Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Регуляция экскреторной функции печени крысы при холестазе: роль пролактина

Диссертация: Регуляция экскреторной функции печени крысы при холестазе: роль пролактина
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Исследовать и анализировать характер происходящих изменений (компенсаторные и повреждающие) при патологиях гепатобилиарной системы, соотношение которых меняется от длительности патологии при изучении влияния пролактина и его действия через собственные рецепторы важно: о проводить исследования на животных обоих полов, учитывая отличия в паттерне секреции гормона и в уровне экспрессии рецепторов… Читать ещё >

Содержание

  • ЦЕЛИ И ЗАДАЧИ
  • Глава 1. ЭКСКРЕТОРНАЯ ФУНКЦИЯ ПЕЧЕНИ И ЕЕ ГОРМОНАЛЬНАЯ РЕГУЛЯЦИЯ (обзор литературы)
    • 1. 1. СТРОЕНИЕ И ФУНКЦИИ ПЕЧЕНИ
    • 1. 2. ОБРАЗОВАНИЕ И СЕКРЕЦИЯ ЖЕЛЧИ
      • 1. 2. 1. Структура желчевыводящих путей
      • 1. 2. 2. Функции и состав желчи
      • 1. 2. 3. Механизмы формирования желчетока: роль гепатоцитов и холангиоцитов
      • 1. 2. 4. Метаболизм билирубина. Транспортеры билирубина и его производных в клетках печени
      • 1. 2. 5. Участие гормонов в регуляции кислотонезависимого желчетока
    • 1. 3. ОБСТРУКТИВНЫЙ ХОЛЕСТАЗ: ПАТОГЕНЕЗ И РОЛЬ ГОРМОНОВ
    • 1. 4. ПРОЛАКТИН И ЕГО ДЕЙСТВИЕ НА ПЕЧЕН
      • 1. 4. 1. Функции пролактина в организме
      • 1. 4. 2. Особенности секреции пролактина. Гиперпролактинемия
      • 1. 4. 3. Структура и изоформы рецептора пролактина. Механизм проведения сигнала пролактина через собственные рецепторы
      • 1. 4. 4. Особенности экспрессии мРНК рецептора пролактина в клетках печени
  • ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
    • 2. 1. БИОЛОГИЧЕСКИЙ МАТЕРИАЛ
      • 2. 1. 1. Экспериментальные группы животных
      • 2. 1. 2. Обоснование контрольных групп
      • 2. 1. 3. Обоснование отбора крыс через 14 дней после перевязки общего желчного протока. Особенности модели обструктивного холестаза
    • 2. 2. МАТЕРИАЛЫ
      • 2. 2. 1. Реактивы
    • 2. 3. ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫЕ МЕТОДЫ
      • 2. 3. 1. Хирургические операции
        • 2. 3. 1. 1. Кастрация самцов
        • 2. 3. 1. 2. Овариэктомия самок
        • 2. 3. 1. 3. Дренирование и перевязка общего желчного протока крысы
        • 2. 3. 1. 3. 1. Дренирование и перевязка общего желчного протока крысы в норме
        • 2. 3. 1. 3. 2. Дренирование общего желчного протока крысы в начальный период декомпрессии
        • 2. 3. 1. 4. Трансплантация гипофиза под капсулу почки — модель создания гиперпролактинемии
      • 2. 3. 2. Введение препаратов
        • 2. 3. 2. 1. Введение бромокриптина
      • 2. 3. 3. Методы разделения клеток
        • 2. 3. 3. 1. Дифференциальное выделение гепатоцитов и холангиоцитов
        • 2. 3. 3. 1. 1. Общие стадии разделения клеток печени
        • 2. 3. 3. 1. 2. Выделение гепатоцитов
        • 2. 3. 3. 1. 3. Выделение холангиоцитов
        • 2. 3. 3. 1. 4. Проверка качества выделения клеток
      • 2. 3. 4. Биохимические и физиологические методы
        • 2. 3. 4. 1. Определение концентрации билирубина в желчи, сыворотке и моче крыс
        • 2. 3. 4. 2. Определение скорости желчетока
        • 2. 3. 4. 2. 1. Определение скорости желчетока крысы в норме
        • 2. 3. 4. 2. 2. Определение скорости желчетока крысы в начальный период декомпрессии
        • 2. 3. 4. 3. Вычисление скорости экскреции общего билирубина с желчью
      • 2. 3. 5. Молекулярно-биологические методы
        • 2. 3. 5. 1. Выделение РНК из изолированных клеток
        • 2. 3. 5. 2. Обработка РНК ДНКазой I
        • 2. 3. 5. 3. Очистка РНК на колонках RNeasy Plus Mini Kit
        • 2. 3. 5. 4. Синтез первой цепи кДНК
        • 2. 3. 5. 5. Полимеразная цепная реакция в «реальном» времени (ПЦР-РВ) в присутствии интеркалирующего красителя SYBR Green I
        • 2. 3. 5. 6. Анализ результата ПЦР-РВ
      • 2. 3. 6. Статистическая обработка данных
  • ГЛАВА 3. ВЛИЯНИЕ ПРОЛАКТИНА НА ПОКАЗАТЕЛИ ЭКСКРЕТОРНОЙ ФУНКЦИИ ПЕЧЕНИ САМОК КРЫС ПРИ ИНДУКЦИИ И СНЯТИИ ХОЛЕСТАЗА
    • 3. 1. ПОКАЗАТЕЛИ ЭКСКРЕТОРНОЙ ФУНКЦИИ ПЕЧЕНИ У САМОК КРЫС ПРИ НОРМАЛЬНОЙ РАБОТЕ ПЕЧЕНИ
      • 3. 1. 1. Концентрация билирубина в желчи, сыворотке, моче
      • 3. 1. 2. Скорости желчетока и экскреции билирубина с желчью
    • 3. 2. ВЛИЯНИЕ ОБСТРУКТИВНОГО ХОЛЕСТАЗА НА ПОКАЗАТЕЛИ ЭКСКРЕТОРНОЙ ФУНКЦИИ ПЕЧЕНИ У САМОК КРЫС
      • 3. 2. 1. Концентрация билирубина в желчи, сыворотке, моче
    • 3. 3. ИЗМЕНЕНИЕ ПОКАЗАТЕЛЕЙ ЭКСКРЕТОРНОЙ ФУНКЦИИ ПЕЧЕНИ САМОК В НАЧАЛЬНЫЙ IЮСТХОЛЕСТАЗНЫЙ ПЕРИОД
      • 3. 3. 1. Концентрация билирубина в желчи, сыворотке, моче
      • 3. 3. 2. Скорости желчетока и экскреции билирубина с желчью
    • 3. 4. ВЛИЯНИЕ ГИПЕРПРОЛАКТИНЕМИИ НА ПОКАЗАТЕЛИ ЭКСКРЕТОРНОЙ ФУНКЦИИ ПЕЧЕНИ САМОК КРЫС С НОРМАЛЬНОЙ ФУНКЦИЕЙ ПЕЧЕНИ И НА ФОНЕ ХОЛЕСТАЗА
      • 3. 4. 1. Влияние гиперпролактинемии на концентрацию билирубина в желчи, сыворотке, моче
      • 3. 4. 2. Влияние гиперпролактинемии на скорости желчетока и экскреции билирубина с желчью
    • 3. 5. ВЛИЯНИЕ ДЛИТЕЛЬНОЙ ГИПЕРПРОЛАКТИНЕМИИ НА ПОКАЗАТЕЛИ ЭКСКРЕТОРНОЙ ФУНКЦИИ ПЕЧЕНИ САМОК КРЫС С НОРМАЛЬНОЙ ФУНКЦИЕЙ ПЕЧЕНИ И НА ФОНЕ ХОЛЕСТАЗА
      • 3. 5. 1. Влияние длительной гиперпролактинемии на концентрацию общего билирубина в желчи, сыворотке, моче
      • 3. 5. 2. Влияние длительной гиперпролактинемии на скорость желчетока
  • ГЛАВА 4. ПОЛОВЫЕ ОСОБЕННОСТИ ПОКАЗАТЕЛЕЙ ЭКСКРЕТОРНОЙ ФУНКЦИИ ПЕЧЕНИ КРЫС ПРИ ИНДУКЦИИ И СНЯТИИ ХОЛЕСТАЗА И ИХ ИЗМЕНЕНИЕ ПРИ ГИПЕРПРОЛАКТИНЕМИИ
    • 4. 1. ПОЛОВЫЕ ОСОБЕННОСТИ ПЕРЕРАСПРЕДЕЛЕНИЯ ПУЛОВ ОБЩЕГО БИЛИРУБИНА ПРИ ИНДУКЦИИ И СНЯТИИ ХОЛЕСТАЗА У КРЫС
      • 4. 1. 1. Половые особенности концентрации общего билирубина в желчи, сыворотке, моче
      • 4. 1. 2. Половые особенности скорости желчетока и экскреции билирубина с желчью крыс в начальный период декомпрессии
    • 4. 2. ИЗМЕНЕНИЕ ПОЛОВЫХ ОСОБЕННОСТЕЙ ПЕРЕРАСПРЕДЕЛЕНИЯ ПУЛОВ БИЛИРУБИНА ПРИ ИНДУКЦИИ И СНЯТИИ ХОЛЕСТАЗА НА ФОНЕ ГИПЕРПРОЛАКТИНЕМИИ КРЫС
      • 4. 2. 1. Влияние гиперпролактинемии на половые особенности концентрации общего билирубина в желчи, сыворотке, моче крыс
      • 4. 2. 2. Влияние гиперпролактинемии на половые особенности скоростей желчетока и экскреции билирубина с желчью в начальный постхолестазный период у крыс
  • Глава 5. ВЛИЯНИЕ ДЛИТЕЛЬНОЙ ГИПЕРПРОЛАКТИНЕМИИ НА ЭКСПРЕССИЮ ИЗОФОРМ РЕЦЕПТОРА ПРОЛАКТИНА В ГЕПАТОЦИТАХ И ХОЛАНГИОЦИТАХ САМОК КРЫС ПРИ ХОЛЕСТАЗЕ
    • 5. 1. ВЛИЯНИЕ ДЛИТЕЛЬНОЙ ГИПЕРПРОЛАКТИНЕМИИ НА ЭКСПРЕССИЮ ИЗОФОРМ РЕЦЕПТОРА ПРОЛАКТИНА В ГЕПАТОЦИТАХ САМОК КРЫС ПРИ ХОЛЕСТАЗЕ
    • 5. 2. ВЛИЯНИЕ ДЛИТЕЛЬНОЙ ГИПЕРПРОЛАКТИНЕМИИ НА ЭКСПРЕССИЮ ИЗОФОРМ РЕЦЕПТОРА ПРОЛАКТИНА В ХОЛАНГИОЦИТАХ САМОК КРЫС ПРИ ХОЛЕСТАЗЕ
  • Глава 6. ПОИСК МОЛЕКУЛЯРНЫХ МИШЕНЕЙ ДЕЙСТВИЯ ПРОЛАКТИНА НА ЭКСКРЕТОРНУЮ ФУНКЦИЮ ПЕЧЕНИ САМОК КРЫС НА ФОНЕ ХОЛЕСТАЗА
    • 6. 1. Влияние гиперпролактинемии на экспрессию мРНК транспортера
  • MRP2 клеток печени разного типа
    • 6. 1. 1. Влияние гиперпролактинемии на экспрессию мРНК транспортера MRP2 гепатоцитов
    • 6. 1. 2. Влияние гиперпролактинемии на экспрессию мРНК транспортера MRP2 холангиоцитов
    • 6. 2. Влияние гиперпролактинемии на экспрессию мРНК транспортера
  • MRP3 клеток печени разного типа
    • 6. 2. 1. Влияние гиперпролактинемии на экспрессию мРНК транспортера MRP3 гепатоцитов
    • 6. 2. 2. Влияние гиперпролактинемии на экспрессию мРНК транспортера MRP3 холангиоцитов
    • 6. 3. Влияние гиперпролактинемии на экспрессию мРНК CFTR в холангиоцитах самок крыс на фоне холестаза
  • Глава 7. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ

