоснабжения от синтетических поверхностно-активных веществ (обзор) // Гигиена и санитария. 1996. № 4. С. 6−8.
  64. Ю.А., Найденко Т. Х. Экологическое состояние залива Находка // Известия ТИНРО. 1997. Т. 122. С. 524 537.
  65. Ю.А. Антропогенез и экологическое состояние геосистемы прибрежно-шельфовой зоны залива Петра Великого Японского моря. Владивосток: Дальнаука. 2006. 300 с.
  66. P.A. Рост Dunaliella tertiolecta Teod. (Chlorophyta) в среде с аскорбиновой кислотой и бихроматом калия // Альгология. 1996. Т. 6, № 4. С. 361−367.
  67. М.В. Оценка воздействия кадмия, цинка, всинца на выживаемость предличинок длиннорылой камбалы и японского анчоуса и перспективы их использования как тест-объектов. Автореф. дис.. канд. биол. наук. Владивосток. 2005. 19 с.
  68. A.A., Вейдеман E.JI. Силина Э. И., Нигматулина JI.B. Оценка влияния антропогенной нагрузки на биоресурсы Амурского залива // Водные ресурсы. 1997а. Т. 24, № 5. С. 624 629.
  69. A.A., Вейдеман E.J1. Силина Э. И., Нигматулина JI.B. Воздействие береговых источников загрязнения на биоресурсы залива Петра Великого (Японское море) // Известия ТИНРО. 19 976. Т. 122. С. 430 450.
  70. Е.В., Мощенко A.B., Тишавская Т. С. Влияние загрязнения донных отложений на видовой состав и обилие двустворчатых моллюсков в заливе Петра Великого Японского моря // Биол. моря. 2004. Т. 30, № 1. С. 39 -45.
  71. С.А. Биологические эффекты при воздействии поверхностно-активных веществ на организмы. М.: МАКС Пресс. 2001. 344 с.
  72. С.А., Борисова Е. В., Ленова Л. И., Максимов В. Н. Воздействие сульфонола на культуру водоросли Dunaliella asymmetrica и на проростки Fagopyrum esculentum II Гидробиол. журн. 1990. Т. 26, № 2. С. 96 — 98.
  73. С.А., Вастернак К. Реагирование фотоорганотрофно растущих зеленых жгутиковых на загрязнение водной среды CMC «Кристалл» // Вестник МГУ. Сер. биол. 1991. № 2. С. 67 69.
  74. С.А., Галяма Д., Блажей А., Леготский И., Слугень Д. Синтетические моющие средства (CMC) «Кристалл» и «Лотос-Автомат» // Токсикологический вестник. 1998. № 5. С. 29 — 30.
  75. С.А., Колотилова H.H. Синтетическое моющее средство «ОМО» // Токсикологический вестник. 2000. № 5. С. 43 44.
  76. Отчет по проекту «Комплексная экологическая оценка влияния стока реки Туманной на прибрежные акватории Российской Федерации» (по результатам морских- экспедиционных работ в 1997 г.). Владивосток: ИБМ ДВОРАН. 1997. 133 с.
  77. Т.В. Участие поверхностно-активных веществ в регулировании развития микроскопических водорослей // Гидробиол. журн. 2003. Т. 39, № 1.С. 64−70.
  78. Т. В. Веселовский В.В., Веселова Т. В., Дмитриева А. Г. Влияние поверхностно-активных веществ на функционирование фотосинтетического аппарата хлореллы // Альгология. 1994. Т. 4, № 1. С. 3846.
  79. Т.В., Негруцкий С. Ф. Влияние поверхностно-активных веществ на водоросли (обзор) // Гидробиол. журнал. 1988. Т. 24, № 6. С. 46 -58.
  80. Н.Ф., Ивашинникова Т. С., Петренко B.C., Хомичук Л. С. Основные черты гидрохимии залива Петра Великого (Японское море). Владивосток: ДВГУ проблемная лаборатория по изучению и освоению шельфа Дальневосточных морей. 1989. С. 5 114.
  81. С.А. Влияние загрязнения на биологические ресурсы и продуктивность Мирового океана. М.: Пищевая пром-ть. 1979. 303 с.
