Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Изучение роли ауксина и ионов кальция в регуляции полярного роста и морфогенеза растений

Диссертация: Изучение роли ауксина и ионов кальция в регуляции полярного роста и морфогенеза растений
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Известно, что поляризация клеточных структур в ходе ростовых реакций формируется за счет установления внутриклеточных градиентов ионов Ca, которые, в свою очередь, создаются в результате неравномерной проницаемости мембран клетки для ионов Са2+ (Roux, 1990; Маркова, 1990; Pickard, Ding, 1993; Медведев, 1996). Потоки кальция через мембраны обеспечиваются функционированием различных транспортных… Читать ещё >

Содержание

  • I. Введение
  • II. Обзор литературы
  • 1. Генетический контроль полярного роста и морфогенеза растений
    • 1. 1. Эмбриогенез
    • 1. 2. Развитие корня
    • 1. 3. Развитие меристемы побега
    • 1. 4. Развитие листа
    • 1. 5. Индукция цветения
    • 1. 6. Развитие меристемы соцветия
    • 1. 7. Развитие цветка
  • 2. Роль ИУК в регуляции процессов роста и развития растений
    • 2. 1. Ауксин-связываюгцие белки
    • 2. 2. Ауксин-регулируемые гены
    • 2. 3. Трансдукция ауксинового сигнала
    • 2. 4. Полярный транспорт ауксина
    • 2. 5. Роль ИУК в регуляции морфогенеза
    • 2. 6. Гравитропическая реакция растений
  • 3. Полярный рост клеток растений
    • 3. 1. Клетки с монополярным и биполярнын^типом роста
    • 3. 2. Мутации, приводящие к нарушению монополярного роста клеток
    • 3. 3. Взаимодействие пыльцы и рыльца в фюцёссе полярного роста пыльцевой трубки
      • 3. 3. 1. Система самонесовместимости у растений
      • 3. 3. 2. Формирование клеточный стенок в растущей пыльцевой трубке
      • 3. 3. 3. Роль цитоскелета в полярном росте пыльцевой трубки
      • 3. 3. 4. Участие протеинкиназншх реакции в прорастании пыльцы
      • 3. 3. 5. Факторы прорастания и роста пыльцевой трубки. 3.3.6. Роль ионов Са2+в регуляции роста пыльцевых трубок
  • Цель и задачи исследования
  • III. Объекты исследований
  • 1. Микропобеги вишни
  • 2. Растения арабидопсиса
  • 3. Пыльцевые трубки ржи
  • IV. Методы исследований
  • 1. Культивирование микропобегов вишни в культуре in vitro
  • 2. Выращивание растений арабидопсиса и каллусной культуры
  • 3. Подготовка растительного материала для анализа ауксина
  • 4. Экстракция и определение ауксина
  • 5. Гравитропическая реакция
  • 6. Рост пыльцевых трубок в системе in vitro
  • 7. Рост пыльцевых трубок в тканях рыльца в системе опыления in situ
  • 8. Определение общего содержания кальция в растительном материала
  • 9. Математическая обработка данных
  • V. Результаты и обсуждение
  • 1. Роль ИУК в индукции ризогенеза у микропобегов вишни in vitro
    • 1. 1. Рост и развитие микропобегов вишни
    • 1. 2. Измерение уровня активной формы ИУК в микропобегах вишни
  • 2. Участие ИУК в регуляции роста и развития соцветий у арабидопсиса и органогенеза в культуре ткани
    • 2. 1. Измерение уровня активной формы ИУК
    • 2. 2. Транспорт ИУК в отрезках цветоносов арабидопсиса
    • 2. 3. Действие регуляторов роста на содержание ИУК в каллусной культуре арабидопсиса
    • 2. 4. Изучение гравитропической реакции отрезков цветоносов Dj и мутантов abr
  • 3. Участие Са2± транспортирующих систем в регуляции полярного роста пыльцевой трубки растений ржи
    • 3. 1. Регуляция роста изолированных пыльцевых трубок в системе in vitro.1 СЮ
    • 3. 2. Контроль роста пыльцевых трубок в системе «пыльца-рыльце».Ы

Изучение роли ауксина и ионов кальция в регуляции полярного роста и морфогенеза растений (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Полярность представляет собой сложное явление, которое тесно связано с процессами роста и развития растительного организма. Полярность подразделяют на несколько составляющих, в которых прослеживается участие различных систем регуляции ростовых процессов в растениях (Синнот, 1963). Во-первых, это явление пространственной ориентации, которое обнаруживается в процессе дифференциации тканей и начинается с асимметричных делений стволовых клеток меристем, позволяющих как поддерживать меристемы в эмбриональном состоянии в течение всего онтогенеза, так и формироваться недостающему или утраченному участку ткани или органа растения. Направление ориентации роста и плоскостей клеточных делений может меняться под действием внешних факторов и структурно закрепляться с помощью целого каскада процессов системы сигнальной трансдукции.

Во-вторых, полярность у растений может проявляться как аксиальностьвозникновение оси симметрии, относительно которой происходит развитие организма. Причем ось всего организма является интегральным показателем и отражает преимущественное направление роста каждой клетки организма, так как поляризация ткани обусловлена полярностью отдельной клетки («Bentrup, 1984). Плоскость симметрии обычно совпадает с направлением ориентации роста. Изменяя внешние условия можно достичь формирования новой оси симметрии растения. При этом у оси подразумевается наличие двух, диаметрально расположенных койцов, которые обусловливают понятие биполярности оси. ^.

Известно, например, что у большинства растительных объектов формируется биполярный зародыш, так как ткани материнского растения, в которых развивается яйцеклетка, поляризованы вдоль микропиле^халазальной оси. Яйцеклетка и синергиды располагаются вблизи микропиле, а клетки-антиподы находятся у халазального полюса (Подцубная-Арнольди, 1964; Полевой, Салйматова, 1991). Поляризация является основой и для всех последующих этапов эмбриогенеза, поэтому при поперечном делении поляризованной зиготы образующиеся клетки зародыша имеют цитоплазму с различным составом органелл. Показано, например, что у злаков существует жесткая поляризация формирующегося эмбриона, поскольку семязачаток и зародышевый мешок исходно асимметричны, биполярны (Батыгина, 1987, 1993; Эзау, 1980). Однако у ряда растений (лотос, орхидные, паразитные растения и др.) в процессе эволюции в эмбриогенезе может происходить утрата «первичной» биполярности и переход к монополярности (Батыгина, 1993). При дальнейшем развитии этих структур возникает вторичная биполярность, но уже на другой основе, в процессе формирования адвентивных структур. Поэтому целостная картина морфогенеза может быть получена только при анализе всего цикла развития, включающего как раннюю полярную дифференциацию, так и последующие морфологические изменения вдоль главной оси организма (Медведев, 1997).

В-третьих, у полярно растущего растительного организма появляются полярные различия, которые отражают разницу между концами оси. Эта характеристика является наиболее существенной, так как обусловливает установление морфологических и физиологических градиентов между концами оси, и способствует развитию сложных форм растительных организмов.

Соотношение между этими тремя составляющими явления полярности определяет направление роста и развития растения. Полагают, что элементы полярности составляют последовательный ряд в филогенезе или онтогенезе, указывая на то, как увеличивается сложность полярности и организации растения. Сторонники теории С.М. Child (1941) считают, что в основе происхождения полярности организма лежат градиенты, индуцированные в результате действия факторов окружающей среды, которые определяют как направление оси, так и разницу между полюсами (Медведев, 1996).

Формирование оси полярности будущего организма происходит на самых ранних этапах его развития, так как уже на стадии зиготы регистрируются градиенты структурной организации клетки. У растений в образовании функциональных градиентов принимают участие различные по природе вещества и соединения.

У растений, как и у животных, генетический контроль развития осуществляется за счет существования определенной группы генов, продукты которых являются транскрипционными факторами. Экспрессия таких генов регулируется различными внешними и внутренними сигналами, что определяет смену этапов онтогенеза (Haughn е.а., 1995). В свою очередь, транскрипционные факторы активируют экспрессию следующего класса генов, контролирующих развитие отдельных органов и тканей. Поэтому, последовательность инициации программ деления и дифференциации клеток определяется каскадом включения генов и работы факторов транскрипции, которая может быть представлена как градиент активности генов (Альберте и др., 1994).

Гормональная теория морфогенеза предусматривает возможность создания специфических гормональных градиентов, решающая роль в их формировании отводится направленному транспорту гормонов из места синтеза (Уоринг, Филлипс, 1984). Из известных фитогормонов особое внимание уделяется индолилуксусной кислоте (ИУК), так как этот гормон способен к активному транспорту, когда другие гормоны передвигаются в основном с флоэмным или ксилемным потоками. Базипетальное перемещение ауксина вдоль оси растения приводит к активному формированию градиентов этого гормона, что служит важнейшим фактором морфогенеза (Полевой, 1982; 1986,1989).

Позиционная информация, закрепленная в каждой точке растительного организма, поддерживается с помощью дифференциальной активности генома и тканеспецифичной экспрессией определенных генов (Альберте и др., 1994). Поэтому, системы, ответственные за процессы поляризации и полярного роста находятся под контролем генома. Однако до сих пор остаются непонятными механизмы индукции тканеспецифичной экспрессии генов, регулирующих пролиферацию клеток, дифференциацию тканей и запускающих программы развития отдельных органов. Исходя из этого, нами была подобрана экспериментальная модель — мутант арабидопсиса, у которого имеются нарушения в формирования соцветия (Ежова и др., 1997).

