Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Варианты строения сперматозоидов человека в норме и при патологии, критерии прогнозирования успешности экстракорпорального оплодотворения и дифференцированного подхода к диагностике и лечению мужского

Диссертация: Варианты строения сперматозоидов человека в норме и при патологии, критерии прогнозирования успешности экстракорпорального оплодотворения и дифференцированного подхода к диагностике и лечению мужского
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Оценка некоторых структурных особенностей сперматозоидов, отражающих их функциональное состояние — фактора формы круга головки, индекса множественных аномалий шеечного отдела, доли сперматозоидов с искривленными шейками, округлости головки, большой оси головки, отношения «большая/малая ось головки», фактора формы круга акросомы, фактора формы эллипса акросомы, округлости акросомы, малой оси… Читать ещё >

Содержание

  • Список принятых сокращений
  • ГЛАВА 1. Обзор литературы
    • 1. 1. Цитологическая и физиологическая характеристика особенностей сперматозоидов человека в норме и при вариантах патологии
    • 1. 2. Использование компьютерных технологий в морфологическом анализе сперматозоидов
  • ГЛАВА 2. Материал и методы исследования
    • 2. 1. Характеристика пациентов
    • 2. 2. Методы исследования

    ГЛАВА 3. Качественные морфологические и функциональные характеристики сперматозоидов, влияющие на успешность обычного экстракорпорального оплодотворения и с применением интрацитоплазматической инъекции сперматозоидов

    ГЛАВА 4. Анализ качественных морфологических параметров сперматозоидов с использованием индексов множественных аномалий

    ГЛАВА 5. Морфометрический анализ сперматозоидов. Количественные показатели, имеющие клиническую значимость при проведении интрацитоплазматической инъекции сперматозоидов

    ГЛАВА 6. Общее заключение 103

    Выводы 113 Внедрение результатов в практику 114

    Список использованной литературы

    СПИСОК ПРИНЯТЫХ СОКРАЩЕНИЙ ВОЗ — Всемирная организация здравоохранения ВРТ- вспомогательные репродуктивные технологии ДАГС — доминирующая аномалия головок сперматозоидов ДАС — доминирующая аномалия сперматозоидов ДИ — доверительный интервал ИК — индекс Крюгера

    ИКСИ — интрацитоплазматическая инъекция сперматозоида в яйцеклетку

    ИМАГ — индекс множественных аномалий головки сперматозоида

    ИМАХ — индекс множественных аномалий хвоста сперматозоида

    ИМАШ — индекс множественных аномалий шейки сперматозоида

    ИТЗ — индекс тератозооспермии

    ИФА — иммуноферментный анализ

    ЛГ — лютеинизирующий гормон

    Отн. ед. — относительные единицы

    ПВП — поливинилпирролидон

    ПЦР — полимеразная цепная реакция

    ТЗ — трийодтиронип

    Т4 — тетрайодтиронин

    ТТГ — тиреотропный гормон

    УЗИ — ультразвуковое исследование

    ФСГ — фолликулостимулирующий гормон

    ЧИ — частота имплантации

    ЧНБ — частота наступления беременности

    40 — частота оплодотворения

    ЭКО — экстракорпоральное оплодотворение без микроманипуляций

Варианты строения сперматозоидов человека в норме и при патологии, критерии прогнозирования успешности экстракорпорального оплодотворения и дифференцированного подхода к диагностике и лечению мужского (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность темы

Количество бесплодных супружеских пар в России достигает 12−15%, что, по данным Всемирной организации здравоохранения (ВОЗ), сопоставимо с распространенностью бесплодия в мире (Кулаков В.И., Леонов Б. В., 2000). Демографическая обстановка, сложившаяся в нашей стране, усугубляет проблему бесплодия. За последние 11 лет население Российской Федерации сократилось на 1,5%, и темпы убыли населения нарастают (Институт народнохозяйственного прогнозирования РАН. Центр демографии и экологии человека, 2001). Южный федеральный округ занимает одно из ведущих мест в России по показателю убыли населения, который в 2001 году составил 0,8% (Институт народнохозяйственного прогнозирования РАН, 2002). Кроме того, невозможность иметь ребенка приводит к тяжелой личной психической травме, результатом которой может быть расторжение брака и нарушение социальной адаптации.

При изучении структуры бесплодия ВОЗ определила мужской фактор более чем в половине случаев (World Health Organization, 1987). Данные многих работ свидетельствуют о прогрессирующем снижении качества спермы в мире (Carlsen Е. etal., 1992).

Качество сперматозоидов является важным показателем мужской фертиль-ности, и поэтому их объективная оценка играет одну из ключевых ролей в обеспечении успешности методов вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ). Наибольшее распространение получил анализ морфологии сперматозоидов по строгим критериям, разработанным Kruger и соавт. (Kmger T.F. et al., 1986). Для повышения информативности разработаны индексы множественных дефектов сперматозоидов (Jouannet P. et al., 1988; Aziz N. et al., 1996). Предполагается, что морфологический дефект прямо сопряжен с функциональной неполноценностью сперматозоида (Katz D. et al., 1996; Oehninger S. et al., 1994), и, вероятно, то или иное нарушение функции связано с определенным видом морфологической аномалии. Следовательно, разные морфологические дефекты могут иметь разное прогностическое значение для оплодотворения методами классического экстракорпорального оплодотворения (ЭКО) и интрацитоплазматической инъекции сперматозоидов (ИКСИ). Однако, современная классификация аномалий сперматозоидов не позволяет выделить формы, имеющие отрицательную или положительную связь с частотой оплодотворения тем или иным методом и последующим развитием эмбрионов. Этим могут быть обусловлены и противоречия в данных литературы по вопросам преимущества ЭКО или ИКСИ в разных клинических ситуациях. Поэтому более дифференцированный подход к выбору метода ВРТ, основанный на точной морфологической оценке мужских гамет, возможно, позволит избежать слишком частого и неоправданного применения ИКСИ, которое имеет тенденцию к расширению показаний. К тому же, изучение связи морфологии сперматозоидов с успешностью ИКСИ может способствовать повышению эффективности самой микроманигтуляции. Морфологические характеристики являются определяющими при выборе сперматозоида для инъекции в яйцеклетку, но зависимость успешности операции от структурных особенностей вводимого сперматозоида еще предстоит изучить. Зная влияние той или иной морфологической аномалии на результат ИКСИ, можно делать выбор сперматозоида для инъекции в яйцеклетку более обоснованно.

Большинство классификаций морфологических дефектов сперматозоидов, предложенных до сегодняшнего дня, основывается на качественной характеристике их формы. Использование более сложных и трудоемких способов оценки нецелесообразно в повседневной лабораторной практике, но необходимо для фундаментального изучения связи строения сперматозоида с его функциональной компетентностью. Поэтому для разработки критериев, позволяющих оптимизировать процедуру ИКСИ, необходимо, на основе точных количественных методов1 анализа, выявить прогностически ценные морфологические параметры, которые могут быть оценены и без использования дополнительных средств. Компьютерная мор-фометрия является высокоточным, воспроизводимым и стандартизованным методом, позволяющим количественно выразить структурные характеристики объекта и доказательно обосновать или отвергнуть значимость качественных оценочных критериев.

Цель исследования: Изучить варианты строения сперматозоидов человека в норме и при патологии и определить наиболее информативные интегральные морфологические критерии для прогнозирования успешности лечения бесплодия при применении вспомогательных репродуктивных технологий.

