Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Молекулярные механизмы влияния этанола и его метаболитов на клеточные мембраны in vitro и in vivo

Диссертация: Молекулярные механизмы влияния этанола и его метаболитов на клеточные мембраны in vitro и in vivo
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Результаты работы были представлены на Межреспубликанской научно-практической конференции «Синтез, фармакология и клинические аспекты новых психотропных и сердечно-сосудистых веществ» (Волгоград, 1989), на Международной конференции «Регуляция свободнорадикальных реакций (биомедицинские аспекты)» (Варна, 1989), на Всесоюзной конференции «Медико-биологические аспекты охраны психического здоровья… Читать ещё >

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ РАЗДЕЛ I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Метаболизм этанола
    • 1. 2. Метаболизм ацетальдегида
    • 1. 3. Влияние этанола и его метаболитов на биологические мембраны
      • 1. 3. 1. Влияние этанола и его метаболитов на липидный матрикс при остром и хроническом действии
      • 1. 3. 2. Влияние эfaнoлa и его метаболитов на структуру и функции мембранных белков и ионный гомеостаз
    • 1. 4. Нарушение окислительно-восстановительных реакций и окислительный стресс при алкоголизме
    • 1. 5. Влияние этанола и его метаболитов на эритроциты
    • 1. 6. Фармакологические средства для лечения алкоголизма
      • 1. 6. 1. Препараты, применяемые в терапии алкоголизма
      • 1. 6. 2. Мембраностабилизаторы в терапии алкоголизма
      • 1. 6. 3. Карнозин и его аналоги — мембраностабилизаторы и антиоксиданты
  • РАЗДЕЛ II. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
    • 11. 1. Объекты исследования
    • 11. 2. Взятие крови и получение эритроцитов, теней эритроцитов, экстракция спекгрина и актина
    • 11. 3. Исследование гемолитической устойчивости эритроцитов
    • 11. 4. Определение активности каталазы в эритроцитах
    • 11. 5. Исследование влияния альдегидов на состояние белков эритроцитов in vitro
    • 11. 6. Микроскопические методы исследования (световая и электронная микроскопия)
    • 11. 7. Определение микровязкости мембран эритроцитов 82 щ II.8. Определение содержания этиловых эфиров жирных кислот в мембранах эритроцитов
    • II. 9. Оценка распределения фосфатидилсерина в мембранах эритроцитов
  • П.Ю.Определение активности 1Ма, К-АТФазы в эритроцитах
    • 11. 11. Оценка проводимости Са2±активируемых lC-каналов эритроцитов
    • 11. 12. Изменение объема эритроцитов и термоденатурация белков мембранного каркаса
    • 11. 13. Определение карбонилов белков
    • 11. 14. Определение уровня перекисного окисления липидов в сыворотке крови
    • 11. 15. Иммунологические методы
    • 11. 16. Использованные реактивы
    • 11. 17. Статистические методы 89 РАЗДЕЛ III. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ И ИХ
  • ОБСУЖДЕНИЕ НИ. Молекулярные механизмы влияния этанола и его метаболитов на эритроциты in vitro
    • 111. 1. 1. Влияние этанола и ацетальдегида на устойчивость эритроцитов к кислотному и окислительному гемолизу
    • 111. 1. 2. Влияние этанола и ацетальдегида на белки эритроцитов
    • 111. 1. 3. Влияние этанола и ацетальдегида на Са2+
  • активируемые lC-каналы эритроцитов
    • III. 1.4. Влияние этанола и ацетальдегида на микровязкость мембран эритроцитов
    • III. 1.5. Роль этиловых эфиров жирных кислот в повреждении мембран эритроцитов
    • III. 2. Динамика структурно-функциональных параметров эритроцитов у больных алкоголизмом в процессе традиционной дезинтоксикационной терапии
      • 111. 2. 1. Морфология эритроцитов больных алкоголизмом на разных стадиях лечения
      • 111. 2. 2. Гемолитическая устойчивость эритроцитов больных алкоголизмом на разных стадиях лечения
      • 111. 2. 3. Белковый состав мембран эритроцитов больных алкоголизмом
      • 111. 2. 4. Микровязкость мембран эритроцитов больных алкоголизмом на разных стадиях лечения
      • 111. 2. 5. Na/K-АТФаза эритроцитов больных алкоголизмом на разных стадиях лечения. Изменение чувствительности к ионам магния
  • Ш. З. Са2±активируемые К*-каналы мембран эритроцитов больных алкоголизмом
    • 111. 3. 1. К+(Са2+)-каналы эритроцитов больных алкоголизмом в состоянии абстиненции
      • 111. 3. 2. Роль мембранного каркаса эритроцитов в регуляции К+(Са2+)-каналов
      • III. 4. Окислительная модификация белков и липидов сыворотки крови, фагоцитарная и дыхательная активности нейтрофилов больных алкоголизмом
      • 111. 4. 1. Содержание продуктов ПОЛ и карбонилов белков в сыворотке крови больных алкоголизмом на разных стадиях лечения
      • 111. 4. 2. Фагоцитарная активность и продукция активных форм кислорода нейтрофилами больных алкоголизмом в динамике лечения
      • III. 5. Коррекция повреждений клеток крови больных алкоголизмом карнозином
      • 111. 5. 1. Влияние карнозина на гемолитическую устойчивость эритроцитов больных алкоголизмом
      • 111. 5. 2. Влияние карнозина на морфологию эритроцитов больных алкоголизмом
      • 111. 5. 3. Влияние карнозина на Са2±активируемые К*-каналы эритроцитов больных алкоголизмом
      • 111. 5. 4. Влияние карнозина на фагоцитарную активность и продукцию активных форм кислорода нейтрофилами больных алкоголизмом

Молекулярные механизмы влияния этанола и его метаболитов на клеточные мембраны in vitro и in vivo (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность проблемы.

Биологические мембраны являются неотъемлемой частью любой живой клетки. Помимо таких функций биологических мембран как отграничение клетки от окружающей среды, разделение внутреннего объема клетки на отдельные компартменты, обеспечение специфики межклеточных контактов и контроль за проникновением в клетку и выход из нее разнообразных соединений, биологические мембраны способны воспринимать, усиливать и передавать внутрь клетки сигналы из внешней среды, создавать специальные условия для протекания ферментативных реакций, осуществляемых гидрофобными * мембранными белками, обеспечивать превращение биологической энергии, осуществлять контроль за взаимодействием между отдельными мембранными структурами и т. д.

Эффективное выполнение биологическими мембранами разнообразных функций возможно благодаря их уникальной структуре. В настоящее время имеется большое количество научных обзоров, монографий и учебных пособий, посвященных описанию принципов организации и функционирования биологических мембран (Крепе Е.М., 1981; Ивков В. Г., Берестовский Г. Н., 1982; Конев С. В., 1987; Твердислов В. А. и соавт., 1987; Скулачев В. П., 1989; Болдырев А. А. и соавт., 1990; Hausley M.D., Stanly К.К., 1984; Halliwell В., Gutteridge J.M.C., 1999). Их анализ позволяет заключить, что такие важные функции I.

I биомембран как способность воспринимать, классифицировать ц (усиливать или элиминировать) и передавать информацию, осуществлять транспорт ионов против их концентрационного градиента, преобразовывать энергию в форму, необходимую клетке, осуществляются благодаря структурным конформационным) перестройкам мембранных компонентов. Такая тесная структурно-функциональная связь в биомембранах обеспечивает как динамическое равновесие внутри клетки, так и ^ возможность взаимодействия клеток друг с другом.

Известно, что в основе многих патологий лежат изменения свойств клеточных мембран. Структурно-функциональные нарушения биомембран могут быть не только причиной, но и следствием развития патологических процессов. Как правило при патологиях происходит комплексная модификация функций мембран, которая непременно сопровождается структурными изменениями как мембранных липидов (изменением в соотношении липидного состава мембран, в соотношении насыщенных и ненасыщенных жирных кислот, входящих в состав липидов, развитием перекисного окисления липидов и др.), так и мембранных белков (гликирование, карбонилирование, кросс-линкинг) (Halliwell В., Gutteridge J.M.C., 1999).

Клеточные мембраны являются мишенью действия ядов, токсинов, радиоактивного и ультрафиолетового облучения. Кроме этого известно большое количество природных модификаторов мембран, способных в зависимости от условий и их концентрации оказывать различное (иногда противоположное) действие на клеточные мембраны. Такие соединения относят к классу мембранотропных веществ. Одним из них является этанол. Изучение молекулярных механизмов влияния этанола и его метаболитов на биомембраны in vivo и in vitro при остром или хроническом влиянии в свете новых знаний о структурно-функциональных взаимоотношениях в биологических мембранах позволяет лучше понять фундаментальные основы возникновения и развития одного из наиболее широко распространенных заболеваний в мире — алкоголизма.

В настоящее время исследования, посвященные различным аспектам алкоголизма, интенсивно проводятся в разных странах. Благодаря усилиям многих исследователей в последние годы получены новые данные о молекулярных механизмах формирования алкогольной зависимости и токсического действия этанола. Известно, что алкоголь индуцирует изменения в NMDA-рецепторных комплексах мозга и влияет на экспрессию гена нейрональной NO-синтазы (Putzke J. et al., 2001), приводит к нарушениям митохондриальных процессов окисления в печени (Videla L.A., 1984) и др. Хроническая алкоголизация вызывает мощный окислительный стресс, который приводит к структурным изменениям биологических мембран, нарушению функционирования мембранных каналов и ферментов во многих клетках и тканях (Bondy S.C., Guo S.X., 1994; Goldstein D., Chin J. 1981; Foley T.D., Rhoads D.E. 1994; Johnson J.H., Crider B.P., 1989).

He ясными, однако, остаются многие вопросы, касающиеся молекулярных механизмов повреждающего действия хронической алкоголизации. До сих пор неизвестно, в какой мере эти повреждения связаны с прямым влиянием неметаболизированного этанола на клетки, а в какой — с влиянием его метаболитов. Основным путем метаболизма этанола в организме является его окисление до ацетальдегида алкогольдегидрогеназой, этанол-индуцируемым цитохромом Р450 (CYP2E1) и каталазой (Lieber S.C., 1994; Chen L.H. et al., 1995, Kishimoto R. et al., 1995; French S.W., 1996). Ацетальдегид обладает высокой реакционной способностью. Он может взаимодействовать с NH2- SH-, СООН-группами, что может приводить к модификации белков, липидов, нуклеиновых кислот и других биомолекул (Hipkiss A.R. et al, 1998; Holownia A. et al, 1999). Кроме того, при хроническом поступлении в организм высоких доз этанола побочными продуктами его окислительного превращения могут быть гидроксиэтил-радикалы (Reinke L.A. et al., 1997). Показана возможность накопления в этих условиях супероксидных, гидроксильных, пероксильных и других радикалов, которые, являясь сильными окислителями, также могут приводить к повреждению биомембран и гибели клеток (Sato Y. et al, 1995; Pekiner В., Pennock J.F., 1994).

Другой путь метаболизма этанола в организме — его неокислительное превращение в этиловые эфиры жирных кислот (ЭЭЖК) под действием синтазы этиловых эфиров жирных кислот. Этот путь является преобладающим в нервных клетках и кардиомиоцитах (Gorski N.P. et al., 1999; Laposata M., 1997, 1999). ЭЭЖК, вмешиваясь в метаболические процессы клетки, могут приводить к перестройке клеточного метаболизма, нарушению многих функций, включая такую важную, как трансмембранный транспорт целого ряда метаболитов (Gubitosi-Klug R.A., Gross, R.W., 1996).

Для изучения тонких молекулярных механизмов повреждающего действия этанола и его метаболитов на клетки удобно в качестве модели использовать эритроциты периферической крови и их тени. Эритроциты являются высокочувствительной тест-системой внутренней среды организма. Помимо осуществления присущей им основной специфической газотранспортирующей функции эти клетки принимают участие в обеспечении стабильности и регуляции водно-солевого обмена, кислотно-основного равновесия, определяют реологические свойства крови, способны связывать и переносить вирусы, токсины, лекарственные вещества и т. д.

При алкоголизме обнаруживается структурно-функциональная дезорганизация эритроцитов, меняется их морфология, что сопровождается снижением гемолитической устойчивости и развитием анемии (Chi L.M., Wu W.G. 1991; Bizzaro N. et al., 1993). Такие изменения эритроцитов неизбежно усугубляют тканевую гипоксию, имеющую место при алкоголизме. Нарушается роль эритроцитов в процессах, связанных с поддержанием гомеостаза на уровне целого организма, что осложняет течение заболевания. В связи с этим актуальным является вопрос, каков молекулярный механизм происхождения аномальных клеток красной крови при данном заболевании и насколько обратимы эти патологические изменения эритроцитов.

Одним из важных факторов, контролирующих форму эритроцита, является работа мембранных ион-транспортирующих систем. Известно, например, что при серповидноклеточной анемии происходят существенные изменения в функционировании Са2±активируемых Ю-каналов эритроцитов (Canessa М., 1991; Romero J.R. et.al., 1997). Повышенная проводимость К*-каналов ведет к дегидратации клеток, снижению их деформируемости (Apovo М. et al., 1994; Brugnara С. et al., 1995) и повышенному гемолизу (Freedman J.C. et al., 1988). Изменения в функционировании Na/K-Hacoca и Na+, K2Crкотранспорта обнаружены при р-талассемии (Olivieri О. et. al., 1994). При алкоголизме показано нарушение функционирования и регуляции эритроцитарной Na/K-АТФэзы (Johnson J.H., Crider В.Р., 1989). Есть данные о действии алкоголя на трансмембранный транспорт лития (Ostrow D.G. et al., 1986), об изменении под действием этанола проницаемости биомембран для Са2+ (Kelly-Murphy S. et al., 1984) и о влиянии алкоголя на кальций-зависимый транспорт калия в эритроцитах человека (Harris R.A., Caldwell К.К., 1986). Однако сведений, касающихся функционирования и регуляции ион-транспортирующих систем в эритроцитах больных алкоголизмом, явно недостаточно.

При алкоголизме значительные изменения происходят не только в эритроцитах, но и в других клетках крови. Известно, что у больных алкоголизмом развивается ярко выраженная лимфопения (Назаров З.А., Щербакова А. А., 1987; Liu Y.R., 1980), происходит снижение фагоцитарной активности (Евсеев В.А., 1990; Гамалея Н. Б. и соавт., 2000). При данной патологии снижается количество Т-лимфоцитов, увеличивается уровень циркулирующих иммунных комплексов и др. (Кузнецова Н.И. и соавт., 1987; Черенько В. Б., 1991, 1994; Chelazzi G. et al., 1985). В то же время до сих пор нет данных о соотношении показателей маркеров окислительного стресса в организме с дыхательной активностью нейтрофилов при данной патологии. щ.

Таким образом, имеющихся в настоящее время экспериментальных данных явно недостаточно для понимания тонких молекулярных механизмов токсического действия этанола и его метаболитов на структурно-функциональные характеристики биологических мембран, отсутствует целостная картина, отражающая на молекулярном уровне причины структурно-функциональных изменений клеток крови при алкоголизме. Не исследованным также остается вопрос о том, насколько возможно восстановление патологически измененных параметров клеток красной и белой крови в процессе традиционной дезинтоксикационной терапии. Кроме того, актуальным является поиск новых способов коррекции клеточных повреждений при алкогольной интоксикации.

Цель и задачи исследования

.

Цель настоящей работы заключалась в исследовании молекулярных механизмов повреждающего действия этанола и продуктов его метаболизма — ацетальдегида и этиловых эфиров жирных кислот — на клетки крови in vitro и in vivo.

При выполнении работы были поставлены следующие задачи:

1. Выявить особенности влияния этанола и ацетальдегида на устойчивость эритроцитов к кислотному и окислительному гемолизу in vitro.

2. Оценить взаимосвязь изменения морфологии эритроцитов с изменением состояния эритроцитарных белков при действии этанола и ацетальдегида in vitro.

3. Установить закономерности влияния этанола и ацетальдегида на гидрофобную область липидного матрикса эритроцитов in vitro.

4. Изучить влияние этиловых эфиров линоленовой и пальмитиновой жирных кислот на структуру и стабильность эритроцитов in vitro.

5. Дать комплексную оценку структурно-функционального статуса эритроцитов больных алкоголизмом в динамике лечения.

6. Выявить особенности функционирования и регуляции мембранных ферментов (Na/K-АТФэзы) и ионных каналов (Са2±активируемых К±каналов) в эритроцитах больных алкоголизмом в динамике лечения.

7. Оценить уровень окислительной модификации белков и липидов сыворотки крови больных алкоголизмом в динамике лечения.

8. Исследовать фагоцитарную и дыхательную активности нейтрофилов у больных алкоголизмом в динамике лечения.

9. Оценить эффективность применения природного мембраностабилизатора и антиоксиданта карнозина in vitro в качестве протектора структурно-функциональных нарушений клеток крови больных алкоголизмом.

Положения, выносимые на защиту.

1. Молекулярные механизмы влияния этанола и ацетальдегида на эритроциты in vitro существенно различаются. Неметаболизированный этанол снижает устойчивость эритроцитов к кислотному гемолизу. В условиях окислительного гемолиза этанол не приводит к дестабилизации эритроцитов, напротив, наблюдается тенденция к повышению стабильности клеток. ^ Этанол приводит к снижению микровязкости гидрофобной области липидного бислоя без изменения белкового спектра и окислительного статуса белков мембран эритроцитов. Ацетальдегид не изменяет устойчивость эритроцитов к гемолизирующему действию кислоты, но снижает устойчивость к действию гипохлорита натрия. При этом происходит снижение микровязкости липидного бислоя мембран и изменяется состояние эритроцитарных белков — наблюдается их окислительная модификация, затрудняется экстракция спектрина и актина. Как * этанол, так и ацетальдегид in vitro не нарушают морфологию эритроцитов.