  82. Перечень предельно допустимых концентраций и ориентировочно безопасных уровней воздействия вредных веществ для воды рыбохозяйственных водоемов. М.: Роскомрыболовство, Мединор. 1995. 220 с.
  83. А.Г. Биотестирование морской воды и донных отложений северо-западной части Черного моря. Автореферат дисс. канд. биол. наук. Севастополь. 2000. 20 с.
  84. С.Е., Чемерис Ю. К. Ранние эффекты токсического действия цинка, кобальта на фотосинтическую активность водоросли Chlorella pyrenoidosa Chick S-39 // Известия АН. Сер. биол. 2003. № 5.С.610−616.
  85. Г. М. Ранжирование опасности осадков сточных вод для организмов различного уровня организации. Автореферат дисс. канд. биол. наук. Казань. 2003. 19 с.
  86. Ю.А., Айздайчер H.A. Влияние детергента на содержание хлорофилла, а и динамику численности у микроводоросли Chroomonas salina (Wils.) Butch. (Cryptophyta) // Альгология. 2004. Т. 14, № 1. С. 32 38.
  87. В.Ф., Грамма С. Б., Гуля А. П. Влияние координационных соединений металлов на продуктивность и биохимический состав Dunaliella salina Teod.// Альгология. 1995. Т. 5, № 1. С. 95−101.
  88. Руководство по методам химического анализа морских вод. JL: Гидрометеоиздат. 1977. 208 с.
  89. Руководство по определению методом биотестирования токсичности вод, донных отложений, загрязняющих веществ и буровых растворов. М: РЭФИА, НИА Природа. 2002. 118 с.
  90. А.И., Хамар И. С. Изменчивость функциональной активности и состава внеклеточных карбоновых кислот некоторых видов водорослей // Альгология. 1997. Т. 7, № 2. С. 115−125
  91. Т.А. Отдаленные эфффекты токсичного загрязнения среды на солоноводных беспозвоночных в культуре. Автореферат дисс. канд. биол. наук. Москва. 2006. 23 с.
  92. С.А., Скрипник И. А. Моделирование влияния загрязняющих веществ на продуцирование органического вещества фитопланктоном в опытах in situ // Океанология. 1987. Т. 27. Вып. 2. С. 234 237.
  93. И.О., Минеева JI.A., Гусев М. В. Особенности ультраструктуры клеток Cyanidium caldarium на разных стадиях роста переодической культуры // Сер. биол. 1984. № 1. С. 74 81.
  94. С. С. Биологическое разрушения анионных ПАВ. Киев: Наукова думка. 1981. 226 с.
  95. В. В. Характеристика температуры и солености вод зал. Восток Японского моря // Биологические исследования залива Восток. Владивосток: ДВНЦ АН СССР. 1976. № 5. С. 12 22.
  96. Д.И., Балаян А. Э., Кобжицкая Н. З., Кожова О. М. Обездвиживание клеток Dunaliella salina как критерий токсического действия // Гидробиол. жури. 1984. Т. 20, № 5. С. 46 49.
  97. И.В. Фитопланктон Амурского залива (Японское море) в условиях евтрофирования. Автореф. дис.. канд. биол. наук. Владивосток. 1999.26 с.
  98. И.В., Селина М. С. Фитопланктон как показатель трофности вод залива Петра Великого Японского моря // Биол. моря. 1995. Т. 21, № 6. С. 403 -406.
  99. И.В., Орлова Т. Ю. Летне-осенний фитопланктон в Амурском заливе Японского моря // Биол. моря. 1998. Т. 24, № 4. С. 205 -211.
  100. В.А. Биотестирование как метод определения класса опасности отходов // Экология и промышленность России. 2003. Декабрь. С. 27−29.
  101. A.B. Фоновый уровень содержания некоторых органических загрязняющих веществ в водах Тихого Океана // Океанология. 1988. Т. 28. Вып. 6. С. 958.
  102. Ф.П., Куцын Е. Б. Влияние детергентов на аминокислотный состав белка зеленой водоросли Cladophora vagabunda (L.) Hoek // Гидробиол. журн. 2002. Т. 38, № 3. С. 94 98.
