Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Накопление фенольных соединений растениями Hypericum perforatum L. в эколого-ценотических градиентах

Диссертация: Накопление фенольных соединений растениями Hypericum perforatum L. в эколого-ценотических градиентах
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Изучение содержания фенольных соединений Я. perforatum в различных эколого-ценотических градиентах показало, что влияние на биосинтез полифенолов внешних факторов — сложный, многокомпонентный процесс. В природных условиях очень трудно прогнозировать величину отклика биосинтеза фенольных соединений на воздействие различных факторов, так как их влияние может быть разнонаправленным, например… Читать ещё >

Содержание

  • Глава 1. Экология и физиология фенольных соединений
    • 1. 1. Вещества специализированного обмена Hypericum perforatum L
    • 1. 2. Функции фенольных соединений
      • 1. 2. 1. Фенольные соединения, рост и развитие растений
        • 1. 2. 1. 1. Структурные функции фенольных соединений
        • 1. 2. 1. 2. Фенольные соединения как запасные вещества
        • 1. 2. 1. 3. Регуляция роста
        • 1. 2. 1. 4. Участие в репродуктивном процессе
        • 1. 2. 1. 5. Регуляция покоя
        • 1. 2. 1. 6. Фенольные соединения как гормоны двигательных функций растений (тургорины)
        • 1. 2. 1. 7. Пигментация растений
        • 1. 2. 1. 8. Особенности связи фенольных соединений с различными показателями растений
      • 1. 2. 2. Фенольные соединения и фотобиологические процессы
        • 1. 2. 2. 1. Фенольные соединения как компоненты электрон-транспортных цепей митохондрий и хлоропластов
        • 1. 2. 2. 2. Регуляция фотосинтеза
        • 1. 2. 2. 3. Регуляция процесса дыхания
        • 1. 2. 2. 4. Защита от повреждения УФ-излучением
      • 1. 2. 3. Фенольные соединения во взаимоотношениях растений с другими организмами
        • 1. 2. 3. 1. Фенольные соединения как сигнальные вещества
        • 1. 2. 3. 2. Защитные функции фенольных соединений в патогенезе растений
        • 1. 2. 3. 3. Фенольные соединения как аллелопатические агенты
        • 1. 2. 3. 4. Фенольные соединения в системе вертикальных трофических связей
        • 1. 2. 3. 5. Фенольные соединения как антиоксиданты
    • 1. 3. Влияние факторов внешней среды на накопление фенольных соединений
      • 1. 3. 1. Абиотические факторы
        • 1. 3. 1. 1. Географический фактор
        • 1. 3. 1. 2. Свет
        • 1. 3. 1. 3. Гидротермический фактор
        • 1. 3. 1. 4. Элементы минерального питания
      • 1. 3. 2. Биотические факторы 45 1.3.2.1. Эколого-ценотические условия
    • 1. 4. Hypericum perforatum L. как объект исследования
      • 1. 4. 1. Ботанико-географическая характеристика
  • Hypericum perforatum L
    • 1. 4. 1. 1. Морфология Hypericum perforatum L
      • 1. 4. 1. 2. Ареал Hypericum perforatum L
      • 1. 4. 2. Химический состав Hypericum perforatum L
      • 1. 4. 3. Применение Hypericum perforatum L
  • Глава 2. Условия выращивания, объекты и методы исследований
    • 2. 1. Выделение эколого-ценотических градиентов для природных ценопопуляций Hypericum perforatum L
      • 2. 1. 1. Почвенно-климатические условия
      • 2. 1. 2. Ценотические условия
      • 2. 1. 3. Сравнительный анализ параметров экологической ниши разных сообществ
    • 2. 2. Условия закладки посевов Hypericum perforatum L
    • 2. 3. Отбор растительного материала
    • 2. 4. Анализ растительного материала
      • 2. 4. 1. Морфофизиологические показатели
      • 2. 4. 2. Биохимические анализы
        • 2. 4. 2. 1. Биохимический состав и зольные элементы растений
        • 2. 4. 2. 2. Определение хлорофиллов
        • 2. 4. 2. 3. Определение каротиноидов
        • 2. 4. 2. 4. Определение суммы флавоноидов
        • 2. 4. 2. 5. Определение катехинов
        • 2. 4. 2. 6. Определение гиперицина
        • 2. 4. 2. 7. Определение антиоксидантной активности экстрактов Hypericum perforatum L
        • 2. 4. 2. 8. Определение активности перекисного окисления липидов по образованию малонового диальдегида
    • 2. 5. Статистическая обработка данных
  • Глава 3. Результаты и обсуждение
    • 3. 1. Выделение эколого-ценотических градиентов
    • 3. 2. Анализ морфофизиологических показателей
  • Hypericum perforatum L
    • 3. 3. Исследование накопления фенольных соединений
  • Hypericum perforatum L. в эколого-ценотических градиентах
    • 3. 4. Варьирование морфофизиологических и биохимических показателей Hypericum perforatum L. в эколого-ценотических градиентах
    • 3. 5. Взаимосвязь морфофизиологических и биохимических показателей Hypericum perforatum L
    • 3. 6. Гиперицин в радикально-цепных реакциях окисления органических соединений

Накопление фенольных соединений растениями Hypericum perforatum L. в эколого-ценотических градиентах (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность темы

Башкортостан относится к зонам рискованного земледелия. В таких районах все более широкое распространение получают принципы адаптивного растениеводства, в соответствии с которыми максимальная продуктивность достигается с минимальными затратами. Одним из способов повышения эффективности растениеводства является расширение ассортимента выращиваемых культур за счет видов, наиболее приспособленных к данным условиям. В то же время комплексные эколого-физиологические характеристики имеются далеко не для всех хозяйственно ценных, в том числе лекарственных растений.

Зверобой продырявленный {Hypericum perforatum L.) — широко распространенное лекарственное растение флоры республики (Кучеров, Галеева, 1986; Кучеров, Галеева, 1991). Однако экологическая обстановка в Башкортостане лимитирует границы сбора дикорастущих растений, что в свою очередь делает необходимым введение Н. perforatum в культуру. Это позволит решить проблему стандартизации качества растительного сырья за счет выравненное&tradeпочвенно-климатических условий произрастания популяций, одновозрастности растений, увеличения их продуктивности, а также снизит опасность загрязнения сырья токсикантами.

Вещества специализированного обмена являются существенной составной частью общего метаболизма каждого вида и активно участвуют в физиологической регуляции целого растения. Основными действующими веществами Н. perforatum являются фенольные соединения: различные классы флавоноидов и конденсированные производные антрахинона, в том числе гиперицин (Минаева, 1991; Лекарственные растения., 1991). Последний привлекает особое внимание ученых как антивирусный и цитостатический агент (Meruelo et al., 1988). Несмотря на широкое использование Н. perforatum, еще недостаточно полно изучен вопрос эколого-ценотической регуляции накопления фенольных соединений в этом растении. Не все группы фенольных соединений Н. perforatum изучены в равной степени. В первую очередь это касается гиперицина, функции которого в растениях до конца нераскрыты.

Комплексная оценка изменчивости общей продуктивности растений и накопления различных групп фенольных соединений, а также анализ эколо-го-физиологических связей морфофизиологических и биохимических показателей Н. perforatum в условиях Башкортостана не проводились.

Цель работы — эколого-физиологический анализ связей накопления фенольных соединений Н. perforatum с морфофизиологическими показателями и эколого-ценотическими условиями произрастания. Для осуществления этой цели нами были поставлены и решались следующие задачи:

1. Выделить основные эколого-ценотические градиенты, в которых дифференцированность изученных сообществ с Н. perforatum является максимальной.

2. Провести исследование изменчивости морфофизиологических показателей Н. perforatum в различных эколого-ценотических условиях.

3. Определить изменчивость накопления фенольных соединений в различных эколого-ценотических градиентах.

4. Рассмотреть взаимосвязь биохимических признаков Н. perforatum с морфофизиологическими показателями и эдафическими условиями произрастания.

5. Проанализировать функции гиперицина, в том числе в радикально-цепных реакциях.

Научная новизна. В условиях Башкортостана проведен комплексный анализ изменчивости растений Н. perforatum по 43 морфофизиологическим и биохимическим показателям в природных эколого-ценотических градиентах. Выделены наиболее значимые факторы, регулирующие накопление фенольных соединений. Проанализирована роль гиперицина в радикально-цепных реакциях. Показана зависимость антиоксидантных и прооксидантных свойств этого соединения от его концентрации.

Практическая значимость. Собран материал для создания схем оптимального размещения посевов Н. perforatum в различных почвенноклиматических условиях Башкортостана. Подготовлен материал для использования гиперицина как антиоксиданта.

Благодарности. Автор выражает глубокую признательность своему научному руководителю профессору И. Ю. Усманову, доценту каф. физиологии растений P.M. Башировой за неоценимую помощь, дружеское участие и постоянную поддержку на всех этапах работы, с.н.с. лаб. геоботаники JI.M. Абрамовой, а также преподавателям химфака БашГУ доценту Г. Г. Гарифулли-ной и профессору, А .Я. Герчикову, аспирантке химфака С. Зиганшиной.

выводы.

1. На основании анализа изменчивости совокупности 43 морфофизиологиче-ских и биохимических показателей растений Н. perforatum в градиентах эдафических факторов, взаимозатенения и интенсивности конкуренции показано, что максимальная изменчивость растений реализуется в осях «свет — азот» .

2. В исследованных биотопах растения Н. perforatum нормально развиваются, проходят полный жизненный цикл и вырабатывают все рассмотренные нами фенольные соединения.

3. Содержание фенольных соединений Н. perforatum положительно коррелирует с содержанием кальция в почве, отрицательно — с серой, гумусом, а также рН почвы. Содержание флавоноидов в органах Н. perforatum уменьшается в направлении с севера на юг, количество гиперицина при этом, напротив, возрастает.

4. Изменчивость параметров растений Н. perforatum убывает в ряду: вегетативные признаки > генеративные признаки > биохимические признаки > содержание зольных элементов. Коэффициенты вариации изученных показателей в эколого-ценотических градиентах и по годам исследований меняются более чем на порядок: от 80% (масса надземной части) до 12−15% (сумма флавоноидов) и 5−6% (содержание зольных элементов).

5. Анализ корреляций морфофизиологических параметров Н. perforatum и содержания в них фенольных соединений показал отсутствие устойчивых связей между этими показателями. Связи между количеством фенольных соединений и другими биохимическими показателями многочисленны.

6. На примере модельных систем in vitro, а также в опытах in vivo показано влияние гиперицина на течение радикально-цепных реакций. Соотношение антиоксидантных и прооксидантных свойств гиперицина зависит от концентрации этого соединения. При этом максимальная антиоксидантная активность проявляется при низких концентрациях (in vivo — 0.15% от абс. сух. веса).

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Опыты проводились в зоне естественного распространения Н. perforatum (Кучеров, Танеева, 1986; Кучеров, Галеева, 1991). Исследованные биотопы расположены от Благовещенского района через Кармаскалинский к Белорецкому району, то есть исследованный экотон протяженностью более 250 км проходит с северо-запада на юго-восток, от Северной лесостепной зоны через Южную лесостепную зону к горно-лесной зоне (Почвы Башкортостана, 1995). Более детальную дифференциацию биотопов проводили тремя независимыми методами. По списку видов, составленных для каждого местообитания, проведен синтаксономический анализ (Миркин и др., 1989). Кроме того, осуществлена фитоценотическая индикация среды. Для каждого из видов оценено положение на экологических шкалах Д. Н. Цыганова (1983). Затем по спискам видов рассчитаны средние значения верхней и нижней границы, интервал для следующих параметров: увлажнение почв, богатство почв азотом, засоление почв, взаимозатенение растений (см. табл. 2). Также проведен прямой физико-химический анализ почвенных образцов данных местообитаний. На основании оценки биотопов выделены следующие сообщества:

Класс Molinio — Arrhenatheretea Тх. 1937 Порядок Arrhenatheretalia Pawl. 1928 Союз Cynosurion Тх. 1947 (пл. IV).

Ассоциация Loto corniculati — Agrostietum gigantei Khaziakhmetov et al. 1989 (пл. VI).

Союз Festucion pratensis Sipajlova et al. 1985.

Подсоюз Festucenion pratensis Mirkin et Naumova 1986 (пл. III, VII, X) Порядок Galietalia veri Mirkin et Naumova 1986 Союз Polygonion krascheninnikovii Kaschapov 1985 (пл. I, IX) Союз Trifolion montani Naumova 1986.

Подсоюз Trifolenion montani Mirkin et Naumova 1986 (пл. V) Класс Trifolio — Geranietea sanguinei Th. Muller 1961 Порядок Origanetalia Th. Muller 1961 Союз Trifolion medii Th. Muller 1961 (пл. II).

Сообщества были расположены в порядке возрастания доли Н. perforatum в травостое и средней биомассы растений зверобоя на единицу площади (0.1 кв. м). После ранжирования биотопов по признаку «общей продуктивности» Н. perforatum выяснилось, что максимальная вариабельность проявляется в градиентах богатство почв азотом — взаимозатенение растений, которые мы идентифицировали с градиентами «свет — азот» D. Tilman (1990) (см. рис. 1).