2. Этиловые эфиры жирных кислот встраиваются в мембраны эритроцитов при инкубации in vitro. При этом снижается стабильность эритроцитов, нарушается асимметрия распределения фосфатидилсерина между внутренним и наружным монослоями мембраны, но нарушения морфологии клеток не происходит. У больных алкоголизмом ЭЭЖК в эритроцитах не обнаруживаются. ^ 3. Структурно-функциональные изменения эритроцитов при действии этанола и его метаболитов in vitro отличаются от структурно-функциональных нарушений эритроцитов больных алкоголизмом. У больных нарушение морфологии эритроцитов сочетается со снижением гемолитической устойчивости клеток, кросс-линкингом эритроцитарных белков, снижением гидрофобного объема мембран, повышением упорядоченности их структуры, 4 уменьшением чувствительности мембран к хаотропному действию этанола и ацетальдегида, повышением активности Ыа/К-АТФазы и проводимости К+(Са2+)-каналов. В процессе дезинтоксикационной терапии наблюдается положительная динамика перечисленных параметров: увеличивается количество морфологически нормальных эритроцитов, восстанавливается их гемолитическая устойчивость, нормализуются гидрофобный объем мембран, активность Na/K-АТФэзы и проводимость К^Са^-каналов, а также чувствительность липидного матрикса к хаотропному действию этанола, однако чувствительность мембран к хаотропному действию ацетальдегида не восстанавливается.

4. Хроническое поступление высоких доз этанола в организм приводит к увеличению окислительной модификации белков и липидов сыворотки крови и к повышению дыхательной активности нейтрофилов. После лечения содержание продуктов ПОЛ в сыворотке крови и дыхательная активность нейтрофилов нормализуются, уровень карбонилирования сывороточных белков снижается, однако остается выше нормы.

5. Природный дипептид карнозин повышает устойчивость эритроцитов больных алкоголизмом к кислотному гемолизу и предохраняет клетки от структурных повреждений in vitro. Аналогичными свойствами обладает ацетилированное производное карнозина — N-ацетил-карнозин. Карнозин обладает иммуномодулирующим действием, которое выражается в регулировании фагоцитоза и продукции активных форм кислорода нейтрофилами. Эффект карнозина зависит от его концентрации и функционального состояния клеток.

Новизна исследования и наиболее существенные научные результаты .

В данном исследовании выявлены неизвестные ранее механизмы повреждающего действия этанола и его метаболитов на клеточные мембраны. Впервые проведено сравнение действия этанола и ацетальдегида in vitro на устойчивость эритроцитов к кислотному и окислительному гемолизу. Показано, что дестабилизирующий эффект неметаболизированного этанола на эритроциты проявляется в условиях кислотного, но не окислительного гемолиза. Ацетальдегид проявляет свое действие в условиях окислительного, но не кислотного гемолиза.

Молекулярные механизмы действия этанола и ацетальдегида на мембраны эритроцитов существенно различаются. Этанол не приводит к модификации белков мембран эритроцитов. В результате влияния ацетальдегида увеличивается уровень карбонилирования белков эритроцитов, затрудняется экстракция спектрина и актина из теней эритроцитов, при этом продукты кросс-линкинга белков не обнаруживаются. Модификация белков эритроцитов под действием ацетальдегида без кросс-линкинга не приводит к морфологическим нарушениям клеток, в то время как модификация белков под действием глутаральдегида, приводящая к кросс-линкингу белков, сопровождается нарушением формы эритроцитов.

Впервые установлено, что этиловые эфиры жирных кислот, встраиваясь в мембрану эритроцита in vitro, приводят к перераспределению фосфатидилсерина с внутренней поверхности эритроцитарной мембраны на внешнюю, при этом наблюдается значительное снижение стабильности эритроцитов без нарушения морфологии. В эритроцитах больных алкоголизмом этиловые эфиры жирных кислот не обнаружены.

Впервые дана комплексная структурно-функциональная характеристика эритроцитов больных алкоголизмом в динамике лечения. У больных в состоянии абстиненции выявлены нарушение морфологии эритроцитов, в мембранах обнаружены продукты кросс-линкинга белков, установлено возрастание микровязкости гидрофобной области эритроцитарных мембран. Обнаружена различная чувствительность мембран эритроцитов больных алкоголизмом и здоровых лиц к воздействию этанола и ацетальдегида: этанол, как и ацетальдегид, приводит к увеличению гидрофобного объема мембран здоровых доноров, в то время как у больных в состоянии абстиненции мембраны эритроцитов оказываются не чувствительными к этанолу и ацетальдегиду. После лечения увеличивается количество морфологически полноценных клеток, наблюдается снижение микровязкости эритроцитарных мембран, восстанавливается чувствительность гидрофобной области мембран к хаотропному действию этанола, но не ацетальдегида.

Впервые исследованы особенности функционирования и регуляции мембранных ион-транспортирующих ферментов и каналов в патологически измененных эритроцитах больных алкоголизмом. Установлено, что у больных в период абстиненции активность Na/K-АТФазы, как и Са2±зависимая калиевая проницаемость мембран эритроцитов, повышены. При алкоголизме в условиях Мд^-дефицита изменяется характер зависимости активности Na/K-АТФэзы от магния. Показана важная роль белков мембранного каркаса в регуляции К*(Са2+)-каналов эритроцитов. Обнаружена различная чувствительность К^Са^у-каналов к изменению объема клеток при изменении осмолярности среды инкубации у здоровых доноров и больных алкоголизмом, что свидетельствует об изменении свойств мембранного каркаса эритроцитов при алкоголизме. После лечения активность Na/K-АТФэзы и Са2±зависимая 1С-проводимость эритроцитов пациентов нормализуются. В период ремиссии зависимость активности Na/K-АТФэзы от магния не отличается от нормы.

Обнаружено увеличение содержания продуктов перекисного окисления липидов и повышение уровня карбонилирования белков в сыворотке крови больных алкоголизмом в период абстиненции. Показано снижение фагоцитарной активности нейтрофилов и повышение их дыхательной активности у пациентов. Эти результаты подтверждают данные литературы об активации окислительных процессов и состоянии окислительного стресса при алкоголизме.

После лечения содержание продуктов ПОЛ в сыворотке крови пациентов не отличается от нормы, количество карбонилированных белков снижается, однако остается повышенным по сравнению с нормой. Показатели дыхательной активности нейтрофилов больных алкоголизмом после лечения также приближаются к норме.

Впервые в опытах in vitro показано, что природный гидрофильный антиоксидант гистидин-содержащий дипептид карнозин и его ацетилированное производное Nацетил-карнозин повышают устойчивость эритроцитов больных алкоголизмом к кислотному гемолизу и увеличивают количество морфологически нормальных эритроцитов. Впервые установлено, что карнозин in vitro способен стимулировать фагоцитоз и дыхательную активность нейтрофилов у здоровых лиц и больных алкоголизмом. Эффекты карнозина зависят от его концентрации и функционального состояния клеток.

Теоретическое и практическое значение работы.

Полученные данные расширяют современные представления о механизмах повреждающего действия этанола и его метаболитов на биологические мембраны. Результаты работы фундаментального характера вносят вклад в развитие представлений о механизмах структурно-функциональных нарушений клеток крови при алкоголизме и могут быть использованы для разработки новой патогенетически обоснованной терапии больных алкоголизмом, служить основанием для оптимизации оценки эффективности проводимого лечения. Разработанный способ повышения устойчивости к гемолизу эритроцитов путем введения в кровь природного гидрофильного антиоксиданта карнозина или его N-ацетильного производного может использоваться при стабилизации донорской крови, защите эритроцитов в аппаратах искусственного кровообращения, а также при патологиях, сопровождающихся повреждением эритроцитов.

Апробация работы.

Результаты работы были представлены на Межреспубликанской научно-практической конференции «Синтез, фармакология и клинические аспекты новых психотропных и сердечно-сосудистых веществ» (Волгоград, 1989), на Международной конференции «Регуляция свободнорадикальных реакций (биомедицинские аспекты)» (Варна, 1989), на Всесоюзной конференции «Медико-биологические аспекты охраны психического здоровья» (Томск, 1990), на XII и XIII съездах психиатров России (Москва,, 1995; 2000), на Межрегиональной конференции «Медико-биологические аспекты нейрогуморальной регуляции» (Томск, 1997), на региональном научном симпозиуме «Молекулярные основы заболеваний XXI века» (Томск, 2000), на VII, VIII, IX и X научных отчетных сессиях НИИ психического здоровья Томского научного центра СО РАМН (Томск, 1995; 1997; 1999; 2001), на конференции «Психическое здоровье в XXI веке: оценка и прогноз» (Томск, 2001), на VII Всемирном конгрессе по биологической психиатрии (Берлин, 2001), XXVII Съезде Федерации Европейских биохимических обществ (Лиссабон, 2001), VIII конгрессе Европейского общества по исследованию биомедицинских аспектов алкоголизма (Париж, 2001), IV съезде физиологов Сибири (Новосибирск, 2002), на Всероссийской конференции «Современные проблемы биологической психиатрии и наркологии» (Томск, 2003).

Публикации.

Результаты работы представлены в 41 публикации, из них 1 патент на изобретение, 5 статей в зарубежной печати, 14 статей в центральных рецензируемых журналах.

ВЫВОДЫ.

1. Механизмы повреждающего действия этанола и ацетальдегида на эритроциты in vitro существенно различаются. Дестабилизирующий эффект неметаболизированного этанола на эритроциты проявляется в условиях кислотного, но не окислительного гемолиза. Ацетальдегид дестабилизирует эритроциты в условиях окислительного, но не кислотного гемолиза. Этанол не влияет на состояние эритроцитарных белков. Ацетальдегид приводит к окислительной модификации белков, снижению экстракции спектрина и актина из мембран эритроцитов.

2. Модификация белков эритроцитов под действием ацетальдегида, осуществляющаяся без кросс-линкинга, не приводит к нарушению формы клеток. Модификация белков под действием глутаральдегида, приводящая к кросс-линкину, сопровождается нарушением морфологии эритроцитов.

3. Этиловые эфиры линоленовой и пальмитиновой жирных кислот встраиваются в мембрану эритроцитов in vitro. При этом происходит перераспределение фосфатидилсерина с внутренней поверхности липидного бислоя на наружную и дестабилизация клеток без нарушения морфологии. В мембранах эритроцитов больных алкоголизмом этиловые эфиры жирных кислот не выявлены.

4. Состояние абстиненции при алкоголизме часто сопровождается увеличением дегенеративных форм эритроцитов со сниженной устойчивостью к гемолизирующему действию кислоты. Морфологические нарушения эритроцитов сочетаются с кросс-линкингом и карбонилированием белков. На стадии формирования ремиссии у больных алкоголизмом наблюдается повышение количества эритроцитов, имеющих нормальную морфологию, увеличивается гемолитическая устойчивость клеток. В эритроцитах больных алкоголизмом с нормальной морфологией кросс-линкинг белков не выявлен.

5. Этанол и ацетальдегид повышают гидрофобный объем мембран эритроцитов здоровых лиц. Алкоголизм сопровождается модификацией физического состояния гидрофобной области липидного матрикса мембран эритроцитов: мембраны теряют чувствительность к хаотропному действию этанола и ацетальдегида. В процессе лечения больного его мембраны вновь приобретают способность реагировать на добавленный этанол, однако чувствительность к ацетальдегиду не восстанавливается.

6. При алкоголизме в период абстиненции активность Na, K-АТФазы эритроцитов повышается, меняется характер зависимости активности фермента от концентрации Мд2+ в инкубационной среде. В период ремиссии эти параметры нормализуются. Магний увеличивает эффективный гидрофобный объем липидного бислоя эритроцитов больных алкоголизмом.

7. Абстиненция при алкоголизме сопровождается увеличением Са2±зависимой калиевой проницаемости эритроцитов. Белки мембранного каркаса эритроцитов контролируют работу К*(Са2+)-ка налов. При алкоголизме способность мембранного каркаса эритроцитов реагировать на изменение осмолярности среды модифицируется.

8. У больных алкоголизмом в период абстиненции происходит окислительная модификация сывороточных белков и липидов, увеличивается продукция активных форм кислорода нейтрофилами. После лечения содержание продуктов ПОЛ и образование активных форм кислорода лейкоцитами нормализуются, однако уровень окисленных белков остается повышенным.

9. Карнозин in vitro повышает устойчивость эритроцитов больных алкоголизмом к кислотному гемолизу и предохраняет клетки от структурных повреждений. Карнозин обладает существенным иммуномодулирующим действием, которое выражается в регуляции фагоцитоза и продукции активных форм кислорода нейтрофилами. Эффекты карнозина зависят от его концентрации и функционального состояния клеток.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

В настоящей работе установлено, что этанол и его метаболиты — ацетальдегид и этиловые эфиры жирных кислот — в модельных экспериментах in vitro способны индуцировать изменения биологических мембран и структурно-функциональных характеристик эритроцитов. Молекулярные механизмы действия этанола и ацетальдегида на эритроциты in vitro существенно различаются.

Инкубация эритроцитов in vitro с этанолом в диапазоне концентраций 0,1−0,5% приводит к снижению стабильности клеток, определяемой по выходу гемоглобина в среду инкубации в результате спонтанного гемолиза эритроцитов, а также к снижению гемолитической устойчивости клеток в условиях кислотного (под действием соляной кислоты) и окислительного (под действием гипохлорита натрия) гемолизов. Инкубация эритроцитов с ацетальдегидом в концентрации 0,25% не оказывает влияния как на скорость спонтанного выхода гемоглобина, так и на устойчивость эритроцитов к кислотному гемолизу, но снижает устойчивость клеток к окислительному гемолизу.

Согласно данным литературы скорость протекания кислотного гемолиза лимитируется скоростью проникновения протонов в цитозоль клеток, которая в свою очередь определяется ионной проницаемостью мембраны и усиливается при ее окислительном повреждении (Ivanov I.T., 1999). Дестабилизирующий эффект этанола в условиях кислотного гемолиза отражает, по-видимому, его действие на проницаемость мембраны для ионов, которая определяется микровязкостью мембраны и ее целостностью (Chi L.M., Wu W.G., 1991). При окислительном гемолизе в наших условиях преобладающим механизмом повреждения эритроцитарных мембран, согласно данным литературы, является процесс индукции перекисного окисления липидов под действием гипохлорита натрия (Панасенко О.М. и соавт., 1998; Черный В. В. и соавт., 1992).

Можно предположить, что этанол снижает микровязкость липидного бислоя, вследствие чего увеличивается как доступность фосфолипидов к действию окислителя, так и проницаемость мембраны для ионов. Поскольку гемолиз эритроцитов значительно усиливается после преинкубации клеток в присутствии этанола, можно предполагать, что этанол метаболизирует в клетках, и продукты его метаболизма вносят дополнительный вклад в модификацию бислоя. Одним из таких продуктов может быть ацетальдегид, который, согласно нашим данным, усиливает дестабилизацию клеток в условиях окислительного гемолиза. В условиях, когда каталаза (единственный фермент в эритроцитах, способный окислять этанол до ацетальдегида) ингибирована 3-амнотриазолом, этанол оказывает дестабилизирующий эффект на эритроциты только в условиях кислотного, но не окислительного гемолиза.

Таким образом, можно заключить, что неметаболизированный этанол способен оказывать повреждающее действие на мембраны эритроцитов. Это заключение подкрепляется недавно опубликованными данными о том, что неметаболизированный этанол может проникать через клеточные, в том числе и эритроцитарные, мембраны и взаимодействовать с мембранными компонентами, модифицируя структуру и функции мембран (Trandum С. et al., 1999; Wirkner К. et al., 1999).

В то же время имеются данные о том, что повреждающие эффекты этанола на структуру и функции мембран реализуются главным образом вследствие влияния его метаболитов (Holownia A. et al., 1999; Brahm J., 1983; Laposata M., 1999). Полученные нами данные показывают, что дестабилизирующий эффект этанола в случае окислительного гемолиза не может быть объяснен только действием образовавшегося ацетальдегида, так как преинкубация эритроцитов с этанолом оказывает более выраженный повреждающий эффект на эритроциты, чем преинкубация с ацетальдегидом в сопоставимых концентрациях (см. рис. 2Б и рис. 3). Можно предположить, что в данном случае имеет место комбинация эффектов неметаболизированного этанола и образовавшегося в результате действия эритроцитарной каталазы ацетальдегида.

Это подтверждают эксперименты, где исследовался эффект этанола на окислительный гемолиз в клетках с ингибированной каталазой: время достижения максимальной скорости гемолиза (Ттах) для таких клеток было повышено, а количество клеток, подвергающихся гемолизу с максимальной скоростью (%тах) достоверно снижено по сравнению с этими величинами в контрольных клетках (таблица 1, рис. 5Б). Эти данные свидетельствуют также о том, что ингибирование продукции ацетальдегида из этанола эритроцитами путем ингибирования каталазы снижает чувствительность эритроцитов к гемолизирующему действию гипохлорита натрия, то есть этанол оказывает в данных условиях стабилизирующее действие.

