Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Оптимизация приемов микроразмножения и сохранения лимона in vitro

Диссертация: Оптимизация приемов микроразмножения и сохранения лимона in vitro
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Наилучшие места для произрастания цитрусовых — тропические и субтропические территории, расположенные на широте 40 градусов по обе стороны экватора, где температура преимущественно выше 0 °C. Среди субтропических районов земного шара особое место принадлежит субтропикам Краснодарского края, которые по своему географическому положению (43−44° с. ш.) являются самой северной зоной по выращиванию… Читать ещё >

Содержание

  • ГЛАВА 1. КУЛЬТУРА ТКАНЕЙ ЦИТРУСОВЫХ: ПРОБЛЕМЫ И ПЕРСПЕКТИВЫ
    • 1. 1. Основные биологические особенности цитрусовых культур
    • 1. 2. Культура тканей, как основной инструмент биотехнологии цитрусовых
      • 1. 2. 1. Проблема контаминации на этапе введения в культуру
      • 1. 2. 2. Регенерация и микроразмножение эксплантов цитрусовых
      • 1. 2. 3. Процедура сохранения гермоплазмы цитрусовых in vitro
  • ГЛАВА 2. ОБЪЕКТЫ И МЕТОДИКА ИССЛЕДОВАНИЙ
  • ГЛАВА 3. ПОЛУЧЕНИЕ СТЕРИЛЬНОЙ КУЛЬТУРЫ И ПРЯМОЙ ОРГАНОГЕНЕЗ ПОЧЕК ЛИМОНА
    • 3. 1. Эффективность стерилизации пазушных почек лимона
    • 3. 2. Особенности органогенеза лимона из пазушных почек и путем микропрививки
  • ГЛАВА 4. КЛОНАЛЬНОЕ МИКРОРАЗМНОЖЕНИЕ ЛИМОНА
    • 4. 1. Влияние минеральной основы питательной среды и регуляторов роста на размножение побегов из почек лимона
    • 4. 2. Микропрививка как способ физиологического омоложения и размножения лимона
  • ГЛАВА 5. ОСОБЕННОСТИ СОХРАНЕНИЯ МИКРОПОБЕГОВ ЛИМОНА IN VITRO
    • 5. 1. Оптимизация режимов и условий хранения in vitro
    • 5. 2. ISSR-маркирование для определения генетической стабильности лимона в процессе хранения in vitro
  • ГЛАВА 6. УКОРЕНЕНИЕ И АДАПТАЦИЯ ПОБЕГОВ К НЕСТЕРИЛЬНЫМ УСЛОВИЯМ

Оптимизация приемов микроразмножения и сохранения лимона in vitro (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Цитрусовые культуры занимают третье место в мире по распространению среди плодовых культур, и основными странами-производителями являются США, Япония, Испания, Италия и другие, с теплым влажным климатом (FAO, 2009). Кроме своей высокой пищевой ценности, они получили широкое применение в парфюмерной, косметологической, фармацевтической промышленностях, а также известны как высокодекоративные растения. Цитрусовое дерево является настоящим украшением интерьера: декоративные плоды и ароматные цветы появляются одновременно, круглый год в кроне из вечнозелёных кожистых листьев со специфическим запахом эфирных масел. В России наиболее популярна в озеленении комнатная культура лимона. Известными сортами являются Павловский лимон, Майкопский, Новоафонский и лимон Мейера. Лимон (Citrus limon (L.) Burm.) — один из наиболее ценных видов рода Citrus. О диетических и лечебных свойствах лимонов, было известно в арабских странах уже в 13 веке. Их с успехом применяли при лечении ран, легочных заболеваний, цинге и др. Из лепестков цветков, листьев и кожуры плодов добывают эфирное масло, используемое в кондитерском производстве, парфюмерии и медицине.

В благоприятных условиях растения лимона могут цвести круглый год и, благодаря высокой декоративности, с успехом используются для внутреннего озеленения и как комнатная культура.

Наилучшие места для произрастания цитрусовых — тропические и субтропические территории, расположенные на широте 40 градусов по обе стороны экватора, где температура преимущественно выше 0 °C. Среди субтропических районов земного шара особое место принадлежит субтропикам Краснодарского края, которые по своему географическому положению (43−44° с. ш.) являются самой северной зоной по выращиванию цитрусовых. Опыт промышленного цитрусоводства первой половины XX века и экспериментальные посадки этих культур в 1980;1990;х годах показывают, что промышленная культура цитрусовых в субтропиках России может быть экономически рентабельной (Трубачев В.В., http://www.Hmon-citron.ru). В благоприятные по климатическим условиям годы местные хозяйства получали высокие урожаи мандаринов — от 200 до 350 ц/га. Сравнительно высокими были и урожаи лимонов.

В результате многолетних исследований по возделыванию и селекции цитрусовых на базе ГНУ ВНИИЦиСК Россельхозакадемии создана коллекция, в которой собраны все виды рода Citrus, имеющие важнейшее экономическое значение — всего более 120 таксонов (Зорин, Лаврийчук, 1964; Фогель, 2008; Кулян, 2012). Следует отметить, что Черноморское побережье России является зоной рискованного цитрусоводства, так как периодически повторяющиеся холодные зимы представляют собой угрозу для промышленных посадок. В связи с этим, главными направлениями цитрусоводства в нашей стране является получение новых сортов, устойчивых к низким температурам и биотическим факторам.

Традиционные методы селекции цитрусовых малоэффективны в связи с биологическими особенностями этих культур: полиэмбриония, длительный ювенильный период, стерильность пыльцы и семяпочек. Современные методы биотехнологии позволяют преодолеть эти проблемы и открывают возможности для получения сортов нового поколения. Для осуществления этих приемов необходимы эффективные протоколы регенерации, микроразмножения и депонирования in vitro (Malaurie, 1998; Marin, Duran Villa, 1999; Negash et al., 2001 и др.).

Абсолютное большинство зарубежных протоколов микроразмножения и сохранения цитрусовых in vitro выполнены на сеянцах (Barlaas, Skene, 1982; Marin, Duran Villa, 1999; Chaturvedi et al., 2002; Avenido et al., 2004; Jajoo, 2009; Benabdesselam, 2011; Chen, 2012 и др.). При этом способе сохранения сортовые особенности утрачиваются и растения зацветают через 5−10 и более лет. В этой связи актуальным является вопрос разработки и оптимизации надежных приемов сохранения взрослых (неювенильных) тканей, а также изучение органогенного потенциала различных типов эксплантов в условиях in vitro на примере С. limon для сохранения геноресурсов и использования их в селекционных целях.

Объекты исследований: Citrus limon (L.) Burm., сорта: Новоафонский, Ударник, БесколючийCitrus х meyeri лимон Мейера коллекции ГНУ ВНИИЦиСК Россельхозакадемии.

Цель исследований: оптимизировать приемы микроразмножения и сохранения лимона in vitro для создания депонированной коллекции и дальнейшего использования ее в селекционной работе. Задачи исследований:

1. Определить эффективный способ стерилизации побегов. Выявить возможные пути прямого морфогенеза эксплантов лимона in vitro.

2. Оптимизировать минеральную основу питательной среды и гормональный состав для микроразмножения лимона.

3. Установить оптимальный режим хранения микропобегов лимона in vitro.

4. Оценить эффективность ISSR-праймеров для определения генетической стабильности сортов в процессе хранения лимона in vitro.

5. Разработать протокол поддержания депонированной коллекции лимона в культуре тканей.

Новизна исследований. Впервые установлена возможность использования техники микропрививки для повышения жизнеспособности и коэффициента размножения микропобегов. Модифицирована минеральная основа питательной среды для размножения. Определены оптимальные сроки и условия среднесрочной консервации микропобегов. Для определения жизнеспособности растений при хранении лимона in vitro впервые использован метод медленной индукции флуоресценции хлорофилла.

