Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Разработка методов молекулярной оценки селекционного материала основных овощных культур (лук, морковь, капуста белокочанная) на основе RAPD технологии

Диссертация: Разработка методов молекулярной оценки селекционного материала основных овощных культур (лук, морковь, капуста белокочанная) на основе RAPD технологии
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Одной из наиболее важных проблем в селекции и семеноводстве овощных культур является идентификация сортов и гибридов. Особенно это актуально для культур с перекрестным способом опыления, таких как: луки, морковь, капуста. Традиционно в качестве основных критериев оценки селекционного материала используются морфологические признаки. Однако различия между сортами по этим признакам не всегда… Читать ещё >

Содержание

  • ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Использование морфологических и биохимических признаков в геномной идентификации растений
    • 1. 2. Молекулярные маркеры на основе ДНК в геномной идентификации растений
      • 1. 2. 1. RFLP технологии и их использование в геномной идентификации растений
      • 1. 2. 2. PCR технология и методы разработанные на ее основе геномной идентификации растений
      • 1. 2. 3. RAPD метод
      • 1. 2. 4. Оценка различных методов молекулярного маркирования в сравнении с RAPD методом
      • 1. 2. 5. Методы выделения ДНК из растительных тканей
      • 1. 2. 6. Оптимизация условий проведения PCR со случайными праймерами
    • 1. 3. Области применения RAPD технологии
      • 1. 3. 1. Картирование признаков и генетические карты
      • 1. 3. 2. RAPD маркеры в оценке биоразнообразия зародышевой плазмы
      • 1. 3. 3. RAPD маркеры в сортовой идентификации и семенном контроле
    • 1. 4. Таксономия рода Allium и изучение филогенетических связей между видами на основе морфологических и цитологических признаков
    • 1. 5. Межвидовая гибридизация и ее значение в селекции лука
    • 2. Молекулярно-биологические исследования лука в анализе филогенетических связей и прикладных аспектах селекции и семеноводства
    • 3. Андрогенез и гиногенез в создании исходного материала для гетерозисной селекции моркови и методы его оценки на выравненность
  • ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
    • 2. 1. Растительный материал
    • 2. 2. 808-электрофорез запасных белков семян в полиакриламидном геле
    • 2. 3. Выделение геномной ДНК
    • 2. 4. Амплификация геномной ДНК
    • 2. 5. Электрофорез в агарозном геле и визуализация продуктов амплификации
    • 2. 6. Математическая обработка полученных данных
  • ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
    • 3. 1. Микрометод выделения геномной ДНК для КАРЭ анализа и характеристика полученных препаратов
    • 3. 2. ЯДРО технология: оптимизация и подбор условий проведения ПЦР
      • 3. 2. 1. Обсуждение результатов
    • 3. 3. Геномная идентификация в изучении культурного и дикого ассортимента луков
      • 3. 3. 1. Подбор праймеров
      • 3. 3. 2. ЯАРО анализ в изучении межвидового и внутривидового полиморфизма луков
      • 3. 3. 3. ЫАРО анализ в сортовой идентификации
      • 3. 3. 4. Обсуждение результатов
    • 3. 4. Биохимическая и молекулярная оценка коммерческих партий семян
      • 3. 4. 1. Сравнительный анализ эффективности использования биохимических методов и ЯАРБ технологии в оценке коммерческих партий семян лука
      • 3. 4. 2. КАРБ технология в сортовой идентификации и оценке коммерческих партии семян капусты белокочанной
      • 3. 4. 3. Обсуждение результатов
    • 3. 5. Анализ межвидовых гибридов лука
      • 3. 5. 1. Использование RAPD технологии в анализе межвидовых гибридов
      • 3. 5. 2. Обсуждение результатов
    • 3. 6. Молекулярная оценка выравненности линейного материала моркови, полученного с использованием культуры in vitro
      • 3. 6. 1. Подбор праймеров
      • 3. 6. 2. Молекулярный анализ андрогенных растений моркови
  • RAPD методом
    • 3. 6. 3. Молекулярный анализ гиногенных растений моркови
  • RAPD методом
    • 3. 6. 4. Обсуждение результатов
  • ВЫВОДЫ
  • СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
  • ПРИЛОЖЕНИЕ

Разработка методов молекулярной оценки селекционного материала основных овощных культур (лук, морковь, капуста белокочанная) на основе RAPD технологии (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность темы

Одной из наиболее важных проблем в селекции и семеноводстве овощных культур является идентификация сортов и гибридов. Особенно это актуально для культур с перекрестным способом опыления, таких как: луки, морковь, капуста. Традиционно в качестве основных критериев оценки селекционного материала используются морфологические признаки. Однако различия между сортами по этим признакам не всегда достаточно четкие, оценка проводится, как правило, на взрослых растениях, получение которых требует немалых производственных затрат и времени. Поэтому, в последние годы, все чаще для решения практических задач используются методы молекулярно-генетических исследований растений (электрофорез запасных белков, изоферментов, методы анализа ДНК на основе М<�ЪРи КАРЭ-технологий). В связи с этим особый интерес представляет НАРБ-технология как эффективный метод анализа растительного генома. Она достаточно проста в исполнении, процесс автоматизирован, требует небольшого количества времени и растительного материала для анализа, вне зависимости от стадии развития самого растения. Стандартизация экспресс-методов выделения ДНК и условий проведения ИАРО анализа обеспечивают воспроизводимость и достоверность получаемых данных. Использование ЯАРБ технологии в геномной идентификации и паспортизации селекционного материала все чаще находит применение в оценке генетического разнообразия культурных растений и их диких сородичей, в реконструкции родословных, в подборе родительских пар и оценке гибридного потомства, в анализе новых форм, создаваемых с использованием биотехнологических приемов (соматический эмбриогенез и техники эмбриоспасения при отдаленной гибридизации, гинои андрогенез), в совершенствовании методов семенного контроля. Данная технология впервые создала предпосылки для детального изучения природы хозяйственно ценных признаков, генетического картирования отдельных генов и для реализации программ, связанных с регистрацией новых селекционных достижений и защитой авторских прав селекционера.

Внедрение в практику молекулярно-генетических методов исследования растительного генома и ДНК «фингерпринтинга» призвано повысить эффективность селекционного процесса и сделать его более направленным.

Цель и задачи исследований. Целью данной работы было разработать методы идентификации селекционного материала основных овощных культур (лук, морковь, капуста белокочанная) на основе RAPD технологии.

В связи с этим были поставлены следующие задачи:

1. создать коллекции геномной ДНК исследуемых культур

2. оптимизировать условия проведения полимеразной цепной реакции и системы праймирования для каждой из исследуемых культур в решении конкретных задач.

3. провести молекулярный анализ геномной ДНК отдельных видов и сортопопуляций лука.

4. исследовать уровень интрогресии геномов при отдаленной гибридизации луков.

5. на основе RAPD технологии разработать методику оценки коммерческих партий семян лука репчатого и капусты белокочанной на сортовую принадлежность и сортовую чистоту.

6. с помощью RAPD технологии провести молекулярный анализ гиногенных и андрогенных растений моркови, оценить степень их гомогенности и выравненности, а также рассмотреть зависимость этих показателей от происхождения растений-регенерантов, полученных в культуре пыльников in vitro.

Научная новизна результатов исследований. Оптимизированы условия проведения полимеразной цепной реакции и подобраны системы праймирования для каждой из исследуемых культур в решении конкретных задач. На основании данных RAPD анализа уточнена филогения отдельных видов рода Allium и показана эффективность данного метода в изучении популяций диких видов лука. Впервые дана молекулярная характеристика межвидовых гибридов лука в процессе беккроссирования и линейного материала моркови, полученного с использованием культуры in vitro.

Практическая значимость. В результате проведенных исследований разработана быстрая технология RAPD анализа селекционного и семенного материала таких овощных культур как лук репчатый, чеснок посевной, капуста белокочанная, а также исходного материала для селекции лука и моркови. С помощью RAPD технологии проведены сортовая идентификация и оценка коммерческих партий семян лука репчатого и капусты белокочанной на сортовую принадлежность и сортовую чистоту. Молекулярные маркеры, полученные на основе ДНК амплификации, эффективны при оценке коммерческих партий семян и должны служить средством правовой защиты селекционных достижений.

Опубликованы «Краткие методические указания по использованию RAPD маркеров для оценки генотипов луковых культур» в составе «Методических указаний по селекции луковых культур» (Москва: Издание РАСХН, 1997), которые предложены для использования в селекционной практике.