Транспорт растительных гормонов является физиологическим проявлением электрической поляризации, которая регистрируется у растений уже на стадии эмбриогенеза (Медведев, 1996). В литературе имеется множество примеров, как у растений, так и у животных, демонстрирующих возникновение электрических токов в органах и тканях с интенсивным метаболизмом, например, меристемы у растений (Jaffe, Nuccitelli, 1977; Bentrup, 1984). ^.

Электрическая поляризация клеток связана с локальным увеличением проницаемости их мембран для ионов Са2+. Следствием этих процессов является локальная деполяризация плазмалеммы и создания электрического поля, возникающего из-за связывания ионами Са2+ отрицательных зарядов цитоплазмы. В клетках с полярным Л типом роста (пыльцевые трубки, корневые волоски, гифй грибов) также удается зарегистрировать градиент ионов кальция с максимумом концентрации в апексе клетки с.

Reiss, Herth, 1985).

В ответ на механическое раздражение,вследствие возникновения трансмембранных ионных токов в клетке, регистрируется концентрационный градиент ионов свободного кальция, ведущий к различным клеточным ответам и морфофизиологическим реакциям (Knight е.а., 1995).

Таким образом, в ходе полярного роста и развития растения, прежде всего, генерируются ионные потоки, и формируется электрическая ось полярности. Ионы кальция несут первичную информацию о возникающем векторе поляризации (Медведев, 1996). Вслед за возникновением градиента Са2+ образуется градиент активности вторичных мессенжеров, что приводит к становлению морфологических и физиологических градиентов — мембранных, метаболических, транспортных и других. 8.

Они, в свою очередь, инициируют полярный рост и растяжение клеток вдоль оси, а также процессы дифференциации и пролиферации исходной меристематической ткани, ведущие к формированию вторичных тканей и органов растений с различной структурой и функциями.

Однако вместе с тем остается не ясно, каким образом физиологические градиенты закрепляются в растительном организме и как они проявляются в каждой конкретной клетке. Пока еще непонятно, как факторы поляризации взаимодействуют в процессе формирования осевой симметрии в целом растении, отдельном органе и клетке в процессах роста и развития. Удобными моделями для решения таких задач могли бы служить культура клеток или тканей, а также растущие изолированные клетки, например, пыльцевая трубка.

II. Обзор литературы.

VII. Выводы.

1) Создание аксиального градиента ИУК в микропобегах вишни индуцирует ризогенез у трудноукореняемых сортов в культуре in vitro.

2) Формирование булавковидного соцветия и цветков с измененной морфологией у мутанта арабидопсиса abruptus (abr) связано с нарушением полярного транспорта ИУК в цветоносе. Мутация abr снижает способность каллусной ткани арабидопсиса к пролиферации и регенерации листьев.

3) Ингибитор полярного транспорта ауксина ТИБК в концентрации 1СГ6М повышает уровень ИУК в каллусной культуре и стимулирует гравитропическую реакцию отрезков цветоносов арабидопсиса.

4) Обработка 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислотой (2,3 мкМ) снижает уровень ИУК и стимулирует пролиферацию в каллусной культуре арабидопсиса. 6-бензиламинопурин (2,2 мкМ) повышает уровень ИУК и индуцирует регенерацию побегов у каллуса арабидопсиса дикого типа в отличие от мутанта abr.

• 5) Процесс полярного базипетального транспорта ИУК и градиенты ауксина, являются основой регуляции органогенеза у микропобегов вишни и растений арабидопсиса.

6) Ионы La3+ и Gd3+, а также эритрозин Б полностью блокируют, а ЭГТА, Ni2+ и ортованадат натрия снижают прорастание пыльцевых зерен ржи в системе in vitro.

7) Обработка рылец ионами La3+, Gd3+, Ni2+, а также эритрозином Ь, ортованадатом натрия и верапамилом индуцирует фертильность в самонесовместимом варианте опыления ржи in situ. При перекрестном опылении самонесовместимых растений ржи верапамил вызывает явление «псевдонесовместимости» .

8) Полярный рост пыльцевых трубок ржи, контролируемый ионами Са2+, включает процесс формирования внутриклеточного градиента ионов Са2+, систему межклеточного распознавания и реакцию самонесовместимости.

9) На основании анализа данных, полученных на различных физиологических и генетических моделях, включающих три уровня организации (клеточный, тканевой и.

2+ органный) сделан вывод о том, что физиологические градиенты ИУК и ионов могут являться факторами, запускающими механизмы тканеспецифичной экспрессии генов и регулировать процессы пролиферации, дифференциации и органогенеза в растительном организме.

VI.

Заключение

.

Подводя итог, необходимо отметить, что использование в настоящей работе различных подходов и моделей для исследования процессов полярного роста и морфогенеза растений позволило провести сравнительный анализ определенных этапов развития растений и механизмов полярного роста клеток. В настоящей работе предпринята попытка изучить механизмы и выявить сходство в полярном росте клеток растений, принадлежащих к разным типам тканей и органам и. имеющих различные стратегии роста. Было предложено различать клетки, растущие биполярно и монополярно. К первому типу относятся клетки осевых органов растений, которые составляют основные ткани’растений и подвержены росту растяжением (Полевой, Саламатова, 1991). Второй тип роста предусматривает наличие у клетки одного полюса, на котором происходит нарастание клетки за счет встраивания везикул в плазмалемму (Kropf е.а., 1998). Такой тип роста характерен для пыльцевых трубок, трихом и корневых волосков высших растений. В результате сравнительного анализа нами был выяснен ряд закономерностей роста и развития растений.

Индукция программ развития отдельных органов растений таких, как корни вишни и соцветия арабидопсиса зависит, прежде всего, от поляризации клеток меристем, которая.

V, осуществляется за счет установления градиентов фитогормона ауксина. В случае микропобегов вишни корневые инициали закладываются в адвентивной меристеме, образующейся, главным образом, в результате поляризации и дифференциации каллусных клеток и индукции деления камбиальных и паренхимных клеток in vitru. i.

У растений арабидопсиса было выявлено, что исчезновени^ градиента ИУК в цветоносе приводит к необратимым нарушениям развития соцветия и невозможности формирования нормальных цветков. Причем в обоих случаях определяющим условием существования градиента ауксина являлось функционирование' системы полярного транспорта этого гормона.

Нарушения полярного транспорта проявлялись и в изменениях уровней ИУК в тканях. Так, например, обработка ингибитором полярного транспорта ауксина ТИБК вызывала накопление ИУК тканями микропобега вишни, а также каллусом, полученном из проростков арабидопсиса. У мутанта арабидопсиса abr, у которого нарушен процесс полярного транспорта ауксина, также наблюдалось увеличение уровней ИУК как в целом растении, так и в каллусной ткани. Нарушение полярного транспорта ауксина вызывают не только отклонения в развитии растений, но также изменяет такие ростовые реакции, как гравитропизм. У мутанта abr наблюдались изменения в гравитропической реакции отрезков соцветий. Обработка ТИБК отрезков цветоносов растений дикого типа расы Dijon также приводила к различным отклонениям в гравитропическом ответе.

Таким образом, анализ результатов, полученных на модельных системахмикропобегах вишни и мутанте арабидопсиса — позволяет сделать заключение, что полярные потоки ауксина и градиенты ИУК являются необходимым фактором в процессах роста и развития осевых органов растений. Вероятно, именно градиент концентрации фитогормона ИУК является основой позиционной информации для тканеспецифичной экспрессии генов, ответственной за включение программ органогенеза и полярного роста отдельных клеток растений.

Известно, что поляризация клеточных структур в ходе ростовых реакций формируется за счет установления внутриклеточных градиентов ионов Ca, которые, в свою очередь, создаются в результате неравномерной проницаемости мембран клетки для ионов Са2+ (Roux, 1990; Маркова, 1990; Pickard, Ding, 1993; Медведев, 1996). Потоки кальция через мембраны обеспечиваются функционированием различных транспортных систем таких, как Са2±АТФазы и Са2+ каналы, которые активируются в ответ на разные внутрии экстраклеточные стимулы. Причем ионы Ca в этом случае как играют роль поляризующего сигнала для клетки, так и могут участвовать в механизме трансдукции этих стимулов (Медведев, 1996). Экспериментальные подтверждения роли ионов Са2+, показывающие их необходимость для роста клеток осевых органов растений, которые обладают биполярным типом роста, были получены на многих модельных системах, в том числе и на примере гравитропической реакции (Маркова, 1990). В связи с этим, интересна роль ионов Са2+ в регуляции и монополярного типа роста клеток растений. В настоящее время наиболее интенсивные исследования в этом плане проводятся на пыльцевых трубках, корневых волосках и клетках Fucus. У разных растительных объектов было получено много интересных сведений об особенностях полярного роста пыльцевых трубок (Malho е.а., 1994; Malho е.а., 1995; Pierson е.а., 1996; Franklin-Tong е.а., 1996; Moutinho е.а., 1998; Malho, 1998а). В нашей работе в качестве модели клетки с монополярным типом роста были использованы пыльцевые трубки ржи.

Экспериментальные данные, полученные в разных лабораториях свидетельствуют, что индукция прорастания пыльцевых зерен и рост пыльцевых трубок разных.

2+ растительных объектов in vitro зависят от определенной концентрации ионов Ca в среде (Malho е.а., 1994; Malho е.а., 1995; Pierson е.а., 1996; Franklin-Tong е.а., 1996). В растущей пыльцевой трубке регистрируется градиент кальция с максимумом концентрации в апексе (Pierson е.а., 1994; Malho е.а., 1995).

