Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Ответ генетически нестабильной сперматогенной системы ускоренно стареющих мышей линии SAMP1 на мутагенное воздействие

Диссертация: Ответ генетически нестабильной сперматогенной системы ускоренно стареющих мышей линии SAMP1 на мутагенное воздействие
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Несмотря на то, что многие фундаментальные закономерности процессов становления, развития, размножения, роста и созревания сперматогенных клеток уже хорошо изучены на всех уровнях организации живого, исследовательская активность в области мужского гаметогенеза продолжает оставаться очень высокой. Это связано не только с чисто познавательным интересом к этой узловой проблеме биологии, но диктуется… Читать ещё >

Содержание

  • I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Сперматогенез у млекопитающих
      • 1. 1. 1. Происхождение и развитие половых клеток
      • 1. 1. 2. Стволовые сперматогониальные клетки
      • 1. 1. 3. Развитие мужских половых клеток в базальном (сперматогониальном) компартменте
      • 1. 1. 4. Стадия роста половых клеток или мейоз
      • 1. 1. 5. Спермиогенез: процесс постмейотического созревания мужских половых клеток
      • 1. 1. 6. Роль клеток Сертоли и Лейдига в поддержании развития половых клеток и регуляция сперматогенного процесса
    • 1. 2. Биологическая модель ускоренного старения
    • 1. 3. Особенности сперматогенного процесса у ускоренно стареющих мышей линий SAM
    • 1. 4. Биологические эффекты дипина
  • II. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ
    • 11. 1. Постановка эксперимента
    • 11. 2. Фиксация материала, приготовление и окраска препаратов
    • 11. 3. Цитогенетические методы
      • 11. 3. 1. Метод учета сперматогониальных и мейотических микроядер (микроядерный тест)
      • 11. 3. 2. Метод учета аномалий форм головок спермиев
    • 11. 4. Цитоспектрофотометрический анализ
    • 11. 5. Авторадиография
    • 11. 6. Статистическая обработка данных
  • III. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 111. 1. Динамика изменения веса животных
    • 111. 2. Динамика изменения массы гонад
    • 111. 3. Цитогенетический анализ сперматогенеза
  • III. 3.1. Морфология ядерных и хромосомных нарушений в развивающихся сперматогенных клетках
  • III. 3.2. Оценка частоты возникновения микроядерных аберраций в сперматогониальных клетках и округлых сперматидах
  • III. 3.3. Оценка частоты встречаемости тестикулярных спермиев с морфологически аномальными головками
    • 111. 4. Количественный анализ клеток сперматогенного эпителия
    • 111. 5. Цитоспектрофотометрический анализ содержания ДНК-фуксина в спермато генных клетках
    • 111. 6. Сравнительное изучение пролиферативной активности клеток Сертоли
    • 111. 7. Гистологический анализ структуры сперматогенного эпителия
  • IV. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ
  • V. ВЫВОДЫ

Ответ генетически нестабильной сперматогенной системы ускоренно стареющих мышей линии SAMP1 на мутагенное воздействие (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Сперматогенез — высокопродуктивный, многофазный, имеющий строгую пространственно-временную организацию биологический процесс, регуляция которого очень сложно организована. Актуальность его всестороннего изучения очевидна. Кроме того, система развития МПК представляет собой удобную модель для изучения разных проблем экспериментальной эмбриологии, клеточной биологии, генетики, биологии размножения.

Несмотря на то, что многие фундаментальные закономерности процессов становления, развития, размножения, роста и созревания сперматогенных клеток уже хорошо изучены на всех уровнях организации живого, исследовательская активность в области мужского гаметогенеза продолжает оставаться очень высокой. Это связано не только с чисто познавательным интересом к этой узловой проблеме биологии, но диктуется необходимостью решения постоянно расширяющегося круга актуальных практических задач, имеющих большое медико-биологическое и социальное значение. А именно — преодоление мужского бесплодия, изучение последствий действия повреждающих факторов окружающей среды, в том числе фактора времени, химиотерапии, а также усовершенствование методов искусственного оплодотворения, криоконсервации, трансплантации половых клеток, эффективного управления размножением сельскохозяйственных животных и вредных насекомых (Рузен-Ранге, 1980; Hecht, 1998; McCarrey, 1998; Захидов, 1998; Hovatta, 2001; Khor-ram et al., 2001; Meachem et al., 2001; Brinster, 2002; Hardy et al., 2002; Gosden, Nagano, 2002; Liu, Handelsman, 2003).

Ускоренно стареющие мыши SAM (senescence-accelerated mouse), проявляющие все признаки раннего физиологического угасания, были получены японскими исследователями (Takedaetal., 1981,1994,1997а, б) путем близкородственного скрещивания и длительного отбора мышей линии AKR/J, страдающих наследственной формой вирусной лейкемии. В последние годы линии мутантных ускоренно стареющих мышей широко используются как модель для изучения механизмов, лежащих в основе нормального старения и его патологических форм, причин возникновения возрастных старческих болезней, а также для проверки эффективности средств, направленных на улучшение качества жизни и ее продление (Takeda et al., 1997а, bЗахидов, 2003). Уникальной особенностью мышей линий SAM, выгодно отличающей их от других моделей ускоренного старения (Takeda et al., 1981; Troen, 2003; Warner, Sierra, 2003), является передача признака ускоренного старения по наследству.

Предыдущие онтогенетические исследования сперматогенеза у ускоренно стареющих мышей SAM, в том числе мышей линии SAMP1 (senescence-accelerated mouse prone), создали надежную основу для развертывания широких экспериментальных исследований (Гордеева и др., 2001; Захидов и др., 1999, 2001а, б, 20 026- Гопко и др., 2003; Кулибин и др., 2005). Сперматогенная система мышей линии 8АМР1, склонных к ускоренному старению, имеет свои специфические особенности, основной среди которых является сочетание сравнительно нормального течения сперматогенного процесса с высоким уровнем генетической нестабильности, значительно превышающим интенсивность спонтанного, естественного мутагенеза у нормально стареющих животных (Захидов и др., 2001а, 20 026, 2005).

До сих пор никто не анализировал перспективу развития МПК у ускоренно стареющих мышей линии 8АМР1 после мутагенного вмешательства. Между тем, важность таких исследований не вызывает сомнения, поскольку многое реальное в структуре строго детерминированного сперматогенного процесса остается закрытым для прямых наблюдений. Экспериментальный мутагенез позволяет глубоко проникнуть в сущность многих генетических и биологических явлений, индуцировать аномальное течение морфогенетических процессов и нарушение их регуляции. На этом фоне можно увидеть и познать закономерности, действующие только в условиях катастрофических изменений в строении и функционировании сложных биологических систем, неопределенности и нестабильности их развития.

Ранее было показано (Захидов, 1993; Захидов, Гордеева, 1998; Захидов и др., 1999), что в гонадах грызунов под влиянием генетически активных соединений разворачиваются два процессаразрушительный, ведущий к появлению большого числа генетически аномальных клеток и массивной клеточной гибели, и созидательный, восстанавливающий нормальное течение сперматогенеза за счет пула стволовых сперматогониальных клетокудалось впервые показать способность к пролиферации высокодифференцированных клеток Сертоли (Захидов и др., 1995), что принципиально меняет представления не только о свойствах данной клеточной популяции, но и о возможных путях восстановления сперматогенеза.

В этой связи исследования сперматогенеза у мышей 8АМР1, развивающихся по механизму ускоренного старения, проводимые на базе химического мутагенеза, имеют огромную познавательную ценность. Они, в частности, дают возможность достичь результатов, отвечающих на принципиальный вопрос: будет ли после мутагенного воздействия динамически неустойчивая сперматогенная система «вдвойне мутантна» или и без того чрезвычайно высокий уровень генетической нестабильности преодолеть не удастся.

Цель настоящей работы — изучение динамики сперматогенеза у мышей линии 8АМР1, склонных к ускоренному старению, подвергшихся однократному воздействию модельного мутагена дипина.

Цель исследования предусматривает решение следующих основных задач:

• Изучение особенностей индуцированного мутагенеза в системе развития мужских половых клеток.

• Количественная характеристика сперматогенных клеток различных типов и фолликулярных клеток Сертоли.

• Изучение особенностей строения сперматогенного эпителия.

• Цитоспектрофотометрический анализ содержания ДНК в мейотических и постмейоти-ческих клетках.

• Сравнительное изучение пролиферативной активности клеток Сертоли.

I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1. Генетическая чувствительность к действию дипина развивающихся сперматогенных.

клеток у ускоренно стареющих мышей линии SAMP1 неодинакова. Наиболее уязвимыми.

оказались профазные сперматоциты (стадия прелептотены-лептотены) и стволовые.

сперматогонии. 2. Хромосомные повреждения, индуцированные в клетках стволового компартмента, носят.

необратимый характер. Количество сперматогониальных и мейотических микроядерных.

аберраций на отдаленных сроках последействия (35−100 сут фиксации) существенно.

превышает уровень спонтанной хромосомной мутабильности. 3. Регрессивные количественные и морфологические изменения в сперматогенном.

эпителии после мутагенного вмешательства развиваются постепенно: только на 28 и 35.

сут фиксации клеточные потери и дезорганизация системы развития мужских половых.

клеток достигают пика. Восстановление сперматогенеза в большинстве канальцев.

происходит на 56 сут последействия. 4. Повышенную цитотоксическую чувствительность к действию мутагена проявили часть.

стволовых клеток, сперматогонии типа А.2-^, сперматоциты на стадии ранней пахитены.

и диплотены-диакинезаболее устойчивыми оказались сперматогонии типа Арг-АаЬ.

сперматоциты на стадии прелептотены-зиготены, поздней пахитены, а также округлые,.

удлиняющиеся сперматиды и спермии. Массивная гибель половых клеток приводит к усилению пролиферации уцелевших.

стволовых сперматогониев. 5. Восстановление сперматогенной системы происходит за счет деятельности двух систем.

регенерации: стволовых сперматогониальных клеток и клеточных элементов сети.