Впервые с помощью ISSR праймеров проведена оценка полиморфизма изученных сортов лимона.

Практическая значимость. Оптимизация приемов клонального микроразмножения цитрусовых позволит создать и поддерживать резервную коллекцию, сохранить на небольших производственных площадях накопленный генофонд для дальнейшего использования в селекционных и практических целях.

Основные положения, выносимые на защиту:

1. Микропрививка — как способ омоложения эксплантов от взрослых растений лимона;

2. Условия культивирования и составы питательных сред на всех этапах — от введения in vitro до адаптации ex vitro;

3. Оптимизированы приемы клонального микроразмножения и среднесрочного хранения микропобегов лимона in vitro.

Апробация работы и публикация результатов исследований. Результаты исследований докладывались и обсуждались на ежегодных отчетных сессиях ГНУ ВНИИЦиСК Россельхозакадемии, Сочи, 2009 — 2012 гг., на конференции «Научное обеспечение АПК», Краснодар, 2011 г., на летней школе молодых ученых «AgroBioTech», Москва, 2012, на Всероссийской выставке «Золотая Осень», Москва, 2011 г., на конкурсе научно-исследовательских проектов молодых ученых «AllTech Young Scientist», 2012 г., конкурсе инновационных проектов молодых ученых «У.М.Н.И.К.», Краснодар, 2011 г. По теме диссертации опубликовано 11 печатных работ, из них чытыре — в изданиях, рекомендованных ВАК РФ.

Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 118 страницах печатного текста, состоит из введения, 6 глав, рекомендаций для практического применения, выводов и 6 приложений. Работа содержит 18 таблиц, 35 рисунков.

Список литературы

включает 218 источников, в том числе 185 на иностранных языках.

Выводы.

1. Установлен эффективный режим стерилизации побегов взрослых растений лимона — обработка 0,3% раствором Велтолен 25 мин и добавление антибиотика тетрациклина 400 мг/л в питательную среду.

2. Оптимизирован минеральный и гормональный состав питательной среды для микроразмножения лимона — КМО + БАП 2,0 мг/л + ГК 2,0 мг/л.

3. Установлено, что после трех циклов микропрививки в почках происходит активизация ростовых процессов, и коэффициент размножения лимона повышается в 2 раза, что является критерием физиологического омоложения. Микропрививка является наиболее перспективным способом микроразмножения и сохранения лимона in vitro.

4. Выявлены оптимальные условия, позволяющие сохранять микропобеги лимона in vitro 10−12 месяцев на среде Уг МС + БАП 0,1 мг/л + НУК 0,5 мг/л, при температуре + 10 ± 2 °C, освещении 1 000 люкс, фотопериоде 16/8 часов.

5. Определена эффективность ISSR праймеров для оценки генетической стабильности сортов лимона в процессе хранения in vitro. У сортов Новоафонский, Бесколючий и Ударник не было выявлено генетических отклонений после 6−12 месяцев хранения in vitro.

6. Разработан и рекомендован для практического применения протокол поддержания депонированной коллекции лимона в культуре тканей.

Заключение

.

При оптимизации и приемов микроразмножения и сохранения лимона Citrus limon (L.) Burm. в условиях in vitro были получены микропобеги путем прямого органогенеза из пазушных почек. В процессе микроразмножения и сохранения они характеризовались низкой продуктивностью и жизнеспособностью. С помощью цикла повторных микропрививок удалось повысить эффективность микроразмножения микропобегов в 2 раза, и коэффициент размножения составил 4,6 шт/эксплант на среде КМО +2,0 мг/л БАП + 2,0 мг/л ГК. Этот способ является полезным инструментом и открывает большие возможности для массового размножения и оздоровления элитных генотипов.

Подбор оптимальных режимов культивирования позволил сохранять микропобеги 10 — 12 месяцев без промежуточных субкультивирований в условиях пониженной температуры и освещенности. Сравнение микропобегов, полученных из пазушных почек, с маточными растениями лимона не выявило генетических различий после хранения in vitro в течение 12 месяцев у сортов Бесколючий и Новоафонский, и у сорта Ударник после 6 месяцев хранения. Следовательно, продолжительность хранения в коллекции in vitro до 12 месяцев может быть безопасной для генотипов лимона.

В результате исследований были получены укорененные и адаптированные к нестерильным условиям растения лимона. Включение метода культуры тканей в селекцию и производство цитрусовых может стать полезным инструментом для размножения подвоев, сохранения ценных генотипов, оздоровления от патогенов и безопасного обмена гермоплазмой с другими коллекциями.

Рекомендации для практического применения.

На основе полученных результатов разработана технологическая схема микроразмножения и сохранения лимона в условиях in vitro (рис. 35). С целью получения полноценных растений лимона, микроразмножения и сохранения их в культуре тканей предлагается следующая последовательность операций:

1. Введения в культуру тканей: а) Молодые побеги весеннего (апрель — май) прироста освободить от листьев, промыть с хозяйственным мылом и в проточной воде в течение 30 минут. Затем в условиях стерильного помещения обработать побеги 0,3% растворе Велтолен 25 мин, с последующей трехкратной промывкой стерильной дистиллированной водой. Сегменты побегов длиной 0,7 см с почкой помещаются вертикально на питательную среду — МС + 0,1 мг/л БАЛ + 0,5 мг/л НУК + сахароза 25,0 г/л + агар 7,0 г/л. Культивирование при световом режиме 16/8−5 клк, t +22+2 °С до получения микропобегов. б) Для получения сеянцев — семена стерилизуют 0,3% раствором велтолен 30 мин. Стерильными инструментами снимают обе семенные оболочки, и помещают семядоли на питательную среду МС + БАЛ 1,0 мг/л + НУК 0,1 мг/л + аденин 10 мг/л + сахароза 25,0 г/л + агар 7,0 г/л, световой режим 16/8−5 клк, t + 22 ± 2 °C. в) Для получения побегов путем микропрививки отдельно готовят подвой и привой. Подвой — сеянцы лимона четырех недель культивирования in vitro, привой — микропобеги из пазушных почек in vitro. Сеянцы декапитируют, оставляя 1,0 — 1,5 см эпикотиль, на месте среза которого делают L-образный разрез коры длиной 1 — 2 мм. В этот разрез помещают привой — меристему с 2−3 примордиями. Микропривитые побеги помещают на среду DKW + БАЛ 0,1 мг/л + НУК 0,5 мг/л + сахароза 30,0 г/л+ агар 7,0 г/л, и культивируют при световой режиме 16/8−5 клк, t + 22 ± 2 °C.

2. Для омоложения микропобегов проводят цикл из не менее трех микропрививок, продолжительностью 2−3 месяца каждый. В каждой последующей прививке используют почки предыдущего привоя. После третьей перепрививки микрочеренки привоя высаживают на среду для размножения.

3. Для микроразмножения микропобеги культивируют на среде DKW (или КМО) + БАП 2,0 мг/л + ГК 2,0 мг/л + сахароза 25,0 г/л + агар 7,0 г/л световой режим 16/8−5 клк, t + 22 ± 2 °C.

4. Для депонирования in vitro используют следующие условия — среда Vt. МС + БАП 0,1 мг/л + НУК 0,5 мг/л, сахароза 20,0 г/л, освещение 16/8−1 mik, t+ 10 ± 2 °C.

5. Для укоренения микропобеги помещают на среду Vi МС + НУК 2,0 мг/л + ИМК 1,0 мг/л + сахароза 20,0 г/л + агар 7,0 г/л, световой режим 16/8 -5 клк, t + 22 ± 2 °C.

6. Адаптацию следует проводить в 2 этапа: 1. Высадка укорененных растеньиц в адаптационные камеры с вермикулитом, предварительно прожаренном в сушильном шкафу в течение 6 часов- 2. Высадка на стеллажи или в горшки в тепличные условия.