  103. А.Н., Христофорова Н. К. Оценка пригодности хитона Lepidozona albrechti как биотеста загрязнения морской воды тяжелыми металлами и детергентами // Биол. моря. 1993. № 3. С. 97 105.
  104. А. Н. Морской заказник «Залив Восток» // Биол. моря. 1996. Т. 22, № 1. С. 58−63.
  105. А.Н., Хромов В. М., Максимов В. Н. Влияние некоторых детергентов, применяемых для борьбы с нефтяным загрязнением, на протококковые водоросли // Науч. докл. высш. шк. 1976. № 5. С. 90 95.
  106. .А. Биотестирование: терминология, задачи, перспективы // Теоретические вопросы биотестирования. Волгоград: АН СССР Институт биологии внутренних вод. 1983. С. 13 -20.
  107. Л.А., Иванов А. Ю., Маркелия Л. Ю., Хасанова З. М. Сравнительное изучение чувствительности представителей Cyanophyta и Rhodophyta к действию анионного детергента // Альгология. 1999. Т. 9, № 2. С. 149.
  108. Химическая энциклопедия: в 5 т. Т. 4./ Редколл.: Кнунянц И. Л. (гл. ред.) и др. М.: Сов. энцикл. 1994. С. 353 355.
  109. Химия океана. Под ред. Монина А. С. М.: Наука. 1979. Т. 1. 390 с.
  110. Хит О. Фотосинтез (физиологические аспекты). М.:Мир. 1972. 314 с.
  111. В.Г., Король K.M. Изменение активной реакции (pH) среды как показатель состояния водорослей при токсическом действии на них химических веществ // Методики биол. исслед. по водн. токсикологии. М.: Наука. 1971. С. 106- 107.
  112. Н.К., Айздайчер H.A., Березовская О. Ю. Действие ионов меди и детергента на зеленые микроводоросли Dunaliella tertiolecta и Platymonas sp. II Биол. моря. 1996. Т. 22, № 2. С. 114 119.
  113. Н.К., Журавель Е. В., Миронова Ю. А. Рекреационное воздействие на залив Восток (Японское море) // Биол. моря. 2002. Т. 28, № 4. С. 300−303.
  114. С.А. Биотестирование: терминология, задачи, основные требования и применение в рыбохозяйственной токсикологии // Известия ТИНРО. 2001. Т. 128. С. 1020- 1035.
  115. С.А., Вейдеман E.JI. Экотоксикологический анализ состояния прибрежных экосистем залива Петра Великого (Японское море) // Вопросы рыболовства. 2005. Т. 6, № 4. С. 637 652.
  116. А.П., Лукьянова О. Н., Черкашин С. А. Распределение нефтяных углеводородов и оценка состояния биоты в Амурском заливе (Японское море) // Экологическая химия. 2006. Т. 15, № 1. С. 28 38.
  117. JI.A. Экотоксикологическое картирование морских прибрежных вод методом биотестирования // Гидробиол. журн. 1997. Т. 33, № 6. С. 50−55.
  118. С.И. Загрязнение прибрежных морских вод России // Водные ресурсы. 1997. Т. 24, № 3. С. 320 327.
  119. Т.А. Реакция клеток мерцательного эпителия мидий на действие различных химических агентов // Цитология. 1967. Т. 9, № 4. С. 425 -431.
  120. В.М. Оценка загрязнения металлами реки Туманной и прилегающих морских вод // Экологическое состояние и биота юго-западной части залива Петра Великого и устья реки Туманной. Т. 1. Владивосток: Дальнаука. 2000. С. 76−85.
  121. Эколого-токсикологические аспекты загрязнения морской среды. Под ред. Патина С. А. Д.: Гидрометеоиздат. 1985. 116 с.
  122. И.Н. Влияние ПАВ на гетерокоагуляцию и биосорбцию микроводоросли Chlorella vulgaris Beijer. JIapr-3 (Chlorophyta) с золями и ионами тяжелых металлов // Альгология. 1999. Т. 9, № 2. С. 167 168.
  123. Aidar Е., Sigaud-Kuther T.C.S., Nishihara L., Schinke K.P., Braga M.C.C., Farah R.E., Kuther M.B.B. -Marine phytoplankton assays: effect of detergents // Mar. Envir. Res. 1997. Vol. 43. No. 1 2. P. 55 — 68.
