Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Морфологическая и иммуногистохимическая характеристика селезенки при хроническом стрессе в раннем постнатальном онтогенезе

Диссертация: Морфологическая и иммуногистохимическая характеристика селезенки при хроническом стрессе в раннем постнатальном онтогенезе
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Селезенка является крупнейшим лимфоидным органом в организме человека и млекопитающих, вносящим весомый вклад в развитие и поддержание клеточного и гуморального иммунного ответа, врожденного и приобретенного иммунитета, количественный и качественный состав иммуноцитов крови, лимфы и других лимфоидных органов. Ее развитие в раннем постнатальном онтогенезе сопровождается взаимодействием… Читать ещё >

Содержание

  • Список сокращений
  • Глава 1. Обзор литературы
    • 1. 1. Селезенка как периферический орган иммуногенеза в норме и при иммуномодуляционных воздействиях
      • 1. 1. 1. Иммуноархитектоника маргинальной зоны селезенки
      • 1. 1. 2. Иммуноархитектоника белой пульпы селезенки
        • 1. 1. 2. 1. Иммуноморфология В-клеточного субкомпартмента белой пульпы (лимфоидных узелков)
        • 1. 1. 2. 2. Стромально-паренхиматозные взаимоотношения в В-клеточном субкомпартменте селезенки
        • 1. 1. 2. 3. Иммуноморфология Т-зон селезенки
        • 1. 1. 2. 4. Недавние тимусные иммигранты и их роль в поддержании иммунного статуса организма
        • 1. 1. 2. 5. Стромально-паренхиматозные взаимоотношения в Т-клеточном субкомпартменте селезенки и происхождение стромальных клеток
      • 1. 1. 3. Иммуноморфология красной пульпы селезенки
        • 1. 1. 3. 1. Стромально-лимфоидные взаимоотношения в красной пульпе и маргинальной зоне
    • 1. 2. Микроархитектоника селезенки при иммуномодулирущих воздействиях
    • 1. 3. Стресс и его иммуномодулирующее действие
      • 1. 3. 1. Влияние острого стресса на микроструктуру селезенки
      • 1. 3. 2. Влияние хронического стресса на иммуноархитектонику селезенки
  • Глава 2. Материал и методы исследования
  • Глава 3. Результаты исследования
    • 3. 1. Влияние разных видов хронического стресса на массу тела и органометрические параметры экспериментальных животных
    • 3. 2. Морфологическая и иммуноцитохимическая характеристика селезенки крыс в норме на разных этапах раннего постаатального онтогенеза
    • 3. 3. Морфологическая и иммуноцитохимическая характеристика селезенки при хроническом действии психологического стрессора
    • 3. 4. Морфологическая и иммуноцитохимическая характеристика селезенки крыс при хроническом действии физического стрессора
    • 3. 5. Количественный иммуногистохимический анализ селезенки неполовозрелых крыс разных возрастных групп при хроническом стрессе

Морфологическая и иммуногистохимическая характеристика селезенки при хроническом стрессе в раннем постнатальном онтогенезе (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность исследования.

Стресс запускает в организме цепь интегрированных реакций нервной, эндокринной и иммунной систем, обусловленных активацией гипотапамо-гипофизарно-адренокортикалыюй (ГГНО) и симпато-адреналовой осей, приводящих к сложным иммуномодуляционным изменениям, которые особенно легко провоцируются в раннем постнатальном онтогенезе из-за морфо-функционапьной незрелости лимфоидных органов, отсутствия устойчивых связей между ними, их компартментами и субкомпартментами, иммуноцитами и их микроокружением. При этом стресс-ассоциированная иммуномодуляция является многофакторным явлением, и различные стрессоры и характеристики стресса могут оказывать противоположное действие на иммунный ответ, что необходимо учитывать при прогнозировании диапазона, амплитуды и направленности стресс-ассоциированных иммуномодуляционных сдвигов в растущем организме [28, 3,225,134J.

Селезенка является крупнейшим лимфоидным органом в организме человека и млекопитающих, вносящим весомый вклад в развитие и поддержание клеточного и гуморального иммунного ответа, врожденного и приобретенного иммунитета, количественный и качественный состав иммуноцитов крови, лимфы и других лимфоидных органов [23, 48]. Ее развитие в раннем постнатальном онтогенезе сопровождается взаимодействием и установлением связей между гемопоэтическими и стромальными клеточными популяциями многочисленных микроанатомических зон на территории органа. Лимфодеструктивное, лимфодегенеративное и лимфопролиферативное действие стресса способно изменить эти взаимоотношения и привести к продолжительному нарушению иммунного ответа [88, 75, 78]. Однако до сих пор не достигнуто полного понимания природы стромальных клеток селезенки, их происхождения, закономерностей распределения по субкомпартментам органа и механизмов влияния на лимфоидные клетки при стрессене определена природа фолликулярных дендритных клетокне выяснены закономерности созревания и дифференцировки дендритных интердигитирующих клетоксуществуют разногласия в понимании природы ретикулярных звездчатых клеток и т. д., что связало с недостатком исследований лимфоидной и стромальной архитектоники органов иммуногенеза, особенно в детском возрасте, и затрудняет понимание закономерностей становления эффективного иммунного ответа в раннем постнатальном онтогенезе [71,222,38,74,212].

Основным проявлением стресс-ассоциированных иммуносупрессивных сдвигов в иммунных органах, в частности в селезенке как наиболее компартментализованном среди них, является гипоцеллюлярность лимфоидной ткани, среди причин которой указывают нарушение трафика иммуноцитов (как притока, так и оттока), избыточная гибель, заторможенная пролиферация и нарушение сигнальных взаимодействий. При этом было неоднократно продемонстрировано, что по мере старения организма механизмы постстрессовой иммуномодуляции претерпевают определенную динамику, однако в раннем постнатальном онтогенезе она остается мало изученной [14,44, 151, 250,256].

Ввиду выше изложенного, мы провели изучение действия различных видов хронического стресса на иммунный статус организма экспериментальных животных на уровне периферического звена иммунной системы и его крупнейшего органа — селезенки — на ранних этапах постнатального онтогенеза с использованием методов количественной иммуногистохимии.

Целью настоящего исследования является выявление закономерностей адаптации селезенки при хроническом действии стресса в раннем постнатальном онтогенезе.

Для достижения данной цели были поставлены следующие задачи: 1. Охарактеризовать возрастные иммуно-модуляционные сдвиги в селезенке в раннем постнатальном онтогенезе.

2.Изучить динамику клеточных популяций иммуноцитов различных компартментов селезенки при хроническом действии физических и психологических стрессоров.

3. Определить механизмы постстрессовых иммуномодуляционных сдвигов на уровне периферического звена иммунной системы растущего организма.

Материалы и методы.

Экспериментальное исследование проведено на неполовозрелых белых крысах породы Sprague Dawley в возрасте 14, 21 и 30 дней, что соответствует грудному, подсосному и преювенильному периоду. Воспроизведены модели хронического стресса с использованием преимущественно физического или психологического стрессоров, позволяющие провести сравнительное изучение характера иммуномодуляционых изменений в периферическом звене иммунной системы — селезенке — в их возрастном аспекте.

Изменения компартментализации селезенки, соотношения красной и белой пульпы, Ти В-зон, стромально-паренхиматозных взаимоотношений изучены на продольных серийных срезах селезенки, окрашенныхгематоксилин-эозином, по Ван Гизону, по Браше и моноклональными антителами против CD3, CD4, CD8a, CD20, CD90, CD45RC, выявляющими различные фракции лимфоидных клетокCD68, 0X62 и S100 для выявления нелимфоидных клеток, а также PCNA и каспазы-3 для характеристики уровня пролиферации и апоптоза спленоцитов.

Иммуногистохимически окрашенные срезы оценивались количественно с помощью цифрового анализа в программе ImageProPIus и с использованием программы Excel для статистической обработки данных с вычислением средней арифметической, среднеквадратического отклонения, средней ошибки средней арифметической, коэффициента корреляции, необходимого числа исследованиявыявлением различий по критерию Стыодента.

Результаты исследования.