Задачи исследования:

1. Выявить качественные морфологические характеристики сперматозоидов, влияющие на успешность экстракорпорального оплодотворения и интра-цитоплазматической инъекции в яйцеклетку.

2. Оценить возможность использования этих характеристик для выбора метода вспомогательных репродуктивных технологий.

3. Оценить возможности компьютерной морфометрии для объективной характеристики сперматозоидов при использовании в области вспомогательных репродуктивных технологий.

4. С помощью компьютерной морфометрии выявить наиболее информативные интегральные параметры сперматозоидов, пригодные для планирования лечения методами вспомогательных репродуктивных технологий.

5. На основании морфометрического анализа сперматозоидов выявить параллели между параметрами, полученными в результате интегрального качественного и количественного морфологического исследования.

НАУЧНАЯ НОВИЗНА ИССЛЕДОВАНИЯ.

Выявлены особенности морфологической оценки сперматозоидов при подготовке и проведении лечения бесплодия методом интрацитоплазматической инъекции сперматозоида, учет которых способствует повышению его эффективности. Установлены критерии оценки структур, которые обеспечивают прогнозирование успешности интрацитоплазматической инъекции сперматозоида. Обнаружена связь между качественной характеристикой строения сперматозоидов и качеством зигот, полученных при классическом экстракорпоральном оплодотворении. Выявлены параллели между параметрами качественного и количественного морфологического анализа сперматозоидов. Определены количественные параметры, характеризующие форму головки сперматозоида и, таким образом, адаптирующие методику качественного анализа для морфометрического компьютерного исследования спермы.

ПРАКТИЧЕСКАЯ ЗНАЧИМОСТЬ РАБОТЫ.

Знание структурных особенностей сперматозоидов, влияющих на развитие эмбрионов после интрацитоплазматической инъекции, позволит повысить эффективность лечения бесплодия методами вспомогательных репродуктивных технологий за счет улучшения результатов микроманипуляции и более глубокого и дифференцированного подхода к диагностике мужского бесплодия на уровне эмбриологической лаборатории. Выявленные морфометрические параметры сперматозоидов, имеющие прогностическое значение, будут способствовать увеличению надежности автоматизированного морфологического анализа спермы и скорейшему его распространению в лабораторной практике с целью стандартизации результатов исследования.

ПОЛОЖЕНИЯ, ВЫНОСИМЫЕ НА ЗАЩИТУ.

1. Критерии, разработанные на основе морфометрических параметров сперматозоидов, коррелирующих с успешностью лечения методами вспомогательных репродуктивных технологий, объективизируют систему качественного анализа их структурных элементов.

2. Оценка некоторых структурных особенностей сперматозоидов, отражающих их функциональное состояние — фактора формы круга головки, индекса множественных аномалий шеечного отдела, доли сперматозоидов с искривленными шейками, округлости головки, большой оси головки, отношения «большая/малая ось головки», фактора формы круга акросомы, фактора формы эллипса акросомы, округлости акросомы, малой оси акросомы, отношения «малая/большая ось акросомы», относительной площади акросомы, отношения «периметр/площадь акросомы» — должна быть дифференцированной при прогнозировании успешности лечения бесплодия методом интрацитоплазматической инъекции сперматозоида и методом классического экстракорпорального оплодотворения.

3. Благодаря выявленным параллелям с морфометрическими параметрами сперматозоидов (фактором формы круга головки фактором формы круга акросомы, фактором формы эллипса акросомы), качественные признаки формы головки сперматозоида и акросомы являются значимыми при прогнозировании успешности интрацитоплазматической инъекции сперматозоида.

— 9.

выводы.

1. Критерии, полученные при качественной оценке строения сперматозоидов с использованием индекса Крюгера, в случаях применения метода ЭКО положительно коррелировали не только с частотой оплодотворения и качеством дробления эмбрионов, но и с качеством зигот, что расширяет возможности прогнозирования результатов лечения. Индекс тератозооспермии в этих случаях не имел значения.

2. В случаях применения метода ИКСИ отмечена статистически значимая зависимость частоты имплантации от качественных морфологических характеристик сперматозоидов, причем корреляция с индексом Крюгера была отрицательной, а с индексом тератозооспермии — положительной, что следует использовать в практике для выбора метода оплодотворения.

3. Частота имплантации эмбрионов, полученных с помощью ИКСИ, не только не снижается с повышением относительного количества сперматозоидов с ярко выраженными отклонениями головок от нормального строения (гантелевидные, аморфные, чрезмерно большие, вакуолизированные, с дефектами акросом и аномалиями количества, повышенные величины индекса множественных аномалий головки), но и положительно коррелирует с ним, что может быть связано с более успешной селекцией оператором сперматозоидов с минимальными нарушениями структурной организации для инъекции в ооцит.

4. Повышенная частота встречаемости некоторых дефектов шеечного отдела (искривление, укорочение) и увеличение индекса множественных аномалий шейки в группе с безуспешными попытками ИКСИ свидетельствуют о снижении оплодотворяющей способности сперматозоидов с поврежденными шейками.

5. Определение доминирующей комплексной аномалии сперматозоидов по предложенным нами критериям в настоящее время не имеет клинического значения, но может найти применение при разработке автоматизированных компьютерных методов морфологического анализа спермы.

6. Определены дополняющие критерии ВОЗ морфометрические параметры, численно характеризующие форму головки сперматозоида и ее частей (фактор формы круга, фактор формы эллипса, округлость, отношение «периметр/площадь», отношение «малая/большая ось»), одни из которых могут быть использованы при компьютерной морфологической оценке спермы при ЭКО, другие имеют диагностическую ценность только в случаях применения метода ИКСИ. Эти критерии могут быть успешно использованы при качественном и количественном морфологическом анализе эякулята для эффективной диагностики мужского бесплодия и определения путей его преодоления.

ВНЕДРЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ В ПРАКТИКУ.

Обнаруженные особенности строения сперматозоидов и предложенные новые параметры их оценки позволяют использовать качественные и количественные методы интегрального морфологического анализа спермы для прогнозирования успешности ИКСИ и повышения эффективности микроманипуляции, а также могут быть положены в основу создания методов автоматизированной компьютерной морфометрии сперматозоидов для введения в практическую медицину.

Введение

результатов данной работы в практику Российско-американского центра репродукции и генетики человека и Сибирского института репродукции и генетики человека способствует более адекватному планированию тактики лечения методами вспомогательных репродуктивных технологий и в некоторых случаях позволяет избежать необоснованного применения ИКСИ за счет обоснования применения ЭКО или использования донорской спермы. Это дает возможность повысить эффективность лечения бесплодия, уменьшить психоэмоциональную нагрузку на пациентов и снизить финансовые и временные затраты.