Оценка изменчивости вегетативных, генеративных и биохимических признаков Н. perforatum по годам исследований и в эколого-ценотических градиентах позволила соотнести их следующим образом. Наиболее вариабельной группой являются показатели вегетативного развития растений. Максимальные коэффициенты вариации характерны для показателей продуктивности (масса надземной части и число побегов) и общей площади листьев Н. perforatum. К наиболее консервативным в этой группе параметров относятся высота растений, доля листовой массы LWR, что, вероятно, можно объяснить необходимостью поддержания определенного значения LWR для обеспечения растительного организма необходимыми метаболитами, образующимися в процессе фотосинтеза. Данные, изложенные в разделе 3.2, свидетельствуют, что возрастание LWR является одной из компенсаторных реакций Н. perforatum, обеспечивающей эффективный перехват ФАР в условиях увеличения затенения растений. Показатели — обеспеченность листовой поверхностью (LAR), отношение побег: корень (SRR) и доля корневой массы (RWR) — по значению коэффициентов вариации составляют среднюю группу.

Менее вариабельными, чем вегетативные признаки, являются элементы репродуктивной системы — репродуктивное усилие (RE) и генеративность.

G). Как показано выше (см. раздел 3.2), значения RE и G уменьшаются в градиенте продуктивности Н. perforatum.

В группе биохимических признаков наибольшая степень изменчивости свойственна содержанию в листьях каротиноидов и хлорофиллов. Уменьшение размаха вариации происходит в ряду: гиперицин > флавоноиды > клетчатка > протеины. Наибольшая консервативность, присущая содержанию клетчатки и протеинов свидетельствует о важности поддержания количества этих компонентов на определенном уровне для нормального функционирования растительного организма.

В ряду вариации содержания зольных элементов можно проследить следующую цепочку: кальций > зола > фосфор.

Выявлено, что амплитуда изменчивости биохимических признаков и содержания зольных элементов шире в листьях в отличие от цветков, что, вероятно, определяется тем, что листья являются более активными органами с точки зрения метаболических процессов, нежели цветки.

Интересен и тот факт, что содержание гиперицина более изменчиво, нежели суммы флавоноидов. Это позволяет высказать предположение, во-первых, о различных путях участия этих веществ в адаптивных реакциях организма, во-вторых, о большей зависимости биосинтеза гиперицина от внешних условий по сравнению с флавоноидами. О приспособительном, или адап-тогенном значении различных групп фенольных соединений указывается в работах многих авторов (Минаева, 1978; Стрельцина и др., 1995; Баяндина, Власова, 1998; Храмова, 1998).

В целом, изменчивость изученных групп признаков убывает в следующем порядке: вегетативные > генеративные > биохимические > содержание зольных элементов.

С практической точки зрения полученные результаты можно интерпретировать следующим образом. При подборе мест для закладки плантаций Н. perforatum в первую очередь необходимо ориентироваться на создание благоприятных условий для получения наибольшей надземной биомассы, числа побегов и площади листьев. Как показано в разделе 3.2, наибольшей продуктивностью характеризуются растения Я. perforatum из местообитаний с низким значением биомассы сопутствующих видов, где межвидовая конкуренция ослаблена. Соответственно, увеличение урожайности надземной массы позволит получить и больший выход экстрактивных веществ с единицы площади посевов Я. perforatum. Таким образом, создавая условия для лучшего развития признаков, имеющих наибольшую изменчивость, можно добиться большего значения параметров с низкими и средними коэффициентами вариации, к каковым относятся биохимические признаки.

Изучение содержания фенольных соединений Я. perforatum в различных эколого-ценотических градиентах показало, что влияние на биосинтез полифенолов внешних факторов — сложный, многокомпонентный процесс. В природных условиях очень трудно прогнозировать величину отклика биосинтеза фенольных соединений на воздействие различных факторов, так как их влияние может быть разнонаправленным, например, достаточный уровень освещенности дефицит почвенной влаги (пл. V). Анализ связи накопления фенольных соединений Я. perforatum с агрохимическими показателями почвы позволил выявить следующие факты. Дефицит серы, невысокое содержание гумуса, низкие значения рН почвы способствуют увеличению количества полифенолов в органах Я. perforatum. На наш взгляд это связано, с тем, что эти соединения принимают активное участие в адаптивных реакциях растений на неблагоприятные условия среды. Увеличение интенсивности накопления фенольных соединений Я. perforatum в ответ на избыток кальция, с нашей точки зрения, также можно рассматривать как одну из сторон адаптации растений к условиям произрастания. Нами обнаружена зависимость накопления суммы флавоноидов и гиперицина в листьях и цветках Я perforatum от географического фактора. Так, содержание этих соединений в органах Я. perforatum постепенно увеличивается при продвижении с юга на север. Сходные данные о повышении флавоноидности кустарников и деревьев при продвижении на север получены П. М. Жибоедовым (1991). Для накопления гиперицина в этих органах выявлена противоположная направленность. Его содержание выше у растений, произрастающих в районах, расположенных южнее.

Исследование корреляционных паттернов, формируемых 43 параметрами Н. perforatum, показало, что число реализованных корреляций более чем на порядок ниже количества потенциально возможных. При этом доля связей, реализованных изученными признаками, за годы проведения эксперимента варьировала от 10 до 19.4%. Полученные нами результаты совпадают с литературными данными, свидетельствующими о том, что теснота связей между отдельными элементами растений не является жестко фиксированной, а число реализованных корреляций меньше их полного возможного числа (Шильяк, 1994).

Нами выявлен чрезвычайно динамичный характер связей, реализуемых для содержания фенольных соединений в растениях Н. perforatum. Корреляционные паттерны каждого из изученных биохимических параметров очень лабильны и изменяются по годам исследований. Это объясняется, вероятно, высокой полифункциональностью фенолов, следствием чего является пластичность взаимодействия содержания этих соединений с другими параметрами растений. Отмечено, что связи между биохимическими и морфофизио-логическими показателями весьма динамичны. Это проявляется в появлении и отсутствии корреляций, в смене их знаков на противоположные. Подобные взаимоотношения обнаружены, например, для комбинации накопление биомассы — величина репродуктивного усилия (Усманов и др., 1989). Возможность образования всех типов корреляций между признаками растений, формирующими количественные элементы продуктивности, в зависимости от сочетания конкретных лимитов среды была показана П. П. Литун и В.А. Дра-гавцевым (1988). В литературе описана также высокая пластичность морфологических (Fekete at al., 1988) и физиологических (Усманов, Мартынова, 1990) паттернов.

Выявлено, что для содержания флавоноидов и гиперицина в листьях и цветках растений Н. perforatum из естественных условий обитания не характерно образование устойчивых пар с морфофизиологическими показателями. К наиболее часто проявляющимся связям полифенолов можно отнести их корреляции с другими биохимическими показателями и между собой: Для содержания флавоноидов в листьях:

— катехины, стебли (положительная корреляция- 1995, 1996 гг.);

— клетчатка, листья (положительная корреляция- 1995, 1996 гг.).

Для содержания флавоноидов в цветках:

— гиперицин, цветки (положительная корреляция- 1995, 1996 гг.).

Для содержания гиперицина в листьях:

— гиперицин, цветки (положительная корреляция- 1994,1996 гг.).

Для содержания гиперицина в цветках:

— гиперицин, листья (положительная корреляция- 1994, 1996 гг.);

— флавоноиды, цветки (положительная корреляция- 1995, 1996 гг.);

— катехины, цветки (положительная корреляция- 1995, 1996 гг.);

— клетчатка, цветки (корреляция с меняющимся знаком- 1995, 1996 гг.).

Изучение характера поведения нафтодиантрона гиперицина в радикально-цепных реакциях окисления органических веществ проводили в опытах in vitro и in vivo. Обнаружено, что в зависимости от концентрации гиперицин может проявлять не только антиоксидантные, но и прооксидантные свойства. По-видимому, благодаря этим свойствам гиперицин как вещество, обладающее фотодинамическим действием, может участвовать в регуляции метаболических процессов. Подобная зависимость, свидетельствующая о том, что с изменением концентрации нафтохинонов происходит смена путей воздействия на метаболизм клеток, показана на примере юглона Т.Н. Бога-тыренко с соавт. (1998).