Полученные нами данные о влиянии этанола на гемолитическую устойчивость эритроцитов к кислоте доказывают, что АцА не вовлекается в дестабилизирующий эффект в данных условиях, так как мы не обнаружили разницы в параметрах кислотного гемолиза для контрольных клеток и клеток с инактивированной каталазой (таблица 1, рис. 4 А, Б). В то же время в условиях окислительного гемолиза, которые в большей степени, чем при кислотном гемолизе, приближены к условиям окислительного стресса in vivo, продукция АцА каталазой вносит свой вклад в дестабилизацию эритроцитов. Об этом свидетельствуют сниженное Ттах и повышенный %тах в эритроцитах с активной каталазой по сравнению с клетками, в которых каталаза была неактивна. Нельзя исключить, что этот эффект может быть связан с образованием свободных радикалов в процессе окисления этанола, а также продуктов ПОЛ и окислительной модификации белков (Halliwell В., Gutteridge J.N.C., 1999; Reinke L.A. et al., 1997), однако в данном случае АцА также должен вносить свой вклад в повреждающее действие этанола, так как в наших экспериментах было показано, что АцА сам способен дестабилизировать эритроциты в условиях окислительного гемолиза (рис. 3).

Мы провели более детальные исследования изменения белковой и липидной компонент мембран эритроцитов под действием этанола и АцА, чтобы лучше понять, чем обусловлены различия в повреждающем действии этих соединений на эритроциты.

Оказалось, что этанол снижает микровязкость гидрофобной области липидного бислоя эритроцитов, при этом модификации мембранных белков и белков цитоскелета не происходит, морфология эритроцитов не нарушается.

АцА также оказывает хаотропное действие на гидрофобную область липидного бислоя. Кроме того, инкубация клеток с ацетальдегидом приводит к окислительной модификации мембранных белков (увеличивается уровень их карбонилирования), затруднению экстракции спектрина и актина из мембран эритроцитов. Морфологически клетки, инкубированные с АцА, также остаются нормальными.

Таким образом, молекулярный механизм снижения гемолитической устойчивости эритроцитов под действием неметаболизированного этанола, вероятно, связан главным образом с изменением не белковой, а липидной компоненты эритроцитарных мембран, поскольку преинкубация клеток с этанолом не приводит к заметным изменениям в белковом спектре и окислительном статусе белков эритроцитов. Модификация мембран под действием АцА затрагивает белковую компоненту. На липидную компоненту АцА, вероятно, оказывает лишь часть тех эффектов, которые оказывает этанол. Такой вывод следует также из опытов по восстановлению чувствительности гидрофобной области мембран больных алкоголизмом после лечения к хаотропному эффекту этанола, но не ацетальдегида, и согласуется с данными литературы (Latge С. et al., 1987).

Сравнительное исследование влияния ацетальдегида, не вызывающег кросс-линкинга белков эритроцитов в наших экспериментах, и глутарового альдегида, приводящего к «сшивке» эритроцитарных белков, на морфологию эритроцитов показало, что глутаровый альдегид, «сшивая» белки, существенно нарушает морфологию клеток, при этом эритроциты становятся более устойчивыми к окислительному гемолизу. Модификация белков эритроцитов под действием АцА делает клетки менее устойчивыми к действию гипохлорита натрия и не нарушает морфологию клеток. Таким образом, в модельных (не физиологических) условиях мы показали, что различия в типах модификации мембранных белков и белков цитоскелета эритроцитов могут приводить к различным изменениям морфологии и стабильности этих клеток. В опытах с эритроцитами больных алкоголизмом было обнаружено, что нарушение морфологии эритроцитов in vivo часто сопровождается кросс-линкингом эритроцитарных белков.

Продукты неокислительного превращения этанола в организме — этиловые эфиры жирных кислот (линоленовой и пальмитиновой) — в экспериментах in vitro встраиваются в мембраны эритроцитов. При этом происходит снижение стабильности клеток, оцениваемой по спонтанному гемолизу эритроцитов. Модифицируется липидный бислой, в частности, происходит перераспределение фосфатидилсерина с внутренней (цитоплазматической) стороны мембраны на наружную. Известно, что такое перераспределение фосфатидилсерина в мембранах эритроцитов может быть причиной снижения стабильности клеток (Diaz С. et al., 1996). Как показали микроскопические исследования, встраивание ЭЭЖК в эритроциты не нарушает морфологию клеток.

Таким образом, и этанол, и ацетальдегид, и этиловые эфиры жирных кислот при добавлении к эритроцитам in vitro снижают стабильность клеток, не нарушая их морфологию. Можно заключить, что модификация липидного бислоя под действием этанола и его метаболитов, как и окислительная модификация белков эритроцитов под действием АцА, не являются достаточным условием нарушения морфологии эритроцитов. Кросс-линкинг белков эритроцитов (в нашем случае — в нефизиологических условиях, под действием глутарового альдегида) приводит к нарушению морфологии клеток.

В организме при хроническом поступлении высоких доз этанола, эффекты этанола и его метаболитов, вероятно, суммируются, что может приводить к дополнительным нарушениям клеток, не всегда выявляемым в модельных экспериментах. Кроме того, в организме под влиянием хронической алкоголизации нарушается функционирование многих органов и систем, что приводит к снижению антиоксидантного статуса, изменению кислотно-основного равновесия и реологических свойств крови и др., что также не может не отражаться на клетках крови in vivo.

Эксперименты, проведенные на клетках крови больных алкоголизмом, показали, что хроническая алкоголизация сопровождается выраженными структурно-функциональными нарушениями эритроцитов. У больных в состоянии тяжелой абстиненции часто встречаются клетки патологической формы: конические с округлой вершиной, с гребнем, клетки в виде «спущенного мяча», плоского диска, а также эритроциты куполообразной и сферической формы, акантоциты. Нарушение морфологии эритроцитов сочетается со снижением их гемолитической устойчивости. Обнаружено снижение гидрофобного объема мембран таких клеток, повышение упорядоченности их структуры, а также снижение чувствительности к хаотропному действию этанола и ацетальдегида по сравнению с мембранами эритроцитов здоровых доноров. Методом ЭФ в ПААГ показано изменение белкового спектра, появление высокомолекулярных белков в мембранах морфологически нарушенных эритроцитов больных алкоголизмом, что, очевидно, связано с кросс-линкингом белков, происходящим in vivo. Причины морфологических нарушений эритроцитов при алкоголизме до конца не ясны. Скорее всего при алкоголизме in vivo решающими факторами нарушения морфологии эритроцитов являются нарушения в эритропоэзе, существенные изменения состава и физических свойств циркулирующей крови, хотя вклад хронического (годами) повреждающего действия на мембраны высоких концентраций этанола и АцА также нельзя полностью исключить.

Гипотетически, одной из причин изменения микровязкости мембран эритроцитов больных алкоголизмом и снижения устойчивости клеток к действию гемолизирующих агентов могло бы быть накопление в мембранах продуктов неокислительного превращения этанола — этиловых эфиров жирных кислот. Однако наши исследования продемонстрировали отсутствие ЭЭЖК в мембранах эритроцитов больных алкоголизмом как в клетках с нормальной, так и с нарушенной морфологией.

Несмотря на более плотную упаковку жирнокислотных цепей липидов в мембранах эритроцитов больных алкоголизмом, нами выявлено существенное увеличение активности мембраносвязанного фермента Na/K-АТФэзы и достоверное повышение Са2±зависимой Ю-проницаемости, что косвенно свидетельствует об увеличении проницаемости мембраны эритроцитов для одновалентных катионов. Изменение проницаемости мембран для ионов неизбежно приводит к перераспределению ионных потоков через мембрану, изменению трансмембранного концентрационного градиента одновалентных катионов, изменению рН цитоплазмы и осмотического давления в эритроцитах. Это, в свою очередь, не может не отражаться на форме клеток и сродстве гемоглобина к кислороду, так как изменение рН и нарушение формы существенно влияет на процессы насыщения гемоглобина кислородом в легких и его высвобождения в тканях. Активация ион-транспортирующих систем мембран эритроцитов больных алкоголизмом может рассматриваться как один из механизмов развития анемии и тканевой гипоксии, имеющих место при данном заболевании (Иванец Н.Н., Валентик Ю. В., 1988).

В литературе есть косвенные данные о том, что К*(Са2+)-каналы эритроцитов регулируются белками цитоскелета (Орлов С.Н. и соавт., 1992). В наших экспериментах была обнаружена различная чувствительность каналов эритроцитов к изменению объема клеток у здоровых доноров и больных алкоголизмом, что позволяет сделать заключение об изменении свойств цитоскелета эритроцитов при алкоголизме. После тепловой денатурации основного белка мембранного каркаса эритроцитовспектрина — разница в чувствительности каналов к изменению осмолярности среды инкубации между клетками больных и здоровых доноров исчезала, что еще раз подтверждает важную роль белков мембранного каркаса в функционировании и регуляции К*(Са2+)-каналов.

Полученные нами данные позволяют также заключить, что наряду со значительными нарушениями структуры и функции клеток красной крови у больных алкоголизмом имеет место окислительная модификация сывороточных белков и липидов, а также изменение функциональной активности нейтрофилов: фагоцитарная активность несколько снижена, что согласуется с данными литературы (Черенько В.Б., Бохан Н. А., 1991; Liu Y.R., 1980), а спонтанная продукция активных форм кислорода лейкоцитами достоверно увеличена. Эти результаты находятся в соответствии с данными литературы о том, что хроническая алкоголизация приводит к состоянию окислительного стресса (Bondy S.C., Guo S.X., 1994; Reinke L.A. et al., 1997).

После проведенного традиционного лечения больных алкоголизмом (дезинтоксикационная терапия, ноотропы, витамины группы В и С) у пациентов на стадии формирования ремиссии структурно-функциональные параметры эритроцитов частично нормализуются. Наблюдается некоторое повышение количества морфологически нормальных клеток (дискоцитов): от.

66,8±7,6% (до лечения) до 74,8±5,1% (после лечения). Гемолитическая устойчивость эритроцитов больных на стадии формирования ремиссии не отличается от нормы. Обнаружена тенденция к повышению гидрофобного объема мембран эритроцитов, доступного для пирена. Мембраны эритроцитов больных после лечения вновь приобретают способность реагировать на добавленный этанол так, как мембраны клеток здоровых доноров, однако чувствительность к ацетальдегиду у этих мембран не восстанавливается. После проведенного традиционного лечения происходит нормализация активности Na/K-АТФэзы и проводимости К*(Са2+)-каналов эритроцитов. Эти данные свидетельствуют о частичной обратимости патологических процессов, приводящих к структурно-функциональным нарушениям биологических мембран при алкогольной интоксикации.

В процессе лечения больных алкоголизмом происходила также нормализация показэтелей окислительной модификации липидов сыворотки крови. Уровень карбонилирования сывороточных белков больных алкоголизмом после лечения снижался, но все еще оставался достоверно повышенным. Показатели спонтанных НСТ-теста и цитологического индекса, характеризующие продукцию АФК в процессе «дыхательного взрыва» лейкоцитов, в этот период достоверно не отличались от соответствующих показателей здоровых доноров.

Таким образом, традиционные методы лечения алкоголизмэ приводят к положительным сдвигам и в окислительном стэтусе больных. Однэко для повышения эффективности лечения и достижения более стэбильной и длительной ремиссии целесообрэзны, нэ наш взгляд, разрэботкэ и внедрение новых подходов к лечению данной патологии с учетом окислительного статусэ больных и применения препэрэтов, способствующих устранению состояния окислительного стресса в организме пациентов.

В этой связи необходимы поиск и разработка новых эффективных фармакологических средств профилактики и лечения этого заболевания, обладающих антиоксидантной и антирадикальной активностью. Поскольку мембранотропные эффекты этанола и его метаболитов весьма существенны, перспективными, на наш взгляд, могут быть препараты, стабилизирующие биологические мембраны, защищающие их от повреждений. Мембрана является динамичной системой, способной адаптироваться к изменению условий гомеостаза, вызванных влиянием внешних факторов, в частности, этанола и его метаболитов. Однако структурно-функциональные перестройки биологических мембран как адаптационный ответ на хроническое воздействие этанола, имеют ограниченный ресурс. Вероятно, их глубина и способность восстанавливаться после прекращения токсического воздействия этанола и его метаболитов, зависит от стадии алкоголизма. Препараты, улучшающие состояние биологических мембран, повышающие их резервы адаптации, безусловно, полезны в клинике алкоголизма.

Карнозин сочетает в себе свойства антиоксиданта, антирадикального агента и способность стабилизировать биологические мембраны, повышать их устойчивость к действию различных повреждающих факторов (Болдырев А.А., 1999). Наши исследования влияния карнозина на эритроциты больных алкоголизмом показали, что данный препарат способен повышать устойчивость эритроцитов к гемолизирующему действию кислоты, предохранять клетки от структурных повреждений.

Кроме того, нами обнаружено существенное иммуномодулирующее действие карнозина в концентрации 0,01 мМ, которое выражается в повышении функционального резерва клеток, сниженного при алкоголизме, регулировании фагоцитоза, повышении продукции активных форм кислорода нейтрофилами у больных алкоголизмом. Полученные данные позволяют предполагать, что карнозин может рассматриваться как перспективный препарат для включения его в арсенал фармакологических средств для лечения больных алкоголизмом.