— 115.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Г. Г. Морфометрия в патологии. М.: Медицина, 1973.248 с.
  2. Г. Г., Зукакова И. Б. К методике морфометрического исследования почек // Бюл. эксперим. биологии и медицины. 1975.-Т.80,-№ 7.-С. 122−124.
  3. Г. Г. Введение в количественную патологическую морфологию. М.: Медицина, 1980.-216 с.
  4. Г. Г., >1блучанский H.H., Губенко В. Г. Системная стереометрия в изучении патологического процесса. — М.: Медицина, 1981.— 192 с.
  5. Г. Г., Невзоров В. П., Невзорова О. Ф. Системный стереометрический анализ ультраструктур клеток. Кишинев: Штиинца, 1984.-186 с.
  6. Г. Г. Медицинская морфометрия. М.: Медицина, 1990.— 384 с.
  7. А.П., Шахламов В. А. Ультраструктурные основы патологии клетки. -М.: Медицина, 1979.-320 с.
  8. И.А., Брауде А. И., Аспиз М. Е. Основы функциональной морфологии клетки. М.: Медицина, 1969.-344 с.
  9. С.Б., Рыжаков Д. И. Диагностика и лечение заболеваний половой сферы у мужчин. Нижний Новгород: Изд-во Нижегородской гос. медицинской академии, 2003.-236 с.
  10. Ю.Бонашевская Т. И., Беляева H.H., Кумпан Н. Б., Панасюк JT.B. Морфо-функционалъные исследования в гигиене. М.: Медицина, 1984.-160 с.
  11. Г., Гуски X., Лушников Е. Ф., Загребин В. М. Основы морфо-метрии и ее применение в световой и электронной микроскопии // Арх. патологии-1977.-Т.39.-№ 9-С.80−87.
  12. O.A., Корсак B.C., Леонтьева O.A. Влияние морфологии сперматозоидов на частоту оплодотворения и нарушения развития эмбрионов в программе ЭКО // Цитология. 1996.-Т.38.-№ 2.-С. 12 481 254.
  13. З.Воробьева O.A., Скрипкина O.A., Корсак B.C. Методы оценки сперматозоидов и их прогностическое значение в программе ЭКО // Пробл. репрод. 1995.-Т. 1.-№ 3.-С.71−76.
  14. Н.Воробьева O.A., Филатов М. В., Леонтьева O.A. Значение анализа организации хроматина ядер сперматозоидов в диагностике мужского бесплодия // Пробл. репрод. 1997.-Т, 3.-№ 4.-С.23−26.
  15. П.Я. Исследование семени как метод определения плодовитости человека // Вопросы морфологии и физиологии. Рига, 1956.—№ 11.— С. 227.
  16. Гистология / Под ред. Афанасьева Ю. И., Юриной H.A.- М.: Медицина, 2001.-744 с.
  17. A.A. Геометрические методы количественного анализа агрегатов под микроскопом. Львов: Госгеолитиздат, 1941.-82 с.
  18. Ю.В., Лазюк Г. И., Гулькевич K.IO. Каузальный генез уродств и специфичность тератогенного воздействия // Арх. пат.— 1960.-№ 12.-С.З.
  19. A.A., Кондратьев Б. Ю. Практическая морфометрия органов и тканей. Томск: Изд-во Том. ун-та, 1988.-136 с.
  20. .У. Мужское бесплодие. Алма-Ата: Казахстан, 1991.— 200 с.
  21. А.Л., Иванков В.II. Морфология гамет животных. Значение для систематики и филогенетики. М.: Круглый год, 2000.-460 с.
  22. А.П. Очерки патологической анатомии человека. — М.:1959.23.3инкович И. И. Постнатальный морфогенез печени в норме и при стафилококковой инфекции: Дис.. канд. мед. наук. Донецк, 1983 -168 с.
  23. В.JI., Пинчук В. Г., Исакова JI.M. Современные методы автоматизации цитологических исследований. Киев: Наук, думка, 1988 — 216 с.
  24. С.А. Патология сперматогенеза. — JI.: Медицина, 1969.-215 с.
  25. С.А., Машапский В. Ф., Тиктинский O.JT., Кочура Г. М., Михай-личенко В.В., Скрябин Г. Н., Екимов М. В., Сизов М. Г. Новые данные об ультраструктуре сперматозоонов при некоторых формах патоспер-мии //Урология и нефрология-1987.—№ 1.-С.5 1−53.
  26. К.Ф., Вервильский Б. М. К вопросу окраски сперматозоидов быка // Лаб. практика-193 7.-№ 5.-С.4.
  27. Ф.С. К вопросу бесплодия // Сб. науч. тр. Ташкентского мед. ии-та. Ташкент, 1961.-Вып.18.-С.291.
  28. В.П. К вопросу о прижизненном микроскопическом строении сперматозоида человека // Цитология.-1963.-Т.5.-№ 4.-С.449.
  29. В.П. Изменение морфофункциональньтх свойств сперматозоидов мужчин при нарушениях нормального течения беременности у их жен // Тезисы докладов межобластной конференции акушеров-гинекологов и педиатров палат новорожденных. Львов, 1965 -С. 107.
  30. В.П. Люминесцентная и аноптральная микроскопия сперматозоидов человека при некоторых формах мужского бесплодия: Автореф. дис.. канд. мед. наук. Львов, 1969.
  31. В.М., Вржесипская O.A., Спиричев В. Б. Мужская фертиль-ность: возможная роль витаминов // Украинский биохимический журнал. 1994.-№ 66.-С. 17−22.
  32. М.В. Характеристика эякулята в оценке репродуктивных возможностей человека: Дис.. канд. мед. наук. Самара, 1999.-145 с.
  33. Контактные инфекции, передающиеся половым путем / Под ред. Мав-рова И.И.- Киев: Здоровья, 1989.-384 с.
  34. Концепция демографического развития Российской Федерации на период до 2015 года / Собрание законодательства РФ 2000—№ 2.
  35. Ю.В., Лежнев Э. И., Макарова О. П. Прижизненная морфомет-рия клеток. -М.: Наука, 1977.-129 с.
  36. М.А. Исследование спермы при бесплодном браке. Воронеж: Изд-во ВГУ, 1968.-1 12 с.
  37. М.А. Бесплодие в браке. М.: Медицина, 1973.-232 с.
  38. Л.Н., Кулаков В. И., Леонов Б. В. Экстракорпоральное оплодотворение: отбор, подготовка и тактика ведения больных. М.: Мир, 2001.-165 с.40Лакин Г. Ф. Биометрия. -М.: Высшая школа, 1968.-284 с.
  39. O.A., Воробьева O.A. Сравнительный анализ морфологии сперматозоидов человека: нативный эякулят прогрессивно подвижная фракция //Пробл. репрод. — 1999.-Т.5-№ 3.-С.29−36.
  40. A.C., Леонтюк Л. А., Сыкало А. И. Информационный анализ в морфологических исследованиях. Минск: Наука и техника, 1981.160 с.
  41. Е. Общая сперматология. Будапешт: Изд-во АН Венгрии, 1969.-294 с.
  42. М.Т. Семя // Руководство по лабораторным методам исследования / Предтеченский В. Е., Боровская В. М., Морголииа Л. Т. М., 1940.-С.452.
  43. П.Г. Мужское бесплодие: прецизионная диагностика. Кишинев: Штиинца, 1990.-88 с.
  44. Население России 2001. Девятый ежегодный демографический доклад / Ответственный редактор А. Г. Вишневский. Институт народнохозяйственного прогнозирования РАН. Центр демографии и экологии человека. М., 2002.
  45. JT.M., Лушникова Е. Л., Непомнящих Г. И. Морфометрия и етереология гипертрофии сердца. Новосибирск: Наука, 1986.-304 с. 49.0нищенко Г. Е. Центриолярный и центросомный циклы при дифферен-цировке и патологии. М.: Наука, 1993.-256 с.
  46. Ю.Л. Морфометрическое изучение почки в норме и при патологии: возможности и ограничения // Арх. патологии—1984—Т.46—№ 7 — С.78−84.5 1. Плохинский H.A. Биометрия. -М.: Изд-во МГУ, 1970.-367 с.