Проведенное исследование позволило получить данные об иммуномодуляционных сдвигах в крупнейшем периферическом органе иммуногенеза — селезенке — при хроническом действии разных стрессоров (физического и психоэмоционального) в различные возрастные периоды раннего постнатального онтогенеза. Применение количественного иммуногистохимического анализа позволило выявить опосредованные возрастом стресс-ассоциированные изменения иммуносупрессивного характера в различных компартментах селезенки и нарушение стромалыю-паренхиматозных соотношений в ней.

Научная новизна исследования.

Впервые с применением количественного иммуноцитохимического анализа выявлены иммуномодуляционные изменения в селезенке неполовозрелых крыс различных возрастных групп при хроническом стрессе, вызванном различными по природе стрессорами (физическими и психологическими) и определены их диапазон и амплитуда.

Теоретическое значение работы заключается в выяснении механизмов иммуносупрессивных сдвигов на уровне периферического звена иммуногенеза с учетом их возрастной специфичности в раннем постнатальном онтогенезе.

Практическая значимость работы заключается в выделении критериев оценки глубины стресс-ассоциированной иммуносупрессии на уровне крупнейшего периферического органа иммунной системы — селезенки — для использования их при разработке новых терапевтических стратегий профилактики и лечения иммунодефицитных состояний.

Внедрение в практику: полученные научные данные используются в учебном процессе на кафедре анатомии человека и кафедре иммунологии и аллергологии ВолГМУ.

Публикации и апробация материалов диссертации. Материалы диссертации докладывались на VII конгрессе международной ассоциации морфологов, Казань, 16 сентября 2004 годана юбилейной конференции с международным участием «Современные проблемы науки и образования», посвященная 10-летию Российской академии естествознания, г. Москва, 5−6 декабря 2005 г.- на конференции «Фундаментальные и прикладные проблемы медицины и биологии», Дубай, ОАЭ, 13−20 октября 2006 г.- на конференции, посвященной 70-летию Тверской государственной медицинской академии и 100-летию со дня рождения основателя кафедры анатомии человека, проф. И. С. Кудрина, Тверь, сентябрь, 2006; на III конференции «Фундаментальные и прикладные исследования в медицине», 1−8 октября 2006 г., Лутраки (Греция), на заседании Волгоградского отделения Всероссийского научного общества анатомов, гистологов и эмбриологов, март, 2007.

Результаты исследования отражены в 6 научных публикациях, среди которых 2 — в журналах, рекомендованных ВАК РФ для опубликования материалов диссертаций. Положения, выносимые на защиту:

1. Постстрессовая динамика клеточных популяций иммуноцитов в различных компартментах селезенки растущего организма имеет возрастную зависимость и определяется видом действующего стрессора.

2. Стресс-ассоциированные иммуномодуляционные сдвиги в селезенке экспериментальных животных в раннем постнаталыюм онтогенезе имеют как гемопоэтическое, так и стромальное происхождение, в соотношениях, опосредованных онтогенетически.

выводы.

1.Иммуномодуляционное действие хронического стресса на уровне периферического звена иммунной системы — селезенки — в раннем постнатальном онтогенезе у крыс проявляется изменениями иммуносупрессивного характера в Ти В-клеточном компартментах белой пульпы, соотношение и выраженность которых связана с исходным возрастом животных и характером стрессорного воздействия.

2. При хроническом действии психологического стрессора снижение объема белой пульпы связано преимущественно с редукцией Т-клеточных компартментов вследствие уменьшения размеров ПАЛВ, снижения их клеточности, уменьшения удельной площади CD90+ и CD8+ лимфоцитов. Уменьшение объема белой пульпы при хроническом действии физического стрессора обусловлено дегенерацией как Т-клеточных, так и В-клеточных субкомпартментов: уменьшением размеров и числа лимфоидных узелков, редукцией ПАЛВ, сужением маргинальной зоны вокруг лимфоидных узелков и ПАЛВ, что наряду с уменьшением удельной площади CD90+H CD8+ клеток сопровождается сокращением популяций CD20+ и С045ЯС+клеток и является проявлением зависимости топографии стресс-ассоциированных сдвигов в иммуноархитектонике селезенки в раннем постнатальном онтогенезе от вида примененного стрессора.

3.В раннем постнатальном онтогенезе хронический стресс оказывает влияние как на лимфоидные, так и стромальные элементы Ти В-клеточных субкомпартментов белой пульпы селезенки в соотношениях и диапазоне, имеющих возрастную зависимость и соответствующих виду стресса. При этом, по данным иммуногистохимического имидж-анализа, ОХ-62+ дендритные клетки ПАЛВ оказываются, в целом, менее чувствительными к действию стресса, чем белок S100+ фолликулярные дендритные клетки лимфоидных узелков, а Т-лимфоциты ПАЛВ — менее зависимыми от стабилизирующего действия стромальных клеток, чем В-лимфоциты лимфоидных узелков.

4.Возрастное увеличение доли недавних тимусных иммигрантов коррелирует с нарастанием плотности дендритных клеток в Т-зонах, в то время как уменьшение числа дендритных клеток ПАЛВ при хроническом стрессе не обнаруживает значимой корреляции со снижением числа недавних тимусных иммигрантов (Thy 1.1+клеток), а также CDS+иммунореактивных клеток.

5.При хроническом психо-эмоциональном стрессе в исходном грудном возрасте преобладающим механизмом гипоплазии белой пульпы является уменьшение интенсивности трафика лимфоцитов из тимуса в Т-клеточные субкомпартменты, о чем свидетельствует достоверное снижение числа С090+клеток в ПАЛВ, в то время как в более старших возрастных группахусиление апоптоза (наибольшее — в В-зонах) и торможение пролиферации (наибольшее — в Т-зонах) лимфоцитов.