  124. Belan T.A. Benthos abundance pattern and species composition in conditions of pollution in Amursky bay (the Peter the Great Bay, the Sea of Japan) //Mar. Pollut. Bull. 2003. Vol. 46. P. 1111 1119.
  125. Belan T.A. Polychaete taxocenes variability associated with sediment pollution loading in the Peter the Great Bay (the Eas Sea/Japan Sea) // Ocean Science Journal. 2005. Vol. 40, No. P. 1 10.
  126. Bester K., Theobald N., Schroder H. Fr. Nonylphenols, nonylphenol-ethoxylates, linear alkylbenzenesulfonates (LAS) and bis (4-chlorphenyl)-sulfone in the German Bight of the North Sea 11 Chemosphere. 2001. Vol. 45. P. 817 826.
  127. Blasco J., Hampel M., Moreno-Garrido I. Toxicity of surfactants for aquatic life // Analysis and Fate of Surfactants in the Aquatic Environments. Amsterdam, The Netherlands: Elsevier, 2003. Eds. T. P. Knepper, D. Barcelo, P. de Voogt. P. 827 867.
  128. Butcher R.W. An introductory account of the smaller algae of British Coastal Waters. Part IV: Cryptophyceae // Fishery Inverstigat, Ser. IV. London. 1967. P. 18−36.
  129. Cain J.R., Costello R. Algal assay and chemical analysis: comparative study of water quality assessment techniques in a polluted river // Envir. Pollut. 1979. Vol. 19. P. 215−224.
  130. Canton J.H., Sloof W. Substitutes for phosphate containing washing products: their toxicity and biodegradability in the aquatic environment // Chemosphere. 1982. Vol. 11, No. 9. P. 891 907.
  131. Chawla G., Viswanathan P.N., Devi S. Biochemical studies on the toxicity of linear alkylbenzene sulphonate to Scenedesmus quadricauda in culture // Envir. Exp. Botany. 1987. Vol. 27, No. 3. P. 311 323.
  132. Cosovic B., Giglenecki I. Surface active substances in the Eastern Mediterranean // Croat. Chem. Acta. 1997. Vol. 70, No.-1. P. 361 371.
  133. Corre G., Templier J., Largeau C. Influence of cell wall composition on the resistance of two Chlorella species (Chlorophyta) to detergents // J. Phycol. 1996. Vol. 32. P. 584 590.
  134. Davis E.M., Gloyna E.F. The role of algae in degrading detergent surface active agents // J. WPCF. 1969. Vol. 41, No. 8. P. 1494 1504.
  135. Dieguez-Rojo E., Gonzalez L. Effects of allelochemical 2-benzoxazolinone on growth, pigment content and cell appearance of Tetraselmis suecica (Kylin) Butch. // Thalassas. 2003. Vol. 19. P. 13 22.
  136. Dhaliwal A.S., Campione A., Smaga S. Effect of linear alkylbenzene sulfonate (11.2 LAS) on the morphology and physiology of Plectonema boryanum and Chlamydomonas reinhardi II J. Phycol. 1977. Vol. 13 (Suppl.) P. 18.
  137. Doemel W.N., Brooks A.E. Detergent phosphorus and algal growth. Wat. Res. 1975. Vol. 9. P. 713−719.
  138. Dorn P.B., Rodgers J.H., Jop K.M., Raia J.C., Dickson K.L. Hexavalent chromium as a reference toxicant in effluent toxicity tests // Envir. Toxicol. Chem. 1987. Vol. 6. P. 435−444.
  139. Eichhorn P., Flavier M.F., Paje M.L., Knepper T.P. Occurrence and fate of linear and branched alkylbenzenesulfonates and their metabolietes in surface waters in the Philippines // The Sci. of Tot. Envir. 2001. Vol. 269. P. 175 185.
  140. Ernst R. Surface active betaines as protective agents against denaturation of an ezyme by alkyl sulfate detergents // JAOCS. 1980. Vol. 57. P. 93 98.
  141. Ernst R., Gonzales C.J., Arditti J. Biological effects of surfactants: part 6 — effects of anionic, non-ionic and amphoteric surfactants on a green alga (Chlamydomonas) // Envir. Pollut (Series A.). 1983. Vol. 31. P. 159 175.