Рис. 35. ТЕХНОЛОГИЧЕСКАЯ СХЕМА микроразмножения и сохранения Citrus limon (L.) Burm. в условиях in vitro.

Молодые побеги весеннего приростастерилизация — 0,3% Велтолсн 20 мин, трижды промывка стерильной дистводой.

Микроразмноженис — DK. W + БАП 2,0 мг/л + ГК 2,0 мг/л + сахароза 25,0 г/л + агар 7,0 г/л световой режим 16/8−5 клк, t + 22 ± 2 «С.

Введение

в культуру пазушных почек it.

Высадка в питомник.

Регенерация побегов — МС + 0,1 мг/л БАП + 0,5 мг/л НУК + сахароза 25,0 г/л + агар 7,0 г/л. Культивирование при световом режиме 16/8−5 клк, I + 22 ± 2 °C.

Укоренение — 'Л MC + НУК 2,0 мг/л + ИМ К 1,0 мг/л + сахароза 20,0 г/л + агар 7,0 г/л, световой режим 16/8 -5 клк, t + 22 ± 2 °C.

Анализ генетической стабильности сортов, депонированных в коллекции in vitro, с помощью ISSR маркеров.

Стерильная культура привоя J.

Микропрививка.

Введение

в культуру семян стерилизация 0,3% велтойен 25 минут.

Семена с=г?>

А и г is.

Y.

Хранение — Vi MC БАП 0,1 мг/л + НУК 0,5 мг/л, сахароза 20,0 г/л, освещение 16/8−1 клк, t + 10 ± 2 °C.

Ювенильные подвои in vitro.

Подвой — сеянцы лимона 4-х недель культ-я in vitro, привой — 2-х недельные регенеранты пазушных почек. Среда DKW + БАП 0,1 мг/л + НУК 0,5 мг/л + сахароза 30,0 г/л+ агар 7,0 г/л, световой режим 16/8−5 клк, t + 22 ± 2 «С.

О м.