Регуляция экскреторной функции печени крысы при холестазе: роль пролактина (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Образование желчи — жизненно важная функция организма, ее нарушение ведет к синдрому холестаза. По современным представлениям под холестазом понимают нарушение синтеза, секреции и оттока желчи (Подымова, 2004). Синдром холестаза встречается при различных состояниях, которые могут быть объединены в 2 большие группы: 1) нарушение образования желчи (вирусные, алкогольные, лекарственные и токсические поражения печени, холестаз беременных, цирроз, бактериальные инфекции) — 2) нарушение тока желчи (первичный билиарный цирроз, болезнь Кароли, первичный склерозирующий холангит, туберкулез, реакция отторжения трансплантата). Заболевания печени, сопровождающиеся холестазом, зависят от пола и многие из них являются преимущественно женскими (Радченко и др., 2005). Пик желчекамнеобразования у женщин совпадает с репродуктивным периодом. Физиологическая беременность как пусковой момент патологических процессов в желчевыводящей системе послужила поводом к причислению заболеваний желчного пузыря ко «вторым женским заболеваниям после гинекологических» (Торчинов и др., 2006).

За последнее десятилетие расширилось понимание патогенеза холестаза. Появляется много данных о взаимосвязанной работе ряда транспортеров гепатобилиарной системы в печени, почках и кишечнике, регуляции транспортеров, участвующих в образовании желчи и нарушениях при холестазе. Показано, что не все изменения в экспрессии транспортеров гепатобилиарной системы носят «про-холестатический», «негативный» характер, — некоторые перестройки в клетках печени и почках представляют собой компенсаторный (анти-холестатический) механизм, защищающий организм от повреждений (Zollner and Trauner, 2006). Половая дифференцировка показана в уровне экспрессии и регуляции транспортеров, участвующих в процессе желчеобразования. Показано участие половых гормонов в регуляции работы гепатобилиарной транспортной системы при холестазе (Shimizu et.al., 2007).

Билирубин — одни из физиологически значимых анионов, являющийся важным компонентом желчи, селективно захватывается транспортерами базолатеральной мембраны гепатоцита из крови, с последующей конъюгацией с глюкуроновой кислотой. Скорость транспорта конъюгированного билирубина из печени в желчь лимитируется его экскрецией через транспортеры каналикулярной (апикальной) мембраны гепатоцита (Решетняк, 2003).

Чувствительность печени к пролактину, одному из женских половых гормонов, оценивая по уровню его рецепторов, очень высока и сопоставима с чувствительностью молочной железы (Varas and Jahn, 2005; Bogorad et.al., 2006; Simon-Holtorf et.al., 2006). Известны отдельные молекулярные мишени действия пролактина на печень (Cao et.al., 2004; Taffetani et.al., 2007), однако его конечные физиологические эффекты на желчевыделительную и другие функции печени остаются неясными. Экспрессия рецепторов пролактина в печени зависит от пола: у особей женского пола уровень рецепторов данного гормона выше, чем у мужского (Розен и др., 1991 — Smirnova et al., 1994).

Пролактин осуществляет свои эффекты, связываясь со специфическими рецепторами к данному гормону и активируя внутриклеточные сигнальные молекулы. Известны несколько функционально различных изоформ рецептора пролактина. Длинная изоформа рецептора опосредует основные изученные эффекты пролактина посредством активации конститутивно ассоциированной с рецептором тирозишшназы JAK2 (Janus kinase 2) и транскрипционных факторов STAT (Signal Transducer and Activator of Transcription), главным образом STAT5 (Bole-Feysot et al., 1998). Короткие изоформы рецептора пролактина не способны активировать STAT5 белки и являются негативными регуляторами JAK2/STAT5 сигнализации, из-за образования гетеродимеров с длинной формой рецептора, препятствующих активации STAT-каскада. Однако недавно было показано, что короткие изоформы рецептора пролактина обладают достаточно широким спектром собственных эффектов, связанных с тканеспецифическими сигналами пролактина, с активацией/ингибированием многих транскрипционных факторов независимо от действия гормона через длинную изоформу рецептора пролактина. (Devi et.al., 2009а, b). Действие пролактина на клетки определяется типом ткани-мишени, а также соотношением изоформ рецептора гормона (Huang et.al., 2008).

Ранее в нашей лаборатории было показано, что обструктивный холестаз дифференциально регулирует характер экспрессии рецепторов пролактина в гепатоцитах и холангиоцитах у крысы: в гепатоцитах он действует преимущественно, на соотношение изоформ рецепторов пролактина, повышая долю длинной изоформы независимо от пола животных. Вхолангиоцитах он существенно повышает общий уровень мРНК рецепторов пролактина, повышая уровень длинной изоформы и увеличивая экспрессию короткой (Богорад, 2004; Остроухова, 2008). Однако роль пролактина и его рецепторов в процессе патогенеза синдрома холестаза и зависимости от пола остается не ясной.

Исходя из вышесказанного, целью настоящей работы было исследование регуляции экскреторной функции печени крысы при холестазе для оценки вклада пролактина в развитие патогенеза данного синдрома.

Для реализации поставленной цели нами были сформулированы следующие задачи:

1. Исследовать изменения концентрации билирубина в желчи, крови, моче, скорости желчетока и скорости экскреции билирубина с желчью, относительной массы печени (в дальнейшем — показатели экскреторной функции печени) при холестазе и в начальный постхолестазный период у самок крыс.