семенника (rete testis). 6. Появление у подопытных мышей линии SAMP1 в популяции клеток Сертоли.

единичных митотических фигур и меченных №-тимидином ядер указывает на.

способность этих высокодифференцированных клеток к пролиферации. Эта тенденция.

выражена значительно слабее, чем у мышей, развивающихся по механизму нормального.

физиологического старения. 7. Усиление генетической нестабильности стволовых сперматогониальных клеток в.

результате мутагенного воздействия не приводит к необратимой дезинтеграции.

структуры сперматогенного эпителия. В конечной точке эксперимента (100 сут.

фиксации) количественная, морфологическая и цитохимическая картина сперматогенеза.

принципиально не отличается от контроля. 8. У контрольных и подопытных животных в возрасте 6−7 мес одинаково наступает фаза.

дезорганизации сперматогенного эпителия, что доказывает ее детерминированность для.

сперматогенного процесса у ускоренно стареющих мышей.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Агроскин J1. C, Бродский В .Я., Бабаян Г. В. Стандарт в цитофотометрии // Цитология. 1976. Т.18. С. 512−521.
  2. А.А., Юнева М. О., Сорокина Г. Г., и др. Антиоксидантные системы в тканях мышей линии SAM (Senescence Accelerated Mice), характеризующиеся ускоренным процессом старения// Биохимия. 2001. Т.66. № 10. С.1430−1437.
  3. ГабаеваН.С. О строении и функциях фолликулярного эпителия семенников позвоночных // в кн. Современные проблемы сперматогенеза, М.: Наука. 1982. С.108−159.
  4. А.В. Изучение сперматогенеза у мышей с ускоренным старением // Автореф. Дис. Канд. Биол. Наук. М.: МГУ. 2005.
  5. А.В., Захидов С. Т., Маршак T.JL, и др. Генетическая нестабильность мужских половых клеток у мышей-долгожителей SAMP1, склонных к ускоренному старению // Док. РАН. 2003. Т.392. № 2. С.267−270.
  6. О.Ф. Особенности развития мужских половых клеток у ускоренно стареющих мышей линии SAM (senescence-accelerated mouse) //Автореф. Дис. Канд. Биол. Наук. М.: МГУ. 2000.
  7. JI.B. Сперматогонии, сперматоциты, сперматиды // в кн. Современные проблемы сперматогенеза. М.: Наука. 1982. С.25−72.
  8. Е.И., Буеверова Э. И., Паюшина О. Д., Старостин В. И. Повреждение алкилирующим препаратом дипином кроветворных и стромальных клеток костного мозга // Изв. РАН. Сер. Биол. 2005. № 3. С.267−272.
  9. Е.Е., Семёнова И. В., Караченцев Д. Н., и др. Корреляция выживаемости эмбриональных фибробластов и их пролиферативного потенциала с продолжительностью жизни мышей различных линий // Биологические мембраны. 2000. Т.17. С.685−688.
  10. С.Т. Процессы нормального и атипичного сперматогенеза у животных// Автореф. Дис. Докт. Биол. Наук. М.: МГУ. 1993.
  11. С.Т. Современные достижения в исследованиях проблемы сперматогенеза // Проблемы репродуктивной биологии в трудах профессора С. И. Кулаева и его последователей. М.: МГУ. 1998. С.234−259.
  12. С.Т. Генетическая теория старения // в кн. Синергетика. М.: МГУ, труды семинара. 1999а. Т.2. С.185−193.
  13. С.Т. Развитие с ускоренным старением // в кн. Синергетика. М.: МГУ, труды семинара. 2003. Т.6. С.155−161.
  14. С.Т. Специфика процессов хаотизации самоорганизации в системах генетического мира // «Синергетика в решении проблем человечества XXI века — диалог школ»: материалы международного симпозиума. 2004.
  15. С.Т., Гопко А. В., Маршак Т. Л., и др. Количественные закономерности мутационного процесса в сперматогенезе мышей линий SAM (senescence-accelerated mouse) // Биологические механизмы старения, IV международный симпозиум, Харьков. 2000. С. 86.
  16. С.Т., Гопко А. В., Семенова M.JL, и др. Карнозин как фактор, модифицирующий частоту встречаемости генетически аномальных половых клеток в семенниках ускоренно стареющих мышей SAM // Бюлл. Эксп. Биол. и Мед. 2002а. Т.134. № 7. С.89−92.
  17. С.Т., Гордеева О. Ф. Особенности развития мужских половых клеток у мышей, подвергшихся действию химических мутагенов дипина и нитрозометилмочевины (НММ) в пренатальном периоде // Док. РАН, 1998. Т.362. № 1. С.127−129.
  18. СТ., Гордеева О. Ф., Маршак Т. Л. Биологическая модель ускоренного старения. I. Темп спонтанного мутационного процесса в сперматогенезе у мышей линии SAM (senescence-accelerated mouse) // Изв. РАН. Сер. Биол. 2001а. № 1. С.23−30.
  19. С.Т., Маршак Т. Л., Голиченков В. А. Возможность перехода высоко дифференцированных клеток Сертоли к пролиферации после действия химических мутагенов // Док. РАН. 1995. Т.344. № 5. С.692−694.
  20. С.Т., Маршак Т. Л., Урываева И. В., и др. Цитогенетические аберрации в клетках печени и сперматогенного эпителия у ускоренно стареющих мышей линий SAMP1 и SAMR1 // Онтогенез. 20 026. Т.ЗЗ. № 6. С.444−456.
  21. С.Т., Маршак Т. Л., Хода Х. А. Махран, Голиченков В.А. Влияние химических мутагенов на свойства хроматина сперматогенных клеток мышей // Изв. РАН. Сер. Биол.1994а. № 5. С.725−731.
  22. Захидов С. Т, Паранюшкина Л. П, Хода Х. А. Махран, Эль-Саед Касем Абдель-Хади, Голиченков В. А. Влияние химических мутагенов на сперматогенез млекопитающих. Цитогенетический анализ // Изв. РАН. Сер. Биол. 19 946. № 3. С.353−362.
  23. Захидов С. Т, Паранюшкина Л. П, Хода Х. А. Махран, Эль-Саед Касем Абдель-Хади, Голиченков В. А. Влияние химических мутагенов на сперматогенез млекопитающих. Количественная оценка // Изв. РАН. Сер. Биол. 1994 В. № 6. С.870−879.
  24. Захидов С. Т, Семенова M. JT, Гордеева О. Ф, Беляева A.A. Сперматогенез у мышей линии SAMP1, склонных к ускоренному старению // Док. РАН. 1999. Т.365. С.403−405.
  25. А. Биология старения, М.: Мир. 1967. 395 с.
  26. Л.И. Молекулярно-генетические основы детерминации пола // в кн. Введение в генетику развития. М.: Наука. 1999. С.210−228.
  27. Л.И. Детерминация пола и ее молекулярно-генетические основы // в кн. Биология индивидуального развития. М.:МГУ. 2002. С.216−233.
  28. A.A., Князева Е. Ф. Транскрипция и трансляция в сперматогенезе // в кн. Современные проблемы сперматогенеза, М.: Наука. 1982. С.160−190.
  29. Кулибин А. Ю, Захидов С. Т, Маршак Т. Л, Гопко A.B., Михалева Я. Ю, Семенова М. Л. Изучение сперматогенной структуры у мышей-долгожителей SAMP1, склонных к ускоренному старению // Док. РАН. 2005. Т. 404. № 6. С.971−975.
  30. Курносова Т. Р, Райцина С. С. Деструкция и регенерация семенных канальцев после локального рентгеновского облучения семенников половозрелых крыс // Онтогенез. 1987. Т.18. № 2. С.183−191.
  31. Маршак ТЛ, Делоне Г. В, Урываева И. В. Особенности организации ядрышкового аппарата в диплоидных и полиплоидных ядрах новообразованных гепатоцитов при дипиновом канцерогенезе // Онтогенез. 1997. Т.28. № 6. С.451−457.
  32. Маршак Т. Л, КрыловаТ. Ю, Захидов С. Т. Особенности организации ядер клеток Сертоли после действия дипина//Цитология. 2002. Т.44. № 9. С.890−891.
  33. Проценко Л. Д, Булкина З. П. Дипин // в кн. Химия и фармакология синтетических противоопухолевых препаратов. Киев: Наукова думка. 1985. С.128−136.
  34. РайцинаС.С.Гематотестикулярныйбарьер//вкн. Современные проблемы сперматогенеза. М.: Наука. 1982а. С.191−224.
  35. С.С. Происхождение и развитие половых клеток // в кн. Современные проблемы сперматогенеза. М.: Наука. 19 826. С.5−24.
  36. С.С. Цикл сперматогенного эпителия и кинетика сперматогенеза у млекопитающих // в кн. Современные проблемы сперматогенеза. М.: Наука. 1982 В.С.73−107.
  37. С.С. Гематотестикулярный барьер и его роль в сохранении генетической информации в половых клетках // в кн. Сперматогенез и структурные основы его регуляции. М.: Наука. 1985а. С.20−45.
  38. С.С. Деструкция семенных канальцев при действии повреждающих факторов на семенники млекопитающих // в кн. Сперматогенез и структурные основы его регуляции. М.: Наука. 19 856. С.82−104.
  39. С.С. Репродуктивная стратегия при возникновении и развитии половых клеток // в кн. Сперматогенез и структурные основы его регуляции. М.: Наука. 1985 В. С. 5−19.
  40. С.С. Сперматогенез, особенности дифференцировки клеток семенника и их регенерационные потенции // в кн. Сперматогенез и структурные основы его регуляции. М.: Наука. 1985 г. С.137−168.
  41. JI.K. Регуляция восстановительных процессов, М.: Ун-т. 1984. 209 с.
  42. Рузен-Ранге Э. Сперматогонии и динамика сперматогенеза // в кн. Сперматогенез у животных. М.: Мир. 1980. С.169−181.
  43. В.Д., Олескин A.B., Лагунова Е. М. и др. Программируемая клеточная смерть // Электронная библиотека каф. Физиологии микроорганизмов (http://l.cellimm.bio.msu. ru/ebocs/samuilov-2.html). 2002. C. l-29.
  44. А.Ф. Молекулярно-генетические механизмы первичной детерминации пола у млекопитающих // Сор. Обр. Журн. 1997. № 1. С.26−34.
