Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Роль холестирина мембраны в секреции медиатора и экзоцитозе синаптических везикул в двигательных нервных окончаниях

Диссертация: Роль холестирина мембраны в секреции медиатора и экзоцитозе синаптических везикул в двигательных нервных окончаниях
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Например, мембранный холестерин помогает контролировать текучесть и кривизну мембран, что важно для способности мембран деформироваться и сливаться. Внедряясь между хвостиками сфинголипидов мембраны, холестерин может определять свободу передвижения погруженных в мембрану белков и даже изменять их функцию. Присутствие холестерина необходимо для поддержания свойственной синапсу структуры… Читать ещё >

Содержание

  • ВВЕДЕНИЕ
    • 1. 1. Актуальность исследования
    • 1. 2. Цель и задачи исследования
    • 1. 3. Научная новизна
    • 1. 4. Положения, выносимые на защиту
    • 1. 5. Научно-практическая ценность
    • 1. 6. Апробация работы
    • 1. 7. Реализация результатов исследования
    • 1. 8. Структура и объем диссертационной работы
  • 2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
  • 1. Нервно-мышечный синапс
    • 1. 1. Пресинаптическая область
    • 1. 2. Основные белки активной зоны
    • 1. 3. Активная зона двигательного нервного окончания лягушки
    • 1. 4. Активные зоны в двигательных, НО крыс и мышей
    • 1. 5. Синаптические везикулы
    • 1. 6. Постсинаптическая область нервно-мышечного синапса
    • 1. 7. Квантово-везикулярная теория секреции медиатора
  • 2. Экзоцитоз
    • 2. 1. Этапы экзоцитоза СВ
    • 2. 2. Сцепление
    • 2. 3. Докирование
    • 2. 4. Прайминг СВ. SNARE-комплекс
    • 2. 5. Регуляция сборки SNARE-комплекса
    • 2. 6. Ионы Са, сенсоры кальция в экзоцитозе
    • 2. 7. Разборка SNARE комплекса
    • 2. 8. Холестерин липидных плотиков и его роль в экзоцитозе СВ
      • 2. 8. 1. Что такое липидные плотики
      • 2. 8. 2. Как образуются липидные плотики
      • 2. 8. 3. Зачем нужны липидные плотики
      • 2. 8. 4. Липидные плотики в синоптической передаче
    • 2. 9. Фосфоинозитиды в экзоцитозе СВ
  • З.ЭндоцитозСВ
    • 3. 1. Белки вовлеченные в эндоцитоз СВ
    • 3. 2. Снятие клатринового покрытия
    • 3. 3. Механизмы транспорта везикул
      • 3. 3. 1. Механизмы транспорта везикул и роль актинового цитоскелета
      • 3. 3. 2. Пути рециклирования и пулы синаптических везикул
    • 3. 4. место эндосомальной сортировочной станции в рециклировании везикул
    • 3. 5. ХОЛЕСТЕРИН И эндоцитоз СВ
    • 3. 6. Фосфоинозитиды в эндоцитозе
  • 3. ОБЪЕКТ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 1. 1. Регистрация синаптических сигналов
    • 1. 2. Флуоресцентная микроскопия
  • 4. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
    • 1. 1. Изменения концентрации холестерина в мембранах нервно-мышечных препаратов лягушки и мыши, обработанных МОД
    • 1. 2. Влияние МЦД на спонтанную секрецию медиатора из двигательных НО
    • 1. 3. Эффекты мттд на частоту МТКП при уменьшении концентрации ионов
  • СавНО
    • 1. 4. Действие МЦД на электрогенез двигательного НО
    • 1. 5. Влияние МЦД на квантовый состав ТКП
    • 1. 6. Выраженность облегчения секреции медиатора при высокочастотном ритмическом раздражении на фоне действия МЦД
    • 1. 7. Влияние мттд на депрессию секреции медиатора при длительном высокочастотном раздражении
    • 1. 8. Изменения загрузки красителя ¥-М 1 -43 в, НО на фоне действия МЦД
    • 1. 9. Динамика выгрузки красителя КМ 1 -43 из, НО на фоне действия МЦД
  • 2. Эффекты ХО на спонтанную и вызванную секрецию медиатора
  • 5. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 1. 1. Получасовая аппликация нервно-мышечных препаратов в МЦД приводит к дозозависимому вымыванию холестерина из поверхностных мембран
    • 1. 2. Экстракция большого количества холестерина из мембран приводит к усилению спонтанной секреции медиатора
    • 1. 3. Окисление холестерина мембраны не оказывало влияния на секрецию медиатора в покое
    • 1. 4. Усиление интенсивности спонтанной секреции не связано с ионами
    • 1. 5. Эффект удаления и окисления холестерина мембраны на постсинаптическую область синапса
    • 1. 6. Действие МЦ Д на электрогенез двигательного НО
    • 1. 7. Экстракция холестерина из мембраны 1 ммоль/л МЦД приводит к снижению секреции медиатора при редкой стимуляции
    • 1. 8. Выраженность облегчения секреции медиатора при высокочастотном ритмическом раздражении на фоне действия МЦД
    • 1. 9. Влияние МЦД на депрессию секреции медиатора при длительном высокочастотном раздражении
  • 2. Вымывание холестерина мембраны 1 ммоль/л МЦД вызывает ухудшение загрузки красителя в двигательные, НО лягушки и мыши
    • 2. 1. Удаление холестерина мембраны 1 ммоль/л МЦД приводит к нарушению экзоцитоза СВ

Роль холестирина мембраны в секреции медиатора и экзоцитозе синаптических везикул в двигательных нервных окончаниях (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

1.1. Актуальность исследования.

Секреция медиатора в химическом синапсе происходит в результате экзоцитоза — слияния мембраны синаптической везикулы (СВ) с пресинаптической мембраной, в результате которого порция (квант) медиатора секретируется в синаптическую щель [Sudhof Т. С., 2004]. В естественных условиях для инициации этого процесса потенциалом действия необходима деполяризация, вход ионов Са в нервное окончание (НО) и координированная активность многих белков [Зефиров А.Л., Петров A.M., 2010]. Затем с помощью клатрин-опосредованного эндоцитоза происходит повторный захват мембранного фрагмента слившейся везикулы внутрь, НО — образование новой везикулы, которая после заполнения медиатором может повторно участвовать в секреции медиатора. Процессы экзо — и эндоцитоза СВ составляют везикулярный цикл, который за счет рециклирования СВ обеспечивает сохранение высокого уровня секреции медиатора при высокочастотной активности синапса [Betz W.J., et. al., 2005; Зефиров А. Л., 2007; Levitan E.S., et al., 2010].

Исторически так сложилось, что белкам вовлеченным в процессы экзои эндоцитоза СВ уделялась львиная доля вниманияно в последние время, благодаря развитию новых методов исследования, стало совершенно ясно, что липиды мембран также вносят существенный вклад в пресинаптические функции. [Rohrbough J., et al., 2005; Зефиров А. Л., и др., 2010].

Например, мембранный холестерин помогает контролировать текучесть и кривизну мембран, что важно для способности мембран деформироваться и сливаться. Внедряясь между хвостиками сфинголипидов мембраны, холестерин может определять свободу передвижения погруженных в мембрану белков и даже изменять их функцию [Зефиров А.Л., 2010; Levitan I., et al., 2010; Rosa P., et al., 2010]. Присутствие холестерина необходимо для поддержания свойственной синапсу структуры и функционирования мозга [Herring D., et al., 2003; Pfrieger F.W., 2003; Salaun С., et al., 2004; Rohrbough J., et al., 2005].

Показано, что во время развития мозга, холестерин, вырабатываемый глией, усиливает процесс синаптогенеза [Mauch D.H., et al., 2001; Pfrieger F.W., 2003; Goritz С., et al., 2005]. Удаление холестерина в хромаффинных клетках разрушает кластеры синтаксина, тем самым уменьшает секрецию катехоламинов [Chamberlain L.H., et al., 2001; Lang T., et al., 2001; Gil С., et al., 2005; Salaun C., et al., 2005]. Велико содержание холестерина и в мембранах СВ [Deutsch Е., et al., 1981], где он взаимодействует с несколькими везикулярными белками (синаптобревин, синаптофизин) [Thiele С., et al., 2000].

Недавно стало известно, о существовании на поверхности мембран, так называемых «липидных плотиков», маленьких (10−200нм), динамичных, гетерогенных доменов с высокой концентрацией холестерина и сфинголипидов, предназначенных для компартментализации клеточных процессов [Pike L.J., 2006]. Показано, что холестерин модулирует многие клеточные функции, изменяет активность ряда белков, например Na/K-АТФазы, аденилатциклазы, метаботропных рецепторов, Ca — каналов, NO-синтазы, NADH-оксидазы и т. д. [Pfrieger F. W., 2003;' Taverna E., et al, 2004;' Weixing H., et al., 2008]. Недавно липидные плотики были обнаружены в пресинаптических мембранах двигательных нервных окончаний лягушки и мыши в областях, где протекают экзо-и эндоцитоз СВ [Петров A.M., и др., 2011]. Сегрегация белков экзоцитоза и Са-каналов в так называемые «липидные плотики», содержащие холестерин в высокой концентрации, может быть важным механизмом управляющим слиянием везикулы [Зефиров A. JL, и др., 2010].

В настоящей работе делается попытка оценить влияние холестерина мембран на функционирование нервно-мышечного синапса холоднокровных и теплокровных животных и процессы секреции медиатора из двигательных НО.

7. ВЫВОДЫ.

1. МЦД эффективно вымывает холестерин из плазматических мембран нервно-мышечных препаратов как лягушки, так и мыши: 1 ммоль/л МЦД вымывает 10−20% холестерина, а 10 ммоль/л МЦД удаляет более 50% холестерина из мембран.

2. Экстракция холестерина из мембраны двигательных, НО лягушки и мыши низкими концентрациями МЦД (0,1- 1 ммоль/л) не вызывает изменений частоты и амплитудно-временных параметров МТКП, тогда как высокие концентрации МЦД (5- 10 ммоль/л) приводят к увеличению частоты МТКП и увеличению времени их полуспада.

3. Блокирование Са-каналов ионами Сё, применение мембранопроникающих хелаторов Са (ВАРТА-АМ), а также отсутствие ионов Са в окружающем растворе, не устраняет усиливающий эффект высоких доз МЦД на частоту МТКП в нервно-мышечных соединениях лягушки и мыши.

4. Значительное вымывание холестерина из мембран (10 ммоль/л МЦД) приводит к нарушению генерации и проведения ПД в, НО лягушки и мыши.