Апробация работы. Материалы диссертации были представлены на Международной конференции «Актуальные проблемы растениеводства и животноводства», Москва, 1996; Международной конференции «Молекулярно-генетические маркеры растений», Ялта, 1996; Международной конференции «Агробиотехнология растений и животных», Киев, 1997; на Втором международном симпозиуме «Новые и нетрадиционные растения», Пущино, 1997; Международном симпозиуме «Гетерозис у сельскохозяйственных растений», 1997; VII Международной конференции «Биология клеток растений in vitro, биотехнология и сохранение генофонда», Москва, 1997; Научной сессии «Новые методы селекции и создание адаптивных сортов сельскохозяйственных культур: результаты и перспективы», Киров, 1998.

ВЫВОДЫ:

1. Разработана экономичная RAPD технология, направленная на быструю идентификацию генотипов ряда основных овощных культур (лук, морковь, капуста белокочанная).

2. Подтверждена возможность использования предложенного варианта RAPD технологии при изучении филогенетических взаимоотношений среди представителей рода Allium и внутривидового полиморфизма на молекулярном уровне.

3. Впервые с помощью RAPD технологии проведена геномная идентификация межвидовых гибридов: А. сера х A. schoenoprasum и А. сера х A. nutans, а также форм, полученных в системе последующих беккроссов на последней комбинации скрещивания. Установлено, что RAPD анализ позволяет контролировать долю родительских геномов при беккроссировании.

4. На основании полученных RAPD спектров проведена сортовая идентификация лука репчатого, чеснока посевного, капусты белокочанной и показана эффективность использования RAPD технологии в анализе коммерческих партий семян лука репчатого и капусты белокочанной.

5. Впервые с помощью RAPD технологии проведено тестирование на генетическую стабильность и однородность линейного материала моркови, полученного путем андрогенеза и гиногенеза в культуре in vitro. Молекулярный анализ андрогенных растений моркови показал, что степень гетерогенности зависит от способа получения материала в культуре in vitro.