Показать весь текст

Список литературы

  1. , В.Ю. Автоматизированный комплекс измерительной аппаратуры для оценки устойчивости растений к стрессовым факторам среды / В. Ю. Березина, Т. А. Гурова // Достижения науки и техники АПК. 2006. -№ 11.-С. 15−17.
  2. , Р.Г. Клональное микроразмножение цитрусовых культурой пазушных почек / Р. Г. Бутенко, JI. Н. Шенгелия // Культура клеток растений биотехнология. М.: Наука, 1986. — С. 110−113.
  3. , А. Парадоксы оптических свойств зеленых клеток и их практическое применение / А. Будаговский, О. Будаговская, И. Будаговский // Фотоника Электронный ресурс. 2010. — Вып. 6. — Режим доступа: http://vvww.photonics.su/journal/article/2537
  4. Весел ова, Т. В. Оценка состояния растений земляники, культивируемых in vitro, люминесцентным методом / Т. В. Веселова, О. Н. Высоцкая, В. А. Веселовский // Физиология растений. 1994. — Т. 41. — № 6. -С. 942−946.
  5. , О.Н. Длительное сохранение in vitro коллекции растений земляники / О. Н. Высоцкая // Физиология растений. 1994. — № 41. -С. 935−941
  6. Глоба-Михайленко, И. Д. Использование метода культуры ткани в цитрусоводстве / И.Д. Глоба-Михайленко // Субтропические культуры. -1980. -№ 3.- С. 32−35.
  7. Глоба-Михайленко, И. Д. Микропрививка мандарина Уншиу / И.Д. Глоба-Михайленко, С. Хусайни // Тез. докл. Всесоюзной конф. молодых ученых и аспирантов. Тбилиси, 1987. — С. 131.
  8. , Б.А. Методика полевого опыта / Б. А. Доспехов // М.: Агропромиздат, 1985.-351 с.
  9. , Ф.М. Селекция и агротехника цитрусовых на севере субтропиков / Ф. М. Зорин, И. И. Лаврийчук. М.: Колос, 1964. — 231 с.
  10. Иддагода,'Н. Особенности получения асептической культуры и клональное микроразмножение взрослых растений чая / Н. Иддагода, Н. В. Катаева, Р. Г. Бутенко // Сельскохозяйственная биология. — 1990. — № 5. — С. 98−103.
  11. , И.Г. Естественная индуцированная мутация у цитрусовых / И. Г. Керкадзе, Т. Я. Трапаидзе // Информационное обеспечение целевых комплексных научно-технических программ. — Тбилиси, 1982. — 1 (9).-41 с.
  12. , C.B. Спонтанная осцилляция замедленной флуоресценции при диагностике устойчивости сельскохозяйственных растений к неблагоприятным факторам внешней среды / C.B. Климов // Сельскохозяйственная биология. 1996. — № 5. — С. 115−122.
  13. , М.Ю. Разработка флуоресцентной тест-системы для выявления устойчивых к вертициллезу форм томата / М. Ю. Куклев, И. А. Фесенко, Г. И. Карлов // Известия ТСХА. 2006. — № 4. — С. 115−119.
  14. Р.В. Цитрусовые культуры, как объект для селекции / Р. В. Кулян // Субтропическое и декоративное садоводство. 2012. — Т.46. — № 1. -Стр. 71−74.
  15. , Ф.М. Морфофизиология растений / Ф. М. Куперман. -М.: Высшая школа, 1984.-240 с.
  16. , О.И. Генетические банки растений: проблемы формирования, сохранения и использования / О. И. Молканова и др. // Вестник удмуртского университета. 2010. — Вып. 3. — С. 33 — 39.
  17. , Р.В. Фитохимическая реакция листьев фасоли на тепловой стресс после предварительного водного дефицита / Р. В. Рибейро и др. // Физиология растений. 2008. — Т. 55, № 3. — С. 387−396.
  18. , P.O. Биоиндикаторное значение флуоресценции хлорофилла некоторых древесно-кустарниковых растений в зимний период / P.O. Собчак, Ю. С. Григорьев // Сибирский экологический журнал. 2007. -Т. 14(1).-С. 53−59.
  19. , В. А.Каталог коллекции цитрусовых культур ВНИИЦ и CK / В.А. Фогеля. Сочи, 2008 г. — 55 с.
  20. , Л. Н. Метод микропрививок цитрусовых в культуре ш vitro / Л. Н. Шенгелия, Р. Г. Бутенко // Культура клеток растений и биотехнология Кишинев: Штиинца, 1983. С. 116−117.
  21. , A.A. Биосинтез хлорофилла и формирование фотосинтетических систем / A.A. Шлык // Теоретические основы фотосинтетической продуктивности. -М., 1972.
  22. Abdulaziz, M. Effect of phytohormones on in vitro shoot multiplication and rooting of lime Citrus aurantifolia (Christm.) Swing. / Abdulaziz M., Al-Bahrany // Sci. Hortic. 2002. — Vol. 95(4). — P. 285−295.
  23. Aleza, P. Polyembryony in non-apomictic citrus genotypes / P. Aleza, et al. // Annuals Botany. -2010. Vol. 106 (4). — P. 533 — 545.
  24. Altaf, N. In vitro bud culture of Kinnow tree / N. Altaf// Pak. J. Bot. -2006. Vol. 38 (3). — P. 597−601.
  25. Al-Khayri, J.M. In vitro micropropagation of Citrus aurantifolia (lime) / J.M. Al-Khayri, A.M. Al-Bahrany // Current Science. 2001. — Vol. 81 (9, 10).-P. 1242−1246.
  26. Almeida, W.A.B. In vitro organogenesis optimization and plantlet regeneration in Citrus sinensis and C. limonia / W.A.B. Almeida et al. // Sci. Agr. 2002. — Vol. 59. — P. 35−40.
  27. Amin, M. N. In vitro response of apical bud explants from mature trees of jackfruit (Artocarpus heterophyllus) / M. N. Amin, V. S. Jaiswal // Plant Cell Tissue and Organ Culture. 1993. — Vol. 33. — Pp. 59−65.
  28. Amiri, M.E. In vitro technique to study the shoot tip grafting of Primus avium L. (Cherry) var. Seeyahe Mashad / M. E. Amiri // J. Food Agriculture and Environment. -2006. Vol. 4 (1). — P. 151−154.
  29. Ashmore, S.E. Status report on the development and application of in vitro techniques for the conservation of plant genetic resourses / S.E. Ashmore // International plant genetic resources institute. IPGRI, Rome, 1997. — 67 P.
  30. Avenido, R.A. Developing plant regeneration systems for in vitro conservation of mandarin (C. reticulata) and pummel (C. maxima) / R.A. Avenido, et al. // Philippine Journal of Crop Science 2004. — Vol. 29 (1). — P. 76.
  31. Ballester, A. Cold storage of shoot cultures and alginate encapsulation of shoot tips of Camellia japonica L. and Camellia reticulata Lindely / A. Ballester, L.V. Janiero, A.M. Vieites // Sci. Hort. 1997. — Vol. 71. — P. 67−78.
  32. Baruah, A.V. Micropropagation of three endangered Citrus species. 1. Shoot proliferation in vitro / A.V. Baruah, V.A. Nagaraju, Parthasarathy // Annals of Plant Phyhsiology. 1996. — 10 (2). — P. 124−128.
  33. Barlass, M. In vitro plantlet formation from Citrus species and hybrids / M. Barlass, K.G.M. Skene // Scientia Horticulture. 1982. — Vol. 17. — P. 333 341.
  34. Batygina, T.V. Phenomenon of polyembryony. Genetic heterogenity of seeds / T.V. Batygina, V.I. Vinogradova // Russian Journal of Developmental Biology. 2007. — Vol. 38. — P. 126−151.
  35. Bauza, L. In vitro propagation of Paeonia sufrtuticosa: Developmental effect of exogenous hormones during the multiplication phase / L. Bauza, M. Jacques, E. Miginiac // Sci. Hortic. 1994. — Vol. 57. — P. 241−251.
  36. Begum, F. A comparative study of axillary shoot proliferation from the nodal explants of three varieties pummelo (Citrus grandis L. Osb.) / F. Begum, et al. // Biotechnology. 2004. — Vol. 3. — P. 46−62.
  37. Benabdesselam, F.M. Micropropagation of Algerian juvenil rootstocks Citrus species / M. Benabdesselam, B. Khettal, F. Bedjou // Life sciences Leaflets 2011. — Vol. 18. — P. 707−717.
  38. Bernet, G.P. Molecular discrimination of lemon cultivars / G.P. Bernet et al. //Hortic. Science. -2004. Vol. 39 (1). — P. 165−169.
  39. Bertrand-Desbrunais, B. Slow growth of in vitro conservation of Coffee / B. Bertrand-Desbrunais, M. Noirot, A. Charrier // Plant Cell Tiss. and Org. Cult.-1992.-Vol. 31.-P. 105−110.
  40. Bhat, S.R. Regeneration of plants from long-term root culture of lime, Citrus aurantifolia (Christm. Swing) / S.R. Bhat, P. Chitralekha, K.P.S. Chandler // Plant Cell Tissue Org. Cult. 1992. — Vol. 29. — P. 19−25.