5. В растворах, как с низким содержанием ионов Са (0,3 ммоль/л), так и с высоким (1,8 ммоль/л) на фоне действия 1 ммоль/л МЦД происходит снижение квантового состава ТКП и ПКП. Эффекты, реализуемые 1 ммоль/л МЦД в нервно-мышечных препаратах лягушки и мыши идентичны.

6. При высокочастотной стимуляции двигательного нерва в условиях низкой внеклеточной концентрации ионов Са, удаление холестерина из мембраны (1 ммоль/л МЦД) вызывает менее выраженное облегчение секреции медиатора.

7. Удаление холестерина из поверхностных мембран (1 ммоль/л МЦД) при высоких внеклеточных концентрациях ионов Са ведет к усилению депрессии секреции медиатора при высокочастотном раздражении.

8. Экстракция холестерина из мембраны, НО (1 ммоль/л МЦД) приводит к угнетению процессов экзоцитоза СВ и нарушению транспорта везикул к местам экзоцитоза.

9. Окисление холестерина мембраны ХО не влияет на частоту спонтанной секреции МТКП, но увеличивает время полуспада МТКП.

10. Ферментативное окисление холестерина мембраны приводит к небольшому уменьшению квантового состава ТКП.

6.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Вытеснение холестерина из состава пресинаптической мембраны приводит к снижению секреции медиатора в ответ на одиночные раздражения как при высокой, так и низкой внеклеточной концентрации ионов Са2+ свидетельствует об угнетении экзоцитоза СВ. Это угнетение сопровождается более выраженной депрессией секреции медиатора при высокочастотной активности, в результате чего при высокочастотном раздражении освобождается меньше медиатора, чем в контроле. Экстракция холестерина из пресинаптической мембраны приводила к примерно двукратному уменьшению захвата красителя. Однако эти данные нельзя рассматривать как следствие угнетения эндоцитоза СВ. Уменьшение захвата красителя объясняется снижением на 50% экзоцитоза СВ (количества освобожденных квантов медиатора) при высокочастотной активности. Другими словами, эндоцитоз не нарушен, и полностью возвращает встроившийся в ходе экзоцитоза мембранный материал СВ обратно в НО, восстанавливая популяцию СВ до исходного уровня [Петров A.M., и др., 2009]. Замедление выгрузки красителя свидетельствует о нарушении транспорта СВ и их доставки из резервного пула в готовый к освобождению пул. Все эти данные позволяют считать, что процессы эндоцитоза при экстракции холестерина из плазматической мембраны НО, практически не изменяются.

Возможно, что холестерин пресинаптической мембраны участвует в функционировании белковых комплексов, обеспечивающих процессы локирования и праймирования СВ. По нашему мнению, именно поэтому уменьшение содержания холестерина в пресинаптической мембране приводит к угнетению вызванной секреции медиатора и углублению депрессии при высокочастотной активности. Действительно, ранее полученные данные свидетельствуют о важности холестерина в нервных и нейроэндокринных клетках для процессов слияния мембран [Lang Т., 2007]. Обогащенные холестерином «липидные плотики» выполняют функцию платформ для.

88 локализации и активации белков SNARE комплекса, участвующих в слиянии СВ с пресинаптической мембраной. Удаление значительного количества холестерина приводит к «рассеиванию» плотиков, что нарушает экзоцитоз СВ [Gil С., et al., 2005]. Исследования на мушке Drosophila показали, что в результате мутации в гене церамидазы SLAB, приводящей к перераспределению холестерина в НО, происходит уменьшение примерно на 70% способности СВ к слиянию [Rohrbough J., et al., 2004]. Кроме того, эффекты на экзоцитоз и секрецию медиатора, наблюдаемые при вытеснении холестерина, могут быть связаны с уменьшением ионных токов, формирующих ПД и обеспечивающих распространение возбуждения по нерву [Zamir О., et al., 2006] и снижением активности потенциал-зависимых Са2±каналов, запускающих экзоцитоз СВ [Taverna Е., et al., 2004]. Холестерин также необходим для поддержания активности аденилатциклазы, продуцирующей цАМФ и цАМФ-зависимых энзимов, которые контролируют процессы экзоцитоза и доставки СВ в активную зону [Петров А. М., и др., 2008]. Кроме этого присутствие холестерина в мембранах важно для сдерживания активности NADH-оксидазы, главного в клетке фермента синтезирующего активные формы кислорода [Weixing Н., et al., 2008], которые в нервно-мышечном синапсе лягушке угнетают секрецию ацетилхолина [Giniatullin A., et al., 2006; 2005]. Эффекты, реализуемые холестерином плазматической мембраны аналогичны, как в нервно-мышечном синапсе лягушки, так и в нервно-мышечном синапсе мыши.