Показать весь текст

Список литературы

  1. ., Брей Д., Льюис Дж., Рэфф М., Роберте К., Уотсон Дж. Молекулярная биология клетки. М.: Мир, 1994. — Т.2. — С. 289−290.
  2. Л.М., Барков Н. К. Роль возраста в процессе формирования экспериментального алкоголизма у крыс разного пола. // Фармакология и токсикология. 1980. — № 2. — С. 166−169.
  3. И.П. Нейробиологические аспекты алкоголизма. // Вестник академии мед. наук СССР. 1988. — № 3. — С. 21−28.
  4. И.П., Коган Б. М. Нарушения различных звеньев регуляции катехоламиновой нейромедиации при алкоголизме. // Вопр. наркологии. -1988. № 3. — С. 3−6.
  5. В.Д., Панченко Л. Ф. Роль перекисных процессов в патогенезе алкогольного поражения печени и сердца. // Матер. Всес. научн. конф. Медико-биологические проблемы алкоголизма. -Воронеж, 1987. С. 6−11.
  6. И.П. Пути пролонгации действия нейропептидов. // Вестник РАМН. 1992. — № 8. — С. 7−10.
  7. Г. И., Маркова М. П. Каган В.Г. Защита а-токоферолом эритроцитов от гемолиза, индуцированного термической травмой. И Бюлл. экспер. биол. мед. 1989. — Т. 107, № 4. — С. 413−415.
  8. В.В., Марьянчик Р. Я. Актуальные вопросы клинической и социальной реабилитации больных алкоголизмом. М. — 1979. — С. 43−45.
  9. Г. Х. Роль ацетальдегида в механизмах дествия этанола. // Успехи физиологических наук. 1990. -Т.21, № 3. — С. 98−116.
  10. Э. Нарушения метаболизма эритроцитов и гемолитическая анемия. Пер. с англ. Под ред. Ю.Н.Токарева- Пер. Ф. И. Атауллаханова, Н. В. Ермакова. — М.: Медицина, 1981. — 256 с.
  11. А.А. Введение в биохимию мембран. М.: Высшая школа, 1986.
  12. А.А. Карнозин и защита тканей от окислительного стресса. М.: Диалог-МГУ, 1999. — 362 с.
  13. А.А., Котелевцев С. В., Ланио М., Альварес К., Перес П. Введение в биомембранологию. Под ред. А. А. Болдырева. М.: МГУ, 1990. — 208 с.
  14. А.А., Курелла Е. Г., Рубцов A.M., Тюлина О. В., Шара М., Шентюрц М. Прямое измерение взаимодействия карнозина и его аналогов со свободными радикалами. // Биохимия. 1992. -Т. 57.-С. 1360−1365.
  15. А.А., Стволинский С. Л., Паскуаль К. Влияние карнозина и тролокса на клеточную хемилюминесценцию лейкоцитов. // Биохимия.- 1992. Т. 57. — С. 1337−1342.
  16. А.А., Твердислов В. А. Молекулярная организация и механизм функционирования Na-Hacoca. Итоги науки и техники. Серия Биофизика. М.: ВИНИТИ, 1978. Т. 10. — 148 с.
  17. С.А. Мембранные эффекты этанола. // Нейрохимия и фармакология алкоголизма. М.: Медицина, 1985.-С. 186−206.
  18. Н.М., Ротенберг Ю. С. Регуляция окислительного фосфорилирования в митохондриях печени малыми концентрациями этанола и ацетальдегида. // Тез.Всес.симп. Метабол. регуляция физиол.состояния. Пущино.: Изд-во АН СССР, 1984.-С. 42.
  19. Ю.В., Ведерникова Н. Н. Нейрохимия и фармакология алкоголизма. М.: Медицина, 1985. — 240 с.
  20. В.И. Состояние мозгового кровообращения у больных хроническим алкоголизмом. Автореф. дисс. канд.мед.наук. -М., 1979.-23 с.
  21. Ю.А., Арчаков А. И. Прекисное окисление липидов в биологических мембранах. М.: Наука, 1972. С. 241 243.
  22. B.C., Кочегуров В. Н. Показатели центральной гемодинамики и особенности артериальной гипертензии у больных алкоголизмом. // Кардиология. 1980. — Т.20, № 6. -С. 102−103.
  23. А.Н. Морфологические изменения ретикулярной формации продолговатого мозга при экспериментальном алкоголизме. Клиника, патогенез, лечение алкоголизма. -Кишинев, 1973. С. 130−133.
  24. П.В., Божко Г. Х. Алкоголь, цереброваскулярная и кардиальная патология // Ж. нвропатологии и психиатрии. -1989.- Вып. 9. С. 122−126.
  25. Н.Е. Декомпенсация пластических свойств поверхностной артериальной сети лобных долей головного мозга при хроническом алкоголизме. // В сб.: Пластичность нервной системы в норме и патологии. М., 1989. — С. 144−146.
  26. В.Е. Роль оксидоредуктаз и их множественных форм в метаболических процессах при алкоголизации. Дисс. д-ра мед. наук. Омск, 1992.
  27. Н.Б., Ульянова J1.И., Даренский И. Д. Нарушения в системе клеточного иммунитета у больных алкоголизмом и перспективы их коррекции с помощью иммуномодулятора Т-активина. // Вопросы наркологии. 2000. — № 4. — С. 54−60.
  28. И.И., Терсков И. А. Эритрограммы как метод клинического исследования крови. Новосибирск.: Изд-во СО АН СССР, 1959.
  29. B.C., Попова Н. Н., Коханов В. Н. О роли абстинентного синдрома в развитии алкогольной энцефалопатии. // Ж. невропатологии и психиатрии. -1983. Вып. 8. — С. 1227−1231.
  30. А.А., Никитина Л. И. Компьютерная томография мозга при хроническом алкоголизме. // В сб.: Новые методы диагностики и лечения психических заболеваний. Минск, 1989. — С. 52−59.
  31. О.З., Нутенко Э. А., Попович Н. М. Об одном клиническом варианте мозговых сосудистых расстройств у больных алкоголизмом. // Тез. докл. научно-практической конф. Неотложная наркология. Харьков, 1987. — С. 68−70.
  32. Е.Д. Справочник по гематологии. Томск.: изд-во ТГУ, 1989.- 372 с.
  33. В.Е., Дыгай А. М., Новицкий В. В. Рак легкого и система крови. Томск, 1992. — 236 с.
  34. Н.В. Супероксидперехватывающая активность карнозина в присутствии ионов меди и цинка. // Биохимия. -1987-Т. 52.-С. 1216−1220.
  35. Н.В., Обидин А. Б., Левшина И. П., Филоненко А. В., Дупин A.M., Болдырев А. А. Влияние карнозина на показатели свободнорадикального окисления липидов при остром стрессеу крыс. // Научн. докл. высш. школы: Биол. науки. 1989. — № 8 -С. 5−16.
  36. В.А. Иммунологические парадоксы алкоголизма -перспективы иммунотерапии. // Иммунология. 1990. — № 2. — С. 4−8.
  37. И.Б., Пилецкая Т. П., Степуро И. И. Влияние температуры на лизис эритроцитов человека пальмитиновой кислотой. // Биофизика. 1991. -Т.36, вып. 6. — С. 1056−1060.
  38. Н.Н., Валентик Ю. В. Алкоголизм. М.: Наука, 1988.
  39. В.Г., Берестовский Г. Н. Липидный бислой биологических мембран. Серия «Теоретическая и прикладная биофизика». -М.: Наука, 1982.
  40. A.M., Маслова М. Н., Шалабодов А. Д. Исследование активности Na.K-АТФазы в эритроцитах млекопитающих. // Биохимия. 1984. — Т. 49. — С. 1089 — 1095.
  41. В.Я. Электронная микроскопия. Киев: Вища школа, 1984.-208 с.
  42. .М., Алексеев В. Г., Тазлова Р. С. Биферментная система окисления этанола и ее роль в развитии алкоголизма. // Биохимия алкоголизма. Минск: Наука и техника, 1980. — 69 с.
  43. С.А., Калинина Н. М. Иммунология для врача. СПб, 1998.-155 с.
  44. В.В., Немцов А. В. Состояние и перспективы научных исследований в области алкоголизма. // Сов. мед. 1987. — № 4. -С. 3−11.
  45. А.З. Острые нарушения мозгового кровообращения при хронической алкогольной интоксикации. Автореф. дис.канд. мед. наук. Киев, 1981. -23 с.
  46. М.М., Лерхе Д., Маркин B.C., Майер В. Втягивание мембраны эритроцита в микропипетку: перераспределение мембранного скелета. // Биол. мембраны. 1989. — Т.6, № 7. — С. 754−764.
  47. Г. И., Симоварт Ю. А. Поверхностная архитектоника клеток периферической крови. Таллин: Валгус, 1985. — 250 с.
  48. Г. Ф., Григорьев Н. Р., Петрищев A.M. Изменения в аггрегационных свойствах эритроцитов при хроническом алкоголизме. // Ж. невропатологии и психиатрии им. С. С. Корсакова. 1986. — Т. 86, № 10. — С. 1569−1571.
  49. И.А., Магалиф А. Ю., Ротенберг Ю. С. О возникновении зависимости от этанола и ее возможных молекулярных механизмах. // Труды НИИ общей и суд. психиатрии им. Сербского. Клиника и патогенез алкогольных заболеваний. М., 1984. — С. 98−102.
  50. И.А., Ротенберг Ю. С., Гудкова Ю. В., Магалиф А. Ю. Молекулярные механизмы действия эндогенного и экзогенного этанола. // Известия АН СССР. 1983. — № 2. — С. 260−267.
  51. И.А., Ротенберг Ю. С., Мастеропуло А. П. Механизмы действия этанола и подходы к коррекции обменных нарушений при хронической алкоголизации. // Обзорная информация «Медицина и здравоохранение». М.: ВНИИМИ, 1986. — Вып. 6.-74 с.
  52. С.В. Структурная лабильность биологических мембран. -Минск, 1987.
  53. Д.П. Некоторые лекарственные свойства антиоксидантов. // Биоантиокислители в регуляции метаболизма в норме и патологии. М., 1982. — С. 213−222.
  54. Е.А., Аникин В. В., Каргаполова А. В. Особенности динамики быстрых изменений фосфатидилинозитов крови у больных хроническим алкоголизмом. // Вопр.мед.хим. 1992. -№ 3. — С. 25−27.
  55. В.Н., Федорович И. П., Климишин Н. И. Физико-химические и функциональные свойства гемоглобина мышей, инфицированных карциномой Эрлиха. // Бюлл.эксп.биол.мед. -1992. -Т.113, № 6. С. 640−642.
  56. А., Яначек К. Мембранный транспорт. Междисциплинарный подход. М.: Мир, 1980. — 342 с.
  57. В.Н. Гемодинамический механизм алкогольной артериальной гипертензии. // Тез. 3 Всероссийского съезда кардиологов. Свердловск, 1985. — С. 73−74.
  58. В.Н. Изменения упруговязких свойств артериальных сосудов у больных алкоголизмом. // Сб. Научных трудов «Алкоголизм». М., 1988. — С. 80−82.
  59. Е.М. Липиды клеточных мембран. Л., 1981.
  60. Н.И., Проскурякова Т. В., Гуртовенко В. М. Иммунологические сдвиги и активность ферментов метаболизма этанола при алкогольной интоксикации. // Материалы 1 Съезда психиатров соц. стран. М., 1987. — С. 460−463.
  61. В.Г., Курилович С. А., Волченко М. В. Удельная электропроводность «теней» эритроцитов и гемоглобина при алкоголизме. И Бюлл.эксп.биол.мед. 1993.- Т. 115, № 12. — С. 595−599.
  62. Г. Ф. Биометрия. М.: Высшая школа, 1990. 352 с.
  63. А.В. Влияние алкоголя на особенности клинических проявлений сосудистых заболеваний. // Тез. докл. Актуальные вопросы наркологии. Кишинев, 1986. — С. 98−99.
  64. Ла Селле Р. Мембраны и болезнь. Пер. с англ. М.: Медицина, 1980.-С. 17−34.
  65. Ли Хо Ик, Владимиров Ю. А., Деев А. И. Сравнительное изучение действия карнозина и других антиоксидантов на хемилюминесценцию суспензии монослойных липосом в присутствии ионов железа. // Биофизика. 1990. — Т. 35. — С. 8285.
  66. О.Д., Болдырев А. А. Влияние дипептидов анзерина и карнозина на аккумуляцию Са2+ фрагментами саркоплазматического ретикулума. //Доклады АН СССР. -1975 -Т. 220.-С. 1218−1221.
  67. Ю.М., Арчаков А. И., Владимиров Ю. А., Коган Э. М. Холестериноз. М., 1983.
  68. В.В., Котелевцев С. В., Скрябин Г. А. Влияние карнозина на Е-рецептор Т-лимфоцитов человека. // Тез. всес. конф. «Биохимия-медицине». Л., 1988. — С. 130.
  69. В.В., Сеславина Л. С., Матвеева Н. К. Действие осмотического шока на популяцию клеток крови. // Научн. Докл. Высш. Школы., Биол. Науки. -1990. № 6. — С. 148−153.
  70. В.П., Митрофанов B.C., Шевченко Н. В. Алкогольная интоксикация и зависимость: механизмы развития, диагностика, лечение. Минск, 1988. — С.79−115.
  71. Ю.А., Болотова З. Н., Бойко Т. П. Поражение некоторых структур мозга при алкоголизме. // Биологические основы алкоголизма. М., 1984. — С. 139 -142.
  72. А.Н., Галлиуллин А. Н. Реактивность нейтрофила. -Казань.: Изд-во Казанского ун-та, 1984.
  73. А.Н., Пикуза О. И. Клинические аспекты фагоцитоза.- Казань: Магариф, 1993.
  74. Международная классификация болезней (10-ый пересмотр). Классификация психических и поведенческих расстройств. Перевод под ред. Нуллера Ю. Л., Циркина С. Ю. ВОЗ. Россия. Сан1сг-Петербург: АДИС, 1994.
  75. Л.К. Вегетативно-сосудистые кризы при алкогольной интоксикации. // Сов. медицина. 1980. — № 6. -С. 106.
  76. В.В. Лабораторные методы исследования в клинике. М.: Медицина, 1987.
  77. Н.М., Казакова И. С., Каплан Е. Р. Морфологические изменения эритроцитов под влиянием некоторых физиологически активных веществ. // Хим. фарм. журнал. -1989. Т. 23, № 6. — С. 716−718.
  78. М.Ю., Бутусова Н. Н., Жукотский А. В., Коган Э. М. Морфологические изменения эритроцитов при алкоголизме и определяющие их факторы. // Вопросы наркологии. 1992. -№ 2. — С.72−75.
  79. Г. В. Состояние и перспективы научных исследований в области алкоголизма. // Материалы 4 Всес. нарколог, конф. Кривой Рог, 1982. — С. 3−5.
  80. Т.И., Болдырев А. А. Биологическая роль карнозина в клеточном гомеостазе. //Журн.эвол.биох.физиол. -1997. -Т.ЗЗ. С 688−698.
  81. З.А., Щербакова А. А. Некоторые гематологические показатели у больных алкоголизмом. // Здравоохр. Казахстана.- 1987. № 5. — С. 24−25.
  82. Т.И., Суслов Н. И. Психотропные эффекты тимогена. Н Бюл. экспер. биол. мед. 1995. — № 2. — С. 199−200.
  83. В .Я., Кирьяков В. А., Котов С. В. О влиянии алкоголя на мозговую гемодинамику. // Сов. медицина. 1987. — Вып.5. -С. 61−62.
  84. Ю.М. Метаболическая концепция генеза алкоголизма. // Этанол и обмен веществ. Минск: Наука и техника, 1982.
  85. Ю.М., Садовник М. Н. Пути метаболизма этанола и их роль в развитии алкоголизма. // Итоги науки и техники. Токсикология. М.: ВИНИТИ, 1984. — Т.13. — С. 93−150.
  86. Ю.М., Сатановская В. И., Садовник М. Н. Биологический компонент в генезисе алкоголизма. Минск: Наука и техника, 1986. — 95 с.
  87. Ю.М., Сатановская В. И., Островский С. Ю. Метаболические предпосылки и последствия потребления алкоголя. Минск: Наука и техника, 1988. — 263 с.
  88. В.Ю., Степуро И. И. Механизм связывания гексенала и виадрила сывороточным альбумином. // Биоорг. Химия.-1979.-Т.5, № 8. С. 1161−1170.
  89. О.М., Арнхольд Ю., Сергиенко В. И. Влияние рН на перекисное окисление фосфолипидных липосом, индуцированное гипохлоритом. // Биофизика. -1998. Т. 43. — С. 463−469.
  90. А.Ф., Антоненков В. Д., Яковченко В. А. Этанол и обмен веществ. Минск, 1982. — С. 143−160.
  91. Р.В., Хаитов Р. И., Пинегин Б. В. и др. Оценка иммунного статуса человека при массовых иммунологических обследованиях. // Методические рекомендации. Иммунология. -1992.-№ 6.-С.51−62.
  92. И.В. Функционирование и регуляция Са2±активируемых калиевых каналов эритроцитов. Автореферат дисс. д-ра биол. наук. Томск, 1999. — 34 с.
  93. Н.В., Симбирцев А. С., Колобов А. А., Калинина Н. М., Кауров О. А., Кетлинский С. А. Изучение иммуномодулирующей активности нового пептидного соединения бестима. // Иммунология. 2000. — № 1. — С. 33−35.
  94. Г. К., Горбачева И. В., Мухин В. А. Клиника и механизмы метаболических и структурных нарушений при алкоголизме.// Труды Омского мед. ин-та. Омск, 1986. — С. 7678.
  95. М.С., Ураков И. Г. Программа исследований по биологическим основам алкоголизма. // Биол. основы алкоголизма. М., 1984. — С. 15−18.
  96. Э.Н. О влиянии алкоголя на структуры мозга. // Ж. невропатологии и психиатрии. 1981. — Вып. 7. — С. 1084−1093.
  97. А.П., Разумовская-Молукало J1.П. Сосудистый компонент психических нарушений у больных с органическими поражениями головного мозга. // Ж. невропатологии и психиатрии. 1992. — Вып.1. — С. 41−46.
  98. ЮЗ.Ротенберг Ю. С. Проблема влияния промышленных токсичных веществ на биоэнергетические процессы организма. Дисс. д-ра.биол.наук. М., 1981. — 311 с.
  99. С. Устройство памяти. От молекул к сознанию.: Пер с англ. Ю. В. Морозова. М.: Мир, 1995. — 384 с.
  100. Ю5.Рубинчик М. М., Богданович Н. К. О морфологических особенностях гипоталямуса человека при длительном злоупотреблении алкоголем. // Судебно-мед. экспертиза. -1981. -Т.24, № 4.-С. 31−34.
  101. Юб.Руденская Г. Е., Смирнов В. Е., Энтин Г. М. Роль алкоголя в возникновении и течении кардио- и церебральных заболеваний. //Ж. невропатологии и психиатрии. 1982. — Вып. 2. — С. 267−277.