6.Наибольшая степень иммуносупрессивных сдвигов в микроструктуре В-зон селезенки отмечается в более ранние периоды, в то время как Т-зон — на более поздних этапах развития, что свидетельствует о возрастной зависимости изменений иммуноархитектоники селезенки при хроническом стрессе в раннем постнатальном онтогенезе.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Г. Г. Медицинская морфометрия. Руководство.- М.: Медицина, 1990.-384с.
  2. И.Г. Нейроиммуноэндокринные взаимодействия: их роль в дисрегуляторной патологии // Патол. физиол. эксп. тер.- 2001.-N4.-C.3−10.
  3. И.Г. Нейроиммуноэндокринология: истоки и перспективы развития // Усп. физиол. наук.- 2003.- Т.34.- N4.- С.4−15.
  4. И.Г., Волкова О. В., Гриневич В. В., Рссненко А. Б. Эволюционные аспекты стрессорной реакции // Вестник Российской Академии медицинских наук. 2002. — N 6. — С. 24−27.
  5. И. Г., Гриневич В. В. От нейроэндокринологии к нейроиммуно-эндокринологии // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. -2001.-Том 131.-N 1.-С.22−32.
  6. Г. Г., Григоренко Д. Е., Волкова Л. В. Клеточный состав лимфоидной ткани структурных компонентов селезенки мышей при физических нагрузках // Бюлл. эксп. биол. мед.- 1994.- Т. 118.- № 8.- С. 166 168.
  7. А.А. Строение лимфоидных структур селезенки крыс при воздействии острого эмоционального стресса // Морфология.- 2004.-T.126.-N1.- С.55−58.
  8. М.З., Азнауряп А. В. Изменения структуры и функции макрофагов селезенки в условиях злокачественного роста // Морфология.-2004. Т. 126.- N 5.- С.45−48.
  9. Ю.И., Седова JI.A., Сслятицкая В. Г., Шорин Ю.П.
  10. Сочетанная реакция лимфоидных органов и надпочечников на стресс у взрослых животных, испытавших воздействие холодом в раннем периоде постнатального онтогенеза.- Арх. анат., гистол. эмбриол.- 1989.- Т.96.-№ 1.- С.73−78.
  11. П.Вихрук Т. И., Ткачук М. Г. Строение тимуса, селезенки и паховых лимфатических узлов белых крыс при иммунокоррекции в процессе адаптации к физическим нагрузкам // Арх. анат.- 1991.- Т. 100.- № 6.- С.56−60.
  12. Л.В. Морфофункциональные изменения в тимусе и селезенке при стрессовых воздействиях. Дис. д.м.н М., 1996 — 186с.
  13. Е.В. Особенности реакции лимфоидных органов крыс на острое стрессорное воздействие при гипокинезии // Косм. биол. и авиакосм, медицина.- 1984.- Т.18.-№ 5.- С. 50−54.
  14. К.А., А.мипова Г. Г. Изменения клеточного состава селезенки белых крыс под влиянием пресных ванн // Морфология.- 2004.- Т.125.-N2.- С.55−58.
  15. О.Н., Чихман В. Н. Структура белой пульпы селезенки и показатели периферической крови у крыс в условиях повышенной мышечной деятельности // Морфология, — 1999.- Т.116.- N6.- С.65−68.
  16. Т. Б. Ягмуров О.Д., Огурцов Р. П. Функциональная морфология селезенки и лимфоидного аппарата при стрессе // Арх.пат.-1995.- T.57.-N1.-C.56−61.
  17. И.П., Западшок В. И., Захарпя Е. Ф. Лабораторные животные. 2-е издание.- Киев: «Вища школа», 1974.- 303 с.
  18. М.Ю., Кузнецов С. Л., Клаучек С. В., Мохд Исмаил З.И., Улла М., Федорова О. В. Особенности акцидентальной инволюциитимуса в растущем организме при воздействии различных видов стрессоров //Морфология.- 2006.- Т. 130.- N6.- С.56−61.
  19. Н.А., Смородченко А. Т. Гистохимическая характеристика структур лимфоидных органов крыс под действием стресса // Бюлл. эксп. биол. мед.- 1999.- Т. 127.- N2.- С.171−183.
  20. Е.А., Парфенов А. Ф. Цитологический состав паренхимы селезенки поросят 2- и 4-месячного возраста // Морфология, — 2005.-T.127.-N1.- С.41−42.
  21. О. В., Горская Ю. Ф., Шуклппа Е. Ю. и др. Анализ изменений количества стромальных клеток-предшественников в тимусе и селезенке животных различных возрастных групп // Морфология. -2005. — Т. 127.- N3.- С.41−44.
  22. А.В., Богомолова II.II., Пнголкппа Е. Ю., Чернов Н. В. Судебно-медицинское значение морфометрии селезенки при наркомании и хронической алкогольной интоксикации // Суд. мед. эксперт.- 2004.-Т.47.- N3.- С.27−29.
  23. Л.А., Оськина И. Н., Шпхсвпч С. Г. Морфофункциональные характеристики селезенки у крыс разного поведения после воздействия рестрикционного стресса // Морфология.- 2004.- Т. 125.- N1.- С.59−63.
  24. Родионова-Прочан О.А., Падсров Ю. М. Особенности процессов формообразования селезенки мелких грызунов в условиях техногенного воздействия // Морфология.- 2004.- Т. 126.- N4.- С. 105.
  25. Родионова-Прочан О.А., Падсров Ю. М. Возрастные изменения гистологических показателей селезенки красной полевки в условиях техногенного воздействия // Морфология.- 2004.- Т.126.- N4.- С. 106.
  26. М.Р. Состояние органов иммунной системы после воздействия интенсивных физических нагрузок и в период восстановления // Вестн. Росс.Акад.Мед.Наук.- 2001.- N12.- С.20−22.
  27. М.Р., Ерофеева Л. М., Грнгоренко Д. Е., Федоренко Б.С.
  28. Особенности реакции различных функциональных зон тимуса и лимфоидной ткани селезенки мышей на гамма-облучение // Бюлл. эксп. биол. мед.- 1998.- Т.125.- Т4.- С.469−473.
  29. М.Р., Никитюк Д. Б. Иммунная система, стресс и иммунодефицит. М.: Джангар, 2000.- 184С.
  30. М.Р., Этинген JI.E. Иммунная система человека. М., Медицина, 1996,225 с.
  31. Т.С., Ягмуров О. Д. Строение и функции селезенки // Морфология.- 1993.- Т. 104.- № 5−6.- С.142−159.
  32. М.Г. Восстановительные процессы в тимусе и селезенке после прекращения воздействия физических нагрузок // Морфологические ведомости.-2004.- N1−2.-C.39−40.
  33. В.Г., Бедров Я. А., Орднп Н. Э., Венцов А. В., Пивина С. Г. Характеристика основных параметров гормональной функции коры надпочечников и ее модификация в онтогенезе у крыс // Журн. эволюц. биохимии и физиологии.- 2001.- Т.37.- N2.- С.134−138.
  34. .А. Лимфоидные структуры селезенки после введения полиоксидония //Морфология.- 2004.- Т.125.- N1.- С.64−66.
  35. О.Д. Морфофункциональная характеристика иммунной системы человека при операционном стрессе // Архив патологии. 1999. — Т.61.-N6.- С. 10−16.
  36. Ader R., Cohen N. Psychoneuroimmunology: conditioning and stress // Annu. Rev. Psychol.- 1993.- Vol.44.- P.53−85.
  37. Aguas A.P., Esaguy N., Grande N., Castro A.P., Castelo Branco N.A. Effect low frequency noise exposure on BALB/c mice splenic lymphocytes // Aviat. Space Environ. Med.- 1999.- Vol.70.- N3.- Pt.2.- A128−131.
  38. Anderson G., Hare K.J., Jcnkinson E.J. Positive selection of thymocytes: the long and winding road // Immunol Today.- 1999.- Vol.20.- N10.- P.463−468.
  39. Anjucrc F., Martin P., Fcrrero I., Fraga M.L., del Hoyo G.M., Wright N., Ardavin C. Definition of dendritic cell subpopulations present in the spleen, Peyer’s patches, lymph nodes, and skin of the mouse // Blood.- 1999.- Vol.93.-N2.- P.590−598.
  40. Amsen D., Blander J.M., Lee G.R., Tanigaki K., Honjo Т., Flavell R.A.1.struction of distinct CD4 T helper cell fates by different notch ligands on antigen-presenting cells // Cell.- 2004.- Vol.117.- N4.- P.515−526.
  41. Archana R., Namasivayam A. A comparative study of different crude extracts of Ocimum sanctum on noise stress // Phytother. Res.- 2002.- Vol.16.- N6.-P.579−580.