Показать весь текст

Список литературы

  1. М.В. Культурные луки.- М.: Колос, I960.- 303 с.
  2. Е.В., Бочканов С. С., Сонина Н. В. и др. Измененная структура хлоропластного генома в регенерантах тритикале из культуры пыльников// Всесоюз.конф.по генет.сомат.кл.в культ., Звенигород, 19−22.10.1986/ Тез. докл.- М.-1986, — С.89−90.
  3. А. Биотехнология в растениеводстве/ Пер. с болг. Е. В. Дейнеко.-Новосибирск.- 1993.- 241с.
  4. Д.Д., Луковникова Г. А., Генейди Г. С. и др. Исследование белков семян сортов и гибридов Allium сера L. методами электрофореза и ИК-спектроскопии// Физиол. раст, — 1971.- Т. 18.- Вып.2.- С.306−313.
  5. С.А., Кабоев O.K., Мироненко Н. В. и др. Полимеразная цепная реакция с универсальными праймерами для изучения геномов // Генетика.- 1992, — Т.28.- № 5.- С. 19−28.
  6. Л.И. Сравнительно-кариологическое исследование некоторых видов лука секции Mollium Don.// Бот. журнал 1969.- Т.54.- № 1.- С. 143.
  7. Введенский А.И. Allium L.// Флора СССР.- Л.: Изд-во АН СССР, 1935, — Т.4.-С. 112−280.
  8. Т.А., Павлов A.B. Цитогенетический и изоферментный анализ межродовых соматических гибридов// Сб.научн.трудов по прикл.бот., генет. и селекции.-1992.-Т. 148.-С.З8−44.
  9. В.П. К хемотаксономическому исследованию луков// Сб. трудов аспир. и мол.науч.сотр.- 1969.- Т. 10.- № 14.- С.431−438.
  10. Ю.Гилязетдинов Ш. Я., Геращенко Г. А., Рысков А. Г. и др. Различное содержание минисателлитных последовательностей, гомологичных ДНК М13, в удвоенных гаплоидах кукурузы//Генетика.- 1990.- Т.26.-№ 4.- С.760−764.
  11. П.Глухов А. И., Трофимова М. Е., Гордеев С. А. и др. Амплификация последовательностей ДНК фага X методом полимеразной цепной реакции с использованием термостабильной ДНК-полимеразы// Молек.биол.- 1991.- Т.25.- № 6.-С.1602−1609.
  12. В. Видообразование у растений.- М.: Мир.- 1984.- 528 с.
  13. Д.Б. Использование полимеразной цепной реакции для идентификации генотипов томата// Известия АНРМ.- 1993.- № 4.- С.19−22.
  14. Д.Б., Клоке Э. Быстрая и экономичная технология RAPD анализа растительных геномов// Генетика.- 1997.- Т.ЗЗ.- С.476−483.
  15. И.И., Абрахина Ю. В. Межвидовая гибридизация лука// Отдаленная гибридизация растений и животных.- М.: Колос, 1970.- С.344−348.
  16. И.И., Юрьева H.A. Случай экспериментального получения многоярусного лука в результате межвидовой гибридизации// Селекция овощных культур/ Сб.науч.тр.- М.: ВНИИССОК- 1985.- Вып.20.- С. 117−119.
  17. И.И., Агафонов А. Ф., Сундукова М. В. Проявление некоторых признаков в первом поколении у гибридов, полученных от скрещивания лука шалота с репчатым луком// Тр. по селекции овощ. культур: Сб. ВНИИССОК- 1979.- Вып.9.- С.31−35.
  18. A.A. Экологическая генетика культурных растений (адаптация, рекомбиногенез, агробиоценоз).- Кишинев: Штиинца, 1980.- 588 с.
  19. П. Л. Геномная дактилоскопия: гипервариабельные локусы и генетическое маркирование//Молек.биология.- 1989.- Т.23.- Вып.2.~ С.341−347.
  20. A.A. Распространение и история систематики рода Allium L.// Тр. по прикл.ботан., генет. и селекц.- 1975.- Т.55. Вып.2.- С.18−28
  21. A.A. Лук// Культурная флора СССР.- Л.: Колос, 1978.- Т. 10.- 262 с.
  22. Л.М., Шманаева Т. Н., Соханова Л. М. и др. Идентификация сортообразцов овощного гороха методом электрофореза глобулинов семян// Семеноводство овощных культур/ Сб.науч.тр.- 1988.- Вып.27.- С.132−137.
  23. В.А. Особенности межвидовой гибридизации лука репчатого с дикорастущими видами: Автореф.дис. канд.с.-х.наук.- М., 1982.- 17 с.
  24. В.А., Кокорева В. А. Межвидовые гибриды лука// Известия ТСХА,-1984, — Вып.1.- С.125−133.
  25. В.А., Раскатов В. А., Черных О. И. Особенности микрорельефа поверхности семени у различных видов рода Allium L.// Известия ТСХА.- 1986.-Вып.5.- С.95−101.
  26. В.А., Тарасова Е. М. Сравнительный кариологический анализ лука репчатого (А. сера L.) и лука шалота (A. ascalonicum L.)// Изв.ТСХА.- 1985.- № 6.-С.176−178.
  27. В.Г. Принципы белковых маркеров в геномном анализе и сортовой идентификации пшеницы // Тр. По прикл.бот., генет. и селек. 1973.- Т.49.- Вып 3.-С.46−58
  28. В.Г. Белки пшеницы.- М: Колос.- 1980.- 350 с.
  29. В.Г. Белки растений как генетические маркеры.- М: Колос, — 1983.- 320с.
  30. В.Г. Проламины пшеницы и родственных ей злаков (обзор)// Прикл. биохим. и микробиол.- 1987.- Т.23.- Вып.4.- С.435−446.
  31. П.Ф., Одинцова Т. И., Дегтяренко JI.B. Электрофорез кукурбитина как метод сортового семенного контроля тыквенных// Докл.ВАСХНИЛ.- 1989.- № 1,-С.17−19.
  32. A.A. Работа цитологической лаборатории Грибовской станции (19 331 935 гг)// Селекция и семеноводство овощных растений. Грибовская селекционная станция 1920−1935/ Под ред. Г. Т. Задина, В. В. Ордынского.- М.: Сельхозгиз.- 1936.-С.289−297.
  33. A.A. Межвидовые скрещивания луков// Вестник с.-х.науки. Овощеводство и картофель.- 1941.- Вып.1- С.70−78.
  34. A.B., Туголуков В. П. Изменчивость морфологических признаков у межвидовых гибридов луков// Тр.Кубан.СХИ, — 1981.- № 197/225, — С.99−107.
  35. E.B. Генетика изоферментов растений.- Новосибирск: Наука.- 1986.145 с.
  36. Т., Фрич Э., Сэмбрук Дж. Методы генетической инженерии. Молекулярное клонирование.- М.: Мир, 1984.- 543 с.
  37. И.Я., Полумордвинова И. В., Козлова Н. М. Клональное размножение растений лука и формирование полиплоидных форм in vitroll С.-х.биол.- 1983.- № 6.-С.16−21.
  38. И .Я., Полумордвинова И. В., Московкин Л. И. и др. Полиплоидизация растений рода Allium методом культуры ткани: результаты и перспективы// С.-х.биол.- 1986.- № 4, — С.10−13.
  39. Мол екулярно-био логические аспекты прикладной ботаники, генетики и селекции// Под ред.В. Г. Конарева.- М.: Колос, 1993.- 447 с. 43 .Методические рекомендации по селекции столовой моркови/М.- 1991.- 28 с.
  40. Методические указания по анализу белков семян и изоферментов методом электрофореза для контроля сортовой чистоты и селекции капустных и тыквенных культур/ М: ВАСХНИЛ, 1990.- 48 с.
  41. Методические указания по селекции сортов и гетерозисных гибридов корнеплодных растений (морковь, свекла, редис, редька, репа, брюква, пастернак)/ М.- 1987.- 84 с.
  42. С.И., Войлоков A.B., Махлина A.M. Изоферментные спектры пероксидазы у сортов и инбредных линий редиса// Вестн. ЛГУ, — 1974.- № 15.- С.125−130.
  43. М.К. Культура неоплодотворенных завязей и семяпочек: возможности и перспективы (обзор)// С.-х.биология.- 1987.- № 1.- С.27−33.
  44. Т.Н., Мартыненко Н. М. Полиморфизм секалина и его использование в изучении генофонда культурной ржи // Тр. по прикл.бот., генет. и селек. 1987.- Т.114.-С.48−50.
  45. В.Ф., Балашова H.H., Лебедева А. Т. и др. Состояние отечественной селекции овощных культур на гетерозис// Гетерозис сельскохозяйственных растений: Мат-лы докл., сообщ. междунар. сипоз., 1−5.12.1997.- М., 1997.- С.75−82.
  46. А.И. Числа хромосом некоторых видов рода Allium L. (Alliaceae), распространенных на территории Армении и Ирана// Ботан.журн.- 1983.- Т.68.- № 5.-С.652−660.
  47. А.И. Цитотаксономические исследования кавказских луков подрода Allium// Флора, растительность и растительные ресурсы Армении/ Сб.науч.тр.-Ереван: Изд-во АН Армении, 1991.- Вып.13.- С.135−153.
  48. A.A. Генетически обусловленный полиморфизм гордеина и возможности его использования в селекции озимого ячменя: Автореф.дис. канд.биол.наук.- Немчиновка, Московск.обл.- 1982.- 16 с.
  49. A.A., Нецветаев В. П., Созинов A.A. Полиморфизм культурного ячменя (Hordeum vulgare) по гордеинам// Генетика.- 1985.- Т.21.-№ 4.- С.629−639.
  50. Н.Ю. Разработка лабораторной технологии получения андрогенных растений белокочанной капусты с использованием культуры пыльников: Автореф.дис. канд.биол.наук.- Москва.- 1992.- 17 с.
  51. Ю.М., Календарь Р. Н., Чеботарь C.B. Генетический полиморфизм злаковых растений при помощи ПЦР с произвольными праймерами// Цитология и генетика.- 1994.- Т.28.- № 6.- С.54−61.