  102. А.Я. Особенности клинического течения и диагностики цереброваскулярной патологии при алкоголизме. // Тез. 2-ого Съезда невропатологов и психиатров Узбекистана. Ташкент, 1987.-С. 89−93.
  103. А.П., Тиунова J1.В., Остроумова Н. А. Метаболизм органических соединений жирного ряда. // Итоги науки и техники. Токсикология. М.: ВИНИТИ, 1981. -Т.12. — С. 65−116.
  104. Ю.М., Динерштейн Л. В. Сосудистые нарушения в головном мозге у больных алкоголизмом (Клинико-морфологические исследования) // Ж. невропатологии и психиатрии. 1981. — Вып. 2. — С. 74−78.
  105. ИО.Салаева З. М., Давыдова Л. А. Клинико-морфологическая характеристика цереброваскулярных нарушений при алкогольной интоксикации. // Вопросы психоневрологии. -Баку.: Изд-во Азерб. мед. ин-т., 1980. Вып.8. — С.25−29.
  106. А.Г., Сторожок С. А., Василевский В. В. О молекулярных дефектах белков мембраны эритроцита и их последствиях. File: ///А /О молекулярных дефектах белков мембраны.htm. -1999.
  107. С.Е., Юй-Шуюй. Влияние дипептидов анзерина и карнозина на окислительное фосфорилирование визолированных митохондриях грудной мышцы голубя. // Биохимия. 1958. — Т. 23. — С. 862−868.
  108. З.Семке В. Я., Галактионов O.K., Мандель А. И., Бохан Н. А., Мещеряков Л. В. Алкоголизм: региональный аспект. Томск.: Изд-во Том. Ун-та, 1992.
  109. .З., Кишенис А. А. Механизм действия сердечнососудистых препаратов антагонистов кальция (обзор). // Хим.-фарм. журн. — 1984. — № 2. — С. 134−147.
  110. Иб.Скулачев В. П. Энергетика биологических мембран. М., 1989.
  111. В.П. Карнозин и анзерин как специализированные рН-буферы переносчики ионов водорода. // Биохимия. — 1992. -Т. 57.-С. 1311−1316.
  112. С., Соуза Понтеш Э., Сергиенко В. Иммуномодулирующие эффекты карнозина в экспериментах in vivo и in vitro. // Биологические мембраны. 1996. — Т. 13. — С. 299−306.
  113. С.А. Содержание гидроперекисей в липидах, активность супероксиддисмутазы и глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы эритроцитов при алкогольной интоксикации. // Вопросы мед. хим. 1983. — Т.29, № 6. — С. 3135.
  114. С.А. О механизмах токсического воздействия этанола на систему красной крови. Автореф. дис.канд.мед.наук. Челябинск, 1984.
  115. С.А., Соловьев С. В. (1992) Структурные и11 функциональные особенности цитоскелета мембраныэритроцита. // Вопросы мед. химии. 1992. — Т. 38, № 2. — С.14−17.
  116. С.А., Панченко Л. Ф., Филиппович Ю. Д., Глушков B.C. Изменение физико-химических свойств биологических мембран при развитии толерантности к этанолу. // Вопросы мед. химии. 2001. -№ 2. — С. 1 -7.
  117. И.А. Биохимические основы действия этанола на центральную нервную систему. М.: Медицина, 1980. — 192 с.
  118. В.А. Морфологические особенности крови у больныхалкоголизмом и алкогольными психозами. Автореф. дисс.канд.биол.наук. М., 1975.
  119. В.А., Тихонов А. Н., Яковенко Л. В. Физические механизмы функционирования биологических мембран. М.: МГУ, 1987.
  120. Теоретические основы поиска средств для лечения алкоголизма // Итоги науки и техники. Серия Токсикология Сб. под ред. акад. АБ.Вальдмана. — М.: ВИНИТИ, 1984. — Т. 13. -182 с.
  121. И.А., Гительзон И. И. Эритрограммы как метод клинического исследования крови. // Биофизика. 1957. — Т.11. — С. 259−266.
  122. Л.А. (1981) Основные механизмы метаболизма ксенобиотиков в организме человека и животных. // Итоги науки и техники. Серия Токсикология. М.:ВИНИТИ, 1981. — Т. 12. -С.5−64.
  123. В.А. Введение в молекулярную эндокринологию. М.: Изд-воМГУ, 1983.-256 с.
  124. К.Р., Шаюсупова А. У., Аринов А. Н. // Тез. 8 Всес. Съезда невропатологов, психиатров и наркологов. М., 1988. -Т.1.-С. 444−445.
  125. О.В., Каган В. Е., Болдырев А. А. Модулирующий эффект карнозина и родственных соединений на дыхательный взрыв лейкоцитов, активированных сульфатом бария. // Бюлл.эксп.биол.мед. 1994. — Т. 118, № 11. — С.463−466.
  126. О.В., Стволинский С. Л., Каган В. Е., Болдырев А. А. Влияние карнозина и его природных производных на хемилюминесценцию лейкоцитов, активированных BaS04. // Нейрохимия. 1995. -Т.12, № 1. -С.46−51.
  127. Х.М. Автоматизированная морфометрия эритроцитов в норме и при холестеринозе. Дисс. канд. мед. наук, М., 1987.
  128. А.Е. Биологические маркеры употребления алкоголя. // Клиническая медицина. 1986. — Т. 64, № 6. — С. 128.
  129. А.Е. Токсикологическая характеристика этанола. // Итоги науки и техники. Серия Токсикология. ВИНИТИ. 1984. -Т.13.-С. 6−56.
  130. И.Г. Алкоголь: личность и здоровье. М.: Медицина, 1986.
  131. В.Ю. Статистический анализ в биологических и медицинских исследованиях. М.: Медицина, 1975. — 295 с.
  132. В.Е., Горшкова Т. Ю., Болдырев А. А., Сергиенко В. И. Характеристика хлораминовых комплексов карнозина с гипохлорит-анионом. // Биохимия. 1992. — Т. 57. — С. 13 241 329.
  133. В.Х., Малинин В. В. Механизмы геропротекторного действия пептидов. // Бюл. экспер. биол. мед. 2002. — Т. 133, № 1. — С. 4−10.
  134. В.Б. Состояние системы иммунитета у больных алкоголизмом с экзогенно-органическими поражениями головного мозга. Автореф. дисс.канд. мед. наук. Томск, 1994.-24 с.
  135. В.Б., Бохан Н. А. Некоторые показатели системы иммунитета у больных алкоголизмом. // Тез. регион, научно-практ. конф. Региональные аспекты психического здоровья. -Владивосток, 1991. С. 103−105
  136. Е.А., Воробей А. В. Структура и функция эритроцитарных мембран. Минск: Наука и техника, 1981. — 260 с.
  137. В.В., Донат Э., Мирский В. М., Пауличке М., Соколов
  138. B.C. Модификация свойств липидного бислоя, связанная с влиянием гипохлорита натрия. I. Действие на мембраны эритроцитов. // Биологические мембраны. 1992. — Т. 9. — С. 6065.
  139. А.Д. 1Ма, К-АТФаза эритроцитов человека и крысы в норме и при первичной артериальной гипертензии. Дисс.канд. биол. наук. Ленинград, 1985.
  140. А.Г., Формазюк В. Е., Сергиенко В. И. Тушение хемилюминесценции синглетного кислорода в присутствии карнозина. // Бюлл. эксп. биол. мед. 1990. — Т. 110, № 8. — С. 155−157.
  141. Р., Тевс Г. Физиология человека. // В четырех томах, Т. З. Кровь. Кровообращение. Дыхание. Пер. с англ. Под ред. Костюка П. Г. М.: Мир, 1986. — 288 с.
  142. В.А., Николаев А. Б. Козин А.Н. Материалы 3 республиканского съезда невропатологов, психиатров и наркологов Грузии. Тбилиси, 1987. — С.652−655.
  143. Abu-Murad С., Nordmann R. Effect of desferoxamine on ethanol in mice. // I Congress of the lnt.Soc.Biomed.Res.Alcoholism. -Munich, 1982.-P. 288.
  144. Aebi H. Catalase in vitro. // Methods in Enzymol. 1984. — V. 105. — P. 121−126.
  145. Ahrens M.L. Electrostatic control by lipids upon the membrane-bound Na+/K±ATPase. II The influence of surface potential upon the activating ion equilibria. // Biochem. Biophys. Acta. 1983. — V. 732, N1.-P. 1−10.
  146. Akkus I., Gultekin F., Akoz M. Effect of moderate alcohol intake on lipid peroxidation in plasma, erythrocyte and leukocyte and on some antioxidant enzymes. // Clin.Chim.Acta. 1997. — V. 266. — P. 141−147.
  147. Aloia R.C., Paxton J., Davaau J. Effect of chronic alcohol consumption on rat brain microsome lipid composition, membrane fluiditi and Na, K-ATPase activity. // Life Sci. 1985. — V.36. — P. 1003−1017.
  148. Altura B.M. Gebrewold A. Altura B.T. Gupta R.K. Role of brain Mg2+.j in alcohol-induced hemorrhagic strokein a rat model: a 31P-NMR in vivo study. //Alcohol.-1995- V.12, N2. P. 131 -136.
  149. Amit Z., Brown Z.W., Rockman G.E. Possible involvement ofacetaldehyde, norepinephrine and their tetrahydroisoquinoline derivates in the regulation of ethanol self-administration. // Drug.Alc.Depend. 1977. — V.2, N5−6. — P. 495−500.
  150. Asai H., Imaoka S., Kuroki Т., Monna Т., Funae Y. Microsomal ethanol oxidizing system activity by human hepatic cytochrome P* 450s. // J.Pharmacol.Exp.Ther. 1996. — V. 277. — P. 1004−1009.
  151. Babor T.F., Ritsen E.B., Hodgson R.J. Alcohol-related problems in the primary health care setting. A review of early intervention strategies. // Brit. J. Add. 1986. — V.61. — P.22−47.
  152. Badawy A., Williams D., Evans M. The role of tyrosine availability in the multiple effects of acute ethanol administration on rat brain catecholamine synthesis. // Pharmacol. Biochem. Behav. 1983. -V. 18, Suppl. 1.-P. 389−396.
  153. Bailey S.M., Patel V.B., Young T.A., Asayama K., Cunningham C.C. Chronic ethanol consumption alters the glutathione/glutathione peroxidase-1 system and protein oxidation status in rat liver. // Alcohol. Clin. Exp. Res. -2001. -V. 25. P. 726−733.
  154. Barry R.E., Megivan J.D. Acetaldehyde alone pay initiate hepatocellular damage in acute alcoholic liver disease. // Gut. -1985. V.26, N10. — P. 1065−1069.
  155. Bate-Smith E.C. The buffering of muscle in rigor- protein, phosphate and carnosine. // J. Physiol. -1938 V. 92. — P. 336−343.
  156. Baynes J.W., Monnier V.M. The Maillard reaction in aging, diabetes and nutrition. Ed. Alan R. — Liss. — New York, 1989.
  157. Beauge F., Fleuret-Balter C., Barin F., et al. Brain membrane disordering related to acute ethanol administration in native and short-term ethanol intoxicated rats. // Drug.Alcohol.Depend. 1982. -V.10, N2−3.-P. 143−151.
  158. Beauge F., Gallay J., Stibler H., Borg S. Alcohol abuse increases the lipid structural order in human erythrocyte membranes. A stedy-state and time-resolved anisotropy study. // Biochem. Pharmacol. -1988. V.37. — P. 3823−3828.
  159. Beauge F., Leguicher A., LeBourhis В., Aufrere G Membrane properties in behaviorally ethanol-dependent rats. // Ale. Ale. 1987. — V. 22, Suppl.1. — P. 669−673.
  160. Beauge F., Niel E., Hispard E., Perrotin R., Thepot V., Boynard M., Nalpas B. Red blood cell deformability and alcohol dependence in humans. //Ale. Ale. 1994. — V. 29. — P. 59−63.
  161. Beauge F., Stibler H., Borg S. Abnormal fluidity and surface carbohydrate content of the erythrocyte membrane in alcoholic patients.
  162. Alcoholism: Clinical and Experimental Research. 1985. — V.9. — P. 322 326.
  163. Beauge F., Stibler H., Borg S. Alterations of erythrocyte щ. membrane organization in alcoholics. // Ale. Ale. 1987. — V.1. — P.561.565.
  164. Beglund M., Risberg J. Regional cerebral blood flow during alcohol withdrawal. // Arch.Gen.Psychiatry. 1981. — V. 38. — P. 351−355.
  165. J., Meneses P., Basilio C. // Res. Comm. Chem. Pathol.
  166. Pharmacol. -1984. V.46, N1. — P.121−126.
  167. Berridge M.J. A novel cellular signal system based on the integration of phospholipid and calcium metabolism. // In: Calcium and cell function. 1982. — V. VIII. — P. 1−36.
  168. Beilin L.J., Puddey I.B. Alcohol and essential hypertension. // Ale. Ale. 1984. — V. 19, N3. — P. 191 -195.
  169. Bjorneboe A., Hagen B.F., Drevon C.A. Long-term administration of ethanol effects the knetics of tocopherol in rats. // Pharmacol.
  170. And Toxicol. 1987. -V. 61, N1. — P. 33.
  171. Bird D.A., Kabakibi A., Laposata M. The distribution of fatty acid ethyl esters among lipoproteins and albumin in human serum. // Alcoholism: Clinical and Experimental Research. 1997. — V.21. -P. 602−605.
  172. Bizzaro N., Piazza I., Baldo G., Baritussio A. Alcohol induced burrcell (echinocytic) haemolytic anaemia and haemochromatosis. // Clin. Lab. Haematol. 1993. -V. 15. — P. 93−102.
  173. Blum K. f Briggs A.H., DeLallo L. On the mechanism of the methadon-induced alcohol consumption in humans. // Subst. Alcohol Actions Misuse. 1982. — V. 3, N 1−2. — P. 1−4.
  174. Boldyrev A.A. Does carnosine possess direct antioxidant activity? // Int. J. Biochem. 1993. -V. 25. — P.1101−1107.
  175. Boldyrev A., Abe H., Stvolinsky S. Effects of carnosine and related compounds on generation of free oxygen species: A comparative study. // Сотр. Biochem. Physiol. 1995. — V. 112B. -P. 481−485.
  176. Boldyrev A.A., Dupin A.M., Bunin A.Ya., Babizhaev M.A., Severin S.E. The antioxydative properties of carnosine, a natural histidine-containing dipeptide. // Biochem. Intern. 1987. — V. 15. — P. 11 051 113.
  177. Boldyrev A.A., Dupin A.M., Pindel E.V., Severin S.E. Antioxidative properties of histidine-containing dipeptides from skeletal muscles of vertebrates. // Сотр. Biochem. Physiol. 1988. — V. 89B. — P. 245−250.
  178. Boldyrev A.A., Ruuge E., Smirnova I., Tabak M. Na. K-ATPase: the role of state of lipids and Mg ions in activity regulation. // FEBS Letters. 1977. — V.80. — P.303−307.
  179. Bondy S.C., Guo. Effect of ethanol treatment on indices of cumulative oxidative stress. // Eur. J. Pharm. 1994. — V.270, N4. -P. 349−355.
  180. Bora P. S., Farrar M.A., Miller D., Chaitman B.R., Guruge B.L. Myocardial cell damage by fatty acid ethyl esters. // J. Cardiovasc. Pharmacol. 1996. — V. 27. — P. 1−6.
  181. Bora P. S., Lange L.G. Molecular mechanism of ethanol metabolism by human brain to fatty acid ethyl esters. // Ale. Clin. Exper. Res. 1993. — V. 17. — P. 28−30.
  182. Boveris A., Llesuy S., Azzalis L.A. et al. In situ rat brain and liver spontaneous chemiluminescence after acute ethanol intake. // Toxicol.Lett. 1997. — V.93. — P. 23−28.
  183. Brahm J. Permeability of human red cells to a homologous series of aliphatic alcohols. Limitations of the continuous flow tube method. // J.Gen.Physiol. 1983. — V. 81. — P. 283−304.
  184. Brander C.J., Eklund H., Zeppezauer E. et al. Structure and mechanism of alcohol dehydrogenase. Protein: Struct., Funct. and Ind. Appl. // FEBS Fed.Eur.Biochem.Soc. 12th Meet. -Dresden, 1978. — Oxford, 1979. — P. 15−23.
  185. Brandts J.F., Erickson L., Lysko K., Schwartz E.T., Taverna R.D. Calorimetric studies of the structural transitions of the human erythrocyte membrane. The involvement of spectrin in the A transition. // Biochemistry. 1977. — V. 16. — P. 3450−3454.
  186. Brown C.E. Interactions among carnosine, anserine, ophidine and copper in biochemical adaptatyon. // J. Theoret. Biol. 1981. — V. 88. — P. 245−256.
  187. Brown C.E., Antholine W.E. Chelation chemistry of carnosine. Evidence that mixed complexes may occure in vivo. // J.Phys.Chem. -1979. -V. 83. P. 3314−3319.
  188. Brown C.E., Margolis F.L., Williams Т.Н., Pitcher R.G., Elgar G.J. Carnosine binding: characterization of steric and change requirements for ligand recognition. // Arch. Biochem. Biophys. -1979.-V. 193.-P. 529−542.
  189. Brown C.E., Antholine W.E. Evidence that carnosine and anserine may participate in Wilson"s disease. // Biochem. Biophys. Res.Comm. 1980. — V. 92. — P. 470−477.
  190. Brown С.E., Virgine D.W., Czernuszewicz R., Nakamoto K. Regulation of peroxobridge formation betwine cobalt (ll)-carnosine complexes by histidine: possible involvment in polycythemia. // J.lnorg.Biochem. 1982. — V.17. — P. 247−158.
  191. Brugnara C., Franclin H. Volume change in single cell anaemia red cells. // Science. 1986. — V. 232. — P. 388−390.
  192. Brugnara C., Tosteson D.C. Cell volume, К transport, and cell density in human erythrocytes. //Am.J.Physiol. 1987. — V.252(Cell Physiol. 21): — C269-C276.