  41. Biotechnology in Agriculture and Forestry / ed. by Y.P.S. Bajaj. -Berlin: Springer-Verlag, 1997.-Vol. 18.-P. 327−338.
  42. Bonga, J.M. Vegetative propragation in relation to juvenility, maturity and rejuvenation. / ed. by J.M. Bonga, D.J. Durzan // Tissue culture in forestry. -Boston: Dr. W. Junk publishers, 1982. P. 387−412.
  43. Breto, M.P. The diversification of Citrus Clementina Tan., a vegetatively propagated crop species / M.P. Breto, C. Ruiz, J. A. Pina, M. J. Asins // Molecular Phylogenetics and Evolution. 2001. — Vol. 21. — P. 285−293.
  44. Brown, D.C.W. Osmotic requirement for shoot formation in tobacco callus / D.C.W. Brown, D.W.M. Leung, T.A. Thorpe // Physiol. Plant. 1979.-Vol. 46. -P. 36−41.
  45. Brown, D.C.W. Crop improvement through tissue culture / D.C.W. Brown, T.A. Thorpe // World Journal of Microbiology and Biotech. 1995. — Vol. II.-P. 409−415.
  46. Cameron, J.W. Identical of twin hybrids of Citrus xPoncirus from strictly sexual seed parents / Gaber M.J. //Amer. J. Botany. 1968. — Vol. 55. — P. 199−205.
  47. Carimi, F. Somatic embryogenesis and plant regeneration from pistil thin cell layers of Citrus / F. Carimi, F. De Pasquale, F.G. Crescimanno // Plant Cell Reports. 1999. — Vol. 18. — P. 935−940.
  48. Carimi, F. Micropropagation of Citrus / F. Carimi // Micropropagation of Woody trees and fruits. / ed. by F. Carimi, F. De Pasquale. Kluwer Academic Publishers, 2003. — p. 590−619.
  49. Cervera, M. Agrobacterium-mediated transformation of citrange: factors affecting transformation and regeneration / M. Cervera et al. // Plant Cell Rep. 1998.-Vol. 18.-P. 271−278.
  50. Charrier, A. The implications of biotechnology in germplasm conservation and utilization / A. Charrier, J. Dereuddre, F. Engelmann // Crop Genetic Resources of Africa. 1991. — Vol. II. — P. 279−286.
  51. Chaturvedi, H.C. Method for regeneration viable and fertile citrus plants by tissue culture from explants / H.C. Chaturvedi, Singh S.K., A.K. Sharma // United States Patent № 6,485,975 B1. 2002.
  52. Chen, X.D. Germplasm conservation and microRNA identification of in vitro plantlets in Citrus trees / X.D. Chen // Electronic journal. 2012. — Mode access: http://www.globethesis.com/
  53. Chen, W.L. Elimination of in vitro contamination, shoot multiplication, and ex vitro rooting of Aglaonema / W.L. Chen, D.M. Yeh // Hort. Science. — 2007. Mode access: http://hortsci.ashspublications.org
  54. Chiancone, B. Effect of polyamines on in vitro anther culture of Citrus Clementina Hort. ex Tan. / B. Chiancone // Plant Cell Tiss. Organ Cult. -2006.-Vol. 87.-P. 145−153.
  55. Citrus Genetics, Breeding and Biotechnology / ed. by I.A. Khan. -CAB International, 2007. P. 370.
  56. Coleman, M.D. Pure culture response of ectomycorhizal fungi to imposed water stress / M.D. Coleman, C.S. Bledsoe, W. Lopushinsky // Can. J. Bot. 1989. — Vol. 67. — P. 29−39.
  57. Danthu, P. Restoration of rooting competence in mature Faidherbia albida, a Sahelian leguminous tree, through serial root sucker micrografting / P. Danthu, B. Hane, P. Sagna, Y. K. Gassama // New For. 2002. — Vol. 24. — Pp. 239−244.
  58. De Fossard, R. A. Micropropagation of some members of the Myrtaceae / De Fossard R. A., De Fossard H. // Acta Hortic. 1988. — 227. — P. 346−351.
  59. Deora, N.S. Micropropagation of Capparis deciduas (Forsk.) Edgew-A tree of arid horticulture / N.S. Deora, N.S. Shekhawat // Plant Cell Rep. 1995. -Vol. 15.-P. 278−281.
  60. Dereuddre, J. Effect of cold hardening in cryopreservation of axially pear (Pyrus communis) shoot tips of in vitro plantlets / J. Dereuddre, C. Scottes, Y.A.M. Duron // C.R. Acad. SCI. Paris, 1990. — P. 265−272.
  61. De Pasquale, F. Characterization of five sour orange clones through molecular markers and leaf essential oils analysis / F. De Pasquale et al. // Scientia Hortic. 2006. — Vol. 109. — P. 54−59.
  62. Dice, L.R. Measures of the amount of ecologic association between species / L.R. Dice // Ecology. 1945. — Vol. 26 (3). — P. 297−302.
  63. Dodds, J.H. Experiments in plant tissue culture / J.H. Dodds, L.W. Roberts //New York: Cambrige Univ. Press., 1985.-2nd ed.-P. 172−179.
  64. Driver, J.A. In vitro propagation of paradox walnut rootstock / J.A. Driver, A.H. Kuniyuki //Hort. Sci. 1984. — Vol. 19. — P. 507−509.
  65. Duron, M. In vitro propagation new apple genotypes / M. Duron // In vitro techniques: propagation and long term storage / ed. by A. Schafer-Menuhr1985.-P. 35−39.
  66. Engelmann, F. In vitro conservation of tropical plant germplasm -review / F. Engelmann // Euphytica. 1991 — 57. — P. 227 — 243.
  67. Engelmann, F. In vitro conservation methods in biotechnology and plant genetic resources: conservation and use / F. Engelmann // CABI Wellingford. -1997.-P. 119−162.
  68. Engelmann, F. In vitro conservation of horticultural genetic resources review of the state or the art / F. Engelmann // IPGRI — 1998. — Mode access: vvchr.agrsci.unibo.it/
  69. Estrada-Luna, A. A. In vitro micrografting and the histology of graft union formation of selected species of prickly pear cactus (Opuntia spp.) / A. A. Estrada-Luna et al. // Sci. Horticult. 2002. — Vol. 92. — Pp. — 317−327.
  70. El-Sawy, A. Somatic embryogenesis and plant regeneration from undeveloped ovules of Citrus / A. El-Sawy, A. Gomaa, A. Reda, N. Danial // Arab J. Biotech. 2006. — Vol. 9 (1). — P. 189−202.
  71. Ewald, D. The influence of micrografting in vitro on tissue culture behavior and vegetative propagation of old European larch trees / D. Ewald, U. Kretzschmar // Plant Cell, Tissue Organ Cult. 1996. — Vol. 44. — Pp. 249−252.
  72. Fang, D.Q. Identification of closely related citrus cultivars with intersimple sequence repeat markers / D.Q. Fang, M.L. Roose // Theor. Appl. Genet. -1997.-Vol. 95.-P. 408417.
  73. FAO Citrus Fruit Production // Food And Agriculture Organization (FAO) Of The United Nations. FAOSTAT, 2009. — Mode access: http://faostat.fao.org
  74. Farahani, F. Micrografting and micropropagation of olive (Olea europea L.) Iranian cultivar: Zard / F. Farahani, et al. // African Journal of Plant Science. -2011. Vol. 5(11). — Pp. 671−675.
  75. Febres, V. Citrus transformation: challenges and prospects / V. Febres et al. // [Electronic resourse]. 2011. — Mode access: www.intechopen.com
  76. Ford-Lloyd, B. Plant genetic resources: an introduction to their conservation and use / B. Ford-Lloyd, M. Jackson // London: Edvard Arnold Ltd., 1986.-152 pp.
  77. Garcia, R.M.J. Genetic analysis of apomixis in Citms and Poncirus by molecular markers / R.M.J. Garcia, J. Asins, E.A. Forner // Theor. Appl. Genet. 1999. — Vol. 99. — P. 511−518.
  78. Garcia-Luis, A. Explant orientation and polarity determine the morphogenic response of epicotyl segments of Troyer Citrange / A. Garcia-Luis et al.// Annals of Botan. 1999. — Vol. 84.-P. 715−723.
  79. Geier, T. Morphogenesis and plant regeneration from cultured organ fragments of Cyclamen persicum / T. Geier // Acta Hort. 1977. — Vol. 78. — P. 167−174.
  80. Germana, M. A. Somatic embryogenesis and plant regeneration from anther culture of C. aurantium and C. reticulata / M.A. Germana // Biologia -2003. Vol. 58. — P. 843−850.
  81. Giladi, I. A method for aseptic culture of bud explants from Citrus trees / I. Giladi, A. Altman, R. Goren // Scientia Horticulturae. 1979. — Vol. 10 (4).-P. 357−362.