  47. И.М. Половые расстройства у мужчин. М., 1968.280 с.
  48. A.A. Ценное достижение в технике одновременного подсчета нормальных и патологических сперматозоидов // Животноводство.— 1959.-№ 2.-С.64.
  49. A.B. Бесплодие у мужчин как следствие микоплазма-инфекции // Актуальные вопросы сексопатологии.-Киев, 1984.-С.31.
  50. Руководство по гистологии. В 2 т. T. II / Под ред. Данилова Р. К., Быкова В. Л., Одинцова И.А.- СПб.: Спецлит, 2001.-735 с.
  51. Д.И., Артифексов С. Б. Мужское бесплодие и сексуальные дисфункции. Нижний Новгород: Изд-во Нижегородской гос. медицинской академии, 2002. — 308 с.
  52. К.П. Гистология с основами эмбриологии. Мн.: Вышэйшая школа, 1990.-255 с.
  53. С.А. Стереометрическая металлография. М.: Металлургия, 1970.-376 с.
  54. В.В., Пауков B.C. Ультраструктурная патология. М.: Медицина, 1975.-432 с.
  55. И.И., Ойвадис Г., Абилов И. и др. О значении акросомы в оценке семени самцов // Животноводство-1981.-№ 9—С.46−47.
  56. P.A., Тамашаускас К. А., Якубаускайте Б. Б. Применение точечного счета для количественного изучения нервных структур. — В кн.: Общин закономерности морфогенеза и регенерации. Каунас, 1976.-С.68−69.
  57. А.И., Кактурский JI.B. О применении морфометрии в патологической анатомии // Арх. патологии-1979.-Т.41 .-№ 6.-С.З-9.
  58. К. Введение в количественную цитогистологическую морфологию. Бухарест: Изд-во АН Румынии, 1980.-192 с.
  59. О.Л., Новиков И. Ф., Михайличенко В. В. Заболевания половых органов у мужчин. JT.: Медицина, 1985.-296 с.
  60. Тиктинский O. JL, Михайличенко В. В. Андрология. СПб.: Медиа Пресс, 1999.-464 с.
  61. Т.Т. Состояние сперматогенеза у больных сахарным диабетом в возрастном аспекте // Мед. журн. Узбеки стана.-1975.-№ 12.
  62. К.С. Стереология в металловедении. М.: Металлургия, 1977.-280 с.
  63. Экстракорпоральное оплодотворение и его новые направления в лечении женского бесплодия / Под ред. Кулакова В. И., Леонова Б.В.- М.: Медицинское информационное агентство, 2000.-782 с.
  64. И.Ф. Болезни мужских органов. К.: Здоровья, 1989.-272 с.
  65. И.Ф., Иванюта Л. И., Илишинецкая Л. П. и др. Бесплодие в супружестве. Киев: Здоровья, 1990.-463 с.
  66. A.C., Кац В.А. Современная морфометрия в электронной микроскопии биологических и медицинских объектов // Вестн. АМН СССР-1974-№ 12.-С.77−83.
  67. Aitken R.J., Clarkson J.S. Significance of reactive oxygen species and antioxidants in defining the efficacy of sperm preparation techniques // J. An-drol.-1988.-№ 9.-P.367−376.
  68. Alper M.M., Lee G.S., Seibel M.M. et al. The relationship of semen parameters to fertilization in patients participating in a program of in vitro fertilization //J. In Vitro Feitil. Embryo Transfer. 1985.-№ 2.-P.217−223.
  69. Angelopoulos T. et al. Simultaneous assessment of sperm chromatin condensation and morphology before and after separation procedures: effect on the clinical outcome after in vitro fertilization // Fertil. Steril.—1998.— Vol.69.-P.740−747.
  70. Ao A., Erickson R.P., Winston R.M.L., Handyside A.H. Transcription of paternal Y-linked genes in the human zygote as early as the pronucleate stage // Zygote.-l 994,-VoI.2.-P.281 -287.
  71. Avery S., Marriott V., Mason B. et al. An assessment of efficiency of various sperm preparation techniques / Presented at the Vth World Congress on I VF and ET, Norfolk, Virginia. Program Suppl. 1987.-№ 85.-P.58.
  72. Aziz N., Buchan I., Taylor C. et al. The sperm deformity index: a reliable predictor of the outcome of oocyte fertilization in vitro // Fertil. Steril.— 1996.-Vol.66.-P. 1000−1008.
  73. Aziz N., Saleh R.A., Sharma R.K. et al. Novel association between sperm reactive oxygen species production, sperm morphological defects, and the sperm deformity index // Fertil. Steril.-2004.-Vol.81-№ 2.-P.349−354.
  74. Baccetti B., Renieri T., Rosati F. et al. Further observations on the morphogenesis of the round headed human spermatozoa // Andrologia-1977.-Vol.9.-P.255−264.
  75. Baccetti B., Fraioli F., Paolucci D. et al. Double spermatozoa in a hyperprolactinemic man // J. Submicrosc. Cytol.-1978.-Vol.l0.-P.240−260.
  76. Baccetti B., Burrini A.G., Collodel G. et al. Crater defect in human spermatozoa// Gamete Res.-1989.-Vol.22.-P.249−255.
  77. Bartoov B., Eltes F., Lumenfeld E. et al. Sperm quality of subfertile males before and after treatment with human follicle-stimulating hormone // Fertil. Steril.-1994.-Vol.61.-P.727−733.
  78. Bartoov B., Zabludovsky N., Eltes F. et al. Semen quality of workers exposed to ionizing radiation in decontamination work after the Chernobyl nuclear reactor accident // Int. J. Occup. Environ. Hcalth.-1997.-Vol.3.-P. 198 203.
  79. Bartoov B., Berkovitz A., Eltes F. et al. Real-time fine morphology of motile human sperm cells is associated with IVF-ICSI outcome // J. Androl-2002.-Vol.23.-P. 1−8.
  80. Berkovitz A., Eltes F., Yaari S. et al. The morphological normalcy of the sperm nucleus and pregnancy rate of intracytoplasmic injection with morphologically selected sperm // Hum. Reprod.-2005.-Vol.20.-№ 1.-P.185−190.
  81. Biljan M.M., Taylor C.T., Manasse P.R. et al. Evaluation of different sperm function tests as screening methods for male fertilization potential — the value of the sperm migration test // Fertil. Steril.-1994.-Vol.62.-P.591−598.
  82. Bonduelle M., Liebaers I., Deketelaere V. et al. Neonatal data on a cohort of 2889 infants born after ICSI (1991−1999) and of 2995 infants born after IVF (1983−1999) //Hum. Reprod.-2002.-Vol. 17.-P.671−694.
  83. Bostoffe E., Serup J., Rebbe H. Relation between morphologically abnormal spermatozoa and pregnancies obtained during a twenty-year follow-up period // Int. J. Androl.-1982.-Vol.5-P.379−386.
  84. Braude P., Bolton V., Moore S. Human gene expression first occurs between the four and eight-cell stages of preimplantation development // Na-ture.-1988.-Vol.332.-P.459−461.
  85. BuiTuel V.R., Yanagimachi R., Whitten W.K. Normal mice develop from oocytes injected with spermatozoa with grossly misshapen heads // Biol. Reprod.-1996.-Vol.55.-P.709−714.
  86. Bustos-Obregon E., Diaz O., Sobarzo C. Parathion induces mouse germ cells apoptosis // Ital. J. Anat. Embryol.-2001.-Vol.106.-Suppl.2.-P. 199 204.