  193. Brugnara C. Membrane transport of Na and К cell degydration in sickle erythrocytes. // Experientia. 1993. — V. 49. — P. 100 — 109.
  194. Brugnara C., Armsby C.C., De Francenshi L., et al. Ca2±activated K±channels of human and rabbit erythrocytes display distinctive pattern of inhibition by venom peptide toxins. // J.Membr.Biol. -1995.-V.147, N1.-P. 71−82.
  195. Buhler R., Pestalozzi D., Hess M., vonWartburg J.P. Localization of alcohol dehydrogenase in human tissues: a immunohistochemical study. // Biochem.Pharmacol. 1983. — V. 18, Suppl.l. — P. 55−62.
  196. Buss H., Chan T.P., Sluis K.B., Domigan N.M., Winterborn C.C. Protein carbonyl measurement by a sensitive ELISA method. // Free Rad. Biol.Med. 1997. — V.23, N3. — P. 361−366.
  197. Calabrese V., Renis M., Calderone A., et al. Stress proteins and SH-groups in oxidant-induced cellular injury after chronic ethanol administration in rat. // Free Rad.Biol.Med. 1998. — V. 24. — P. 1159−1167.
  198. Canessa M. Red cell volume-regulated ion transport system in haemoglobinopathies. // Hematol.Oncol.Clin.North.Am. 1991. -V.5. — P. 495−516.
  199. Cavero I., Spedding M. Calcium antagonists: a class of drugs with a bright future. Part I. Cellular calcium homeostasis and calcium as a coupling massenger. // Life Sci. 1983. — V.33, N 26. — P. 25 712 581.
  200. Cederbaum A.I. Oxygen radical generation by microsomes: Role of iron and implications for alcohol metabolism and toxicity. // Free Radic.Biol.Med. 1989. — V.7. — P. 559−567.
  201. Chamulitrat W., Spitzer J.J. Nitric oxide and liver injury in alcohol-fed rats after lipopolysaccharide administration. // Alcohol. Clin. Exp. Res. 1996. — V.20. — P. 1065−1070.
  202. Chang W., Waltenbaugh C. f Borensztajn J. Fatty acid ethyl ester synthesis by the isolated perfused rat heart. // Metab: Clin. Exp. Res. 1997. — V.46. — P. 926−929.
  203. Chelazzi G., Piccinelli O., Senaldi G. Cellular immunity in alcohol-induced liver disease. // Acta gastro-enterol.belg. 1985. — V.48, N2. — P. 111−117.
  204. Chen L.H., Xi S., Cohen D.A. Liver antioxidant defenses in mice fed ethanol and the AIN-76A diet. // Alcohol. 1995. — V. 12. — P. 453457.
  205. Chevion, M., Berenshtein, E., Stadtman. E.R. Human studies related to protein oxidation: protein carbonyl content as a marker of damage. // Free Radic. Res. 2000. — V. 33, Suppl.1. — S99-S108.
  206. Chi L.M. Wu W.G. Mechanism of hemolysis of red blood cell mediated by ethanol. // Biochem.Biophys.Acta. 1991. — V. 1062. -P. 46−50
  207. Chin J., Goldstein D. Effects of low concentrations of ethanol on the fluidity of spin-labeled erythrocyte and brain membranes. // Molec. Pharmacol. 1977. — V. 13. — P. 43541.195 «
  208. Chin J.H., Goldstein D.B. Drag tolerance in biomembranes: a spin label study of the effect of ethanol. // Science (Wash.DC). 1977. -V.196. — P. 684−685.
  209. Chin J.H., Goldstein D.B. Cholesterol blochs the disordering effects of ethanol in biomembranes. // Lipids. 1984. — V. 19, N12. -P. 929−935.
  210. Clow A., Murray R.M., Sandler M., Stolerman J.P. Intraventricular tetrahydropapaveroline increases alcohol consumption in rat. // Brit.J.Pharm. 1982. -V. 75, Suppl. 54. — P. 48−54.
  211. Cohen C.M. The molecular organization of the red cell membrane skeleton. // Semin. Hematol. 1983. — V. 20. — P. 141−158.
  212. Cohen C.M., Langley R. Characterization of human erythrocyte spectrin a and p chains: association with actin and erythrocyte protein 4.1.// Biochemistry. 1984. — V.23, N19. — P. 4488−4495.
  213. Cohen M., Hartlage P.L., Krawiecki L. Serum carnosinase deficiency: a non-disabling phenotype? // J. Ment. Defic. Res. -1985.-V. 29.-P. 383−389.
  214. Conte A., Bianchi I., Guazzelli M., Taponeco G., Bertelli A., Ronca G. Effect of L-propionyl carnitine on some properties of erythrocytes and leukocytes of alcohol abusers. // Int. J. Tissue React. 1995. -V. 17.-P. 21−31.
  215. Cooper J.A. Effects of cytochalasin and phalloidin on actin. // J.Cell.Biol. 1987. — V.105. — P.1473−1478.
  216. Czapski G. Reaction of HO*. // In: Meth. In Enzymology. Ed. L. Packer. 1984. — V. 105. — P. 209−215.
  217. Dahl Т.A., Midden W.R., Hartman P.E. Some prevalent biomolecules as defenses against singlet oxygen damage. // Photochem. Photobiol. 1988. — V. 47. — P. 357−362.
  218. DePetrillo P. Peterson D. Effect magnesium sulfate on alcohol withdrawal symptomatology. // Amer. Soc.Clin. Pharmacol. Ther. -1992. -V.1.-P. 169−173.
  219. Deitrich R.A. Baker R.C. Initial sensitivity of rat inbred strains to acute alcohol. //Alcoholism. 1984. — V.8, N5. — P. 487−490.
  220. Diaz C., Morkowski J., Schroit A.J. Generation of phenotypically aged phosphatidylserine-expressing erythrocytes by dilauroylphosphatidylcholine-induced vesiculation. // Blood. 1996. — V 87. — P. 2956−2961.
  221. Di Luzio N.R. Prevention of the acute ethanol-induced fatty liver by antioxidants. // Physiologist. 1963. — V.6. — P. 169−173.
  222. DiPadova C., Worner T.M., Julkunen R.J.K., Lieber C.S. The effect of abstinence on the blood acetaldehyde response to a test dose of alcohol in alcoholics. // Alcohol.Clin.Exp.Res. 1987. -V.11.-P. 559−561.
  223. DiPalma J.R. Magnesium replacement therapy. // Am.Fam.Physician. 1990. — V.42, N1. — P.173 -176.
  224. Dodge J.T., Mitchell C., Hanahan D.J. The preparation and chemical characterisation of haemoglobin-free ghosts of human erythrocytes. //Arch. Biochem. Biophys. 1963. — V.100. — P. 119 130.
  225. Dodson R.A., Hinds T.R., Vincenzi F.F. Effects of calcium and A23187 on deformability and volume of human red blood cells. // Blood cells. -1987.-V. 12.-P. 555−561.
  226. Doyle, K.M., Bird, D.A., Al-Salihi, S., Hallaq, Y., Cluette-Brown, J.E., Goss, K.A. and Laposata, M. Fatty acid ethyl esters are present in human serum after ethanol ingestion. // J. Lipid Res. 1994. — V. 35. — P. 428 437.
  227. Doyle K., Hojnacki J., Cluette-Brown J. Ethanol-induced alterations in erythrocyte membrane phospholipid composition. // Amer.J.Med.Sci. -1990. V. 299, N2. — P. 98−102.
  228. Droitte Ph., Lamboeuf Y., de Saint Blanquat G. Membrane fatty acid changes and ethanol tolerance in rat and mouse. II Life Sci. 1984. — V. 35. — P. 1221−1229.
  229. Dumas D., Muller S., Gouin F., Baros F. f Viriot M.L., Stoltz J.F. Membrane fluidity and oxygen diffusion in cholesterol-enriched erythrocyte membrane. // Arch. Biochem. Biophys. 1997. — V. 341. — P. 34−39.
  230. Dunnett M., Harris R.C. Determination of carnosine and other biogenic imidazoles in equine plasma by isocratic reversed-phase ion-pairhigh-performance liquid chromatography. // J. Chromatogr. 1992. — V. 579. -P. 45−53.
  231. Dupont I., Lucas D., Clot P., Menez C., Albano E. Cytochrome P-4502E1 inducibility and hydroxyethyl radical formation among alcoholics. // J.Hepatology. 1998. — V. 28. — P. 564−571.
  232. Eder P., Soong С., Tao V. // Biochemistry. 1986. — V. 25. — P. 1764−1770
  233. Edwards G. Report of a WHO-group of investigators on criteria for identifying and classifying disabilities related to alcohol consumption. Alcohol related disabilities. // WHO-Offset Publication. 1977. — N 32. — P. 5−22.
  234. Edwards G. The Alcohol Dependence Syndrome. A concept as stimulus to enquary. // Brit. J. Add. 1986. — V. 81. — P. 171 -183.
  235. Elgsaeter A., Stokke B.T., Mikkelsen A., Branton D. The molecular basis of erythrocyte shape. // Science. 1986. — V. 234, N4781.-P. 1217−1223.
  236. Eriksson C.J.P. Alcohol and aldehyde metabolizing systems. Ed. Thurman R. N.Y.: Acad. Press, 1977. — P. 285−294.
  237. Eriksson C.J.P. Effects of exogenous ethanol, pyrazole, cyanamide and disulfuram on endogenous acetaldehyde in rats. // Acta Pharmacol. 1985. — V. 57, Suppl.1. — abstr. 20.
  238. Faqvin W.G., Chanwala S.G., Cantley L.C., Branton D., Protein kinase С of human erythrocytes phosphorylates bands 4.1 and 4.9. // Biochim Biophys Acta. -1986. V. 887, N. 2. — P. 142−149.
  239. Fernandez-Sola J., Villegas E., Nicolas J.M. et al Serum and muscle levels of alpha-tocopherol, ascorbic acid, and retinol are normal in chronic alcoholic myopathy. // Alcohol Clin. Exper. Res. -1998.-V.22.-P. 422−427.
  240. Feuerlein W. Epidemiologic und volkswirtschaftliche Bedeutung des Alkoholismus. //Therapiewoche. 1984. — V.34. — P.2916−2931.
  241. Foley T.D., Rhoads D.E. Stimulation of synaptosomal Na, K-ATPase by ethanol: possible involvement of an isozyme-specific inhibitor of Na, K-ATPase. // Brain Res. 1994. — V. 653. — P.167−172.
  242. Foster D.M., Huber M.D., Klemm W.R. Ethanol may stimulate or inhibit Na, K-ATPase, depending upon Na+ and K+ concentrations. // Alcohol. 1989. — V.6. — P. 437 — 443.
  243. French S.W. Ethanol and hepatocellular injury. // Clin.Lab.Med. -1996.-V. 16.-P. 289−306.
  244. Gaines K.C., Salhany J.M., Tuma D.J., Sorrell M.F. Reaction of acetaldehyde with human erythrocyte membrane proteins. // FEBS Letters. 1997. — V.75, N1. — P. 115−119.
  245. Gastaldi M., Lerique D., Feugere Т., Le Petit-Thevenin J., Nobili O., Boyer J. Altered acylation of erythrocyte phospholipids in alcoholism. //Ale. Clin. Exper. Res. 1988. — V.12. — P. 356−359.
  246. Gil E.B., Romero Ortiz A., Maldonado M.A., Rubio L.M.A., Maldonado M.I.A., Rico I.J. Erythrocyte morphometry in alcoholism. // Anal.Med.Interna. 1989. — V. 6. — P. 454−457.
  247. Godfraind J. Calcium entry blockers and tissue protection. New York: Raven Press, 1985. -485p.
  248. Gold M.S., Pottash A.L., Extein J. Evidence for an endorphin dysfunction in nethadone addicts: lack of ACTH response to naloxone. II Drug Alc.Depend. 1981. — V.8, N3. — P. 257−262.
  249. Goldberg D.M., Kapur B.M. Enzymes and circulating proteins as markers of alcohol abuse. // Clin. Chem. Acta. 1994. — V.226, N2. -P. 191−209.
  250. Goldstein D., Chin J. Interaction of ethanol with biological membranes. // Fed.Proc. 1981. — V. 40. — P. 2073 — 2076.
  251. Gorski, N.P., Nouraldin, H., Dube, D.M., Preffer, F.I., Dombrowski, D.M., Villa, E.M., Laposata, M. Fatty acid ethyl esters: Nonoxidative ethanol metabolites with emerging biological and clinicalsignificance. // Lipids. 1999. — V. 34. — P. S281-S285.
  252. Graham L., Gallop P.M. Covalent protein crosslincs: general detection, quantitation and characterization via modification with diphenyl-borinic acid. // Anal. Biochem. 1994. — V.217, N2. — P. 298−305.
  253. Grattagliano I., Vendemiale G., Didonna D., Errico F., Bolognino A., Pistone A., Cofano M., Signorile A., Ciannamea F., Altomare E. Oxidative modification of proteins in chronic alcoholics.// Boll. Soc. Ital. Biol. Sper. 1995. — V.71. — P. 189−195.f
  254. Grattagliano I., Vendemiale G., Sabba C., Buonamico P., Altomare E. Oxidation of circulating proteins in alcoholics: role of acetaldehyde and xanthine oxidase. // J.Hepatol. 1996. — V. 25, N1.-P. 28−36.
  255. Grennell T.L. The binding of alcohol to brain membranes. // Adv. Exp. Med. Biol. 1975. — V. 59. — P. 11−22.
  256. Griffiths H.R. Antioxidants and protein oxidation. // Free Radic. Res. 2000. — V.33, Suppl S47-S58.
  257. Gubitosi-Klug R.A., Gross R.W. Fatty acid ethyl esters, nonoxidative metabolites of ethanol, accelerate the kinetics of activation of the human brain delayed rectifier K+ channel, Kv1.1. // J. Biol. Chem. 1996. — V.271. — P. 32 519- 32 522.
  258. Gulewitsch W.S., Amiradzibi S. Uber das Carnosin, eine neue organische Base des Fleischextraktes. // Ber. Deutsch. Chem. Ges. 1900. — V.33. — S. 1902−1903.
  259. Haber P. S., Wilson J.S., Apte M.V., Pirola R.C. Fatty acid ethylesters increase rat pancreatic lysosomal fragility. // J. Lab. Clin. Med. 1993. — V.121. — P. 759−764.
  260. Halliwell DB., Gutteridge J.M.C. In: Free Radicals in Biology and medicine. // Oxford: Oxford University Press, 1989. P. 86−91- 332 334.
  261. Halliwell DB., Gutteridge J.M.C. In: Free Radicals in Biology and medicine. // Oxford: Oxford University Press, 1999. P. 134−136- 485−491.
  262. Handler J.A., Bradford B.U., Glassman E et al. Catalase-dependent ethanol metabolism in vivo in deermice lacking alcohol dehydrogenase. // Biochem.Pharmacol. 1986. — V.35, N 24. -P.4487−4492.
  263. Harlow E., Lane D. Antibodies: a laboratory manual. // Cold Spring Harbor Laboratory. -1988.
  264. R.A., Baxter D.M., Mitchell M.A., Hitzemann R.J. // Mol. Pharmacol. 1984. — V.25. — P. 401−409.
  265. Harris R.A., Caldwell K.K. Alcohol and the calcium-dependent potassium transport of human erythrocytes. // Alcohol. 1986. — V. 2, N1.-P. 149−152.
  266. Harris R.D., Burnett R., McQuilkin S., McClard A., Simon F.R. Effects of ethanol on membrane order: Fluorescence studies. // Ann. New York Acad. Sci. 1987. — V. 492. — P. 125−135.
  267. Harris R., Schroeder F. Ethanol and physical properties of brain membranes. // Molec.Pharmacol. 1981. — V. 20, N1. — P. 128−137.
  268. Hausley M.D., Stanly K.K. Dynamics of Biological membranes. // N.Y. 1984.
  269. Hayashi N., Kamada Т., Sato N. et al. Inhibition of cytochrome P-450 dependent mixed function oxidation by ethanol. // Dig. Diseses and Sci. 1985. — V. 30, N4. — P. 334−339.
  270. Heim M., Morgner J. Alcoholism and macrocytosis. // Zeitschrift fur arztliche fortbildung. 1980. — V. 74, N 18. — P. 846−846.
  271. Hillman R.S. Ann.N.Y.Acad.Sci. 1975. -V. 252. — P. 297−306.
  272. Hipkiss A.R., Worthington V.C., Himsworth D.T., Herwig, W. Protective effect of carnosine against protein modification mediated by malondialdehyde and hypochlorite. // Biochim. Biophys. Acta. -1998.-V. 1380.-P. 46−54.
  273. Hiraishi H., Shimada Т., Ivey K.J., Terano A. Role of antioxidant defenses against ethanol-induced damage in cultured rat gastric epithelial cells. // J.Pharmacol.Exper.Therap. 1999. — V. 289. — P. 103−109.
  274. Hjelle J.J., Gubbs J.H., Petersen D.R. Inhibition of mitochondrial aldehyde dehydrogenase by malondialdehyde. // Toxicol. Letters. -1982.-V. 12, N1. P. 35−43.
  275. Но A.K., Rossi N. Suppression of ethanol consumption by metenkephalin in rats. // J.Pharm.Pharmacol. 1982. — V. 34, N2. -P. 118−119.
  276. Hoffman P.L., Luthin G., Tabakoff B. Abstr. 1-st Congr. Int. Soc. Biomed. Res. On Alcoholism. Munich: Germany, 1982. — P. 74.
  277. Holmes R.S., Duley J.A., Algar E.M., et.al. Biochemical and Genetic Studies on Enzymes of Ethanol Metabolism74 the Mouse as a Model Organosm for Human studies. // Ale. Ale. 1986. — V. 21, N1.-P. 41−56.
  278. Holownia A., Ledig M., Braszko J.J., Menez J.-F. Acetaldehyde cytotoxicity in cultured rat astrocytes. // Brain Res. 1999. — V. 833. — P. 202−208.
  279. Homaidan F.R., Kricka L.J., Bailey A.R., Whitehead T.P. Red cell morphology in alcoholics: a new test for alcohol abuse. // Blood Cells. 1986. — V. 11. — P. 375−392.
  280. Hoult J.R.S., Peers S.H. Effects of ethanol and mepacrine on arachidonate mobilisation in trombin and А-23 187-stimulated platelet phospholipids. // Brit.J.Pharm. 1985. — V. 84, suppl. — P. 153−154.