Показать весь текст

Список литературы

  1. А.Л., и др. Анализ секреции медиатора в активной зоне двигательного нервного окончания / А. Л. Зефиров, Т. В. Бениш, Н. Ф. Фаткуллин, С. Ю. Черанов // Нейрофизиология. 1990. — Т. 22, № 3. — С. 318−327.
  2. , А.Л. Везикулярный цикл в пресинаптическом нервном окончании / А. Л. Зефиров // Росс. Физиол. Журнал. 2007. — Т.93, № 5. — С.554−563.
  3. , А.Л. и др. Везикулярный цикл в двигательных нервных окончаниях диафрагмы мыши. / А. Л. Зефиров, A.B. Захаров, Р. Д. Мухамедзянов, A.M. Петров, Г. Ф. Ситдикова // Росс. Физиолог. Журнал им. Сеченова. 2008. — T.94, № 2. — С. 129−141.
  4. , А.Л. Липиды в процессах экзо- и эндоцитоза синаптических везикул / А. Л. Зефиров, A.M. Петров // Росс, физиологический журнал им. Сеченова.-2010.-Т. С.
  5. , А.Л. Петров, A.M. Эндоцитоз в нервной системе / А. Л. Зефиров, A.M. Петров // Природа. 2009. — Т. № 9. — С. 12−20.
  6. , А.Л., Григорьев, П.Н. Чувствительность внутриклеточных Са-связывающих сайтов экзо- и эндоцитоза синаптических везикул кионам Sr, Ва и Mg / А. Л. Зефиров, П. Н. Григорьев //Росс. Физиолог. Журнал им. Сеченова. -2009. Т.95, № 3. — С, 1163−1178.
  7. , А.Л., Мухамедьяров, М.А. Механизмы кратковременных форм кратковременной синаптической пластичности / А. Л. Зефиров, М. А. Мухамедьяров // Росс. Физиолог. Журнал им. Сеченова. 2004. — Т. 90 № 8. — С. 1041−1059.
  8. Зефиров, A. JI, Ситдикова, Г. Ф. Ионные каналы возбудимой клетки (структура, функция, патология). / А. Л. Зефиров, Г. Ф. Ситдикова // Г. Ф. Казань: Арт-Кафе. 2010. — С.270
  9. , A.M. Кинетика рециклирования синаптических везикул в двигательном нервном окончании лягушки / A.M. Петров, А. Л. Зефиров // Сборник статей «Рецепция и внутриклеточная сигнализация». Пущино. -2005. — С.178−181.
  10. , А. М. и др. Роль сигнального каскада цАМФ в кругообороте синаптических везикул двигательного нервного окончания лягушки / А. М. Петров, А. Р. Гиниатуллин, А. Л. Зефиров // Нейрохимия. 2008. — Vol. 25. — Р. 202—210.
  11. , A.M. и др. Холестерин и липидные плотики в плазматической мембране нервного окончания и мембране синаптических везикул / К. Е. Кудряшова, Ю. Г. Одношивкина, А. Л. Зефиров // Нейрохимия. 2011.
  12. , О.И. и др. Роль мембранного холестерина в процессах секреции медиатора из двигательных нервных окончаний / О. И. Тараканова, A.M. Петров, А. Л. Зефиров // Доклады Академии Наук. 2011. — Т. 438, № 2, -С. 279−281.
  13. Abrami L, et al. Anthrax toxin triggers endocytosis of its receptor via a lipid raft-mediated clathrin-dependent process / L. Abrami, S. Liu, P. Cosson, S.H. Leppla, F.G. van der Goot // J. Cell Biol. 2003. — Vol. 160. — P. 321−328.
  14. Ait Slimane, T. Hoekstra, D. Sphingolipid trafficking and protein sorting in epithelial cells / T. Ait Slimane, D. Hoekstra // FEBS Lett. 2002. — Vol. 529. P. 5459.
  15. Anderson, R.G. The caveolae membrane system. / R.G. Anderson // Annu. Rev. Biochem. 1998. — Vol. 67. — P. 199−225.
  16. Angleson, J.K., Betz, W.J. Intraterminal Ca (2+) and spontaneous transmitter release at the frog neuromuscular junction / J.K. Angleson, W.J. Betz // J. Neurophysiol. 2001. — Vol. 85. — P. 287−294.
  17. Antonin, W. The SNARE Vtila-beta is localized to small synaptic vesicles and participates in a novel SNARE complex / W. Antonin, D. Reidel, G.F. von Mollard // J. Neurosci. 2000. — Vol. 20. — P.5724−5732.
  18. Aravanis, A.M. et al. Single synaptic vesicle fusing transiently and successively without loss of indentity / A.M. Aravanis, J.L. Pyle, R.W. Tsien // Nature. 2003. -Vol. 423.-P. 643−647.
  19. Bacci, A. Chronic blockade of glutamate receptors enhances presynaptic release and downregulates the interaction between synaptophysin-synaptobrevin / A. Bacci, S. Coco, E. Pravettoni // J. Neuroscience. 2001. — Vol. 21. — P. 6588−6596.
  20. Bader, M.-F. et al. Coupling actin and membrane dynamics during calcium-regulated exocytosis: a role for Rho and Arf GTPases / M.-F. Bader, F. Doussau, S.C. Golas // Biochimia et Biophysica Acta. 2004. — Vol. 1742. — P. 37−49.
  21. Barrantes, F. J. Cholesterol effects on nicotinic acetylcholine receptor: cellular aspects / F. J. Barrantes // Subcell. Biochem. 2010. — Vol. 51. — P. 467−87.
  22. Barrett, E.F., Stevens, C.F. The kinetics of transmitter release at the frog neuromuscular junction / E.F. Barrett, C.F. Stevens // J. Physiology. 1972. — Vol. 226.-P. 691−708.
  23. Becher, A. et al. The g-aminobutyric acid receptor B, but not the metabotropic glutamate receptor type-1, associates with lipid rafts in the rat cerebellum / A. Becher, J.H. White, R. A. J. Mc Ilhinney // J. Neurochem. 2001. — Vol. 79. P. 787 795.
  24. Becherer, U. Vesicle pools, docking, priming and release / U. Becherer, J. Rettig // Cell Tissue Res. 2006. — Vol. 326. — P. 393−407.
  25. M.P., 2008 Besenicar M.P., Bavdek A., Kladnik A., Macek P., Anderluh G. // Biochim. Biophys. Acta. 2008. V. 1778. P. 175−184.
  26. Betz, W. J., Bewick, G.S. Optical analysis of synaptic vesicle recyclinhg at the frog neuromuscular junction / W. J. Betz, G.S. Bewick // Science. 1992. — Vol. 225. -P. 200−203.
  27. Beites, C.L. et. al. The septin Sept5/ CDrel-1 competes with alpha-SNAP for binding to the SNARE complex / C.L. Beites, K.A. Cambell, W.S. Trimble // Biochem. J. 2005. -Vol. 385.-P. 347−353.
  28. Betz, W. J. Bewick, G.S. Optical monitoring of transmitter release and synaptic vesicle recycling at the frog neuromuscular junction / W.J. Betz, G.S. Bewick // J.Physiol. Lond. 1993. — Vol. 460. — P. 287−309.
  29. Biswaranjan P., Singh B. B., 2009
  30. Boggs, J.M. et al. A glycosynapse in myelin / J. M. Boggs, H. Wang, W. Gao, D. N. Arvanitis, Y. Gong, W. Min // Glycocon J. 2004. — Vol. 21. — P. 97−110.
  31. Brodin, L. Actin-dependent steps the synaptic vesicle recycling / L. Brodin // Biochimic. 1999. — Vol. 81. — P. 49.
  32. Brodsky, F.M. et al. Biological basket weaving: formation and function of clatrin-coated vesicles / F.M. Brodsky, C.Y. Chen, C. Knueth // Annu. Rev. Cell Dev. Biol.-2001.-Vol. 17.-P. 517−568.
  33. Browman, D.T., et al. Erlin-1 and erlin-2 are novel members of the prohibitin family of proteins that define lipid-raft-like domains of the ER / D.T. Browman, M.E. Resek, L.D. Zajchowski, S.M. Robbins // J. Cell Sci. 2006. — Vol. 119. -P. 3149−60.
  34. Brown, D. A., London, E. Functions of lipid rafts in biological membranes / D.A. Brown, E. London // Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 1998. — Vol. 14. — P. 111−136.
  35. Brown, D.A., Rose J.K. Sorting of GPI-anchored proteins to glycolipid-enriched membrane subdomains during transport to the apical cell surface / D.A. Brown, J.K. Rose // Cell. 1992. — Vol. 68. — P.533−44.
  36. Brunger, A.T. Structure and function of SNARE and SNARE-interacting proteins / A.T. Brunger // Q Review Biophys. 2005. — Vol. 38. — P. 1−47.
  37. Bruses, J.L. et al. Membrane lipid rafts are necessary for the maintenance of the a7 nicotinic acetylcholine receptor in somatic spines of ciliary neurons /J L. Bruses, N. Chauvet, U. Rutishauser 11 J. Neurosci. 2001. -Vol. 21. — P. 504−512.
  38. Buccoliero, R. Futerman, A.H. The roles of ceramide and complex sphingolipids in neuronal cell function / R. Buccoliero, A.H. Futerman // Pharmacol Res. 2003. -Vol. 47.-P. 409−19.
  39. Bruns, D. Molecular determinant of exocytosis / D. Bruns, R. Jahn // J. Physiol.- 2002. Vol. 443. — P.333−338.
  40. Calakos, N. et al. Multiple roles for the active zone protein RIM la in late stages of synapneurotransmitter release / N. Calakos, S. Schoch, T.C. Sudhof, R.C. Malenka // Neuron. Vol. 42. — P. 889−896.
  41. Carabeo, R.A., et al. Golgi-dependent transport of cholesterol tothe chlamydia trachomatis inclusion / R.A. Carabeo, D.J. Mead, T. Hackstadt // Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 2003. — Vol.100. — P. 6771−6776.
  42. Chadda, R. et al. Cholesterol-sensitive Cdc42 activation regulates actin polymerization for endocytosis via the GEEC pathway / R. Chadda, M.T. Howes, S.J. Plowman, J.F. Hancock, R.G. Parton, et al. //Traffic. -2007. Vol. 8. — P. 702−717.
  43. Chamberlain, L.H.SNARE proteins are highly enriched in lipid rafts in PC 12 cells: implications for the spatial control of exocytosis / L.H. Chamberlain, R.D.
  44. Burgoyne, G.W. Gould //Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2001. — Vol. 98. — P.5619−5624.
  45. Chen, X. et al. SNARE-mediated lipid mixing depends on the physical state of the vesicles / X. Chen, D. Arac, T. M. Wang, C. J. Gilpin, J. Zimmerberg, J. Rizo // Biophys. J. 2006. -90. — P. 2062−2074.
  46. Chen, X. Three-dimentional structure of the complexin/SNARE complex / X. Chen, D.R. Tomchick, E. Kovrigin // Neuron. 2002. — Vol. 33. — P. 397−409.
  47. Chen, X., et al. Are neuronal SNARE proteins Ca2+ sensors? / X. Chen, J. Tang, T.C. Sudnof, J. Rizo // J. Mol. Biology. 2005. — Vol. 347. — № 1. — P. 145−158.
  48. Cheng, X. SNARE-mediated lipid mixing depends on the physical potentiation in Drosophila / X. Cheng, D. Arac, T.M. Wang // J.Neurobiology. 2006. — Vol. 66. -P. 273−280.