  45. И.В., Делоне Г. В., Маршак Т. Л. Развитие ядерных аномалий и цитомегалической дегенерации при повреждении генома в клетках печени // Док. РАН. 1996а. Т.348. № 5. С.703−705.
  46. И.В., Маршак Т. Л., Делоне Г. В. Клеточные циклы в процессе переживания клеток печени после потенциально летального повреждения генома дипином // Бюлл. Экспер. Биол. 19 966. Т.122. № 9. С.353−355.
  47. И.В., Маршак Т. Л., Захидов С. Т., и др. Накопление с возрастом микроядерных аберраций в клетках печени ускоренно стареющих мышей линий SAM // Док. РАН. 1999. Т.368. С.703−705.
  48. И.В., Фактор В. М. Образование аберрантных полиплоидных гепатоцитов приодействии алкилирующего препарата дипина и стимуляции пролиферации // Цитология. 1982. Т.24. № 8. С.911−918.
  49. И.В., Фактор В. М. Полная смена клеточного состава паренхимы печени после воздействия дипина и частичной резекции // Бюлл. Экспер. Биол. 1988. Т.105. № 1. С.77−80.
  50. И.В., Фактор В. М., Бродский В. Я. Влияние алкилирующего агента дипина на индуцированную пролиферацию гепатоцитов. II. Увеличение периода синтеза ДНК // Цитология. 1979. Т.21. № 6. С.678−685.
  51. В.М., Елисеева Н. А., Тамахина А. Я. Влияние алкилирующего канцерогена дипина на пролиферацию, уровень развития полиплоидии и образование микроядер в популяции исходных и вновь образованных гепатоцитов // Изв. РАН. Сер. Биол. 1992. № 6. С.821−834.
  52. В.М., Урываева И. В., Соколова А. С., Чернов В. А., Бродский В .Я. Влияние алкилирующего агента дипина на индуцированную пролиферацию гепатоцитов. I. Кинетика клеточной популяции // Цитология. 1979, Т.21. № 5. С.541−547.
  53. Aguilar-Mahecha A., Hales B.F., Robaire В. Acute cyclophosphamide exposure has germ cell specific effects on the expression of stress response genes during rat spermatogenesis // Mol. Reprod. Dev. 2001. V.60. P.302−311.
  54. Aguilar-Mahecha A., Hales B.F., Robaire B. Chronic cyclophosphamide treatment alters the expression of stress response genes in rat male germ cells // Biol. Reprod. 2002. V.66. P.1024−1032.
  55. Aitken R.J., Krausz C. Oxidative stress, DNA damage and the Y chromosome // Reproduction. 2001. V.122. № 4. P.497−506.
  56. Alberts В., Bray D., Lewis J., et al. Meiosis // In. Molecular biology of the cell, New York, London: Gat land Publishing Inc. 1994. P.1014−1021.
  57. D’Alessio A., Riccioli A., Lauretti P. et al. Testicular FasL is expressed by sperm cells // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2001. V.98. № 6. P.3316−3321.
  58. Allan D.J., Harmon B.V., Kerr J.F.R. Cell death in spermatogenesis // In. Perspectives on mammalian cell death (ed. Potten C.S.). Oxford.: Oxford University Press. 1987. P.229−258.
  59. Allan D.J., Harmon B.V., Roberts S.A. Spermatogonial apoptosis has three morphologically recognizable phases and shows no circadian rhythm during normal spermatogenesis in the rat // Cell Prolif. 1992. V.25. P.241−250.
  60. Allen J.W., Collins B.W., Evansky P.A. Spermatid micronucleus analyses of trichloroethylene and chloral hydrate effects in mice // Mutat. Res. 1994. V.323. P.81−88.
  61. Allen J.W., Collins B.W., Setzer R.W. Spermatid micronucleus analyses of aging effects in hamsters // Mutat. Res. 1996. V.316. P.261−266.
  62. Anawalt B.D., Bebb R.A., Matsumoto A.M. et al. Serum inhibin В levels reflect Sertoli cell function in normal men and men with testicular dysfunction // Clin. Endocrinol. Metab. 1996. V.81. № 9. P.3341−3345.
  63. Arshami J., Ruttle J.L. Effects of diets containing gossypol on spermatogenic tissues of yangbulls // Theriogenology. 1988. V.30. № 3. P.507−516.
  64. Baarends W.M., van der Laan R., Grootegoed J.A. DNA repair mechanisms and gametogenesis // Reproduction. 2001. V.121. P.31−39.
  65. Balaban R.S., Nemoto S" Finkel T. Mitochondria, oxidants, and aging // Cell. 2005. V.120. P.483−495.
  66. Barone R, D’Agostino A., Aguanno S., DAlessio A. Sertoli cell modulates MA A induced apoptosis of germ cells throughout voltage-operated calcium channels // FASEB. 2004. V.18. P.353−354.
  67. Barqawi A., Trummer H., Meacham R. Effect of prolonged cryptorchidism on germ cell apoptosis and testicular sperm count // Asian J. Androl. 2004. V.6. № 1. P.47−51.
  68. Bellamy O.C. p53 and apoptosis // Apoptosis. 1997. V.53. № 3. P.522−538.
  69. Bellve A.R. Introduction: The male germ cell- origin, migration, proliferation and differentiation // Cell & Dev. Biol. 1998. V.9. P.379−371.
  70. Beumer T.L., Kiyokawa H., Roepers-Gajadien H.L. et al. Regulatory role of p27kipl in the mouse and human testis // Endocrinology. 1999. V.140. P.1834−1840.
  71. Beumer T.L., Roepers-Gajadien H.L., Gademan I.S. et al. The role of the tumor suppressor p53 in spermatogenesis // Cell Death Differ. 1998. V.5. №.8. P.669−677.
  72. Beumer T.L., Roepers-Gajadien H.L., Gademan I.S. et al. Apoptosis regulation in the testis: involvement of Bcl-2 family members // Mol. Reprod. Dev. 2000a. V.56. № 3. P.353−359.
  73. Beumer T.L., Roepers-Gajadien H.L., Gademan I.S., Kal H.B., de Rooij D.G. Involvement of the D-type cyclins in germ cell proliferation and differentiation in the mouse testis // Biol. Reprod. 2000b. V.63. P.1893−1898.
  74. Billig H., Chun S.Y., Eisenhauer K., Hsueh A.J. Gonadal cell apoptosis: hormone-regulated cell demise // Hum. Reprod. Update. 1996. V.2. № 2. P.103−117.
  75. Birkhead T.R., Pellatt E.J., Brekke P., Yeates R., Castillo-Juarez H. Genetic effects on sperm design in the zebra finch // Nature. 2005. V.434., P.383−387.
  76. Blanco-Rodriguez J. A matter of death and life: the significance of germ cell death during spermatogenesis // Int. J. Androl. 1998. V.21. P.236−248.
  77. Bianco-Rodriguez J. DNA replication and germ cell apoptosis during spermatogenesis in the cat // J. Androl. 2002a. V.23. № 4. P.484−490.
  78. Bianco-Rodriguez J. DNA replication and germ cell apoptosis during spermatogenesis in the rabbit // J. Androl. 2002b. V.23. P.182−187.
  79. Boekelheide K. Mechanisms of toxic damage to spermatogenesis // Natl. Cancer Inst. Monogr. 2005. V.34. P.6−8.
  80. Boekelheide K" Fleming S. L, Johnson K. J, Patel S. R, Schoenfeld H.A. Role of Sertoli cells in injury-associated testicular germ cell apoptosis // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 2000. V.225. № 2. P.105−115.
  81. Boussouar F, Benahmed M. Lactate and energy metabolism in male germ cells // Trends. Endocrinol. Metab. 2004. V.15. № 7. P.345−350.
  82. Brinster R.L. Germline Stem Cell Transplantation and Transgenesis // Science. 2002. V.296. P.2174−2176.
  83. Brinster R. L, Avarbock M.R. Germline transmission of donor haplotype following spermatogonia! transplantation //Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1994. V.91. № 24. P.11 303−11 307.
  84. Brock W. A, Trostle P. K, Meistrich M.L. Meiotic synthesis of testis histones in the rat // Proc. Nati. Acad. Sci. USA. 1980. V.77. № 1. P.371−375.
  85. Brown R. Proteins of the Bcl-2 family // Apoptosis. 1997. V.53. № 3. P.466−477.
  86. Buageaw A, Sukhwani M, Ben-Yehudah A. et al. GDNF family receptor alphal phenotype of spermatogonial stem cells in immature mouse testes // Biol. Reprod. 2005. V.73. P.1011−1016.
  87. Calogero A. E, De Palma A, Grazioso C, et al. 2001. Aneuploidy rate in spermatozoa of selected men with abnormal semen parameters // Biol. Reprod. 2001. V.16. № 6. P.1172−1179.
  88. Carlson B.M. Human embryology and developmental biology 3ed. Pub. Mosby Inc. 2004. P.527.
  89. Cerda M.C., Berrios S., Fernandez-Donoso R., Garagna S., Redi C. Organization of complex nuclear domains in somatic mouse cells // Biol. Cell. 1999. V.91. № 1. P.55−65.
  90. Chang C., Chen Y.-T., Yeh S.-D. et al. Infertility with defective spermatogenesis and hypotes-tosteronemia in male mice lacking the androgen receptor in Sertoli cells // PNAS. 2004. V.101. № 18. P.6876−6881.
  91. R.E., Dutton S.L., Ross M.D., Sumrell B.M., Lamb J.C. 4th. The effects of ethylene glycol monomethyl ether on testicular histology in F344 rats // J. Androl. 1984. V.5. № 5. P.369−380.
  92. Chaudhary J., Cupp A.S., Skinner M.K. Role of basic-helix-loop-helix transcription factors in Sertoli cell differentiation: identification of an E-box response element in the transferring promoter//Endocrinology. 1997. V.138. № 2. P.667−675.
  93. Chen Ch., Ouyang W., Grigural V. et al. ERM is required for transcriptional control of the spermatogonial stem cell niche // Nature. 2005. V.436. P.1030−1034.