Показать весь текст

Список литературы

  1. A.A., Лапикова В. П. Генерация кислородных радикалов фе-нольными соединениями в связи с иммунитетом растений // Кислородные радикалы в химии, биологии и медицине. Рига, 1988. — С. 203−222.
  2. Г. Р. Синтез фенольных веществ в кровохлебке аптечной в связи с ее экологией // Биологически активные соединения растений Сибирской флоры. Новосибирск: Наука, Сиб. отд-е, 1974. — С. 33−45.
  3. Л.С. Флавоноидоносные и танидоносные растения Казахстана. Алма-Ата: Наука, КазССР. — 1977. — 152 с.
  4. A.A., Булатова Т. А. Содержание ауксинов и ингибиторов роста при разных условиях минерального питания // Физиология раст. 1982. -Т. 29, вып. 5. — С. 908−913.
  5. С.М. Тонкоструктурные спектры флуоресценции и поглощения гиперицина в полимерной матрице при температуре 4.2 К // Журнал при-кладн. спектрометрии. 1998. — Т. 65, № 4. — 539−545.
  6. Э.Р., Хохлова В. А., Кефели В. И. Действие низких положительных температур на рост корня и колеоптиля проростка кукурузы в связи с образованием антоциана // Физиология и биохимия культ, раст. 1985. — Т. 17, № 4. — С. 329−334.
  7. В.И., Бойко С. Н. Ингибирование роста биотеста эндогенными ростовыми ингибиторами и ферментативной вытяжкой с ИУК-оксидазной активностью // Физиология и биохимия культ, раст. 1988. — Т. 20, № 3. — С. 277−282.
  8. В.А., Лигай Л. В. Полифенольные соединения видов сем. Malvaceae Juss. // Растит, ресурсы. 1989. — Т. 25, вып. 3. — С. 439−452.
  9. В.А., Халматов Х. Х. О полифенольных соединениях некоторых видов Hypericum L. // Растит, ресурсы. 1972. — Т. 8, вып. 4. — С. 541 547.
  10. Л.Е., Фурса Н. С. Эмбриология Alliaria officinalis (Brassicaceae). Формирование мужских и женских структур цветка и изучение состава их флавоноидов // Ботанич. журнал. 1982. — Т. 67, № 7. — С. 959−968.
  11. Бо.гатыренко Т.Н., Бурлакова Е. Б., Конрадов А. А. Активность антиокси-дантов как регуляторов роста клеток растений и ее связь с физико-химическими константами // Биоантиоксидант: Тез. докл. V Междунар. конф. -М., 1998.-С. 26−27.
  12. И.В., Лозовская Е. Л., Сапежинский И. И. Фотосенсибилизи-рующие и фотопротекторные свойства экстрактов группы лекарственных растений // Биофизика. 1997. — Т. 42, вып. 4. — С. 926−931.
  13. Ботанико-фармакогностический словарь / Под ред. К. Ф. Блиновой, Г. П. Яковлева. М.: Высш. шк., 1990. — 189 с.
  14. Г. Биохимия природных пигментов. М.: Мир, 1986. — 422 с.
  15. Г. А. Катехины в жизнедеятельности растений // Свойства флаво-ноидов и их функции в метаболизме растительной клетки. Пущино, 1986. -С. 8−21.
  16. А.Г. Динамика флавонолов у Heracleum dissectum Ledeb. в период цветения // Растит, ресурсы. -1984. -Т. 20, вып. 1. С. 119−123.
  17. Р.Н. Физиологическая активность фенольных соединений, выделенных из горца Вейриха // Труды АН ЛитССР. Сер. В. 1987. — № 3 (99). -С. 58−61.
  18. Е.С. Морфология и продуктивность зверобоя продырявленного в условиях культуры на Среднем Урале // Экология и интродукция растений на Урале: Сб. науч. трудов. Свердловск: УрО АН СССР, 1991. — С. 1923.
  19. А.П. Взаимодействие эндогенных регуляторов роста и гербицидов. Минск: Наука и техника, 1980. — 144 с.
  20. А.П., Пальченко Л. А. Состав и содержание фенольных конъю-гатов в процессе прорастания семян разной жизнеспособности // Физиология и биохимия культ, раст. -1982. Т. 14, № 3. — С. 225−231.
  21. А.П., Прохорчик P.A. Ароматические оксисоединения продукты и регуляторы фотосинтеза. — Минск: Наука и техника, 1983. — 157 с.
  22. Г. И. Изучение изменчивости биохимических признаков в видах рода Poligonum L. горец в связи с его систематикой // Растительные ресурсы Южной Сибири и пути их освоения. — Новосибирск: Наука, Сиб. отд-е, 1977. — С. 55−66.
  23. В.Ф., Ладыгина М. Е., Хандобина Л. М. Большой практикум по физиологии растений: Фотосинтез. Дыхание. М.: Высшая школа, 1975. -392 с.
  24. В.П., Комиссаренко Н. Ф., Дмитрук С. Е. Биологически активные вещества лекарственных растений. Новосибирск: Наука, Сиб. отд-е, 1990.-333 с.
  25. Л.А., Дударева Н. А., Салганик Р. И. Молекулярные механизмы устойчивости растений к патогенам // Успехи совр. биологии. -1991. Т. 111, вып. 1.-С. 122−136.
  26. Государственная фармакопея СССР. 11-е изд. — М.: Медицина, 1990. -Вып. 2.- 398 с.
  27. Н.С. Сравнительное фитохимическое изучение зверобоя продырявленного и зверобоя четырехгранного // Вторая респ. конф. по мед. ботанике: Тез. докл. Киев: Наук, думка, 1988. — С. 225.
  28. Т., Мерсер Э. Введение в биохимию растений: В 2 т. М.: Мир, 1986. — Т. 1−2. — Т. 1. 1986. 393 с. Т. 2. 1986. 312 с.
  29. Н.Ф., Зеленина М. В., Гусева Н. М. К исследованию флавоноидов вероники тимьянолистной различных местообитаний // Некоторые вопросы адаптации растений к экстремальным факторам. Пермь: Изд-во Перм. гос. ун-та, 1991. — С. 8−11.
  30. В.Э., Голышевская В. И., Чередниченко Л. П., Фомина Э. А. Изучение антимикробных свойств лекарственного сбора из растений // Фармация. 1992, № 4. — С.21−24.
  31. Ю.Н., Диордийчук В. В., Войтенко Г. Н. Отрезвляющее действие водного экстракта зверобоя продырявленного при остром алкогольном отравлении // Вторая респ. конф. по мед. ботанике: Тез. докл. Киев: Наук, думка, 1988. — С. 347−348.
  32. Р.Х. Влияние засоления среды на аккумуляцию фенольных соединений у растений // Тез докл. 2 съезда Всесоюз. о-ва физиологов раст., Минск, 24−29 сент. 1990 г. М., 1992. — Ч. 2. — С. 67.
  33. Р.Х. Особенности фенольного комплекса растений в условиях засоления среды // Тез. докл. 5 Всесоюз. симп. по фенольным соединениям. Секция биохимии и физиологии. Таллин, 1987. — С. 38−39.
  34. Р.Х., Касымбеков Б. К., Нургалиева P.M. Участие полифенолов в регуляции активности глутаматдегидрогеназы у растений при засолении среды // Изв. АН КазССР. Сер. биологич. 1988. — № 3. — С. 22−26.
  35. Р.Х., Клышев Л. К., Тойбаева К. А. Фенольные соединения корней гороха при засолении среды // Физиология и биохимия культ, раст. -1979.-Т. 11, № 1. С. 40−47.
  36. Л., Чулафич Л., Козомара Б., Коэ Э., Кефели В. Содержание фенольных соединений в связи с проявлением пола у двудомного растения щавеля // Физиология и биохимия культ, раст. 1992. — Т. 24, № 1. — С. 64−68.
  37. О.В., Самылина И. А., Нестерова О. В. Определение содержания суммы фосфолипидов и каротиноидов в плодах некоторых видов боярышника (Crataegus L.) // Фармация. 1992. — Т. 41, № 6. — С. 70−72.
  38. Н.П. Опыт интродукции зверобоя обыкновенного в Краснодарском крае // Особенности акклиматизации многолетних интродуцентов, накапливающих биологически активные вещества: Тез. докл. Междунар. конф.- Краснодар, 1995. С. 75−78.
  39. Т.А., Сибиряк С. В. Иммунотропные свойства биологически активных продуктов, полученных из зверобоя продырявленного // Экспериментальная и клиническая фармакология. 1996. — Т. 59, № 1. — С. 51−54.
  40. Л.Г., Анкуд С. А. Влияние влажности почвы на содержание биополимеров в ткаяях стебля и его механическую прочность // Физиолого-биохимические основы регулирования роста и обмена веществ растений. -Минск: Наука и техника, 1981. С. 148−153.
  41. Т.А. Рутин и расщепляющие его ферменты в различных тканях листьев гречихи // Физиология раст. 1998. — Т. 45, вып. 1. — С. 74−78.
  42. Т.П. Влияние экологических условий на морфологию и накопление флавоноидов зверобоя продырявленного // Растит, ресурсы. 1973. -Т. 9, вып.З.-С. 402−404.
  43. Т.П. К изучению локализации полифенольных соединений в зверобоях Урала // Влияние физико-химических факторов среды на растения.- Пермь: Изд-во Пермского гос. ун-та, 1978. С. 68−70.
  44. И.М., Молотковский Ю. Г. Регулирование фотосинтеза в ин-тактных хлоропластах шпината и клетках эвглены кверцетином и бикарбонатом // Физиология раст. 1984. — Т. 31, вып. 2. — С. 266−272.
  45. П.М. Флавоноиды растений в условиях Кольской Субарктики // Физиолого-биохимические аспекты адаптации растений на Кольском Севере. Апатиты, 1991. — С. 13−23.
  46. П.М. Содержание флавоноидов в травянистых растениях в условиях Кольского Севера // Физиология адаптогенеза растений на Крайнем Севере. Апатиты, 1994. — С. 12−24.
  47. О., Белослюдцева В. Масло зверобоя в лечении язвы луковицы 12-перстной кишки // Врач. 1994. — № 6. — С. 25−26.
  48. М.Н. Биохимия катехинов: Биосинтез, превращения и практическое использование. М.: Наука, 1964. — 295 с.
  49. М.Н. Достижения и перспективы биохимии фенольных соединений // Фенольные соединения и их биологичесие функции: Матер. 1 Всесоюз. симп. по фенольным соединениям, Москва, 14−17 дек. 1966 г. М.: Наука, 1968. -С. 109−128.
  50. М.Н. О функциональной роли фенольных соединений в растениях// Физиология раст. 1992. — Т. 39, вып. 6. — С. 1197−1207.
  51. М.Н. Светорегуляция вторичного метаболизма растений // Физиология раст. 1987. — Т. 34, вып. 4. — С. 698−711.
  52. М.Н. Фенольные соединения: Распространение, метаболизм и функции в растениях. М.: Наука, 1993. — 272 с.
  53. М.Н., Субботина Г. А., Николаева Т. Н. Влияние кинетина на образование фенольных соединений и ультраструктурную организацию кал-лусных тканей чайного растения // Физиология раст. 1994. — Т. 41, вып. 3. -С. 354−358.
  54. Ю.А. Ценотические популяции растений. Владивосток: ДВНЦ АН СССР, 1984.- 51 с.
  55. Е.К., Опанасенко В. К. Сравнительное исследование протони-рования полифенольных соединений с систематической вариацией структуры // Свойства флавоноидов и их функции в метаболизме растительной клетки. Пущино, 1986. — С. 22−38.
  56. Г. А., Олешко Г. И., Васфилова Е. С. Накопление флавоноидов в лапчатке прямостоячей, выращиваемой на Среднем Урале // Науч. тр. НИИ фармации М-ва здравоохранения Рос. Федерации. 1995. — № 34. — С. 168−172.
  57. И.Ю. Изменчивость содержания (+)-катехина в хвое ели обыкновенной // Эколого-физиологические аспекты устойчивости, роста и развития растений. Петрозаводск, 1990. — С. 116−120.
  58. А., Радева В. Изменения в содержании полифенолов в растениях люцерны при водном стрессе и недостатке азота // Физиология раст. 1992. -Т. 18, вып. 2.-С. 49−55.
  59. Т.В., Немцов В. В., Грошева Н. П., Воскресенская O.JI. Изменение содержания флавоноидов в онтогенезе некоторых лекарственных растений // Наука, человек, гуманизм: Матер, межвуз. студ. науч. конф. Чебоксары, 1995.-С. 98.
  60. М.О., Комиссаренко Н. Ф. Фитохимическое исследование растений рода Hypericum L. флоры Туркменистана // Изв. АН ТуркССР. Сер. био-логич. наук. 1980. — № 3. — С. 52−57.
  61. В.И. Фотоморфогенез, фотосинтез и рост как основа продуктивности растений. Пущино, 1991. — 133 с.
  62. В.И., Турецкая Р. Х. Природные ингибиторы роста основные физиологические аспекты действия // Рост растений и природные ингибиторы. — М.: Наука, 1977. — С. 234−244.