  49. Chika, M.C. Chapman, E.R. Concurrent binding of complexin and synaptotagmin to lisosome-embedded SNARE complexes / M.C. Chika, E.R. Chapman // Biochemistry. 2009. — Vol. 48. — P. 657−659.
  50. Churchward, M.A. et al. Cholesterol facilitates the native mechanism of Ca -triggered membrane fusion / M.A. Churchward, T. Rogasevskaia, J. Hofgen, J. Bau,
  51. Conner, D.S. Regulation portals of entry into cell / D.S. Conner, S.L. Schmid // Nature. 2003. — Vol. 422. — P. 37−44.
  52. J.R. Coorssen // J. Cell Sci. 2005. — Vol. 118. — P. 4833^1848.
  53. Coetzee, T. et al. Myelination in the absence of galactocerebroside and sulfatide: normal structure with abnormal function and regional instability / T. Coetzee, N. Fujita, J. Dupree // Cell. 1996. — Vol. 86. — P. 209−19.
  54. Coorssen, J.R. Rand, R.P. Effects of cholesterol on the structural transitionsinduced by diacylglycerol in phosphatidylcholine and phosphatidylethanolamine97bilayer systems / J.R. Coorssen, R.P. Rand // Biochem. Cell Biol. 1990. — Vol. 68. -P. 65−69.
  55. Cornelius, F. Modulation of Na, K-ATPase and Na ATPase activity by phospholipids and cholesterol. I. Steady-state kinetics / F. Cornelius // Biochemistry. -2001.-Vol. 40.-P. 8842−8851.
  56. Cremona, O. De Camilli, P.J. Phosphoinosidites in membrane traffic at the synapse / O. Cremona, P.J. De Camilli // J. Cell Science. 2001. — Vol. 114. № 6. -P. 1041−1052.
  57. Davis, P.J. Poznansky, M.J. Modulation of 3-hydroxy-3-methylglutaryl-CoA reductase by changes in microsomal cholesterol content or phospholipid composition / P.J. Davis, M.J. Poznansky // Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 1987. — Vol. 84. — P. 118−21.
  58. Delacour, D. Jacob, R. Apical protein transport / D. Delacour, R. Jacob, // Cell Mol. Life Sci. 2006. — Vol. 63. — P. 2491−505.
  59. Dell Castillo, J. Effects of vagal and sympathetic nerve impulses on the membrane potential of the frogs heart / J. Dell Castillo, B. Kats // J. Physilogy. -1955.-Vol. 129.-P. 48−52.
  60. Deutsch, E. Lipids of synaptic vesicles: relevance to the mechanism of membrane fusion. / E. Deutsch, J.W. Deutsch, R.B. Kelly // Biochemistry. 1981. -Vol.20.-P. 378−385.
  61. Di Paolo, G. De Camilli, P. Phospaolipides in cell regulation and membrane dynamics / G. Di Paolo, P. De Camilli // Nature. 2006. — Vol. 443. — P. 415−422.
  62. Di Paolo, G. et al. Impaired PtdIns (4,5)P2 syntesis in nerve terminals produces defects in synaptic vesicle trafficking / G. Di Paolo, H.S. Mockowitz, K. Gipson // Nature.-2004.-Vol. 431.-P. 415−422.
  63. Diao, J. et al. C2AB: a molecular glue for lipid vesicles with a negatively charged surface / J. Diao, T.Y. Yoon, Z. Su, Y.K. Shin, T. Ha // Langmuir. 2009. -Vol. 25.-P. 7177−7180.
  64. Dillon, C. The actin cytoskeleton: integrating form and function at the synapse / C. Dillon, Y. Goda // Annu Rev Neurosci. 2005. — Vol. 28. — P. 25−55.
  65. Diril, M.K. et al. Stonin 2 is an AP-2 dependent endocytic sorting adaptor for synaptotacmin internalization and recycling / M.K. Diril, M. Wienish, N. Jung // Dev. Cell. 2006. — Vol. 431.-P. 415−418
  66. Dittman, J. Ryan, T.A. Molecular circuitryof endocytosis at nerve terminals / J. Dittman, T.A. Ryan //Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 2009. — Vol. 25. P. 33−160.
  67. Dittman, J.S. Regehr, W.G. Contributions of calcium- dependent and calcium-independent mechanisms to presynaptic inhibition at a cerebellar synapse / J.S. Dittman, W.G. Regehr // J. Neurosci. 1996. — Vol. 16.-P. 1623−1633.
  68. Dobrowsky, R.T. Sphingolipid signaling domains: floating on rafts or buried in caves? / Cell. Signal. 2000. — Vol. 12. — P. 81−90.
  69. Doussau, F. The actin cytoskeleton and neurotransmitter release: an overview / F. Doussau, G.J. Augustine // Biochimie. 2000. — Vol. 82. — P. 353−363
  70. Dresbach, T. The presynaptic cytomatrix of brain synapses / T. Dresbach, B. Qualmann, M.M. Kessels // Cell Mol. Life Science. 2001. — Vol. 58. — P. 94−116.
  71. Dulubova, I. A conformational switch in syntaxin during exocytosis / I. Dulubova, S. Sugita, S. Hill // EMBO J. Vol. 18. — P. 4372−4382.
  72. Dulubova, I. Muncl8−1 binds directly to the neuronal SNARE complex / I. Dulubova, M. Khvotchev, S. Liu // Proc. Natl. Acad. Science. 2007. — Vol.104. — P. 2697−2702.
  73. Duncan, M.J. et al. Microbial entry through caveolae: variations on a theme / M.J. Duncan, J.S. Shin, S.N. Abraham // Cell Microbiol. 2002. — Vol. 4. — P. 78 391.
  74. Duncan, R.R. Functional and spatial segregation of secretory vesicle pools according to vesicle age / R.R. Duncan, J. Greaves, U.K. Wiegand et al. // Nature. -2003.-Vol. 422.-P. 176−180.
  75. Dupree, J.L. et al. Axo-glial interactions regulate the localization of axonal paranodal proteins / J.L. Dupree, J.A. Girault, B. Popko // J. Cell Biol. 1999. — Vol. 147.-P. 1145−52.
  76. Dupree, J.L. et al. Myelin galactolipids are essential for proper node of ranvier formation in the CNS / J.L. Dupree, T. Coetzee, A. Blight, K. Suzuki, B. Popko // J. Neurosci. 1998. — Vol. 18. — P. 1642−9.
  77. Dupree, J.L. Pomicter, A.D. Myelin, DIGs, and membrane rafts in the central nervous system / J.L. Dupree, A.D. Pomicter // Prostaglandins & other Lipid Mediators. 2009.- P. 1−12.
  78. Edidin, M. The state of lipid rafts: from model membranes to cells / M. Edidin // Annu. Rev. Biophys. Biomol. Struct. 2003. — Vol .32. — P. 257−83.
  79. Elmqvist D., et al., An electrophysiological investigation of neuromuscular transmission in myasthenia gravis / Elmqvist D, Hofmann WW, Kugelberg J, et al // J Physiol 1964. — Vol. 174. — P. 417−434.
  80. Ficher, S.A. et al. Multiple overlapping processes underlying short-term synaptic enhancement / S.A. Ficher, T.M. Ficher, T.J. Carew // Trends Neuroscience. 1997 — Vol. 20. — P. 170−177.
  81. Fielding, C.J. Fielding, P.E. Cholesterol and caveolae: structural and functional relationships. / Fielding, C J., Fielding, P.E. // Biochim. Biophys. Acta. 2000. -Vol. 1529.-P. 210−222.
  82. Fisher, R.J. Control of fusion pore dynamics during exocytosis by Munc 18 / R.J. Fisher, J. Pevsner, R.G. Burgoyne // Science. 2001. — V.291. — P. 875−878.
  83. Ford, M.G. et al. Curvature of clatrin-coated pits driven by epsin / M.G. Ford, I.G. Mills, B.J. Peter // Nature. 2002. — Vol. 419. — P. 361−366.
  84. Fotin, A. et al. Molecular model for complete clatrin lattice from electron cryomicroscopy / A. Fotin, Y.F. Cheng, P. Sliz // Nature. 2004. — Vol. 432. -P.537−579.
  85. Fujimoto, T. et al. Caveolae: from a morphological point of view / T. Fujimoto, H. Hagiwara, T. Aoki, H. Kogo, R. Nomura // J. Electron Microsc. 1998. — Vol. 47. -P. 451−460.
  86. Ungermann C. Function of SNAREs in intracellular membrane fusion and lipid bilayr mixing / C. Ungermann, D. Langosch // J. Cell Science. 2005. — Vol. 118.-P. 3819−3838.
  87. Fykse, E.M. Amino acid neutransmission: dynamics of vesicular uptake / E.M. Fykse, F. Fonnum // Neurochem. Res. 1996. — Vol. 21. — P. 1053−1060.
  88. Gad, H. et al. Fission and uncoating of synaptic clathrin-coated vesicles are perturbed by disruption of interactions with the SH3 domain of endophilin / H. Gad, N. Ringtad, P. Low // Neuron. 2000. — Vol. 27. — P. 301−312.
  89. Gaffield, M.A. Mobility of synaptic vesicles in different pools in resting and stimulated frog motor nerve terminals / M.A. Gaffield, S.O. Rizzoli, W.J. Betz // Neuron. 2006. — Vol. 51. — P. 317−325.
  90. Gandhi, S.P. Three modes of synaptic vesicular recycling revealed by single-vesicle imaging / S.P. Gandhi, C.F. Stevens // Nature. 2003. — Vol. 423. — P. 607 613.
  91. Geppert, M. et al. Synaptotagmin 1: a major Ca2+ sensor for transmitter release at a central synapse / M. Geppert, Y. Goda, R.E. Hammer // Cell. 1994. — Vol.79. -P. 717−727.
  92. Gerber, S.H., Sudnof, T.C. Molecular determinants of regulated exocytosis / S.H. Gerber, T.C. Sudnof// Diabetes. 2002. — Vol. 51. — P. 603−711.
  93. Gil, C. et al. Synaptic proteins and SNARE complexes are localized in lipid rafts from rat brain synaptosomes / C. Gil, A. Soler-Jover, J. Blasi, J. Aguilera // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2005. -Vol. 329. — P. 117—124.
  94. Goritz, C. Multiple mechanisms mediate cholesterol-induced synaptogenesis in a CNS neuron. / C. Goritz, D.H. Mauch, F.W. Pfrieger // Mol Cell Neurosci. 2005. -Vol. 29.-P. 190−201.
  95. Grishanin, R.N. et al. CAPS acts as a prefusion step in dense-core vesicle exocytosis as a PIP2 binding protein / R.N. Grishanin, J.A. Kovalchyk, V.A. Klenchin // Neuron. 2004. — Vol. 34. — P. 551−562.
  96. Groffen, A J. et al. Ca 2±induced recruitment of the secretory vesicle protein DOC2B to the target membrane / A.J. Groffen, E.C. Brian, J.J. Dudok, J. Kampmeijer, R.F. Toonen, M. Verhage // J. Biol. Chemistry. 2004. — Vol. 279. P. 23 740−23 747.
  97. Guirland, C. Zheng, J.Q. Membrane lipid rafts and their role in axon guidance / C. Guirland, J.Q. Zheng // Adv. Exp. Med. Biol. 2007. — Vol. 621. — P. 144−55.
  98. Hakomori, S. Inauguarl article: the glycosynapse / S. Hakomori // Proc. Natl. Acad. Sci .U. S. A. 2002. — Vol. 99. — P.225−32.