  94. Chen H. Luo L. Zirkin B.R. Leydig cell structure and function during aging // In.: «The Leydig cell» (eds. A.H. Payne, M.P. Hardy, and L.D. Russell). 1996a. P.221−230.
  95. Chen H., Hardy M., Zirkin B.R. Age-related decreases in Leydig cell testosterone production are not restored by exposure to LH in vitro // Endocrinology. 2002. V.143. № 5. P.1637−1642.
  96. Chen H., Huntaniemi I., Zirkin B.R. Depletion and repopulation of Leydig cells in the testes of aging Brown Norway rats // Endocrinology. 1996b. V.137. № 8. P.3447−3452.
  97. Chen H., Zirkin, B.R. Long-term suppression of Leydig cell steroidogenesis prevents Leydig cell aging // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1999. V.96. P.14 877−14 881.
  98. Cheng C.Y. Mruk D.D. Cell junction dynamics in the testis: Sertoli-germ cell interactions and male contraceptive development // Phys. Rev. 2002. V.82. P.825−874.
  99. Lu C.C., Meistrich M.L. Cytotoxic effects of chemotherapeutic drags on mouse testis cells // Cancer Res. 1979. V.39. P.3575−3582.
  100. Chiarini-Garcia H., Hornick J.R., Griswold M.D., Russell L.D. Distribution of type A spermatogonia in the mouse is not random // Biol. Reprod. 2001a. V.65. P. l 179−1185.
  101. Chiarini-Garcia H., Russell L.D. High-resolution light microscopic characterization of mouse spermatogonia // Biol. Reprod. 2001b. V.65. P.1170−1178.
  102. Chiarini-Garcia H., Russell L.D. Characterization of mouse spermatogonia by transmissionelectron microscopy // Reproduction. 2002. V.123. R567−577.
  103. Chiarini-Garcia H., Raymer A.M., Russell L.D. Non-random distribution of spermatogonia in rats: evidence of niches in the seminiferous tubules // Reproduction. 2003. V.126. R669−680.
  104. Cho C., Jung-Ha H., Willis W.D. et al. Protamine 2 deficiency leads to sperm DNA damage and embryo death in mice//Biol. Reprod. 2003. V.69. P.211−217.
  105. Choi Y.J., Ok D.W., Kwon D.N. et al. Murine male germ cell apoptosis induced by busulfan treatment correlates with loss of c-Kit-expression in a Fas/FasL- and p53-independent manner // FEBS Lett. 2004. V.575. P.41−51.
  106. Chung S.S.W., Wolgemuth D.J. Role of retinoid signaling in the regulation of spermatogenesis // Cytogenet. Genome Res. 2004. V.105. № 2−4. P.189−202.
  107. Clermont Y. Bustos-Obregon E. Re-examination of spermatogonial renewal in the rat by means of seminiferous tubules mounted «in toto» // Am. J. Anat. 1968. V.122. P.237−248.
  108. Clermont Y. Kinetics of spermatogenesis in mammals: seminiferous epithelium cycle and spermatogonial renewal //Physiol. Rev. 1972. V.52. P.198−236.
  109. Clermont Y., Perey B. Quantitative study of the cell population of the seminiferous tubules in immature rats // Am. J. Anat. 1957. V.100. P.241−267.
  110. Cobb J., Handel M.N. Dynamics of meiotic prophase I during spermatogenesis: from pairing to division // Cell & Dev. Biol. 1998. V.9. P.445−450.
  111. Codrington A.M., Hales B.F., Robaire B. Spermatogenic germ cell phase-specific DNA damage following cyclophosphamide exposure // J. Androl. 2004. V.25, № 3. P.354−362.
  112. Cooke S.P., Eroschenko V.P. Inhibitory effects of technical grade methoxychlor on development of neonatal male mouse reproductive organs // Biol. Reprod. 1990. V.42. P.585−596.
  113. Curtsinger J.W., Fukui H.H., Khazaeli A. et al. Genetic variation and aging // Annu. Rev. Genet. 1995. V.29. P.553−575.
  114. Curtis H.J. Biological mechanism underlying the aging process // Science. 1963. V.141. P.686−694.
  115. Dadoune J.-P. The nuclear status of human sperm cells // Micron. 1995. V.26. № 4. P.323−345.
  116. Dadoune J.-P. Expression of mammalian spermatozoal nucleoproteins // Microsc. Res. Tech. 2003. V.61. № 1. P.56−75.
  117. Dakouane M., Bicchieray L., Bergere M. et al. A histomorphometric and cytogenetic study of testis from men 29−102 years old // Fertil. Steril. 2005. V.83. № 4. P.923−928.
  118. Darszon A., Labarca P., Nishigaki T., Espinosa F. Ion channels in sperm physiology // Physiol. Rev. 1999. V.79. № 2. P.481−510.
  119. Dix D.J., Allen J.W., Collins B.W., et al. Targeted gene disruption of Hsp70−2 results in failed meiosis, germ cell apoptosis, and male infertility // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1996. V.93. № 8.P.3264−3268.
  120. Dix D.J., Allen J.W., Collins B.W., et al. HSP70−2 is required for desynapsis of synaptonemal complexes during meiotic prophase in juvenile and adult mouse spermatocytes // Development. 1997. V.124. № 22. P.4595−4603.
  121. Dobrinski I., Avarbock M.R., Brinster R.L. Transplantation of germ cells from rabbits and dogs into mouse testes //Biol. Reprod. 1999. V.61. P.1331−1339.
  122. O’Donnell L., Robertson K.M., Jones M.E., Simson E.R. Estrogen and spermatogenesis // Endoer. Rev. 2001. V.22. № 3. P.289−318.
  123. Eddy E.M. HSP70−2 heat-shock protein of mouse spermatogenic cells // J. Exp. Zool. 1998. V.282. № 1−2. P.261−271.
  124. Eddy E.M. Role of heat shock protein HSP70−2 in spermatogenesis // Rev. Reprod. 1999. V.4. № 1. P.23−30.
  125. Elangovan N., Chiou T.-J., Tzeng W.-F., Chu S.-T. Cyclophosphamide treatment causes impairment of sperm and its fertilizing ability in mice // Toxicology. 2006. V.222. P.60−70.
  126. Erickson B.H. Effects of ionizing radiation and chemicals on mammalian reproduction // Vet. Hum. Toxicol. 1985. V.27. № 5. P.409−416.
  127. Faktor V.M., Uryvaeva I.V., Sokolova A.S., Chernov V.A., Brodsky W. Ya. Kinetics of cellular proliferation in regenerating mouse liver pretreated with the alkylating drug dipin // Virchows Arch. B Cell Path. 1980. V.33. P.187−197.
  128. Farini D., Scaldaferri M.L., Iona S. et al. Growth factors sustain primordial germ cell survival, proliferation and entering into meiosis in the absence of somatic cells // Dev. Biol. 2005. V.285. № 1. P.49−56.
  129. Feng L.X., Ravindranath N., Dym M. Stem cell factor/c-Kit up-regulates cyclin D3 and promotes cell cycle progression via the phosphoinositide 3-kinase/p70 S6 kinase pathway in spermatogonia // Biol. Chem. 2000. V.275. P.25 572−25 576.
  130. Filippini A., Riccioli A., Padula F. et al. Control and impairment of immune privilege in the testis and in semen //Hum. Reprod. Update. 2001. V.7. № 5. P.444−449.
  131. Finch C., Tanzi R. Genetics of aging // Science. 1997. V.278. P.407−411.
  132. Franca L.R., Avelar G.F., Almeida F.F.L. Spermatogenesis and sperm transit through the epididymis in mammals with emphasis on pigs // Theriogenology. 2005. V.63. P.300−318.
  133. Franca L.R., Ghosh S, Ye S.-J., Russell L.D. Surface and surface-to-volume relationships of theSertoli cell during the cycle of the seminiferous epithelium in the rat // Biol. Reprod. 1993. V.49. P.1215−1228.
  134. Franca L. R, Ogawa T, Avarbock M. R, et al. Germ cell genotype controls cell cycle during spermatogenesis in the rat // Biol. Reprod. 1998. V.59. P.1371−1377.
  135. Freire R, Mirguia J. R, Tarsounas M. et al. Human and mouse homologs of S. pombe radl and Saccaromyces cerevisae RAD17: linkage to checkpoint control and mammalian meiosis // Genes Dev. 1998. V.12. P.2560−2573.
  136. Fromm M.F. Importance of P-glycoprotein at blood-tissue barriers // Trends. Pharmacol. Sci. 2004. V.25. № 8. P.423−429.
  137. Furuchi T, Masuko K, Nishimune Y, et al. Inhibition of testicular germ cell apoptosis and differentiation in mice misexpressing Bcl-2 in spermatogonia//Development. 1996. V.122. P.1703−1709.
  138. Gatti J. L, Castella S, Dacheux F. et al. Post-testicular sperm environment and fertility // Anim. Reprod. Sci. 2004. V.82−83. P.321−339.
  139. Generoso W. M, Cain K. T, Krishna M, Sheu C. W, Gryder R.M. Heritable translocation and dominant-lethal mutation induction with ethylene oxide in mice // Mutat. Res. 1980. V.73. P.133−142.
  140. Gilbert S.F. Developmental Biology 6th ed. // Sunderland (MA): Sinauer Associates, Inc. 2000.
  141. Ginsburg M, Snow M. H, McLaren A. Primordial germ cells in the mouse embryo during gas-trulation//Development. 1990. V.110. P.521−528.
  142. Ghabriel M. N, Lu J. J, Hermanis G, Zhu C, Setchell B.P. Expression of a blood-brain barrier-specific antigen in the reproductive tract of the male rat // Reproduction. 2002. V.123. № 3. P.389−397.
  143. Gonzalez-Melendi P, Beven A, Boudonck K. et al. The nucleus: a highly organized but dynamic structure // J. Microsc. 2000. V.198. Pt. 3. P.199−207.
  144. Gorczynska-Fjailing E. The role of calcium in signal transduction processes in Sertoli cells // Reprod. Biol. 2004. V.4. № 3. P.219−241.