  142. Ferris J.J., Kobayashi S. Clesceri N. Growth of Selenastrum capricornutum in natural waters augmented with detergent products in wastewaters // Wat. Res. 1974. Vol. 8. P. 1013- 1020.
  143. Fogg G. E. Algal cultures and phytoplankton ecology. Madison: Univ. Wisconsin Press.-1966. 104 p.
  144. Franklin N.M., Stauber J.L., Apte S.C., Lim R.P. Effect of initial cell density on the bioavailability and toxicity of copper in microalgal bioassays // Envir. Toxicol. Chem. 2002. Vol. 21, No. 4. P. 742 751.
  145. Gledhill W.E., Saeger V.W., Trehy M.L. An aquatic environmental safety assessment of linear alkylbenzene // Envir. Toxicol. Chem. 1991. Vol. 10. P. 169 — 178.
  146. Gonzales-Mazo E., Forja J.M., Gomez-Parra A. Fate and distribution of linear alkylbenzene sulfonates in the littoral environment // Envir. Sci. Technol. 1998. Vol. 32. P. 1636−1641.
  147. Guillard R.R.L. Ryther J.H. Studies of marine planktonic diatoms. I. Cyclotella nana Hustedt. and Detonula confervacea (Cleve) Gran // Can. J. Microbiol. 1962. Vol. 8. P. 229−239.
  148. Halliwell D.J., McKelvie J.D., Hart B.T., Dunhill R.H. Hydrolysis of triphosphate from detergents in a rural waste water system // Wat. Res. 2001. Vol. 35, No. 2. P. 448−454.
  149. Hampel M., Moreno-Garrido I., Sorbino C., Lubian L.M., Blasco J. Acute toxicity of LAS homologues in marine microalgae: esterase activity and inhibition growth as endpoints of toxicity // Ecotoxicol. Envir. Safety. 2001. Vol. 48. P. 287 292.
  150. Hand W.G., Collard P.A., Davenport D. The effects of tempereture and salinity change on swimming rate in the dinoflagellates, Conyaulax and Gyrodinium //Biol. Bull. 1965. Vol. 128. P. 90 101.
  151. Hon-Nami H., Hanya T. Linear alkylbenzene sulfonates in river, estuary and bay water// Wat. Res. 1980. Vol. 14. P. 1251 1256.
  152. Hornstrom E. Toxicity test with algae a discussion on the Batch Method // Ecotox. Envir. Safety. 1990. Vol. 20. P. 343 — 353.
  153. Jeffrey S.W., Humphrey G.F. New spectrophotometric equations for determining chlorophylls a, b, cl and c2 in higher plant, algae and natural phytoplankton // Biochem. Physiol. Pflanzen. 1975. Bd 167. S. 191−194.
  154. Kantin R., Baumgarten M.G.Z., Cabeda M., Beumord A.C., De Almeida T.L. Concentration of anionic detergents in Rio Grande water (South Brazil) // Mar. Pollut. Bull. 1981. Vol. 12. P. 50 53.
  155. De Kuhn R.M., Streb C., Breiter R., Richter P., Neepee T., Hader D.-P. Screening for unicellural algae as possible bioassay organisms for monitoring marine water samples // Wat. Res. 2006. Vol. 40. P. 2695 2703.
  156. Macias-Zamora J. V., Ramirez-Alvarez N. Tracing sewage pollution using linear alkylbenzenes (LABs in surface sediments at the south end of the Southern California Bight // Envir. Pollut. 2004. Vol. 130. P. 229 238.
  157. Madsen T., Boyd H., Nylen D., Pedersen A.R., Petersen G.I., Simonsen F. Environmental and health assessement of substanses in hosehold detergents and cosmetic detergent products. Milj0styrelsen: Milj0 og Energiministeriet, 2001. 201 P
  158. Marcomini A., Pojana G., Sfriso A., Alonso J.M.Q. Behavior of anionic and nonionic surfactants and their persistent metabolites in the Venice Lagoon, Italy // Envir. Toxicol. Chem. 2000. Vol. 19, No. 8. P. 2000 2007.