  99. Hammarlund, M. Open syntaxin docks synaptic vesicles / M. Hammarlund, M.T. Palfreyman, S. Watanabe, S. Olsen, E.M. Jorgensen // PLoS Biology. 2007. -V.5. -P.198.
  100. Harata, N.C. Frequency-dependent kineticks and prevalence of kiss-and-run and reuse at hippocampal synapses studied novel quenching methods / N.C. Harata, S. Choi, J. Pyle et al. // Neuron. 2006. — Vol. 49. — P. 243−256.
  101. Harlow, L.H. The architecture of active zone material at the frogs neuromuscular junction / L.H. Harlow, D. Ress, A. Soschek // Nature. 2001. -Vol.409. — P. 479−484.
  102. Hata, Y. Synaptic vesicles fusion complex contains one- 18 homologue bound to syntaxin / Y. Hata, C.A. Slaughter, T.C. Sudnof// Nature. 1993. — Vol. 366. — P. 347−351.
  103. Hawkes, DJ. Mak, J. Lipid membrane- a novel target for viral and bacterial pathogens / D.J. Hawkes, J. Mak, // Curr. Drug Targets. 2006. — Vol. 7. — P. 161 521.
  104. Haydon, P.G. GLIA: listening and talking to the synapse / P.G. Haydon // Nat. rev. Neuroscience. -2001. Vol.2. — P. 185−193.
  105. Heuser, J. Three-dimentional visualization of coated vesicle formation in fibroblast / J. Heuser // J. Cell Biology. 1980. — Vol. 84. — P. 560−583.
  106. Heuser, J.E. Synaptic vesicle exocytosis captured by quick freezing and correlated with quantal transmitter release / J.E. Heuser, T.S. Reese, MJ. Dennis, L. Jan//J. Cell Biology. 1979. — Vol.81. — P. 275−300.
  107. Hinner, I. Changing directions: clathrin—mediated transport between the Goldgi and endosomes. /1. Hinner, S.A. Tooze // J. Cell Sci. 2003. — Vol. 116. — P.763−771.
  108. Hoetzl, S. et al. The way view cellular (glyco)sphingolipids / S. Hoetzl, H. Sprong, G. van Meer // J. Neurochem. 2007. — Vol. 103. — P. 3−13.117. Holt et al., 2004
  109. Holthuis, J. C. et al. The organizing potential of sphingolipids in intracellular membrane transport / J.C. Holthuis, T. Pomorski, R.J. Raggers, H. Sprong, G. Van Meer // Physiol. Rev. 2001. — Vol. 81. — P. 1689−723.
  110. Holz, R.W., Axelrod, D. Secretory granule behaviour adjacent to the plasma membrane before and during exocytosis: total internal reflection fluorescence microscopy studies / R.W. Holz, D. Axelrod // Acta Physiol. (Oxf). 2008. -Vol.192.-P. 303−307.
  111. Hossain, E. et al. Cholesterol heterogeneity in the plasma membrane of epithelial cells / E. Hossain, E. Yandouzi, C. Le Grimellec // Biochemistry. 1992. -Vol. 31 — P. 547−551.
  112. Hubbard, J. I., Wilson, D. F. Neuromuscular transmission in a mammalian preparation in the absence of blocking drugs and the effect of D-tubocurarine / J. I. Hubbard, D. F. Wilson / J. Phyeiol. 1973. — Vol. 228. — P. 307−325.
  113. Huttner, W.B. et al. / Kromer A., Glombik M., Gerdes H.H.// J. Cell Biol. -1998.-Vol. 140.-P. 1331.
  114. Itoh, T. et al. Dynamin and the actin cytoskeleton cooperatively regulate plasma membrane invagination by BAR and F-BAR proteins / T. Itoh, K.S. Erdmann, A. Roux, B. Habermann, H. Werner, P. De Camilli // Dev. Cell. 2005. — Vol. 9. — P. 791−804.
  115. Jahn, R. Grubmuller, H. Membrane fusion / R. Jahn, H. Grubmuller // Curr. Opin. Cell Biology. 2002. — Vol. 14. — P. 488−495.
  116. Jahn, R. Membrane fusion / R. Jahn, T. Lang, T.C. Sudhof// Cell. 2003. -Vol. 112.-P. 519−533.
  117. Jahn, R. Synaptic vesicle traffic: rush hour in the nerve terminal / R. Jahn, T.C. Sudnof // J. Neurochemestry. 1993. — V. 7. — P. 631−643.
  118. Jahn, R. SNAREs engines for membrane fusion / R. Jahn, R. H. Sheller // Nat. Rev. Mol. Cell. Biol. — 2006. — Vol. 7. — P. 631−643.
  119. Jakobsson, J. et al. Role of epsin 1 in synaptic vesicle endocytosis / J. Jakobsson, H. Gad, F. Andersson, P. Luw, O. Shupliakov, L. Brodin // Proc. Natl. Acad. Science. 2008. — Vol. 105. — P. 6445−6450.
  120. Jeckel, D. et al. Glucosylceramide is synthesized at the cytosolic surface of various golgi subtractions / D. Jeckel, A. Karrenbauer, K.N. Burger, G. van Meer, F. Wieland // J. Cell Biol. 1992. — Vol. 117. — P. 259−67.
  121. Jiang, J. et al. Structural basis of J cochaperone binding and regulation of Hsp70 / J. Jiang, E.G. Maes, A.B. Taylor, L. Wang, A.P. Hinck, E.M. Lafer, R. Sousa // Mol Cell. 2007. — Vol. 28. — P. 422−433.
  122. Jordan, R. Visualization of synaptic vesicle movement in intact synaptic boutons using fluorescent fluctuation spectroscopy / R. Jordan, E.A. Lemke, J. Klingauf // Biophys. J. 2005. — Vol. 89. — P. 2091−2102.
  123. Jovanovic, J.N. Opposing changes in phosphorolation of specific sites in synapsin 1 during Ca2+ dependent glutamate release is isolated nerve terminals / J.N. Jovanovic, T.S. Sinha, A.C. Narin // J. Neuroscience. 2001. — Vol. 21. — P. 79 447 953.
  124. Kaeser, P. S. ELKS 2 alfa/CAST deletion selectively increases neurotransmitter release at ingibitory synapses / P. S. Kaeser, L. Deng, A.E. Chvez, X. Liu, P.E. Castillo, T.C. Sudnof// Neuron. 2009. — Vol.64. -P. 227−234.
  125. Kavalali, E.T. Synaptic vesicle reuse and its implications / E.T. Kavalali // Neuroscientist. 2006. — Vol. 12, № 1. — P. 57−66.
  126. Kelly, L.E. Phillips, A.M. Molecular and genetic characterization of the interactions between the Drosofila stoned-B protein and DAP-160 (intersectin) / L.E. Kelly, A.M. Phillips // Biochem. 2005. — Vol. 388. — P. 195−204.
  127. Kim, J.A. et al. b-VLDL increases endothelial cell plasma membrane cholesterol / J.A. Kim, K. Maxwell, D.P. Hajjar, J.A. Berliner // Journal of Lipid Research. -1991.-Vol. 32.-P. 1125−1131.
  128. Kinoshita, T. et al. Biosynthesis, remodelling and functions of mammalian GPI-anchored proteins: Recent progress / T. Kinoshita, M. Fujita, Y. Maeda // J. Biochem. 2008. — Vol. 144. — P. 287−94.
  129. Klein, C. et al. Process outgrowth of oligodendrocytes is promoted by interaction of fyn kinase with the cytoskeletal protein tau / C. Klein, E.M. Kramer, A.M. Cardine, B. Schraven, R. Brandt, J. Trotter // J. Neurosci. 2002. — Vol. 22. -P. 698−707.
  130. Koh, T.W. Bellen, H.J. Synaptotagmin 1, Ca2+ sensor for neurotransmitter release / T.W. Koh, H.J. Bellen // TRENDS in Neuroscience. 2003. — Vol. 28. -№ 8.-P. 413−422.
  131. Koh, T.W. et al. Dapl60/intersectin acts as a stabilizing scaffold required for synaptic development and vesicle endocytosis / T.W. Koh, P. Vestreken, H.J. Bellen // Neuron. Vol. 43. — P. 193−205.
  132. Koziak, K. et al. Palmitoylation targets CD39/endothelialATP diphosphohydrolase to caveolae / K. Koziak, E. Kaczmarek, A. Kittel // J. Biol. Chem. 2000. — Vol. 275. — P. 2057−62.
  133. Kruth, H.S. Vaughan, M. Quantification of low density lipoprotein binding and cholesterol accumulation by single human fibroblasts using fluorescence microscopy / H.S. Kruth, M. Vaughan // J. Lipid Res. 1980. — Vol. 21. — P. 123−130.
  134. Kuromi, H. Exocytosis and endocytosis of synaptic vesicle and functional roles of vesicle pools: lessons from the Drosophila neuromuscular junction / H. Kuromi, Y. Kidukori // Neuroscientist. 2005. — Vol. 11, № 2. — P. 138 — 147.
  135. Kuromi, H. Selective replenish of vesicle pools depends on the source of Ca at the Drosophila synapse / H. Kuromi, Y. Kidokoro // Neuron. 2002. — Vol. 35. — P. 333−343.
  136. Kuromi, H. Two distinct pools of synaptic vesicles in single presynaptic boutons in temperature-sensitive Drosophila mutant, shibire / H. Kuromi, Y. Kidukori // Neuron. 1998. — Vol. 20. — P. 917−925.
  137. Lang, T. SNARE proteins and «membrane rafts / T. Lang // J. Physiol. 2007. -Vol. 585 — P. 693—698.
  138. Lang, T. et al. SNAREs are concentrated in cholesterol-dependent clusters that define docking and fusion sites for exocytosis / T. Lang, D. Bruns, D. Wenzel, D. Riedel, P. Holroyd, et al. // EMBO J. 2001. — Vol. 20. — P. 2202−2213.
  139. Lange, Y. Disposition of intracellular cholesterol in human fibroblasts / Y. Lange // J Lipid Res. 1991. — Vol. 32. — P. 329−39.
  140. Lange, Y. et al. Plasma membranes contain half the phospholipid and 90% of the cholesterol and sphingomyelin in cultured human fibroblasts / Y. Lange, M.H. Swaisgood, B.V. Ramos, T.L. Steck // J. Biol. Chem. 1989. — Vol. 264. — P.3786−93.
  141. Ledesma, M.D. et al. Neuronal polarity: essential role of protein-lipid complexes in axonal sorting / M.D. Ledesma, K. Simons, C.G. Dotti // Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 1998. — Vol. 95. — P. 3966−3971.
  142. Lee, E. De Camilli, P. Dynamin at actin tails / E. Lee, P. De Camilli // Proc. Natl. Acad. Science U.S.A. 2002. — Vol. 99. — P. 161−166.
  143. Legendre-Guillemin, V. ENTH/ANTH proteins and clathrin mediated membrane budding / V. Legendre-Guillemin, S. Wasiak, N.K. Hussain // J. Cell Sci. -2004.-Vol. 117.-P.9−18.
  144. Lenzi, D. Structure suggests function: the case for synaptic ribbons as exocytosis nanomachines / D. Lenzi, H. Gerdorff // Bioessays. 2001. — Vol. 23. — P. 831−840.
  145. Letinsky, M. S. Histological staining of preand postsynaptic components of amphibian neuromuscular junction / M. S. Letinsky, P. De Cino // J. Neurocytol. -1980.-Vol. 9.-P. 305−320.
  146. Levitan, E.S. et al., Imaging the Drosophila Neuromuscular Junction (NMJ): Basic Optical Principles and Equipment / E.S. Levitan, D. Shakiryanova // CSHL Press, Cold Spring Harbor, NY, USA. 2010. — Vol.10/ - 1101.