  52. В.А. Биотехнология растений. Клеточная селекция.- Киев: Наукова Думка.- 1990.- 280 с.
  53. У.П. Сомаклональная изменчивость: миф о клональном единообразии.- В кн.: Мобильность генома растений/ Пер. с англ. С. А. Гостимского и Г. П. Мирошниченко/ Под ред. Ю. П. Винецкого.- М. ВО: Агропромиздат.- 1990.-С.228−260.
  54. A.A. Полиморфизм белков и его значение в генетике и селекции.- М: Наука.-1985.-272 с.
  55. Г. Е. Полиморфизм длин рестриктных фрагментов ДНК. Методология и свойства (обзор)// С.-х. биология.- 1989.- № 1.- 60−67.
  56. Г. Е., Слюсаренко А. Г. Выделение дезоксирибонуклеиновых кислот из тканей высших растений// Строение ДНК и положение организмов в системе/ Под ред. А. Н. Белозерского и A.C. Антонова.- М., 1972.- С.19−34.
  57. .О. Разработка лабораторной технологии получения андрогенных растений моркови in vitro: Автореф.дис.канд с.-х.наук.-М.-1991.- 21 с.
  58. Е.М. Морфологические особенности спутничных хромосом у видов рода, Allium L.// Бюл.ВИР.- 1972.-Вып.22.- С.72−81.
  59. Е.М. Исследование кариотипов девяти видов рода Allium L.// Бюл.ВИР.- 1973.- Вып.29.- С.74−87.
  60. Е.М. Цитологические аспекты изучения луковых растений в селекции// Прогрессивные приемы в селекции плодовоовощных культур: Сб.ст.- М., 1984.- С.83−88.
  61. Е.М. Кариосистематика некоторых видов лука в связи с филогенезом и селекционным использованием// Прогрессивные приемы в овощеводстве, селекции и семеноводстве овощных культур.- М.: 1986.- С. 120−127.
  62. Е.М., Кокорева В. А. Биолого-морфологическая и кариологическая характеристика межвидового гибрида Fi А. сера L. х A. pskemense B.Fedtsch.// Известия ТСХА.- 1982, — Вып.З.- С.102−109.
  63. Е.М., Кристен П. Кариологические результаты межвидового скрещивания А. сера L. х A. oschanini O.Fedtsch.// Прогрессивные приемы в селекции плодоовощных культур.- М.: 1984.- С.88−93.
  64. A.M. Идентификация сортов гороха по электрофоретическим спектрам глобулинов// Тр. по прикл.бот., генет. и селек.- 1987.- Т.114.- С.100−106.
  65. Тахтаджан A. JL Семейство луковые (Alliaceae). В кн.: Жизнь растений. М., 1982, Т. 6, 94−102.
  66. Н.И. Создание и оценка линий моркови для гетерозисной селекции// Тр. по селекц.и семенновод. овощных культур.- М.- 1982.- Вып.15.- С.40−46.
  67. Н.И. Особенности гетерозисной селекции овощных культур// Селекция овощных культур/ Сб.науч.тр.- 1984.- Вып.18.- С.38−43.
  68. Н.И. Методические особенности мужски стерильных и мужски фертильных линий моркови для гетерозисной селекции// Бюл.ВИР.- JL- 1986.-Вып. 161.-С. 19−23.
  69. Н.И. Методы создания и идентификация генетических источников ценных признаков овощных растений (морковь, лук, салат): Дис. в виде науч.докл.докт.с.-х.наук.- С.-Петерб., 1997.- 61 с.
  70. Н.И., Василевский В. А. Исследование генетики признаков моркови// Науч. тр. по селек. сем-ву.- 1995.- Т.1.- С.82−91.
  71. Н.И., Титова И. В. Особенности получения и использования рекомбинантных форм моркови и лука// Генетические основы селекции сельскохозяйственных растений.- М.- 1995.- С. 102−106.
  72. И.В. Преодоление постгамной несовместимости в скрещиваниях лука репчатого с дикими видами методом культуры зародышей// Культура клеток растений и биотехнология: Сб. ст. М.: Наука, 1986.- С.195−199.
  73. И.В. Межвидовая гибридизация лука с использованием культуры in vitro: Автореф. дис. канд. с.-х. наук.- М.- 1989.- 23 с.
  74. И.В., Тимин Н. И., Юрьева H.A. и др. Методические указания по использованию культуры in vitro при межвидовой гибридизации лука. М., 1987−14 с.
  75. И.В., Тимин Н. И., Юрьева H.A. Межвидовая гибридизация лука// Науч. тр. по селек. сем-ву.- 1995.- Т.1.- С.91−101.
  76. В.Д., Шелепина Г. А., Казакова A.A. и др. Кариотипический полиморфизм лука и чеснока// Вестн. с.-х. науки.- 1979.- № 5.- С.49−54.
  77. Г. Б., Тимин Н. И., Буракова И. А. Использование методов культуры тканей растений in vitro в селекции моркови// Научно-технич.бюл.ВИР.- JL- 1989.-Вып.192.- С.57−60.
  78. Г. Б. Получение растений в культуре пыльников моркови in vitro// Plant biotechnology and molecular biology/ Тез. докл. II Российск.симпоз. «Новые методы биотехнологии растений» Пущино, 18−20 мая 1993 г.- Пущино. 1993.- С. 172.
  79. C.B., Жидкова Н. И., Квасников Б. В. Оценка исходных родительских форм моркови по потомству гибридов Fi// Агротехника и селекция овощных культур.-М.- 1992.- С.145−154.
  80. Н.В. Луковые Сибири (систематика, кариология, хорология).-Новосибирск: Наука. Сиб. отд-ние, 1988.- 185 с.
  81. Г. Г. Анатомическое и гистохимическое исследование вегетативных органов некоторых видов лука Allium L.: Автореф.дис. .канд.биол.наук.- М., 1973.20 с.
  82. Э.Е. Молекулярные маркеры в растениеводстве// С.-х.биол.- 1997.- № 5.-С.3−21.
  83. Ц.Д., Рыжик М. В., Ананьев Е. В. и др. Деметилирование рДНК в каллусной ткани ячменя, культивируемой in vitro// Докл. АН СССР.- 1986.- Т.290.-№ 5.- С.1249−1252.
  84. H.H. О таксономическом ранге членов полиплоидных рядов у высших растений// Тез.совещ.по объему вида и внутривидовой систематике.- JL: Наука.-1967.- С.59−60.
  85. В.А. Эволюция жизненных форм в подроде Rhizirideum рода Allium (Alliaceae)// Бот.журн.- 1992.- Т.77.-№ 8.- С.107−116.
  86. И.В. Цитотаксономическое исследование видов родов Allium L. и Nectaroscordum Lindl, флоры Болгарии: Автореф. дис.канд.биол.наук.- Л., 1972, — 23с.
  87. З.Б. Развитие биотехнологии в СССР клеточная инженерия и культура тканей растений.- М., 1988.- 11 с.
  88. Г. С., Полумордвинова И. В. Система цитологического контроля при отдаленной гибридизации луков// Науч.тр.по селек. сем-ву.- 1995.- Т.1.- С.104−110.
  89. Г. С., Тимин Н. И. Цитоэмбриологические особенности межвидовых гибридов лука// Селекция овощных культур: Сб.науч.тр.ВНИИССОК.- 1994.-Вып.34.- С. 17−23.
  90. H.A. Культура пыльников, неопыленных завязей и семяпочек лука репчатого// Научные тр. по селекц., сем-ву/ Под ред. В. Ф. Пивоварова.- М.: РАСХН/ ВНИИССОК- 1995.- Т.1.- С. 164- 170.
  91. P.A., Кокорева В. А. О межвидовых гибридах Fi лука репчатого, полученного от скрещивания с луком алтайским и луком Вавилова// Прогрессивная технология выращивания овощных культур/ М., 1981.- С.41−48.
  92. H.A., Кокорева В. А. Многообразие луков и их использование.- М.: Изд-во МСХА, 1992.- 160 с.
  93. H.A., Титова И. В. Результаты скрещивания репчатого лука с луком-слизуном и душистым луком// Селекция овощных культур: Сб.науч.тр.ВНИИССОК,-1984.- Вып. 18.- С.67−70.
  94. Akkaya M.S., Bhagwat A.A., Cregan P.B. Length polymorphisms of simple sequence repeat DNA in soybean// Genetics.- 1992.- V.132.- P.1131−1139.
  95. Anil D., Noel E.T.H. Deleted forms of plastid DNA in albino plants from cereal anther culture// Curr.Genet.- 1985.- V.9.- N8.- P.671−678.
  96. Arus P. Genetic purity of commercial seed lots// Isozymes in plant genetics and breeding. Part A/ S.D.Tanksley, T.J.Orton (eds.).- Amsterdam: Elsevier.- 1983.- P.415−423.
  97. Arus P., Tanksley S.D., Orton T.J. et al. Electrophoretic variation as a tool for determining seed purity and for breeding hybrid varities of Brassica oleraceaell Euphytica.-1982.- V.31.-417−428.
  98. Badr A., ElkingtonT. Numerical taxonomy of species in Allium subgenus Molium// New Phytol.- 1978.- V.81.- P.401−417.
  99. Bark O.H., Havey M.J. Similarities and relationships among populations of the bulb onion as estimated by nuclear RFLPs// Theor.Appl.Genet.- 1995.- V.90.- P.407−414.
  100. Bennett M., Smith J. Nuclear DNA amounts in angiosperms// Philos.Trans.R.Soc.-London.- 1976.-Ser.B.- V.274.- P.227−274.
  101. Bernatzky R., Tanksley S.D. Toward a saturated linkage map in tomato based on isozymes and random cDNA sequences// Genetics.- 1986.- V. l 12.- P.887−898.
  102. Bohanec B., Jakse M., Ihan A. et al. Studies of gynogenesis in onion {Allium cepa L.) induction procedures and genetic analysis of regenerants// Plant Science.- 1995.- V.104.-N2.-P.215−224.