Нами было установлено, что ионы Са2+ играют ведущую роль в регуляции прорастания пыльцы и росте пыльцевых трубок ржи. Было показано, что ионы La, Ni и Gd3+, а также эритрозин Б ингибировали прорастание пыльцевых зерен ржи, что указывает на участие Са2±АТФаз и Са2+ каналов в процессе полярного роста вегетативной клетки пыльцевого зерна.

Помимо этого, известно, что рост пыльцевых трубок ржи в рыльцах находится под контролем тканей рыльца, которые распознают генотип пыльцы и предотвращают прорастание «своих» зерен, индуцируя реакцию несовместимости (Lundqvist, 1956; de Nettancourt, 1977). Механизм реакции самонесовместимости (SI) достаточно сложен, многостадиен и отличается у разных растений (Goring е.а., 1993; McClure е.а., 1990; Wehling е.а., 1995; Franklin-Tong, Franklin, 2000). Существуют серьезные основания полагать, что в трансдукции сигнала узнавания и реализации системы SI могут принимать ионы Са2+ (Wehling е.а., 1995; Franklin-Tong е.а., 1996; Franklin-Tong е.а., 1999).

7+.

В нашей работе для выяснения роли ионов Ca в системе SI у ржи использовалась модельная система — культивирование изолированных пестиков и опыление рылец in situ, которая была предложена Р. Wehling (Wehling е.а., 1994). Было обнаружено, что обработка рылец различными ингибиторами Са2±транспортирующих систем, такими, как ионы La3+,.

Gd3+ и Ni2+, а также верапамилом, эритрозином Б и ортованадатом натрия, способна снимать реакцию SI в случае самоопыления самонесовместимых растений ржи. При перекрестном опылении самонесовместимых растений верапамил ингибировал прорастание «чужой» пыльцы 1 В, а рыльцах. Такое явление известно в литературе как псевдонесовместимость". Например, при обработке рылец ионофором А23 187 было Л также обнаружено восстановление фертильности у самонесовместимых растений ржи (Wehling, 1995). Однако у используемых в нашей работе гибридов Fl, гомозиготных по мутациям автофертильности sf, zf к tf, такого явления не наблюдалось. В этих вариантах рост пыльцевых трубок в тканях рыльца блокировался при обработке рылец ионами La, ч"*.

Gd3+ и эритрозином F>. Вероятно, в этом случае, нарушение работы Са2+ транспортирующих систем могло имитировать реакцию несовместимости.

2+.

Анализируя специфичность действия ингибиторов мембранных Caтранспортирующих систем в прорастании пыльцы и росте пыльцевых трубок в тканях рыльца у растений с разними генотипами, нам удалось выделить несколько систем контроля полярного роста пыльцевых трубок ржи в тканях рыльца. Например, для роста пыльцевой трубки является обязательным установление градиента [Ca ]с, в формировании которого участвуют Са2±транспортирующие системы (Malho е.а., 1995). В реакции несовместимости имеет место процесс межклеточного распознавания, который.

117 предусматривает рецепцию и трансдукцию сигнала. Важным компонентом этой системы являются ионы Са2+, обеспечивающие передачу информации с поверхности клетки. Причем и в этом случае, нарушение работы Са2±АТФаз и Са2+ каналов приводит к невозможности идентификации генотипов пыльцы и рыльца, а также блокированию проведения сигнала. То есть, ионы Са2+ участвуют не только в поляризации клеточных структур и индукции полярного роста пыльцевой трубки, но также в проведении сигнала межклеточного распознавания и реализации системы самонесовместимости.

Таким образом, именно ИУК и ионам.

Са принадлежит ведущая роль в механизме поляризации клеточных структур и индукции таких процессов как полярный рост и органогенез растений. Внутриклеточная поляризация создается за счет градиентов [Са ]с, формирующихся в ходе дифференциальной активности Са2±транспортирующих систем мембран клетки. Поляризация же тканей и органов растений возникает в результате установления градиентов ИУК, которые формируются за счет работы системы полярного транспорта гормона. В результате, градиенты ИУК и ионов Са обусловливают пространственную характеристику отдельной клетки и внутриклеточной структуры, составляя позиционную информацию каждой точки растительного организма, которая предопределяет судьбу клетки, и в соответствии с которой идут процессы пролиферации, дифференциации и органогенеза. Поэтому, физиологические градиенты ИУК и ионов V.

Са могут претендовать на роль индукторов тканеспецифичной экспрессии генов и таким образом регулировать развитие растений.