2. Изучить изменения показателей экскреторной функции печени самок крыс в зависимости от длительности гиперпролактинемии при холестазе и в начальный постхолестазный период.

3. Проанализировать половые особенности показателей экскреторной функции печени при индукции и снятии холестаза и их изменение на фоне гиперпролактинемии.

4. Проанализировать влияние длительной гиперпролактинемии на экспрессию мРНК изоформ рецептора пролактина и их соотношение в гепатоцитах и холангиоцитах самок крыс при холестазе.

5. Осуществить поиск возможных молекулярных мишеней действия пролактина на гепатоциты и холангиоциты самок крыс на фоне холестаза при длительной гиперпролактинемии.

В результате проведенного исследования установлено, что на фоне холестаза крыс действие пролактина на скорость желчетока и концентрацию билирубина в желчи существенно усиливается по сравнению с нормой и зависит от длительности гиперпролактинемии. В начальный постхолестазный период впервые выявлена половая зависимость в показателях экскреторной функции печени: у самок скорость восстановленного желчетока ниже, а концентрация билирубина в желчи выше, чем у самцов. Показано^ что в условиях гиперпролактинемии на фоне обструктивного холестаза исчезают половые различиям концентрации билирубина в постхолестазной желчи и скорости желчетока и выявляются половые особенности альтернативных путей выведения билирубина у крыс. Впервые показано, что при холестазе в сочетании с длительной гиперпролактинемией в гепатоцитах самок крыс чувствительность к пролактину увеличивается за счет равномерного усиления экспрессии обеих изоформ рецептора при неизменном соотношении изоформ, а в холангиоцитах увеличивается доля короткой изоформы рецептора при неизменном уровне длинной. Установлено, что длительная гиперпролактинемия на фоне холестаза у самок крыс не оказывает существенного влияния на экспрессию мРНК транспортера MRP3 базолатеральной мембраны гепатоцитов и холангиоцитов, снижает экспрессию мРНК транспортера MRP2 апикальной мембраны гепатоцитов, не действует на экспрессию мРНК этого транспортера в холангиоцитах и существенно повышает экспрессию мРНК специфичного для апикальной мембраны холангиоцитов хлорного канала CFTR.

ТЕОРЕТИЧЕСКАЯ И ПРАКТИЧЕСКАЯ ЗНАЧИМОСТЬ РАБОТЫ:

Полученные данные важны для фундаментальной и клинической гепатологии в плане понимания компенсаторных и патологических изменений функций различных типов клеток печени в условиях обструктивного холестаза и роли пролактина в этих изменениях. Результаты исследования позволяют направленно осуществлять поиск транскрипционных факторов, участвующих в патогенезе холестаза при тканеспецифическом действии пролактина. Результаты работы свидетельствуют о необходимости учета возможного двоякого (прои антихолестатического) действия пролактина в патогенезе данного синдрома.

Обнаруженные нами половые особенности в исследуемых показателях экскреторной функции печени позволяют обосновать новые подходы к зависимой от пола терапии холестаза в будущем, а рецепторы пролактина могут служить одной из потенциальных мишеней терапевтического воздействия. Эксперименты с длительной гиперпролактинемией в сочетании с холестазом у самок крыс могут служить в качестве модели для изучения встречающегося у людей синдрома «известковой желчи». Используемую нами модель сочетания гиперпролактинемии и холестаза у самок крыс можно применять при изучении синдрома холестаза беременных.

ВЫВОДЫ.

1. Действие пролактииа на скорость желчетока и концентрацию билирубина в желчи существенно усиливается на фоне холестаза крыс по сравнению с нормой.

2. Влияние гиперпролактинемии на перераспределение пулов билирубина при холестазе самок зависит от ее длительности: при 2-х-недельном воздействии содержание билирубина растет в желчи и крови, а скорость восстановленного желчетока замедляется, при 4-х-недельном — концентрация билирубина резко снижается в желчи и приходит к контрольному уровню в крови, а желчеток не восстанавливается.

3. В начальный постхолестазный период выявлена половая зависимость в показателях экскреторной функции печени: у самок скорость восстановленного желчетока ниже, а концентрация билирубина в желчи выше, чем у самцов.

4. В условиях гиперпролактинемии на фоне обструктивного холестаза исчезают половые различия в концентрации билирубина в постхолестазной желчи и скорости желчетока и выявляются половые особенности альтернативных путей выведения билирубина у крыс.

5. Влияние длительной гиперпролактинемии на уровень и соотношение мРНК короткой и длинной изоформ рецептора пролактина при холестазе самок крыс зависит от типа клеток печени: в гепатоцитах чувствительность к пролактину увеличивается за счет равномерного усиления экспрессии обеих изоформ рецептора при неизменном соотношении изоформ, в холангиоцитах увеличивается доля короткой изоформы рецептора при неизменном уровне длинной.

6. Длительная гиперпролактинемия на фоне холестаза самок крыс: а) достоверно снижает экспрессию мРНК транспортера гепатоцитов МЯР2, не действуя на экспрессию мРНК данного транспортера в холангиоцитахб) не оказывает существенного влияния на экспрессию мРНК транспортера гепатоцитов и холангиоцитов МИРЗв) существенно повышает экспрессию мРНК специфичного для холангиоцитов хлорного канала СРТ11.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Полученные нами данные свидетельствуют о существенной роли иролактина в регуляции экскреторной функции печени крысы при холестазе, при этом: а) исчезают половые различия ряда показателей экскреторной функции печени, б) снижается скорость желчетока при декомпрессии желчного протока, в) изменяется уровень и соотношение изоформ рецептора пролактина, зависимое от типа клеток печени, г) изменяется экспрессия мРНК ключевых транспортеров, определяющих кислотонезависимый желчеток и транспорт билирубина в желчь.

Результаты нашей работы показали, что обструктивный холестаз может проявлять и усиливать половую зависимость ряда показателей экскреторной функции печени, которая скрыта в норме. Проведенная работа свидетельствует о том, что ползависимость функций печени может усиливаться при патологии.

Важность пролактина и запускаемых им сигнальных «тканеспецифичных» путей в регуляции изменения и восстановления экскреторной функции печени при холестазе и в начальный постхолестазный период кажется нам несомненной. Обнаруженные нами половые особенности в исследуемых показателях экскреторной функции печени позволяют обосновать новые подходы к зависимой от пола терапии холестаза в будущем, а рецепторы пролактина могут служить одной из потенциальных мишеней терапевтического воздействия. При этом мы показали возможное двоякое действие прои антихолестатическое в патогенезе данного синдрома. Возможно, модель длительной гиперпролактинемии в сочетании с холестазом у самок крыс в будущем может рассматриваться в качестве модели для изучения синдрома «известковой желчи», встречающегося у людей, что требует проведения дальнейших исследований.

Анализ литературных данных и полученных нами результатов показал, что при изучении механизмов регуляции образования и секреции желчи важно:

• учитывать видовые (человек, крыса, мышь) отличия в работе транспортеров, ферментов, строении гепатобилиарной системы.

• проводить исследования на животных обоих полов.

• учитывать взаимосвязанные изменения работы печени, почек и кишечника при нарушениях гепатобилиарной системы.

• исследовать как гепатоциты (учитывая важность зонального расположения основных клеток печени), так и холангиодиты (учитывая их дифферендировку на крупные и мелкие).

• исследовать функционально-различные мембраны полярных клеток: гепатоцитов и холангиоцитов, — апикальную и базальную.

• при анализе результатов по уровню экспрессии мРНК транспортеров гепатобилиарной системы учитывать внутриклеточный пул транспортеров и работающие транспортеры на мембране клеток.