  42. Atoji Y., Shirogane D., ct al. S-100-immunoreactive giant macrophages in lymphoid tissues of the guinea pig // Acta Anat (Basel).- 1991.- Vol.140.- N1.-P. 17−25.
  43. Aviles H., Johnson M.T., Monroy F.P. Effects of cold stress on spleen cell proliferation and cytokine production during chronic Toxoplasma gondii infection //Neuroimmunomodulation.- 2004.- Vol.11.- N2.- P.93−102
  44. Avitsur R., Kavelaars A., Hcijncn C., Sheridan J.F. Social stress and the regulation of tumor necrosis factor-alpha secretion // Brain Behav. Immun.-2005.- Vol. 19.- N4.P.311−317.
  45. Balogh P., Aydar Y., Tew J.G., Szakal A.K. Appearance and phenotype of murine follicular dendritic cells expressing VCAM-1 // Anat. Rec.- 2002.- Vol. 268.- P.160−168.
  46. Balogh P., Horvath G., Szakal A.K. Immunoarchitecture of distinct reticular fibroblastic domains in the white pulp of mouse spleen // J. Histochem. Cytochem.- 2004.- Vol.52.-N10.- P. 1287−1298.
  47. Bartolomucci A., Palanza P, Gaspani L., Limiroli E., Panerai A.E., Cercsini G., Poli M.D., Parmigiani S. Social status in mice: behavioral, endocrine and immune changes are context dependent // Physiol. Behav.-2001.- Vol.73.- N3.- P.401−410.
  48. Bartolomucci A., Sacerdote P., Panerai A.E., Pederzani Т., Palanza P., Parmigiani S. Chronic psychosocial stress-induced down-regulation of immunity depends upon individual factors // J. Neuroimmunol.- 2003,-Vol.141.- N1−2.- P.58−64
  49. Bertrand J.Y., Desanti G.E., Lo-Man R., Lcclcrc C., Cumano A., Golub R.
  50. Fetal spleen stroma drives macrophage commitment // Development.- 2006.-Vol.133.-N18.- P.3619−3628.
  51. Berzins S.P. Boyd R.L., Miller J.F.A.P. The role of the thymus and recent thymic migrants in the maintenance of the adult peripheral lymphocyte pool // J. Exp. Med.-1998.- Vol.187.- N1 l.-P.l839−1848.
  52. Berzins S.P., Godfrey D.I., Miller J.F., Boyd R.L. A central role for thymic emigrants in peripheral T cell homeostasis // Proc. Natl. Acad. Sci. U S A.-1999.- Vol.96.- N17.- P.9787−9791.
  53. Bhatnagar S., Dallman M. Neuroanatomical basis for facilitation of hypothalamic-pituitary-adrenal responses to a novel stressor after chronic stress //Neuroscience.- 1998.- Vol.84.- N4.- P. 1025−1039.
  54. Billian G., Mondierc P., Bcrard M., Bella C., Dcfrance T. Antigen receptor-induced apoptosis of human germinal center В cells is targeted to a centrocytic subset // Eur. J. Immunol.- 1997.- Vol.27.- N2.- P.405−414.
  55. Brenan M., Puklavec M. The MRC OX-62 antigen: a useful marker in the purification of rat veiled cells with the biochemical properties of an integrin // J. Exp. Med.- 1992.- Vol.175.- N6.- P.1457−1465.
  56. Bunco C., Bell E. CD45RC Isoforms Define Two Types of CD4 Memory T Cells, One of which Depends on Persisting Antigen // J. Exp. Med.- 1997.- Vol. 185.-N4.- P.767−776.
  57. Burton G.F., Conrad D.H., Szakal A.K., Tew J.G. Follicular dendritic cells and В cell costimulation // J.Immunol.- 1993.- Vol.150.- P.31−38.
  58. Burton G.F., Kcclc B.F., Estcs J.D., Thackcr T.C., Gartner S. Follicular dendritic cell contributions to HIV pathogenesis // Semin. Immunol.- 2002.-Vol.14.- N4.- P.275−284.
  59. Butch A. W., Chung G.-H., Hoffman J. W., Nahm M. H. Cytokine expression by germinal center cells //J. Immunol.- 1993.- Vol. 150.- P.39.
  60. Carbone A., Poletti A., ct al. S-100 protein detection in «follicular macrophages» of mouse lymphoid organs by ABC immunoperoxidase method // Int. J. Biol. Markers.- 1988.- Vol.3.- N1.- P.36−40.
  61. Choe J., Li L., Zhang X., Gregory C. I)., Choi Y.S. Distinct role of follicular dendritic cells and T cells in the proliferation, differentiation, and apoptosis of a centroblast cell line, L3055 // J. Immunol.- 2000.- Vol.164.- N1.- P.56−63.
  62. Cocchia D., Tiberio G., ct al. S-100 protein in «follicular dendritic» cells or rat lymphoid organs. An immunochemical and immunocytochemical study // Cell Tissue Res.- 1983.- Vol.230.- N1.- P.95−103.
  63. Cohen M.J., Shankar R., Stevenson J., Fernandez R, Gamclli R.L., Jones S.B. Bone marrow norepinephrine mediates development of functionally different macrophages after thermal injury and sepsis // Ann. Surg.- 2004.-Vol.240.-Nl.- P. 132−141.
  64. Dhabhar F.S., McEwen B.S. Acute stress enhances while chronic stress suppresses cell-mediated immunity in vivo: a potential role for leukocyte trafficking//BrainBehav. Immun. 1997.- Vol.11.- N4.- P.286−306.
  65. Dhabhar F.S., McEwen B.S. Enhancing versus suppressive effects of stress hormones on skin immune function // Proc. Natl. Acad.Sci. U S A.- 1999.-Vol.96.- N3.- 1059−1064.
  66. Dominguez-Gerpe L., Rcy-Mcmlez M. Alterations induced by chronic stress in lymphocyte subsets of blood and primary and secondary immune organs of mice // BMC Immunol.- 2001.- Vol.2.- N1.- C.7−17.
  67. Dustin M.L., Colnian D.R. Neural and immunological synaptic relations // Science.- 2002.- Vol.298.- P.785−789.
  68. El Fouhil A.F., Turknll R.M. Electron microscopic study on the effect of alternate-day hydrocortisone therapy on lymphocyte populations in rat spleen and lymph nodes // Toxicol. Pathol.- 1995.- Vol.23.- N1.- P.72−82
  69. Ellyard J.I., Avery D.T., Mackay C.R., Tangyc S.G. Contribution of stromal cells to the migration, function and retention of plasma cells in human spleen: potential roles of CXCL12, IL-6 and CD54 // Eur. J. Immunol.- 2005.-Vol.35.- N3.- P.699−708.
  70. Engler H., Stcfanski V. Social stress and T cell maturation in male rats: transient and persistent alterations in thymic function // Psychoneuroendocrinology.- 2003.- Vol.28.- N8.- P.951−969.
  71. Finkclman D., Morris S.C., Orckhova Т., Mori M., Donaldson D., Reiner S.L., Reilly N.L., Scliopf L., Urban Jr. J.F. Stat6 regulation of in vivo IL-4 responses// J. Immunol.-2000.- Vol.164.-N5.-P. 2303−2310.
  72. Fleshner M., Nguyen K.T., Cotter C.S., Watkins L.R., Maier S.F. Acute stressor exposure both suppresses acquired immunity and potentiates innate immunity//Am. J. Physiol.- 1998.- Vol.275.-N3.- Pt.-2.- R.870−878.
  73. Fogg D.K., Sibon C., Milcd C., Jung S., Aucouturier P., Littman D.R., Cumano A., Geissmann F. A clonogenic bone marrow progenitor specific for macrophages and dendritic cells // Science.- 2006.- Vol.311.- N5757/- P.83−87.
  74. Franceschi C., Valcnsin S. Fagnoni F., Barbi C., Bonafe M. Biomarkers of immunosenescence within an evolutionary perspective: the challenge of heterogeneity and the role of antigenic load // Exp. Gerontol.- 1999. Vol.34.-N8.- P.911−921.
  75. Franchimont D. Overview of the actions of glucocorticoids on the immune response: a good model to characterize new pathways of immunosuppression for new treatment strategies // Ann. N. Y. Acad. Sci.- 2004, — Vol.1024.- P. 124 137.
  76. Freidin E, Mustaca AE. Frustration and sexual behavior in male rats // Learn. Behav.- 2004.- Vol.32.- N3.- P.311−320