  103. Botstein D., White R.L., Skolnick M. et al. Construction of a genetic linkage map in man using restriction fragment length polymorphisms// Amer.J.Hum.Genet.- 1980.- V.32.-P.314−331.
  104. Boury S., Lutz I., Gavalda M-C. et al. Empreintes genetiques du chou-fleur per RAPD et verification de la purete hybride Fj d’un lot de semences// Agronomie.- 1992.-V.12.- P.669−681.
  105. Bowditch B.M., Albright D.G., Williams J. G.K. et al. Use of randomly amplified polymorphic DNA markers in comparative genome studies// Methods in Enzymology.-Academic Press.- 1993.- V. 224.- P.294−309.
  106. Bradeen J.M., Havey M.J. Restriction fragment length polymorphisms reveal considerable nuclear divergence within a well-supported maternal clade in Allium section Cepa (Alliaceae)// Am.J. Bot.- 1995.- V.82.- P.1455−1462.
  107. Brewbaker J.L. Enzyme fingerprints for the plant detective// Hawaii Bot.Soc.Newsl.-1966.-P.1−3.
  108. Brown P.T.H., Lange F.D., Kranz E. et al. Analysis of single protoplast and regenerated plants by PCR and RAPD technology// Mol.Gen.Genet.- 1993.- V.237.- P.311−317.
  109. Caetano-Anolles G., Bassam B.J., Gresshoff P.M. DNA amplification fingerprinting using very short arbitrary oligonucleotide primers // Bio/Technol.-1991.- V.9.- P.553−557.
  110. Caetano-Annoles G., Bassam B.J., Gresshoff P.M. DNA fingerprinting: MAAPing out a RAPD redefinition// Bio/Technol.- 1992.- V.10.- P.937.
  111. Caetano-Annoles G., Bassam B.J., Gresshoff P.M. Multiple arbitrary amplicon profiling using short oligonucleotide primers// Plant Genome Analysis/ P.M. Gresshoff (ed.).- CRC Press: Boca Raton, 1994.- P.29−46.
  112. Cai Q., Guy C.L., Moore G.A. Detection of cytosine methylation and mapping of gene influencing cytosine methylation in the genome of Citrus// Genome.- 1996.- V.39.-P.235−242.
  113. Campion B., Alloni C. Induction of haploid plants in onion (Allium cepa L.) by in vitro culture of unpollinated ovules// Plant Cell Tissue Org.Cult.- 1990, — V.20.- P. 1−6.
  114. Campion B., Bohanec B., Javornik B. Gynogenic lines of onion {Allium cepa L.): evidence of their homozygosity// Theor.Appl.Genet.- 1995.- V.91.- P.598−602.
  115. Charlesworth B., Sniegowski P., Stephan W. The evolutionary dynamics of repetitive DNA in eukaryotes//Nature.- 1994.- V.371.- P. 215−220.
  116. Chen X., Xiangyun Z., White B.N. et al. Analysis of genetic relationship among lilacs 0Syringa) by RAPD// Acta Hortic.Sinica.- 1995.- V.22.- P. 171−175.
  117. Chungwongse J., Martin G.B., Tanksley S.D. Pre-germination genotypic screening using PCR amplification of half-seeds// Theor.Appl.Genet.- 1993, — V.86.- P.694−698.
  118. Coulhart M., Denford K.E. Isozyme studies in Brassica. I. Electrophoretic techniquies for leaf enzymes and comparison of B. napus, B. campestris and B. oleraceae using phosphoglucomutase// Canad.J.Plant Sei.- 1982.- V.62.- P.621−630.
  119. Courcel A. de, Veder F., Boussac J. DNA polymorphism in Allium cepa cytoplasms and its implication concerning the origin of onion// Theor.Appl.Genet.- 1989.- V.U.- P.793−798.
  120. Cryder C., Corgan J., Urquhart N. et al. Isozyme analysis of progeny derived from (Allium flstulosum x Allium cepa) it Allium cepall Theor.Appl.Genet.- 1991.- V.82.- P.337−345.
  121. Curn V. Acid phosphatase and leucine aminopeptidase isozymes as biochemical markers of homogeneity in oil seed rape androgenetic lines// Plant Growth Regul.- 1995.-V.16.-N1.- P.59−65.
  122. Day A., Ellis T.H.N. Chloroplast DNA deletions associated with wheat plants regenerated from pollen: possible basis for maternal inheritance of chloroplasts// Cell.-1984, — V.39.- P.359−368.
  123. Dhillon S.S., Wernsman E.A., Miksche J.P. Evaluation of nuclear DNA content and heterochromatin changes in anther-derived dihaploids of tobacco {Nicotiana tabacum) cv Coker 139// Can.J.Genet.Cytol.- 1983.- V.25.- P.169−173.
  124. De Vries J.N., Jongerius R., Sandbrink H. et al. RAPD markers assist in resistance breeding// Prophyta.- 1992.- V.46.- P.50−51.
  125. Doyle J.J., Doyle J.L. A rapid DNA isolation procedure for small quatities of fresh leaf tissue// Phytochem.Bull.- 1987.- V.19.- P. l 1.
  126. Dubouzet J.G., Etoh T., Arisumi K. et al. A diagnostic test to confirm interspecific Allium hybrids using random amplified polymorphic DNA from crude leaf DNA extracts// J.Jpn.Soc.Hortic. Sei.- 1996.- V.65.-P.321−326.
  127. Edwards K., Johnstone C., Thompson C. A simple and rapid method for the preparation of plant genomic DNA for PCR analysis// Nucleic Acids Res.- 1991.- V.19.-№ 6.-P. 1349.
  128. Esquinas J.T. Alloenzyme variation and relationships among Spanish land-races of Cucumis melo LJt Kulturpflanze.- 1981, — V.29.- P.337−352.
  129. Evans D.A., Sharp W.R., Medina-Filho H.P. Somaclonal and gametoclonal variation// Amer.J.Bot.- 1984.- V.71.- P.759−774.
  130. Fabbri A., Hormaza J.I., Polito V.S. Random amplified polymorphic DNA analysis of olive (Olea europeae L.) cultivars// J.Amer.Soc.Hortic.Sci.- 1995.- V.120.- N3.- P.538−542.
  131. Foolad M.R., Jones R.A., Rodriguez R.L. RAPD markers for constructing intraspecific tomato genetic maps// Plant Cell Rep.- 1993.- V.12.- P.293−297.
  132. Ford-Lloyd B.V., Munthali M., Newbury H.J. The use of RAPD for the identification of sugar beet varieties// J. of Sugar Beet Res.- 1993.- V.30.- P.291−298.
  133. Fritsh R.M. New results of taxonomic and evolutionary research on Allium L.// Schriften zu Genet.Ressour.- 1996.- B.4.- P.19−46.
  134. Garcia G.M., Stalker H.T., Shroeder E. et al. Identification of RAPD, SCAR, and RFLP markers tightly linked to nematode resistance genes introgressed from Arachis cardenasii into Arachis hypogaeall Genome.- 1996.- V.39.- P.836−845.
  135. Gelfand D.H. Taq DNA polymerase// PCR technology. Principles and Applications for DNA amplification/ H.A.Erlich (ed.) Stockton Press, 1989.- P. 17−22.
  136. Gidoni D., Rom M., Kunik T. et al. Strawberry-cultivar identification using randomly amplified polymorphic DNA (RAPD) markers// Plant Breed.- 1994.- V.113.-P.339−342.
  137. Grandillo S., Tanksley S.D. QTL analysis of horticultural traits differentiating the cultivated tomato from the closely related species Lycopersicon pimpinellifolium// Theor.Appl.Genet.- 1996.- V.92.- N8, — P.935−951.
  138. Graves J.A.M. Genome instability in interspecific cell hybrids. I. Unstable expression of genes in divergent cell hybrids// J.Genet.- 1988.- V.67.- P.9−22.
  139. Grzebelus D., Szklarczyk M., Michalik B. The use of RAPD markers for genotype identification of carrot lines and Fi hybrids// J.Appl.Genet.-1997.- V.38A.- P.33−41.
  140. Gu K.W., Weeden N.F., Yu J. et al. Large-scale, cost-effective screening of PCR products in marker-assisted selection applications// Theor.Appl.Genet.- 1995.- V.91.-P.465−470.
  141. Guha S., Maheshvary S.C. In vitro producing of embryoids from anter culture of Datura// Nature.- 1964.- V.204.- P.497.
  142. Hadacova V., Svachulova J., Klozova et al. Use of isozymes revealed by gel isoelectric focusing as an aid in chemotaxonomical study of the genus Allium// Biol.Plantar.- 1983.- V.25.-P.36−42.
  143. Hallden C., Nilsson N.-O., Rading I.M. et al. Evaluation of RFLP and RAPD markers in a comparison of Brassica napus breeding lines// Theor.Appl.Genet.- 1994.-V.88.- P.123−128.
  144. Hamada H., Petrino M.G., Kakunago T. A novel repeated element with Z-DNA-forming potential is widely found in evolutionary diverse eukaryotic genomes// Proc.Natl.Acad.Sci.USA.-1982.- V.79.- P.6465−6469.
  145. Hashizume T., Sato T., Hirav M. Determination of genetic purity of hybrid seed in watermelon (Citrullus lanatus) and tomato (Licopersicon esculentum) using random amplified polymorphic DNA (RAPD)// Japan J.Breed.- 1993.- V.43.- P.367−375.