  281. Hrelia S., Lercker G. f Biagi P.L., Bordoni A., Stefanini F., Zunarelli P., Rossi C.A. Effect of ethanol intake on human erythrocyte membrane fluidity and lipid composition. // Biochem. Int. 1986. -V. 12.-P. 741−750.
  282. Hsieh S.T., Sano H., Saito K. f Kubota Y. t Yokoyama M. Magnesium supplementation prevents the development of alcohol-induced hypertension. // Hypertension. 1992. — V.19, N2. — P. 175 -182.
  283. Huentelman M.J., Peters C.M., Ervine W.E., Polutnik S.M., Johnson P. Ethanol has differential effects on rat neuron and thymocyte reactive oxygen species levels and cell viability. // Comparative Biochem.Physiol. 1999. — V. 124. — P. 83−89.
  284. Hunter G. Observation on the distribution and variation of carnosine in cat muscle. // Biochem. J. 1924. — V. 18. — P. 408 411.
  285. Jackson M.C., Kucera C.M., Lenney J.F. Purification and properties of human serum carnosinase. // Clin.Chim.Acta. 1991. -V.196. — P. 193−206.
  286. O.Johnson J.H., Crider B.P. Increases in Na, K-ATPase activity of erythrocytes and skeletal muscle after chronic ethanol consumption: Evidence for reduced efficiency of the enzyme. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1989. — V. 86. — P. 7857 — 7860.
  287. I.Johnson J., Hainline В., Rajagopolan K. Methanol and ethanol metabolism. // J.Biol.Chem. 1980. — V. 255, N5. — P. 1783−1786.
  288. Johnson P., Wie Y., Huentelman M.J., Peters C.M., Boldyrev A.A. Hydralazine, but not captopril, decreases free radical formation and apoptosis in neurones and thymocytes. // Free Radical Research. -1988.-V.28.-P. 393−402.
  289. Jones A.W., Skagerberg S., Borg S., Anggard E. Time course of breath acetaldehyde concentrations during intravenous infusions of ethanol in healthy men. // Drug. Alcohol. Depend. 1984. — V.14, N2.-P. 113−119.
  290. Keilin D., Hartree E.F. Properties of catalase: Catalysis of coupled oxidation of alcohols. // Biochem. J. 1945. — V. 39. — P. 293−301.
  291. Kelly-Murphy S., Waring A.J., Rottenberg H., Rubin E. Effects of chronic ethanol consumption on the partition of lipoohilic compounds into erythrocyted membranes. // Lab.Invest. 1984. -V.50, N2.-P. 174−183.
  292. Kinoshita H., Ijiri I., Ameno S., Fuke C.(Ameno K. Additional proof of reduction on ethanol absorption from rat intestine in vivo by high acetaldehyde concentration. //Alc.Alc. 1995. — V.30, N4. — P. 419 421.
  293. Kishimoto R., Fujiwara I., Kitayama S., Goda K., Nakata Y. Changes in hepatic enzyme activities related to ethanol metabolism in mice following chronic ethanol administration. // J.Nutr.Sci.Vitaminol. 1995. — V.41. — P. 527−543.
  294. Klassen L.W., Tuma D.J., Sorrell M.F., McDonald T.L., De Vasure J.M., Thiele G.M. Detection of reduced acetaldehyde protein adducts using a unique monoclonal antibody. // Alcohol. Clin. Exp. Res. 1994. — V. 18, N1. — P. 164−171.
  295. Klassen L.W., Thiele G.M. Immune reactivity to proteins biotransformed by alcohol metabolites. // Alcohol Clin. Exp. Res. -1998. Aug-22(5 Suppl). — P. 204S-207S
  296. Klemm W.R. Prog. Neuropsychopharmacol. U Biol. Psychiatry. -1987.-V.11.-P. 633−658.
  297. Kohen R., Misgav R., Ginsburg I. The SOD like activity of copper: carnosine, copper. anserine and copper: homocarnosine complexes. // Free Rad. Res. Com. 1991. -V. 12−13, Pt 1. — P. 179−185.
  298. Kohen R., Yamamoto Y., Kundy K.S., Ames B.N. Antioxidant activity of carnosine, homocarnosine, and anserine present in muscle and brain. // Proc. Natl. Acad. Sci. U.S. 1988. — V. 85. — P. 3175−3179.
  299. Koop D.R., Morgan E.T., Tarr G.E., Coon M.J. Purification and characterization of a unique isoyme of cytochrome P-450 from liver microsomes of ethanol-treated rabbits. // J.Biol.Chem. 1982. -V.257. — P. 8472−8480.
  300. Koopman G., Reutelingsperger C.P., Kuijten G.A., Keehnen R.M., Pals S.T., van Oers M.H. Annexin V for flow cytometric detection ofphosphatidylserine expression on В cells undergoing apoptosis. // Blood. 1994. — V. 84. — P.1415−1420.
  301. Korsten M.A., Matsuzaki S., Felnman L., Lieber C.S. High blood acetaldehyde levels after ethanol administration. Difference between alcoholic and nonalcoholic subjects. // New Engl. J. Med. -1975.-V.292.-P. 386−389.
  302. Kukielka E., Dicker E., Cederbaum A.I. Increased production of reactive oxygen species by rat liver mitochondria after chronic ethanol treatment. // Arch. Biochem. Biophys. 1994. — V.309. — P. 377−386.
  303. Kuypers F.A., Yuan J., Lewis R.A., Snyder L.M., Kiefer C.R., Bunyaratvej A., Fucharoen S., Styles L., De Jong K., Schrier S.L. Membrane phospholipid asymmetry in human thalassemia. // Blood. 1998. — V. 91. — P. 3044−5301.
  304. Laemmli U.K. Cleavage of structural proteins during the assembly of the bead of bacteriophage T4. // Nature. 1970. — V.227. -P.680−685.
  305. Landolfi R., Steiner M. Ethanol raises prostacyclin in vivo and in vitro. // Riusa-blood. 1984. — V. 64, N3. — P. 679−682.
  306. Laposata M. Fatty acid ethyl esters: short-term and long-term serum markers of ethanol intake. // Clin.Chim. 1997. — V.43. — P. 1527−1534.
  307. Laposata M. Fatty acid ethyl esters: nonoxidative ethanol metabolites with emerging biological and clinical significance. // Lipids. 1999. — V.34. — S281-S285.
  308. Laposata E.A., Lange L.G. Presence of nonoxidative ethanol methabolism in human organs commonly damaged by ethanol abuse. // Science. 1986. — V. 231. — P. 497−499.
  309. Latge C., Lamboeuf Y. f Roumec C. et al Effect of chronic acetaldehyde intoxication on ethanol tolerance and membrane fatty acids. // Drug Ale. Depend. 1987. — V.20. — P. 47−55.
  310. Lazarev P.B., De Duve C. The synthesis and turnover of rat liver peroxisomes. V. Intracellular pathway of catalase synthesis. // J.Cell.Biol. 1973. — V. 59. — P. 507−524.
  311. Lebsack M.E., Gordon E., Lieber Ch.S. Effect of chronic ethanol consumption on aldehyde dehydrogenase activity in the babaon. // Biochem. Pharmacol. 1981. — V.30, N16. — P. 2273 — 2277.
  312. Lenney J.F., George R.P., Weiss A.M., Kucera C.M., Chan P.W.H., Rinzler G.S. Human serum carnosinase: characterization, disdinction from cellular carnosinase and activation by cadmium. // Clin. Chim. Acta. 1982. -V. 123. — P. 221−231.
  313. Lepcock I.R., Frey H.E., Bayne H., Markus I. Relationship of hyperthermia-induced hemolysis of human erythrocytes to the thermal denaturation of membrane proteins. // Biochim. Biophys. Acta. 1989. — V.980. — P. 191−201.
  314. Lester D., Keokosky W.Z., Felzenberg F. Effects of pyrazoles and other compounds on alcohol metabolism. // Quart. J. Stud. Alcohol. 1968. — V. 29. — P. 449−454.
  315. Levine R.L., Garland D., Oliver C.N., Amici A., Clliment I., Lenz A.-G., Ahn B.-W., Shaltiel S., Stadtman E.R. Determination ofcarbonyl content in oxidatively modified proteins. // Meth. Enzymol. 1990. — V. 186. — P. 464 — 478.
  316. Li Т.К. Enzymology in human alcohol metabolism. //Adv. Enzymol. -1971.-V.45.-P. 427−483.
  317. Li C.J., Nanji A.A., Siakotos A.N., Lin R.C. Acetaldehyde-modified and 4-hydroxynonenal-modified proteins in the livers of rats with alcoholic liver disease. // Hepatology. 1997. — Sep- V.26, N3. — P. 650−657.
  318. Lieber C.S. Microsomal ethanol oxidizing system (MEOS) and metabolism of ethanol, drugs, xenobiotics and carcinogens. // Biochem. Soc. Trans. 1988. — V.16, N3. — P. 232 — 239.
  319. Lieber C.S. Matabolic effect of acetaldehyde. // Biochem.Soc.Trans. 1988. — V.16, N3. — P. 241 — 247.
  320. Lieber C.S. Interaction of ethanol with drugs, hepatotoxic agents, carcinogens and vitamins. // Ale.Ale. 1990. — V.25, N 2/3. — P. 157 176.
  321. Lieber C.S. Medical and Nutritional Complications of Alcoholism: Mechanisms and Management. // Plenum Press, New York, 1992. -P. 579.
  322. Lieber C.S. Hepatic and metabolic effects of ethanol: pathogenesis and prevention. // Annals Med. 1994. — V. 26. — P. 325−330.
  323. Lieber C.S. Cytochrome P4502E1: Its physiological and pathological role. // Physiol. Rev. 1997. — V.77. — P.517−544.
  324. Lieber C.S. Microsomal Ethanol-Oxidizing System (MEOS): The First 30 Years (1968−1998) // A Review/ Alcoholism: Clin and Exp. Res. 1999. -V. 23, N6. — P. 991−1007.
  325. Lieber C.S., Baraona E., Leo M.A. Metabolism and metabolic effects of ethanol, including interaction with drugs, carcinogens and nutrition. // Mutat. Res. Rev. Genet. Toxicol. 1987. — V. 186, N3. -P. 201−233.
  326. Lieber C.S., De Carli L.M. Ethanol oxidation by hepatic microsomes: adaptive increase after ethanol feeding. // Science. -1968.-V. 162.-P. 917−918.
  327. Lieber C.S., De Carli L.M. Hepatic microsomal ethanol oxidizing system, in vitro characteristics and adaptive properties in vivo. // J.Biol.Chem. 1970. — V.245. — P. 2505−2512.
  328. Lindros K. Res. Adv. Alcohol Drag Problems. 1978. — V.4. — P. 111−176.
  329. Littleton J. Cell-membrane lipids in ethanol-tolerance and dependence. // Biochim. Soc. Trans. 1983. — V.11, N1. — P. 61−62.
  330. Liu Y.R. Effects of alcohol on granulocytes and lymphocytes. // Semin.Hematol. 1980. — V.2. — P. 130−136.
  331. Loguercio C., Clot P., Albano E et al. Free radicals and not acetaldehyde influence the circulating levels of GSH after acute or chronic alcohol abuse: in vivo and in vitro studies. // Ital. J. Gastroenterol. Hepatol. 1997. — V.29. — P. 168−173.
  332. Lowry O.H., Rosebrough N.J., Farr A.L., Randall R.J. Protein measurement with the Folin phenol reagtnt. // J. Biol. Chem. -1951.-V. 193. -P.265−275.
  333. Lucas D., Berthou F., Dreano Y., Menez J. Ethanol-inducible cytochrome P-450: assessment of substrates as specific chemical probes in rat liver microsomes. // Alc.Alc. 1989. — V.24, N4. — P. 381.
  334. Lucch L., Govoni S., Batlaaini A. Ethanol administration in vivo alters calcium ions control in rat striatum. // Brain. Res. 1985. -V.333, N2. — P. 376−379.
  335. Lyon R., Goldstein D. Changes in synaptic membrane order associated with chronic ethanol treatment in mice. // Molec.Pharmacol. 1982. — V. 23. — P. 86−91.
  336. Lyon R., McComb J., Schreurs J., Goldstein D. A relationship between alcohol intoxication and the disordering of brain membranes by a series of short-chain alcohols. // J. Pharmacol. Exp. Ther. 1981. — V.218, N3. — P. 669−675.
  337. Magruder J.D., Waid-Jones M., Peitz R.C. Ethanol-induced alterations in rat synaptosomal plasma membrane phospholipids. // Molec. Pharmacol. 1985. — V.27, N3. — P. 256−262.
  338. Mantle D., Preedy V.R. Free radicals as mediators of alcohol toxicity. // Adverse Drug React. Toxicol. Rev. 1999. — V.18, N4. -P. 235−252.
  339. Marklund S.L. CuZnSOD, MnSOD, catalase and glutathione peroxidase in normal and neoplastic human cell lines and normal human tissues. // Cancer. Res. 1982. — V.42. — P. 1955−1961.
  340. Martin N.G., Perl J., Oakeshott J.G., Gibson J.B., Starmer G.A., Wilks A.V. A twin stady ethanol metabolism. // Behav.Genet. -1985. -V. 15, N2.-P. 93−109.
  341. McGivern R.F., Deutsch C.K., Ronca A.E., Paulucci Т., Noble E. Antagonism of tertiary butanol by АСТКЦ-ю naloxone and dexamethasone. // Subst. Alcohol Actions Misuse. 1982. — V.3, N1−2.-P. 121−127.
  342. Meier-Tackmann D., Leonhardt R.A., Agarwal D.P., Goedde H.W. Effect of acute ethanol drinking on alcohol metabolism in subjects with different ADH and ALDH genotypes. // Alcohol. 1990. — V.7. -P. 413−418.
  343. Meltzer H.L., Alexopolos G.M.D. Increased erythrocyte calcium in alcoholism. // J. Clin. Pharmacol. 1982. — V. 22. — P. 466−469.
  344. Mendiratta S., Qu Z., May J.M. Erythrocyte defenses against hydrogen peroxide: the role of ascorbic acid. // Biochem. Biphys. Acta. 1998. — V.1380. — P. 389−395.
  345. Meyer T. Determination of ethanol in biological samples by head-space gas chromatography using glass capillary columns. // Acta Pharm. Toxicol. 1978. — V.43. — P. 164−168.
  346. Mezey E., Potter J.J., Reed W.D. Ethanol oxidation by a component of liver microsomes roch in cytochrome P-450. // J. Biol. Chem. 1973. — V.248. — P. 1183−1187.
  347. Michaelis M.L. Michaelis E.K. Effects of ethanol on NMDA receptors in brain: possibilities for Mg2±ethanol interactions. // Alcohol. Clin. Exp. Res. 1994. — V.18, N5. — P. 1069−1075.
  348. Michell R.H. Inositol phospholipid breakdown, cell activation and drug action. In: Control and manipulation of calcium movement. // New York: Acad. Press. 1985. — P. 51−62.
  349. Miller N.S. Increased membrane order of erythrocytes in alcoholics as measured by fluorescence polarization: a possiblemarker for tolerance in alcoholics. // Adv. Alcohol Subst. Abuse. -1990. V.9, N3−4. — P. 43−52.
  350. Mische S., Mooseker M., Morrow J. Erythrocyte adducin: a calmodulin-regulated actin-bundling protein that stimulates spectrin-actin binding. //J. Cell. Biol. 1987. — V.105. — P. 2837−2849.
  351. Mitchell J.J., Paiva M., Heaton M.B. The antioxidants vitamin E and beta-carotene protect against ethanol-induced neurotoxicity in embryonic rat hippocamal cultures. // Alcohol. 1999. — V.17. — P. 163−168.
  352. Mohn G., Schmidt M., lanthur B.W., Klemm G. Induction of MEOS and binding of ethanol on the liver: microsomes of female mice. Industr. and Environ. Xenobiotics. // Proc. Intern. Conf. Prague, 27−30 May, 1980. — Berlin o.a., 1980. — 1981. — P. 337−342.
  353. Morris M.E. Brain and CSF magnesium concentrations during magnesium deficit in animals and humans: neurological symptoms. // Magnes Res. 1992. — V.5, N4. — P.303−313.
  354. Morrisett R.A. Martin D. Oetting T.A. Lewis D.V. Wilson W.A. Swartzwelder H.S. Ethanol and magnesium ions inhibit N-methyl-D-aspartate-mediated synaptic potentials in an interactive manner. // Neuropharm. 1991. — V. 30, N11. — P. 1173−1178.
  355. Morton S., Mitchell M. Effect of chronoc ethanol feeding on glutathione turnover in the rat. // Biochem. Pharmacol. 1985. -V.34, N9. — P. 1559−1563.
  356. Myers W., Singer G. Ethanol preference in rats with a prior history of acetaldehyde self-administration. // Experientia. 1984. — V.40, N9.-P. 1008−1010.
  357. Nagai K., Suda Т., Kawasaki К Effects of L-carnosine on blood cells and biomembrane. // J. Physiol. Soc. Jap. 1990. — V.52. — P. 339−344.
  358. H.T., Elberling J.F., Roberts J.C. ^-Substituted cysteines as sequestering agents for ethanol-derived acetaldehyde in vivo. // J. Med. Chem. 1987. — V. 30, N8. — P. 1373−1378.
  359. Nakao M. f Jinbu Y., Sato S., Ishigami Y., Nakao Т., Ito-Ueno E., Wake K. Structure and function of red cell cytoskeleton. // Biomed. Biochim. Acta 1987. — V. 46. — P. 5 — 9.
  360. Newcomb T.G., Loeb L.A. Mechanisms of mutagenicity of oxidatively-modified bases. // In: Molecular Biology of Free Radicals in Human Disease. Eds. O. Aruoma and B. Halliwell. Oica International, Saint Lucia, London, 1998. P. 139−166.
  361. Ng R.H., Marshall F.D. Distribution of homocarnosine-carnosine synthetase in tissues of rat, mouse, chick and frog. // Сотр. Biochem. Physiol. 1976. — V.54B. — P. 519−521.