  77. Friedman E.M., Irwin M.R. A role for CRH and the sympathetic nervous system in stress-induced immunosuppression // Ann.N.Y.Acad.Sci.- 1995.-Vol.771.- P.396−418.
  78. Fu Y.X., Chaplin D.D. Development and maturation of secondary lymphoid tissues// Annu. Rev. Immunol.- 1999.- Vol.17.- P.399−433.
  79. Fu Y.-X., Huang G., Wang Y., Chaplin D.D. В lymphocytes induce the formation of follicular dendritic cell clusters in a lymphotoxin n-dependent fashion// J. Exp. Med.- 1998.- Vol.187.-P.1009.
  80. Gabor M.J., Godfrey D.I., Scollay R. Recent thymic emigrants are distinct from most medullary thymocytes // Eur. J. Immunol.- 1997.- Vol.27.- N8.-P.2010−2015.
  81. Gabor M.J., Scollay R., Godfrey D.I. Thymic T cell export is not influenced by the peripheral T cell pool // Eur. J. Immunol.- 1997.- Vol.27.- N 11.-P.2986−2993.
  82. Gagliardi M.C., Sallusto F., Marinaro M., Langenkamp A., Lanzavecchia A., De Magistris M.T. Cholera toxin induces maturation of human dendritic cells and licences them for Th2 priming // Eur. J. Immunol.- 2000.- Vol. 30.-N8.- P. 2394−2403.
  83. Garcia A., Marti O., Valles A., Dal-Zotto S., Armario A. Recovery of the hypothalamic-pituitary-adrenal response to stress. Effect of stress intensity, stress duration and previous stress exposure // Neuroendocrinology.- 2000.-Vol.72.- N2.- P. l 14−125.
  84. Gartner L.P., Hiatt J.L. Color Textbook of Histology. 2nd Edition. Philadelphia: WB Saunders Company, 2001.-577 P.
  85. Georas S.N. Inhaled glucocorticoids, lymphocytes, and dendritic cells in asthma and obstructive lung diseases // Proc. Am. Thorac. Soc.- 2004.- Vol.l.-N3.- P.215−221.
  86. George A.J.T., Ritter M.A. Thymic involution with ageing: obsolescence or good housekeeping? // Immunology today.- 1996.- Vol.6.- N17.- P.267−272.
  87. Gibbs F.E., Barraclough R., et al. Immunocytochemical distribution of the calcium-binding protein p9Ka in normal rat tissues: variation in the cellular location in different tissues // J. Histochem. Cytochem.- 1995.-Vol.43.- N2.-P.169−180.
  88. Gonzalez M., Mackay F., Browning J. L., Kosco-Vilbois M. H., Noelle R.
  89. J. The sequential role of lymphotoxin and В cells in the development of splenic follicles//J. Exp. Med.- 1998.- Vol.187.- P.997.
  90. Gretz J.E., Kaldjian E.P., Anderson A.O., Shaw S. Sophisticated strategies for information encounter in the lymph node: the reticular network as a conduit of soluble information and a highway for cell traffic // J. Immunol.-1996.- Vol.157.-P.495−499.
  91. Groer M.W., Hill J., Wilkinson J.E., Stuart A. Effects of separation and separation with supplemental stroking in BALb/c infant mice. Biol. Res. Nurs.// 2002.- Vol.3.- N3.- P. 119−131.
  92. Haimoto H., Hosoda S., Kato K. Differential distribution of immunoreactive SlOO-alpha and SlOO-beta proteins in normal nonnervous human tissues//Lab. Invest.- 1987.- Vol.57.- N5.- P.489−498.
  93. Hargreaves M., Bell E.B. Identical expression of CD45R isoforms by CD45RC+ 'revertant' memory and CD45RC+ naive CD4 T cells // Immunology.- 1997.- Vol.91.- N3.- P.323−330
  94. Haynes B.F., Markert M.L., Sempowski G.D., Patel D.D., Hale L.P. The role of the thymus in immune reconstitution in aging, bone marrow transplantation and HIV-1 infection // Ann. Rev. Immunol.- 2000.- Vol. 18.-P.529−560.
  95. Hazlewood M., Kumararatne D.S. The spleen? Who needs it anyway // Clin. Exp. Immunol. 1992.- Vol.89.- N3.- P.327−329.
  96. Heinemann D.E., Peters J.H. Follicular dendritic-like cells derived from human monocytes // BMC Immunol.- 2005.- N6.- P.23.
  97. Hosea H.J., Rector E.S., Taylor C.G. Zinc-deficient rats have fewer recent thymic emigrant (CD90+) T lymphocytes in spleen and blood // J. Nutr.- 2003.-Vol.133.- N12.- P.4239−424.
  98. Hosseinzadeh H., Goldschneider I. Recent thymic emigrants in the rat express a unique antigenic phenotype and undergo post-thymic maturation in peripheral lymphoid tissues//J. Immunol.- 1993.- Vol.150.-N5.p. 1670−1679.
  99. Hur D.Y., Kim D.J., Kim S., Kim Y.I., Clio D., Lee D.S., Hwang Y., Bae K., Chang K.Y., Lcc W.J. Role of follicular dendritic cells in the apoptosis of germinal center В cells // Immunol. Lett.- 2000.- Vol.72.- N2.-107−111.
  100. Hylkema M.N., van der Deen M., Pater J.M., Kanipinga J., Nieuwenhuis P., Groen H. Single expression of CD45RC and RT6 in correlation with T-helper 1 and T-helper 2 cytokine patterns in the rat // Cell Immunol. 2000.-Vol.199.-N2.- P.89−96.
  101. Igarashi, Medina K.L., Yokota Т., Rossi M.I., Sakaguchi N., Comp P.C., Kincade P.W. Early lymphoid progenitors in mouse and man are highly sensitive to glucocorticoids // Int. Immunol.- 2005.- Vol.17.- N5.- P.501−511.
  102. Iwakabe K., Shimada M., Olita A., Yahata Т., Ohmi Y., Habu S., Nishimura T. The restraint stress drives a shift in Thl/Th2 balance toward Th2-dominant immunity in mice // Immunol. Lett.- 1998.- Vol.62.- N1.- 39−43.
  103. Iwanaga Т., Fujita Т., ct al. S-100 protein-immunoreactive cells in the lymph node and spleen of the rat // Arch. Histol. Jpn.- 1982.-Vol.45.- N4.-P.393−397.
  104. Jain S., Bruot B.C., Stevenson J.R. Cold swim stress leads to enhanced splenocyte responsiveness to concanavalin A, decreased serum testosterone, and increased serum corticosterone, glucose, and protein // Life Sci.-1996.-Vol.59.- N3.- P.209−218
  105. Johnson S.A., Rozzo S.J., Cambier J.C. Aging-dependent exclusion of antigen-inexperienced cells from the peripheral В cell repertoire // J. Immunol.-2002.- Vol.168.- N10.- P.5014−5023
  106. Justice N.J., Jan Y.N. Variations on the Notch pathway in neural development // Curr. Opin. Neurobiol.- 2002.- Vol. 12.- N1.- P. 64−70.
  107. Kampinga J., Groen H., Klattcr F.A., Pater J.M., van Petersen A.S., Roser В., Nieuwenhuis P., Aspinall R. Post-thymic T-cell development in the rat //Thymus.- 1997.- Vol.24.- N3.- P. 173−200.
  108. Kaneko Т., Okiji Т., Zhao L., Esgeurra R., Suda H. Heterogeneity of dendritic cells in rat apical periodontitis // Cell Tissue Res.- 2006
  109. Kapasi Z.F., Burton G.F., Sliultz L.D., Tew J.G., Szakal A.K. Induction of functional follicular dendritic cell development in severe combined immunodeficiency mice. Influence of В and T cells // J. Immunol.- 1993.- Vol. 150.- N7.- P.2648−2658.
  110. Kapasi Z.F., Qin D., Kerr W.G., Kosco-Vilbois M.H., Shultz L.D., Tew J.G., Szakal A.K. Follicular dendritic cell (FDC) precursors in primary lymphoid tissues // J. Immunol.- 1998.- Vol. 160.- N3.- P. 1078−1084.
  111. Kapsenberg M.L. Dendritic-cell control of pathogen-driven T-cell polarization // Nat. Rev. Immunol.-2003.- Vol.3.- N12.- P. 984−993.
  112. Karlsson M.C., Guinamard R., Holland S., Sankala M., Steinman R.M., Ravetch J.V. Macrophages control the retention and trafficking of В lymphocytes in the splenic marginal zone // J. Exp. Med.- 2003.- Vol. 198.-N2.- P.333−340.
  113. Karsunky H., Merad M., Mcnde I., Manz M.G., Engleman E.G., Weissman I.L.Developmental origin of interferon-alpha-producing dendritic cells from hematopoietic precursors// Exp. Hematol.- 2005.- Vol.33.- N2.-P.173−181.