  146. Havey M.J. Phylogenetic relationships among cultivated Allium species from restriction enzyme analysis of the chloroplast genome// Theor.Appl.Genet.- 1991.- V.81.-752−757.
  147. Havey M.J. A putative donor of S-cytoplasm and its distribution among open-pollinated populations of onion// Theor.Appl.Genet.- 1993.- V.86.- P.128−134.
  148. Havey M.J. Identification of cytoplasms using the polymerase chain reaction to aid in the extraction of maintainer lines from open-pollinated populations of onion// Theor.Appl.Genet.- 1995.- V.90.- N2.- P.263−268.
  149. Hoseman D., Bossoutrot D. Induction of haploid plants from in vitro culture of unpollinated beet (Beta vulgaris L.)// Z.Pflanzenzucht.- 1983.- V.91.- N1.- P.74−77.
  150. Hu J., Quiros C.F. Identification of broccoli and cauliflower cultivars with RAPD markers// Plant Cell Rep.- 1991.- V.10.- P.505−511.
  151. Jeffreys A.J., Wilson V., Thein S.L. Hypervariable «minisatellite» regions in human DNAII Nature.-1985a.-V.314.- N6006, — P.67−73.
  152. Jeffreys A.J., Wilson V., Thein S.L. Individual-specific «fingerprints» of human DNA//Nature.- 19 856.- V.316.- N6023.- P.76−79.
  153. Karp A., Bright S.W.J. On the cauces and origins of somaclonal variation// Oxford Surv. of Plant Molec. Cell Biol.- 1985, — V.2.- P.199−234.
  154. Keller J. Culture of unpollinated ovules, ovaries and flower buds in some species of genus Allium and haploid induction via gynogenesis in onion (Allium cepa L.)// Euphytica.-1990.- V.47.- P.241−247.
  155. Kennard W.S., Poetter K., Dijkhuizen et al. Linkages amoung RFLP, RAPD, isozyme, disease resistance, and morphological markers in narrow and wide crosses ofcucumber// Theor.Appl.Genet.- 1994.- V.89.- P.42−48.
  156. Khadari B., Lashermes P., Kjellberg F. RAPD fingerprints for identification and genetic characterization og fig (Ficus carica L.) genotypes// J.Genet.Breedg.- 1995.- V.49.-P.77−85.
  157. Kim H.J., Park H.G. Application of electrophoresis in testing the genetic purity of Fi hybrid seeds of radish (Raphanus sativus)// J.Korean.Soc.Hort.Sci.- 1984.- V.25.- 256−262.
  158. Klein-Lankhorst R.M., Vermunt A., Weide R. et al. Isolation of molecular markers for tomato (.L. esculentum) using random amplified polymorphic DNA (RAPD)// Theor.Appl.Genet.- 1991.- V.83.- P.108−114.
  159. Knerr L.D., Staub J.E. Inheritance and linkage relationships of isozymes loci in cucumber (Cucumis sativus L.)ll Theor.Appl.Genet.- 1992.- V.84.- P.217−224.
  160. Koller B., Lehmann A., Mcdermott J.M. et al. Identification of apple cultivars using RAPD markers// Theor.Appl.Genet.- 1993.- V.85.- P.901−904.
  161. Laemmli U.K. Cleavage of structural proteins during the assembly of head of bacteriophage T4// Nature.- 1970.- V221.- P.680−685.
  162. Landry B.S., Kesseli R., Farrara B. et al. A genetic map of lettuce {Latuca sativa L.) with restriction fragment length polymorphisms, isozymes, disase resistance and morphological markers// Genetics.- 1987.- V. l 16.- P.331−337.
  163. Lanham P.G., Brennan R.M., Hackett C. et al. RAPD fingerprinting of blackcurrant CRibes nigrum L.) cultivars// Theor.Appl.Genet.- 1995.- V.90.- P.166−172.
  164. Lavi U., Cregan P., Schaap T. et al. Application of DNA markers for identification and breeding of perennial fruit crops// Plant Breed.Rev.- 1994.- V. 112, — P. 195−226.
  165. Lefebvre V. Molecular markers and polygenic resistances: interaction pepper (Capsicum annuum L.) Phytophthora capsici// Leon.Ph.D.Thesis.- Univer. of Orsay, France.- 1993.
  166. Lefebvre V., Palloix A., Rives M. Nuclear RFLP between pepper cultivars (Capsicum annuum L.)ll Euphytica.- 1993.- V.71.- P. 189−199.
  167. Lefebvre V., Palloix A., Caranta C. et al. Construction of an intraspecific integrated linkage map of pepper using molecular markers and double-haploid progenies// Genome.-1995.= V.38.-N1.- P. l 12−121.
  168. Le Thierry D’Ennequin M., Panaud 0., Thierry R. et al. Assessment of genetic relationships among sexual and asexual forms of Allium cepa using morphological traits and RAPD markers//Heredity.- 1997.- V.78.- P.403−409.
  169. Levan A. Cytological studies in Allium. IV. The chromosome morphology of some diploid species of Allium// Hereditas.-1935.-Bd.20.- N3.- S.289−330.
  170. Linne von Berg G., Samoylov A., Klaas M. et al. Chloroplast DNA restriction analysis and the infrageneric grouping of Allium (Alliaceae)// Plant Syst.Evol.- 1996.-V.200.- P.253−261.
  171. Lioi L. Geographical variation of phaseolin patterns in an old world collection of Phaseolus vulgarisII Seed Sci.Technol.- 1989.- V.17- N2.- P.317−324.
  172. Liu Z., Furnier G.R. Comparison of allozyme, RFLP and RAPD markers for revealing genetic variation within and between Trembling aspen and Bigtooth aspen// Theor.Appl.Genet.- 1993.- V.87.- P.97−105.
  173. Maap H.I. Electrophoretic study of storage proteins in the genus Allium L.// The genus Allium taxonomic problems and genetic resources/ Proceed.internat.sympos., 1113.06.1991, Gatersleben. Germany.- Gatersleben.- 1992.-P.183−189.
  174. Maa (3 H.I. Studies on triploid viviparous onions and their origin// Genetic.Resour.Crop Evol.-1997.- V.44.- N2.- P. 95−99.
  175. Maa (3 H.I., Klaas M. Infraspecific differentiation of garlic (Allium sativum L.)by isozyme and RAPD markers// Theor.Appl.Genet.- 1995.- V.89.- P.89−97.
  176. Macpherson J.M., Eckstein P.E., Scoles G.J. et al. Variability of the random amplified polymorphic DNA assay among thermal cyclers, and effects of primer and DNA concentration// Mol.Cell.Probes.- 1993.- V.7.- P.293−299.
  177. Mandolino G., Faeti V., Ranalli P. Caratterizzazione genotipica in Beta spp. mediante marcatori molecolari// Semen.Elet.- 1996.- V.42.- P.73−75.
  178. Marsan P.A., Maddaloni M., Monfredini G. et al. Tecnologie avanzate per L’identificazione di linee pure, inbridi e varieta// Semen.Elet.- 1993.- V.39.- P.51−54.
  179. Martin G.B., Williams J.G.K., Tanksley S.D. Rapid identification of markers linked to Pseudomonas resistance gene in tomato by using random primers and near isogenic lines// Proc.Natl.Acad Sci. USA.-1991.- V.88.- P.2336−2340.
  180. McClintock B. The significance of responses of the genome to challenge// Scince.-1984.- V.226.- P.792−801.
  181. McCollum G. Hybrid origin of top onion, Allium cepa var. viviparumll Z.Pflanzenzucht.- 1974.- V.71.- P.222−232.
  182. McDonald M.B., Elliot L.J., Sweeney P.A. DNA extraction from dry seeds for RAPD analyses in varietal identification studies// Seed Sci.Technol.- 1994.- V.22.- P.171−176.
  183. Meglik V.V., Horejsi T.F., McCreight J.D. et al. Genetic diversity and inheritance and linkage of isozyme loci in melon (Cucumis melo L.)// HortScience.- 1994.-V.29.- P.449.
  184. Melotto M., Afanador L., Kelly J.D. Development of a SCAR marker linked to the I gene in common bean// Genome.- 1996.- V.39.- P.1216−1219.
  185. Meunier J.R., Grimont P. Factors affecting reproducibility of random amplified polymorphic DNA fingerprinting// Res. in Microbiol.- 1993, — V.144.- P.373−379.
  186. McDonald M.B., Elliot L.J., Sweeney P.A. DNA extraction from dry seeds for RAPD analyses in varietal identification studies// Seed Sci., Technol.- 1994.- V.22.- P. 171 176.
  187. Morgante M., Olevieri A.M. PCR amplified microsatellites as markers in plant genetics// Plant J.- 1993.- V.3.- P.175−182.
  188. Morrison R.A., Evans D.A. Haploid plants from tissue culture: new plant varieties in a shortened time frame// Bio/Technol.- 1988.- V.6.- N7, — P.684−670.
  189. Morrison R.A., Koning R.E., Evans D.A. Anther culture of an interspecific hybrid of Capsicum// J. Plant Physiol.- 1986, — V.126.- P. l-9.
  190. Mullis K.B., Faloona F.A., Scharf S.J. et al. Specific enzymatic amplification of DNA in vitro: the Polymerase Chain Reaction// Cold Spring Harbor Symp.Quant.Biol.-1986.- V.51.- P.263−273.