  82. Giovanelly, A. Reinvigoration of mature chestnut (Castanea sativa) by repeated graftings and micropropagation / A. Giovanelly, R. Gianni // Tree Physiology. 2000. — Vol. 20. — Pp. 1243−1248.
  83. Gmitter, F.G. Citrus. Biotechnology of perennial fruit crops / F.G. Gmitter, J.W. Grosser, G.A. Moore // Oxon: CAB International, 1992. P. 335 369.
  84. Goh, C.J. Plantlet regeneration through different morphogenic pathways in pommelo tissue culture / C.J. Goh et al. // Plant Cell Tissue Organ Cult. 1995. — Vol. 43.-P. 301−303.
  85. Gulsen, O. Chloroplast and nuclear genome analysis of parentage of lemons / O. Gulsen, M.L. Roose // J. Am. Soc. Hort. Sci. 2001. — Vol. 126 (2). -P. 210−215.
  86. Gupta, M. Amplification of DNA markers from evolutionarily diverse genomes using single primers of simple-sequence repeats / M. Gupta et al. // Theor Appl Genet. 1994. — Vol. 89. — P. 998−1006.
  87. Hackett, W. P. Maturation and rejuvenation in woodyspecies. / W. P. Hackett, J. R. Murray // Micropropagation of Woody Plants / Ed. by M.R. Ahuja.Kluwer. Academic Publishers, Dordrecht, 1993. — Pp. 93−105.
  88. Han, S. H. Effect of embryogenic callus conditions on plant regeneration in Satsuma mandarin (Citrus unshiu Marc.) / S.H. Han, S.K. Kang, H.J., H.Y. Kim. // J. of Plant Biotechnology. 2002. — Vol. 4(1).- P. 29−32.
  89. Hancevic, K. The production of Citrus tristeza virus-free Zorica Rana, a Croatian selection of Satsuma mandarin / K. Hancevic, D.H. Musinov, S. Cerni // Journal of Food, Agriculture and Environment. 2009. — Vol. 7 (3, 4). — P. 254 257.
  90. Hao, Y. J. Occurrence of chromosomal variations and plant regeneration from long term cultured Citrus callus / Y.J. Hao, X.X. Deng. // In vitro Cellular and Developmental Biology Plant. — 2002. — Vol. 38 (5). — P. 472 480.
  91. Herman, E.B. Non-axenic plant tissue culture: possibility and opportunities / E.B. Herman // Acta Hort. 1990. — Vol. 280. — P. 233−248.
  92. Hopkins, W.G. Introduction to plant physiology / W.G. Hopkins // New York: John Wily & Sons Inc., 1995. P. 1−20.
  93. Hussein, E. Genetic analysis in some Citrus accessions using microsatellite and AFLP based markers / E. Hussein, S. Abd-Allaa, A. Awad, M. Hussein // Arab J. Biotech. 2003. — Vol. 2. — P. 202−223.
  94. Hvoslef-Eide, A.K. Effect of pre-storage conditions on storage of in vitro cultures of Nephrolepis exallata L. and Cordyline fruticosa L. / A.K. Hvoslef-Eide // Plant Cell Tiss. and Org. Cult. 1992. — Vol. 28. — P. 167−174.
  95. Jajoo, A. In vitro propagation of Citrus limonia Osbeck through nucellar embryo culture / A. Jajoo // Current Research Journal of Biological Sciences. 2010. — Vol. 2 (1). — P. 6−8.
  96. Jinren, Z. Studies on germplasm conservation in viti-o of plantlets and the changes of endogenous hormones in the process of conservation in Citrus plants / Z. Jinren et al. // China Papers. 2010. — Mode access: http://mt.chma-papers.com/l/?p=l 61 736
  97. Kameswara, R.N. Plant genetic resources: Advancing conservation and use through biotechnology / R.N. Kameswara // African Journal of Biotechnology. 2004. — Vol. 3 (2). — P. 136−145.
  98. Kanchanapoom, K. Micropropagation and in vitro germplasm conservation of endangered Musa balbisiana 'Kluai Hin' (BBB group) / K. Kanchanapoom, N. Promsorn // African Journal of Biotechnology. 2012. — Vol. 11 (24).-P. 6464−6469.
  99. Kitto, S.L. In vitro propagation of Carrizo citrange / S.L. Kitto, M.J. Young//Hort. Science. 1981.-Vol. 16.-P. 305−306.
  100. Khan, I.A. Frequency and characteristics of nucellar and zygotic seedlings in three cultivars of trifoliate orange / I.A. Khan, M.L. Roose // Journal of American Society for Horticultural Science. 1988. — Vol. 113. — P. 105−110.
  101. Kotsias, D. An investigation on the effect of different plant growth regulating compounds in in vitro shoot tip and node culture of lemon seedlings / D. Kotsias, P.A. Roussos // Sci. Hortic. 2001. — Vol. 89. — P. 115−128.
  102. Koltunow, A.M. Anther, ovule, seed, and nucellar embryo development in Citrus sinensis cv. Valencia / A.M. Koltunow, K. Soltys, N. Nito et al. // Can. J. Bot. 1995. — Vol. 73.-P. 1567−1582.
  103. Krueger, R.R. Use of molecular markers in management of citrus germplasm resources / R.R. Krueger, M.L. Roose // Jour, of the Amer. Soc. for Hort. Sci. 2003. — Vol. 128 (6). — P. 827−837.
  104. Kumar, S. ISSR polymorphism in Indian wild orange (Citrus indica Tanaka, Rutaceae) and related wild species in North-east India / S. Kumar, S.N.
  105. Jena, N.K. Nair // Sci. Hortie. 2010. — Vol. 123 (3). — Mode access: http://www.researchgate.net/
  106. Kumar, G. In vitro micropropagation of different species of Citrus / G. Kumar, R. Srivastara // Research J. of Biotech. 2012. — Vol. 7 (4). — P. 96.
  107. Kwaitkowski, S. Serial microtuber formation as a long-term conservation for in vitro potato germplasm / S. Kwaitkowski, M.V. Martin, C.R. Brown // Amer. Pot. J. -r-1988. Vol. 65. — P. 369−375.
  108. Kwapata, M. Micropropagation: principe et technique. / La multiplication vegetative des ligneux en agroforesterie, World agroforestry Centre, ICRAFT, 2003.-P. 142.
  109. Lane, W.D. Regeneration of apple plants from shoot meristem tips / W. D. Lane // Plant Sci Lett. 1978. — Vol. 13. — P. 281−285.
  110. Lata, H. In vitro germplasm conservation of Podophyllum peltatum L. under slow growth conditions / H. Lata et al. Il In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant. -2010.-Vol. 46.-P. 22−27.
  111. Leakey, R. R. B. Physiology of vegetative reproduction / R. R. B. Leakey // Encyclopedia of Forest Sciences, 2004. Electronic resourse. roger. [email protected].
  112. Lin, R. In Vitro Conservation Of Germplasm By Tube Plantlets And The Related Physiological And Anatomical Studies In Citrus In Fujian Province / R. Lin // Electronic journal. 2007. — Mode access: http://www.globethesis.com/
  113. Lipavska, H. Uptake of mannitol from media by in vitro grown plants / H. Lipavska, D. Vreugdenhil // Plant Tiss. And Org. Cult. 1996. — Vol. 45. — P. 103−107.
  114. Liu, X. Clonal propagation of guava (Psidium guajava L.) on nodal expiants of mature elite cultivar / X. Liu, G. Yang // Electronic resource. 2011. — Mode access: http://www.pagepress.org/
  115. Lloyd, G. Commercially-feasible micropropagation of mountain laurel, Kalmia latifolia, by use of shoot tip culture / G. Lloyd, B. McCown // Combined Proceedings of the International Plant Propagators' Society. 1981. — Vol. 30. — P. 421427.
  116. Maggon, R. Promotion of adventitious bud regeneration by ABA in combination with BAP in epicotyls and hypocotyl expiants of sweet orange (Citrus sinensis L. Osbeck) / R. Maggon, B.D. Singh // Sci Hortic. 1995. — Vol. 63. — P. 123−128.
  117. Malaurie, B. Medium-term and long-term in vitro conservation and safe international exchange of yam {Dioscorea spp.) germplasm / B. Malaurie // Electronic resource. 1998. — Mode access: http://eib.ucv.cl/
  118. Marin, M.L. Conservation of Citrus germplasm in vitro / M.L. Marin, N. Duran-Vila // Am. Soc. Hort. Sei. 1991.-Vol. 116.-P. 740−746.
  119. Mauk, P.A. Questions and Answers to Citrus Management / P.A. Mauk, T. Shea // California: UCCE Riverside County, 1994. 3rd Ed. — Mode access: http://homeorchard.ucdavis.edu/