  147. Li L., Chin L.-S. The molecular machinery of synaptic vesicle exocytosis / L. Li, L.-S. Chin // CMLS, Cell. Mol. Life Sci. 2003. — Vol. 60. — P. 942−960.
  148. Linetti, A. Cholesterol reduction impairs exocytosis of synaptic vesicles / A. Linetti, A. Fratangelil, E. Taverna, P. Valnegri, M. Francolini, V. Cappello, M. Matteolil, M. Passafaro, P. Rosa // J. of Cell Science. 2009. — Vol. 123. — P. 595 605.
  149. Liscum, L. Munn, N.J. Intracellular cholesterol transport / L. Liscum, N.J. Munn // Biochim. Biophys. Acta. 1999. — Vol. 1438. -P. 19−37.
  150. Littleton, J.T. et al. SNARE-complex disassembly by NSF follows synaptic vesicle fusion / J.T. Littleton, R.J. Barnard, S.A. Titus, J. Slind, E.R. Chapman, B. Ganetzky // Proc. Natl. Acad. Science. 2001. — Vol.18. — P.12 233−12 238.170. Liu et al., 2009
  151. Llano, Let al. Presynaptic calcium stores underlie large- neuamplitude miniature IPSCs and spontaneous calcium transients / I. Llano, J. Gonzalez. C. Caputo, F.A. Lai, L.M. Blayney, Y.P. Tan, A. Marty // Nat. Neurosci. 2000. — Vol. 3, P. 12 561 265.
  152. Macler, J.M. et al. The C2B Ca2+ binding motif of synaptotagmin is required for synaptic transmission in vivo / J.M. Macler, J.A. Drummond, C.A. Loewen // Nature. -2002. Vol. 418. -№ 6895. — P. 340−344.
  153. Malacombe, M. Exocytosis in neuroendocrine cells: new tasks for actin / M. Malacombe, M.F. Bader, S. Gasman / Biochim Biophys Acta. 2006. — Vol. 1763. -P. 1175−1183.
  154. Marcus, J. et al. Sulfatide is essential for the maintenance of CNSmyelin and axon structure / J. Marcus, S. Honigbaum, S. Shroff, K. Honke, J. Rosenbluth, J.L. Dupree // Glia. 2006. — Vol. 53. — P. 372−81.
  155. Martelli, A.M. Rab3A and Rab 3D control the total granule number the fraction of granules docked at the plasma membrane in PC 12 cells / A.M. Martelli, G. Baldini, G. Tabellini // Traffic. 2000. — V.l. — P. 976−986.
  156. Martens, J.R. et al. Differential targeting of shaker-like potassium channels to lipid rafts / Martens, J.R. R. Navarro-Polanco, E. A. Coppock, A. Nishiyama, L. Parshley, T. D. Grobaski, M. M. Tamkun // J. Biol. Chem. 2000. — Vol. 275. — P. 7443−7446.
  157. Martin, T.F. PI (4,5)P2 regulation of surface membrane traffic / T.F. Martin // Curr. Opin. Cell Biol. -2001. Vol.13. — P. 493−499.
  158. Massol, R.H. et al. A burst of auxilin recruitment determines the onset of clathrin-coated vesicle uncoating / R.H. Massol, W. Boll, A.M. Griffin, T. Kirchhausen // Proc. Natl. Acad. Science. 2006. — Vol. 103. — P. 10 265−10 270.
  159. Mauch, D.H. CNS synaptogenesis promoted by glia-derived cholesterol / D.H. Mauch, K. Nagler, S. Schumacher, C. Goritz, E.C. Muller, A. Otto, F.W. Pfrieger // Science. 2001. — Vol. 294. — P. 1354−1357.
  160. Meimaridou, E. et al. From hatching to dispatching: the multiple cellular roles of the Hsp70 molecular chaperone machinery / E. Meimaridou, S.B. Gooljar, J.P. Chappie // J. Mol. Endocrinology. 2009. — Vol. 42. — P. 1−9.
  161. Meinrenken, C.J. Local routes revisited: the spase and time dependence of the Ca2+ signal for phasic transmitter release at the calyx of Held / C.J. Meinrenken, J.G. Borst, B. Sakmann, C.J. Meinrenken // J. Physiol. 2003. — Vol. 547. — P. 665−689.
  162. Meir, A. Ion channels in presynaptic nerve terminals and control of transmitter release / A. Meir, S. Ginsburg, A. Butkevich, S.G. Kachalsky, I. Kayserman, R.
  163. Ahdut, S. Demirgoren, R. Rahamimoff,// Physiol. Review. 1999. — Vol.79. — P. 1019−1088.
  164. Mellgren, R.L. Detergent-resistant membrane subtractions containing proteins of plasma membrane, mitochondrial, and internal membrane origins / R.L. Mellgren // J. Biochem. Biophys. Methods. 2008. — Vol.70. — P. 1029−36.
  165. Menon, K. et al. The myelin-axolemmal complex: Biochemical dissection and the role of galactosphingolipids / K. Menon, M.N. Rasband, C.M. Taylor, P. Brophy, R. Bansal, S.E. Pfeiffer // J. Neurochem. 2003. — Vol. 87. — P. 995−1009.
  166. Merrifield, C.J. Coupling between clathrin-coated-pits invagination, cortactin recruitment, and membrane scission observed in living cells / C.J. Merrifield, D. Perrais, D. Zenisek // Cell. 2005. — Vol. 121. — P. 593−606.
  167. Merrifield, C.J. et al. Imaging actin and dynamin recruitment during invagination of single clathrin-coated pits / C.J. Merrifield, M.E. Feldman, L. Wan, W. Aimers // Nat. Cell Biol. 2002. — Vol. 4. — P. 691−698.
  168. Michel, V. Bakovic, M. Lipid rafts in health and disease / V. Michel, M. Bakovic // Biol. Cell. 2007. — Vol. 99. — P. 129−40.
  169. Morales-Serna, J.A. et al. Recent advances in the glycosylation of sphingosines and ceramides / J.A. Morales-Serna, O. Boutureira, Y. Diaz, M.I. Matheu, S. Castillon // Carbohydr Res. 2007. — Vol.342. — P. 1595−612.
  170. Morell, P. Braun, P. Biosynthesis and metabolic degradation of sphingolipids not containing sialic acid / P. Morell, P. Braun // J. Lipid Res. 1972. — Vol.13. — P. 293−310.
  171. Morgan A. et al. Regulation of exocytosis by protein kinase C / A. Morgan, R.D. Burgoyne, J.W.J. Barclay et al. // Biochem. Soc. Tnans. 2005. — Vol. 33. — P. 13 411 344.
  172. Mousavi, S.A. et al. Clatrin-dependent endocytosis / S.A. Mousavi, L. Malerod, T. Berg, R. Kjeken // Biochem. J. 2004. — Vol. 2. — P. 240−250.
  173. Murthy, N.V. De Camilli, P. Cell biology of the presynaptic terminal / N.V. Murthy, P. De Camilli // Annu. Rev. Neuroscience. 2003. — Vol. 26. — P. 701−728.
  174. Murthy, N.Y. Cell Biology of the presynaptic terminal / N.Y.Murthy, P. De Camilli // ANNU. Rev. Neuroscience. 2003. — Vol. 26. — P. 701−728.
  175. Musacchio, A. et al. Functional organization of clatrin coats: combining alectron cryomicroscopy and X-ray crystallography / A. Musacchio, C.J. Smith, A.M. Roseman // Mol. Cell. 1999. — Vol. 3. — P. 761−770.
  176. Nichols, B.J. et al. Homotypic vacuolar fusion mediated by t- and v-SNAREs / B J. Nichols, C. Undermann, H.R. Pelham, W.T. Wickner, A. Haas // Nature. 1997. -Vol.387.-P. 199−202.
  177. Nishi, T. The vacuolar (H+)-ATP-ases -natures most versatile proton pumps / T. Nishi, M. Forgac // Nature Rev. Moll. Cell Biol. 2003. — V.3. — P. 94−103.
  178. Nonet, M.L. et al. UNC-11, a Caenorhabditis elegans API80 homologue, regulates the size and protein composition of synaptic vesicles / M.L. Nonet, A.M. Holgado, E. Brewer // Mol. Biol. Cell. 1999. — Vol. 10. — P. 2343−2360.
  179. Nossal, R. Assembly of clatrin basket / R. Nossal // Macromolecular Symposium. -2005. Vol. 219. — P. 1−8.
  180. Nunes, P. et al. Synaptic vesicle mobility and presynaptic F-actin are disrupted in a N-ethylmaleimide-sensitive factor allele of Drosofila / P. Nunes, N. Haines, V. Kuppuswamy // Mol. Biol. Of the Cell. 2006. — Vol. 17. — P. 4709−4719.
  181. Ohvo-Rekila, H. et. al. Cholesterol interactions with phospholipids in membranes / H. Ohvo-Rekila, B. Ramstedt, P. Leppimaki, J.P. Slotte // Prog. Lipid Res. 2002. — Vol. 41. — P. 66−97.
  182. Okamoto, M. Sudnof, T.C. Mints, Munc 18- interacting proteins in synaptic vesicles exocytosis / M. Okamoto, T.C. Sudnof// J. Biol. Chem. 1997, Vol. 272. -P. 31 459−31 464.
  183. Owen, D.M. et al. Optical techniques for imaging membrane lipid microdomains in living cells / D.M. Owen, M.A. Neil, P.M.W. French, A.I. Magee // Seminars in Cell and Development Biology. 2007. — Vol. 18. — P. 591−598.
  184. Patel, H.H. et al. Caveolae as organizers of pharmacologically relevant signal transduction molecules / H.H. Patel, F. Murray, P.A. Insel // Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol. Vol.48. — 2008. P. 359−391.
  185. Paulick, M.G., Bertozzi, C.R. The glycosylphosphatidylinositol anchor: a complex membrane-anchoring structure for proteins / M.G. Paulick, C.R. Bertozzi // Biochemistry. 2008. — Vol. 47. — P. 6991−7000.
  186. Pearse, B.M. et al. Clatrin coat construction in endocytosis / B.M. Pearse, C.J. Smith, D.J. Owen // Curr. Opin. Structure Biology. 2000. — Vol. 10. — P.220−228.
  187. Pechlivanis, M., Kuhlmann, J. Hydrophobic modifications of ras proteins by isoprenoid groups and fatty acids—more than justmembrane anchoring / M. Pechlivanis, J. Kuhlmann // Biochim. Biophys. Acta. 2006. — Vol. 1764. — P. 191 431.
  188. Peper, K. Distribution of achetilcholine receptor in the vinicity of nerve terminals on skeletal muscle of the frog / K. Peper, U. J. McMahan // Proc. Roy. Soc. Lond. 1972. — Vol. B181. -P. 431−440.
  189. Pfrieger, F.W. Role of cholesterol in synapse formation and function / F.W. Pfrieger//Biochim. Biophys. Acta. -2003. Vol. 1610. — P. 271−280.
  190. Phillips, G.R. The presynaptic particle web: ultrastructure, composition, dissolution, and reconstitutions / G.R. Phillips // Neuron. 2001. — Vol.32. — P. 6367.
  191. Pike, L.J. Growth factor receptors, lipid rafts and caveolae: an evolving story / Pike, L.J. // Biochim. Biophys. Acta. 2005. — Vol. 1746. — P. 260−273.
  192. Pike, L.J. Raft defined: a report on the Keystone symposium on lipid raft and cellular function / L.J. Pike // J. Lipid Res. 2006. — Vol.47. — P. 1597−1598.