  63. Ким А. И. Влияние влажности почвы на продуктивность кассии остролистной // Тр. 9 конф. молод, ученых НПО ВНИИ лекарств, раст. М., 1990. -С. 55−58.
  64. В.Е. Фенольные соединения некоторых растений сибирской флоры // Биологически активные соединения растений сибирской флоры. -Новосибирск: Наука, Сиб. отд-е, 1974. С. 3−11.
  65. А.В. Географическая изменчивость флавоноидного состава двух видов володушки // Растит, ресурсы. 1980. — Т. 16, вып. 4. — С. 553−559.
  66. А.В., Волхонская Т. А., Киселев В. Е. Биологически активные вещества лекарственных растений Южной Сибири. Новосибирск: Наука, Сиб. отд-е, 1991, — 136 с.
  67. А.В., Минаева В. Г. Влияние условий выращивания на образование флавонолов у володушки круглолистной // Физиология раст. 1972. -Т. 19, вып. 6. -С.1252−1256.
  68. А.В., Минаева В. Г. Возрастные и суточные особенности фла-вонолового состава у володушки многожильчатой Bupleurum multinerve DC. // Комплексное изучение полезных растений Сибири. Новосибирск: Наука, Сиб. отд-е, 1974. — С. 162−168.
  69. Г. М. Фитохимическое изучение и анализ видов Hypericum L., произрастающих в Болгарии. Сообщ. V. Содержание гиперицина и псевлогиперицина // Растит, ресурсы. 1988. — Т. 24, вып. 1. — С. 114−120.
  70. Г. М., Блинова К. Ф. Современное состояние химического изучения видов рода Hypericum L. // Химия природн. соединений. 1987. — № 2. -С. 185−203.
  71. .Т. Биохимия вторичных продуктов обмена веществ растительного организма: Учебное пособие. Днепропетровск: Изд-во ДГУ, 1987. -44 с.
  72. Л.Г., Луценко Э. К., Аксенова В. А. Физиология устойчивости растений к неблагоприятным факторам среды: Учебное пособие. Ростов-на-Дону: Изд-во Ростовского гос. ун-та, 1993. — 240 с.
  73. А.Ф. Накопление фенольных соединений растениями в различных условиях освещения // Вопросы физиологии, биохимии, цитологии и флоры Украины. Киев: Наук, думка, 1974. — С. 102−105.
  74. Н.Н., Тихомиров Ф. А. Влияние меди и никеля на физиологически активные вещества в листьях пшеницы // Биологич. науки. 1985. — № 10.-С. 77−81.
  75. Н.А. Анализ изменчивости содержания флавоноидов и морфологических показателей у ивы трехтычинковой (Salix triandra L.) I АН БелССР. Минск, 1991. — 23 с. — Деп. в ВИНИТИ, № 3839-В 91.
  76. М.К., Мутаев М. М. Содержание биологически активных веществ в Hypericum scabrum L., произрастающем в различных районах Таджикистана // Растит, ресурсы. 1993. — Т. 29, вып. 1. — С. 40−43.
  77. Е.В., Галеева А. Х. Ресурсы основных видов дикорастущих лекарственных растений в Башкирии. Уфа, 1986. — 147 с.
  78. Е.В., Галеева А. Х. Ресурсы основных видов дикорастущих лекарственных растений в Башкирии. 2-е изд., доп. — Уфа, 1991. — 150 с.
  79. Е.В., Никитина В. С., Оразов О. Э., Мулдашев А. А., Галеева А.Х. Bupleurum longifolium L. в Башкирии и содержание флавоноидов в ее надземных органах // Растит, ресурсы. 1993. — Т. 29, вып. 4. — С. 71−75.
  80. И.Е. Содержание биологически активных веществ в надземной части Hypericum scabrum L. и Н. elongatum Ledeb. (Узбекская ССР) // Растит, ресурсы. 1988. — Т. 24, вып. 4. — С. 561−565.
  81. Э.П., Грикун И. Н., Кораблева Н. П., Мороз П. А. Влияние фенольных соединений на фосфогидролазную активность препарата растительной цитоплазматичской мембраны // Докл. АН УССР. Сер. Б. 1987. — № 6. — С. 66−69.
  82. Г. Ф. Биометрия. 4-е изд., перераб. и доп. — М.: Высш. шк, 1990. -352 с.
  83. И.К., Удре В. Ю. Дифференциация пола и фенолкарбоновые кислоты в почках осины // Физиология раст. 1989. — Т. 36, вып. 3. — С. 531−537.
  84. И.К., Удре В. Ю. Фенольные соединения в развивающихся генеративных почках мужских и женских деревьев осины // Физиология раст. -1986. Т. 33, вып. 6. — С. 1104−1112.
  85. Т.С., Сытник K.M. Пигменты растительного мира. Киев: Наук. думка, 1986. — 87 с.
  86. Лекарственные растения Сибири для лечения сердечно-сосудистых заболеваний / Н. В. Казаринова, М. Н. Ломоносова, В. М. Триль и др. Новосибирск: Наука, Сиб. отд-е, 1991. — 240 с.
  87. П.П., Драгавцев В. А. Эколого-генетическая организация количественного признака и природа индивидуальной изменчивости растений // Взаимодействие генотип среда у растений и его роль в селекции: Сб. науч. тр. КНИИСХ. — 1988. — С. 36−48.
  88. Н.Ф. Влияние условий местообитания на содержание дубильных веществ лапчатки прямостоячей // Ботанические исследования на Урале: Инф. матер. Свердловск, 1990. — С. 56.
  89. Т.К., Ревина A.A. Радиационно-химические превращения флаво-ноидов растений (на примере кверцетина) // Свойства флавоноидов и их функции в метаболизме растительной клетки. Пущино, 1986. — С. 39−46.
  90. В.Ю., Назарова Г. Н., Музафаров E.H. Влияние флавоноидов на фотосинтетическую ассимиляцию СО2 изолированными хлоропластами шпината // Свойства флавоноидов и их функции в метаболизме растительной клетки. Пущино, 1986. — С. 104−115.
  91. Н.И. Интенсивность накопления фенольных соединений в органах хмеля в зависимости от условий минерального питания // Физиология и биохимия культ, раст. 1983. — Т. 15, № 2. — С. 122−127.
  92. Н.И., Солодюк Г. Д. Фенольный обмен в различных органах хмеля в зависимости от условий минерального питания // Тез. докл. 5 Всесо-юз. симп. по фенольным соединениям. Секция биохимии и физиологии. -Таллин, 1987.-С. 83−85.
  93. Н.И., Солодюк Г. Д., Годованый A.A., Вержбицкий В. И., Мос-кальчук Н.И. Влияние удобрений на фенольный обмен растений хмеля и ихустойчивость к тле // Физиология и биохимия культ, раст. 1982. — Т. 14, № 4. -С. 373−377.
  94. Н.И., Солодюк Г. Д., Кравчук П. Р. Влияние фенольных соединений хмеля на ростстимулирующую активность гиббереллинов // Физиология и биохимия культ, раст. 1987. — Т. 19, № 3. — С. 240−244.
  95. Е.Ю. Содержание дубильных веществ в надземной части культивируемого на Украине Hypericum perforatum L. в зависимости от условий выращивания //Растит, ресурсы. 1992. -Т. 28, вып. 3. -С. 67−71.
  96. Малый практикум по физиологии растений / Под ред. А. Т. Мокроносова. 9-е изд., перераб. и доп. — М.: Изд-во МГУ, 1994. — С. 113−116.
  97. А.М., Алюкина Л. С. Флавоноиды, дубильные вещества и лигнин в полынях метельчатой и лессинговидной // Изв. АН КазССР. Сер. биологич. 1981. — № 4. — С. 8−13.
  98. Дж.В., Бейли Дж.А. Фитоалексины: современное состояние и перспективы // Фитоалексины. Киев: Наук, думка, 1985. — С.314−318.
  99. У.В. Конкурентные отношения между биосинтезом белков и образованием флавоноидных соединений и их биологическое значение // Регуляция роста и питание растений. Минск: Наука и техника, 1972. — С. 64−72.
  100. У., Лаанест Л., Маргна Э., Оттер М., Вайнъярв Т. Влияние температуры на накопление флавоноидов в проростках гречихи и некоторых других видов растений // Изв. АН ЭССР. Сер. Биология. 1973. — Т. 22, № 2. -С. 161−175.
  101. У., Лаанест Л., Маргна Э., Оттер М., Вайнъярв Т. Влияние экзогенного азота на накопление флавоноидов в проростках гречихи // Изв. АН ЭССР. Сер. Биология. 1974. — Т. 23, № 4. — С. 298−304.
  102. У.В., Маргна Э. Р., Вайнъярв Т. Р. Дифференцированность мета-болитических механизмов, лежащих в основе подавления биосинтеза фенольных соединений при подкормке растений азотом // Тез. докл. 2 съезда
  103. Всесоюз. о-ва физиологов растений, Минск, 24−29 сент. 1990 г. М., 1990. -С. 59.
  104. М.Н. Основные направления и достижения в развитии аллело-патии в СНГ после выхода в свет монографий Г. Грюмера и С.И. Чернобри-венко // Биохимия. 1996. — Т. 116, вып.1. — С. 37−47.
  105. М.Д. Лекарственные средства: Пособие по фармакотерапии для врачей: В 2 ч. Вильнюс, 1994. — Ч. 2. — 543 с.
  106. М.Н. Активированный кислород и окислительные процессы в мембранах растительной клетки // Итоги науки и техники. Сер. Физиология раст. М.: ВИНИТИ, 1989. — Т. 6. -168 с.
  107. X., Халдре Ы., Паду Э., Яакма Ю. О влиянии фенолкарбоновых кислот на вызываемый ауксином рост растений // Физиология раст. 1982. -Т. 29, вып. 4.-С. 649−653.
  108. В.Г. Лекарственные растения Сибири. 5-е изд., перераб. и доп. — Новосибирск: Наука, Сиб. отд-е, 1991.-431 с.
  109. В.Г. Флавоноиды в онтогенезе растений и их практическое использование. Новосибирск: Наука, Сиб. отд-е, 1978. — 255 с.
  110. В.Г., Киселева A.B., Соболевская К. А. Внутрипопуляционная изменчивость флавонолового состава метамерных органов володушки (Ви-pleurum L.) // Растительные ресурсы Южной Сибири и пути их освоения. -Новосибирск: Наука, Сиб. отд-е, 1977. С. 66−72.
  111. Е.А., Барсель В. А., Пичугин В. В. Дозозависимые эффекты комбинаций антиоксидантов разных классов на примере дибунола и бета-каротина // Изв. РАН. 1996. — № 2. — С. 147−152.
  112. А. Т. Интеграция функций роста и фотосинтеза // Рост растений и его регуляция. Кишинев: Штиинца, 1985. — С. 183−198.
  113. E.H. Роль флавоноидов в регуляции фотосинтеза // Тез. докл. 2 съезда Всесоюз. о-ва физиологов растений, Минск, 24−29 сент. 1990 г. М., 1990. — С. 64.
  114. E.H., Назарова Г. Н., Любимов В. Ю. Влияние флавоноидов на фотосинтетический метаболизм углерода в изолированных хлоропластах шпината // Докл. АН. 1993. — Т. 330, № 5. — С. 664−666.
  115. E.H., Рузиева Р. Х. Фенольные соединения как фактор регуляции фотосинтеза и роста // Рост растений и его регуляция. Кишинев: Шти-инца, 1985. -С. 210−218.
  116. Г. И., Чайковская Л. Е. О создании производственных плантаций зверобоя продырявленного // Тез. докл. 7 Делегат, съезда Всесоюз. ботан. о-ва, Донецк, 11−14 мая 1983 г. Л., 1983. — С. 201.
  117. Н.В., Ежов И. С. Об антибиотических и антиокислительных свойствах желтых пигментов зерна // Сб. тр. НИЛ С.-Петербург, комб. пивовар. и безалкогол. пром-сти им. Степана Разина. С.-Пб., 1994. — Т. 1. — С. 2225.
  118. Л.А., Рузиева Р. Х. Взаимодействие НАДФ-малик-энзима из листьев кукурузы с эндогенными фенольными соединениями in vitro // Свойства флавоноидов и их функции в метаболизме растительной клетки. Пущино, 1986. — С. 116−123.
  119. Л.А., Рузиева Р. Х. Фенольные соединения как возможные эндогенные регуляторы активности НАДФ-малик-энзима в листьях кукурузы // Связь метаболизма углерода и азота при фотосинтезе: Тез. докл. Всесоюз. симп. Пущино, 1985. — С. 101−102.
  120. Определитель высших растений Башкирской АССР: В 2 ч. М.: Наука, 1988 — 1989. — Ч. 1. 1988. 316 с. Ч. 2. 1989. 375 с.
  121. Л.Э. Растворимые белки как источник фенилаланина для биосинтеза флавоноидов в семядольных листьях гречихи // Тез. докл. 2-го съезда Всесоюз. о-ва физиологов раст., Минск, 24−29 сент. 1990 г. М., 1992. — Ч. 2. -С. 117.
  122. У. Фенология и динамика содержания полифенолов у Hypericum perforatum L. и Н. maculatum Crantz в Эстонии // Растит, ресурсы. 1993. — Т. 29, вып. 1.-С. 77−82.