• исследовать и анализировать характер происходящих изменений (компенсаторные и повреждающие) при патологиях гепатобилиарной системы, соотношение которых меняется от длительности патологии при изучении влияния пролактина и его действия через собственные рецепторы важно: о проводить исследования на животных обоих полов, учитывая отличия в паттерне секреции гормона и в уровне экспрессии рецепторов гормона о исследовать соотношение изоформ рецептора пролактина (учитывая зависимость уровня экспрессии и соотношения изоформ рецепторов и концентрации пролактина в крови от стадии цикла и физиологического состояния у самок крыс) для оценки вклада возможных сигнальных путей действия гормона о учитывать зависимость эффектов действия пролактина от длительности воздействия гиперпролактинемии о учитывать различное влияние пролактина на транскрипционные факторы в зависимости от типа ткани/клеток В ближайших перспективах продолжения работы по исследованию роли пролактина в регуляции экскреторной функции печени при патологии гепатобилиарной системы можно отметить: исследование уровня экспрессии и соотношения изоформ рецептора пролактина в различных типах клеток печени крысы при непродолжительной гипери гипопролактинемии на фоне холестаза и его снятия изучение работы транспортеров печени и почек исследование участия возможных транскрипционных факторов различных типов клеток печени крысы для понимания путей проведения сигнала при действии пролактина через собственные рецепторы при холестазе.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Р.Л. Клеточная специфичность регуляции экспрессии рецепторов пролактина в печени крыс: Дис. Канд. Биол.наук. Москва. 2004. — 130 с.
  2. И.И., Мельниченко Г. А., Романцова Т. И. Синдром гиперпролактинемии. М.- Тверь: ООО «Издательство „Триада“. 2004. — 304с.
  3. Т.Ю., Куликов A.B., Богорад Р. Л. и др. Особенности экспрессии рецепторов пролактина в печени человека при холестазе разной этиологии и вторичном раке печени // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины — 2003 -Т.135 № 6 — С.664−668
  4. P.A., Свиридов A.B., Грачев С. В. Холестероз желчного пузыря: современный взгляд на патогенез, клинику, диагностику и лечение.- М.: ООО „Медицинское информационное агенство“ 2005 — 200с.
  5. Я.Д. Практикум по эндокринологии // М.: Высшая школа -1969 С.174−175
  6. Т., Богорад Р., Смирнов А., Туровецкий В., Смирнова О. Влияние периовуляторного дисбаланса пролактина на экспрессию рецепторов пролактина в клетках яичника крысы // Онтогенез 2000. Том 31, № 2, с. 144−151
  7. У. Практическое руководство по заболеваниям желчных путей. — М.: ГЭОТАР-МЕД 2001. — 264с.
  8. И.В., Верткин А. Л. Синдром „известковой желчи“ // Топ-медицина —1997 № 2 — С.35−36
  9. Ю. Масюк А. И. Молекулярные и клеточные механизмы желчеотделительной функции печени // Успехи физиол. наук 1990 — Т.21 — С. 18−35
  10. П.Орлова А. Н., Смирнов А. Н., Смирнова О. В. Роль пролактина в регуляции некоторых функций клеток печени после перевязки общего желчного протока И Бюлл. Эксп. Биол. Мед. 1999а — Т. 127 — С.573−575
  11. А.Н., Смирнова О. В., Туровецкий В. Б., Смирнов А. Н. Влияние ингибитора секреции пролактина — бромокриптина на интенсивность экспрессии рецепторов пролактина в клетках общего желчного протока // Бюлл. эксп. биол. мед. —1998 Т. 126 — № 7 — С. 52−55
  12. А.Н., Смирнова О. В., Туровецкий В. Б., Смирнов А. Н. Ядерная манифестация рецепторов пролактина в гепатоцитах крыс и влияние на нее пролактина // Бюлл. эксп. биол. мед. — 19 996 Т. 127 — С.579−582
  13. Т.Ю. Особенности экспрессии рецепторов пролактина в опухолях печени разного клеточного происхождения: Дис. Канд. Биол. наук. Москва. 2008. 159с.
  14. Л.Е., Костина Н. Е., Шестопалова Л. В. Нарушение обмена билирубина и развитие гипербилирубинемии у новорожденных крысят под влиянием несимметричного диметилгидразина (гептила)//Бюллетень СО РАМН. 2005 № 4(118).
  15. О.М., Смирнов А. Н., Смирнова О. В. Рецепторы пролактина в клетках желчных протоков в онтогенезе крыс // Бюлл. Эксп. Биол. Мед. 1996 — Т. 122 — С.669−672
  16. С.Д. Болезни печени // М.: Медицина 1998
  17. С.Д. Внутрипеченочный холестаз: патогенез и лечение с современных позиций // Гастроэнтерология 2004 — Т 06 — N2
  18. В.Г., Шабров А.В, Зиновьева E.H. Основы клинической гепатологии. Заболевания печени и билиарной системы // СПб: Издательство „Диалект" — М.: Издательство „БИНОМ“ 2005 — 864с.
  19. Д.В., Саматов Г. А., Трофимов Д. Ю. ПЦР „в реальном времени“. -М.: БИНОМ. Лаборатория знаний 2009 — 223 с.
  20. В.И. Механизмы желчеобразования и первичный билиарный цирроз: Монография. М.: Издательский дом „Красная площадь“ — 2003 — 144с.
  21. В.Б. Основы эндокринологии. М.: Издательство МГУ — 1994
  22. В. Б. Матарадзе Г. Д., Смирнова О. В., Смирнов А. Н. Половая дифференцировка функций печени. М.: Медицина — 1991
  23. П.М. и Лонина Д.А. Гетерогенность 5'-нетранслируемой области мРНК рецептора пролактина печени крыс // Мол. Биол. — 1996 Т.30 — С.330−338
  24. П.М. Структура и экспрессия генов рецепторов гормона роста и пролактина // Вестник Акад. Мед. Наук 1994 — Т. 12 — С. 19−23
  25. А.Н. Элементы эндокринной регуляции. М.: ГЭОТАР-Медиа —2006
  26. О.В., Богорад Р. Л. Короткие формы мембранных рецепторов: образование и роль в проведении гормонального сигнала // Биохимия 2004 — Т.69 — С.437−450
  27. Г .Т., Назареико Т. А., Лопатина Т. В. и др. Эндокринные формы бесплодия у женщин: диагностика и лечение. Учебное пособие для системы послевузовского образования врачей/ М.: Издательский дом „Русский врач“, 2008. — 142с.
  28. A.M., Кантемирова З. Р., Лисин С. В., Петухов В. А. Беременность и патология желчного пузыря. М.: МАКС Пресс, 2006. — 156 с.
  29. Хем А., Кормак В. Гистология. Т. 4. Пер. с англ. М.: Москва — 1983
  30. АН S., Edery М., Pellegrini I., Lesueur L., Paly J., Djiane J., and Kelly P.A. The NB2 form of prolactin receptor is able to activate a milk protein gene promoter. Mol. Endocrinol. 1992 — V. 6 — P. 1242−1248
  31. Ali S., Nouhi Z“ Chughtai N., Ali S. SHP-2 Regulates SOCS-l-mediated Janus Kinase-2 ubiquitination/degradation downstream of the prolactin receptor // J. Biol. Chem. 2003 — V. 278 — P.52 021−52 031
  32. Alpini G., Glaser S.S., Ueno Y., Pham L., Podila P.V., Caligiuri A., LeSage G., LaRusso N.F. Heterogeneity of the proliferative capacity of rat cholangiocytes after bile duct ligation // Am. J. Physiol. 1998 — V.274 — G.767−775
  33. Alpini G., Lenzi R., Zhai W.R., Slott P.A., Liu M.H., .Sarkozi L., Tavolini N. Bile secretory function in intrahepatic billiary epithelium in the rat // Am. J. Physiol. — 1989 V.257 -P.G124−133
  34. Alpini G., Phillips J.O., Vroman В., LaRusso N.F. Recent advances in the isolation of liver cells // Hepatology 1994a — V.20 — P.494−514
  35. Alpini G., Ulrich C.D., Philips J.O. Pham L.D., Miller L.J., LaRusso N.F. Upregulation of secretin receptor gene expression in rat cholangiocytes after bile duct ligation // Am. J. Physiol. 1994b — V.266 — G922−928
  36. Alvarez E.O., Banzan A.M. Behavioral actions of prolactin locally applied into the hyppocampus of adult female rats // J. Neural Transm. 1994 — V.95 — P.17−28
  37. Alvaro D., Mancino M.G., Onori P., Franchitto A., Alpini G., Francis H., Glaser S., Gaudio E. Estrogens and the pathophysiology of the biliary tree // World J. Gastroenterol. 2006 — V. 12 — P.3537−3545
  38. Alvaro D., Mennone A., Boyer J.L. Role of kinases and phosphatases in the regulation of fluid secretion and С1-/НСОЗ- exchange in cholangiocytes // Am. J. Physiol. -1997 —V.273 -G303−313