  362. Nickel В., Morozov G.V. Alcoholbedingte Krankheiten: Grundlagen und Klinik. Berlin: Verl. Volk u Gesundheit. — 1989. -416 p.
  363. Nie Y., Stubbs C.D., Williams B.W., Rubin E. Ethanol causes decreased partitioning into biological membranes without changes in lipid order. // Arch.Biochem.Biophys. 1989. — V.268. — P. 349 359.
  364. Niemela O. Aldehyde-protein adducts in the liver as a resalt of ethanol-induced oxidative stress. // Front Biosci. 1999. — V.4. -D506-D513.
  365. Nishiki К., Chance В., Morris M.A. In «Alcohol and aldehyde metabolizing systems». Ed. Thurman R. et al. N.Y.: Acad. Press, 1977.-V.3.-P. 271−284.
  366. Orlov S.N., Pokudin N.I., Kotelevtsev Y.V., Gulak P.V. Volume dependent regulation of ion transport and membrane phosphorylation in human and rat erythrocytes. // J. Membrane Biol. -1989.-V.107.-P. 105−117.
  367. Расе N. Alcoholism as a modern problem. // Drug Therapy. -1978.-V.8, N1. P.29−34.
  368. Pares A., Planas R., Torres M. Effects of silymarin in alcoholic * patients with cirrhosis of the liver: results of a controlled, doubleblind, randomized and multicenter trial. // J. Hepatol. 1998. — V.28. -P. 615−621.
  369. Parke J., Radke E. Alcohol-induzierte Hypertonie. // Z. gesamte inn. Med. Und Grouzgeb. 1990. — Bd 45, N1. — S.22−23.
  370. Pavlov A.R., Revina A.A., Dupin A.M., Boldyrev A.A., Yaropolov A.I. The mechanosm of interaction of carnosine with superoxide radicals in water solutions. // Biochem. Biophys. Acta. 1993. -V.1157. — P. 304−312.
  371. Pediconi M., Colonibo C., Gall G. Effects of acute and chronic ethanol administration on tromboxane and prostacyclin levels and release in brain cortex. // Prostaglandins. 1985. — V.30, N2. — P. 313−322.
  372. Pekiner В., Pennock J.F. Oxidation of human red blood cells by a free radical initiator and effects of radical scavengers. // Biochem. Mol. Biol. Int. 1994. — V.33. — P. 1159−1167.
  373. Peters T. Principtes of action of calcium entry blockers on cellular ^ movements of calcium. // Int. Angiol. 1984. — V.3, N1. — P. 9−17.
  374. Pryor W.A. Oxy-radicals and related species: their formation, ^ lifetimes and reaction. // Annu. Rev. Physiol. 1986. — V.48. — P.657.667.
  375. Rasmussen H. Cyclic nucleotides and cellular calcium metabolism. // Adv. Cycle. Nucl. Res. 1975. — V. 5. — Ed. Drummond G.J., N.Y. — P. 2642.
  376. Rathbun W., Bethlach V. Estimation of enzymatically produced orthophosphate in the presence of cysteine and adenosine triphosphate. //Analit. Biochem. 1969. — V.28. — P. 436−442.
  377. Reda Т., Blumenthal R., Muller P., Herrmann A. Influence of the spectrin network on fusion of influenza virus with red blood cells. // Mol. Membr. Biol. 1995. — V.12. — P. 271−276.
  378. Reed D.J., Fariss M.W. Glutathion depletion and susceptibility. // Pharmacol. Rev. 1984. — V. 36, N2. — P. 25−33.
  379. Reinke L.A., Moore D.R., McCay P.B. Mechanisms for metabolism of ethanol to 1-hydroxyethyl radicals in rat liver microsomes. //Arch. Biochem. Biophys. 1997. — V.348. — P. 9−14.
  380. Reinke L.A., Moore D.R., McCay P.B. Free radical formation in livers of rats treated acxutely and chronically with alcohol. // Alcohol. Clin. Exper. Res. 1997a, — V. 21. — P. 642−646.
  381. Reznick A.Z., Packer L. Oxidative damage to proteins: spectrophotometric method for carbonyl assay. // Meth. Enzymol. -1994. -V.233. P. 357−363.
  382. Richter G. Charakterisierung von Alkoholgebrauch, missbrauch und Abhangigkeit und ihr klinicher Bezug. // Z.Arztl.fortb. 1989. -Bd 83. — S.803−809.
  383. Rifani N. Sakamoto M., Law Т., Piatt O., Mikati M., Armsby C.C., Brugnara C. HPLC measurement, blood distribution, and pharmacokinetics of oral clotrimazole, potentially useful antisickling agent. // Clin.Chem. 1995. — V.41. — P. 387−391.
  384. Romero J.R., Fabry M.E., Suzuka S., Nagel R.L., Canessa M. Red blood cells of a transgenic mouse expressing high levels of human hemoglobin S exhibit deoxy-stimulated cation flux. // J.Membr.Biol. 1997. — V.159. — P. 187−196.
  385. Ron M.A. The alcoholic Brain: CT Scan and psychological findings. // Psychological Medicine, Monograph. Suppl. 3. -Cambridge University Press, Cambridge, 1983.
  386. Ross D.H. Adaptative changes is Ca-membrane interactions following chronic ethanol exposure. //Adv. Exp. Med. Biol. 1977. -V.85A. — P. 459−471.
  387. Ross D.H., Garrett K.M. Acute pharmacological actions of ethanol on the central neurvous system. // In: The Biology of Alcoholism. -1983. V.7. — Plen. Press, N.Y., P. 57−75.
  388. Rouach H. f Houze P., Gentil M., orfanelli M.T., Nordmann R. Changes in some pro- and antioxidants in rat cerebellum after chronic alcohol intake. // Biochem.Pharmacol. 1997. — V.53. — P. 539−545.
  389. Rubtsov A.M., Schara M., Sentjure M., Boldyrev A.A. Hydroxyl radical-scavenging activity of carnosine: a spin trapping study. // Acta Pharm. Jugosl. 1991. — V.41. — P. 401−407.
  390. Ryle P.R. The radicals, lipid, peroxidation and ethanol hepatotoxicity. // Lancet. 1984. — N 8400. — P. 461−464.
  391. Sadrzadeh S.M., Nanji A.A. The 21-aminosteroid 16-desmethyl tirilazad mesylate prevents necroinflammatory changes in experimental alcoholic liver disease. // J. Pharmacol. Exper. Therap. 1998. — V.284. — P. 406−412.
  392. Saeed Dar M., Wooles W.R. The effect of acute ethanol on dopamine metabolism and other neurotransmitters in hypothalamus and the corpus striatum of mice. // J. Neural.Transmiss. 1984. -V.60, N3−4. — P. 283−294.
  393. Saghir M., Blodget E., Laposata M. The hydrolysis of fatty acid ethyl esters in low-density lipoproteins by red blood cells, white blood cells and platelets. //Alcohol. 1999.- V. 19. — P. 163−168.
  394. Saleem M.M., Al-Tamer Y.Y., Skursky L. Alcoholdehydrogenase activity in the human tissues. // Biochem.Med. 1984. — V.31, N1. -P. 1−9.
  395. Salmela K.S. Kessova I.G., Tsyrlov I.В., Lieber C.S. Respective roles of human cytochrome P-4502E1, 1A2 and 3A4 in the hepatic microsomal ethanol oxidizing system. // Alcohol. Clin. Exp. Res.1998. -V.22. P. 2125−2132.
  396. Sato Y, Kamo S., Takahashi Т., Suzuki Y. Mechanism of free radical-induced hemolysis of human erythrocytes: hemolysis by water-soluble radical initiator. // Biochemistry. 1995. — V.34. — P. 8940−8949.
  397. Schlorff E.C., Husain K. f Somani S.M. Dose- and time-dependent effects of ethanol on plasma antioxidant system in rat. // Alcohol.1999. -V. 17.-P. 97−105.
  398. Showoch G., Passow H. Preparation and properties of human erythrocyte ghosts. // Mol. Cell. Biochem. 1973. — V.2, N2. — P. 197−217.
  399. Siew Ch., Deitrich R., Erwin V.G. Localization and characteristics of rat liver mitochondrial aldehyde dehydrogenases. // Arch. Biochem. 1976. — V.176, N2. — P. 638−649.
  400. Sippel H. Inhibition of diethylmaleat-induced microsomal glutathion-S-transferase activation by acute ethanol administration. //Acta Pharmacol. 1985. — V.57, Suppl.1, abstr. 47.
  401. Skinner H. Clinical versus laboratory detection of alcohol abuse: The alcohol clinical index. // Brit. Med. J. 1986. — V.292. — P. 17 031 708.
  402. Skulachev V.P. Energetics of Biological Membranes. // Berline: Springer, 1989.
  403. Slater Т.Е. Effects of ethyl alcohol and other alcohols on microsomal lipid perpxidation and enzymic systems. // Ale. Ale. -1989.-V.24, N4.-P.387.
  404. Smith T.L. Synaptosomal cholesterol and phospholipid levels in several mouse strains differentially sensitive to ethanol. II J. Pharmacol. 1985. — V.232. — P. 702−707.
  405. Smith T.L., Gerhart M. Alterations in brain lipid composition of mice made physically dependent to ethanol. // Life Sci. 1982. -V.31.-P. 1419−1425.
  406. Sozmen E.Y., Tanyalcin Т., Onat Т., Kutay F., Erlacin S. Ethanol induced oxidative stress and membrane injury in rat erythrocytes. // Eur. J. Clin. Chem. Clin. Biochem. 1994. — V.32. — P: 741−744.
  407. Steck T.L. Cross-linking the major proteins of the isolated erythrocyte membrane. // J.Mol.Biol. 1972. — V.66, N1. — P.295−305.
  408. Stevens V.J., Pantl W.J., Newnan C.B. Drug and alcohol depend.- 1980. V.6, N½. — P.29−30.
  409. Stibler H. f Beauge F., Leguicher A., Borg S. Biophysical and biochemical alterations in erythrocyte membranes from chronic alcoholics. // Scandinav. J. Clin. Lab. Invest. 1991. — V. 51. — P. 309−319.
  410. Stowell A., Johnsen J. f Aune H. f Vatne K., Ripel A., Morland J. Are investigation of the usefulness of breath analysis in the determination of blood acetaldehyde concentrations. // Alcoholism.- 1984. V. 8, N5. — P. 442−447.
  411. Tabakoff В., Culp S.G. Studies on tolerance development in inbred and heterogeneous stock National institutes of health rats. // Alcoholism. 1984. — V.8, N5. — P. 495−499.
  412. Tephly T.R., Mannering G.J., Parks R.E. Studies on the mechanism of inhibition of liver and erythrocyte catalase activity by 3-amino-1,2,4-triazole (AT). // J. Pharm. Exp. Ther. 1961. — V.133. — P. 77−82.
  413. Teschke R., Hasumura Y. f Lieber C.S. Hepatic microsomal ethanol oxidizing system: Solubilization, isolation and characterization. // Arch. Biochem. Biophys. 1974. — V.163. — P. 404−415.
  414. Teschke R., Matsuzaki S., Ohnishi K., DeCarli L.M., Lieber C.S. Microsomal ethanol oxidizing system (MEOS): Current status of its characterization and its role. // Alcohol Clin. Exp. Res. 1977. -V.1.-P. 7−15.
  415. Thiele G.M., Tuma D.J., Miller J.A., Wegter K.M., McDonald T.L., Klassen L.W. Monoclonal and polyclonal antibodies recognizing acetaldehyde-protein adducts. //Biochem Pharmacol. 1998. -V.56, N11.-P. 1515−23.
  416. Thompson P. Platelet and erythrocyte membrane fluidity changes in alcohol-dependent patients undergoing acute withdrawal. // Ale. Ale. 1999. — V.34, N3. — P. 349−354.
  417. Thurman R.G., Brentzel H.J. The role of alcohol dehydrogenase in microsomal ethanol oxidation and the adaptive increase in ethanol metabolism due to chronic treatment with ethanol. // Alcohol. Clin. Exp. Res. 1977. — V.1. — P. 33−38.
  418. Ticku M.K., Davis M.C., Burch T.P. In «Abstr.lst.Congr.lnt.Soc.Biomed.Res.Alcoholism' Munich, Germany, 1982. — P. 173.
  419. Tilley L. f Ralston G. Effect of erythrocyte spectrin on actin self-association //Aust. J. Biol. Sci. 1987. -V. 40. — P. 27−36.
  420. Torronen R. t Laahsonen M. Liver cytosolic aldehyde dehydrogenases in rats with different predisposition to induction by phenobarbital. // Int. J. Biochem. 1984. — V.16, N6. — P. 659−666.
  421. Trandum C., Westh P., Jorgensen K. t Mouritsen O.G. Association of ethanol with lipid membranes containing cholesterol, sphingomyelin and ganglioside: a titration calorimetry study. // Biochim. et Diophysica Acta. 1999. — V.1420. — P. 179−188.
  422. Tsai G., Gastfriend D.R., Coyle J.T. The glutamatergic basis of human alcoholism. // Amer. J. Psychiatry. 1995. — V.152. — P. 332 340.
  423. K.K., Thompson D.J., Rush E.M. // Hemoglobin. 1981. -V.5, N3. — P. 241−250.
  424. Tyopponen J.T., Eriksson P.C. Plasma testosterone in rats exposed to ethanol during vitamin E deficiency. // Intern. J. Vitam. Nutr. Res. 1987. — V.57, N3. — P. 267−271.
  425. Ugar O., Onaran H.O. Allosteric equilibrium model explains steady-state coupling of beta-adrenergic receptors to adenylate cyclase in turkey erythrocyte membranes. // Biochem. J. 1997. — V. 323. — P. 765−776.
  426. Uysal M., Aykac G., Kocak-Toker N. Lipid peroxidation in liver, plasma, and erythrocytes of rats chronically treated with ethanol. // Biochem. Med. 1985. — V.34, N3. — P. 370.
  427. Vanderkooi J.M., Calles J.B. Pyren. A probe of lateral diffusion in the hydrophobic region of membranes. // Biochem. 1984. — V.13. -P. 4000 — 4006.
  428. Vainshtein B.K. The quarternary structure of catalase. // Alcohol and aldehyde metabolizing system. New -York, 1974. — P. 533.
  429. Vestergaard-Bogind В., Bennekou P. Calcium-induced oscillation in K±conductance and membrane potential of human erythrocytesmediated by the ionophore A23187. // Biochem. Biophys. Acta. -1982. -V.688. P. 37−44.
  430. Vickers M.D. Drugs in anaesthetic practice. // Sixth. Ed. Butterworths. — 1984. — P. 390−392.
  431. Videla L.A. Hepatic antioxidant-sensitive respiration. Effect ethanol, iron and mitochondrial uncoupling. // Biochem. J. 1984. -V.223, N3.-P. 885−891.
  432. ViolaR.E., Hartzell C.R., Villafranca J.J. Stereoscopic studies on the copper (II) complexes of carnosine. // J. Inorg. Biochem. -1979.-V. 10.-P. 281−292.
  433. Von Wartburg J.P., Bethune J.L., Vallee B.L. Human liver alcohol dehydrogenase: kinetic and physico-chemical properties. // Biochem. 1964. -V.9. — P. 1775−1782.
  434. Waring A.J., Rottenberg H., Ohnishi Т., Rubin E. The effect of chronic ethanol consumption on temperature-dependent physical properties of liver mitochondrial membranes. // Arch. Biochem. Biophys. 1982. — V.215. — P. 51−61.
  435. Westcott J.J., Murphy R.C. Effect of alcohols on arachidonic acid metabolism in murine mastocytoma cells and human polymorphonuclear leukocytes. // Biochem. Biophys. Acta. 1985. -V.833. — P. 262−271.
  436. Wilkinson D.A. Examination of alcoholics by CT scans: a critical review. // Alcoholism. 1982. — V.6. — P. 31−45.
  437. Winterbourn C.C., Stern A. Human red cells scavenge extracellular H202 and inhibit formation of HOCI and OH*. // J.CIin.lnvest. 1987. — V.80. — P. 1486.
  438. Wirkner K., Poelchen W., Koles L., Muhlberg K., Scheibler P., Allgaier C., Iltes P. Ethanol-induced inhibition of NMDA receptor channels. // Neurochem. Int. 1999. — V.35. — P. 153−162.
  439. Woimant B. Lutte contre I’alcoholisme. Resultate de la surveillance de 500 malades pendant eing aus. // Concours med. -1984. V. 106, N29. — P.2757−2760.
  440. Wood W.G., Lahiri S., Gorka C., Armbrecht H.J., Strong R. In vitro effects of ethanol on erythrocyte membrane fluidity of alcoholic patients: an electron spin resonance study. // Ale. Clin. Exp. Res. -1987. -V. 11, N4.-P. 332−335.
  441. Worral S., de Jersey J, Wilce P.A., Seppa K., Sillanaukee P. Studies on the usefulness of acetaldehyde modified proteins and associated antibodies as markers of alcohol abuse. // Ale. Ale. -1994. Suppl., N2. — P. 503−507.
  442. Xu D. Thiele G.M., Beckenhauer J.L., Klassen L.W., Sorrell M.F., Tuma D.J. Detection of circulating antibodies to malondialdehyde-acetaldehyde adducts in ethanol-fed rats. // Gastroenterology. -1998. -V. 115, N3. P. 686−692.
  443. Zawad J.S., Brown F.C. Beta-adrenergic coupled phospholipid methylation. A possible role in withdrawal from chronic ethanol. // Biochem. Pharmacol. 1984. — V.33, N23. — P. 3799−3805.
  444. Zorzano A., Ruiz del Arbol L., Herrera E. Effect of liver disorders on ethanol elimination and alcohol and aldehyde dehydrogenase activities in liver and erythrocytes. // Clinical Science. 1989. -V.76. — P. 51−57.
  445. Я выражаю благодарность всем членам моей семьи, чья поддержка и терпение явились необходимым условием выполнения данной работы.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!