  114. Kelly K. A., ScoIIay R. Seeding of neonatal lymph nodes by T cells and identification of a novel population of CD3"CD4+ cells // Eur. J. Immunol.-1992.- Vol. 22.- N2.- P.329−334.
  115. Kelley L.C., Mahaffey E.A., Bounous D.I., Antczak D.F., Brooks R.L. Jr. Detection of equine and bovine T- and B-lymphocytes in formalin-fixed paraffin-embedded tissues // Vet. Immunol. Immunopathol.- 1997.- Vol.57.-N3−4.- P. 187−200.
  116. Kelsoe G. The germinal center reaction // Immunol. Today.- 1995.- Vol. 16.-N7.- P.324−326.
  117. Kitamura H., Konno A., Moriniatsu M., Jung B.D., Kiniura K., Saito M.1.mobilization stress increases hepatic IL-6 expression in mice // Biochem. Biophys. Res. Commun.- 1997.- Vol.238.- N3.- P.707−711.
  118. Koh K.B., Choe E., Song J.E., Lee E.H. Effect of coping on endocrinoimmune functions in different stress situations // Psychiatry Res.-2006.- Vol.143.- N2−3.- P.223−234.
  119. Kosco M. H., Pflugfelder Е., Gray В. Follicular dendritic cell-dependent adhesion and proliferation of В cells in vitro // J. Immunol.- 1992.- Vol.148.-P.2331.
  120. Kraal G., Mebius R. New insights into the cell biology of the marginal zone of the spleen // Int. Rev. Cytol.- 2006.- Vol.250.- P. 175−215.
  121. Kraal G., Schornagel K., Strcctcr P.R., Holzniann В., Butcher E.C. Expression of the mucosal vascular addressin, MAdCAM-1, on sinus-lining cells in the spleen//Am. J. Pathol.- 1995.- Vol.147.- P.763−771.
  122. Kronin V., Winkel K., Suss G., Kelso A., Heath W., Kirberg J, von Boehmer H., Shortnian K. A subclass of dendritic cells regulates the response of naive CD8 T cells by limiting their IL-2 production // J. Immunol.- 1996.-Vol.157.- N9.- P.3819−3827.
  123. Krummen M.B., Varga G., Stcincrt M., Stuctz A., Lugcr T.A., Grabbe S. Effect of pimecrolimus vs. corticosteroids on murine bone marrow-derived dendritic cell differentiation, maturation and function // Exp. Dermatol.- 2006.-Vol.15.-Nl.- P.43−50.
  124. Li L., Choi Y.S. Follicular dendritic cell-signaling molecules required for proliferation and differentiation of GC-B cells // Semin. Immunol.- 2002.-Vol.14.-N4.- P.259−266.
  125. Li L., Zhang X., Kovacic S., Long A.J., Bourque K., Wood C.R., Choi Y.S. Identification of a human follicular dendritic cell molecule that stimulates germinal center В cell growth // J. Exp. Med.- 2000, — Vol.191.- N6.- P. 10 771 084.
  126. Liu Y.-J., Arpin C., de Boutcillcr O., Gurct C., Banchcrcau J., Martinez-Valdez H Lebecque S. Sequential triggering of apoptosis, somatic mutation and isotype switch during germinal ccntcr development // Semin. Immunol.1996.-Vol.8.- P.169.
  127. Luettig В., Sponholz A., Hccrwagcn C., Bode U., Wcstermann J. Recent thymic emigrants (CD4+) continuously migrate through lymphoid organs: within the tissue they alter surface molecule expression // Scand. J. Immunol.2001.- Vol.53.- N6.- P.563−571.
  128. Mackay F., Majeau G.R., Lawton P., Ilochinan P. S., Browning J.L. Lymphotoxin but not tumor necrosis factor functions to maintain splenic architecture and humoral responsiveness in adult mice // Eur. J. Immunol.1997.- Vol.27.- P.2033−2042.
  129. MacLennan I. C. Germinal centers // Annu. Rev. Immunol.- 1994.- Vol. 12.- P. l 17−139.
  130. MacLennan I.C., Toellner K.M., Cunningham A.F., Serre K., Sze D.M., Zuniga E., Cook M.C., et al. Extrafollicular antibody responses // Immunol. Rev.- Vol.2003.- Vol.194.- P.8−18.
  131. Maillard I., Adler S.H., Pear W.S. Notch and the immune system // Immunity.- 2003.- Vol.19.- N6.- P.781−791.
  132. Martin F., Kearney J.F. Marginal-zone В cells // Nature Rev. Immunol.2002.- Vol.2.- N5.- P.323−335.
  133. Makarcnkova V.P., Bansal V., Matta B.M., Perez L.A., Ochoa J.B.
  134. CDllb+/Gr-l+ myeloid suppressor cells cause T cell dysfunction after traumatic stress //J. Immunol.- 2006.- Vol.176.- N4.- P.2085−2094.
  135. Makinodan T. Studies on the influence of age on immune response to understand the biology of immunosenescence // Exp. Gerontol.- 1998.- Vol.33.-N1−2.- P.27−38.
  136. Martinez del Hoyo G., Martin P., Arias C.F., Marin A.R., Ardavin C.
  137. CD8alpha+ dendritic cells originate from the CD8alpha- dendritic cell subset by a maturation process involving CD8alpha, DEC-205, and CD24 up-regulation //Blood.- 2002.- Vol.99.- N3.- P.999−1004.
  138. Matasic R., Dietz A.B., Vuk-Pavlovic S. Dexamethasone inhibits dendritic cell maturation by redirecting differentiation of a subset of cells // J. Leukoc. Biol.- 1999.- Vol.66.- N6.- P.909−914.
  139. Mazur A., Booth A. Testosterone and dominance in men // Behav. Brain Sci.- 1998.- Vol.21.- N3.- P.355−397.
  140. McEwen B.S. The neurobiology of stress: from serendipity to clinical relevance // Brain Res.- 2000.- Vol.886.- N1−2.- P. 172−189.
  141. McFarland R.D., Douck D.C., Koup R.A., Picker L.J. Identification of a human recent thymic emigrant phenotype // P.N.A.S.- 2000.- Vol.97.- N8.-P.4215−4220.
  142. McLellan A.D., Kampgcn E. Functions of myeloid and lymphoid dendritic cells // Immunol. Lett. 2000.- Vol.72.- N2.- P.101−105.
  143. McNagny K.M., Bucy R.P., Cooper M.D. Reticular cells in peripheral lymphoid tissues express the phosphatidylinositol-linked BP-3 antigen // Eur. J. Immunol.- 1991.- Vol.21.- P.509−515.
  144. Mebius R.E. Organogenesis of lymphoid tissues // Nature Rev. Immunol.-2003.-Vol.4.- P.292−303.
  145. Mebius R.E., Nolte M.A., Kraal G. Development and function of the splenic marginal zone // Crit. Rev. Immunol.- 2004, — Vol.24.- N6.-449−464.
  146. Morishima N., Ovvaki Т., Asakawa M., Kamiya S., Mizuguchi J., Yoshinioto T. Augmentation of effector CD8+ T cell generation with enhanced granzyme В expression by IL-27 // J. Immunol.- 2005.- Vol.175.- N3.- P. 16 861 693.
  147. Moser M., Murphy K.M. Dendritic cell regulation of TH1-TH2 development//Nat. Immunol.- 2000.- Vol.1.- N3.- P.199−205.
  148. Muraille E., Giannino R., Guirnalda P., Lcincr I., Jung S., Panier E.G., Lauvau G. Distinct in vivo dendritic cell activation by live versus killed Listeria monocytogenes // Eur.J.Immunol.- 2005, — Vol.35.- N5.- P.1463−1471.
  149. Murctto P. Immunohistochemical study of tonsils from newborn infants with emphasis on follicular dendritic reticulum cells // Eur. J. Histochem.-1998.-Vol.42.- N3.- P. l 89−195.
  150. Murphy K.M. T lymphocyte differentiation in the periphery // Curr. Opin. Immunol.- 1998.- Vol. 10.- N2.- P. 226−232.
  151. Murphy K.M., Reiner, S.L. The lineage decisions of helper T cells // Nat. Rev. Immunol.- 2002.- Vol.2.- N12.- P. 933−944.
  152. Naik S.H., Metcalf D., van Nicmvcnhuijzc A., Wicks I., Wu L., O’KeefTe M., Shortman K. Intrasplenic steady-state dcndritic cell precursors that are distinct from monocytes//Nat Immunol.- 2006.- Vol.7.- N6.- P.663−671.
  153. D., Vuknianovic S. 1998. MI 1С class I is required for peripheral accumulation of CD8+ thymic emigrants // J. Immunol.- 1998.- Vol.160.- N8.-P.3705−3712.