  39. Arden K.C., Boutin J.M., Djiane J., Kelly P.A., Cavenee W.K. The receptors for prolactin and growth hormone are localized in the same region of human chromosome 5 // Cytogenet. Cell. Genet. 1990 — V.53 — P.161−165
  40. Aronson DC, Chamuleau RA, Frederics W Reversibility of cholestatic changes following experimental common bile duct obstruction: fact or fantasy?// J.Hepatol. -1993 —V. 18 (1) -P.85−95
  41. Bachelot A. and Binart N. Reproductive role of prolactin // Reproduction -2007-V.133 — P.361−369
  42. Basman N. and Baker A. Basic function of the liver // Diseases of the liver and biliary tract // Eds. Gitnick G., Labrecque D.R., Mody F.G. St. Louis Mosby Year Book, 1992
  43. Beach J.E., Tyrey L. and Everett J.W. Serum prolactin and LH phase a of delayed versus direct pseudopregnancy in the rat // Endocrinology 1975 — V.96 — P. 12 411 248
  44. Belinsky MG, Dawson PA, Shchaveleva I, Bain LJ, Wang R, Ling V, Chen ZS, Grinberg A, Westphal H, Klein-Szanto A, Lerro A, Kruh GD. Analysis of the in vivo functions of Mrp3 // Mol Pharmacol. 2005 — Jul-68(l):160−8.
  45. Benhamouche S., Decaens T., Godard C., Chambrey R., Rickman D.S., Moinard C., Vasseur-Cognet M., Kuo C.J., Kahn A., Perret C., Colnot S. Ape tumor suppresser gene is the „zonation-keeper“ of mouse liver // Develop. Cell — 2006 — V.10 -P.759−770
  46. Ben-Jonathan N. and Hnasko R. Dopamine as a Prolactin (PRL) Inhibitor // Endocrine Reviews 2001 — V.22 — P.724−763
  47. Berdiev BK, Qadri YJ, Benos DJ. Assessment of the CFTR and ENaC association // Mol Biosyst. 2009. — V.5(2) — P. 123−127
  48. Berlanga J.J., Fresno-Vara L.A., Marti-Perez J., Garcia-Ruiz J.P. Prolactin receptor is associated with c-src kinase in rat liver // Mol. Endocrinol. —1995 — V.9 — P. 12 611 467
  49. Binart N., Imbert-Bollore P., Baran N., Viglietta C., Kelly P.A. A short form of the prolactin (PRL) receptor is able to rescue mammopoiesis in heterozygous PRL receptor mice // Mol. Endocrinol. 2003 — V.17 -P. 1066−1074
  50. Bode H.P., Wang L.F., Cassio D., Leite M.F., St-Pierre M.V., Hirata K., Okazaki K., Sears M.L., Meda P., Nathanson M.H., Dufour M.H. Expression and regulation of gap junctions in rat cholangiocytes // Hepatology 2002 — V.36 — P.631−640
  51. Bogorad R.L., Ostroukhova T.Y., Orlova A.N., Rubtsov P.M., Smirnova O.V. Long isoform of prolactin receptor predominates in rat intrahepatic bile ducts and further increases under obstructive cholestasis // J Endocrinol 2006 — V. l 88 — P.345−354
  52. Bole-Feysot C., Goffln V., Edery M., Binart N. and Kelly P. A. Prolactin and its receptor: actions, signal transduction pathways and phenotypes observed in prolactin receptor knockout mice // Endocrin.Rev. 1998 — V. 19 — P.225−268
  53. Brandebourg T.D., Bown J.L., Ben-Jonathan N. Prolactin upregulates its receptors and inhibits lipolysis and leptin release in male rat adipose tissue // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2007 — V. 357(2): — P.408−13
  54. R., Krazeisen A., Moller G., Adamski J. 17beta-hydroxysteroid dehydrogenase type 7 an ancient 3-ketosteroid reductase of cholesterogenesis // Mol. Cell. Endocrinol. — 2001 — V. 171 — P. 199−204
  55. Bridges RS, Dunckel PT. Hormonal regulation of maternal behavior in rats: stimulation following treatment with ectopic pituitary grafts plus progesterone // Biol. Reprod. 1987 — V.37 (3) — P.518−526
  56. A.R., Putnam C.W., Evans R., Laird H.E. 2nd, Shah G.N., Montgomery D.W., Russell D.H. Hepatic protein kinase C: translocation stimulated by prolactin and partial hepatectomy // Life Sci. 1987 — V.41 — P.2827−2834
  57. Campbell G.S., Argetsinger L.S., Ihle J.N., Kelly P.A., Rillema J.A., Carter-Su C. Activation of JAK2 tyrosine kinase by prolactin receptors in Nb2 cells and mouse mammary gland explants // Proc. Nati. Acad. Sci. 1994 — V. 91 — P.5232−5236
  58. Cao J, Wood M, Liu Y, Hoffman T, Hyde J, Park-Sarge OK, Vore M.
  59. EstradioT represses’prolaetin-indueed expression of Na+/taurocholate eotransportingpolypeptide in liver cells through estrogen receptor-alpha and signal transducers andactivators of transcription 5a // Endocrinology. 2004 — V.145 (4) — P. 1739−1749
  60. Chang W.P., Clevenger C.V. Modulation of growth factor receptor functionby isoform heterodimerization // Proc. Natl. Acad. Sci. 1996 — V.93 — P.5947−5952
  61. Chang W.P., Ye Y., Clevenger C.V. Stoichiometric structure-functionanalysis of the prolactin receptor signaling domain by receptor chimeras // Mol. Cell. Biol. 1998 V.18 -P.896−905
  62. Cheng Y., Zhizhin I., Perlman R.L., Mangoura D. Prolactin-induced cellproliferation in PC12 cells depends on JNK but not ERK activation // J. Biol. Chem. 2000- V.275 — P.23 326−23 332
  63. Chu XY, Strauss JR, Mariano MA, Li J, Newton DJ, Cai X, Wang RW,
  64. Yabut J Hartley DP, Evans DC, Evers R. Characterization of mice lacking the multidrug resistance protein MRP2 (ABCC2) // J Pharmacol Exp Ther. 2006 — V.317(2) — P.579−89.
  65. Clevenger C.V., Furth C.A., Hankinson S.E., and Schuler L.A. The role ofprolactin in mammary carcinoma // Endocrine Reviews 2003 — V.24 — P. 1−27
  66. Clevenger C.V., Kline J.B. Prolactin receptor signal transduction // Lupus2001 —V.10-P.706−718
  67. Cui Y, Konig J, Leier I, Buchholz U, Keppler D. Hepatic uptake of bilirubinand its conjugates by the human organic anion transporter SLC21A6 // J Biol Chem.- 2001 1. V. 276(13) -P.9626−30
  68. Dardenne M., de-Moraes M. do C» Kelly P.A., Gagnerault M.C. Prolactinreceptor expression in human hematopoietic tissues analyzed by flow cytofluorometry //
  69. Endocrinology 1994 — V.134 — P.2108−2114
  70. Das R., Vonderhaar B.K. Activation of raf-1, MEK, and MAP kinase inprolactin responsive mammary cells // Breast Cancer Res. Treat. 1996a — V.40 — P.141−149
  71. Das R., Vonderhaar B.K. Involvment of SHC, GRB2, SOS and RAS in prolactin signal transduction in mammary epithelial cells // Oncogene 19 966 — V.131. P. l 139−1145
  72. Das R., Vonderhaar B.K. Transduction of prolactin’s growth signal through both long and short forms of the PRL receptors // Mol. Endocrinol. 1995 — V.9 — P.17 501 759
  73. Davis J.A., and Linzer D.H. Expression of multiple forms of the prolactin receptor in mouse liver // Mol. Endocrinology 1989 — V. 3 — P.674−680
  74. Deachapunya C., Poonyachoti S., Krishnamra N. Regulation of electrolyte transport across cultured endometrial epithelial cells by prolactin // Journal of Endocrinology 2008. — V. 197 — P.575−582
  75. Devost D., Boutin J.M. Autoregulation of the rat prolactin gene in lactotrophs // Mol.Cel.Endocrinology 1999 — V.158 — P.99−109
  76. Dif F., Saunier E., Demeneix B., Kelly P.A., Edery M. Cytokine-inducible SH2-containing protein suppresses PRL signaling by binding the PRL receptor // Endocrinology 2001 — V. 142 — P.5286−5293
  77. Djiane J., Daniel N., Bignon C., Paly J., Waters M., Vacher P., Dufy B. Prolactin receptor and signal transduction to milk protein genes // Proc.Soc.ExpBiol.Med. — 1994 V.206 — P.299−303
  78. Duan W.R., Farmer T.G., Albarracin C.T., Zhong L., and Gibori G. PRAP, a prolactin receptor associated protein: its gene expression and regulation in the corpus luteum // Endocrinology -1997 V.138 — P.3216−3221
  79. Erlinger S., Dhumeaux D. Mechanisms and control of secretion of bile water and electrolytes // Gastroenterology 1974 — V.66 -№ 2 — P281−304
  80. Fallon M.B., Brecher A.R., Balda MS, Matter K., Anderson J.M. Altered hepatic localization and expression of occludin after common bile duct ligation // Am. J. Physiol. 1995b — V.269 (4) — P. C1057-C1062