— Л «1' Ч.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Альберте Б, Брей Д., Льюис Дж., Рэфф М, Роберте К., Уотсон Дж. Молекулярная биология клетки. 3 Т. М. Мир. 1994.
  2. Т.Б. Хлебное зерно. Атлас. JI. Наука. 1987. 103 с.
  3. Т.Б. Некоторые аспекты морфогенетической полярности в онтогенезе растений // Тез. докл. 3 съезда Всероссийского общества физиологов растений. СПб. 1993. С. 258.
  4. Р.Г. Биотехнология растений. Культура клеток. ВО. Агропромиздат. 1989. 480с.
  5. С.Ю. Использование антител для количественного определения, очистки и локализации регуляторов роста растений. Уфа. БГУ. 1998. 136 с.
  6. В.А., Олешко Е. В. Использование микропрививок при клональном микроразмножении косточковых структур. //С.-х. биология. 1988. № 4. С. 75−77.
  7. В.И., Трушечкин В. Г. Размножение вишни методом in vitro.// ВИР П7207. 1983. № 7. С.12−15.
  8. М.И., Джигадло E.H. Размножение вишни методом верхушечных меристем. // Улучшение сортимента и прогрессивные приемы возделывания плодовых и ягодных культур. Тула. 1988. С. 65−68. I'
  9. И.А., Войлоков A.B. Локализация мутаций автофертильности в S-локусе у инбредных линий ржи Петергофской генетической коллекции. //Генетика. 1998. Т. 34. № 8. С. 1094−1099t
  10. Ю.Еремин A.B. Вишня. Отдаленная гибридизация. ВАСХНИЛ. 1954.
  11. Т.А., Ондар У. Н., Солдатова OtIL, Кузнецова Т.В. Изучение роли гена abruptus в дифференцировке цветоносов у Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. //Докл. Акад. Наук. 1997. Т. 354. №.6. С. 839−842.
  12. Т.А., Солдатова О. П., Коф*Э.М. Участие гена ABRUPTUS, контролирующего морфогенез Arabidopsis thaliana в регуляции роста и морфогенеза в культуре in vitro II Физиология растений. 1999. Т. 46: № 6. С. 865−870.
  13. З.Жуковский П. М. Ботаника. М. Колос. 1982. 623 с.
  14. Н.Калинина А. Ю., Войлоков A.B., Маркова И. В, Голубева Н. В., Мошков A.B., Медведев С. С. Влияние ионов кальция на рост пыльцевых трубок ржи {Seeale cereale L.)U Вестник СпбГУ. Сер.З. 1999. Вып. З (№ 17). С.31−35.
  15. А.Ю., Ежова Т. А., Голубева Н. В., Донец И. С., Маркова И. В., Медведев С. С. Полярный транспорт ауксина у мутанта abruptus Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. H Вестник СПбГУ. Сер.З. 2000. Вып.1(№ 3).
  16. М.И. Полярные потоки ионов кальция в тканях колеоптилей кукурузы и их роль в процессах роста растяжением. Автореф. дисс. канд. биол. наук. 1998. СПб. 17 с.
  17. Л.В., Комарова Э. Н., Выскребенцева Э. И. Спорофитно-гаметофитные взаимодействия в системе пыльца-пестик. 1. Лектины клеточных стенок. // Физиол. раст. 1999. Т. 46. № 1. С. 98−101.
  18. А.Ф. Новые перспективные сорта вишни селекции станции.//Улучшение сортимента и агротехника плодово-ягодных культур. Орлов.зон.пл.-яг.оп.ст. Орел. 1983. С. 43−50.
  19. Г. Г., Веселов С. Ю., Еркеев М. И. Иммуноферментное определение индолилуксусной кислоты в семенах кукурузы с использованием меченых антител. // Физиол. раст. 1986. Т.ЗЗ. № 6. С.1221−1227.
  20. И.В. Изучение роли ионов кальция в регуляции полярного роста осевых органов растений. Дисс. канд. биол. наук. J1. 1990. 139 с.
  21. И.В., Батов А. Ю., Мошков A.B., Максимов Г. Б., Медведев С. С. Кальций-транспортирующие системы плазмалеммы колеоптилей кукурузы // Физиология растений. 1995. Т. 42. Вып. 2. С. 262−267.
  22. Ю.И. Установление степени достоверности (значимости) различий между сериями измерений // В кн. Методы биохимического анализа растений. Л. 1978. С.163−183.
  23. С.С., Штонда И. А. О роли ионов кальция в гравитропической реакции // Биол. Науки. 1989. Вып. 6. С. 94−97.
  24. С.С., Максимов Г. Б., Маркова И. В. Роль ионов кальция в регуляции-, гравитропизма.//Experimental Biology. Vilnus. Leituva. 1991. N 4. P. 71−92. ~
  25. С.С. Физиологические основы полярности растений. СПб. Кольна. 1996. 159с.
  26. С.С. Полярность и эмбриогенез растений. // В кн.: Эмбриология цветковых растений. Т. 2. «Семя. Терминология и концепция» под ред. Т. Б. Батыгиной. СПб. Мир и семья. 1997. С. 594−601.
  27. С.С., Калинина А. Ю. Влияние трийодбензойной и индолиомасляной кислот на ризогенез микропобегов вишни (Cerasus vulgaris L.) в культуре in vitro// Вестник СПбГУ. Сер.З. 1997. Вып.1(№ 3). С. 91−94.
  28. С.С. Электрофизиология растений. СПб. СПбГУ. 1998.182 с.
  29. С.С., Батов А. Ю., Мошков A.B., Маркова И. В. Роль ионных каналов в трансдукции ауксинового сигнала.// Физиол. раст. 1999. т. 46. № 5. с. 711−717.
  30. А. И. Сила тяжести в процессах роста растений // Проблемы биологии Т. 68. М. Наука. 1990. 185 с. 31 .Методические указания по учебно-производственной практике. Биолого-почвенный фак-т. Каф. физиологии и биохимии растений. J1. ЛГУ. 1988. 60 с.
  31. А. В. Транспорт ионов кальция через плазматическую мембрану из клеток колеоптилей кукурузы и пшеницы. Автореф. канд. дисс. биол. наук. СПб. 1997. 22с.
  32. ЗЗ.Олешко Е. В. Особенности размножения вишни in vitro. // Культура клеток растений и биотехнология. М. 1986. С.117−120.34.0сипова Л. В. Разработка методики получения растений-регенератов из каллусов вишни.//там же Вып.50. 1991. С.28−34.
  33. Поддубная-Арнольди В. А. Общая эмбриология покрытосеменных растений. М. Наука, 1964. 482 с.
  34. В.В., Саламатова Т. С. Растяжение клеток и функции ауксинов.// В кн. Рост растений и природные регуляторы. М. Наука.1978. С.171−192.
  35. В.В. Фитогормоны. Л. ЛГУ. 1982. 249 с.
  36. В.В. Роль ауксина в системах регуляции у растений. 44-е Тимирязевское чтение. Л. Наука. 1986. 79 с. 1. S '
  37. В.В. Физиология растений. М. Выс.Шк. 1989. 464 с40.?олевой В.В., Саламатова Т. С. Физиология роста и развития растений. СПб. 1991. 2401. V*"
  38. Л. А. Совершенствование сортимента вишни в Татарии.// Информационный листок. Татарский МОТЦ НТИиП. 1989.
  39. Э. Морфогенез растений. М. ИЛ. 1963. 604 с.
  40. В.Ф. Новые сорта косточковых культур, возделываемые в СССР. М.1969. 53с.
  41. В.Ю. Математическая статистика для биологов и медиков. М. АН СССР. 1963.
  42. Ф., Филлипс И. Рост растений и дифференцировка. М. Мир. 1984. 512 с.
  43. В.В., Олешко Е. В., Шаркова И. В. и др. Микроклональное размножение вишни.// Известия ТСХА. 1988. Вып.5. С.131−148.
  44. И.Л., Потапов Н. Г. и др. Большой практикум по физиологии растений. М. Высш. Шк. 1978. С. 383−390.
  45. Р.Н., Кудоярова Г. Г., Веселов С. Ю. и др. Иммуноферментный анализ регуляторов роста растений. Применение в физиологии растений и экологии. Уфа. 1990.
  46. В.М. Математические методы в ботанике. Л. ЛГУ. 1984. 288 с.
  47. К. Анатомия семенных растений. М. Мир. 1980. 2 т.
  48. С.И. Использование арабидопсис в практических занятиях по общей генетике. М. МГУ. 1985.
  49. Abe М., Takahashi Т., Komeda Y. Cloning and characterization of an LI layer-specific gene in Arabidopsis thaliana. ll Plant Cell Physiol. 1999. Vol. 40. N.6. P. 571−580
  50. Abel S., Theologis A. Early genes and auxin action. // Plant Physiol. 1996. Vol. 111. P. 9−17.
  51. Arabidopsis. // An atlas of morphology and development./ Ed. Bauman J. Springer-Verlag. NY Inc. 1994.
  52. Aukerman M.J., Amasino R.M. Floral induction and florigen.// Cell. 1998. V.93.P.491−494
  53. Barbier-Brygoo H. Functional evidence for an auxin receptbr at the plasmalemma of tobacco mesophyll cells. //Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1989. Vol. 86. P. 891−895.
  54. Barbier-Brygoo H., Ephritikhine G., Klambt D., Maur^ C., Palme K., Schell J., Guern J. Perception of the auxin signal at the plasma membranes of tobacco mesophyll protoplasts // The Plant J. 1991. Vol. 1. P. 83−93. ^
  55. Barbier-Brygoo H., Frachisse J.-M. Anion channels^ind hormone signaling in plant cells. // Plant Physiol. Biochem.1999. Vol. 37. P. 381−392.
  56. Barton M.K., Poethig R.S. Formation of the shooi>pical meristem in Arabidopsis thaliana: an analysis of development in the wild type and in the shoot meristemless mutant // Development. 1993. Vol.119. P.823−831.
  57. Baskin T.I., Wilson J. E. Morphology and microtubule organization in Arabidopsis roots exposed to oryzalin or taxol. //Plant Cell Physiol. 1994. V. 35. P. 935−942.
  58. Baskin T.I., Bivens N.J. Stimulation of radial expansion in Arabidopsis roots by ingibitors of actomyosin and vesicle secretion but not by various ingibitors of metabolism.//Planta. 1995.Vol. 197. P. 514−521.
  59. Bell A.D. Plant form. Oxford Univ. Press. Oxford. 1991.
  60. Beli C. J. Maher P.E. Mutants of Arabidopsis thaliana with abnomal gravitropic responses. 11 Mol. Gen. Genet. 1990. Vol. 220. P. 289−293
  61. Bennet S.R.M., Alvarez J., Bossinger G" Smyth D. R. Morphogenesis in pinoid mutants of Arabidopsis thaliana II Plant J. 1995. Vol.8. N 4. P. 505−520.
  62. Bennet M. J., Marchant A., e. a Arabidopsis AUX1 gene: A permease-like regulator of roots gravitropism. // Science. 1996. Vol. 273. P. 948−950