  87. Calvo L., Dennison-Lagos L., Bank, S.M. et al. Acrosome reaction induci-bility predicts fertilization success at in-vitro fertilization // Hum. Reprod.-1994.-Vol.9.-P. 1880−1886.
  88. Camatini M., Franchi E., Faleri M. Ultrastructure of acrosomal malformations in men with obstructive azoospermia // Archs. Androl.-1978.-Vol. 1 .— P.203−209.
  89. Carlsen E., Giwercman A., Keiding N. et al. Evidence for decreasing quality of semen during past 50 years// Br. Med. J.-1992.~Vol.305.-P.609−613.
  90. Carothers A.D., Beatty R.A. The recognition and incidence of haploid and polyploid spermatozoa in man, rabbit and mouse // J. Reprod. Fertil.—1975.— Vol.44.-P.487−500.
  91. Chan S.Y.W., Wang C., Chan S.T.H. et al. Predictive value of sperm morphology and movement characteristics in the outcome of in vitro fertilization of human oocytes // J. in Vitro Fertil. Embryo Transfer- 1989.-Vol.6-№ 3.-P.142−148.
  92. Cheines H. Phenotypes of sperm pathology: genetic and acquired forms in infertile men // J. Androl.-2000.-Vol.21 .-P.799−808.
  93. Chcmes H., Brugo Olmedo S., Carrere C. et al. Ultrastructural pathology of the sperm flagellum. Association between flagellar pathology and fertility prognosis in severely asthenozoospermic men // Hum. Reprod.-1998.-Vol.13.-P.2521−2526.
  94. Cheines H.E., Puigdomenech E.T., Carizza C. et al. Acephalic spermatozoa and abnormal development of the head-neck attachment. A human syndrome of genetic origin // Hum. Reprod.-l 999.-Vol. 14.-P. 1811−1818.
  95. Cheines H.E., Rawe V.Y. Sperm pathology: a step beyond descriptive morphology. Origin, characterization and fertility potential of abnormal sperm phenotypes in infertile men // Hum. Reprod. Update.-2003.-Vol.9.-№ 5.-P.405−428.
  96. Chen S.U. et al. Comparison between a two-layer discontinuous Per-coll gradient and swim-up for sperm preparation on normal and abnormal semen samples // Assist. Repros. Genet.-1995.-Vol.l2.-№ 10.-P.698−703.
  97. Coetzee K., Kruger T.F., Lombard C.J. Predictive value of normal sperm morphology: a structured literature review // Hum. Reprod. Update.— 1998.-Vol.4.-№ 1 .-P.73−82.
  98. Contreras H.R., Bustos-Obregon E. (1999) Morphological alterations in mouse testis by a single dose of malathion // J. Exp. Zool.-1999.-Vol.3-P.355−359.
  99. Coskun S., Jaroudi K., AI-Hassan S. et al. Unexplained Infertility: ICSI or Not to ICSI // Fertil. Steril.-2000.-Vol.74.-№ 3.-Suppl.l.-P.S156.
  100. Cui K.-H. Size differences between human X and Y spermatozoa and prefertilization diagnosis // Mol. Hum. Reprod.-1997.-Vol.3.-P.61−67.
  101. Cutter E. Die manliche Infertilitat // Med. Wed. NY.-1886.-Vol.4-P.18.
  102. David G., Bisson J.P., Czyglik F. et al. Anomalies morphologiques de spermatozoide humain. 1. Propositions pour un systeme de classification // J. Gynekol. Obstet. Biol. Reprod.-1975.-Vol.4.-Suppl.l.-P.17−36.
  103. Davis R.O., Bain D.E., Siemers R.J. et al. Accuracy and precision of the CellForm-Human automated sperm morphometry instrument // Fertil. Steril.-l 992.-Vol.58.-P.76−79.
  104. Davis R.O., Gravance C.G. Standardization of specimen preparation, staining and sampling methods improves automated sperm-head morphometry analysis//Fertil. Steril.-1993.-Vol.59.-P.412−417.
  105. De Vos A., Van De Velde H., Joris H. et al. Influence of individual sperm morphology on fertilization, embryo morphology, and pregnancy outcome of intracytoplasmic sperm injection // Fertil. Steril.-2003.-Vol.79.-№l.-P.42−48.
  106. Dittrich R., Maltaris T., Dragonas C. et al. Individual assessment of sperm morphology of single spermatozoa used for intracytoplasmic sperm injection // Andrologia.-2005.-Vol.37.-№ I .-P.53−56.
  107. Eliasson R. Standards for investigation of human semen? // Androlo-gie.-1971 -Vol.3.-P.49−64.
  108. Elizur S., Levron J., Seidman D. et al. Comparison of ICSI and conventional IVF on sibling oocytes in couples with or without mild male factor infertility // Fertil. Steril.-Vol.78.-№ 3.-Suppl. I.
  109. ElJack A.H., Hrudka, F. (1979) Patterns and dynamics of teratospermia induced in rams by parenteral treatment with ethylene dibromide // J. Ultrastruct. Res.-1979.-Vol.67.-P.124−134.
  110. Eningsu M.E., Dumoulin C.J.M., Pieters M.M.E.C. et al. Evaluation of human sperm morphology using strict criteria after Diff-Quik staining: correlation of morphology with fertilization in vitro // Hum. Reprod.-l 991 — Vol.6.-P.854−858.
  111. Enginsu M.E., Pieters M.H.E.C., Dumoulin J.C.M. et al. Male factor as determinant of in-vitro fertilization outcome // Hum. Reprod.-l 992-Vol.7.-P.l 136−1140.
  112. ESHRE Andrology Special Interest Group. Guidelines on the application of CASA technology in the analysis of spermatozoa // Hum. Reprod-1998.-Vol.13.-P. 142−145.
  113. Evenson D.P., Jost L.K., Marshall D. et al. Utility of the sperm chromatin structure assay as a diagnostic and prognostic tool in the human fertility clinic // Hum. Reprod.-1999.-Vol.14.-P. 1039−1049.
  114. Fischbcin A., Zabludovsky N., Eltes F. et al. Ultramorphological sperm characteristics in the risk assessment of health effects after radiation exposure among salvage workers in Chernobyl // Environ. Health Perspect.— 1997-Vol. 105.-P. 1445−1449.
  115. Florence L.H. et al. Comparison of Percoll and swim-up methods for sperm preparation from abnormal semen samples // Hum. Reprod.-1992.-~ Vol.2.-P.261−266.
  116. Francavilla F., Romano R., Santucci R., Poccia G. Effect of sperm morphology and motile sperm count on outcome of intrauterine insemination in oligospermia and/or asthenozoospermia // Fertil. Steril.—1990.— Vol.53.-P.892−897.
  117. Franken D.R. et ai. Sperm-zona pellucida binding and penetration assays / Acosta A.A., Kruger T.F. (eds.) // Human Spermatozoa in Assisted Reproduction-Parthenon Publishing Company, New York.-1996.-P.237.
  118. Fredricsson B., Bjork R. Morphology of postcoital spermatozoa in the cervical secretion and its clinical significance. Fertil. Steril.-1977.-Vol.28.-P.841−845.
  119. Freund M. Standards for the rating of human sperm morphology // Int. J. Fertil.-1966.-Vol. 11 .-P.97−118.
  120. Garrett C., Bake, H.W.G. A new fully automated system for the morphometry analysis of human sperm heads // Fertil. Steril.-1995.-Vol.63.-P.1306−1317.
  121. Garrett C., Liu D.Y., Baker H.W.G. Selectivity of the human sperm-zona pellucida binding process to sperm head morphometry // Fertil. Steril — 1997-Vol. 67.-P.362−371.