  81. Fallon M.B., Nathanson M.H., Mennone A., Saez J.C., Burgstahler A.D., Anderson J.M. Altered expression and function of hepatocyte gap junctions after common bile duct ligation in the rat // Am. J. Physiol. 1995 — V.268 — P. C1186-C1194
  82. Fevery J., B. Van Damme, R. Michiels, J. De Groote, K.P. Heirwegh Bilirubin conjugates in bile of man and rat in the normal state and in liver disease// The journal of clinical investigation, 51 — 1972
  83. Fleenor D., Arumugam R., Freemark M. Growth hormone and prolactin receptors in adipogenesis: STAT-5 activation, suppressors of cytokine signaling, and regulation of insulin-like growth factor I // Horm. Res. 2006 — V.66 — P. 101−110
  84. Frame M.K., de Feijter A.W. Propagation of mechanically induced intercellular calcium waves via gap junctions and ATP receptors in rat liver epithelial cells // Exp. Cell. Res. 1997 — V.230 — P.197−207
  85. Freeman M.E., Kanyicska B., Lerant A., Nagy G. Prolactin: structure, function, and regulation of secretion // Physiological Reviews 2000 — V.80 — P. 1523−1631
  86. Galsgaard E.D., Nielsen J.H., Moldrup A. Regulation of prolactin receptor gene expression in insulin-producing cells // J. Biol. Chem. 1999 — V.274 — P. 18 686−18 692
  87. Gaudio E., Onori P., Pannarale L., Alvaro D. Hepatic microcirculation and peribiliary plexus in experimental biliary cirrhosis: a morphological study // Gastroenterol. -1996 -V.lll-P.l 118−1124
  88. Gholson C.F., Bacon B.R. Practical hepatobiliary anatomy and physiology// Essentials of clinical hepatology / Eds. Gholson, C.F., Bacon B.R. St. Lowis: Mosby-Year Book, 1993
  89. Gitnick G., LaBrecque D.R., Moody F.G. Diseases of the Liver and Biliary Tract // Mosby-Year Book —1992
  90. Goffin V., Kelly P.A. Prolactin and growth hormone receptors // Clin. Endocrinol (Oxf) 1996 — V.45 — P. 247−255
  91. Gradilone S., Masyuk A., Splinter P., Banales J., Huang B., Tietz P., Masyuk T., LaRusso N. Cholangiocyte cilia express TRPV4 and detect changes in luminal tonicity inducing bicarbonate secretion // PNAS 2007 — Y.104 (48) — P19138−19 143
  92. Granato A, Gores G, Vilei M, Tolando R, Muraca M Bilirubin inhibits bile acid induced apoptosis in rat hepatocytes // Gut 2003 — V.52 -P. 1774−1778
  93. Gutzman J.H., Rugowski D.E., Schroeder M.D., Watters J.J. and Schuler L.A. Multiple Kinase Cascades Mediate Prolactin Signals to Activating Protein-1 in Breast Cancer Cells // Mol. Endocrinol. 2004 — V. 18 — P.3064−3075
  94. Harewood WJ, Gillin A, Hennessy A, Armistead J, Horvath JS, Tiller DJ. Biochemistry and haematology values for the baboon (Papio hamadryas): the effects of sex, growth, development and age // J Med Primatol. -1999. V. 28(1) — P. 19−31
  95. Herbert D.C., Ishikawa H., Rennels E.G. Evidence for the autoregulation of hormone secretion by prolactin // Endocrinology 1979 — V. 104 — P.97−100
  96. Higashijima H., Yamashita H., Makino I., Kuroki S. Significance of serum delta bilirubin during obstructive jaundice in dogs // J.Surg. Res.-1996 V.66 (2) -119−124
  97. Hinuma S., Habata Y., Fujii R., Kawamata V. A prolactin-releasing peptide in the brain // Nature 1998 — V.393 — P. 272−276
  98. Hu Z.Z., Li Z., Dufau M.L. Multiple and tissue-specific promoter control of gonadial and non-gonadial prolactin receptor gene expression // J. Biol. Chem. — 1996 — V.271 -P. 10 242−10 246
  99. Hu Z.Z., Li Z., Guan X., Meng J., Dufau M.L. Steroidogenic Factor-1 is an essential transcriptional activator for gonad-specific expression of promoter I of the Rat prolactin receptor gene // J. Biol. Chem. 1997 — V.272 — P. 14 263−14 271
  100. Hu Z.Z., Meng J., Dufau M.L. Isolation and characterization of two novel forms of the human prolactin receptor generated by alternative splicing of a newly identified exon 11 // J. Biol. Chem. 2001 — V.276 — P.41 086−41 094
  101. Hu Z.Z., Zhuang L., Meng J., Tsai-Morris C.H., Dufau M.L. Complex 5' genomic structure of the human prolactin receptor: multiple alternative exons 1 and promoter utilization // Endocrinology 2002 — V.143 — P.2139−2142
  102. Huang K., Ueda E., Chen Y., Walker A.M. Paradigm-shifters: phosphorylated prolactin and short prolactin receptors // J. Mammary Gland Biol. Neoplasia. — 2008
  103. Ihle J.N. STATs: Signal transducers and activators of transcription // Cell -1996 V.84 — P.331−334
  104. Ito K, Koresawa T, Nakano K, Horie T. Mrp2 is involved in benzylpenicillin-induced choleresis II Ami Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2004 -V.287(l) — P. 42−49
  105. Jahn G.A., Edery M., Belair L., Kelly P.A., Djiane J. Prolactin receptor gene expression in rat mammary gland and liver during pregnancy and lactation // Endocrinology- 1991 — V.128 — P.2976−2984
  106. Jolicoeur C., Boutin J.M., Okamura H., Raguet S., Djiane J., Kelly P.A. Multiple regulation of prolactin receptor gene expression in rat liver // Mol. Endocrinol. -1989 — V.3 — P.895−900
  107. Kanno N., Lesage G., Glaser S., Alpini G. Regulation of cholangiocyte bicarbonate secretion // Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol.- 2001 -V.281 -G.612−625
  108. Kauffinann HM, Vorderstemann B, Schrenk D. Basal expression of the rat, but not of the human, multidrug resistance protein 2 (MRP2) gene is mediated by CBF/NF-Y and Spl promoter-binding sites // Toxicology. 2001. -V. 167(1) — P. 25−35
  109. Kelly P.A., Boutin J.-M., Jolicoeur C., Okamura H., Shirota M., Edery M., Dusanter-Fourt I., Djiane J. Purification, Cloning, and Expression of the Prolactin Receptor // Biol. Reprod. -1989 V.40 — P.27−32
  110. Kelly P.A., Djiane J., Postel-Vinay M.C., Edery M. The prolactin/growth hormone receptor family // Endocrine Reviews -1991 -V.12-P.23 5−251
  111. Khattabi E.I., Remade C., Reusens B. The regulation of IGFs and IGFBPs by prolactin in primary culture of fetal rat hepatocytes is influenced by maternal malnutrition // Am J Physiol Endocrinol Metab 2006 — V 291 — P. E835-E842, 2006
  112. Kline J.B., Roehrs H., Clevenger C.V. Functional characterization of the intermediate isoform of the human prolactin receptor // J. Biol. Chem. 1999 — V.274 -P.35 461−35 468
  113. Kline J.B., Rycyzyn M.A., Clevenger C.V. Characterization of a novel and functional human prolactin receptor isoform (ASlPRLr) containing only one extracellular fibronectin-like domain // Mol. Endocrinol. 2002 — V. 16 — P.2310−2322
  114. Kmiec Z. Cooperation of liver cells in health and disease // Adv. Anat. Embriol. Cell. Biol. 2001 — V. 14 — P. 1−107
  115. Koga Y., Kitajima Y., Miyoshi A., Sato K., Kitahara K., Soejima H., Miyazaki K. Tumor progression through epigenetic gene silencing of 0(6)-methylguanine-DNA methyltransferase in human biliary tract cancers // Ann. Surg. Oncol. 2005 — V.12 -P.354−363
  116. Kojima T., Yamamoto T., Murata M., Chiba H., Kokai Y., Sawada N. Regulation of the blood-biliary barrier: interaction between gap and tight junctions in hepatocytes // Med. Electron. Microsc. 2003 — V.36 — P.157−164
  117. Roller T., Kollerova J., Huorka M., Hlavaty T., Payer J. Impact of basal prolactin levels on the prevalence of complications and the prognosis of patients with liver cirrhosis // Vnitr Lek. 2009 — V55 (5) — P. 468−473
  118. Kullak-Ublick G.A., Stieger B., Hagenbuch B., Meier P.J. Hepatic Transport of Bile Salts // Seminars in Liver Disease 2000 — V.20 — P.273−292
  119. Kullak-Ublick G.A., Stieger B., Meier P.J. Enterohepatic bile salt transporters in nopmal physiology and liver disease // Gastroenterology 2003 — V. 126 — P.322−342