  154. Nolte M.A., Arens R., Kraus M., van Ocrs M.H., Kraal G., van Lier R.A., Mebius R.E. В cells are crucial for both development and maintenance of the splenic marginal zone // J. Immunol.- 2004.- Vol.172.- N6.- P.3620−3627.
  155. Nolte M.A., Hoen E.N., van Stijn A., Kraal G., Mebius R.E. Isolation of the intact white pulp. Quantitative and qualitative analysis of the cellular composition of the splenic compartments // Eur. J. Immunol.- 2000.- Vol.30.-N2.- P.626−634.
  156. Nunez M.J., Balboa J., Rodrigo E., Brenlla J., Gonzalez-Peteiro M., Freirc-Garabal M. Effects of fluoxetine on cellular immune response in stressed mice //Neurosci. Lett.- 2006.- Vol.396.- N3.- P.247−251.
  157. Oarada M., Gonoi Т., Tsuzuki Т., Iguraslu M., Hirasaka K., Nikawa Т., Onishi Y., et al. Effect of dietary oils on lymphocyte immunological activity in psychologically stressed mice // Biosci. Biotechnol. Biochem. -2007.- Vol.71,-N1.- P. 174−182.
  158. Obminska-Mrukowicz В., Szczypka M. Influences of DTC and zinc supplementation on the cellular response restoration in restrained mice // J. Vet. Sci.- 2005.- Vol.6.- N1.- P.25−32.
  159. Okazaki S.I., Yaniakawa M., Maeda K., Ohta N., Aoyagi M. Expression of glucocorticoid receptors in non-neoplastic lymphoid follicles and В cell type malignant lymphomas // J. Clin. Pathol.- 2006.- Vol.59.- N4.- P.410−416.
  160. Old J.M., Deane E.M. The detection of mature T- and B-cells during development of the lymphoid tissues of the tammar wallaby (Macropus eugenii) //J. Anat.- 2003.- Vol.203.- N1.- P. l 23−131.
  161. Ortega E., Garcia J.J., Saez M.C., De la Fuentc M. Changes with aging in the modulation of macrophages by norepinephrine // Mech. Ageing Dev.-2000.- Vol. 118.- N3.- P. 103−114.
  162. Palermo-Neto J., de Oliveira Mnssoco C., Robespierre de Souza W. Effects of physical and psychological stressors on behavior, macrophage activity, and Ehrlich tumor growth // Brain Behav. Immun.- 2003.- Vol. 17.-N1.- P.43−54.
  163. Pijlman F.T., van Ree J.M. Physical but not emotional stress induces a delay in behavioural coping responses in rats // Behav. Brain Res.- 2002,-Vol.136.- N2.- P.365−373
  164. Pijlman F.T., Wolterink G., van Ree J.M. Cueing unavoidable physical but not emotional stress increases long-term behavioural effects in rats // Behav. Brain Res.- 2002.- Vol.134.- N1−2.- P.393−401.
  165. Polak J.M. Introduction to immunohistochemistry. 3rd edition. London, Bios Scientific Publishers, 2003.
  166. Poulin J.F., Viswanathan M.N., Harris J.M. Konianduri K.V., Wieder E., Ringuette N., Jenkins M., McCune J.M., Sckaly R.P. Direct Evidence for Thymic Function in Adult Humans // J. Exp. Med.- 1999.- Vol.190.- N4.-P.479−486.
  167. Prelog M. Aging of the immune system: a risk factor for autoimmunity? // Autoimmun. Rev.- 2006.- Vol.5.- N2.- P. 136−139.
  168. Quadrilatero J., Boudrcau J., Hoffman-Goetz L. Lymphocyte distribution in mouse submandibular lymph nodes in response to acute treadmill exercise // Can. J. Physiol. Pharmacol.- 2003.- Vol.81.- N10.- P.972−978.
  169. Radahmadi M., Shadan F., Karimian S.M., Sadr S.S., Nasimi A. Effects of stress on exacerbation of diabetes mellitus, serum glucose and Cortisol levels and body weight in rats // Pathophysiology.- 2006 Vol.13.- N1.- P.51−55.
  170. Radulovic M., Wcbcr C., Spiess J. The effect of acute immobilization stress on the abundance of corticotropin-releasing factor receptor in lymphoid organs // J. Neuroimmunol.- 2000.- Vol.103.- N2.- P.153−164.
  171. Robinson S.P., Patterson S., English N., Davics D., Knight S.C., Reid
  172. C.D. Human peripheral blood contains two distinct lineages of dendritic cells // Eur. J Immunol.- 1999.- Vol.29.- P.2769−2778.
  173. Rowden G., Boudrcau S., Higlcy II. Langerhans cells and extra-epidermal dendritic cells. An investigation in laboratory animals and man with immunomorphological methods // Scand. J. Immunol.- 1985.- Vol.21.- N5.-P.471−478.
  174. Rozkova D., Horvath R., Bartunkova J., Spisck R. Glucocorticoids and their effect on dendritic cell function // Cas. Lek. Cesk.- 2005.- Vol.144.- N12.-P.825−831.
  175. Rozkova D., Horvath R., Bartunkova J., Spisck R. Glucocorticoids severely impair differentiation and antigen presenting function of dendritic cellsdespite upregulation of Toll-like receptors // Clin. Immunol.- 2006.-Vol.120.-N3.- P.260−271.
  176. Ruedl C., Koebcl P., Bachninnii M., IIcss M., Karjalainen K. Anatomical origin of dendritic cells determines their life span in peripheral lymph nodes // J. Immunol.- 2000.- Vol.165.- N9.- P.4910−4916.
  177. Sacedon R., Vicente A., Varas A., Jimenez E., Zapata A.G. Early differentiation of thymic dendritic cells in the absence of glucocorticoids // J. Neuroimmunol.- 1999.- Vol.94.- N1−2.- P.103−108.
  178. Salomon В., Cohen J.L., Masurier C., Klatzmann D. Three populations of mouse lymph node dendritic cells with different origins and dynamics // J. Immunol.- 1998.- Vol.160.-N2.- P.708−717.
  179. Satoh E., Edamatsu IL, Omata Y. Acute restraint stress enhances calcium mobilization and proliferative response in splenic lymphocytes from mice // Stress.- 2006.- Vol.9.- N4.- P.223−230.
  180. Satoh Т., Takeda R., Oikawa H., Satodate R. Immunohistochemical and structural characteristics of the reticular framework of the white pulp and marginal zone in the human spleen // Anat. Rec.- 1997.- Vol.249.- N4.- P.486−494.
  181. Selye H. Forty years of stress research: principal remaining problems and misconceptions// Can. Med. Assoc. J.- 1976.-Vol.115.-N1.-P.53−56.
  182. Sheridan J.F., Dobbs C., Jung J., Cliu X., Konstantinos A., Padgett D., Glaser R. Stress-induced neuroendocrine modulation of viral pathogenesis and immunity//Ann. N. Y. Acad. Sci.- 1998.- Vol. 840.- P.803−808.
  183. Shiniizu Т., Kawamura Т., Miyaji С., Oya II., Bannai M., Yamamoto S., Weerasinghe A., Haider R.C., Watanabe II., Hatakcyama, K., Abo T.
  184. Resistance of extrathymic T cells to stress and the role of endogenous glucocorticoids in stress associated immunosuppression // Scand. J. Immunol.-2000.- Vol.51.- N3.- P.285−292.
  185. Sim B.C., Aftalii N., Rcilly C., Bogen В., Schwartz R.H., Gascoigne N.R., Lo D. Thymic skewing of the CD4/CD8 ratio maps with the T-cell receptor alpha-chain locus // Curr. Biol.- 1998.- Vol.8.- N12.- P.701−704
  186. Sims G.P., Ettingcr R. f Sliirota Y., Yarboro С. 11., Illci G.G., Lipsky P.E. Identification and characterization of circulating human transitional В cells // Blood.- 2005.- Vol.105.- N11.- P.4390−4398.
  187. Skibinski G., Skibinska A., Stewart G.D., James K. Enhancement of terminal В lymphocyte differentiation in vitro by fibroblast-like stromal cells from human spleen // Eur. J. Immunol.- 1998.- Vol.28.- P.3940−3948.
  188. Stanislawska J., Intercwicz В., Maksymowicz M., Moscicka M., Olszewski W.L. The response of spleen dendritic cell-enriched population to bacterial and allogeneic antigens // Ann. Transplant.- 2005.- Vol.10.- W.P.I 7−23.