  122. Gebreegziabher Y., Marcos E., McKinon. W. et al. Sperm characteristics of endurance trained cyclists // Int. J. Spoils. Med.-2004.-Vol.25.-№ 4-P.247−251.
  123. Harrison K.L. Semen parameter defects and toxin contact related occupation in infertility patients // Middle East Fertil. Soc. J.-1998.-Vol.3.-P.3−10.
  124. Hinting A., Comhaire F., Vermeulen L. et al. Value of sperm characteristics and the result of in-vitro fertilization for predicting of the outcome of assisted reproduction // Int. J. Androl.-1990.-Vol.l3-P.59−66.
  125. Hoffmann G.E., Santilli B.A., Kindig S. et al. Intraobserver, interobserver variation of sperm critical morphology: comparison of examiner and computer-assisted analysis // Fertil. Steril.-l 996.-VoL65.-P. 1021−1025.
  126. Hoffman N., Haider S.G. Neue Ergebnisse morphologischer Diagnostik der Spermatogenesestorungen // Gynakologe-1985 -Vol.18 -P.70−80.
  127. Holstein A.F. Morphologische Studien an abnormen spermatiden und spermatozoen des menschen // Virchows Arch-1975.-№ 367.-P.93−112.
  128. Host E., Ernst E., Lindenberg S., Smidt-Jensen S. Morphology of spermatozoa used in IVF and ICSI from Oligozoospermie men // Reprod. Biomed. 0nline.-2001 .-Vol.3.-№ 3.-P.212−215.
  129. Huwe P., Diemer T., Ludwig M. et al. Influence of different uropatho-genic microorganisms on human sperm motility parameters in an in vitro experiment//Andrologia.-l 998.-Vol.30.-P.55−59.
  130. Irvine D.S., Macleod I.C., Templeton A.A. et al. A prospective clinical study of the relationship between the computer-assisted assessment of human semen quality and the achievement of pregnancy in vivo // Hum. Re-prod.-1994.-Vol.9.-P.2324−2334.
  131. Jouannet P., Ducot B., Feneux D., Spira A. Male factors and the likelihood of pregnancy in infertile couples. 1. Study of sperm characteristics // Int. J. Androl.-1988.-Vol. 11 .-P.379−394.
  132. Kanwar K.C., Yanagimachi R., Lopata A. Effects of human seminal plasma on fertilizing capacity of human spermatozoa // Fertil. Steril.-1979.-Vol.31.-P.321−327.
  133. Kartagener M.I. Mitteilung: Bronchiektasien bei situs viscerum inversus // Beitr. Klin. Tuberk.-1935.-Vol.83.-P.489.
  134. Katz D., Diel L., Overstreet J. Differences in the movement of morphologically normal and abnormal human seminal spermatozoa // Biol. Re-prod.-1982.-Vol.26.-P. 5 5 6−5 70.
  135. Katz D., Morales P., Samuels S., Overstreet J. Mechanisms of filtration of morphologically abnormal human sperm by cervical mucus // Fertil. Steril-1990-Vol.54.-P-513−516.
  136. Katz D.R., Overstreet J.W., Samuels S.J. et al. Morphometric analysis of spermatozoa in the assessment of human male fertility // J. Androl.-1986.-Vol.7-P.203−210.
  137. Kishikawa H., Tateno H., Yanagimachi R. Chromosome analysis of BALB/c mouse spermatozoa with normal and abnormal head morphology // Biol. Reprod.-1999.-Vol.61 .-P.809−812.
  138. Kobayashi T., Jinno M., Sugimura K. et al. Sperm morphological assessment based on strict criteria and in vitro fertilization outcome // Hum. Reprod.-l 991.-Vol.6.-P.983−986.
  139. Kremer J. The in vitro spermatozoal penetration test in fertility investigations: Ph.D. dissertation.—University of Groningen, The Netherlands-1968.
  140. Kruger T. Computer-assisted sperm analysis systems: morphometric aspects // Hum. Reprod.-1995.-Vol. 10.-Suppl. 1 .-P.46−52.
  141. KrugerT.F., Acosta A.A., Simmons K.F. et al. Predictive value of abnormal sperm morphology in in vitro fertilization // Fertil. Steril.—1988.— Vol.49.-P. 112−117.
  142. Kruger T. F, du Toit T.C., Franken D.R. et al. Sperm morphology: assessing the agreement between the manual method (strict criteria) and the sperm morphology analyzer IVOS // Fertil. Steril.-1995-Vol.63.-P.134−141.
  143. Kruger T.F., Lacquet L. A., Sarmiento C.A.S. et al. A prospective study on the predictive value of normal sperm morphology evaluated by computer (IVOS) // Fertil. Steril.-1996.-Vol.66.-№ 2.-P.285−291.
  144. Kruger T.F., Menkveld R., Stander F.S.H. et al. Sperm morphologic features as a prognostic factor in in vitro fertilization // Fertil. Steril.—1986.— Vol.46.-P.l 118−1 123.
  145. Krzanowska H. Sperm head abnormalities in relation to the age and strain of mice//J. Reprod. Fertil.-l 981 .-Vol.62.-P.385−392.
  146. Kupker W., al-Hasani S., Schulze W. et al. Morphology in intracyto-plasmic sperm injection // Gynakol Geburtshilfliche Rundsch-1995 -Vol.35.-Suppl.l -P.132−136.
  147. Lee J.D. et al. Analysis of chromosome constitution of human spermatozoa with normal and aberrant head morphologies after injection into mouse oocytes // Hum. Reprod.-1996.-Vol.9.-P. 1942−1946.
  148. Lewis-Jones L, Aziz N., Seshadri S. et al. Sperm chromosomal abnormalities arc linked to sperm morphologic deformities // Fertil. Steril.— 2003.-Vol.79.-№ 1 -P.212−215.
  149. L.I. 'The debate continues' the continuing debate over the possible decline in semen quality // Fertil. Steril.-1996.-Vol.65.-P.909−91 1.
  150. Liu D.Y., Baker H.W.G. Morphology of spermatozoa bound to the zona pellucida of human oocytes that failed to fertilize in vitro // J. Reprod. Fertil.-l 992.-Vol.94.-P.71−84.
  151. Liu J., Nagy Z.P., Joris H. et al. Analysis of 76 total fertilization failure cycles out of 2732 intracytoplasmic sperm injection cycles // Hum. Re-prod.-1995.-Vol. 10.-P.2630−2636.
  152. Liiders G. Ein dcfckt der kopf-schwanz-verknuEpfung beim menschlichen spennatozoen // Andrologia.-1976.-Vol.8.-P.365−368.
  153. MacLeod J., Gold R.Z. The male factor in fertility and infertility. IV. Sperm morphology in fertile and infertile marriage // Fertil. Steril.— 1951 .— Vol.2.-P.394−414.
  154. Marsh S. et al. The effect of morphology on the ability of human spermatozoa to penetrate zona-free hamster oocytes // Aum. Reprod-1987.-Vol.2.-P.499−503.
  155. Martin R.H., Rademaker A. The relationship between sperm chromosomal abnormalities and sperm morphology in humans // Mutat. Res.— 1988.-Vol.207.-P. 159−164.
  156. Megory E., Zuckerman H., Shoham Z., Lunenfeld B. Infectionsand male fertility // Obstet. Gynecol. Surv.-1987.-Vol.42.-P.283−290.
  157. Menkveld R., Franken D.R., Kruger T.F. et al. Sperm selection capacity of the human zona pellucida // Mol. Reprod. Dev.-1991.-Vol.30.-P.346−352.