  145. Grimes S.R. Testis-specific transcriptional control // Gene. 2004. V.343. P. ll-22.
  146. Griswold M.D. The central role of Sertoli cells in spermatogenesis // Cell Dev. Biol. 1998. V.9. P.411−416.
  147. Guo Z., Toichi E., Hosono M., et al. Genetic analysis of lifespan in hybrid progeny derived from the SAMP1 mouse strain with accelerated senescence // Mech. Aging Dev. 2000. V.118. P.35−44.
  148. Haider S.G. Cell biology of Leydig cells in the testis // Int. Rev. Cytol. 2004. V.233. P.181−241.
  149. Hales D.B. Testicular macrophage modulation of Leydig cell steroidogenesis // Reprod. Immunol. 2002. V.57. № 1−2. P.3−18.
  150. Hamer G., Roepers-Gajadein H.L., Gademan I.S., Kal H.B., de Rooij D.J. Intercellular bridges and apoptosis in clones of male germ cells // Internat. J. Androl. 2003. V.26. P.348−353.
  151. Handel M.A., Cobb J., Eaker S. What are the spermatocytes requirements for successful mei-otic division? // J. Exp. Zool. 1999. V.285. № 3. P.243−250.
  152. Handel M.A., Sun F. Regulation of meiotic cell divisions and determination of gamete quality: impact of reproductive toxins // Seminars in reproductive medicine. 2005. V.23. № 3. P.212−221.
  153. Hardy K., Wright C., Rice S. et al. Future developments in assisted reproduction in humans // Reproduction. 2002. V.123. P.171−183.
  154. Hayashi M., Nashida K., Endoh D., Okui T. Production of age-related DNA strand breakage in brain cells of senescence-accelerated prone (SAMP1) mouse // Exp. Anim. 2003. V.52. № 4. P.353−357.
  155. Haywood M, Spaliviero J., Jimemez M. et al. Sertoli and germ cell development in hypogo-nadal (hpg) mice expressing transgenic follicle-stimulating hormone alone or in combination with testosterone //Endocrinology. 2003. V.144. P.509−517.
  156. He P., Yasumoto K. Dietary butylated hydroxytoluene counteracts with paraquat to reduce the rate of hepatic DNA single strand breaks in senescence-accelerated mice // Mech. Aging Dev. 1994. V.76. P.43−48.
  157. Hecht N.B. Regulation of 'haploid expressed genes' in male germ cells // J. Reprod. Fert. 1990. V.88. P.679−693.
  158. Higuchi K., Wang J., Kitagawa K., et al. Accelerated senile amyloidosis induced by amyloido-genic Apoa-II gene shortens the life span of mice but does not accelerate the rate of senescence //J. Gerontol. 1996. V.51. P.295−302.
  159. Jahnukainen K, Chrysis D., Hou M. et al. Increased apoptosis occurring during the first wave of spermatogenesis is stage-specific and primarily affects midpachytene spermatocytes in the rat testis // Biol. Reprod. 2004. V.70. P.290−296.
  160. Jazwinski S.M. Longevity, genes, and aging: a view provided by a genetic model system // Exp. Gerontol. 1999. V.34. P. l-6.
  161. Jazwinski S.M. Aging and longevity genes // Acta Bioch. Polonica. 2000. V.47. № 2. P.269−279.
  162. Jiang F.-X. Behavior of spermatogonia following recovery from busulfan treatment in the rat // Anat. Embryol. 1998. V.198. P.53−61.
  163. Jin D. Y, Spencer F, Jeang K.T. Human T cell leukemia virus type 1 oncoprotein Tax targets the human mitotic checkpoint protein MAD1 // Cell. 1998. V.93. №i. p.81−91.
  164. Johnson R. S, Spiegelman B. M, Papaioannou V. Pleiotropic effects of a null mutation in the c-fos proto-oncogene // Cell. 1992. V.71. P.577−586.
  165. Johnson T.E. Genetic influences on aging // Exp. Gerontol. 1997. V.32. P. ll-22.
  166. Johnston D. S, Russell L. D, Griswold M.D. Advances in spermatogonial stem cell transplantation // Rev. Reprod. 2000. V.5. P.183−188.
  167. Jones L. S, Berndtson W.E. A quantitative study of Sertoli cell and germ cell populations as related to sexual development and aging in the stallion // Biol. Reprod. 1986. V.35. № 1. P.138−48.
  168. Kanatsu-Shinohara M, Inoue K, Lee J. Generation of pluripotent stem cells from neonatal mouse testis // Cell. 2004. V.119. P.1001−1012.
  169. Kanatsu-Shinohara M, Miki H, Inoue K. et al. Germline niche transplantation restores fertility in infertile mice // Hum. Reprod. 2005. V.20. № 9. P.2376−2382.
  170. Kanatsu-Shinohara M., Toyokuni S, Morimoto et al. Functional assessment of self-renewal activity of male germline stem cells following cytotoxic damage and serial transplantation // Biol. Reprod. 2003. V.68. P.1801−1807.
  171. Kasai S, Chuma S., Motoyama N, Nakatsuji N. Haploinsufficiency of Bcl-x leads to male-specific defects in fetal germ cells: differential regulation of germ cell apoptosis between the sexes //Dev. Biol. 2003. V.264. № 1. P.202−216.
  172. Kashiwabara S, Noguchi J, Zhuang T. et al. Regulation of spermatogenesis by testis-specific, cytoplasmic poly (A)polymerase TPAP // Science. 2002. V.298. P.1999−2002.
  173. Kawasaki Y. Nakagawa A. Nagaosa K. et al. Phosphatidylserine binding of class B scavengerreceptor type I, a phagocytosis receptor of testicular Sertoli cells // J. Biol. Chem. 2002. V.277. № 30. P.27 559−27 566.
  174. Kenyon C. The plasticity of aging: insights from long-lived mutants // Cell. 2005. V.120. P.449−460.
  175. Khorram O, Patrizio P., Wang C., Swerdlow R. Reproductive technologies for male infertility // J. of Clin. Endocr. & Metab. 2001. V.86. № 6. P.2373−2379.
  176. Kiger A.A., Fuller M.T. Male germ-line stem cells // In. Stem Cell Biology. Cold Spring Harbor Laboratory Press. 2001. P.149−187.
  177. Kimmins S., Sassone-Corsi P. Chromatin remodeling and epigenetic features of germ cells // Nature. 2005. V.434. P.583−588.
  178. Kimura M., Itoh N., Takagi S. et al. Balance of apoptosis and proliferation of germ cells related to spermatogenesis in aged men // J. Androl. 2003. V.24. № 2. P.185−191.
  179. Kiousis D. Kising chromosomes // Nature. 2005. V.435. P.579−580.
  180. Kirkwood T.B.L. Understanding the odd science of aging // Cell. 2005. V.120. P.437−447.
  181. Kleene K.C. A possible meiotic function of the peculiar patterns of gene expression in mammalian spermatogenic cells // Mechan. Dev. 2001. V.106. P.3−23.
  182. Koji T. Male germ cell death in mouse testes: possible involvement of Fas and Fas ligand // Med. Electron. Microsc. 2001. V.34. P.213−222.
  183. Koji T., Hishikawa Y. Germ cell apoptosis and its molecular trigger in the mouse testis // Arch. Histol. Cytol. 2003. V.66. № 1. P. l-16.
  184. Koji T., Hishikawa Y., Ando H. et al. Expression of Fas and Fas ligand in normal and ischemia-reperfusion testes: involvement of the Fas system in the induction of germ cell apoptosis in the damaged mouse testis // Biol. Reprod. 2001. V.64. P.946−954.
  185. Kramer P.H. CD95's deadly mission in the immune system // Nature. 2000. V.407. P.789−795.
  186. Kubota H., Avarbock M.R., Brinster R.L. Culture conditions and single growth factors affect fate determination of mouse spermatogonia! stem cells // Biol. Reprod. 2004. V.71. P.722−731.
  187. Kunugita N., Kakihara H., Kawamoto T., Norimura T. Micronuclei induced by low dose rate irradiation in early spermatids of p53 null and wild mice // J. Radiat. Res. (Tokyo). 2002. V.43. P.205−207.
  188. Kuro-o M., Matsumura Y., Aizawa H., et al. Mutation of the mouse Klotho gene leads to a syndrome resembling ageing // Nature. 1998. V.390. P.45−51.
  189. Kuro-o M. Disease model: human aging // Trends in Mol. Med. 2001. V.7. P.179−181.
  190. Kuriyama K., Kitamura T., Yokoi K. yt al. Evaluation of testicular toxicity and sperm morphology in rats treated with methyl methanesulphonate (MMS) // J. Reprod. Develop. 2005. V.51. № 5. P.657−667.
  191. Lawson K.A., Hage W.J. Clonal analysis of the origin of primordial germ cells in the mouse // Ciba Found. Symp. 1994. V.182. P.68−84.
  192. Lawson K.A., Dunn N.R., Roelen B.A. et al. Bmp4 is required for the generation of primordial germ cells in the mouse embryo // Genes Dev. 1999. V.13. P.424−436.
  193. Leblond C.P., Clermont Y. Spermatogenesis in rat, mouse, hamster and ginea pig as revealed by the «periodic acid-fuchsin sulfurous acid» technique // Am. J. Anat. 1952. V.90. P.167−215.
  194. Lee J., Richburg J.H., Shipp E.B., et al. The Fas system, a regulator of testicular germ cell apoptosis, is differentially up-regulated in Sertoli cell versus germ cell injury of the testis // Endocrinology. 1999. V.140. № 2. P.852−858.
  195. Lee J., Richburg J.H., Younkin S.C., Boekelheide K. The Fas system is a key regulator germ cell apoptosis in the testis // Endocrinology. 1997. V.138. P.2081−2088.
  196. Leslie E.M., Deeley R.G., Cole S.P. Multidrug resistance proteins: role of P-glycoprotein, MRP1, MRP2, and BCRP (ABCG2) in tissue defense // Toxicol. Appl. Pharmacol. 2005. V.204. № 3. P.216−237.