  193. Poveda, J.A., et al. Protein-promoted membrane domains / J.A. Poveda, A.M. Fernandez, J.A. Encinar, J.M. Gonzalez-Ros // Biochim Biophys Acta. 2008. — Vol. 1778.-P. 1583−90.
  194. Provitera, P. et al. The effect of HIV-1 gag myristoylation on membrane binding / P. Provitera, R. El-Maghrabi, S. Scarlata // Biophys. Chem. 2006. — Vol. 119. — P. 23−32.
  195. Rao, M. Sarasij, R.C. Active fusion and fission processes on a fluid membrane / M. Rao, R.C. Sarasij // Phys. Rev. Lett. 2001. — Vol. 87. — P. 128 101.
  196. Rapoport, I. et al. A motif in the clathrin heavy chain required for the Hsc70/auxilin uncoating reaction / I. Rapoport, W. Boll, A. Yu, T. Bucking, T.A. Kirchhausen // Mol Biol. Cell. 2008. — Vol. 19. — P. 405−413.
  197. Rhee, J.S. et al. Phorbol ester- and diacylglycerol-induced augmentation of transmitter release is medited by Munc 13 and not by PKCs /J.S. Rhee, A. Betz, S. Pyoot//Cell.-2002.-Vol. 108.-P. 121−133.
  198. Richards, D. A., et al. Two endocytic recycling routes selectively fill two vesicle pools in frog motor nerve terminal / D.A. Richards, C. Guatimosim, W.J. Betz // Neuron. 2000. — Vol. 27. — P. 551−559.
  199. Richards, D.A. et al. Effects of wortmannin and lantrunculin A on slow endocytosis at the frog neuromuscular junction / D.A. Richards, S.O. Rizzoli, W.J. Betz // J. Physiol. 2004. — Vol. 557, № 1. — P.77−91.
  200. Richards, D.A. et al. Two endocytic recycling routes selectively fill two vesicle pools in frog motor nerve terminal / D.A. Richards, C. Guatimosim, W.J. Betz // Neuron. 2000. — Vol. 27. — P. 551−559.
  201. Richards, D.A. Synaptic vesicle pools at the frog neuromuscular junction / D.A. Richards, C. Guatimosim, S.O. Rizzoli, W.J. Betz // Neuron. 2003. — Vol.39. — P. 529−541.
  202. Rickman, C. Functionally and spatially distinct modes of Munc-18-syntaxin 1 interaction / C. Rickman, C.N. Medine, A. Bergman, R.R. Duncan // J. Biol. Chemestry. 2007. — Vol. 282. — № 16. — P. 12 097−12 103.
  203. Rizzoli, S.O. Betz, W.J. Synaptic vesicle pools / S.O. Rizzoli, W.J. Betz // Nature rev. Neurosci. 2005. — Vol. 6. — P. 57−69.
  204. Rizzoli, S.O. Effects of 2-(4-morpholinyl)-4H-lbenzopyran-4-one on synaptic vesicle cycling at the frog neuromuscular junction / S.O. Rizzoli, W.J. Betz // J. Neurosci. 2002. — Vol. 22. — P. 10 680−10 689.
  205. Rizzoli, S.O. The structural organization of the readily releasable pool of synaptic vesicle / S.O. Rizzoli, W.J. Betz // Science. 2004. — Vol. 303. — P. 20 372 039.
  206. Robertson, M.S. Adaptable adaptors for coated vesicles /M.S. Robertson // TRENDS in Cell Biol. 2004. — Vol. 14, № 4. — P. 167−174.
  207. Robertson, J.D. The ultrastructure of reptilian myoneural junction / J.D. Robertson // Ann. Rev. Biochem. 1983. — Vol. 52. — P. 871−926.
  208. Rohrbough, J. et al. Ceramidase regulates eynaptic vesicle exocytosis and trafficking / J. Rohrbough, E. Rushton, L. Palanker, E. Woodruff, H. J. G. Matthies, U. Acharya, K. J. Acharya, K. J. Broadie // Neurosci. 2004. — Vol. 24. — P. 7789— 7803.
  209. Rohrbough, J., Broadie, K. Lipid regulation of the synaptic vesicle cycle/ J. Rohrbough, K. Broadie // Nature rev. Neoroscience. 2005. — Vol.6. — P. 139−150.
  210. Rosa, P. Fratangeli, A. Cholesterol and synaptic vesicle exocytosis/ P. Rosa, A. Fratangeli // Commun. Integr. Biol. 2010. -Vol. 3. — P. 352−353.
  211. Ross-Canada, G. Synaptic vesicles and nerve-musle preparation in resinless section / G. Ross-Canada, R.P. Becker, G. Pappas // J. Neurocyt. 1983. — Vol.12 -P. 817−830.
  212. Royle, S.J. Lagnado, L. Endocytosis at the synaptic terminal / S.J. Royle, L. Lagnado // J. Physiology. 2003. — Vol. 553. — P. 345−355.
  213. Sabatini, B.L., Regehr W.G. Timing of neurotransmission at fast synapses in the mammalian brain / B.L.Sabatini, W.G. Regehr // Nature. 1996. — Vol. 384. — P. 170−172.
  214. Salaun, C. et al. Lipid rafts and the regulation of exocytosis / C. Salaun, D.J. James, L.H. Chamberlain // Traffic. 2004. — Vol. 5. — P. 255−264.
  215. Samsonov, M. et al. Characterization of cholesterol-sphingomyelin domains and their dynamics in bilayer membranes / A. V. Samsonov, I. Mihalyov, F. S. Cohen // -2001. Biophys. J.-Vol. 81.-P. 1486−1500.
  216. Sankaranarayanan, S. Actin has a molecular scaffolding, not propulsive role in presynaptic function / S. Sankaranarayanan, P.P. Atluri, T.A. Ryan // Nature Neurosci. 2003. — Vol. 6. — P. 127−135.
  217. Sara, Y. An Isolated pool of vesicle recycles at rest and drives spontaneous neurotransmission / Y. Sara, T. Virmani, F. Deak, X. Liu et al // Neuron. 2005. -Vol. 45.-P. 563−573.
  218. Schafer, D.P. Rasband, M.N. Glial regulation of the axonal membrane at nodes of ranvier / D.P. Schafer, M.N. Rasband // Curr. Opin. Neurobiol. 2006. — Vol. 16. -P. 508−14.
  219. Schaub, J.R. Hemifusion arrest by complexin is relieved by Ca2±synaptotagmin 1 / J.R. Schaub, X. Lu, B. Shin // Nat. Struct. Mol. Biol. 2006. — Vol. 13.-P. 748−750.
  220. Scheiffele, P. et al. Interaction of influenza virus haemagglutinin with sphingolipid-cholesterol membrane domains via its transmembrane domain / P. Scheiffele, M.G. Roth, K. Simons // EMBO J. 1997. — Vol. 16. — P. 5501−8.
  221. Schmid S.L. et al. A role for clathrin light chains in the recognition of clathrin cages by «uncoating ATPase» / S.L. Schmid, W.A. Braell, D.M. Schlossman, J.E. Rothman // Nature. 1984.—Vol. 311. — P. 228−231.
  222. Schmidt, A.A. et al. Membrane transport: the making of a vesicle / A.A. Schmidt // Nature (London). 2002 — Vol. 419. — P.347−349.
  223. Schoch, S., Gundelfinger, E. D. Molecular organization of the presynaptic active zone / S. Schoch, E. D. Gundelfinger // Cell Tissue Res. 2006. — Vol. 326. — P. 379 391.
  224. Schooch, S. et. al. SNARE function analyzed in synaptobrevin/VAMP knockout mice / S. Schoch, F. Deak, A. Konigstorfer et al. // Science. 2001. — Vol. 294. — P. 1117−1122.
  225. Sharma, P. et al. Endocytosis of lipid rafts: an identity crisis / P. Sharma, S. Sabharanjak, S. Mayor // Semin. Cell Dev. Biol. 2002. — Vol. 13. — P. 205−214.
  226. Shen, J. Selective activation of cognate SNARE pins by Secl/Muncl8 proteins / J. Shen, D.C. Tareste, F. Paumet // Cell. 2007. — Vol.3. — P. 183−195.
  227. Sheng, Z.H. Identification of a syntaxin-binding site on N-type calcium channels / Z.H. Sheng, J. Retting, M. Takahashi, W.A. Catterall // Neuron. 1994. — Vol.13. -P. 1303−1313.
  228. Shin, O.H. et al. Binding to the Ca2±binding site of the synaptotagmin 1 C2B domain triggers fast exocytosis without stimulating SNARE interactions / O.H. Shin, J.S. Rhee, J. Tang // Neuron. 2003. — V. 37. — P. 99−108.
  229. Simons, K. Toomre, D. Lipid rafts and signal transduction / K. Simons, D. Toomre // Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 2000. — Vol. 1. — P. 31−9.
  230. Slater, C.R. Sctructural factors influencing the efficacy of neuromuslular transmission / C.R. Slater // Ann. N Y Acad. Sciense. 2008. — Vol. 1132. — P. 1−12.
  231. Slepnev, V.I. De Camilli, P. Accessory factors in clatrin-dependent synaptic vesicle endocytosis / V.I. Slepnev, P. De Camilli // Nat. Rev. Neuroscience. 2000. -Vol.1.-P. 161−172.
  232. Sollner, T.A. Protein assembly-disassembly pathway in vitro that may correspond to sequental steps of synaptic vesicle doking, activation, and fusion / T.A. Sollner, M.K. Bennett, S.W. Whiteheart // Cell. 1993. — Vol. 75. — P. 409−418.
  233. Somanath S. et al. High extracellular glucose inhibits exocytosis through disruption of syntaxin lA-containing lipid rafts / S. Somanath, S. Barg, C. Marshall, C.J. Silwood, M.D. Turner // Biochem Biophys Res Commun. 2009. — Vol. 389. -P. 241−246.
  234. Sonnino, S. Prinetti, A. Sphingolipids and membrane environments for caveolin / S. Sonnino, A. Prinetti // FEBS Letters. 2009. — Vol. 583. — P.597−606.
  235. Sorensen, J.B. et al. Examining synaptotagmin 1 function in dense core vesicle exocytosis under direct control of Ca2+ / J.B. Sorensen, F.R. Chacon, T.C. Sudnof, E. Neher // J. Gen. Physiology. 2003. — Vol. 122. — P. 165−276.
  236. Sprong, H. et al. How proteins move lipids and lipids move proteins / H. Sprong, P. van der Sluijs, G. van Meer // Nature reviews. Molecular cell biology. -2001.-Vol. 2. -P.504−513.
  237. Stevens, C.F., Sullivan, J.M. The synaptotagmin C2A domain in part of the calcium sensor controlling fast synaptic transmission / C.F. Stevens, J.M. Sullivan // Neuron. 2003. — Vol.39. — № 2. — P. 299−308.
  238. Subtil, A. Acute cholesterol depletion inhibits clathrin-coated pit budding / A. Subtil, I. Gaidarov, K. Kobylarz et al. // Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 1999. — Vol. 96.-P. 6775−6780.
  239. Sudhof, T.C., Rizo J. Synaptic Vesicle Exocytosis / T.C. Siidhof, J. Rizo // Cold Spring Harbor Persp. In Biology. 2011. — Vol. 3.
  240. Sudnof, T.C. Synaptotagmins- why so many? / T.C. Sudnof // J. Biol. Chem. -2002. Vol.277. — № 10. — P.7629−7629.
  241. Sudnof, T.C. The synaptic vesicle cycle / T.C. Sudnof // Annu. Rev. Neuroscience. 2004. — Vol. 27. — P. 509−547.
  242. Takamori, S. Molecular anatomy of a trafficking organelle /S. Takamori, M. Holt, K. Stenius et al. // Cell. 2006. — Vol. 127. — P. 831−846.