  158. Menkveld R., Kruger T.F. Sperm morphology and male urogenital infections // Andrologia.-1998.-Vol.30.-Suppl. 1 -P.49−53.
  159. Mieusset R. Influence of lifestyle on male infertility: potential testicular heating factors // Middle East Fertil. Soc. J.-1998-Vol.3.-Suppl. 1 .-P.40−45.
  160. Milatiner D., Halle D., Huerta M. et al. Associations between androgen receptor CAG repeat length and sperm morphology // Hum. Reprod.-2004.-Vol. 19-№ 6.-P. 1426−1430.
  161. Monch G.L. Zur Frage der menschlichen Sterilitat // Zbl. Gynal — 1927.-Vol.43.-P.2730.
  162. Monch G.L. Sperm morphology in relation to Fertility // Am. J. Obstet. Gynecol-1931 .-Vol.22.-№ 2.-P. 199.
  163. Morales P., Vantman D., Barros C., Vigil P. Human spermatozoa selected by Percoll gradient or swim-up are equally capable of binding to the human zona pellucida and undergoing the acrosome reaction // Hum. Re-prod.-l 991 .-Vol.6.-P.401−404.
  164. Mortimer D. Sperm preparation methods // J. Androl.-2000.-Vol.21.-№ 3.-P.357−366.
  165. Mortimer D., Leslie E.E., Kelley R.W. et al. Morphological selection of human spermatozoa in vivo and in vitro // J. Reprod. Fertil.-1982.-Vol.64.-P.391−399.
  166. Mortimer D., Mortimer S.T. Methods of sperm preparation for assisted reproduction // Ann. Acad. Med. Singapore- 1992.-Vol.21.--P.517−524.
  167. Mortimer D., Mortimer S.T. Value and reliability of CASA systems / Ombelet W., Bosmans E., Vandeput H. et al., eds. Modern ART in the 2000s.-Carnforth, UK: Parthenon Publishing, 1998.-P.73−89.
  168. Mortimer S.T., Swan M.A., Mortimer D. Effect of seminal plasma on capacitation and hyperactivation in human spermatozoa // Plum. Reprod.-1998 -Vol. 13.-P.2139−2146.
  169. Naftulin B.N., Samuels S.J., Hellstrom W.J. Semen quality in varicocele patients is characterized by tapered sperm cells // Fertil. Steril.—1991 .— Vol.56.-P. 149−151.
  170. Nagy Z.P., Liu J., Joris H. et al. The result of intracytoplasmic sperm injection is not related to any of the three basic sperm parameters // Hum. Reprod.-1995.-VoI.10.-P.l 123−1129.
  171. Nagy Z.P., Verheyen G., Liu J. et al. Results of 55 intracytoplasmic sperm injection cycles in the treatment of male-immunological infertility // Hum. Reprod.-1995.-Vol. 10.-№ 7.-P. 1775−1780.
  172. Nikolettos N., Kupker W., Dcmirel C. et al. Fertilization potential of spermatozoa with abnormal morphology // Hum. Rcprod.-1999.-Vol. 14.-P.47−70.
  173. O’Connell M.O., Me Clure N., Lewis S.E.M. The effects of cryopre-servation on sperm morphology, motility and mitochondrial function // Hum. Reprod.-2002.-Vol. 17.-P.704−709.
  174. Oehninger S. et al. Defective calcium influx and acrosome reaction (spontaneous and progesterone-induced) in spermatozoa of infertile men with severe teratozoospermia // Fertil. Steril.-l994.-Vol.61 .-P.349−354.
  175. Oehninger S., Acosta A.A., Kruger T.F. et al. Failure of fertilization in in vitro fertilization: the «occult» male factor // J. In Vitro Fertil. Embryo Transfer.-1988.-Vol.5.-P. 181−187.
  176. Ombelet W., Bosmans E., Janssen M. et al. Semen parameters in a fertile versus subfertile population: a need for change in interpretation of semen testing//Hum. Reprod.-1997.-VoI.12.-P.987−993.
  177. Ombelet W., Fourie F., Vandeput FI. et al. Teratozoospermia and in vitro fertilization: a randomized prospective study // Hum. Reprod.-1994-Vol.9.-P. 1479−1484.
  178. Ombelet W., Pollet FI., Bosmans E., Vereecken A. Results of a questionnaire on sperm morphology assessment// Hum. Reprod.-1997.-Vol.12-№ 5.-P.1015−1020.
  179. Osawa Y., Sueoka K., Iwata S. et al. Assessment of the dominant abnormal form is useful for predicting the outcome of intracytoplasmic sperminjection in the case of severe teratozoospermia // J. Assist. Reprod. Genet.-1999-Vol. 16.-№ 8.-P.436−442.
  180. Palermo G., Joris H., Devroey P., Van Steirteghem A.C. Pregnancies after intracytoplasmic injection of single spermatozoon into an oocyte // Lancet.-1992.-Vol.340.-P. 17−18.
  181. Parinaud J., Mieusset R., Vieitez G. et al. Influence of sperm parameters on embryo quality // Fertil. Steril.-1993.-Vol.60.-P.888−892.
  182. Pedersen H., Fawcett D.W. Functional anatomy of the human spermatozoon / Hafez E.S.E., ed. Fluman Semen and Fertility Regulation in Men-St Louis, CV Mosby Company, 1976.-P.65−75.
  183. Purvis K., Christiansen E. Infection in the male reproductive tract: impact, diagnosis and treatment in relation to male infertility // Int. J. An-drol.-1993.-Vol.16.-P. 1−13.
  184. Rawe V.Y., Galavei «na G.D., Acosta A.A., et al. Incidence of tail structure distortions associated with dysplasia of the fibrous sheath in human spermatozoa// Hum. Reprod.-2001.-Vol.l6.-P.879−886.
  185. Rawe V.Y., Terada Y., Nakamura S. et al. A pathology of the sperm centriole responsible for defective sperm aster formation, syngamy and cleavage // Hum. Reprod.-2002.-Vol. 17.-P.2344−2349.
  186. Reichart M., Eltes F., Soffer Y. et al. Sperm ultramorphology as a pathophysiological indicator of spermatogenesis in males suffering varicocele // Andrologia.-2000.-Vol.32.-P. 139−145.
  187. Robinson J.N., Lockwood M., Dokras A. et al. Does isolated teratozoospermia affect performance in in-vitro fertilization and embryo transfer? // Hum. Reprod.-l 994-Vol.9.-P.870−874.
  188. Rossman C.M., Forrest J.B., Less R.M. et al. The dyskinetic cilia syndrome: abnormal ciliary motility in association with abnormal ciliary ultrastructure //Chest.-1981,-Vol.80.-P.860−865.
  189. Saias-Magnan J., Metzler-Guillemain C., Mercier G. et al. Failure of pregnancy after intracytoplasmic sperm injection with decapitated spermatozoa: case report // Hum. Reprod.-1999.-Vol. 14.-P. 1989−1992.
  190. Sakkas D., Manicardi G.C., Tomlinson M. et al. The use of two dense degraded centrifugation techniques and swim-up sperm separation to separate spermatozoa with chromatin and nuclear DNA anomalies // Hum. Re-prod.-2000.-Vol. 15.-P. 11 12−11 16.
  191. Salumets A., Suikkari A.-M., Mols T. et al. Influence of oocytes and spermatozoa on early embryonic development // Fertil. Steril.-2002-Vol.78.-№ 5.-P. 1082−1087.
  192. Sauer M.V., Bustillo M., Serarni P. Transient acrosomal hypoplasia of spermatozoa and male fertility // Arch. Androl-1989-Vol.22.-P.95−98.