  123. Г. Г., Добренкова Л. Г. Содержание флавонолов в различных органах томатов в зависимости от условий выращивания растений // Науч. техн. бюл. ВНИИ растениевод. 1992. — № 222. — С. 30−31.
  124. Г. Г., Ветрова В. П., Пашенова Н. В., Осипов В. И. Участие про-антоцианидинов и лигнина в защитной реакции пихты на инфицирование микромицетами // Физиология раст. 1995, — Т. 42, вып. 4. — С. 622−628.
  125. JI.B. Изменчивость содержания флавоноидов и белка в природной популяции люцерны желтой // Биологич. науки. 1990. — № 10. — С. 123−132.
  126. Л.В. Флавоноиды Medicago falcata L. и Medicago romanica Prod, в связи с возрастным состоянием и жизненностью особей природных популяций // Биологич. науки. 1992. — № 6. — С. 96−105.
  127. Л.В., Ершова Э. А. Изучение бобовых естественных местообитаний по биохимическим признакам // Нетрадиционные методы в исследованиях растительности Сибири. Новосибирск: Наука, Сиб. отд-е, 1982. — С. 60−65.
  128. Л.В., Ершова Э. А. Флавоноидный комплекс Astrogalus austrosibiricus Schischk. в природных популяциях Алтая. Сообщение 1. Внут-рипопуляционная изменчивость в степных сообществах // Растит, ресурсы. -1996а. Т. 32, вып. 1−2. — С. 81−87.
  129. Л.В., Ершова Э. А. Флавоноидный комплекс Astrogalus austrosibiricus Schischk. в природных популяциях Алтая. Сообщение 2. Изменчивость в эколого-ценотических рядах сообществ // Растит, ресурсы. -19 966. Т. 32, вып. 3. — С. 74−79.
  130. В.Э., Прохорчик Р. А., Волынец А. П. Фенольные соединения в пыльце масличного мака // Физиология раст. 1984. — Т. 31, вып. 4. — С. 652 657.
  131. Р.С., Якимович Н. А. Влияние нитратного и аммонийного питания на содержание флавоноидов в листьях ячменя в условиях различной освещенности // Весщ АН Беларусь Сер. Б1ял. н. 1994. — № 1. — С. 18−21.
  132. Т.П., Пакалн Д. А., Черных Н. А., Зоз И.Г., Литвиненко В. И. Внутривидовая изменчивость фенольных соединений шлемника обыкновенного // Растит, ресурсы. 1976. — Т. 12, вып. 2. — С. 232−237.
  133. Почвы Башкортостана: В 2 т. / Под ред. Ф. Х. Хазиева. Уфа: Гилем, 1995.-Т. 1.-384 с.
  134. Л.И., Шатунова Л. В. Содержание действующих веществ в надземной части Hypericum perforatum L. // Растит, ресурсы. 1985. — Т. 21, вып. 4.-С. 461−463.
  135. Р.А. Регуляторное действие эндогенных фенольных соединений на интенсивность фотосинтеза // Фотосинтез и фотобиотехнология: Тез. докл. и сообщ. Междунар. конф. Пущино, 1991. — С. 12−13.
  136. Т.Н. Влияние завядания и почвенной засухи на эндогенные регуляторы роста растений // Физиология раст. 1972. — Т. 19, вып. 3. — С. 622−628.
  137. А.Б., Садоян В. А. Сбор лекарственных растений «Алгомаг» для лечения алкогольной зависимости: Пат. 20 343 113 Россия, МКИ6 А 61К 35/78. № 95 101 316/14- Заявл. 06.02.95. Опубл. 10.09.95. Бюл. № 25.
  138. В.Д., Рощина В. В. Выделительная функция высших растений. М.: Наука, 1989.-214 с.
  139. .А., Аксенова В. А. Белковые компоненты клетки во взаимодействии растения и паразита // Итоги науки и техники. Сер. Физиология растений. М.: ВИНИТИ, 1976. — Т. 2. — С. 7−40.
  140. Р.Х. Исследование защитного действия растительных фенолов // Фотосинтез и фотобиотехнология: Тез. докл. и сообщ. Междунар. конф. -Пущино, 1991.-С. 31.
  141. Р.Х., Музафаров Е. Н., Акулова Е. А., Опанасенко В. К. Выделение и характеристика производных кверцетина и кемпферола из хлоропластов гороха// Физиология раст. 1980. — Т. 27, вып. 3. — С. 657−665.
  142. В.А., Русаленко В. Г., Рудаковская Р. Н. Структура связей фи-зиолого-биохимических параметров в листьях Oxycoccus macrocarpus (Ait.) Pers. при разном уровне минерального питания // Физиология раст. 1990. -Т. 37, вып. 6.-С. 1171−1179.
  143. Г. М., Кораблева О. А. Некоторые фенольные вещества в онтогенезе яблок // Садоводство и виноградарство Молдавии. 1989. — № 2. — С. 29−31.
  144. С.С., Мастоншоева Х. С. Запасы сырья двух видов рода Hypericum L. и Origanum tyttanthum Gontsch. в западных районах Горно
  145. Бадахшанской АО Таджикистана // Растит, ресурсы. 1992. — Т. 28, вып. 2. -С. 36−46.
  146. Н.А., Новикова Л. Б. Динамика содержания полифенолов в подземных органах Polygonum bistorta L. на Кузнецком Алатау // Бюл. Сиб. бот. сада. 1983. — № 13. — С. 20−24.
  147. P.M., Закржевский Д. А., Возняк В. М., Калашников Ю. Е., Балахнин Т. И., Рузиева Р. Х. Влияние антоцианов на выход флуоресценции хлорофилла ФС II хлоропластов гороха // Физиология раст. -1990. Т. 37, вып. 2. — С. 233−240.
  148. А.В. Влияние ФАВ на качество сырья зверобоя продырявленного Hypericum perforarum L. // Сиб. вестн. с.-х. науки. 1993. — № 3. — С. 15−20.
  149. А.А. Ферменты фенольного обмена у растений с различной потребностью в боре // Тезисы докл. 5 Всесоюз. симп. по фенольным соединениям. Секция биохимии и физиологии. Таллин, 1987. — С. 138−139.
  150. З.Я., Подчуфарова Г. М., Гесь Д. К. Окислительно-восстановительные процессы инфицированного растения. Минск: Наука и техника, 1982. — 232 с.
  151. Г. С. Новые лекарственные растения Казахстана. Алма-Ата: Наука КазССР, 1982. — С. 100−104.
  152. А.В., Хыонг Н. А., Кудряшов Ю. Б. Модификация лучевого поражения животных водным экстрактом Hypericum perforatum L. // Биоло-гич. науки. 1992. — № 4. — С. 9−13.
  153. М.А. Биосинтез антоцианов в зависимости от активности ростовых процессов, оводненности тканей и устойчивости плодовых растений к низким и переменным температурам // Физиология и биохимия культ, раст. -1992. Т. 24, № 4. — С. 376−382.
  154. О.Г. Опыт культуры некоторых дикорастущих пряноарома-тических растений Таджикистана // Изв. АН ТаджССР. Отд. биологич. наук. -1985. -№ 2(99). -С. 13−18.
  155. В.Ю., Загоскина Н. В., Субботина Г. А., Запрометов М. Н. Влияние длительного освещения на синтез фенольных соединений и формирование хлоропластов в каллусных тканях чайного растения // Физиология раст. -1989.-Т. 36, вып. 1.-С. 83−88.
  156. С.А., Аминов М. Х., Самородова-Бианки Г.Б., Пономаренко В. В. Фенольные соединения плодов Malus sieversii (Ledeb.) Roem // Растит, ресурсы. 1995. — Т. 31, вып. 4. — С. 44−49.
  157. Н.П., Лебедева А. И., Рузиева Р. Х., Макаров А. Д., Мухин Е. Н. Влияние диурона на фотофосфорилирование и содержание индольных и фе-нольных соединений в листьях пшеницы // Физиология раст. 1988. — Т. 35, вып. 6. — С. 1209−1213.
  158. М.М., Остроумов С. А. Введение в проблемы биохимической экологии: Биотехнология. Сельское хозяйство. Охрана среды. М.: Наука, 1990. — 288 с.
  159. Л.С. Сравнительное изучение флавоноидного состава видов рода Campanula L. ряда Glomeratae Charadze из секции Campanula // Растит, ресурсы. 1995. — Т. 31, вып. 1. — С. 44−52.
  160. А.К. Влияние интенсивности освещения на накопление шикимо-вой кислоты в проростках гречихи под воздействием глифозата // Физиология раст. 1990. — Т. 37, вып. 4. — С. 712−717.
  161. А.К., Мядамюрк У. В. Взаимодействие фитохрома и синего света в фоторегуляции образования антоцианов в проростках гречихи // Физиология раст. 1984. — Т. 31, вып. 6. — С. 1071−1076.
  162. Е.В., Шохина Н. К., Гуськова И. Н. Опыт возделывания Hypericum perforatum L. в Новосибирской области // Растит, ресурсы. 1983. — Т. 19, вып. 4,-С. 507−512.
  163. И.Ю., Мартынова А. В. Физиологические реакции растений с разными типами эколого-ценотических стратегий на изменения условий выращивания // Изв. АН СССР. Сер. биол. 1990. — № 3. — С. 427−434.
  164. И.Ю., Мартынова А. В., Янтурин С. И. Адаптивные стратегии растений на солончаках Южного Урала. Реакция на абиотический стресс // Экология. 1989. — № 4. — С. 20−27.
  165. В.Я. Таблицы электронных спектров антрахинона и его производных. Химия, 1970. — 168 с.
  166. Фармакохимия лекарственных растений Туркменистана / М. О. Каррыев, М. В. Артемьева, Р. Т. Баева и др. А.: Ылым, 1991. — 208 с.
  167. Дж. Введение в экологическую биохимию. М.: Мир, 1985. -312 с.
  168. Н.Г., Сторожок Н. М. Токофероксильные радикалы и перекисное окисление липидов // Биоантиоксидант: Тез. докл. V Междунар. конф. М., 1998.-С. 9.
  169. Д.Н. Фитоиндикация экологических режимов в подзоне хвойно-широколиственных лесов. М.: Наука, 1983. — 197 с.
  170. Г. Н., Долгодворова С. Я., Бутанаева В. Н. Содержание смолистых веществ и фенольных соединений в коре Abies sibirica Ledeb. в зависимости от различных факторов // Растит, ресурсы. 1989. — Т. 25, вып. 3. — С. 415−419.
  171. В.В., Розум JI.B., Жигалкина Т. Е., Сидорова Т. М., Запрометов М. Н. Активность гидролитических ферментов у устойчивых и восприимчивых сортов пшеницы при заражении стеблевой ржавчиной // Физиология раст. 1988. — Т. 35, вып. 4. — С. 781−787.
  172. М.А., Притула В. А. Самоделкина В.Я., Бухалова Л. И. Использование фитопрепаратов в стоматологической практике // Научн. тр. НИИ фармации М-ва здравоохр. Рос. Федерации. 1995. — № 34. — С. 49−51.
  173. А.Г. Метаболизм фенольных соединений в высших растениях // Тез. докл 2 съезда Всесоюз. о-ва физиологов растений, 24−29 сент. 1990 г. -М., 1990. С. 97.
  174. Д. Децентрализованное управление сложными системами. М.: Мир, 1994. — 576 с.
  175. М.Я., Крупникова Т. А., Смирнов Ю. С. Активность полифено-локсидазы и чувствительность к недостатку бора у однодольных и двудольных растений // Физиология раст. 1981. — Т. 28, вып. 2. — С. 391−397.
  176. М.Я., Абышева JI.H. Действие высоких концентраций хрома, никеля и бора на содержание флавонолов в листьях Lycopersicon esculentum (Solanaceae) // Ботанич. журнал. 1982. — Т. 67, № 6. — С. 771−777.
  177. Эколого-физиологические методы исследования интактных растений: Методические указания / А. В. Щербаков, В. В. Федяев, З. Ф. Рахманкулова, И. Ю. Усманов. Уфа: Изд-во БашГУ, 1998. — 31 с.
  178. Н.М. Физико-химческие основы применения фенольных соединений в химии и биологии // Фенольные соединения и их биологические функции: Матер. 1 Всесоюз. симп. по фенольным соединениям, Москва, 1417 дек. 1966 г. М.: Наука, 1968. — С. 311−331.
  179. Н.М., Денисов Е. Т., Майзус 3.К. Цепные реакции окисления углеводородов в жидкой среде. -М.: Наука, 1965. 350 с.
  180. Н.А., Кахнович JI.B., Петренко А. В. Содержание фенольных соединений и хлоропластных пигментов в проростках ячменя при водном дефиците // Тез. докл. 2 съезда Всесоюз. о-ва физиологов раст., Минск, 24−29 сент. 1990 г. М., 1992. — Ч. 2. — С. 242.
  181. Ю.Д., Кушнир JI.H., Максикевич Ю. Г., Кириченко У. Б. Влияние ультрафиолетовой радиации на содержание салидразида в корневищах ро-диолы розовой // Бюл. Гл. бот. сада РАН. 1996. — № 173. — С. 129−133.
  182. Allakhverdiev S.I., Muzafarov E.N., Klimov V.V. Effect of quercetin on electron transfer in photosystem 2 and photosystem 1 of pea chloroplasts // Photosyn-thetica. 1989. — V. 23, № 4. — P. 517−523