  189. Steiniger В., Bartli P., Hcllinger A. The perifollicular and marginal zones of the human splenic white pulp: do fibroblasts guide lymphocyte immigration? //Am. J. Pathol.- 2001.-Vol.159.-P.501−512.
  190. Stefanski V. Social stress in laboratory rats: hormonal responses and immune cell distribution .// Psychoneuroendocrinology.- 2000.- Vol.25.- N4.-P.389−406
  191. Stefanski V., Pescltcl A., Rcbcr S. Social stress affects migration of blood T cells into lymphoid organs //J. Neuroimmunol.- 2003.- Vol.138.- N1−2.- P.17
  192. Sternberg S.S. Histology for Pathologists. Raven Press: N.Y., 1997.- 2nd Edition.- 726 P.
  193. Sugimura M., Ishimaru II., et al. S-100 protein alpha subunit immunoreactivity of follicular dendritic cells in germinal centers of canine and caprine lymph nodes // Nippon Juigaku Zasshi.- 1987.- Vol.49.- N6.- P. 11 831 185.
  194. Sun Y., Blink S.E., Chen J. I I., Fu Y.X. Regulation of follicular dendritic cell networks by activated T cells: the role of CD137 signaling // J. Immunol.-2005.-Vol.175.- N2.- P.884−890.
  195. Svcnsson M., Maroof A., Ato M., Kayc P.M. Stromal cells direct local differentiation of regulatory dendritic cells // Immunity.- 2004.- Vol.21.- N6.-P.805−816.
  196. Takai K., Takahara S., Isoyania N., Tsuchida M., Matsumura M., Kishi Y., Uchiyama K., Naito K. Effects of FTY720 on rat lymphoid organs // Transplant. Proc.- 2004.- Vol.36.- N8.- P.2453−2456.
  197. Takcda S., Rodcwald II.-R., Arakawa II., Blucthmann H., Shimizu T.
  198. MHC class II molecules are not required for survival of newly generated CD4+ T cells, but affect their long-term life span // Immunity.- 1996.- Vol.5.- N3.- P. 217−228.
  199. Takcuchi H., Suzuki N., Tada M., He P. Accelerative effect of olive oil on liver glycogen synthesis in rats subjected to water-immersion restraint stress // Biosci. Biotechnol. Biochem.- 2001.- Vol.65.- N7.- P. 1489−1494.
  200. Tew J.G., Wu J., Qin D., Helm S., Burton G. F., Szakal A. K. Follicular dendritic cells and presentation of antigen and costimulatory signals to В cells // Immunol. Rev.- 1997.- Vol. 156.- P. 39−52.
  201. Thoman M.L. The pattern of T lymphocyte differentiation is altered during thymic involution//Mech. Ageing Dev.- 1995.- Vol.82.-N2−3.- P. 155−170.
  202. Tinsley K.W., Grayson M.II., Swanson P.E., Drcwry A.M., Chang K.C., Karl I.E., Hotchkiss R.S. Sepsis induces apoptosis and profound depletion of splenic interdigitating and follicular dendritic cells // J. Immunol.- 2003.-Vol.171.- N2.- P.909−914.
  203. Trubiani O., Di Giulio C., Tripodi D., Bianchi G., Paganelli R., Di Primio R. Thymic sensitivity to hypoxic condition in young and old rats. Age-dependent expression of NF-kappaB // Exp. Gerontol.- 2002.- Vol.37.- N8−9.-P.1077−1088.
  204. Tumanov A.V., Grivcnnikov S.I., Shakhov A.N., Rybtsov S.A., Koroleva E.P., Takeda J., Nedospasov S.A. et al. Dissecting the role of lymphotoxin in lymphoid organs by conditional targeting // Immunol. Rev.- 2003. Vol. 195.-P.106−116.
  205. Vandenabeele S., Hochrein II., Mavaddat N., Winkel K., Shortman K.
  206. Human thymus contains 2 distinct dendritic cell populations // Blood.- 2001.-Vol.97.-N6.- P. l 733−1741.
  207. Van den Berg C.L., Lamberts R.R., Wolterink G., Wiegant V.M., Van Ree J.M. Emotional and footshock stimuli induce differential long-lasting behavioural effects in rats- involvement of opioids // Brain Res.- 1998.-Vol.799.-Nl.- P.6−15.
  208. Van Meervvijk J.P.M., Binnchi Т., Marguerat S., MacDonald H.R. Thymic lineage commitment rather than selection causes genetic variations in size of CD4 and CD8 compartments // J.Immunol.-1998.-Vol.l60.-N8.-P.3649−3654.
  209. Van Vliet E., Melis M., Foidart J.M., Van Ewijk W. Reticular fibroblasts in peripheral lymphoid organs identified by a monoclonal antibody // J. Histochem. Cytochem.- 1986.- Vol. 34.- P.883−890.
  210. Veenema A.H., Meijer O.C., de Kloct E.R., Koolhaas J.M. Genetic selection for coping style predicts stressor susceptibility //J. Neuroendocrinol.-2003.-Vol.15.-N3.-P.256−267.
  211. Vremec D., Pooley J., Ilochrcin H., Wu L., Shortman K. CD4 and CD8 expression by dendritic cell subtypes in mouse thymus and spleen.// J. Immunol.- 2000.- Vol.164.- N6.- P.2978−2986.
  212. Wang Y., Wang J., Sun Y., Wu Q., Fu Y.X. Complementary effects of TNF and lymphotoxin on the formation of germinal center and follicular dendritic cells//J. Immunol.- 2001.- Vol.166.- P.330−337.
  213. Wood G.S., Turner R.R., ct al. Human dendritic cells and macrophages. In situ immunophenotypic definition of subsets that exhibit specific morphologic and microenvironmental characteristics // Am. J. Pathol.- 1985.- Vol.119.- N1.-P.73−82.
  214. Xia X., Pan Y., Zhang W.Y., Cheng G., Kong L.D. Ethanolic extracts from Curcuma longa attenuates behavioral, immune, and neuroendocrine alterations in a rat chronic mild stress model // Biol. Pharm. Bull.- 2006.-Vol.29.- N5, — P.938−944.
  215. Yamamotova A., Starcc M., Holecek V., Racck J., Trefil L., Raskova H., Rokyta R. Anticipation of acute stress in isoprenaline-sensitive and resistant rats: strain and gender differences // Pharmacol. Toxicol.- 2000.- Vol.87.- N4.-P.161−168.
  216. Yang C.P., Bell E.B. Functional maturation of recent thymic emigrants in the periphery: development of alloreactivity correlates with the cyclic expression of CD45RC isoforms // Eur. J. Immunol.- 1992.- Vol.22.- N9.-P.2261−2269.
  217. Yin D., Tuthill D., Mufson R.A., Shi Y. Chronic restraint stress promotes lymphocyte apoptosis by modulating CD95 expression // J. Exp. Med.- 2000.-Vol.191.-N8.- P.1423−1428.
  218. Yin D., Zhang Y., Stuart C., Miao J., Zhang Y., Li C., Zeng X., Hanley G., Moorman J., Yao Z., Woodruff M. Chronic restraint stress modulates expression of genes in murine spleen. // J. Neuroimmunol.- 2006.- Vol. 177.-N1−2.- P. l 1−17.
  219. Yoshida K., Kaji M., Takahashi Т., van den Berg Т.К., Dijkstra C.D.
  220. Host origin of follicular dendritic cells induced in the spleen of SCID mice after transfer of allogeneic lymphocytes // Immunology.- 1995.- Vol.84.- N1.-P.l 17−126.
  221. Yoshida K., Tamahashi N., Matsuura N., Takahashi Т., Tacliibana T. Antigenic heterogeneity of the reticular meshwork in the white pulp of mouse spleen // Cell Tissue Res.- 1991.- Vol.266.- P.223−229.
  222. Zhang X., Okutsu M., Kancmi O., Gametchu В., Nagatomi R. Repeated stress suppresses interferon-gamma production by murine intestinal intraepithelial lymphocytes // Tohoku J. Exp. Med.- 2005.- Vol.206.- N3.-P.203−212.
  223. Zheng K.C., Ariizumi M. Modulations of immune functions and oxidative status induced by noise stress // J.Occup.Health.- 2007.- Vol.49.- N1.- P.32−38.
  224. Zhou H.J., Qu J.M., Qiu S.J., Ye S.L., He L.X. Anti-aspergillus Th immunity induced by dendritic cells and the effect of hydrocortisone on it // Zhonghua Jie He He Hu Xi Za Zhi.- 2004.- Vol.27.- N7.- P.449−454.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!