  197. Liu P.Y., Handelsman D.J. The present and future state of hormonal treatment for male infertility // Hum. Reprod. Upd. 2003. V.9. No.l. P.9−23.
  198. Lombard D.B., Chua K.F., Mostoslavsky R., et al. DNA repair, genome stability, and aging // Cell. 2005. V.120. P.497−512.
  199. Loveland K. L, Schlatt S. Stem cell factor and c-Kit in the mammalian testis: lessons originating from mother nature’s gene knockouts // Endocrinology. 1997. V.153. P.337−344.
  200. Lu C.C., Meistrich M.L. Cytotoxic effects of chemotherapeutic drugs on mouse testis cells // Cane. Res. 1979. V.39. P.3575−3582.
  201. Luetjens C.M., Weinbauer G.F., Wistuba J. Primate spermatogenesis: new insights into comparative testicular organization, spermatogenic efficiency and endocrine control // Biol. Rev. Camb. Philos. Soc. 2005. V.80. № 3. P.475−488.
  202. Lui W.Y., Mruk D., Lee W.M., Cheng C.Y. Adherens junction dynamics in the testis and spermatogenesis // J. Androl. 2003a. V.24. № 1. P. l-14.
  203. Lui W.Y., Mruk D., Lee W.M., Cheng C. Y Sertoli cell tight junction dynamics: their regulation during spermatogenesis // Biol. Reprod. 2003b. V.68. № 4 P.1087−1097.
  204. Mahmoud A., Kiss P., Vanhoorne M., De Bacquer D., Comhaire F. Is inhibin B involved in the toxic effect of lead on male reproduction? // Int. J. Androl. 2005. V.28. № 3. P.150−155.
  205. Maier B., Gluba W., Bernier B. et al. Modulation of mammalian life span by the short isoform of p53 // Genes Dev. 2004. V.18. P.306−319.
  206. Manicardi G.C., Tombacco A., Bizzaro D., Bianchi U., Bianchi P.G., Sakkas D. DNA strand breaks in ejaculated human spermatozoa: comparison of susceptibility to the nick translation and terminal transferase assays // Histochem. J. 1998. V.30. P.33−39.
  207. Matter B., Schmid W. Trenimon-induced chromosomal damage in bone-marrow cells of six mammalian species, evaluated by the micronucleus test // Matat. Res. 1971. V.12. № 4. P.417−425.
  208. McClearn G.E. Biogerontologic theories // Exp. Gerontol. 1997. V.32. P.3−10.
  209. McGuinnes M.P., Griswold M.D. Interaction between Sertoli cells and germ cells in the testis // Dev. Biol. 1994. V.5. P.61−66.
  210. McLachlan R.I., Wreford N.G., O’Donnell L., de Kretser D.M., Robertson D.M. The endocrine regulation of spermatogenesis: independent roles for testosterone and FSH // Endocrinology. 1996. V.148. № 1. P. l-9.
  211. McLaren A. Mammalian germ cells: birth, sex, and immortality // Cell Struct. Funct. 2001. V.26. P. l 19−122.
  212. McLean D.J., Friel P.J., Johnston D.S., Griswold M.D. Characterization of spermatogonial stem cell maturation and differentiation in neonatal mice // Biol. Reprod. 2003. V.69. P.2085−2091.
  213. McMurray C.T., Kortun I.V. Repair in haploid male germ cells occurs late in differentiation as chromatin is condensing // Chromosoma. 2003. V.lll. № 8. P.505−508.
  214. McVicar C.M., McClure N., Williamson K. et al. Incidence of Fas positivity and deoxyribonucleic acid double-stranded breaks in human ejaculated sperm // Fertil. Steril. 2004. V.81. P.767−774.
  215. Meachem S., von Schonfeldt V., Schlatt S. Spermatogonia: stem cells with a great perspective // Reprodaction. 2001. V.121. R825−834.
  216. Medras M., Trzmiel A., Grabowski M., Bohdanowicz-Pawlak A., Zagodzka E. Inhibin B a marker of the function of male gonad // Ginekol. Pol. 2005. V.76. № 6. P.484−490.
  217. Medvedev Z.A. An attempt at a rational classification of theories of aging // Biol. Rev. 1990. V.65. P.375−398.
  218. Meistrich M.L. Critical components of testicular function and sensitivity to disruption // Biol. Reprod. 1986a. V.34. P.17−28.
  219. Meistrich M.L. Relationship between spermatogonial stem cell survival and testis functionafter cytotoxic therapy II Br. J. Cancer. 1986b. V.53. № 7. P.89−101.
  220. Meistrich M.L. Evaluation of reproductive toxicity by testicular sperm head counts // J. Am. Coll. Toxic. 1989. V.8, № 3. P.551−567.
  221. Meistrich M.L. Effects of chemotherapy and radiotherapy on spermatogenesis // Eur. Urol. 1993. V.23. № 1 P.136−141. discussion 142.
  222. Meistrich M.L. Hormonal stimulation of the recovery of spermatogenesis following chemo- or radiotherapy//APMIS. 1998. V.106. № 1. P.37−45. discussion P.45−46.
  223. Meistrich M.L., Finch M., da Cuncha M.F. et al. Damaging effects of fourteen chemotherapeu-tic drugs on mouse testis cells // Cane. Res. 1982. V.42. P.122−131.
  224. Meistrich M.L., Goldstein L.S., Wyrobeck A.J. Long-term infertility and dominant lethal mutations in male mice treated with adriamycin // Mutat. Res. 1985. V.152. P.53−65.
  225. Meistrich M.L., Mohapatra B., Shirley C.R., Zhao M. Roles of transition nuclear proteins in spermiogenesis // Chromosoma. 2003. V.lll. № 8 P.483−488.
  226. Meistrich MX., Shetty G. Suppression of testosterone stimulates recovery of spermatogenesis after cancer treatment//Inter. J. Androl. 2003. V.26. P.141−146.
  227. Meistrich M.L., Wilson G., Kangasniemi M., Huntaniemi I. Mechanism of protection of rat spermatogenesis by hormonal pretreatment: stimulation of spermatogonial differentiation after irradiation // J. Androl. 2000. V.21. № 3. P.464−469.
  228. Meistrich M.L., Wilson G., Zhang Y., Kurdoglu B., Terry N.H. Protection from procarbazine-induced testicular damage by hormonal pretreatment does not involve arrest of spermatogonial proliferation// Cancer Res. 1997. V.57. № 6. P.1091−1097.
  229. Melaine N., Lienard M.O., Dorval I. et al. Multidrug resistance genes and p-glycoprotein in the testis of the rat, mouse, Guinea pig, and human // Biol. Reprod. 2002. V.67. № 6. P.1699−1707.
  230. Mendis-Handagama S.M., Ariyaratne H.B. Differentiation of the adult Leydig cell population in the postnatal testis // Biol. Reprod. 2001. V.65. № 3. P.660−671.
  231. Mendis-Handagama S.M., Ariyaratne H.B. Effects of thyroid hormones on Leydig cells in the postnatal testis // Histol. Histopathol. 2004. V.19. № 3. P.985−997.
  232. Miyamoto H., Manabe N., Akjyama Y., et al. A morphometric study of spermatogenesis in the testes of mice of a senescence accelerated strain // Experientia. 1994. V.50. P.880−811.
  233. Molyneaux K.A., Stallock J., Schaible K., Wylie C. Time-lapse analysis of living mouse germ cell migration // Dev. Biol. 2001. V.240. P.488−498.
  234. Monesi V. Autoradiographic study of DNA synthesis and the cell cycle in spermatogonia and spermatocites of mouse testis using tritiated thymidine // J. Cell. Biol. 1962. V.14. P. l-18.
  235. Morales E., Horn R., Pastor L.M. et al. Involution of seminiferous tubules in aged hamsters: an ultrastructural, immunohistochemical and quantitative morphological study // Histol. Histopathol. 2004. V.19. № 2. P.445−455.
  236. Morales E, Pastor L.M., Horn R. et al. Effect of ageing on the proliferation and apoptosis of testicular germ cells in the Syrian hamster Mesocricetus auratus // Reprod. Fertil. Dev. 2003. V.15. № 1−2. P.89−98.
  237. Mruk D.D., Cheng C.Y. Sertoli-Sertoli and Sertoli-germ cell interactions and their significance in germ cell movement in the seminiferous epithelium during spermatogenesis // Endocrinol. Rev. 2004. Y.25. № 5. P.747−806.
  238. Muller W.-U, Streffer C. Micronucleus assays // In. Advances in mutogenetic research (ed. G. Obe). 1994. V.5. P.3−135.
  239. Nagano M.C. Spermatogonial transplantation // In. Gardner D. K, Lane M, Watson A.J. (eds,), A Laboratory Guide to the Mammalian Embryo, Oxford: Oxford University Press. 2004. P.334−351.
  240. Nagano M. C, Avarbock M. R, Brinster R.L. Pattern and Kinetics of Mouse Donor Spermatogonial Stem Cell Colonization in Recipient Testes // Biol. Reprod. 1999. V.60. P.1429−1436.
  241. Nagano R, Tabata S, Nakanishi Y. et al. Reproliferation and relocation of mouse male germ cells (gonocytes) during prespermatogenesis // Anat. Ree. 2000. V.258. P.210−230.
  242. Nakagawa S, NakamuraN, Fujioka M, Mori C. Spermatogenic cell apoptosis induced by mitomycin c in the mouse testis // Toxicol. Appied Pharmacol. 1997. V.147. P.204−213.
  243. Nakanishi Y, Shiratsuchi A. Phagocytic removal of apoptotic spermatogenic cells by Sertoli cells: mechanisms and consequences // Biol. Pharm. Bull. 2004. V.27. № 1. P.13−16.
  244. Nandi S, Banerjee P, Zirkin B. Germ cell apoptosis in the testes of Sprague Dawley rats following testosterone withdrawal by ethane 1,2-dimethanesulfonate administration: relationship to FAS? // Biol. Reprod. 1999. V.61. P.70−75.