  191. Mullis K.B. The polymerase chain reaction in an anemic mode: how to avoid cold oligodioxyribonuclear fusions// PCR Meth.Applic.- 1991.- V. 1.- P. 1 -4.
  192. Muren R. Haploid plant induction from unpollinated ovaries in onion// HortScience.-1989, — V.24.- P.833−834.
  193. Murigneux A., Baud S., Beckert M. Molecular and morphological evaluation of doubled-haploid lines in maize. 2. Comparison with single-seed-descent lines// Theor.Appl.Genet.- 1993, — V.87.- P.278−287.
  194. Murray M.G., Thompson W.F. Rapid isolation of high molecular weight DNA// NucLAcids Res.- 1980.- V.8.- P.4321−4325.
  195. Naqvi N.I., Chattoo B.B. Development of a sequence characterized amplified region (SCAR) based indirect selection method for a dominant blast-resistance gene in rice// Genome.- 1996.- V.39.- P.26−30.
  196. Nei M., Li W.H. Mathematical model for studying genetic variation in terms of restrictions endonucleases// Proc.Natl.Acad.Sci.USA.- 1979.- V.76.- P.5269−5273.
  197. Neuhausen S.L. Evaluation of restriction fragment length polymorphisms in Cucumis meloli Theor.Appl.Genet.- 1992.- V.83.- P.379−384.
  198. Nielsen G. The use of isozymes as probes to identify and label plant varieties and cultivars// Isozymes: Current topics in biological and medical research/ M.C. Rattazzi, J.G. Scandalios, G.S. Whitt (eds.).- 1985.- V.12.- P. l-132.
  199. Palmer J. Isolation and structural analysis of chloroplast DNA// Methods Enzymol.1986.- V. l 18.- P.167−186.
  200. Palmer J., Stein D. Conservation of chloroplast genome structure among vascular plants// Curr.Genet.- 1986.- V.10.- P.823−833.
  201. Palmer J., Jansen R., Michaels H. et al. Chloroplast DNA variation and plant phylogeny//Arm.Mo.Bot.Gard.- 1988.- V.75.- P.1180−1206.
  202. Paran I., Michelmore R.W. Development of reliable PCR-based markers linked to downy mildew resistance genes in lettuce// Theor.Appl.Genet.- 1993.- V.85.- P.985−993.
  203. Parent J.G., Fortin M.G., Page D. Identification of raspberry cultivars by random amplified polymorphic DNA (RAPD) analysis// Canad.J.Plant Sci.- 1993.- V.73.- N4,-P.l115−1122.
  204. Patritey T.V., Ledovskiy S.Ya. Embryogenesis of onion// Plant Biotechnology and Genetic Engineering/ Abstr. of Internation.Symp.3.-6.10.1994, Kiev, Ukraine.- Kiev.- 1994.-P.105.
  205. Pecchioni N., Peveri C., Monetti A. et al. Uso di tecniche molecolary (RFLP e PCR) per il riconoscimento varietale di specie di interesse agrario// Semen.Elet.- 1993.- V.39.-P.55−60.
  206. Peffley E.B. Molecular markers in Allium: a review// Proc.Nat.Onion Res.Confer.-Ithaca, N.Y., 1993, — P.115−120.
  207. Peffley E.B., Corgan J.N., Horak K.E. et al. Electrophoretic analysis of Allium alien addition lines// Theor. Appl. Genet.- 1985.- V.71.- P.176−184.
  208. Peffley E.B., Currah L. The chromosomal locations of enzyme coding genes Adh-1 and Pgm-1 in A. fistulosum L.// Theor.Appl.Genet.- 1988.- V.75.- P.945−949.
  209. Peffley E.B., Orozco-Castillo C. Polymorphism of isozymes within plant introductions of Allium cepa L. and A. fistulosum ~L.II HortScience.- 1987.- V.22.- P.956−957.
  210. Perl-Treves R., Zamir D., Navot N. et al. Phylogeny of Cucumis based on isozyme variability and its comparison with plastome phylogeny// Theor.Appl.Genet.-1985.- V.71.-P.430−436.
  211. Pooler M.R., Simon P.W. Characterization and classification of isozyme and morphological variation in a diverse collection of garlic clones// Euphytica.-1993.- V.68.-P.121−130.
  212. Powell W.5 Morgante M., Andre C. et al. The comparison of RFLP, RAPD, AFLP and SSR (microsatellite) markers for germplasm analysis// Mol.Breed.- 1996.- V.2.- P.225−238.
  213. Prince J.P., Pochard E., Tanksley S.D. Construction of a molecular linkage map of pepper and a comparison of synteny with tomato// Genome.- 1993.- V.36.- P.404−417.
  214. Prince J.P., Lackney V.K., Angeles C. et al. A survey of DNA polymorphism within the genus Capsicum and the fingerprinting of pepper cultivars// Genome.- 1995.- V.38.-N2.-P.224−231.
  215. Rafalski A., Tingey S., Williams J.G.K. Random amplified polymorphic DNA (RAPD) markers// Plant Mol.Biol.Man.- 1993.- C8.- P. 1−9.
  216. Ragot M., Hoisington D.A. Molecular markers for plant breeding comparisons of RFLP and RAPD genotyping costs// Theor.Appl.Genet.- 1993.- V.86.- P.975−984.
  217. Ramser J., Lopez-Peralta C., Wetzel R. et al. Genomic variation and relationships in aerial yam (Dioscorea bulbifera L.) detected by random amplified polymorphic DNA// Genome.- 1996.- V.39.- P. 17−25.
  218. Ramser J., Weising K., Chikaleke V. et al. Increased informativeness of RAPD analysis by detection of microsatellite motifs// BioTechniq.- 1997.- V.23.- P.285−290.
  219. Richardson T., Cato S., Ramser J. et al. Hybridization of microsatellites to RAPD: a new source of polymorphic markers// Nucl. Acids Res.- 1995.- V.23.- P.3798−3799.
  220. Rogers S.O. Philogenetic and taxonomic information from herbarium and mummified DNA// Conservation of plant genes II: Utilization of ancient and modern DNA/ R.P. Adams, J.S. Miller, E.M. Golenberg, J.E. Adams (eds.) Missouri Bot.Gard., 1994,-P .47−67.
  221. Rogstad S.H., Patton II J.C., Schaal B. M13 repeat probe detects DNA minisatellite-like sequences in gymnosperms and angiosperms// Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.- 1988.-V.85.- P.9176−9178.
  222. Rom M., Bar M., Rom A. et al. Purity control of Frhybrid tomato cultivars by RAPD markers// Plant Breed.- 1995.- V. l 14.- N2, — P.188−190.
  223. Rouamba A., Ricroch A., Sarr A. Collecting onions germplasm in west Africa// FAO/IBPRG Plant Genetic Resources Newsl.- 1993.- V.94/95.- P.15−17.
  224. Roxas V.P., Peffley E.B. Short-day onion varietal identification using molecular (RAPD) markers// Allium Newsletter.- 1993.- V.2.- P. 15−17.
  225. Rychlik W., Spencer W.Y., Rhoads R.E. Optimization of the annealing temperature for DNA amplification in vitro// Nucl. Acids Res.- 1990.- V.18.- P.6400−6414.
  226. Saghai-Maroof M.A., Soliman K.M., Jorgensen R.A. et al. Ribosomal DNA spacer-length polymorphisms in barley: Mendelian inheritance, chromosomal location, and population dynamics//Proc.Natl.Acad.Sci.USA.- 1984, — V.81.- P.8014−8018.
  227. Saharan B.S., Samimy C., Malik A.S. Identification of varieties of radish (Raphanus sativus L) by isozyme phenotypes// Plant Variet. and Seeds.- 1991.- V.4.- N2.- P.87−88.
  228. Saiki R.K. Amplification of genomic DNA// PCR Protocols: A Guide to Methods and Applications.- N.Y.: Acad.Press.- 1990.- P. 13−20.
  229. Saiki R.K., Gelfand D.H. Introduction AmpliTaq DNA polymerase// Amplifications.- 1989.- V.I.- P.4−6.
  230. Schierwater B., Ender A. Different thermostable DNA polymerases may amplify different RAPD products// Nucl. Acids Res.- 1993.- V.21 .-N19.- P.4647−4648.
  231. Sharon D., Adato A., Mhameed S. et al. DNA fingerprints in plant using simple-sequence repeat and minisatellite probes// HortScience.- 1995.- V.30.- N1.- 109−112.
  232. Shatters R.G., Schweder M.E., West S.H. et al. Environmentally induced polymorphisms detected by RAPD analysis of soybean seed DNA// Seed Sci.Res.- 1995.-V.5.- P.109−116.
  233. Schlotterer C., Tautz D. Slippage synthesis of simple sequence DNA// Nucl. Acids Res.- 1992.- V.20.- P.211−215.
  234. Shigyo M. Miyazaki S., Isshiki S. et al. Assignment of randomly amplified polymorphic DNA markers to all chromosomes of shallot (A. cepa L. Aggregatum group)// Gen.Genet.Syst.- 1997.- V.72.- N4.- P.249−252.
  235. Shigyo M., Tashiro Y., Miyazaki S. Chromosomal locations of glutamate oxaloacatate transaminase gene loci in Japanese bunching onion (Allium fistulosum L.) and shallot (A. cepa L. Aggregatum group)// Jpn.J.Genet.- 1994.- V. 69.- P.417−424.