  63. Bennett M.J., Marchant A., May S.T., Swarup R. Going the distance with auxin: unraveling the molecular basis of auxin transport // Phil. Trans. R. Soc. Lond. B. 1998. Vol. 353. P. 1511−1515.
  64. Bentrup F.W. Cellular polarity.//In: Cellular interactions/ Ed. Liuskens H.F. e.a. 1984. P. 473 490.
  65. Blahut-Beatty L.M., Bonham-Smith P.C. Induction of «filamentous structures» in wild type Antirrhinum majus flowers by benzylaminopurine.// Can.J.Bot. 1998. Vol. 76. P. 1828−1834.
  66. Bjorkman T. Perception of gravity by plant. // Adv. Bot. Res. 1988. Vol. 15. P. 1−41.
  67. Bohmert K., Camus I., Bellini C., Bouchez D., Caboche M., Bennings C. AGOl defines a novel class of Arabodopsis controlling leaf development.// EMBO J. 1998. Vol. 17. P. 170 180.
  68. Bradley D., Ratcliffe O., Vincent C., Carpenter R., Coen E. Inflorescence commitment and architecture in Arabidopsis. II Science. 1997. Vol. 275. P. 80−83.
  69. Braun M. Gravitropism in tip-growing cells. // Planta. 1997. Vol. 203. P. 11−19.
  70. Brewbakr J.L., Kwack B.H. The essential role of calcium ion in pollen germination and pollen tube growth.// Amer. J. Bot. 1963. Vol. 80. N 9. P. 46−50.
  71. Cai G., Moscatelli A., Gresti M., Casino C.D. Cytoplasmic motors and pollen tube growth. // Sex Plant Reprod. 1996. Vol.9. P.59−64.
  72. Cai G., Moscatelli A., Gresti M. Citiskeletal organizational pollen tubegrowth. // Trends Plant Spi. 1997. Vol. 2. P.86−91.
  73. Carland F. M., McHale N.A. LOPl a gene involved in auxin transport and vascular patterning in Arabidopsis II Development. 1996. Vol. 122. P. 1811−1819.
  74. Caspar T., Pickard B. Gravitropism in strechless mutant of Arabidopsis. Implications of the starch-statolith theory of gravity sensing.// Planta.1989. Vol. 177. N 2. P. 185−197.
  75. Celenza J. L. Grisafu P.L., Fink G. R. A pathway for lateral root formation in Arabidopsis thaliana. //Genes Dev. 1995. Vol.9. P. 2131−2142
  76. Child C.M. Patterns and problems of development. Chicago. Univ. Press. 1941. 811 p.
  77. Chuck G., Lincoln C., Hake S. KNATI induces lobed leaves with ectopic meristems when overexpressed va.Arabidopsis.il Plant Cell. 1996. Vol. 8. P. 1277−1289.
  78. Clark S.E., Running M.P., Meyerowitz E.M. CLAVATA 5 is a specific regulator of shoot and floral meristem development affecting the samt processes as CLAVATA1. // Development.1995.Vol.121. P. 2057−2067.
  79. Cohen P. Signal integration at the level of protein kinases, protein phosphatases and their substrates.//Trends. Biochem. Sci. 1992. Vol. 17. P. 408−413.
  80. Cornforth J., Milborrow B., Ryback G. e.a. Identification of the Yelloy Lupin Growth (Inhibitor as (+) Abscisin II (+) — Dormin). // Nature. 1966. Vol. 211. N 5050. P. 742−743.
  81. Cox D.N., Muday G.K. NPA binding activity is peripheral to the plasma membrane and is accociated with the cytoskeleton.// Plant Cell. 1994. Vol. 6. P. 1941−1953.
  82. Cross J.W. Cycling of auxin-binding protein through the plant cell: pathways in auxin signal transduction.//New Biol. 1991. Vol. 3. P. 813−819.
  83. Davidson E.H. Molecular biology of embryonic development: how far have we come in the last ten years? // BioEssays. 1994. Vol.16. N 9. P. 603−615.
  84. Davis P.J. The plant hormones: their nature, occurrence and functions.// In Plant hormones: Physiol. Biochem. Molec .Biol./Ed. Davis P.J. Dordrecht: Kluwer. 1995. P. l-12
  85. Day C.D., Galgoc^' B.F., Irish V.F. Genetic ablation of petal and stamen primordia to elucidate cell interactions during floral development // Development. 1995. Vol. 121. P. 28 872 895. ^
  86. Digby J., Firn D., The gravitropic set-point angle (GSA): the identification of an impotant developmentally controled variable governing plant architecture. //Plant Cell Environ. 1995. Vol 18. P. 1434−1440.
  87. Dolan L., Roberts K. Two ways to skin a plant: the analysis of root and soot epidermal development in Arabidopsis II BioEssays. 1995. Vol.17. N 10. P.865−872.
  88. Dunn S.M., Drews G. N., Fischer R.L., Harada J.J., Goldberg R.B., Koltunow A.M. Fist: an Arabidopsis mutant with altered cell division planes and radial pattern disruption during embryogenesis. // Sex. Plant Reprod.1997. Vol. 10. P. 358−367.
  89. Estelle M. Polar auxin transport: new support for an old model // Plant Cell. 1998. Vol.10. P. 1775−1778.
  90. Evans M.L. Responses of Arabidopsis roots to auxin studied with high temporal resolution comparison of wild-type and auxin response mutants. // Planta. 1994. Vol. 194. P. 215−22.
  91. Feijo J.A., Malho R., Obermeyer G. Ion dynamics and its possible role during in vitro pollen germination and tube growth. //Protoplasma. 1995. Vol. 187. P. 155−167.
  92. Ferguson C., Teeri T.T., Siika-aho, Read S.M., Bacic A. Location of cellulose in pollen tubes and grains of Nicotiana tabacum. il Planta. 1998. Vol. 206. P. 452−460.
  93. Fleming A.G., McQueen-Mason S., Mandel T., Kuhlemeier C. Induction of leaf primordial by the cell wall protein expansin.// Science. 1997. Vol. 276. P. 1415−1418.
  94. Florman H.M., Corron M.E., Kim T.D.H., Babcock D.F. Activation of voltage-dependent calcium channels of mammalian sperm is required for zona pellucida-induced acrosomal exocytosis.// Dev. Biol. 1992. Vol. 152. P. 304−314. ^
  95. Franklin-Tong V.E., Atwal K.K., Howell E.S., Lawrence M.J., Franklin F.C.H. Self-incompatibility in Papaver rhoeas: there is no evidence for the involvement of stigmaticvribonuclease activity. // Plant Cell Envir. 1991. Vol. 14. P. 423−429 x
  96. Franklin-Tong V.E., Drebak B.K., e.a.Growth of pollen tubes of Pappver rhoeas is regulated by slow moving calcium wave propagated by inositoi 1,4,5-trisphosphate. // Plant Cell. 1996vv1. Vol. 8. P. 1305−1321.
  97. FrankIin-Tong V.E. Signaling and the modulation of pollen tubex growth.// Plant Cell. 1999. Vol. 11. P. 727−738.
  98. Franklin-Tong V.E., Franklin F.C. Self-incompatibility in Brassica: the elusive pollen S gene is identified!// Plant Cell. 2000. Vol. 12. P. 305−308.
  99. FujitaH., Syono K. PISI, a negative regulator of the action of auxin transport ingibitors in Arabidopsis thaliana.//Plant J. 1997.Vol.l2.P.583−595.
  100. Garbers C., Delong A., e.a. A mutation in protein phosphatase-2a regulatory subunit-A affects auxin transhport in Arabidopsis.!I EMBO.J. 1996. Vol. 15. P. 2115−2124.
  101. Geissler A., Katekar G. Phytotropins V. The effect of Zea mays L. II J. Exp. Bot. 1982. Vol. 32. P. 952−965.
  102. Geitmann A., Cresti M. Ca2+ channels control the rapid expansion in pulsating growth of Petunia hibrida pollen tubes.// Plant. Physiol. 1998. Vol. 152. P.439−447.
  103. Gilroy S., Blowers D.P., Trewavas A.J. Calcium: a regulation system emerges in plant cells.//Development. 1987. Vol. 100. P. 181−184.
  104. Gocal G.F.W., Poole A.T., Gubler F. e.a. Long-day up-regulation of a GAMYB gene during Lolium temulentum inflorescence formation.// Plant Physiol. 1999. Vol. 119. P. 1271−1278.
  105. Goldsworthy A., Ratore K. The electrical control of growth in plant tissue culture: the polar transport of auxin. // J. Exp. Bot. 1985. Vol. 36. N 168. P. 1134−1141.
  106. Goring D.R., Glavis T.L. An 5″ receptor kinase gene in self-compatible Brassica napus has a 1-bpdeletion. //Plant Cell. 1993.Vol. 5. P. 531−539.
  107. Goto N., Kumagai T., Koornneef M. Flowering responses to light-breaks in photomorphogenic mutants of Arabidopsis thaliana, a long-day plant.// Physiol. Plant. 1991. Vol. 83. P. 209−215.
  108. Grbic V., Bleecker A.B. An altered body plan is conferred on Arabidopsis plants carrying dominant alleles of two genes.// Development. 1996.Vol. 122 P.2395−2403.
  109. Green P.B. Connecting gene and hormone action to from pattern and organogenesis: Biophysical transductions. // J. Exp. Bot.1994. Vol. 45. P. 1775−1788.
  110. Guilfoyle T, Hagen G., Ulmasov T., Murfett J. How does auxin turn on genes? // Plant Physiol. 1998. Vol. 118. P. 341−347.
  111. Haga K., lino M. The short-term growth stimulation induced by external supply of IAA in internodes of intact pea seedlings. // J. Plant Physiol. 1997. Vol. 24. P. 215−226.
  112. Hantke S.S., Carpenter R., Coen E.S. Expression of floricaula in signal cell layers of periclinal chimeras activates downstream homeotic genes in all layers of floral meristems // Development. 1995. Vol. 121. P.27−35.
  113. Hardtke C. S., Berleth T. The Arabidopsis gene MONOPTEROS encodes a transcription factor mediating embryo axis formation and vascular development // EMBO J. 1998. Vol.17. P. 1405−1411
  114. Harrison L.G. What is the status of reaction-diffusion theory thirty-four years after turing? //J. Theor. Boil. 1987. Vol. 125. P. 369−384.
  115. Harrison M.A., Pickard B.G. Evaluation of ethylene as a mediator of gravitropism by tomato hypocotyls.// Plant Physiol. 1986. Vol. 80. N 2. P. 592−595.