  183. Aerts R.T., Baumann T.W. Distribution and utilization of chlorogenic acid in Coffea seedlings // J. Exp. Bot. 1994. — V. 45, № 273. — P. 497−503.
  184. Ayuga C., Rebuelta M. Estudio comparativo de los acidos fenolicos de Hypericum caprifolium Boiss. e Hypericum perforatum L. // An. Real. acad. Farm. -1986. V. 52, № 4. — P. 723−728.
  185. Barbagallo C., Chisari G. Antimicrobial activity of three Hypericum species // Fitoterapia. 1987. — V. 58, № 3. p. 175−177.
  186. Barz W.H., Bioconversion of vacuolar isoflavone and pterocarpan constituents// Abstr. XV International Bot. Congress. Japan, Yokohama, 1993. — P. 117.
  187. Basak U.S., Das A.B., Das P. Chlorophylls, carotenoids, proteins and secondary metabolites in leaves of 14 species of mangrove // Bull. Mar. Sci. 1996. -V. 58, № 3,-P. 654−659.
  188. Berghofer R., Holzl J. Isolation of 3', 8" — biapigenin (amentoflavon) from Hypericum perforatum L. // Planta med. 1989. — V. 55, № 1.- P. 91.
  189. Boudet A.M., Goffner D.P., Grimapettenari J. Lignins and lignification. Recent biochemical and bioteclinological developments // Comptes Rendus del Acad. Des Sci. Serie III. Sci. De La Vie-Life Sci. — 1996. — V. 319, № 4. — P. 317−331.
  190. Bruce A.B. Intraspecific flavonoid variation // Bot. Rev. 1987. — V. 53, № 2. -P. 197−280.
  191. Carver T.L.W., Zhang L., Zeyen R.J., Robbins M.P. Phenolic biosynthesis inhibitors suppress adult plant resistance to Erysiphe graminis in oat at 20 C and 10 C // Physiol, and Mol. Plant Pathol. -1996. V. 49, № 2. — P. 121−141.
  192. Chen Z.Y., Chan P.T., Ho K.Y., Fung K.P. Antioxidant activity of natural fla-vonoids is governed by number and location of their aromatic hydroxyl groups // Chem. And Phys. Lipids. 1996. — V. 79, № 2. — P. 157−163.
  193. Christie J.V., Jenkins G.I. Distinct UV-B and UV-A/blue light signal transduction pathways induce chalcone synthase gene expression in arabidopsis cells // Plant Cell. 1996. — V. 8, № 9. — P. 1555−1567.
  194. Codignola A., Maffei M., Fieschi M. Phenols and bud dormancy. II. Qualitative variations in endogenous phenols in dormant buds of Fagus sylvatica L. // New Phytol. 1988. — V. 110, № 4. — P.473−477.
  195. Dakora F.D., Phillips D.A. Diverse function of isoflavonoids in legumes trace and antimicrobial defenition of phytoalexins // Physiol, and Mol. Plant Pathol. -1996. -V. 49, № 1. P. 1−20.
  196. Dixon R.A., Lamb C.J., Masoud S., Sewalt V.J.H. Metabolitic engineering -prospects for crop improvement through the genetic manipulation of phenylpropa-noid biosynthesis and defense responses // A Rev. Gene. 1996. — V. 179, № 1. -P. 61−71.
  197. Djordjevic M.A., Redmond J.W., Batley M., Rolfe B.G. Clovers secrete specific phenolic compounds which either stimulate or repress nod gene expression on Rhizobium trifolii // EMBO J. 1987. — V. 6, № 5. — P. 1173−1179.
  198. Ebizuca Y. Biosynthesis of isoflavonoids as phytoalexins chemistry to molecular biology// Abstr. XV International Bot. Congress. Japan, Yokohama, 1993. -P. 116.
  199. Endel L., Szabo-Nagy A., Laszlavik M. Effect of tannin and phenolics on the if-ATPase activity in plant plasma membrane // J. Plant Physiol. 1994. — V. 144, № 1. — P. 49−52.
  200. Etzlstorfer C., Falk H., Oberreiter M. On the tautomerism of Hypericin: the 1,6-dioxo tautomer // Monatsh. Fur Chem. 1993. — V. 124, № 8−9. — P. 923−929.
  201. Falk H., Schmitzberger W. On the nature of «soluble» hypericin in Hypericum species // Monatsh. Fur Chem. 1992. — V. 123, № 8−9. — P. 731−739.
  202. Fekete G., Tuba Z., Melko E. Background processes at the population level during succession in grassland on sand // Vegetatio. 1988. — № 77. — P. 33−41.
  203. Fuglevand G., Jackson J.A., Jenkins G.I. UV-B, UV-A and blue light signal transduction pathways interact sinergistically to regulate chalcone synthase gene expression in arabidopsis // Plant Cell. 1996. — V. 8, № 12. — P. 2347−2357.
  204. Galbiati M., Chiusi A., Peterlongo P., Mancinelli A., Gavazzi G. Photoinduction of anthocyanin in mayze: A genetic approach // Maydica. 1994. — V. 39, № 2. -P. 89−95.
  205. Genova E., Ivancheva S. Quantitative analysis of tannin content in Geranium macrorrhizum L. (Geraniaceae) growing in Bulgaria // Phytol. Balcan. 1995. — № l.-P. 93−99.
  206. Gould K.S., Kuhn D.N., Oberbauer S.F. Why leaves are sometimes red? // Nature (Gr. Brit.). 1995. — V. 378, № 6554. — P. 241−242.
  207. Gouyon P.H., Vernet Ph., Guilerm J.L., Valdeyron G. Polymorphisms in Thymus vulgaris L. // Heredity. 1986. — V. 57, № 1. — P. 59−66.
  208. Hamalcik P. Hypericum in der homoopatischen Tiermedizin // Biol. Tiermed. 1991. — V. 8, № 3. — P. 92−95.
  209. Hartmann T. Diversity and variability of plant secondary metabolism a mechanistic view // Entomol. Exp. Appl. — 1996. — V. 80, № 1. — P. 177−188.
  210. Hipskind J., Wood K., Nicholson R.L. Stimulation of anthocyanin accumulation and delineation of pathogen ingress in maize genetically resistant to Bipolaris maydis race O. // Physiol, and Mol. Plant Pathol. 1996. — V. 49, № 4. — P. 247 256.
  211. Hodges D.M., Nozzolillo C. Anthocyanin and anthocyanoplast content of cruciferous seedling subjected to mineral nutrient deficiencies // J. Plant Physiol. -1996. V. 147, № 6. — P. 749−754.
  212. Jensen K.I.N., Gaul S.O., Specht E.G., Doohan D.J. Hypericin content of Nova Scotia biotypes of Hypericum perforatum L. // Can. J. Plant Sci. 1995. — V. 75, № 4. — P. 923−926.
  213. Julie S., Daniel M. Chemical interaction induced by Cuscuta cheninsis Lamk. on Calotropis gigantea Linn. //Nat. Acad. Sci. Lett. 1996. — V. 19, № 34. — P. 5962.
  214. Kako M.D., al-Sultan I.I., Saleem A.N. Studies of sheep experimentally poisoned with Hypericum perforatum L. // Vet. Hum. Toxicol. 1993. — V. 35, № 4. -P. 298−300.
  215. Kamisaka S., Takeda S., Takahashi K., Shibata K. Diferulic and ferulic acids in the cell wall of Avena coleoptiles. Their relationships to mechanical properties of the cell wall // Physiol. Plant. — 1990. — V. 78, № 1. — P. 1−7.
  216. Kantar F., Pilbeam C.J., Hebblethwaite P.D. Effect of tannin content of faba bean (Vicia faba) seed on seed vigour germination and field emergence // Ann. Appl. Biol. 1996. — V. 128, № 1. — P. 85−93.
  217. Karabourniotis G., Fasseas C. The dense indumentum with its polyphenol content may replace the protective role of the epidermis in some young xeromor-phic leaves // Can. J. Bot. 1996. — V. 74, № 3. — P. 347−351.
  218. Khan M.A., Ungar I. A. Inhibition of germination in Atriplex triangularis seeds by application of phenols and reversal of inhibition by growth regulators // Bot. Gas. 1986. — V. 147, № 2. — P. 148−151.
  219. Knox J.P., Dodge A.D. Isolation and activity of photodynamic pigment hypericin // Plant Cell Environ. 1985. — V. 8, № 1. — P. 19−25.
  220. Kondo T., Yoshida K., Ueda M., Nakagawa A., Isobe M., Goto T. Molecular association of anthocyanins, color development and stability // Abstr. XV International Bot. Congress. Japan, Yokohama, 1993. — P. 101.
  221. Krause J., Reznik H. Der Einfluss der Phosphat- und Nitratverlosung auf den Phenilpropanstoffwechsel in Buchweizblattern (Fagopirum esculentum Moench.) // Z. Pflanzenphysiol. 1972. -Bd. 68, № 2. — S. 134−143.
  222. Kuc J. Phytoalexins from the Solanaceae // Abstr. XV International Bot. Congress. Japan, Yokohama, 1993. — P. 118.
  223. Makovec P., Sindelar L. The effect of phenolic compounds on the activity of respiratory chain enzymes and on the respiration and phosphorylation activities of potato tuber mitochondria // Biol. Plant. 1984. — V. 26, № 6. — P. 415−422.
  224. Mancinelli A.L., Rossi F., Moroni A. Cryptochrome, phytochrome and antho-cyanin production // Plant Physiol. 1991. — V. 96, № 4. — P. 1079−1085.
  225. Margna U., Margna E., Vainjarv T. Influence of nitrogen nutrition on the utilization of L-phenilalanine for building flavonoids in buckwheat seedling tissues // J. Plant Physiol. 1989. — V. 134, № 6. — P. 697−702.
  226. Martinez A.E., Favret E.A. Anthocyanin synthesis and lengthening in the first leaf of barley isogenic lines // Plant Sci. 1990. — V. 71, № 1. — P. 35−43.
  227. Martinucci R., Gastaldo P., Profumo P., Riggio B.L. Bound ferulic acid in the endosperm of Cercis siliquastrum L. // Plant Sci. 1985. — V. 38, № 1. — P. 41−46.
  228. Meruelo D., Lavie G., Lavie D. Terapeutic agents with dramatic antiretroviral activity and little toxicity at effective doses: Aromatic policyclic diones hypericin and pseudohypericin // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1988. — V. 85, № 14. — P. 5230−5234.
  229. Middleton E.M., Teramura A.H. The role of flavonol glycosides and carote-noids in protecting soybean from ultraviolet-B damage // Plant Physiol. 1993. -V. 103, № 3,-P. 741−753.
  230. Miladinovic D., Najman S., Randelovic N., Gasic O. The study of Astragalus onobrychis var. chlorocarpus (Gris.) Stoj. et Stef. (Leguminose) antioxidant system // Acta Univ. Ser. Phys., Chem. and Technol. 1995. -V. 1, № 2. — P.183−187.
  231. Moreland D.E., Novitzky P. Interference by luteolin, quercetin and taxifolin with chloroplastmediated electron transport and phosphorylation // Plant and Soil. -1987.-V. 98, № 1,-P. 145−159.
  232. Muzafarov E.N., Zolotareva E.K. Uncoupling effect of hydroxycinnamic acid derivatives on pea chloroplasts // Biochem. Und Physiol. Pflanz. 1989. — B. 184, № 5−6. — S. 363−369.
  233. Nazarova G.N., Muzafarov E.N., Lyubimov V.Yu. Diurnal course of quercetin, rutin and floridzin effect on the activity of the Benson-Calvin cycle. 1. Glycer-aldehyde-3-phosphate dehydrogenase complex // Photosynthetica. 1993. — V. 29, № 3. — P. 353−360.
  234. Ndoumou D.O., Ndzomo G.T., Djocgoue P.F. Changes in carbohydrate, amino acid and phenol content in cocao pods from three clones after infection with Phytophthora megakarya // Ann. Bot. (USA). 1996. — V. 77, № 2. — P. 153−158.
  235. Oomah B.D., Campbell C.G., Mazza G. Effects of cultivar and environment on phenolic acids in buckwheat // Euptytica. 1996a. — V. 90, № 1. — P. 73−77.
  236. Oomah B.D., Mazza G., Kenaschuk E.O. Flavonoid content of flaxseed. Influence of cultivar and environment // Euptytica. 1996b. — V. 90, № 2. — P. 163 167.
  237. Pairoba C.F., Colombo S.L., Andreo C.S. Flavonoids as inhibitors of NADF-malic enzyme and PEP carboxylase from C4 plants // Biosci., Biotechnol. and Bio-chem. 1996. — V. 60, № 5. — P. 779−783.
  238. Park H.-H., Hakamatsuka T., SanKava U., Ebizuka Y. Rapid metabolism of isoflavonoids in elicitortreated cell suspension cultures of Pueraria lobata // Phyto-chemistry. 1995. — V. 38, № 2. — P. 373−380.