  245. Oakberg E.F. A description of spermatogenesis in the mouse and its use in analysis of the cycle of the seminiferous epithelium // Am. J. Anat. 1956a. V.99. P.391−414.
  246. Oakberg E.F. Duration of spermatogenesis in the mouse and timing of stages of the cycle of the seminiferous epithelium // Am. J. Anat. 1956b. V.99. P.507−519.
  247. Oakberg E.F. Spermatogonial stem-cell renewal in the mouse // Anat. Ree, 1971. V.169. P.515−532.
  248. Oakberg E.F. Effects of radiation on the testis // In. Handbook of physiology (eds. Greep R. O, Astwood E.B.). Sect. 7: Endocrinology. 1975. V.5. P.233−261.
  249. Oakberg E. F, Hackins C. Spermatogonial stem cell renewal in the mouse as revealed by H3-thy-midine labeling and irradiation // In. Stem cell of renewing cell populations. Cambridge: Akad. Press. 1976. P.287−302.
  250. Ogawa T, Ohmura M, Yumura Y, Sawada H, Kubota Y. Expansion of Murine SpermatogonialStem Cells Through Serial Transplantation // Biol. Reprod. 2003. V.68. P.316−322.
  251. Offer H., Zurer I., Banfalvi G. et al. p53 modulates base excision repair activity in a cell cycle-specific manner after genotoxic stress // Cancer Res. 2001. V.61. P.86−96.
  252. Ohbo K., Yoshida S., Ohmura M. et al. Identification and characterization of stem cells in prepubertal spermatogenesis in mice // Dev. Biol. 2003. V.258. P.209−225.
  253. Ohta H., Aizawa S., Nishimune Y. Functional analysis of the p53 gene in apoptosis induced by heat stress or loss of stem cell factor signaling in mouse male germ cells // Biol. Reprod. 2003. V.68. № 6. P.2249−2254.
  254. Ohta H., Yomogida K., Dohmae K., Nishimune Y. Regulation of proliferation and differentiation in spermatogonial stem cells: the role of c-Kit and its ligand SCF // Development. 2000 V.127. № 10. P.2125−2131.
  255. Page S.L., Hawley R.S. The Genetics and molecular biology of the synaptonemal complex // Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 2004. V.20. P.525−558.
  256. Paniagua R.- Nistal M., Saez F. J., Fraile B. Ultrastructure of the aging human testis // Electron. Microsc. Tech. 1991. V.19. № 2. P.241−260.
  257. Park P.C., De Boni U. Dynamics of structure-function relationships in interphase nuclei // Life Sci. 1999.V.64. № 19. P.1703−1718.
  258. Perek N., Denoyer D. The multidrug resistance mechanisms and their interactions with the radiopharmaceutical probes used for an in vivo detection // Curr. Drug. Metab. 2002. V.3. № 1. P.97−113.
  259. Pierantoni R., Cobellis G., Meccariello R., Fasano S. Evolutionary aspects of cellular communication in the vertebrate hypothalamo-hypophysio-gonadalaxis // Int. Rev. Cytol. 2002. V.218. P. 69−141.
  260. Pierik F.H., Burdorf A., de Jong F.H., Weber R.F. Inhibin B: a novel marker of spermatogenesis //Ann. Med. 2003. V.35. № 1. P.12−20.
  261. Plant T.M., Marshall G.R. The functional significance of FSH in spermatogenesis and the control of its secretion in male primates // Endocrine Rev. 2001. V.22. № 6. P.764−786.
  262. Print C.G., Loveland K.L. Germ cell suicide: new insights into apoptosis during spermatogenesis // BioEssays. 2000. V.22. № 5. P.423−429.
  263. Print C.G., Loveland K.L., Gibson L. et al. Apoptosis regulator bcl-w is essential for spermatogenesis but appears otherwise redundant // Proc. Natl. Acad. Sci. 1998. V.95. P.12 421−12 431.
  264. Ram Sairam M., Krishnamurthy H. The role of follicle-stimulating hormone in spermatogenesis: lessons from knockout animal models // Archiv. Med. Res. 2001. V.32. R601−608.
  265. Ren H.P., Russell L.D. Clonal development of interconnected germ cells in the rat and its relationship to the segmental and subsegmental organization of spermatogenesis // Am. J. Anat. 1991. V.192. № 2. P.121−128.
  266. Richburg J.H., Johnson K.J., Schoenfeld H.A., Meistrich M.L., Dix D.J. Defining the cellular and molecular mechanisms of toxicant action in the testis // Toxicol. Lett. 2002. V.135. JN°3. P.167−183.
  267. Rinchik E.M., Bangham J.W., Hunsicker P.R., et al. Genetic and molecular analysis of chloram-bucil-induced germ-line mutations in the mouse // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1990. V.87. № 4. P.1416−1420.
  268. Riou L., Bastos H., Lassalle B. et al. The telomerase activity of adult mouse testis resides in the spermatogonial alpha6-integrin-positive side population enriched in germinal stem cells // Endocrinology. 2005. V.146. № 9. P.3926−3932.
  269. Ross G.M. Induction of cell death by radiotherapy // Endocrine-Related Cancer. 1999. V.6. P.41−44.
  270. Rossi P., Sette C., Dolci S., Geremia R. Role of c-kit in mammalian spermatogenesis // Endocrinol. Invest. 2000. V.23. № 9. P.609−615.
  271. E.B. 3rd, Dierisseau P., Wagner K.U. et al. Bcl-x and Bax regulate mouse primordial germ cell survival and apoptosis during embryogenesis // Mol. Endocrinol. 2000. V.14. N°7. P.1038−1052.
  272. Russell L.D., Chiarini-Garcia H., Korsmeyer S.J., Knudson C.M. Bax-dependent spermatogonia apoptosis is required for testicular development and spermatogenesis // Biol. Reprod. 2002. V.66. № 4. P.950−958.
  273. Russell L.B., Hunsicker P.R., Cacheiro N.L., Bangham J.W., Russell W. L, Shelby M.D. Chlorambucil effectively induces deletion mutations in mouse germ cells // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1989. V.86. P.3704−3708.
  274. Russell L.D., Russell J.A. Short-term morphological response of the rat testis to administration of five chemotherapeutic agents // Am. J. Anat. 1991. V.192. № 2. P.142−168.
  275. Russell L.D., Russell J.A., MacGregor G.R., et al. Linkage of manchette microtubules to the nuclear envelope and observations of the role of the manchette in nuclear shaping during sper-miogenesis in rodents //Am. J. Anat. 1991. V.192. № 2. P.97−120.
  276. Saffman E.E., Lasko P. Germline development in vertebrates and invertebrates // Cell Mol. Life Sci. 1999. V.55. № 8−9. P.1141−1163.
  277. Sailer B.L., Jost L.K., Evenson D.P. Mammalian sperm DNA susceptibility to in situ denatur-ation associated with the presence of DNA strand breaks as measured by the terminal deoxy-nucleotidyl transferase assay // J. Androl. 1995. V.16. P.80−87.
  278. Sakkas D., Mariethoz E., Manicardi G., et al. Origin of DNA damage in ejaculated human spermatozoa // Rev. Reprod. 1999. V.4. P.31−37.
  279. Sakkas D., Seli E., Manicardi G.C. et al. The presence of abnormal spermatozoa in the ejaculate: did apoptosis fail?//Hum. Fertil. (Camb). 2004. V.7. № 2. P.99−103.
  280. Sassone-Corsi P. Unique chromatine remodeling and transcriptional regulation in spermatogenesis // Science. 2002. V.296. P.2176−2178.
  281. Sawhney P., Giammona C.J., Meistrich M.L., Richburg J.H. Cisplatin-induced long-term failure of spermatogenesis in adult C57/B1/6J mice // J. Androl. 2005. V.26. № 1. P.136−145.
  282. Sega G. A, Owens J.G. Methylation of DNA and protamine by methyl methanesulfonate in the germ cells of male mice //Mutat. Res. 1983. V.lll. P.227−244.
  283. Selva D.M., Tirado O.M., Toran M. et al. Meiotic arrest and germ cell apoptosis in androgen-binding protein transgenic mice // Endocrinology. 2000. V.141. P. l 168−1178.
  284. Sette C., Dolci S., Geremia R., Rossi P. The role of stem cell factor and of alternative c-kit gene products in the establishment, maintenance and function of germ cells // Int. J. Dev. Biol. 2000. V.44. P.599−608.
  285. Schoenfeld H.A., Hall S.J., Boekelheide K. Continuously proliferative stem germ cells partially repopulate the aged, atrophic rat testis after gonadotropin-releasing hormone agonist therapy // Biol. Reprod. 2001. V.64. P.1273−1282.
  286. Schrans-Stassen B. H, Saunders P. T, Cooke H. J, de Rooij D.G. Nature of the spermatogenic arrest in DazF- mice // Biol. Reprod. 2001. V.65. № 3. P.771−776.
  287. Schwartz D, Goldfinger N, Kam Z, Rotter V. p53 controls low DNA damage-dependent pre-meiotic checkpoint and facilitates DNA repair during spermatogenesis // Cell Growth Differ. 1999. V.10. № 10. P.665−75.
  288. Sharpe R. M, McKinnell C, Kivlin C, Fisher J.S. Proliferation and functional maturation of Sertoli cells, and their relevance to disorders of testis function in adulthood // Reproduction. 2003. V.125. № 6. P.769−784.
  289. Shimura M, Tanaka Y, Nakamura S, et al. Micronuclei formation and aneuploidy induced by Vpr, an accessory gene of human immunodeficiency virus type 1 // FASEB J. 1999. V.13. № 6. P.621−637.