  243. Takei, K. et al. Functional partnership between amphyphysin and dynamin in clathrin-mediated endocytosis / K. Takei, V.I. Slepnev, V. Haucke, P. De Camilli // Nature Cell Biology. 1999. — Vol. 1. — P. 33−39.
  244. Tang, J. A complexin/ synaptotacmin 1 switch controls fast synaptic vesicle exocytosis / J. Tang, A. Maximov, O. Schin, // Cell. 2006. — Vol. 126. — P. 11 751 187.
  245. Takai-Rikitsu E. Physical and functional interaction of the active zone proteins, CAST, RIM1, and Basson, in neurotransmitter release / E. Takai-Rikitsu, S. Mochida, E. Inoue etal. //J. Cell. Biol. 2004. — Vol. 164. -P.301−311.
  246. Tao-Cheng J.H. Activity-related redistribution of presynaptic proteins at the active zone / J.H. Tao-Cheng // Neuroscience. 2006. — Vol. 141. — P. 1217−1224.
  247. Taverna, E. et al. Role of lipid microdomains in P/Q -type Ca2+ channel (Cav2.1) clustering and function in presynaptic membranes / E. Taverna, E. Saba, J.
  248. Rowe, M. Francolini, F. Clementi, P. Rosa // J. Biol. Chem. 2004. — Vol. 279. — P. 5127−5134.
  249. Thiele, C. Cholesterol binds to synaptophysin and is required for biogenesis of synaptic vesicles / C. Thiele, M.J. Hannah, F. Fahrenholz, W.B. Huttner // Nat. Cell Biol. 2000. — Vol.2. — P. 42−49.
  250. Thomas, C.M. Smart, E.J. Caveolae structure and function / C.M. Thomas, E.J. Smart // J. Cell Mol. Med. 2008. — Vol. 12. — P. 796−809.
  251. Tong, J. et al. A scissors mechanism for stimulation of SNARE-mediated lipid mixing by cholesterol / J. Tong, P.P. Borbat, J.H. Freed, Y-K. Shin // PNAS. 2009.- early editor. P. 1−6.
  252. Toonen, R.F. Dissecting docking and tethering of secretory vesicles at the target membrane / R.F. Toonen, O. Kochubey, H. de Wit // EMBO J. 2006. — Vol. 25 — P. 3725−3737.
  253. Tsien, R.Y. A non-disruptive technique for loading calcium buffers and indicators into cells /R.Y. Tsien//Nature. 1981. -V. 290. № 580. -P. 527−528.
  254. Tsui-Pierchala B.A. et al. Lipid rafts in neuronal signaling and function / B.A. Tsui-Pierchala, M Encinas, J. Milbrandt, M. Johnson // TRENDS in Neutosci. -2002. Vol. 25, № 8.-P.412−417.
  255. Van Blitterswijk, W.J. et al. Ceramide: second messenger or modulator of membrane structure and dynamics? / W.J. Van Blitterswijk, A.H. van der Luit, R.J. Veldman // Biochem. J. 2003. — Vol. 369. — P. 199−211.
  256. Vance, J.E. Lipid dynamics in neuron / J.E. Vance, B. Karten, H. Hayashi // Biochem. Soc. Transactions. 2006. — Vol. 34, № 3. — P.399−403.
  257. Van Meer, G. Lipid traffic in animal cells / G. Van Meer //Annu. Rev. Cell Biol.- 1989.-Vol. 5.-P. 247−75.
  258. Vassilieva, E.V. et al. Flotillin-1 stabilizes caveolin-1 in intestinal epithelial cells / E.V. Vassilieva, A.I. Ivanov, A. Nusrat // Biochem. Biophys. Res. Commun. -2009.-Vol. 379.-P. 460−5.
  259. Verstreken P. et al. Endophilin mutations block clathrin-mediated endocytosis but not neurotransmitter release / P. Verstreken, O. Kjaerulff, T.E. Lloyd et al. // Cell. -2002.-Vol. 109.-P.101−112.
  260. Verstreken P. et al. Synaptojanin is recruited by endophilin to promote synaptic vesicle uncoating / P. Verstreken, T.W. Koh, K.L. Schulze et al. // Neuron. 2003. -Vol. 40. — P.733−748.
  261. Verstreken P. et al. Synaptic mitochondria are critical for mobilization of reserve pool vesicles at Drosophila neuromuscular junction / P. Verstreken, C.V. Ly, K.J.T. Venken, et al. // Neuron. 2005. — Vol. 47. — P.365−378.
  262. Vetrivel, K. S. et al. Alzheimer disease abeta production in the absence of S-palmitoylation-dependent targeting of BACE1 to lipid rafts / K.S. Vetrivel, X. Meckler, Y. Chen, et al. // J. Biol. Chem. 2009. — Vol. 284. — P. 3793−803.
  263. Wang Y. et al., A family of RIM-binding proteins regulated by altenative splicing: implicationsfor the genesis of synaptic active zones / Y. Wang, X. Liu, T. Biederer, T.C. Sudnof // Proc. Natl. Acad. Science. 2002. — Vol. 99. — P. 1 446 414 469
  264. Wang, Y. RIM: a putative Rab3a-effector in regulating synaptic vesicle fusion / Y. Wang, M. Okamoto, F. Schmitz // Nature. 1997. — Vol. 388. -P. 593−598.
  265. Wasser, C. R. et al."Cholesterol-dependent balance between evoked and spontaneous synaptic vesicle recycling / C. R. Wasser, M. Ertunc, X. Liu, E. T Kavalali // J. Physiol. 2007. — Vol. 579. — P. 413−429.
  266. Washbourne P. Genetic ablation on the t-SNARE SNAP-25 distinguishes mechanism of neuroexocytosis / P. Washbourne, P.M. Thompson, M. Carts et al. // Nat. Neurosci. 2002. — Vol. 5. — P. 19−26.
  267. Weimer, M.R. Jorgensen, E.M. Controversies in synaptic vesicle exocytosis / M.R. Weimer, E.M. Jorgensen//J. Cell Science. -2003. Vol. 116. P. 3661−3666.
  268. Wenk, M.R., De Camilli, P. Protein-lipid intecractions and phosphoinositide metabolism in membrane traffic: insight from vesicle recycling in nerve terminals / M.R. Wenk, P. De Camilli // PNAS. 2004. — Vol.101. — P. 8262−8269.
  269. Wood, W. G. Cholesterol oxidation reduces Ca (2+)+MG (2+)-ATPase activity, interdigitation, and increases fluidity of brain synaptic plasma membranes / Igbavboa U., A. M. Rao, F. Schroeder, N. A. Avdulov // Brain Research. 1995. — Vol. 683 -P. 36−42.
  270. Wu, X. et al. Clathrin exchange during clatrin-mediated endocytosis / X. Wu, X. Zhao, L. Baylor // J. Cell Biology. 2001. — Vol. 155. P. 291−300.
  271. Wucherpfennig, T. Role of Drosophila Rab5 during endosomal trafficking at the synapse and evoked transmitter release / T. Wucherpfennig, M. W. Brauninger, M. G. Gaitan // J. Cell. Biol. 2003. — Vol. 161.- P.609−624.
  272. Xu, J. London, E. The effect of sterol structure on membrane lipid domains reveals how cholesterol can induce lipid domain formation / J. Xu, E. London // Biochemistry. 2000. — Vol. 39. — P. 843−849.
  273. Xue J., Septin 3 (G-septin) is a developmentally regulated phosphoprotein122enriched in presynaptic nerve terminals / J. Xue, C.W. Tsang, W.P. Gai et al. // J. Neurochem. 2004. — Vol. 91. — P.579−590.
  274. Yamamoto, M. et al. Caveolin is an activator of insulin receptor signaling / M. Yamamoto, Y. Toya, C. Schwencke, M. P. Lisanti, G. Martin Jr. Myers, Y. Ishikawa // J. Biol. Chem. 1998. — Vol. 273. — P. 26 962−26 968.
  275. Yarar, D. et al. Dynamic actincytoskeleton functions at multiple stage of clathrin-mediatwed endocytosis / D. Yarar, C.M. Waterman-Storee, S.L. Schmid //Mol. Biol. Cell. 2005. — Vol. 16. — P. 964−975.
  276. Ybe, J.A. et al. Clatrin self-assembly is mediated by a tandemly repeated superhelix / J.A. Ybe, F.M. Brodsky, K. Hofman // Nature. 1999. — Vol. 399. — P. 371−375.
  277. Yeagle, P.L. Cholesterol and the cell membrane / P.L. Yeagle // Biochim. Biophys. Acta. 1985.- Vol. 822. — P. 267−287.
  278. Young, J.C. More than folding: localized functions of cytosolic chaperones / J.C. Young, J.M. Barral, U. Hartl //TRENDS Biochem. Sci. 2003. — Vol. 28, № 10. -P.541−547.
  279. Zamir, O. Charlton, M. P. Cholesterol and synaptic transmitter release at crayfish / O. Zamir, M. P. Charlton / J Physiol. 2006. — Vol.571. — P. 83−99.
  280. Zefirov, A.L. The role of intra & extracellular cakcium in recycling of synaptic vesicle at frog motor nerve endings / A. L. Zefirov, M. M. Abdrakhmanov, M.A. Mukhamedyarov, P. N. Grigoryev // Neurosci. 2006. — Vol. 143. — P. 905−910.
  281. Zefirov, A.L.et al. Differences of spontaneous and evoked monoquantal signals in neuromuscular synapse of frog / A.L. Zefirov, A.I. Skorinkin, P.N. Hafizov, P.N. Grigoriev, M.G. Minlebaev // Neurophysiology. 2002. — Vol. 34. — P. 276−278.
  282. Zhai, R.G. The architecture of the active zone in presynaptic nerve terminal / R.G. Zhai, H.J. Bellen // J. Physiology. 2004. — Vol. 19. — P.262−270.
  283. Zhang, E.M. Effects of phorbol ester on vesicle dynamics as revealed by total internal reflection fluorescence microscopy / E.M. Zhang, R.H. Xue, J. Soo, P. Chen // Pflugers Arch. 2008. — Vol. 457. — P. 211−222.
  284. Zhang, J. et al. Roles of Cholesterol in Vesicle Fusion and Motion / J. Zhang, R. Xue, W.-Y. Ong, P. Chen // Biophysical Journal. 2009. — Vol. 97. — Issue 5. — P. 1371−1380.
  285. Zhang, L. et al. Recombinant scinderin enhances exocytosis, an effect blocked by two scinderin-derived actin-binding peptides and PIP2 / L. Zhang, M.G. Marcu, Nau- K. Staudt // Neuron. 1996 — Vol. 17. — P. 287−296.
  286. Zidovetzki, R. Levitan, I. Biochim Biophys Acta. 2007 June- 1768(6): 13 111 324.
  287. Zimmerberg, J. Membrane fusion / J. Zimmerberg, L.V. Chernomordik // Adv. Drug Deliv. Rev. 1999. — Vol.38. — P. 197−205.
  288. Zimmerberg, J. How proteins produce cellular membrane curvative / J. Zimmerberg, M.M. Kozlov // Nature rev. 2006. — Vol. 7. — P.9−19.
  289. Zitman, F.M. et al. Total ganglioside ablation at mouse motor nerve terminals after neurotransmitter release leveal / F.M. Zitman, B. Todorov, K. Furukawa, H.J. Willison, J.J. Plomp // Synapse. 2010. — Vol.64. — P.335−338.
  290. Zucker, R. S., Regehr, W.G. Short-term synaptic plasticity / R. S. Zucker, W.G. Regehr // Annu. Rev. Physiology. 2002. — Vol. 64. — P. 35505.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!