  239. Paterson N.W., Weyers J.D.B., Schildknecht H. The effect of turgorin on sto-matal movement and transpiration in Commelina communis // J. Plant Physiol. -1987. V. 128, № 4−5. — P.491−495.
  240. Physiological ecology of plants. Utrecht Univ., 1994. — 351 p.
  241. Pospisil F., Sindelarova M., Hrubrova M., Cvikrova M. The role of phenolic substances in the plant growth regulation // Proc. 4th Int. Symp., Pamporovo, Sept. 28 -Oct. 4,1986. -. Sofia, 1987 Pt. 2. — P. 187−196.
  242. Raskin I., Turner I.M., Melander W.R. Regulation of heat production in the inflorescences of an Arum lily by endogenous salicylic acid // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1989. — V. 86, № 7. — P. 2214−2218.
  243. Reid L.M., Mather D.E., Arnason J.T., Hamilton R.I., Bolton A.T. Changes in phenolic constituents of maize silk infected with Fusarium graminearum // Can. J. Bot. 1992. — V. 70, № 8. — P. 1697−1702.
  244. Rengel Z., Kordan H.A. Effect of N, P and K deficiencies on lightdependent anthocyanin formation in Zea mays L. seedlings // J. Plant Physiol. 1988a. -V. 132, № 1.-P. 126−128.
  245. Rengel Z., Kordan H.A. Photosensitivity of anthocyanin production in dark-grown and light-pretreated Zea mays seedlings // Can. J. Bot. 1988b. — V. 66, № 6. — P. 1021−1027.
  246. Rudat A., Goring H. Induction of betacyanin formation in cell-cultures of Chenopodium album under UV-light irradiadion // J. Exp. Bot. 1995. — V. 46, № 2.-P. 129−134.
  247. Russel G.B., Sirat H.Md., Sutherland O.R.W. Isoflavones from root bark of gorse // Phytochemistry. 1990. — V. 29, № 4. — P. 1287−1291.
  248. Ryan C.A., Jagendorf A. Self defense by plants // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. -1995. V. 92, № 10. — P. 40−75.
  249. Saunders J.A., McClure J.W. The distribution of flavonoids in chloroplasts of vascular plants // Phytochemistry. 1976. -V. 15, № 5. — P. 809−810.
  250. Scalbert A. Antimicrobial properties of tannins // Phytochemistry. 1991. — V. 30, № 12.-P. 3875−3883.
  251. Scalbert A., Haslam E. Polyphenols and chemical defense of the leaves of Quercus robur // Phytochemistry. 1987. — V. 26, № 12. — P. 3191−3195.
  252. Seabra R.M., Vasconcelos M.H., Cruz C.M.A., Correia A.A. Phenolic compounds from Hypericum perforatum and Hypericum undulatum // Fitoterapia. -1992. V. 63, № 5. — P. 473−474.
  253. Sharma S.S., Sharma S., Rai V.K. Reversal by phenolic compounds of ABA-induced suppression of 2,3,5-triphenyl tetrazolium chloride reduction in excised embryo axes of Prinsepia utilis // Indian J. Exp. Biol. 1989. — V. 27, № 4. — P. 378−380.
  254. Southwell I.A., Campbell M.H. Hypericin content variation in Hypericum perforatum in Australia // Phytochemistry. 1990. — V. 30, № 2. — P. 475−478.
  255. Stafford H.A. Proanthocyanidins and the lignin connection // Phytochemistry. 1988.-V. 27, № 1,-P. 1−3.
  256. Stapleton A.E., Walbot V. Flavonoids can protect maize DNA from the induction of ultraviolet radiation damage // Plant Physiol. 1994. — V. 105, № 3. — P. 881−889.
  257. Steiner A.M. Der Einfluss der Lichtintensitat auf die Akkumulation einzelner Anthocyane in isolierten Petalen von Petunia hybrida // Z. Pflanzenphysiol. -1972.-Bd. 68, №. 3.-S. 266−271.
  258. Tevini M., Braun J., Fieser G. The protective function of the epidermal layer of rye seedlings against ultraviolet-B radiation // Photochem. and Photobiol. -1991.-V. 53, № 3,-P. 329−333.
  259. Thiede H.M., Walper A. Inhibition of MAO and COMT by hypericum extracts and hypericin// J. Geriatr. Psychiatry Neurol. 1994. — Oct. 7. — Suppl. 1. — S. 5456.
  260. Tilman D. Mechanisms of plant competitions for nutrients: the elements of predictive theory of competition // Perspectives in plant competition. N.-Y. e.a. Acad. Press, 1990.-P. 117−141.
  261. Towers G.H.N. Interaction of light with phytochemicals in some natural and novel systems // Can. J. Bot. 1984. — V. 62, № 12. — P. 2900−2911.
  262. Trull M.C., Guiltinan M.J., Lynch D.P., Deikman J. Analysis of the response to low phosphorus in arabidopsis // Plant Physiol. 1994. — V. 105, № 1. -Suppl. -P. 112.
  263. Veqt T., Xu P., Taylor L.P. The role of flavonols in pollengermination // Plant Physiol. 1994. — V. 105, № 1. — Suppl. — P. 42.
  264. Wagner A.M., van Brederode J. Inhibition of mitochondrial respiration by the flavone aglycone isovitexin causes aberrant petal and leaf morphology in Silene latifolia // Plant Cell Repts. 1996. — V. 15, № 9. — P. 718−722.
  265. Waller G.R. Biochemical frontiers of allelopaty // Biol. Plant. 1989. — V. 31, № 6. — P. 418−447.
  266. Watanabe M., Ohshita Y., Tsushida T. Antioxidant compounds from buckwheat (Fagopirum esculentum Moench) hulls // J. Agr. and Food Chem. 1997. -V. 45, № 4.-P. 1039−1044.
  267. Weidner S., Paprocka J., Zadernowski R. Phenolic acid in developing and ripening barley caryopses // Abstr. 22nd Meet. Fed. Eur. Biochem. Soc., Stockholm, July 4−9,1993.-P. 160.
  268. Weissenbock G. On the possible involvement of chloroplasts from Impatiens balsamina in the biosynthesis of flavonoid compounds // Z. Physiol. Chem. 1982. -B. 353, № l.-s. 136−139.
  269. Wojtaszek P., Stobiecki M., Gulewicz K. Role of nitrogen and plant growth regulators in exudation and accumulation of isoflavonoids by roots of intact white lupin (Lupinus albus L.) plants // J. Plant Physiol. 1993. — V. 142, № 6. — P. 689 695.
  270. Yiet M., Bilger W., Miihlbauer T., Brummet W., Winter K. Diurnal changes in flavonoids // J. Plant Physiol. 1996. — V. 148, № 3−4. — P. 478−482.
  271. Yistra B., Busscher J., Tunen A.J. van Mode of action of flavonols during pollen tube growth of Petunia hybrida // Plant Cell Biol.: Mech., Mol. Mach., Signals and Pathways: Pap. Keystone Symp. Mol. And Cell Biol., Taos, N.M., Jan. 713, 1995.-P. 33.
  272. Yistra B., Touraev A., Morena R.M.B., Stoger E., Tunen A.J. van, Vicente O., Mol J.N.M., Heberle-Bors E. Flavonols stimulate development, germination and tube growth of tobacco pollen // Plant Physiol. -1992. -V. 100, № 3. P. 902−903.
  273. Списки видов исследованных синтаксонов1. Пробная площадь I
  274. Класс Molinio Arrhenatheretea Тх. 1937 Порядок Galietalia veri Mirkin et Naumova 1986 Союз Polygonion krascheninnikovii Kaschapov 19 851. Agrostis sp.
  275. Filipendula ulmaria (L.) Maxim.14.Polygonum bistorta L15.P. alpinum All.16.Aegopodium podagraria L.17.Achillea millefolium L.18.Rhinanthus minor L.19.Thalictrum simplex L.
  276. Digitalis grandiflora Mill.21.Prunella vulgaris L.
  277. Coronaria flos-cuculi (L.) A. Br.23.Lathyrus pratensis L.24.L. tuberosus L.
  278. Trifolium medium L. 26. Stachys sylvatica L.27.Ajuga reptans L.28.Glechoma hederacea L.29.Picris hieracioides L.
  279. Centaurea stenolepis Kern.31.Rubus saxatilis L.32.Geranium sylvaticum L.
  280. Knautia arvensis (L.) Coult.34.Pinus sylvestris L.1. Пробная площадь II
  281. Класс Trifolio Geranietea sanguinei Th. Muller 1961 Порядок Origanetalia Th. Muller 1961 Союз Trifolion medii Th. Muller 19 611. Agrostis sp.2. Phleum nodosum L.3. Melica nutans L.4. Poa angustifolia L.5. Poa pratensis L.6. Festuca pratensis Huds.
  282. Bromopsis inermis (Leys.) Holub8. Dactylis glomerata L.9. Carex sp.
  283. Digitalis grandiflora Mill. 11. Origanum vulgare L. 12. Phlomis tuberosa L.
  284. Ranunculus polyanthemos L.14.Thalictrum simplex L.
  285. Plantago urvillei Opiz lo. Potentilla impolita Wahlenb.17.Geum urbanum L.18.Myosotis popovii Dobrocz.19.Clinipidium vulgare L.
  286. F. viridis Duch. 34. Stachys officinalis (L.) Trevis. 35. Primula macrocalyx Bunge 36. Stellaria graminea L.37.Agrimonia eupatoria L.
  287. Ranunculus polyanthemos L. 39. Origanum vulgare L.
  288. Taraxacum officinale Wigg.41.Tilia cordata Mill.42.Quercus robur L.1. Пробная площадь III
  289. Cirsium setosum (Willd.) Bess.7. Convolvulus arvensis L.
  290. Potentilla impolita Wahlenb.9. Galium boreale L.
  291. Achillea millefolium L. 11. Pastinaca sativa L.12.Solidago virgaurea L.13.Linaria vulgaris Mill.14.Cichorium inthybus L.15.Agrimonia eupatoria L.16.Equisetum arvense L.17. Inula britannica L.18.Vicia cracca L.19.Artemisia absinthium L.
  292. Leucanthemum vulgare Lam. 21. Hypericum perforatum L. 22. Taraxacum officinale Wigg.
  293. Prunella vulgaris L. 24, Oberna behen (L.) Ikonn.25.Rumex confertus Willd.26.Plantago major L.27.Galium mollugo L.28.Trifolium medium L.29.Ulmus glabra Huds.30. Salix sp.1. Пробная площадь IV
  294. Geranium. pratense L. 21. Plantage media L.22, Fragaria vesca L, 23, Bimi&$ orioitalis L. 24. Stadhys officinalis (L.) Trevis.25.Carum carvi L, 26. Pastinaca saliva L.
  295. A. saiitoiimfblia (Pamp.) Turez. ex Krasch. 25.3Leommis quinquelobatus Gilib.
  296. Leucantiiemum vulgare Lam.27.Hypericum perforatum L.28.H. hirsutum L,
  297. Taraxacum officinale Wieg, 30. Cerasus fruticosa Pall.
  298. Caragana frutex (L.) C. Koch.32.Rosa acicularis Lindl.33.Tilia cordata Mill.34.Pinus sylvestris L.1. Пробная площадь VI
  299. Класс Molinio Arrhenatheretea Tx. 1937 Порядок Arrhenatheretalia Pawl. 1928 Союз Cynosurion Tx. 1947
  300. Taraxacum officinale Wigg.13.Artemisia vulgaris L.
  301. Matricaria perforata Merat15. Prunella vulgaris L.
  302. Potentilla impolita Wahlenb.17.P. anserina L.18. Achillea millefolium L.
  303. Filipendula ulmaria (L.) Maxim.20.Fragaria vesca L.21. Agrimonia eupatoria L.22.Geum rivale L.23.G. urbanum L.24. Stellaria graminea L.25.Dianthus deltoides L.
  304. Verbascum nigrum L. 27. Origanum vulgare L.28.Hypericum perforatum L.29.H. hirsutum L.30.Alchemilla sp.31 .Campanula patula L.32. Viola tricolor L.33.Rumex acetosella L.34.Equisetum arvense L.35.Plantago major L.
  305. Rorippa palustris (Leyss.) Bess.1. Пробная площадь VII
  306. Cirsium setosum (Willd.) Bess.10.Convolvulus arvensis L.11 .Potentilla impolita Wahlenb.12. Galium aparine L.13.Achillea millefolium L.14.Galeopsis sp.15.Lathyrus litvinovii Iljin
  307. Pastinaca sativa L. 17. Solidago virgaurea L.18.Glechoma hederacea L.19.Linaria vulgaris Mill.
  308. Cichorium inthybus L. 21. Agrimonia eupatoria L.22.Geum urbanum L.
  309. Knautia arvensis (L.) Coult.
  310. Equisetum arvense L. 25. Inula britannica L.26. Vicia cracca L.27.Artemisia absinthium L.
  311. Leonurus quinquelobatus Gilib.29.Leucanthemum vulgare Lam.
  312. Hypericum perforatum L. 31. Urtica urens L.
  313. Taraxacum officinale Wigg.33.Tilia cordata Mill.34.Padus avium Mill.
  314. Caragana frutex (L.) C. Koch1. Пробная площадь VIII