  290. Shinohara T, Orwig K. E, Avarbock M. R, Brinster R.L. Restoration of spermatogenesis in infertile mice by Sertoli cell transplantation // Biol. Reprod. 2003. V.68. P.1064−1071.
  291. Shirley C. R, Hayashi S, Mounsey S, Yanagimachi R, Meistrich M.L. Abnormalities and reduced reproductive potential of sperm from Tnpl- and Tnp2-null double mutant mice // Biol. Reprod. 2004. V.71. № 4 P.1220−1229.
  292. Sinha-Hikim A. P, Lue Y, Diaz-Romero M. et al. Deciphering the pathways of germ cell apoptosis in the testis // Steroid Biochem. Mol. Biol. 2003. V.85. P.175−182.
  293. Sinha-Hikim A. P, Swerdloff R.S. Hormonal and genetic control of germ cell apoptosis in the testis // Rev. Reprod. 1999. V.4. № 1. P.38−47.
  294. Sinha A, Rao A.R. Induction of shape abnormality and unscheduled DNA synthesis by areco-line in the germ cells of mice // Mutat. Res. 1985. V.158. P.189−192.
  295. Siu M. K, Cheng C.Y. Dynamic cross-talk between cells and the extracellular matrix in the testis // Bioessays. 2004. V.26. № 9. P.978−992.
  296. Speed R. R, Taggart M, Cooke H.J. Spermatogenesis in testes of Dazl null mice after transplantation of wild-type germ cells // Reproduction. 2003. V.126. P.599−604.
  297. Sriraman V, Anbalagan M, Rao A.J. Hormonal regulation of Leydig cell proliferation and differentiation in rodent testis: a dynamic interplay between gonadotrophins and testicular factors // Reprod. Biomed. Online. 2005. V.ll. № 4. P.507−518.
  298. Steger K. Haploid spermatids exhibit translationally repressed mRNAs // Anat. Embryol. (Berl). 2001. V.203. № 5. P.323−334.
  299. Steiner R.A. Bremner W.J. Clifton D.K. Dorsa D.M. Reduced pulsatile luteinizing hormone andtestosterone secretion with aging in the male rat // Biol. Reprod. 1984. V.31. R251−258.
  300. Sutton K.A. Molecular mechanisms involved in the differentiation of spermatogenic stem cells // Rev. Reprod. 2000. V.5. P.93−98.
  301. Suzuki N., Withers H.R. Exponential decrease during aging and random lifetime of mouse spermatogonial stem cells // Science. 1978. V.202. P.1214−1215.
  302. Swain A., Lovell-Badge R. Mammalian sex determination: a molecular drama // Genes & Dev. 1999. V.13. P.755−767.
  303. Syed V., Hecht N.B. Disruption of germ cell-Sertoli cell interactions leads to spermatogenic defects // Mol. Cell Endocrinol. 2002. V.186. № 2. P.155−157.
  304. Szekely A.M., Chen Y.-H., Zhang C. et al. Werner protein recruits DNA polymerase 8 to the nucleolus //PNAS. 2000. V.97. №.21. P.11 365−11 370.
  305. Szilard L. On the nature of the aging process // PNAS. 1959. V.45. P.30−45.
  306. Takeda T., Hosokawa M., Takeshita S., et al. A new murine model of accelerated senescence // Mech. Aging Dev. 1981. V.17. P.183−194.
  307. Takeda T., Hosokawa M., Huguchi K. Senescence-accelerated mouse (SAM). A novel murine model of aging // In. The SAM model of senescence (ed. Takeda T.). Amsterdam-London-New York-Tokyo.: Excerpta Medica. 1994. P.15−22.
  308. Takeda T., Hosokawa M., Higuchi K. Senescence-accelerated mouse (SAM): a novel murine model of senescence // Exp. Gerontol. 1997a. V.32. P.105−109.
  309. Takeda T., Matsushita T., Kurozumi M., et al. Pathobiology of the senescence-accelerated mouse (SAM) //Exp. Gerontol. 1997b. V.32. P.117−127.
  310. Tanaka H., Baba T. Gene expression in spermiogenesis // CMLS. Cell. Mol. Life Sci. 2005. V.62. P.344−354.
  311. Tegelenbosch R., de Rooij D.A. Quantitative study of spermatogonial multiplication stem cell renewal in the C3H/101F1 hybrid mouse // Mutat. Res. 1993. V.290. P.193−200.
  312. Thomas N.S., Ennis S., Sharp A.J. et al. Maternal sex chromosome non-disjunction: evidence for X chromosome-specific risk factors // Hum. Mol. Genet. 2001. V.10. № 3. P.243−250.
  313. Toppari J., Lahdetie J., Harkonen P., et al. Mutagen effects on rat seminiferous tubules in vitro: induction of meiotic micronuclei by adriamycin // Mutat. Res. 1986. V.171. P.149−156.
  314. Wolgemuth D.J., Rhee K., Wu S., Ravnik S.E. Genetic control of mitosis, meiosis and cellular differentiation during mammalian spermatogenesis // Reprod. Fertil. Dev. 1995. V.7. № 4. P.669−683.
  315. Wong K.-K., Maser R.S., Bachoo R.M. et al. Telomere dysfunction and Atm deficiency compromises organ homeostasis and accelerates ageing // Nature. 2003. V.421. P.643−648.
  316. Woolveridge I., de Boer-Brouwer M., Taylor M.F. et al. Apoptosis in the rat spermatogenic epithelium following androgen withdrawal: changes in apoptosis-related genes // Biol. Reprod. 1999. V.60. P.461−470.
  317. Wyllie A.H. Apoptosis: brief survey // Apoptosis. 1997. V.53. № 3. P.451−455.
  318. Wyrobek A.J., Bruce W. The induction of sperm-shape abnormalities in mice and humans // Chemical mutagens, V.5, Plenum press, N. Y. London. 1978. P. 258−286.
  319. Wyrobek A.J., Watchmaker G., Gordon L. An evaluation of sperm tests as indicators of Germ-cell damage in men exposed to chemical or physical agents // Teratogenesis, Carcinogenesis, and Mutagenesis. 1984. V.4. P.83−107.
  320. Xia C., Higuchi K., Shimizu M., et al. Genetic typing of the senescence-accelerated mouse (SAM) strains with microsatellite markers // Mamm. Genome. 1999. V.10. P.235−238.
  321. Xu B., Kim S.-T., Lim D.-S., Kastan M.B. Two molecularly distinct G2/M checkpoints are induced by ionizing irradiation // Mol. Cell. Biol. 2002. V.22. № 4. P.1049−1059.
  322. Yan W., Samson M., Jegou B., Toppari J. Bcl-w forms complexes with Bax and Bak, and elevated ratios of Bax/Bcl-w and Bak/Bcl-w correspond to spermatogonial and spermatocyte apoptosis in the testis //Mol. Endocrinol. 2000a. V.14. № 5. P.682−699.
  323. Yan W., Suominen J., Toppari J. Stem cell factor protects germ cells from apoptosis in vitro // J. Cell Sci. 2000b. V.113 № 1. P.161−168.
  324. Yin Y., Stahl B.C., DeWolf W.C., Morgentaler F. P53 mediated germ cell quality control in spermatogenesis //Devel. Biol. 1998. V.204. P.165−171.
  325. Ying Y., Liu X.M., Marble A. et al. Requirement of Bmp8b for the generation of primordial germ cells in the mouse // Mol. Endocrinol. 2000. V.14. P.1053−1063.
  326. Ying Y., Qi X., Zhao G.Q. Induction of primordial germ cells from murine epiblasts by syner-getic action of Bmp4 and Bmp8b signaling pathways // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2001. V.98. P.7858−7862.
  327. Ying Y., Zhao G.Q. Cooperation of endoderm derived Bmp2 and extraembryonic ectoderm-derived Bmp4 in primordial germ cell generation in the mouse // Dev. Biol. 2001. V.232. P.484−492.
  328. Young K.A., Zirkin B.R., Nelson R J. Testicular regression in response to food restriction and short photoperiod in white-footed mice (Peromyscus leucopus) is mediated by apoptosis // Biol.Reprod. 2000. V.62. № 2. P.347−354.
  329. Zhao G, Garbers D.L. Male germ cell specification and differentiation // Dev. Cell. 2002. V.2. P.537−547.
  330. Zhao M, Shirley C. R, Hayashi S. et al. Transition nuclear proteins are required for normal chromatin condensation and functional sperm development // Genesis. 2004. V.38. № 4. P.200−213.
  331. Zhao M, Shirley C. R, Mounsey S, Meistrich M.L. Nucleoprotein transitions during spermio-genesis in mice with transition nuclear protein Tnpl and Tnp2 mutations // Biol, Reprod. 2004. V.71. № 3. P.1016−1025.
  332. Zhang R. D, Wen X. H, Kong L.S. et al. A quantitative (stereological) study of the effects of experimental unilateral cryptorchidism and subsequent orchiopexy on spermatogenesis in adult rabbit testis // Reproduction. 2002. V.124. P.95−105.
  333. Zhang X. S, Ebata K. T, Robaire B, Nagano M.C. Aging of Male Germ Line Stem Cells in Mice // Biol. Reprod. 2006a. V.74. № 1. P.119−124.
  334. Zhang X, Yamamoto N, Soramoto S, Takenaka I. Cisplatin-induced germ cell apoptosis in mouse testis // Archiv. Androl. 2001. V.46. P.43−49.
  335. Zhang X. S, Zhang Z. H, Jin X. et al. Dedifferentiation of adult monkey Sertoli cells through activation of ERK½ kinase induced by heat treatment // Endocrinology. 2006b. V.143. № 3. P.1237−1245.
  336. Zhang Z. H, Hu Z. Y, Song X.X. et al. Disrupted expression of intermediate filaments in the testis of rhesus monkey after experimental cryptorchidism // Int. J. Androl. 2004. V.27. № 4. P.234−239.
  337. Zhang Z. H, Renfree M. B, Short R.V. Successful Intra- and Interspecific Male Germ Cell Transplantation in the Rat // Biol. Reprod. 2003. V.68. P.961−967.
  338. Zirkin B. R, Chen H. Regulation of Leydig cell steroidogenic function during aging // Biol. Reprod. 2000. V.63. № 4. P.977−981.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!