  116. Haughn G.W., Schultz E.A., Martinez-Zahater J.M. The regulation of flowering in Arabidopsis thaliana: meristems, morphogenesis, and mutants.// Canada J.Bot. 1995. Vol.73 .P.959−981
  117. Hayman D.L., Richter J. Mutations affecting self-incompatibility in Phalaris coerulescens Desf. (.Poaceae). II Heredity. 1992. Vol. 68. P. 495−503.
  118. Hepler P.K., Wayne R.O. Calcium and plant development.// Ann. Rev. Plant Physiol. 1985. Vol. 36. P. 397−439.
  119. Hernandes M.N., Driss-Ecole D. Interaction of auxin IBA in Lycopersicon esculentum.// J. Exp. Bot. 1989. Vol. 40. N 220. P. 1279−1284.
  120. Heslop-Harrison J. Pollen-stigma interactions andcross-incompatibility in the grasses.// Science. 1982. Vol. 215. P. 1358−1364.
  121. Heslop-Harrison J.S., Heslop-Harrison Y., Reger B.J. Antherfilament extention in Lilium: potassium ion movement and some anatomical features.//Ann. Botany USA. 1987. Vol. 59. N 5. P. 505−515. |
  122. Hesse T. Molecular cloning and structural analysis of a gene from Zea mays (L.) copding for a putative receptor for the plant horjnone auxin.// EMBO J. 1989. Vol. 8. P. 2453−2461.
  123. Higashiyama T. Guidance in^vitro of pollen tube to the naked embryo sac of Torenia furnieri. ll Plant Cell. 1998. VolJ 0. P. 2019−2031.
  124. Hirschi K.D., Zhen R-G., Cunningham K.W., Rea P.A., Fink G.R. CAX1, an H+/Ca2+ antiporter from Arabidopsis.// Proc. Natl. Sci. USA 1996. Vol. 93. P. 8782−8786.
  125. Hooley R. Plant hormone perception and action: a role for G-protein signal transduction? // Phil.trans. R. Sos. London. 1398. Vol. 353. P. 1425−1430
  126. Hooley R. A role for G protein in plant hormone signalling? // Plant Physiol. Biochem. 1999a.Vol. 37. P., 393−402.
  127. Hooley R Auxin signaling: homing in with targeted genetics. // Plant Cell. 1999b. Vol. 10. P. 1581−1584
  128. Horvath D.V. The role of specific plant organs and polar auxin transport in correlative inhibition of leafy spurge (Euphorbia esula) root buds.// Can. J. Botany. 1998. Vol 76. P. 1227−1231.
  129. Huang J.W., Grunes D.L. Kochian L.V. Voltage-dependent Ca2+ influx into right-side-out plasma membrane vesicles isolated from wheat root: characterization of putative Ca2+ channels.// Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1994. Vol. 91. P. 3473−3477.
  130. Inohara N. Auxin-binding protein located in the endoplasmic reticulum of maize shoots: molecular cloning and complerte primary structure. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1989. Vol. 86. P. 3564−3568.
  131. Jacobs W.P. What substance normally controls a given biological process? 1. Formation of some rules.// Dev. Biol. 1959. Vol. 1. P. 527−533.
  132. Jaffe L., Nuccitelli R. Electrical control of development.// Ann. Rev. Biophys. Bioeng. ^ 1977. Vol. 6. P.445−476.
  133. Jauh G.H. Adhesion of lily pollen tubes on an artificial matrix.// Sex. Plant Reprod. 1997^V1. Vol. 10. P. 173−180. (
  134. Jones A. Auxin-binding proteins.// Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1994. Vol. 4*5. P. 393−420. >V
  135. Jones A.M., Herman E.M. KDEL-containing auxin-binding protein is secreted to the plasmamembrane and cell wall. // Plant Physiol. 1993. Vol. 101. P. 595−606. C
  136. Jones H.D., Smith S.J. e.a. Heterotrimeric G proteins are implicated in gibberellin induction of a-amylase gene expression in oat aleurone. // Plant Cell. 1998. Vol. 10. P. 245−254/
  137. Jouve L., Gaspar T., Kevers C., Greppin H., Digli Agosti R. Involvement of indoleacetic acid in the circadian growth of the first internode of Arabidopsis. il Planta. 1999. Vol. 209. P. 136−142.
  138. Juniper B.E. Geotropism. // Annu. Rev. Plant Physiol. 1976. Vol. 27.P. 385−406.
  139. Jurgens G. Axis formation in plant embryogenesis: cues and clues. // Cell. 1995.Vol. 81. P. 467−470.
  140. Jurgens G., Mayer U., Busch M., Lukowitz W., Laux T. Pattern formation Arabidopsis embrio: a genetic perspective. // Phil.Trans. R. Soc.London. 1995.Vol. 350. P. 19−25
  141. Kaldeway H. Transport and other modes of movement of hormones (mainly auxins).// Horm. Regulat. Dev. 2. Berlin. 1984. P.80−148.
  142. Katekar G. Interaction of Phytotropins with the NPA receptor. //Biol. Plant. 1985. Vol. 27. P. 92−99.
  143. Kaufman P. B., Wu L.-I., Brock T.G., Kim D. Hormones and the orientationnn of growth.// Physiol Biochem. Molec. Biol. 1995.P.547−571.
  144. Kim J., Harter K., Theologis A. Protein-protein interactions among the Aux/IAA proteins.// Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1997. Vol. 94. P. 11 786−11 791
  145. Kiss J.Z., Sack F.D. Reduced gravitropic sensitivity in roots of a starch-deficient mutant of Nicotianasylvestris. il Planta. 1989. Vol.80. P. 123−130.
  146. Knight M., Knight H., Watkins N. Calcium and generations of plant form. //Phil. Trans. R. Soc. Lond. B. 1995. Vol. 350. P. 83−86.
  147. Kovtun Y., Chiu W.L., Zeng W., Sheen J. Suppression of auxin signal transduction by a MAPK cascade in higher plants. // Nature. 1998. Vol. 395. P.716−720.
  148. Kropf D. L, Bisgrove S.R., Hable W. E. Cytoskeletal control of polar growth in plant cells.// Cur. Opin. Cell Biol. 1998. Vol. 10. P. 117−122.
  149. Langridge J. Arabidopsis thaliana, a plant Drosophila. il BioEssays. 1994. Vol. 16. N 10. P. 775−778.
  150. Langridge P., Baumann U., Juttner J. Revising and revising the self-incompatibility genetics of Phalaris coerulescens. il Plant Cell. 1999. Vol. 11. P. 1826.
  151. Laurenzio L.D., Wysocka-Diler J., Malamy J.E. e.a. The SCARECROW gene regulates an asymmetric cell division that is essential for generating the radial organization of the Arabidopsis root // Cell.1996. Vol. 86. P.423−433.
  152. Laux T., Mayer K, Berger J., Jurgens G. The WUSCHEL gene is required for shoot and floral meristem ivtegrity mArab’dopsis. II Development. 1996.Vol. 122.P. 87−96.
  153. Laux T. Book reviews: Can genetics explain Plant Development. (Howell S.H. Molecular genetics of plant development.- Lyndon R.F. The shoot apical meristem. Camb. Univ. Press: NY. 1998.) // Cell. 1999. Vol. 96. N 5. P. 466−467.
  154. Lewis D. Genenic control of specificity and activity of the S antigen in plant. // Proc R Soc Lond. 1960. Vol.151. P. 468−477.
  155. Leyser H.M.O., Peckett F.B.e.a. Mutations in the AXR3 gene of Arabidopsis result in altered auxin response including ectopic expression from the SAUR-AC1 promoter. // The Plant J. 1996. Vol. 10. N3. P. 403−413.
  156. Liang F., Cunningham K.W., Harper J.F., Sze H. ECAl compiements yeast mutants defective in Ca pumps and encodes an endoplasmic reticulum-type Ca2± ATPase in Arabidopsis thaliana. Proc. Natl. Sci. USA 1997. Vol. 94.P. 8579−8584.
  157. Li H., Bacic A., Read S.M. Activation of pollen-tube callosa Syntasa by detergents: evidence for different mechanisms of action.// Plant Physiol. 1997. Vol. 14. P. 1255−1265.
  158. Li X., Nield J., Langridge P. A self-fertile mutant of Phalaris produces an S protein with reduced thioredoxin activity. // Plant J.1996. Vol. 10. P. 505−513.
  159. Lincoln C., Long J., Yamaguchi J, e.a. Knotted-like hemeobox gene in Arabidopsis that is expressed during embryonic patten formftion and defines a new class of hemeoboxgenes. // Plant Cell. 1994. Vol.6. P.1859−1876
  160. Liu C.-M., Xu Z.-H., Chua N.-H. Auxin polar transport is essential for the establishment of bilateral symmetry during early plant embryogenesis. // Pl.Cell. 1993. Vol.5. P. 621−630.
  161. Liu Z.B., Hagen G" Guilfoyle T.J. A G-box-binding protein from soybean to the El auxin-response element in the Soybean GH3 promoter and contains a proline-rich repression domain.// Plant Physiol. 1997. Vol. 115. P. 397−407. ^
  162. Lobler M., Klambt D. Auxin-binding protein from coleoptile membranes of corn (Zea mays L.).ll J. Biol.Chem. 1985. Vol. 260. P. 9848−9853. ^
  163. Lomax T.L., Mehlorn R.J., Briggs W.R. Activp auxin uptake by zucchini membrane vesicles: quantitation using ESR volum and pH determinations.// Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1985. Vol. 82. P. 6541−6545. V
  164. Logan D.C., Venis M.D.A. Characterisation and immunological identification of acalmodulin-stimulated Ca2± ATPase from maize Shoots. // J. Plant Physiol. 1995. Vol. 145. P. 702−710. J
  165. Lucas W. J., Bouche-Pillon S" Jackson D.P. Selective trafficking of KNOTTED 1 homeodomain protein and its mRNA through plasmodesma.// Science. 1995. Vol. 270. P. 1980−1983
  166. Lukowitz W., Mayer U., Jurgens G. Cytokinesis in the Arabidopsis embryo involves the syntaxin-related Knolle gene product. // Cell. 1996. Vol. 84. P.61−71
  167. Lundqvist A. Self-incompatibility in rye. 1. Genetic control in the diploid.// Hereditas. 1956. Vol.42.P. 293−348.
  168. Luschnig C., Gaxiola R.A., Grisafi P., Fink G.R. EIR1, a root-specific protein involved in auxin transport, is required for gravitropism in Arabidopsis thaliana II Genes Dev. 1998. Vol. 12. P. 2175−2187.