  159. Matthijs E., Holt M.S., Kiewiet A., Rus BJ. Environmental monitoring for linear alkylbenzene sulfonate, alcohol ethoxylate, alcohol ethoxy sulfate, alkocol sulfate, and soap // Envir. Toxicol. Chem. 1999. Vol. 18, No. 11. P. 2634 2644.
  160. Moreno-Garrido I., Hampel M., Lubian L.M., Blasco J. Marine microalgae toxicity test for linear alkylbenzene sulfonate (LAS) and alkylphenol ethoxylate (APEO) // Fresenius J. Anal. Chem. 2001. Vol. 371. P. 474 478.
  161. Moreno-Garrido I., Lubian L.M., Blasco J. Marine sediment toxicity testing using benthic microalgae // SETAC Globe. 2003b. Vol. 4, No. 5. P. 43−44.
  162. Murray A.P., Gibbs C.F. Linear alkyl benzenes (LABs) in sediments of Port Phillip Bay (Australia) // Mar. Envir. Res. 1987. Vol. 23. P. 65 76.
  163. Miiller M., Zehnder A.J.B., Escher B.I. Membrane toxicity of linear alcohol ethoxylates //Envir. Toxicol. Chem. 1999. Vol. 18, No. 12. P. 2767−2774.
  164. Nyberg H. Growth of Selenastrum capricornutum in the presence of synthetic surfactants // Wat. Res. 1988. Vol. 22, No. 2. P. 217 233.
  165. Nyberg H., Koskimies-Soininen K. The phospholipid fatty acids of porphyridium purpureum cultured in the presence of triton X-100 and sodium desoxycholate // Phytochemistry. 1984. Vol. 23, No. 11. P. 2489 2495.
  166. Ojakian G.K., Katz D.F. A simple technique for the measurements of swimming speed of Chlamydomonas // Exptl. Cell. Res. 1973. V. 81. P. 487 491.
  167. Ortiz M.C., Saenz J.R. Detergents and ortophosphates inputs from urban discharges to Chetumal Bay, Quintana Roo, Mexico // Bull. Envir. Contam. Toxicol. 1997. Vol. 59. P. 486 491.
  168. Pettersson A., Adamsson M., Dave G. Toxicity and detoxification of Swedish detergents and softener products // Chemosphere. 2000. Vol. 41. P. 1611 -1620.
  169. Pilemand C. Surfactants. Their abilities and important physico-chemical properties. Kabenhavn: Arbejdsmilj0instituttet. 2002. 54 pp.
  170. Raymundo C.C., Preston M.R. The distribution of linear alkylbenzenes in coastal and estuarine sediments of the Western North Sea // Mar. Pollut. Bull. 1992. Vol. 24, No. 3. P. 138 146.
  171. Roberts M.H., Warinner J.E., Tsai C., Wright D., Cronin L.E. Comparison of estuarine species sensitivities to three toxicants // Arch. Environ. Contam Toxicol. 1982. Vol. 11. P. 681 692.
  172. Roderer G. Toxic effects of tetraethyl lead and its derivatives on the chrysophyte Poterioochromonas malhamensis. VIII. Comparative studies with surfactants // Arch. Environ. Contam Toxicol. 1987. Vol. 16. P. 291 301.
  173. Saez M., Gomez-Parra A., Gonzales-Mazo E. Bioconcentration of linear alkylbenzene sulfonates and their degradation intermediates in marine life // Fresenius J. Anal. Chem. 2001. Vol. 371. P. 486−490.
  174. Sirisattha S., Momose Y., Kitagawa E., Iwahasi H. Toxicity of anionic detergents determined by Saccharomyces cerevisiae microarray analysis // Wat. Res. 2004. Vol. 38. P. 61 70.
  175. Scott M.J., Jones M.N. The biodegradation of surfactants in the environment // Biochim. et Biophys. Acta. 2000. Vol. 1508. P. 235 251.
  176. Stallwitz E., Hader D.-P. Motility and phototactic orientation of the flagellate Euglena gracilis impared by heavy metal ions // J. Photochem. Photobiol. B: Biol. 1993. Vol. 18. P. 67 74.
  177. Stallwitz E., Hader D.-P. Effects of heavy metals on motility and gravistatic orientation of the Flagellate, Euglena gracilis II Europ. J. Protistol. 1994. Vol. 30. P. 18−24.