  120. Mngomba, S.A. Efficacy and utilization of fungicides and other antibiotics for aseptic plant cultures / S.A. Mngomba et al. // Fungicides for Plant and Animal Diseases. —2012. Mode access: http://www.intechopen.com.
  121. Moges, A. D. Slow growth in vitro preservation of African violet {Saintpaulia ionantha Wendl.) shoot tips / A.D. Moges, N.S. Karam, R.A. Shibli // Advanced in Hort. Sei. 2003. — Vol. 17. — P. 1−8.
  122. Montalvo-Peniche, M.C. In Vitro germplasm conservation of Habanero pepper (iCapsicum chinense Jacq.) / M.C. Montalvo-Peniche et al. // Hort. Science. 2007. — Vol. 42 (5). — P. 1247−1252.
  123. Mukhtar, R. In Vitro Regeneration and Somatic Embryogenesis in {Citrus aurantifolia and Citrus sinensis) / R. Mukhtar, M.M. Khan, R. Rafiq // Internat. J. of Agricul. and Biol. -2005. Vol. 07 (3). — P. 518−520.
  124. Murashige, T. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures / T. Murashige, F. Skoog // Physiol. Plant. 1962. — Vol. 15.-P. 473−497.
  125. Murashige, T. Growth factor requirements of citrus tissue culture / T. Murashige, D.P.F. Tucker // Proc. lst Intl. Citrus Symp. / ed. by H.D. Chapman. -Univ. of California, Riverside, 1969.-Vol. III.-P. 1155−1161.
  126. Murashige, T. A technique of shoot apex grafting and its utilization towards recovering virus-free Citrus clones / T. Murashige et al. // Hort. Science. -1972.-Vol. 7.-P. 118−119.
  127. Nax, A.A. In vitro studies on micrografting techniquein two cultivars of citrus to produce virus free plants / A.A. Nax, M.J. Jaskani, H. Abbas, M. Qasim // Pak. J. Bot. 2007. — Vol. 39 (5). — P. 1773−1778.
  128. Navarro, L. Improvement of shoot-tip grafting in vitro for virus free citrus / L. Navarro, C.N. Roistacher, T. Murashige // Americ. Soc. Hort. Sei. -1975.- Vol. 100.-P. 471−479.
  129. Navarro, L. Citrus shoot-tip grafting in vitro and its application: a review. / L. Navarro // Proc. Int. Citriculture. 1981. — Vol. 1. — P. 452156.
  130. Navarro, L. Aberrant citrus plants obtained by somatic embryogenesis of nucellus cultured in vitro / Navarro L., Ortiz J., Juarez J. // Hort. Science. -1985.-Vol. 20.-P. 21.4−215.
  131. Navarro, L. Aberrant citrus plants obtained by somatic embryogenesis of nucelli cultured in vitro / L. Navarro, J. M. Ortiz, J. Juarez // Hort. Science. -1985.-Vol. 20.-P. 214−215.
  132. Navarro, L. Application of shoot-tip grafting in vitro into woody species / L. Navarro // Acta Horticult. 1988. — Vol. 227. — P. 43−55.
  133. Navarro, L. Therapy and citrus improvement. Improving therapy methods for citrus germplasm exchange / L. Navarro, E. L. Civerolo, J. Juarez, S. M. Garmsey // Proc. 9th Conf. of Int. Org. of Citrus Virologists. IOCV Riverside, 1991.-P. 400−408.
  134. Navarro, L. Citrus shoot tip grafting in vitro / L. Navarro // Biotechnology in Agr. and Forestry. 1992. — Vol. 18. — P. 327−338.
  135. Negash, A. In vitro conservation of enset under slow-growth conditions / A. Negash et al. // Plant Cell, Tissue and Organ Culture 2001. -Vol. 66.-P. 107−111.
  136. Niang, D. In vitro micrografting of Sterculia setigera Del. / D. Niang, et al. // African Journal of Biotechnology. -2010. Vol. 9(50). — Pp. 8613−8618.
  137. Niedz, R.P. Control of in vitro contamination of explants from greenhouse- and field-grown trees / R.P. Niedz, M.G. Bausher // In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant. -2002. -Vol. 38. P. 468−471.
  138. Niedz, R.P. Regeneration of somatic embryos from sweet orange (C. sinensis) protoplasts using semipermeable membranes / R.P. Niedz // Plant Cell Tiss. Org. Cult. 2006. — Vol. 84. — P. 353−357.
  139. Nito, N. In Vitro plantlet formation from juice vesicle callus of Satsuma (Citrus imshiu Marc.) / N. Nito, M. Iwamasa // Plant Cell Tiss. Org. Cult. -1990.-Vol. 20.-P. 137−140.
  140. Oh, S.D. In vitro micropropagation of Yooza (Citrus junos) 1. Plant regeneration from callus induction from shoot tips / S.D. Oh, W.S. Song, J.S. Kim, E.H. Park. // J. of Korean Society for Hort. Sci. 1991. — Vol. 32 (1). — P. 87−96.
  141. Omura, M. Shoot tip culture of citrus. Culture condition / M. Omura, T. Hidaka // Bull. Fruit Tree Res. Stat. 1992. — Vol. 22. — P. 23−26.
  142. Orlikowska, T. Effect of in vitro storage at +4 °C on survival and proliferation of two apple rootstocks / T. Orlikowska // Plant Tiss. And Organ Cult. 1992. — Vol. 31. — P. 1−7.
  143. Ou, Y.J.S Studies On Ultrastructure And Calcium Distribution During In Vitro Conservation Of Plantlets In Citrus Microcarpa / Y.J.S Ou // Electronic journal. 2011. — Mode access: http://www.globethesis.com/
  144. Paudial, K.P. In vitro propagation of pummelo (C. grandis L. Osbeck) / K. P. Paudial, N. Haq // In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant. 2000. — Vol. 36. — P. 511−516.
  145. Payghamzadeh, K. In vitro propagation of walnut / K. Payghamzadeh // African Journal of Biotechnology. 2011. — Vol. 10 (3). — P. 290−311.
  146. Perez-Tornero, C.I. An efficient protocol for micropropagation of lemon (Citrus limon) from mature nodal segments / C.I. Perez-Tornero, I. Talion, I. Porras //Plant Cell Tiss. Organ Cult. -2010. Vol. 100. — P. 263−271.
  147. Perez-Tornero, O. Medium-term storage of apricot shoot tips in vitro minimal growth methods / O. Perez-Tornero, F. Ortin-Parraga, J. Egea, L. Burgos // HortScience. 1999. — Vol. 34. — P. 1277−1278.
  148. Perez-Tornero, O. Assessment of polyembryony in lemon: rescue and in vitro culture of immature embryos / O. Perez-Tornero, I. Porras // Plant Cell Tissue Organ Cult. 2008. — Vol. 93 (2). — P. 173−180.
  149. Perez-Clemente, R.M. In vitro tissue culture approaches for the study of salt stress in citrus / R.M. Perez-Clemente, A. Montoliu, P. Lopez et al. // Biosaline Agriculture and High Salinity Tolerance. 2008. — P. 37−42.
  150. Perez-Molphe-Balch, E. In vitro plant regeneration of Mexican lime and mandarin by direct organogenesis / E. Perez-Molphe-Balch, N. Ochoa-Alejo // HortSci. 1997. -Vol. 32. — P. 931−934.
  151. Perrier, X. DARwin software / X. Perrier, J. Jacquemoud-Collet // Electronic resource. 2006. — Mode access: http://darwin.cirad.fr/darwin.
  152. Rahman, M.M. In vitro propagation of banyan tree (Ficus benghalensis L.) A multipurpose and keystone species of Bangladesh /M.M. Rahman, M.N. Amin, M.F. Hossain // Plant Tissue Cult. Biotech. — 2004. — Vol. 14 (2).-P. 135−142. ¦
  153. Ramage, C.M. Inorganic nitrogen requirements during shoot organogenesis in tobacco leaf discs / C. M. Ramage, R.R.Williams // J. Exp. Bot. -2002.-Vol. 53.-P. 1437−1443.
  154. Randall, P. In vitro gennination of Citrus seed / P. Randall // Proc. Fla. State Hort. Soc.-2008.-Vol. 21.-P. 148−151.
  155. Rangan, T.S. In vitro initiation of nucelar embryos in monoembryonic citrus / T. S. Rangan, T. Murashige, W. P. Bitters // Hort. Science. 1968. — Vol. 3.-P. 226−227.
  156. Rathore, J.S. Micropropagation of mature tree of Citrus limon / J.S. Rathore, M. S Rathore, M. Singh et al. II Indian journal of biotechnology. 2007. -Vol 6.-P. 239−244. ¦
  157. Reed, B.M. Improved survival of in vitro stored Rubus germplasm / B.M. Reed // J. Am. Hort. Sci. 1993. — Vol. 118. — P. 890−895.
  158. Reed, B.M. Cryopreservation and long-term storage of pear germplasm / B.M. Reed et al. // In vitro Cell. Dev. Biol. Plant. — 1998. — Vol. 34. — P. 256−260.
  159. Reed, B.M. In vitro storage conditions for mint germplasm / B.M. Reed //Hort. Science. 1999. — Vol. 34. — P. 350−352.