  315. Calamagrostis epigeios (L.) Roth
  316. Bromopsis inermis (Leys.) Holub
  317. Thymus mugodzharicus Klok. et Shost.4. Glechoma hederacea L.5. Tussilago farfara L.6. Leucanthemum vulgare Lam.
  318. Taraxacum officinale Wigg.8. Artemisia vulgaris L.
  319. A. santolinifolia (Pamp.) Turcz. ex Krasch.10.A. absinthium L.11 .Matricaria perforata Merat12. Prunella vulgaris L.
  320. Potentilla impolita Wahlenb.14.P. anserina L.
  321. Rorippa palustris (Leyss.) Bess. 30. Scrophularia nodosa L.31 .Veronica spicata L.
  322. Melilotus officinalis (L.) Pall.33.Cichorium inthybus L.34. Angelica archangelica L.35.Tanacetum vulgare L.
  323. Centaurea stenolepis Kern.37.Erigeron acris L.
  324. Melandrium album (Mill.) Garcke 39, Oberna behen (L.) Ikonn. 40. Chenopodium album L.41 .Humulus lupulus L.42.Plantago major L.43. Arenaria serpyllifolia L.44.Rumex acetosella L.45.Crepis tectorum L.46.Thalictrum symplex L.
  325. sp. 48.Sedum hybridum L.
  326. Chamerion angustifolium (L.) Rafin.
  327. Rubus idaeus L. 51. Populus tremula L. 52. Pinus sylvestris L.1. Пробная площадь IX
  328. Класс Molinio Arrhenatheretea Tx. 1937 Порядок Galietalia veri Mirkin et Naumova 1986 Союз Polygonion krascheninnikovii Kaschapov 19 851. Poa pratensis L.2. Dactylis glomerata L.3. Agrostis tenuis Sibth.4. Alopecurus pratensis L.
  329. Sanguisorba officinalis L.6. Polygonum bistorta L.7. Prunella vulgaris L.8. Geranium pratense L.9. Achillea millefolium L.10.Galium mollugo L.11 .Hypericum perforatum L.12.Trifolium medium L.
  330. Cirsium setosum (Willd.) Bess.14.Lathyrus pratensis L.15. Vicia cracca L.1. Пробная площадь X
  331. Морфофизиологические и биохимические показатели Hypericum perforatum L. в естественных местообитаниях и на окультуренном луге1. Класс Trifolio
  332. Класс Molinio Arrhenatheretea Geranieteasanguinei
  333. Л с S о Порядок Arrhenatheretalia Порядок Galietalia veri Порядок Origanetalia
  334. Показатели и о в et о X! <а О* <и я о> о gl 1с о и в
  335. Ассоциация Loto сог-niculati -Agrostietum gigantei Окультуренный луг? •с Н со 2 о и 1 'С Н со 2 о и
  336. Пл. VIII Пл. VI Пл. IV Пл. III Пл. VII Пл. X Пл. IX Пл. I Пл. V Пл. П1. Морфофизио- логические
  337. Ws, r 14.2 10.4 5.6 10 13.8 33.1 23.2 4.0 9.7 4.429 1.8 0.2 1.7 2.5 10.2 1.2 0.5 1.8 0.7
  338. Wr, г 42 11 2.6 2.5 1.7 3.7 2.1 1.9 1.8 2.104 0.2 0.2 0.4 0.1 0.9 0.4 0.2 0.2 0.3
  339. Примечание. В числителе среднее значение, в знаменателе — ошибка среднего.
  340. Пл. VIII Пл. VI Пл. IV Пл. III Пл. VII Пл. X Пл. IX Пл. I Пл. V Пл. II
  341. WRZ, Г 3.4 2Л 1.9 13 1.2 2Л 2.0 17 1.1 2.005 0.4 0.4 0.4 0.1 0.9 0.5 0.5 0.3 0.3
  342. Убт, Г М М зл 3.3 9.5 22.1 13.9 23 5.6 2.620 1.3 0.3 1.1 1.7 6.4 3.2 0.3 1.0 0.3г ЗЛ 2,6 1.9 1.2 2.6 6.7 4.3 1.4 2.9 1.507 0.4 0.1 0.6 0.5 1.9 0.3 0.2 0.7 0.3г 2Л 12 0.7 0.5 1.6 4.3 5.0 0.3 1.2 0.403 0.2 0.2 0.2 0.4 2.0 0.2 0.04 0.2 0.1
  343. Н, см 36.4 37.9 44.0 30.0 59.2 63.0 70.0 37.0 39.1 34.2
  344. АЛ 2.6 3.5 3.3 4.4 8.6 2.3 1.6 1.8 4.4
  345. N8, шт. П 9 5 4 5 11 9 6 8 812 1.8 3.5 1.1 1.1 2.4 2.5 0.7 1.3 1.7о,% 49 59 64 55 75 58 89 47 56 4959 5.4 6.1 9.5 7.1 12.6 1.1 1.8 7.1 11.5
  346. ЯЕ, г/г 0.17 0.12 0.12 0.10 0.12 0.11 0.22 0.07 0.13 0.9 002 0.01 0.03 0.01 0.01 0.02 0.04 0.01 0.01 0.01
  347. ЬУЛ, г/г 0.27 0.25 0.33 0.22 0.19 0.21 0.19 0.36 0.29 0.33 001 0.03 0.02 0.03 0.02 0.01 0.02 0.02 0.32 0.02
  348. А, см2 276.9 193.2 185.0 74.0 406.0 772.0 416.4 194.7 226.2 205.0687 38.5 19.9 32.3 145.4 212.0 27.7 29.4 34.9 43.6оо О
  349. Пл. VIII Пл. VI Пл. IV Пл. III Пл. VII Пл. X Пл. IX Пл. I Пл. V Пл. П
  350. R, см2/г 18.9 18.6 33.1 14.4 27.4 23.9 18.52 49.3 23.8 44.416 2.9 3.5 2.8 5.3 2.6 1.9 4.5 2.1 3.7
  351. RWR, г/г 0.33 0.37 0.46 0.62 0.13 0.09 0.14 0.46 0.19 0.51 004 0.05 0.09 0.12 0.02 0.02 0.02 0.06 0.02 0.08
  352. SRR, г/г 3.26 3.32 2.75 1.92 7.85 12.59 7.69 2.40 5.64 2.45 033 0.47 0.66 0.33 0.97 2.79 0.68 0.3^ 0.59 0.66
  353. Биохимические и содержаниезольных элементов
  354. Каротиноиды, 28.2 56.2 12.1 34.1 10.6 7.1 76.2 45.6 51.1 49.2
  355. Листья, мг% 9.9 5.1 0.7 8.0 3.2 1.1 2.9 7.6 8.6 11.8
  356. Флавоноиды, 4.12 4.74 2.68 4.70 3.85 3.46 4.41 5.20 4.48 4.49
  357. Листья, % 0.17 0.14 0.27 0.31 0.46 0.14 0.20 0.27 0.28 0.21
  358. Катехины, 0.728 0.930 0.834 1.115 0.915 0.571 0.548 1.023 0.925 0.752
  359. Листья, усл. ед. 0.048 0.055 0.074 0.026 0.235 0.023 0.019 0.054 0.137 0.069
  360. Гиперицин, 0.092 0.120 0.055 0.040 0.112 0.110 0.097 0.095 0.103 0.100
  361. Листья, % 0.006 0.006 0.006 0.003 0.009 0.008 0.006 0.005 0.009 0.003
  362. Каротиноиды, 52.4 46.0 30.8 64.2 37.2 67.8 98.7 111.8 58.9 117.2
  363. Цветки, мг% 5.9 3.6 5.1 16.3 10.2 4.2 4.5 11.7 11.1 10.5
  364. Флавоноиды, 3.89 3.56 2.27 4.11 2.53 3.10 4.22 4.77 3.93 5.42
  365. Цветки, % 0.12 0.19 0.22 0.23 0.25 0.09 0.20 0.56 0.34 0.2600
  366. Пл. VIII Пл. VI Пл. IV Пл. П1 Пл. VII Пл. X Пл. IX Пл. I Пл. V Пл. П
  367. Катехины, 1.188 1.175 0.659 1.149 1.115 1.199 0.971 1.735 1.155 1.376
  368. Цветки, усл. ед. 0.060 0.076 0.057 0.039 0.079 0.211 0.043 0.081 0.095 0.049
  369. Гиперицин, 0.386 0.363 0.237 0.222 0.370 0.329 0.333 0.615 0.269 0.539
  370. Цветки, % 0.018 0.029 0.027 0.012 0.042 0.200 0.010 0.056 0.024 0.021
  371. Флавоноиды, 0.43 0.50 0.35 0.58 0.44 0.57 0.58 0.37 0.51 0.39
  372. Стебли, % 0.05 0.05 0.09 0.12 0.10 0.07 0.01 0.03 0.09 0.034
  373. Катехины, 0.671 0.673 0.404 1.145 0.089 0.087 0.349 0.339 0.305 0.353
  374. Стебли, усл. ед. 0.041 0.017 0.013 0.029 0.012 0.010 0.019 0.012 0.033 0.025
  375. Гиперицин, 0.010 0.010 0.003 0.004 0.020 0.024 0.018 0.015 0.016 0.016
  376. Стебли, % 0.001 0.001 0.0004 0.001 0.002 0.001 0.001 0.001 0.001 0.001
  377. Протеины, 16.03 19.38 20.27 15.76 21.44 21.49 16.18 19.59 19.74 18.99
  378. Листья, % 0.87 0.50 0.46 0.65 1.01 0.89 0.63 0.19 1.80 1.49
  379. Клетчатка, 10.00 13.24 10.73 18.44 15.84 16.77 15.63 16.06 12.17 13.48
  380. Листья, % 0.36 0.29 1.70 0.12 0.98 0.69 0.35 0.31 0.91 0.84
  381. Зола, 6.03 7.04 8.42 7.86 9.63 10.10 6.76 9.44 7.80 7.69
  382. Листья, % 0.24 0.20 0.42 0.27 0.35 0.15 0.31 0.13 0.44 0.33
  383. Са, 15.94 17.06 23.00 13.46 13.03 13.24 13.24 15.91 17.79 16.63
  384. Листья, % 0.56 0.73 0.79 0.78 0.96 0.75 0.68 0.31 1.45 0.85
  385. Р, 1.04 1.28 2.03 1.39 3.49 3.58 1.44 2.12 1.73 1.69
  386. Листья, % 0.10 0.10 0.12 0.12 0.18 0.14 0.09 0.04 0.23 0.1400 ю
  387. Пл. VIII Пл. VI Пл. IV Пл. Ш Пл. VII Пл. X Пл. IX Пл. I Пл. V Пл. П
  388. Протеины, 19.27 18.69 21.14 18.18 23.84 23.07 17.88 20.41 19.12 19.70
  389. Цветки, % 0.34 0.32 0.47 0.19 0.78 0.91 0.41 0.71 0.59 0.36
  390. Клетчатка, 10.61 11.75 12.79 13.17 13.84 14.78 13.58 11.69 10.52 11.08
  391. Цветки, % 0.26 0.47 0.99 0.58 1.07 0.86 0.32 0.38 0.34 0.82
  392. Зола, 7.75 7.71 9.56 7.86 9.50 9.86 7.60 8.52 8.71 8.29
  393. Цветки, % 0.12 0.20 0.45 0.20 0.18 0.24 0.18 0.37 0.19 0.05
  394. Са, 16.35 15.88 17.60 13.08 11.23 10.76 14.26 15.73 18.94 15.49
  395. Цветки, % 0.27 0.41 0.81 1.11 0.36 0.56 0.70 0.93 0.59 0.83
  396. Р, 2.15 1.94 2.91 2.01 4.24 4.15 2.23 2.27 2.29 2.52
  397. Цветки, % 0.08 0.09 0.09 0.09 0.15 0.09 0.08 0.18 0.21 0.04
  398. Протеины, 4.10 4.74 3.89 3.70 9.26 9.74 5.11 5.61 5.63 4.89
  399. Стебли, % 0.25 0.32 0.22 0.65 1.40 0.44 0.35 0.54 0.47 0.60
  400. Клетчатка, 38.74 36.82 38.05 41.63 34.86 33.59 34.18 35.82 36.34 37.68
  401. Стебли, % 1.00 0.75 0.74 1.64 2.78 0.43 1.01 1.37 1.17 1.99
  402. Зола, 6.06 6.10 5.78 6.05 7.63 7.83 6.31 6.48 6.60 5.81
  403. Стебли, % 0.18 3.12 0.08 0.22 0.23 0.15 0.16 0.16 0.21 0.14
  404. Са, 1.80 2.23 2.88 1.79 3.73 3.33 3.25 2.37 2.94 2.12
  405. Стебли, % 0.14 0.20 0.18 0.62 0.61 0.41 0.311 0.24 0.48 0.40
  406. Р, 0.70 0.75 0.62 0.66 2.48 2.71 0.81 1.33 1.12 1.01
  407. Стебли, % 0.07 0.06 0.06 0.17 0.28 0.06 0.046 0.07 0.11 0.081.Iоо
  408. А 2 А, см I 1092.5 843.5 335.41 414 150.2 69.81. 371.4 841.8 951.0478 111.1 172.2
  409. LAR, см /г I 21.0 15.7 19.321 1.5 1.01. 25.3 24.1 22.319 2.0 1.21. RWR, г/г I 0.15 0.25 0.15 001 0.04 0.011. 0.22 0.20 0.28 001 0.01 0.011. SRR, г/г I 6.88 5.04 7.5 038 0.88 0.701. 4.55 5.37 3.68 025 0.46 0.16
  410. Биохимические и содержаниезольных элементов
  411. Каротиноиды, листья, мг% I 83.8 43.7 67.984 3.6 11.81. 120.8 153.6 58.81 940 12.6 10.7
  412. Флавоноиды, листья, % I 3.74 4.12 4.59 018 0.09 0.121 2 3 4 5 61. 4.15 4.63 4.58 009 0.15 0.10
  413. Катехины, листья, усл. ед. I 0.691 0.672 0.7 490 064 0.025 0.0361. 0.553 1.044 0.7 540 033 0.075 0.037
  414. Гиперицин, листья, % I 0.074 0.106 0.130 005 0.006 0.0061. 0.068 0.100 0.1 210 003 0.002 0.003
  415. Каротиноиды, цветки, мг% I 106.5 84.0 70.138 17.8 4.41. 39.2 114.4 88.534 6.2 7.2
  416. Флавоноиды, цветки, % I 4.76 3.46 4.99 024 0.15 0.191. 2.94 5.34 5.70 009 0.19 0.11
  417. Катехины, цветки, усл. ед. I 1.013 0.910 1.3 650 102 0.039 0.0551. 0.788 1.533 1.3 090 037 0.108 0.049
  418. Гиперицин, цветки, % I 0.316 0.409 0.4 590 007 0.017 0.0111. 0.219 0.389 0.4550.0170 0.011 0.016
  419. Флавоноиды, стебли, % I 0.36 0.25 0.48 002 0.04 0.051. 0.42 0.38 004 0.03
  420. Катехины, стебли, усл. ед. I 0.093 0.466 0.2 720 012 0.054 0.1 581. 0.626 0.3 540 025 0.017
  421. Гиперицин, стебли, % I 0.08 0.004 0.150 001 0.001 0.0081 2 3 4 5 61. 0.004 0.140 001 0.001
  422. Протеины, листья, % I 20.17 23.83 21.8 056 0.63 0.771. 19.81 18.20 19.20 013 0.39 0.62
  423. Клетчатка, листья, % I 15.28 10.93 12.16 020 0.66 0.371. 10.98 12.58 10.3 027 0.33 0.37
  424. Зола, листья, % I 9.59 9.31 8.44 012 0.08 0.241. 8.08 8.05 8.26 012 0.16 0.17
  425. Са, листья, % I 11.74 20.88 19.49 029 0.69 0.561. 18.13 15.80 15.9 035 0.42 0.62
  426. Р, листья, % I 3.43 2.22 2.10 005 0.05 0.111. 2.03 1.89 2.2 005 0.06 0.09
  427. Протеины, цветки, % I 22.40 20.36 20.38 026 0.57 0.421. 22.05 20.65 22.19 0.39 0.14
  428. Клетчатка, цветки, % I 13.83 9.16 11.6 024 0.64 0.351. 4.57 9.05 6.57 033 0.33 0.29
  429. Зола, цветки, % I 9.13 7.31 8.26 008 0.16 0.191. 8.66 8.68 8.87 011 0.11 0.10
  430. Са, цветки, % I 8.46 15.83 15.93 009 0.83 0.361. Окончание приложения 31 2 3 4 5 61. 22.64 17.79 16.57 046 0.39 0.20
  431. Р, цветки, % I 4.05 2.02 2.52 003 0.07 0.071. 2.64 2.62 2.45 011 0.04 0.06
  432. Протеины, стебли, % I 3.52 5.79 5.98 022 0.30 0.291. 5.14 6.220 181 0.260
  433. Клетчатка, стебли, % I 42.42 34.40 36.24 041 1.08 0.871. 35.09 33.63 056 0.69
  434. Зола, стебли, % I 7.10 6.47 6.70 008 0.13 0.081. 6.29 6.70 005 0.08
  435. Са, стебли, % I 0.52 2.89 2.25 011 0.13 0.161. 3.46 2.93 008 0.31
  436. Р, стебли, % I 1.79 1.21 1.32 002 0.10 0.061. 0.71 1.26 005 0.06
Заполнить форму текущей работой

На отлично!