  178. Stonik I.V., Orlova T.Yu., Crawford R.M. Attheya ussurensis sp. nov. (Bacillariophyta) a new marine diatom from the coastal waters of the sea of Japan and a reappraisal of the genus // Phycologia. 2006. Vol. 45, No. 2. P. 141— 147.
  179. Sun X., Han K., Choi J., Kim E. Screening of surfactants for harmful algal blooms mitigation // Mar. Poll. Bulletin. 2004. Vol. 48. P. 937 945.
  180. Thayer A.M. Soaps & detergents // Chem. Eng. News. 1993. Vol. 71. P. 26
  181. Tkalin A.V. Chemical pollution of the Northwest Pacific // Mar. Pollut. Bull. 1991. Vol. 22, No. 9. P. 455−457.
  182. Tkalin A. V., Belan T. A., Shapovalov E. N. The State of the Marine Environment near Vladivostok, Russia // Mar. Pollut. Bull. 1993. Vol. 26, No. 8. P. 418 422.
  183. Tkalin A. V., Shapovalov E. N. Influence of Typhoon Judy on chemistry and pollution of Japan Sea Coastal waters near the Tumangan river mouth // Ocean Research. 1991. Vol. 13, No. 2. P. 95 101.
  184. Tomas C.R. Oscisthodiscus lutheus (Chrysophyceae) I. Effects of salinity and temperature on growth, motility and survival // J. Phycol. 1978. Vol. 14. P. 309−313.
  185. Ukeles R. Inhibition of unicellular algae by synthetic surface-active agents // J. Phycol. 1965. Vol. 1. P. 102- 110.
  186. Utsunomiya A., Watanuki T., Matsushita K., Tomita I. Toxic effects of linear alkylbenzene sulfonate and quarternary alkylammonium chloride on Dunaliella sp. as measured by 'H-NMR analysis of glycerol // Chemosphere. 1997b. Vol. 35, No. 6. P. 1215 1226.
  187. Van de Plassche E., de Bruijn J., Feijtel T. Risk assessment of four major surfactant groups in the Netherlands. Application of monitoring data // Tenside Surfactant Deterg. 1997. Vol. 34. P. 242 249.
  188. Versteeg D.J., Rawlings J.M. Bioconcentration and toxicity of dodecylbenzene sulfonate (C.2 LAS) to aquatic organisms exposed in experimental streams // Arch. Environ. Contam. Toxicol. 2003 .Vol. 44. P. 237 246.
  189. Walsh G.E. Principles of toxicity testing with marine unicellular algae // Envir. Toxicol. Chem. 1988. Vol. 7. P. 979 987.
  190. Walsh G.E., Garnas R.L. Determination of bioactivity of chemical fractions of liquid wastes usuing freshwater and saltwater algae and crustaceans // Envir. Sci. Technol. 1983. Vol. 17. P. 180 182.
  191. Wong C.K.C., Cheung R.Y.H., Wong M.H. Toxicological assessment of coastal sediments in Hong Kong using a flagellate, Dunaliella tertiolecta // Environmental Pollution. 1999. Vol. 105. P. 175 183.
  192. Wong D.C.L., Whitthe D., Maltby L., Warren P. Multivariate analyses of invertebrate community responses to a C12−15 AE-3S anionic surfactant in stream mesocosms // Aquat.Toxicol. 2003. Vol. 62. P. 105 117.
  193. Yamane A.N., Okada M., Sudo R. The growth inhibition of planktonic algae due to surfactants used in washing agents // Wat. Res. 1984. Vol. 18, No. 9. P. 1101−1105.
  194. Yan G.A., Jiang J.W. Wu G., Yan X. Disappearance of linear alkylbenzene sulfonate from different cultures with Abaena sp. HB 1017 // Bull. Envir. Comtam. Toxicol. 1998. Vol. 60. P. 329 334.
  195. Zeng E.Y., Khan A.R. Tran K. Organic pollutants in the coastal marine environment off San Diego, California. 3. Using linear alkylbenzenes to trace sewage-derived organic materials // Envir. Toxicol. Chem. 1997. Vol. 16, No. 2. P. 196−201.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!