  236. Shigyo M., Tashiro Y., Isshiki S. et al. Chromosomal locations of five isozyme gene loci (Lap-1, Got-1, 6-Pgdh-2, Adh-1 and Gdh-1) in shallot (A. cepa L. Aggregatum group)// Jpn.J.Genet. 1995a.-V.70.- P.399−407.
  237. Shigyo M., Tashiro Y., Isshiki S. et al. Chromosomal locations of isocitrate dehydrogenase and phosphoglucoisomerase gene loci in shallot (A. cepa L. Aggregatum group)//JpnJ.Genet.- 19 956, — V.70. P.627−632.
  238. Shmikova N.A., Tjukavin G.B. Culture of unpollinated ovaries and ovules in bulb onion, carrot and cucumber// Plant Biotechnology and Genetic Engineering/ Abstr. of Internation.Symp.3.-6.10.1994, Kiev, Ukraine.- Kiev.- 1994, — P.114.
  239. Shoemaker R.C. Role of molecular technologies in the seed industry// Proceed. of the 14th Annual Seed Technol.Conf./ Knapp A.D.(ed.).- Iowa, 1992.- P.43−74.
  240. Schulz B., Westhal L., Wrike G. Linkage groups of isozymes, RFLP and RAPD markers in carrot (Daucus carota L. sativus)// Euphytica.- 1993/1994.- V.74.- N½.- P.67−76.
  241. Simon P.W. Genetic variation in garlic// Proceed. of Nation. Onion Reseach conf.-Ithaca, N.Y.- 1993.- P. 184−191.
  242. Simon P.W., Roberts P.A., Boiteux L.S. Germplasm sources, inheritance, and marker assisted selection for southern and northern nematodes in carrot// J.Appl.Genet.- 1997.-V.38A.- P.57−59.
  243. Smith B.M., Godwin R.M., Harvey E. et al. Gynogenesis from whole flower buds in bulb onions {Allium cepa L.) and leeks {Allium porrum L.)// J.Genet.Breed.- 1991.- V.45.-P.353−358.
  244. Smith J.S.C. Plant breeder’s rights in the USA- changing approaches and appropriate technologies in support of germplasm enhancement// Plant Varieties and Seeds.- 1992.-V.5.- P.183−199.
  245. Song K.M., Osborn T.C., Williams P.H. Brassica taxonomy based on nuclear restriction fragment length polymorphisms (RFLPs). 1. Genome evolution of diploid and amphidiploid species// Theor.Appl.Genet.- 1988 a.- V.75.- P.784−794.
  246. Stallings R.L., Torney D.C., Hildebrand C.E. et al. Physical mapping of human chromosomes by repetitive sequence fingerprinting// Proc.Natl.Acad. Sci.USA.- 1990.-V.87.- P.6218−6222.
  247. Staub J.E., Meglik V. Molecular genetic markers and their legal relevance for cultigen discrimination: A case study in cucumber// HortTechnology.- 1993.- V.3.- P.291−300.
  248. Staub J.E., Box J., Meglic V. et al. Comparison of isozyme and random amplified polymorphic DNA data for determination intraspecific variation in Cucumis// Genet.Res.Crop Evol.- 1997.- V.44.- N2.- P.257−269.
  249. Stuber C., Wendel J., Goodman M. et al. Techniques and scoring procedures for starch gel electrophoresis of enzymes from maize (Zea mays L.)H North. Carolina Agric.Res.Serv.Techn. Bull.- 1988.- V.286.- P.36−43.
  250. Sunderland N., Dunwell J.M. Anter and Pollen culture// Tissue Culture and Plant Science. Oxford.- 1977, — 233 p.
  251. Tanhuanpaa P.K., Vilkki J.P., Vilkki H.J. Segregation and linkage analysis of DNA markers in microspore derived and F2 populations of oilseed rape (Brassica napus L.)// Euphytica.- 1993/1994.- V.74.- N½.- P.59−65.
  252. Taylor B., Powell A. Isolation of plant DNA and RNA// Focus.- 1982.- V.4.- P.4.
  253. Tanksley S.D., Miller J., Paterson A. et al. Molecular mapping of plant chromosomes// Chromosome structure and function/ Gustafson J.P., Appels R. (eds.).- New York: Plenum Press.-1987.- P. 157−173.
  254. Tanksley S.D., Ganal M.W., Prince J.P. et al. High density linkage maps of tomato and potato genomes// Genetics.- 1992, — V.132.- P. l 141−1160.
  255. Tanksley S.D., Grandillo S., Fulton T.M. et al. Advanced backcross QTL analysis in a cross between an elite processing line and its wild relative L. pimpinellifolium// TheorAppl.Genet.- 1996, — V.92.- N2, — P.213−224.
  256. Tautz D. Hypervariability of simple sequences as a general source of polymorphic DNA markers// Nucl. Acids Res.- 1989, — V.17.- P.6463−6471.
  257. Ting Y.C. Molecular markers of anther culture-derived plants// Maize Genet. Cooper. Newsletter.- 1994, — V.68.- P. 19−20.
  258. Tjukavin G.B. Anter culture of carrot// Plant Biotechnology and Genetic Engineering/ Abstr. of Internation.Symp. 3.-6.10.1994, Kiev, Ukraine.- Kiev.- 1994.- P.158.
  259. Traub H. The subgenera, sectiones and subsectiones of Allium L.// Ibid.- 1968.-V.24.- P.147−163.
  260. Truksa M., Prochazka S. Potential use of RAPD markers in verification of cucumber hybrids//Rostl.Vyroba.- 1996, — V.42.- P.241−244.
  261. Ulloa M. A cytogenetic, isozyme and morphological study on interspecific progenies from Allium fistulosumx A. cepa crosses: Ph.D.dissert.- New Mexico State Univer., 1993.
  262. Ulloa M., Corgan J.N., Dunford M. Abnormailites and difficulties for gene introgression in A. fistulosum x A. cepa generated progenies// Proc.Nat.Onion Res.Confer.-Ithaca, N.Y., 1993.- P.137−144.
  263. Vassart G., Georges M., Monsier R. et al. A sequence in M13 phage detects hypervariable minisatellites in human and animal DNA// Sci.- 1987.- V.235.- N4789.-P.683−684.
  264. Vos P., Hogers R., Bleeker et al. AFLP: a new concept for DNA fingerprinting// Nucl. Acids Res.- 1995, — V.23.- P.4407−4414.
  265. Vosa C. Heterochromatic patterns in allium. I The relationship between the species of the cepa group and its allies// Heredity.- 1976.- V.36.- P.3 83−392.
  266. Wang Z., Weber J.L., Zhong G. et al. Survey of plant short tandem repeats// Theor. Appl. Genet.- 1994.- V.88.- P. 1−6.
  267. Weeden N.F. Applications of isozymes in plant breeding// Plant Breedg.Revs./ JJanick (ed.). 1989, — V.6.- P. 11−54.
  268. Wei J.-Z., Campbell W.F., Wang R. R-C. Genetic variability in Russian wildrye (Psathyrostachys juncea) assessed by RAPD// Genet.Res.Crop Evol.- 1997.- V.44.- N2,-P.117−125.
  269. Welsh J., McClelland M. Fingerprinting genomes using PCR with arbitrary primers// Nucleic Acids Res.- 1990.- V.18.- № 22, — P.7213−7218.
  270. Westphal L., Wricke G. Genetic analysis of DIA, GOT and PGI isozyme loci in Daucus carota L. sativall Plant Breeding.- 1989.- V.102.- P.51−57.
  271. Westpnal L., Wricke G. Genetic and linkage analysis of isozyme loci in Daucus carotaL. il Euphytica.- 1991.-V.56, — P.259−267.
  272. Westphal L., Wricke G. Construction of a linkage map of Daucus carota L. sativus and its application for the mapping of disease resistance and restorer genes// J.Appl.Genet.-1997.- V.38A.- P.13−19.
  273. Wetter L., Dyck J. Isozyme analysis of cultured cell and somatic hybrids// Handbook of plant cell culture/McMillan (ed.).- 1983.- V. L- P.607−628.
  274. Wilkie S.E., Isaac P.G., Slater R.J. Random amplified polymorphic DNA (RAPD) markers for genetic analysis in Allium// Theor.Appl.Genet.- 1993.- V.86.- P.497−504.
  275. Williams J.G.K., Kubelik A.P., Livak K.J. et al. DNA polymorphism amplified by arbitrary primers are useful as genetic markers // Nucleic Acids Res.- 1990.- V.18.- № 22.-P.6531−6535.
  276. Wolff K., Zietkiewicz E., Hofstra H. Identification of chrysanthemum cultivars and stability of DNA fingerprint patterns// Theor.Appl.Genet.- 1995, — V.91.- P.439−447.
  277. Xiaoying Zh., Yan L. Inbred testing of Chinese cabbage F1 varieties by peroxidase and esterase isozyme analysis//Acta Hort Sinica.- 1994.- V.21.- N1.- P.59−64.
  278. Yang X., Quiros C.F. Identification and classification of celery cultivars with RAPD markers// Theor.Appl.Genet.- 1993.- V.86.- P.205−212.
  279. Yang X., Quiros C.F. Construction of a genetic linkage map in celery using DNA-based markers// Genome.- 1995.- V.38.-N1.- P.36−44.
  280. Yiang C., Lewis M.E., Sink K.C. Combined RAPD and RFLP molecular linkage map of asparagus// Genome.- 1997.- V.40.- P.69−76.
  281. Zhu H., Qu F., Zhu L.-H. Isolation of genomic DNAs from plants, fungi and bacteria using bensil chloride// Nucl. Acids Res.- 1993.- V.21.- N22, — P.5279−5280.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!