  193. Seuanez H.N., Carothers A.D., Martin D.E. et al. Morphological abnormalities in spermatozoa of man and great apes // Nature-1977,-Vol.270.-P.345−347.
  194. Schevchenko V.A., Ramaya L.K., Pomerentseva M.D. et al. Genetic effects of 131 I in reproductive cells of male mice // Mutat. Res.-1989-Vol.226-P.87−91.
  195. Schmiady H., Radke E., Kentenich H. Round-headed spermatozoa -contraindication for IVF // Geburtshilfe Fraucnheilkd.-1992.-Vol.52.-P.301−303.
  196. Schoevaert D. Automated recognition and morphological analysis of human spermatozoa / Robard D., Forti G., eds. Computers in endocrinology .-New York: Raven Press, 1984.-P.187−199.
  197. Scott L. et al. The morphology of human pronuclear embryos is positively related to blastocyst development and implantation // Hum. Reprod-2000-Vol. 15.-№ 11 -P.2394−2403.
  198. Shalika S. et al. Mono-Percoll separation technique improves sperm recovery of normal and male factor specimens when compared with the swim-up technique// Hum. Reprod.-l 995,-Vol. 10.-P.3195−3197.
  199. Sobarzo C., Bustos-Obregon E. Sperm quality in mice acutely treated with parathion // Asian J. Androl.-2000.-Vol.2.-P. 147−150.
  200. Sofikitis N., Miyagawa I., Dimitriadis D. et al. Effects of smoking on testicular function, semen quality and sperm fertilizing capacity // J. Urol.-1995,-Vol. 154.-P. 1030−1034.
  201. Spano M., Cordelli E., Leter G. et al. Nuclear chromatin variations in human spermatozoa undergoing swim-up and cryopreservation evaluated by ilow cytometric sperm chromatin structure assay // Mol. Hum. Reprod.— 1999.-Vol.5-P.29−37.
  202. Svalander P., Jakobsson A.H., Forsberg A.S. et al. The outcome of in-tracytoplasmic sperm injection is unrelated to 'strict criteria' sperm morphology//Hum. Reprod.-l 996.-Vol. 11 .-№ 5 .-P. 1019−1022.
  203. Sukcharoen N., Sithipravej T., Promviengchai S. et al. Sperm morphology evaluated by computer (IVOS) cannot predict the fertilization rate in vitro after intracytoplasmic sperm injection // Feitil. SteriL-1998.-Vol.69.-№ 3.-P.564−568.
  204. Tasdemir I., Tasdemir M., Tavukcuoglu S. et al. Effect of abnormal sperm head morphology on the outcome of intracytoplasmic sperm injection in humans // Hum. Reprod.-1997.-Vol.12-№ 6.-P.1214−1217.
  205. Tesarik J., Mcndoza C., Greco E. Paternal effects acting during the first cell cycle of human preimplantation development after ICSI // Hum. Reprod.-2002.-Vol. 17.-№ 1 .-P. 184−189.
  206. Thonneau P., Bujan L., Multigner L., Mieusset R. Occupational heat exposure and male fertility: a review // Hum. Reprod.—1998.—Vol. 13 — P.2122−2125.
  207. Van der Spoel A.C., Jeyakumar M., Butters T.D. et al. Reversible infertility in male mice after oral administration of alkylated imino sugars: a nonhormonal approach to male contraception // Proc. Natl. Acad. Sci. USA.-2002.-Vol.99.-P. 17 173−17 178.
  208. Van Der Zvalmen P. et al. Sperm morphology and IVF pregnancy rate: comparison between Percoll gradient centrifugation and swim-up procedure// Hum. Reprod-1991 -Vol.4.-P.581−588.
  209. Vazquez-Levin M.H., Friedman P., Goldberg S.l. et al. Response of routine semen analysis and critical assessment of sperm morphology by Kruger classification to therapeutic varicocelectomy // J. Urol-1997.-Vol.158.-P. 1804−1807.
  210. Vegetti W., Van Assche E., Frias A. et al. Correlation between sperm parameters and sperm aneuploidy rates investigated by fluorescence in-situ hybridization in infertile men // Hum. Reprod.-2000.-Vol.l5.-№ 2.-P.351−365.
  211. Vicari E., Perdichizzi A., De Palma A. et al. Globozoospermia is associated with chromatin structure abnormalities: case report // Hum. Reprod — 2002.-Vol.l7.-P.2128−2133.
  212. Whorton M.D., Meyer C.R. Sperm count results from 861 American chemical agricultural workers from 14 separate studies // Fertil. Steril.— 1981.-Vol.35.-P.46−53.
  213. World Health Organization. Impact of the environment on reproductive health. Report and recommendations of a WHO international workshop // Dan. Med. Bull.—1991 .-Vol.38.-P.425.
  214. World Health Organization (WHO). Towards more objectivity in diagnosis and management of male infertility. Results of a World Health Organization multicenter study // Int. J. Androl.-1987.-Suppl.7.
  215. World Health Organization. WHO Laboratory Manual for the Examination of Human Semen and Semen-cervical Mucus Interaction, 1st edn.-Singapore: Press Concern, 1980.
  216. World Health Organization. WHO Laboratory Manual for the Examination of Human Semen and Semen-cervical Mucus Interaction, 2nd edn.-Cambridge University Press, Cambridge, 1987.
  217. World Health Organization. WHO Laboratory Manual for the Examination of Human Semen and Semen-cervical Mucus Interaction, 3rd edn.-Cambridge University Press, Cambridge, 1992.
  218. World Health Organization. WHO Laboratory Manual for the Examination of Human Semen and Semen-cervical Mucus Interaction, 4th edn.-Cambridge University Press, Cambridge, 1999.
  219. World Health Organization. WHO manual for the standardized investigation and diagnosis for the infertile couplc.-Cambridge University Press, Cambridge, 1993.
  220. Yanagimachi R. Mammalian fertilization / Knobil E., Neill J.D., eds. The Physiology of Reproduction. 2nd ed.-New York: Raven Press- 1994.
  221. Yogev L., Kleiman S., Shabtai E. et al. Seasonal variations in pre- and post-thaw donor sperm quality // Hum. Reprod.-2004.—Vol.l9.-№ 4.-P.880−885.
  222. Zamboni L. The ultrastructural pathology of the spermatozoon as a cause of infertility: the role of electron microscopy in the evaluation of semen quality // Fertil. Steril.-1987.-Vol.48.-P.711−734.
  223. Zamboni L. Sperm structure and its relevance to infertility. An electron microscopic study // Arch. Pathol. Lab. Med.-1992.-Vol.l 16.-P.325−344.
  224. Zaneveld L.J.D., Polakoski K.L. Collection and physical examination of the ejaculate / In Hafez E.S.E. (ed.), Techniques of Human Andrology.-Elsevier/North-Holland Biomedical Press, Amsterdam, 1977.-P.147−172.
  225. Zinaman M.J., Uhler M.L., Vertuno E. et al. Evaluation of computerassisted semen analysis (CASA) with IDENT stain to determine sperm concentration //J. Androl.-1996.-Vol. 17.-P.288−292.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!