  169. Luschnig C., Fink G.R. Two pieces of the auxin puzzle.// Tren. Plant Sci. 1999. Vol. 4. P. 162−164.
  170. Lush W.M. Whether chemotropism and pollen tube guidance?// Trend. Plant Sci. 1999. Vol. 4. N 10. P. 413−418.
  171. Malho R., Read N.D., Pais M., Trewavas A.J. Role of cytosolic calcium in the reorientation of pollen tube growth.// Plant J. 1994. Vol. 5. P. 331−341.
  172. Malho R., Read N.D., Trewavas A.J. Calcium channel activity during pollen tube growth and reorientation.// Plant Cell. 1995. Vol. 7. P. 1173−1184.
  173. Malho R. Pollen tube guidance the long and winding road.// Sex. Plant Reprod. 1998a. Vol. 11. P. 242−244.
  174. Malho R. Role of 1,4,5-inositol triphosphate-induced Ca2+ release in pollen tube orientation.// Sex. Plant Reprod. 1998b. Vol. 11. P. 231−235.
  175. Malho R., Trewavas A.J. Localized apical increases of cytosolic calcium control pollen tube orientation.// Plant Cell. 1996. Vol. 8. P. 1935−1949.
  176. Malmstrom S., Askerlund P. Palmgren M.G. A calmodulin-stimulated Ca -ATPase from plant vascular membranes with putative regulatory domain units N-terminus.// FEBS Lett. 1997. Vol.400. P. 324−328.
  177. Masucci J.D., Rerie W. G, e.a. The homeobox gene GLABRA 2 is required for position -dependent cell differentiation in the root epidermis of Arabidopsis thaliana. // Development. 1996. Vol.122. P.1253−1260
  178. Mayer U., Ruiz R.T., Berleth T., Misera S. Mutation affecting body organization in the Arabidopsis embryo //Nature. 1991. Vol. 353. N 3. P. 402−407.
  179. Mayer K., Schoof Y., Haecker A., e.a. Role of WUSCHELl in regulating stem cell fate in the Arabidopsis shoot meristem. // Cell. 1998. Vol. 95. P. 805−815.
  180. McCarty D.R. Genetic control and interaction of maturation and germination pathways in seed development // Annu.Rev.Plant Physiol Plant Mol.Biol. 1995. Vol. 46. P.71−93.
  181. McClure B.A., Gray J.B., e.a. Self-incompatibility in Nicotiana alata involves degradation of pollen rRNA. //Natura. 1990. Vol. 347. P.757−760.
  182. McConnell J.R., Barton M.K. Genetic and morphological analysis of the Adnormal (Adri) mutant.// Abstr. The 8th Int. Conf. Arabidopsis Res. #5−19. Madison WI. USA. 1997.
  183. Medvedev S., Markova I., Batov A., Moshkov A. Membrane mechanism of IAA action.// Biologija. 1998. N3. P. 31−34.
  184. Meicenheimer R.D. Changes in Epilobium phyllotaxy induced, by N-l-naphthylphthalamic acid and (alpha)-4-chlorophenoxyisobutyric acid. // Am. J. Bot.1981.Vol. 68. P. 1139−1154.
  185. Meinke D.W., Franzmann L.H., Nickle T.C., Yeung E. C. Leafy cotyledon mutants of Arabidopsis // The Plant Cell. 1994. Vol.6. P.1049−1064.
  186. Miller D.D., Lancelle S.A., Hepier P.K.Action microfilaments do not form a dense meshwork in Lilum longifionum pollen tube tips. // Photoplasma. 1996. Vol.195. P. 123−132.
  187. Miller D., de Ruijter N., Emons A. From signal to form: aspects of the cytoskeleton-plasma membrane-cell wall continuum in root hair tips. // J.Exp.Bot. 1997.
  188. Moctezuma E. Changes in auxin patterns in developing gynophores of the peanut plant (.Arachis hypogaaea L.). // Annals of Botany. 1999. Vol. 83. P. 235−242.
  189. Morris D.A., Rubery P.H. Effects of inhibitors of protein synthesis on transmembrane auxin transport ir$Pucurbitapepo L. hypocotyls segments. //J.Exp.Bot. 1991 .Vol. 42 P.773−783.
  190. Morris D., Johnson C. The role of auxin efflux carriers in the reversible loss of polar auxin transport in the pea (Pisum sativum L.) stem. //Planta. 1990. Vol.181. P. 117−1241. SS 1
  191. Moutinho A. Trewavas A.J., Malho R. Relocation of a Ca2±dependent protein kinase activity^during pollen tube reorientation. // Plant Cell. 1998. Vol. 10. P. 1499−1510.
  192. Mull^r A., Hillebrand H., Weiler E.W. Indolil-3-acetic acid is synthesized from L-tryptophan in roots of Arabidopsis thaliana. II Planta. 1998.Vol.206. P.362−369.
  193. Murphy A., Taiz L. Naphthylphthalamic acid is enzymatically hydrolyzed at the hypocotyl-roqt transition zont and other tissues of Arabidopsis thaliana seedlings. // Plant PKysioI.Biochem. 1999. Vol. 37. N 6. P. 414−430.
  194. LNantawisarakul T., Newman I.A. Growth and gravitropism of corn roots in solution.// Plant. Cell Environ. 1992. Vol. 15. P. 693−701.
  195. Napier R.M. Immunological evidence that plants use both HDEL and KDEL for targeting proteins to the endoplasmic reticulum.// J. Cell Sci. 1992. Vol. 102. P. 261−271.
  196. Napier R.M., Venis M.A. From auxin-binding protein to plant hormone receptor? // Trends Biochem. Sci. 1991. Vol. 16. P. 72−75.
  197. Nick P., Furuya M. Inducion and fixation of polarity early steps in plant morphogenesis. //Dev. Growth Different. 1992. Vol.34. P.115−125.
  198. Palmer K., Galweiler L. PIN-pointing the molecular basis of auxin transport.// Cur. Opin. Plant Biol. 1999. Vol. 2. P. 375−381.
  199. Parcy F., Nilsson O., Busch M.A., Lee I., Weigel D. A genetic framework for floral patterning.//Nature. 1998. Vol. 395. N. 8. P. 561−566.
  200. Perera I.Y., Heilmann I., Boss W.F. Transient and sustained increases in inositol 1,4,5-trisphosphate precede the differential growth response in gravistimulated maize pulvini.// Plant Biology. 1999. Vol. 96. P. 5838−5843.
  201. Pickard B.G., Ding J.P. The mechanosensory calcium-selective ion channel: key component of a plasmalemma control centre? // Austral. J. Plant Physiol. 1993. Vol.20. N 4/5. P. 555 570.
  202. Pierson E.S., Miller D.D., Callaham D.A., van Aken J., Hackett G., Hepler P.K. Tip-localized calcium entry fluctuates during pollen tube growth.// Dev. Biol. 1996. Vol. 174. P.160−173.
  203. Poethig R.S. Leaf morphogenesis in flowering plants. // Plant. Cell. 1997. Vol. 9. P. 10 771 087.
  204. Progress report. The multional coordinated Arabidopsis thaliana genom project: year three. The multinational science steering committee. Nation. Sci. Found. Arlingston. 1993. 71 c.
  205. Pruitt R.E. Complex sexual signals for the male gametophyte.// Cur. Opin. Plant Biol. 1999. Vol. 2. P.419−422.
  206. Przemeck G., Mattsson J., Hardtke C.S., Sung Z.R., Berleth T. Studies on the role of the Arabidopsis gene MONOPTEROS in vascular development and cell axiallization // Planta. 1996. Vol. 200. P. 229−237.
  207. Raven J. The possible role of membrane electrophoresis in the polar transport of IAA and other solutes in plant tissues. //New Phytologist. 1979. Vol.82. P.285−291
  208. Reed R.C., Brady S.R., Muday G. K. Inhibition of auxin movement from shoot into the root inhibits lateral root development in Arabidopsis. // Plant Physiol. 1998. Vol. 118. P. 13 691 378 V
  209. Reiss H-D., Herth W. Nifedipin-sensitive calcium channels are involved in polar growth of lily pollen tubes.// J. Plant Sci. 1985. Vol. 76. P. 247−254.fly
  210. Roman G., Lubarsky B., Kieber J.J., Rothenberg M., Ecker J. Genetic analysis of ethylene signal transduction in Arabidopsis thaliana: five novel mutant loci integrated into a stress response-pathway.// Genetics. 1995. Vol. 139. P. 1393−1409.1. V*
  211. Romano C.P. Transgene-mediated auxin overproduction in Arabidopsis hypocotyls elongation phenotype and interactions with the hy6-l hypocotyl elongation and axrl auxin-resistant mutants. // Plant Mol. Biol. 1998. Vol. 27. P. 1071−1083.
  212. Roifse D. Mackay P., Stirberg P., Estelle M., Leyser O. Changes in auxin response from mutations in an AUX/IAA gene. // Science. 1997. Vol. 276. P. 1371−1373.
  213. Roux S.J. Calcium as a mediator of plants' directional growth response to gravity.// Fundamentals of Space Biology./ Eds. Asashima M., Malacinski G.M. Berlin: SpringerVerlag. 1990. P. 57−67.
  214. Rubery P.H. Mechanism of transmembrane auxin transport and its relation to the chemiosmotic hypothesis of the polar transport auxin. // In: Plant Growth Substances. /Ed. Skoog F. Springer-Verlag. Berlin. 1980. P. 50−60.
  215. Rubery P. Phytotropins: receptors and endogenous ligands. //In: Hormone perception and signal transductions in animals and plants. /Ed. Roberts J. e.a. Proc. of Symposia of the Society for Exp. Biol. 1990. XLIV. P. 119−146.
  216. Rudd J., Franklin F.C.H., Franklin-Tong V.E. Ca2±independente phosphorylation of a 68-kDa protein is stimulated by the self-incompatibility response in Papaver rhoeas. H Plant J. 1997. Vol. 12. P. 507−514.
  217. Ruegger M., Dewey E., Estelle M. Reduced naphtylphthalamic acid binding in the tirS mutant of Arabidopsis is associated with a reduction in polar auxin transport and diverse morphological defects // Plant Cell. 1997. Vol. 9. P. 7−12
  218. Ruegger M. The TIR1 protein of Arabidopsis functions in auxin response and is related to human SKP2 and yeast grrlp. // Genes Dev. 1998. Vol. 12. P. 198−207.
  219. Rutishauser R., Sattler R. Complementary and heuristic value of contrasting models in structural botany. I. General considerations.//Bot. Jahrb. Syst. 1985. Vol 107. P. 415−455.