  160. Revilla, M.A. In vitro reinvigoration of mature oil tree (Olea europaea L.) through micrografting / M. A. Revilla, et al. // In vitro Cell. Dev. Biology-Plant. 1996. — Vol. 32. — Pp. 257−261.
  161. Saini, H. K. Direct shoot organogenesis and plant regeneration in rough lemon (Citrus jambiri Lush.) / H. K. Saini, M. S. Gill, M. I. S. Gill // Indian Journal of Biotechnology. 2010. -Vol. 9.-P. 419−423.
  162. Samanhudi, In vitro axillary bud multiplication of Citrus nobilis Lour, in Indonesia / Samanhudi, S. A. Tetrani, M. Rahayu // Journal of Life Sciences. -2010. Vol. 4 (4). — P. 39−44.
  163. Sanogo, D. Micropropagation et rajeunissement in vitro de Khaya senegalensis (Desr.) Juss. / D. Sanogo // Memoire de DEA de Biologie Vegetale, F ST, UCAD. 1995. — P. 65.
  164. Savidan, Y. Apomixis genetics and breeding / Y. Savidan // Plant Breeding Reviews.-2000. -Vol. 18.-P. 13−85.
  165. Sarkar, D. Factors affecting minimal growth conservation of potato microplants in vitro / D. Sarkar, P.V. Naik // Euphytic. 1998. — Vol. 102. — P. 275−280.
  166. Saunt, J. Citrus varieties of the world / J. Saunt // England, Sinclair International Ltd., 1990.-P. 126.
  167. Shahsavar, A.R. Characterization of Citrus germplasm including unknown variants by inter-simple sequence repeat (ISSR) markers / A.R. Shahsavar et al. // Sei. Hortic. 2007. — Vol. 112. — Mode access: http://pubget.com
  168. Shailendra, V. In vitro adventitious shoot bud differentiation and plantlet regeneration in Feronia limonia. L. (Swingle) / V. Shailendra et al. // In Vitro Cell. Dev. Bio Plant. — 2005. — Vol. 41. — P. 296−302.
  169. Shankar, A.A. Evaluation of inter-simple sequence repeat analysis for mapping in Citrus and extension of the genetic linkage map / A.A. Shankar, G.A. Moore // Theor. Appl. Genet. -2001. Vol. 102. — P. 206−214.
  170. Sharma, S. Production of Indian citrus ringspot virus free plants of Kinnow employing chemotherapy coupled with shoot tip grafting / S. Sharma et al. // J. Of Central European Agriculture. 2007. — Vol. 8 (1). — P. 1−8.
  171. Sharma, S. In vitro propagation of citrus rootstocks / S. Sharma, A. Prakash, A. Tele // Not. Bot. Hort. Agrobot. Cluj. 2009. — Vol. 37 (1). — P. 8488.
  172. Shibli, R.A. In vitro acclimatization of Ciysantemum morifolium Ramat. after in vitro water stress / R.A. Shibli // Plant Tiss.Cult. 1991 — Vol. 1. -P. 97−100.
  173. Shibli, R.A. Osmotic adjustment and growth responses of three (Chrysanthmum morifolium Ramat.) cultivars to osmotic stress induced in vitro / R.A. Shibli, L.A. M. Smith, A.L. Spomer // J. Plant Nutr. 1992. — Vol. 15. — P. 1373−1381.
  174. Shibli, R.A. Slow growth in vitro conservation of bitter almond (Amigdalus communis L.) / R.A. Shibli et al. II Advanced in Hort. Sei. 1999. -Vol. 13.-P. 33−34.
  175. Shibli, R.A. Criopreservation of 'Nabali' olive {Olea europeae L.) somatic embrios by encapsulation-dehydration and encapsulation-vitrification / R.A. Shibli, K.A. Al-Juboory // Cryoletters. 2000. — Vol. 21. — P. 357−366.
  176. Shibli, R. A. In vitro conservation of plant genetic resourses: a review / R. A. Shibli et al. // World J. of Agricultural Sci. 2006. — Vol. 2 (4). — P. 372 382.
  177. Singh, B. In vitro micrografting for the production of Indian citrus ringspot virus (ICRSV) free plants of kinnow mandarin (iCitrus nobilis Lour X C. deliciosa Tenora) / B. Singh et al. // Plant Biotechnol. Rep. — 2008. — Vol. 2 — P. 137−143.
  178. Singh, I.P. Comparative growth of mycrografted plantlets and seedlings of citrus varieties / LP. Singh, V.A. Parthasarathy // Agrotrypica. 2003. -Vol. 15 (1). — P. 9−16.
  179. Singh, S. In Vitro Propagation of Citrus reticulata Blanco and Citrus limon Burm. / S. Singh et al. // Hort. Science. 1994. — Vol. 29 (3). — P. 214 216.
  180. Singh, S. Citrus biotechnology: Achievements, limitations and future directions / S. Singh, M.V. Rajam // Physiol. Mol. Biol. Plants. 2009. — Vol. 15(1).-P. 3−22.
  181. Singh, S. Highly efficient and rapid plant regeneration in Citrus sinensis / S. Singh, M. V. Rajam // J. Plant Biochemistry & Biotechnology. 2010. -Vol. 19 (2).-P. 195−202.
  182. Siragusa, M. The genetic variability of Sicilian lemon germplasm revealed by molecular marker fingerprints / M. Siragusa, F. De Pasquale, L. Abbate // J. Amer. Soc. Hort. Sci. 2008. — Vol. 133 (2). — P. 242−248.
  183. Smith, M.K. Current applications of tissue culture in plant propagation and improvement / M.K. Smith, R.A. Drew // Australian Journal of Plant Physiology. 1990. — Vol. 17. — P. 267−289.
  184. Spolaore, S. A simple protocol for transient gene expression in ripe fleshy fruit mediated by Agrobacterium / S. Spolaore, L. Trainotti, G. Casadoro // Exp. Bot. -2001.- Vol. 52. P. 845−850.
  185. Tahtamouni, R.W. Preservation at low temperature and cryopreservation in wild pear (Pyrus siriaca) / R.W. Tahtamouni, R.A. Shibli // Advansed in Hort. Sci. 1999.-Vol. 13.-P. 156−160.
  186. Thanh, N.N. Micropropagation of «Volkamer» lemon (C. Volkameriana) as citrus rootstock / N.N. Thanh, C.N. Minh. // Electronic resource. -2010. Mode access: http://www.ctu.edu.vn/
  187. Tomaz, M.L. Somatic embryogenesis in Citrus spp.: carbohydrate stimulation and histodifferentiation / M.L.Tomaz, B.M.J. Mendes, F.D.A. Mourao et al. // In Vitro Cell Dev. Biol. Plant. 2001. — Vol. 37. — P. 446152.
  188. Usman, M. In vitro multiple shoot induction from nodal expiants of citrus cultivars / M. Usman, S. Muhammad, B. Fatima // Cent. Eur. Agric. 2005. -Vol. 6.-P. 435−442.
  189. Van Hoof, P. Methode pratique de culture de meristemes de fraisiers / P. Van Hoof // Bulletin de la Societe Royale Botanique Belge. 1974. — Vol. 107. — P. 5−6.
  190. Van Le, B. High frequency shoot regeneration from trifoliate orange (Poncirus trifoliata L. Raf.) using the thin cell layer method / B. Van Le et al. // Life Sciences. 1999. — Vol. 322. — P. 11 056−11 111.
  191. Wang, P.J. Micropropagation through meristem culture / P.J. Wang, A. Charles // Biotechnology in agriculture and forestry. High-Tech and propagation. 1991. — Vol. 17. — P. 32−52.
  192. Wang, Z.C. In vitro conservation of Citrus germplasm / Z.C. Wang // Electronic journal. 2004. — Mode access: http://www.globethesis.com/.
  193. Wilson, S.B. Media composition and light effect storability and post storage recovery of micropropagated Hosta plantlets / S.B. Wilson, N.C. Rajapakse, R.E. Young // Annual Review of Plant Physic. 2000. — Vol. 29. — P. 121−148.
  194. Wochok, Z.S. Gibberellic acid promotes Atriplex shoot multiplication and elongation / Z.S. Wochok, C.J. Sluis // Plant. Sci. Lett. 1980. — Vol.17. — P. 363−369.
  195. Withers, L.A. The test tube genebank a safe alternative to field conservation / L.A. Withers J.M.M. Engels // IBPGR Newsl. for Asia and the Pacific. — 1990. — Vol. 3. — P. 1−2.
  196. Zandvoort, E.A. In vitro storage of Xanthosoma spp. under minimal growth conditions / E.A. Zandvoort, M.J.H. Hulshof, G. Staritski // Plant Cell Tiss. And Org. Cult. 1994. — Vol. 36. — P. 309−316.
  197. Zhang, J. Studies On Germplasm Conservation In Vitro Of Plantlets And The Changes Of Endogenous Hormones In The The Process Of Conservation In Citrus Plants / J. Zhang // Electronic journal. 2009. — Mode access: http://www.globethesis.com/
Заполнить форму текущей работой

На отлично!