  120. Lebrun J.J., Ali S., Goffin V., Ullrich A., Kelly P.A. A single phosphotyrosine residue of the prolactin receptor is responsible for activation of gene transcription // Proc. Natl. Acad. Sci. 1995a — V.92 — P.4031 -4035
  121. Lebrun J.J., Ali S., Ullrich A., Kelly P.A. Proline-rich sequence-mediated JAK2 association to the prolactin receptor is required but not sufficient for signal transduction // J. Biol. Chem. 19 956 — V.270 — P. 10 664−10 670
  122. Lenzen R., Alpini G., Tavoloni N. Secretin stimulates bilr ductilar secretory activity through thr cAMP system // Am.J.Physiol.- 1992 -V.263 (4) P. G527-G532
  123. Li Y., Suresh Kumar K. G., Tang W., Spiegelman V.S., Fuchs S.Y. Negative regulation of prolactin receptor stability and signaling mediated by SCFp-TrCP E3 ubiquitin ligase // Mol. Cell. Biol. 2004 — P.4038−4048
  124. Li C, Naren AP. Macromolecular complexes of cystic fibrosis transmembrane conductance regulator and its interacting partners // Pharmacol Ther.- 2005. V. 108(2) — P. 208−223
  125. Liquita M.G., Catania V.A., Sanchez-Pozzi E.J., Mottino A.D. Ovine prolactin increases hepatic UDP-glucoroniltransferase activity in ovariectomized rats // J. Pharmacol. Exp. Ther. 1996 — V.278 — P.921−925
  126. Lu J.-C., Piazza T.M., Schuler L.A. Proteasomes mediate prolactin-induced receptor downregulation and fragment generation in breast cancer cells // J. Biol. Chem. — 2005 V.280 — P.33 909−33 916
  127. Lu J.-C., Scott P., Strous G.J., Schuler L.A. Multiple internalization motifs differentially used by prolactin receptor isoforms mediate similar endocytic pathways // Mol. Endocrinol. 2002 — V. 16 — P.2515−2527
  128. Luquita MG, Catania VA, Sanchez EJ, Vore M, Veggi LM Induction of phase II biotransformation reacrions in rat jejunum during lactation. Possible involvement of prolactin// Biochim Biophys Acta. 1999 — V. 1472 (1 -2) — P. 82−92
  129. Ma F.Y., Anderson G.M., Gunn T.D., Goffin V., Grattan D.R., Bunn S.J. Prolactin specifically activates signal transducer and activator of transcription 5b in neuroendocrine dopaminergic neurons // Endocrinol. 2005 — V. 146 — P.5112−5119
  130. Marzioni M., Glaser S.S., Francis H., Phinizy L.J., LeSage G., and Alpini G. Functional Heterogeneity of Cholangiocytes // Sem. Liv. Disease 2002 — V.22 — P.227−240
  131. Masyuk A., Masyuk T., Splinter P., Huang B., Stroope A., LaRusso N. Cholangiocyte cilia detect changes in luminal fluid flow and transmit them into intracellular Ca2+ and cAMP signaling // Gastroenterology -2006-V131(3)-P911 -920.
  132. Masyuk T., Ritman E., Larusso N. Quantitative assessment of the rat intrahepatic biliary system by three -dimensional reconstruction // American J of Pathology 158 (6)-2001
  133. Meng J., Tsai-Monis C.-H., Dufau M.L. Human prolactin receptor variants in breast cancer: low ratio of short forms to the long-form human prolactin receptor associated with mammary carcinoma // Cancer Res. 2004 — V.64 — V.5677−5682
  134. Mennone A., Alvaro D., Cho W., Boyer J.L. Isolation of small polarized bile duct units // Proc. Natl. Acad. Sci. U S A 1995 — V.92 — P.6527−6231
  135. Mesa VA, De Vos R, Fevery J Elevation of the serum bilirubin diconjugate fraction provides an early marker for cholestasis in the rat//J Hepatol.-1997-V.27(5)-P.912−6
  136. Miyoshi H., Rust C., Roberts P.J., Burgart L.J., Gores G.J. Hepatocyte apoptosis after bile duct ligation in the mouse involves Fas // Gastroenterology 1999 — V.117 -P.669−677
  137. Murphy L.J., Tachibana K., Friesen H.G., Stimulation of hepatic insulin-like growth factor-I gene expression by ovine prolactin evidence for intrinsic somatogenic activity in the rat // Endocrinology 1988 — V.122 -P.2027−2033
  138. Nagano M., Kelly P.A. Tissue distribution and regulation of rat prolactin receptor gene expression. Quantitative analysis by polymerase chain reaction // J. Biol. Chem. 1994 — V.269 — P.13 337−13 345
  139. Nathanson M.H., Boyer J.L. Mechanisms and regulation of bile secretion // Hepatology — 1991 V. 14 -P.551−566
  140. Nathanson M.H., Burgstahler A.D., Mennone A., Fallon M.B., Gonzalez C.B., Saez J.C. Ca2+ waves are organized among hepatocytes in the intact organ // Am. J. Physiol. 1995-V.269-P.G167-G171
  141. Nishikawa S., Moore R.C., Nonomura N., Oka T. Progesterone and EGF inhibit mouse mammary gland prolactin receptor and beta-casein gene expression // Am. J. Physiol. 1994 —V.267 -P.C1467−1472
  142. Orlova A.N., Smirnova O.V., Smirnov A.N. Appearance and functions of prolactin receptors in cholangiocytes after common bile duct ligation // Pathophysiology -1998-V.5-Suppl.l-P.230
  143. Ouhtit A., Morel G., Kelly P. Visualization of gene expression of short and long forms of prolactin receptor in the rat// Endocrinology — 1993a-V.133 —P.135−144
  144. Ouhtit A., Morel G., Kelly P.A. Visualization of gene expression of short and long forms of prolactin receptor in rat reproductive tissues // Biol. Reprod. — 19 936 V.49 -P.528−536
  145. Parola M., Cheeseman K.H., Biocca M.E., Dianzani M.U., Sater T.F. Isolation and characterization of biliary epithelial cells from normal rat liver // J. Hepatol. -1988 —V.6 —P.175−186
  146. Perrot-Applanat M., Gualillo O., Buteau H., Edery M., Kelly P.A. Internalization of prolactin receptor and prolactin in transfected cells does not involve nuclear translocation//J. Cell. Sci.- 1997a-V.110-P.1123−1132
  147. Perrot-Applanat M., Gualillo O., Pezet A., Vincent V., Edery M., Kelly P.A. Dominant negative and cooperative effects of mutant forms of prolactin receptor // Mol. Endocrinol. -19 976 V. l 1 — P. 1020−1032
  148. Picoletti R., Bendinelli P., Maroni P. Signal transduction pathway of prolactin in rat liver // Mol. Cell. Endocrinol. 1997 — V.135 — P.169−177
  149. Qazi A.M., Tsai-Morris C.-H., Dufau M.L. Ligand-Independent Homo- and Heterodimerization of Human Prolactin Receptor Variants: Inhibitory Action of the Short Forms by Heterodimerization // Molecular Endocrinology 2006 — V.20 — 1912−1923
  150. Rappaport A.M. The microcirculatory acinar concept of normal and pathological hepatic structure // Beitr. Path. 1976 — V. 157 — P.215−243
  151. Rappaport A.M., Borowy Z.J., Lougheed W.M., Lotto W.N. Subdivision of hexagonal liver lobes into a structural and functional unit // Anat. Rec. 1954 — V. 119 — P. 11−33
  152. Ricci F., Kern S.E., Hruban R.H., Iacobuzio-Donahue C.A. Stromal responses to carcinomas of the pancreas: juxtatumoral gene expression conforms to the infiltrating pattern and not the biologic subtype // Cancer Biol. Ther. 2005 — V.4 — P.302−307
  153. Robb-Gaspers L.D., Thomas A.P. Coordination of Ca2+ signaling by intercellular propagation of Ca2+ waves in the intact liver // J. Biol. Chem. 1995 — V.270 -P.8102−8107
  154. Rui H., Lebrun J.J., Kirken R.A., Kelly P.A. JAK2 activation and cell proliferation induced by antibody-mediated prolactin receptor dimerization // Endocrinology 1994 — V. 135 — P. 1299−1306
  155. Russell D.L., and Richards J.S. Differentiation-dependent prolactin responsiveness and Stat (Signal Transducers and Activators of Transcription) signaling in rat ovarian cells // Mol. Endocrinol. 1999 — V. 13 — P.2049−2064
  156. Sakaguchi K., Ohkubo T., Sugiyama T., Tanaka M., Ushiro H., Nakashima K. Differential regulation of prolactin receptor mRNA expression in rat liver and kidney by testosterone and oestradiol // J. Endocrinol. 1994 — V.143 — P.383−392
  157. Sato F, Aoki H, Nakamura K, Taguchi M, Aoki T, Yasuda N. Suppressive effects of chronic hyperprolactinemia on penile erection and yawning following administration of apomorphine to pituitary-transplanted rats //J Androl. — 1997- V. 18(1) — P. 21−25