  220. Sack F.D. Plant gravity sensing. // Int. Rev.Cytol. 1991. Vol. P. 193−252.
  221. Sanders D., Brownlee C., Harper J.F. Communicating with calcium. //Plant Cell. 1999. Vol. 11. P. 691−706.
  222. Sauter M., von Wiegen P., Lorz H., Kranz E. Cell cycle regulatory genes from maize are differentially controlled during fertilization and fist embryonic cell division. // Sex. Plant Reprod. 1998. Vol. 11. P. 41−48.
  223. Scheres B., Laurenzio L.D., Willemsen V. Mutations affecting the radial organisation of the Arabidopsis root display specific defects throughout the embryonic axis // Development. 1995. Vol.121. P.53−62
  224. Scheres B., McKhann H.I., Berg C. Roots redefined: anatomical and^genetic analysis of root development // Plant Physiol. 1996. Vol.111. P.959−964.
  225. Scheres B. A LEAFY link from outer space. //Nature. 1998. Vol. 395. P. 545−547.
  226. Schimek C., Eibel P. Gravitropism in Phycomyces: a role for s^dimenting protein crystals and floating lipid globules. // Planta. 1999. Vol. 210. P. 132−142. *
  227. Schlenk H., Gellerman J. Esterification of Fatty acids with diazometane on a small scale. //Anal. Chem. 1960. Vol. 32. N 96. P. 1412−1414
  228. Schlupmann H., Bacic A., Read S.M. Uridine diphosphate glucose metabolism and callose synthesis in cultured pollen tubes of Nicotiana alata Line et Otto. // Plant Physiol. 1994. Vol.105. P. 659−670
  229. Schroeder J.I., Hagiwara S. Repetitive increases in cytosolic Ca2+ of guard cells by abscisic acid activation of nonselective Ca2+ permeable channels. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1990. Vol. 87. N 23. P. 9305−9309
  230. Schwechheimer C., Zourelidou M. Bean M.W. Plant transcriptional factor studies.// Ann. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1998. Vol. 49. P. 127−150.
  231. Sessions A.R., Nenhauser J.L., McColl A., Roe J.L., Feldmann K.A., Zambruski P.C. ETTIN patterns the Arabidopsis floral meristem and reproductive organs. 11 Development. 1997. Vol. 124. P. 4481−4491.
  232. Sievers A., Kruse S., Kuo-Huang Ling-Long, Wendt M. Statolits and microfilaments in plant cells.// Planta. 1989. Vol. 179. N 2. P. 275−278.
  233. Staves M.P., Wayne R., Leopold A.C. The effect of the external medium on the gravitropic curvature of rice roots. // Am. J. Bot. 1997. Vol. 84. P. 1522−1529.
  234. Stein J.C., Howlett B., Boyes D.C., Nasrallah M.E., Nasrallah J.B. Molecular cloning of a putative receptor protein kinase gene encoded at self-incompatibility locus of Brassica oleacea. il Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1991. Vol. 88. P. 8816−8820.
  235. Strabala T.J., Wu Y. H., Li Y. Combinated effects o9f auxin transport inhibitors and cytokinin: Alterations of organ development in tobacco.// Plant Cell Physiol. 1996. Vol. 37. N 8. P. 1177−1182.
  236. Talbott L.D., Pickard B.G. Differential changes in size distribution of xyloglucan in the cell walls of gravitropically responding Pisum sativum epicotyls. // Plant.Physiol. 1994. Vol. 106. P. 755−761.
  237. Tanaka I. Differentiation of generative and vegetative cell in angiosperm pollen. // Sex Plant Reprod. 1997. Vol. 106. P. 755−761.
  238. Tester M. Plant ion channels: whole-cell and single-channel studies. Tansley review No. 21/ //New Phytol. 1990. Vol.114. P. 305−340.
  239. TeylorL.P., Hepler P.K. Pollen germination and tube growth. // Annu Rev Plant Physiol Plant Mol Biol .1997.Vol. 48. P. 461−491.
  240. Thoma S., Hecht U., Kippers A. e.a. Tissue-specific expression of a gene encoding a cell wall-localized lipid transfer protein from Arabidopsis. H Plant Physiol. 1994. Vol. 105. P. 3545
  241. Tian Q., Reed J.W. Control of auxin-related root development by the Arabidopsis thaliana SHY/IAA3 gene.// Development. 1999. Vol. 126. P. 711−721.
  242. Timpte C., Lincoln C., Pickett F.B., Turner F.B., Estelle M. The AXR1 tm&AUXl genes of Arabidopsis function in separate auxin-response pathways. // Plant J. 1995. Vol. 8. P. 561 569.
  243. Tominaga M., Sonobe S., Shimmen T. Mechanism of inhibition of cytoplasmic streaming by auxin in root hair cell of HydrocharisJ/?ant Cell Physiol. 1998. Vol.39. N 12. P. 1342−1349.
  244. Tominaga R., Samejima M., Sakai F., e.a. Occurrence of cello-oligosaccharides in the apoplast of auxin-treated pea stems. // Plant Physiol. 1999. V. l 19. P. 249−254
  245. Trewavas A., Gilroy S. Signal transduction in plant cell. // Trends Genet. 1991. Vol. 7. P. 356−361.
  246. Tsukaya H., Naito S., Redei G.P., Komeda Y. The cotyledon: a superior system for studies of leaf development.// Planta. 1994. Vol. 195. P. 309−312.
  247. Tsukaya H. Genetic evidence for polarities that regulate leaf morphogenesis. // J. Plant. Res.1998. Vol. 11 LP. 113−119. i
  248. Turner A., Bacic A., e.a. Membrane fractionation and enrichment of callose synthase from pollen tubes of Nicotiana alata Line et Otto. /(Planta. 1998. Vol. 205. P.380−388.
  249. Uggla C., Mellerowicz E. J, Sundberg B. Indole-3-acetic acid controls cambial growth in scots pine by positional signaling. // Plant Pl^ysiol. 1998. Vol. 117. P. 113−121.
  250. Ulmasov T, Liu Z.B., Guilfoyle T.J. Composite structure of auxin response elements. // Plant Cell. 1995. Vol. 7. P. 1611−1623.
  251. Ulmasov T., Hagen G. e.a. Aux/IAA proteins repress expression of reporter genes containing natural and highly activ sintatic auxin response elements.// Plant Cell. 1997. Vol. 9. P. 19 631 971.
  252. Venis M.A. Impermeant auxin analogues have auxin activity.// Planta. 1990. Vol. 182. P. 232−235.
  253. Veit B. Leaf initiatiom: new developments in an expanding field. 11 Plant Cell. 1998. Vol. 9. P. 1417−1424.
  254. Veit B., Briggs S.P., Schmidt R.J. Regulation of leaf initiation by the terminal ear 1 gene of maize. //Nature. 1998. Vol. 350. P. 166−168.
  255. Venis M.A., Napier R.M. Auxin receptors and auxin-binding proteins. // Crit. Rev. PI. Sci. 1995. Vol. 14. P. 27−47.
  256. Walker L., Estelle M. Molecular mechanisms of auxin action. // Cur. Opin. Plant Biol. 1998. Vol. l.P. 434−439.
  257. Warren Wilson J., Warren Wilson P., Walker E. Patterns of traeheary differentiotion in lettuce pith explouts: positional control and temperature effects. //Annals of Botany. 1991. Vol.68. P.109−128.
  258. Warren Wilson J., Warren Wilson P. Mechanism of auxin regulations of structural and physiological polarity in plant, tissues, cells and embryos. //Plant Physiol. 1993. Vol.20. P.555−571.
  259. Wayne R., Staves M.P., Leopold A.C. Gravity dependent polarity of cytoplasmic streaming in Nitellopsis. II Protoplasma. 1990. Vol. 155. P. 43−57.
  260. Wehling P., Hakauf B., Wricke G. Phosphorylation of pollen proteins in relation to self-incompatibility in rye (Secale cereale L.) USex Plant Reprod. 1994. Vol. 7. P. 67−75.
  261. Wehling P., Hackauf B. Wricke G. Characterization of two-factor self-incompatibility system in Secale cereale L. ll Advances in Plant Breeding. Suppl. 18 to Plant Breed. 1995. P. 149−162.
  262. Wei gel D., Meyerowitz E.M. The ABCs of floral homeotic genes // Cell. 1994. Vol.78. P .203−209.
  263. Weigel D. The genetics of flower development: from floral induction to ovule morphogenesis // Annu.Rev.Genetics. 1995. Vol. 29. P. 19−39.
  264. Weigel D., Clark S.E. Sizing up floral meristem // Plant Physiol. 1996. Vol.112. P. 5−10.
  265. Weise S.E., Kiss J.Z. Gravitropism of inflorescence stems in starch-deficient mutants of Arabidopsis. il Int.J. Plant Sci. I999.VoI.160. N 3. P. 521−527.
  266. Went F., Thiman K. Phytohormones. // MacMillan. New York. 1937.139
  267. Williams C.M., Zang G., Michalak M., Cass D.D. Calcium-indused protein phosphorylation and changes in levels of calmodulin and calreticulin in maize sperm cell.// Sex. Plant Reprod. 1997. Vol. 10. P. 83−88.
  268. Wolpert L., Beddington R., Brockes Y., Jessell T., Lawrencl P., Meyerowitz E. Principles of development. //Oxford Univ. Press. Oxford. 1998.
  269. Wu H-M., Wang H. Cheung A.Y. A pollen tube growth stimulatory glicoprotein is deglycosylated by pollen tubes and displays a glycosylation gradient in the flower.// Cell.1995. Vol. 82. P. 395−403.
  270. Yang C.-H., Chen L.-J., Sung Z.R. Cenetic regulation of shoot development in Arabidopsis: role of the EMF genes. // Dev. Biol. 1995. Vol. 169. P. 421−435.
  271. Yang T., Devis P.J., Reid J. D. Genetic dissection of the relative role of auxin and gibberellin in the regulation of stem elongation in intact light-grown peas. // Plant Physiol.1996. Vol.110. P. 1029−1034.
  272. Zania S., Reggiani R., Bertanii A. Preliminary evidence for involvement of GTP-binding protein (s) in auxin signal transduction in rice coleoptiles. // Plant Physiol. 1990. Vol.136. P.653−658.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!