  158. Schwertfeger K.L., Hunter S., Heasley L.E., Levresse V., Leon R.P., DeGregori J., Anderson S.M. Prolactin stimulates activation of c-jitn N-terminal kinase (INK) // Mol. Endocrinol. 2000 — V.14 — P.1592−1602
  159. Shimizu I., Kohno N. Tamaki K" Shono M., Huang H.-W., He J.-H., Yao D.-F. Female hepatology: Favorable role of estrogen in chronic liver disease with hepatitis B virus infection // World J. Gastroenterol. 2007 — V.13 — P.4295−4305
  160. Simon-Holtorf J., Monig H., Klomp H.J., Reinecke-Luthge A., Folsch U.R., Kloehn S. Expression and distribution of prolactin receptor in normal, fibrotic, and cirrhotic human liver // Exp. Clin. Endocrinol. Diabetes. 2006 — V. 114 — P.584−589
  161. Smirnova O., Orlova A. Functional role for prolactin receptors of rat cholangiocytes under conditions of obstructive cholestasis // J. Hepatol. 1999 — V.30 — SI -p.143
  162. Smirnova O., Petrashchuk O., Kelly P. Immunohystochemical localization of prolactin receptor in rat liver cells: dependence on sex and sex steroids // Mol. Cell. Endocr. -1994- V.105 -P.77−81
  163. Song IY, Van-Marble J, Van-Noorden C. Redistribution of Ca2+, Mg2±ATPase activity in relation to alterations of the cytoskeleton and tight junction in hepatocytes of cholestatic rat liver // EurJ.Cell.Biol.- 1996- V. 71(3) P.277−285
  164. Sorin B., Vacher A.M., Djiane J., Vacher P. Role of protein kinases in the prolactin-induced intracellular calcium rise in Chinese hamster ovary cells expressing the prolactin receptor// J. Neuroendocrinol. 2000 — V.12 — P.910−918
  165. Soroka CJ, Lee JM, Azzaroli F, Boyer JL Cellular localization and up-regulation of multidrug resistance-associated protein 3 in hepatocytes and cholangiocytes during obstructive cholestasis in rat liver // Hepatology. 2001 — V. 33(4) — P.783−791
  166. Takakuwa Y., Kokai Y., Sasaki K., Chiba H., Tobioka H., Mor M., Sawada N. Bile canalicular barrier function and expression of tight-junctional molecules in rat hepatocytes during common bile duct ligation // Cell. Tissue. Res. 2002 — V.307 — P. 181 189
  167. Takikawa H., Wako Y., Sano N., Yamanaka M. Changes in biliary excretory mechanisms in bile duct-ligated rat // Dig. Dis. Sci. 1996 — V.41 — P.256−262
  168. Tan D., Huang K.T., Ueda E., Walker A.M. S2 deletion variants of human PRL receptors demonstrate that extracellular domain conformation can alter conformation of the intracellular signaling domain (dagger) // Biochem. 2008 — V.47 — P.479−489
  169. Trauner M., Boyer J.L. Bile salt transporters: molecular characterization, function, and regulation // Pysiol Rev. -2003 V. 83 — P. 633−671
  170. Trauner M., Meier P.J., Boyer J.L. Molecular regulation of hepatocellular transport systems in cholestasis // J. Hepatol. 1999 — V.31 — P. 165−178
  171. Trott J.F., Hovey R.C., Koduri S., Vonderhaar B.K. Alternative splicing to exon 11 of human prolactin receptor gene results in multiple isoforms including a secreted prolactin-binding protein // J. Mol. Endocrinol. 2003 — V.30 — P.31−47
  172. Varas SM, Jahn GA. The expression of estrogen, prolactin, and progesterone receptors in mammary gland and liver of female rats during pregnancy and early postpartum: regulation by thyroid hormones // Endocr. Res. 2005 — V.31 (4) — P. 357−370
  173. Vasquez J., Nazian S., Mahesh V. Pituitaiy sensitivity to LHRH in hyperprolactinemia induced by perphenazine and renal pituitary transplants in female rats // Biology of reproduction 1980 — V 22 — P. 486−492
  174. Veggi LM, Crocenzi FA, Roma MG, Mottino AD. Dapsone impairs the bile salt-independent fraction of bile flow in rats: Possible involvement of its N-hydroxylated metabolite // Toxicology. 2005 — V. 211(1−2) — P. 97−106
  175. Verhelst J., Abs R. Hyperprolactinemia: pathophysiology and management // Treat Endocrinol. 2003 — V2 (1) — P. 23−32.
  176. Villalba M., Zabala M.T., Martinez-Serrano A., de la Colina R., Satrustegui J., Garcia-Ruiz J.P. Prolactin increases cytosolic free calcium concentration in hepatocytes of lactating rats// Endocrinology 1991 — V.129 — P.2857−2861
  177. Vincent V., Goffin V., Rozakis-Adcock M., Mornon J.P., Kelly P.A. Identification of cytoplasmic motifs required for short prolactin receptor internalization // J. Biol. Chem. 1997 — V.272 — P.7062−7068
  178. Wallaschofski H., Kobsar A., Koksch M., Siegemund A., Hentschel B., Tuschy U., Lohmann T., Sokolova O., Eigenthaler M. Prolactin receptor signaling during platelet activation // Horm. Metab. Res. 2003 — V.35 — P.228−235
  179. Wang D.S., Dou K.F., Li K.Z., Gao Z.Q., Song Z.S., Liu Z.C. Hepatocellular apoptosis after hepatectomy in obstructive jaundice in rats // World J. Gastroenterol. 2003 — V.9 — P.2737−2741
  180. Wang Y., O’Neal K.D., Yu-Lee L. Multiple prolactin receptor cytoplasmic residues and Statl mediate PRL signaling to the interferone regulatory factor-1 promoter // Mol. Endocrinol. 1997-V.ll -P.1353−1364
  181. Wood M., Ananthanarayanan M., Jones B., Wooton-Kee R., Hoffman T., Suchy F. J., Vore M. Hormonal regulation of hepatic organic anion transporting polypeptides // Mol. Pharmacol. V.68 — P.218−225,2005
  182. Wu W., Chen Y.H., Ueda E., Tan D., Bartolini P., Walker A.M. Different forms of prolactin have opposing effects on the expression of cell cycle regulatory proteins in differentiated mammary epithelial cells // Oncol. Res. — 2006 — V.16 — P.75−84
  183. Yang N., Wang X., Jiang J., Frank S.J. Role of the growth hormone (GH) receptor transmembrane domain in receptor predimerization and GH-induced activation // Mol. Endocrinol. 2007-V.21 — P. 1642−1655
  184. Yasui T., Murakami T., Maeda T. Oka T. Involvement of gonadal steroid hormone disturbance in altered prolactin receptor gene expression in the liver of diabetic mice// J. Endocrinol. 1999 — V.161 — P.33−40
  185. Yokoyama Y., Kitchens W.C., Toth B., Schwacha M.G., Bland K.I., Chaudry I.H. Upregulation of hepatic prolactin receptor gene expression by 17beta-estradiol following trauma-hemorrhage // J. Appl. Physiol. 2003 — V.95 — P.2530−2536
  186. Yu-Lee L.Y. Prolactin modulation of immune and inflammatory responses // Recent Prog. Horm. Res. 2002 — V.57 — P.435−455
  187. Zabala M.T. and Garcia-Ruiz J.P. Regulation of expression of the messenger ribonucleic acid encoding the cytosolic form of phosphoenolpyruvate carboxykinase in liver and small intestine of lactating rats // Endocrinology 1989 — V. 125 — P.2587−2593
  188. Zirulnik F. Anzulovich A.C., Larregle E., Jahn G.A., Gimenez M.S. Role of prolactin in the regulation of cytosolic NADP isocitrate dehydrogenase in the liver of the male rat // Endoer. Res. 2003 — V.29 — P.201−210
  189. Zollner G, Trauner M. Molecular mechanisms of cholestasis // Wien Med Wochenschr 2006-V 156 (13−14) -P 380−385
  190. Zsembery A, Thalhammer T, Graf J. Bile Formation: a Concerted Action of Membrane Transporters in Hepatocytes and Cholangiocytes // News Physiol Sei. 2000 -V.15 —P. 6−11
  191. Zwemer CF, O’Connor EM, Whitesall SE, D’Alecy LG. Gender differences in 24-hour outcome following resuscitation after 9 minutes of cardiac arrest in dogs // Crit Care Med. 1997. — V. 25(2) — P. 330−338
  192. Я хочу выразить самую искреннюю признательность своиму научному руководителю д.б.н. О. В. Смирновой за интересную тему, советы, помощь в работе.
  193. JI.M. Самоходскую (ФФМ МГУ имени М.В. Ломоносова) за предоставление возможности проведения ПЦР-РВ.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!