Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Влияние салициловой кислоты на состояние перекисного гомеостаза растений гороха при предадаптации к тепловому шоку

Диссертация: Влияние салициловой кислоты на состояние перекисного гомеостаза растений гороха при предадаптации к тепловому шоку
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Апробация работы. Основные положения работы были доложены на 9-й и 10-й Международных Пущинских школах-конференциях молодых ученых «Биология — наука XXI века» (Пущино, 2005, 2006), на X и XI нижегородских сессиях молодых ученых (Нижний Новгород, 2005, 2006), на IV Международной научной конференции «Регуляция роста, развития и продуктивности растений», (Минск, 2005), на I (IX) Международной… Читать ещё >

Содержание

  • СПИСОК ПРИНЯТЫХ СОКРАЩЕНИЙ
  • 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Система окислительного гомеостаза у растений
    • 1. 2. Салициловая кислота и ее роль в регуляции ^ физиологических процессов в растениях
  • 2. ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 2. 1. Объект исследований и постановка опытов
    • 2. 2. Методики анализов
    • 2. 2. Л. Получение общеклеточной суспензии
      • 2. 2. 2. Выделение хлоропластов
      • 2. 2. 3. Определение содержания диеновых коньюгатов 54 2.2.4 Определение содержания малонового диальдегида
      • 2. 2. 5. Определение содержания шиффовых оснований
      • 2. 2. 6. Определение активности супероксиддисмутазы
      • 2. 2. 7. Определение активности каталазы
      • 2. 2. 8. Метод спонтанной биохемилюминесценции
      • 2. 2. 9. Определение содержания белка
      • 2. 2. 10. Определение уровня общих липидов
      • 2. 2. 11. Статистическая обработка данных
  • 3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
    • 3. 1. Особенности влияния салициловой кислоты на проантиоксидантный статус клеток и хлоропластов растений гороха ^ при использовании разных концентраций и продолжительности введения салицилата
      • 3. 1. 1. Изменение про- антиоксидантного статуса клеток гороха при разных концентрациях и ^ продолжительности обработки растений салициловой кислотой
      • 3. 1. 2. Изменение про- и антиоксидантного статуса хлоропластов гороха при продолжительной обработке 75 растений салициловой кислотой
    • 3. 2. Изменения в развитии реакций перекисного окисления липидов и антиоксидантной системе клеток и хлоропластов гороха при тепловом шоке после продолжительной обработки салициловой кислотой
      • 3. 2. 1. Про- и антиоксидантный статус клеток гороха при тепловом шоке после продолжительной 80 обработки салицилатом
      • 3. 2. 2. Изменения в развитии реакций перекисного окисления липидов и антиоксидантной системе в хлоропластах растений гороха при тепловом шоке после продолжительной обработки салицилатом

Влияние салициловой кислоты на состояние перекисного гомеостаза растений гороха при предадаптации к тепловому шоку (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность проблемы. Активация процесса перекисного окисления липидов (ПОЛ) мембран, вызванная усиленной генерацией активных форм кислорода (АФК), является одним из наиболее ранних эффектов, происходящих у растений при воздействии различных стрессовых факторов, в том числе и теплового шока (Курганова и др., 1997; Dat et al., 1998(2) — Курганова и др., 1999; Zhou, Leul, 1999). Повышение уровня ПОЛ приводит к серьезным повреждениям мембран, вызывая существенные нарушения их структуры и функций (Браун, Моженок, 1987; Барабой и др., 1992). Начальным этапом в развитии ПОЛ является интенсификация генерации АФК (Зенков, Меньщикова, 1993; Halliwell, Gutteridge, 1986). В клетках растений, образование АФК наиболее интенсивно идет в хлоропластах (Мерзляк, 1989). Этим обусловлена высокая степень выраженности в этих органоидах общих изменений в состоянии проантиоксидантного равновесия в клетке при тех или иных внешних воздействиях.

При неблагоприятных условиях окружающей среды для сдерживания окислительных процессов необходимо быстрое включение антиоксидантных (АО) ресурсов. Обнаружено, что активность АО-системы может увеличиваться при действии стрессоров самой различной природы, что предупреждает окислительные изменения мембран и предотвращает гибель клеток (Rao et al., 1996; Kubo et al., 1999). Устойчивость растений к внешним воздействиям в значительной степени определяется соотношением уровня ПОЛ и активности антиоксидантной системы.

Особое внимание исследователей к салициловой кислоте (СК) связано с обнаружением ее ключевой роли в индукции системной приобретенной устойчивости растений к инфицированию фитопатогенами. Однако не вызывает сомнения факт участия СК в развитии защитных реакций в растениях в ответ на неблагоприятные факторы среды не только биотической, но и абиотической природы (Шакирова, 2000; Шакирова, 2001).

Показано, что салициловая кислота может изменять уровень ПОЛ. Большое количество данных свидетельствует о том, что СК стимулирует образование АФК и развитие ПОЛ (Вовчук и др., 1997, Conrath et al., 1995). Одновременно предполагается важная роль салицилата и в сдерживании окислительных процессов, связанных с защитными реакциями растений (Тарчевский и др., 1999).

Однако следует отметить, что в литературе практически отсутствуют сведения о роли влияния СК на проантиоксидантный статус клеток в изменении чувствительности растений к действию неблагоприятных факторов среды.

В связи с этим представляется актуальным исследование влияния салицилата на интенсивность перекисного окисления и активность АО-системы при предадаптации растений к последующей гипертермии.

Цель и задачи исследования

Цель работы состояла в исследовании влияния салициловой кислоты на уровень перекисного окисления липидов и активность антиоксидантной системы растений гороха, выявлении значения вызванных салицилатом изменений в перекисном гомеостазе для развития ответной реакции на последующую гипертермию.

Для достижения указанной цели поставлены следующие задачи:

1. Исследовать влияние экзогенной салициловой кислоты на перекисный гомеостаз клеток гороха при кратковременной (до 120 мин) обработке проростков салицилатом.

2. Исследовать изменения уровня перекисного окисления липидов и активности антиоксидантной системы клеток и хлоропластов гороха при длительном (7 суток) воздействии экзогенной салициловой кислоты на растения.

3. Сравнить влияние салицилата в двух концентрациях (100 и 500 мкМ) на перекисный гомеостаз растений гороха.

4. Исследовать влияние предобработки СК на ответную реакцию про-антиоксидантной системы растений гороха при последующем действии гипертермии.

Научная новизна. Впервые показано, что кратковременная обработка растений гороха 100 и 500 мкМ салициловой кислотой вызывает изменения в перекисном гомеостазе клеток, причем 500 мкМ салицилат оказывает более ярко выраженное действие.

Получены новые данные, позволяющие оценить соотношение изменений перекисного гомеостаза под влиянием длительной обработки салициловой кислотой в клетках и хлоропластах гороха.

Установлено, что выращивание растений гороха на среде, содержащей 500 мкМ салициловую кислоту, приводит к снижению уровня перекисного окисления и активации системы антиоксидантной защиты.

Впервые показано, что предобработка 500 мкМ салицилатом растений гороха в течение 7 суток приводит к предадаптации проростков к последующему тепловому шоку.

Теоретическая и практическая значимость. Полученные результаты важны для понимания механизмов участия салициловой кислоты в развитии защитных реакций в растениях в ответ на неблагоприятные факторы среды абиотической природы, в частности высокой температуры. Знания биохимических изменений, вовлеченных в растительные стрессовые ответы, могут быть использованы для выведения растений с повышенной устойчивостью к абиотическому стрессу. Основные выводы и результаты работы могут быть использованы в учебном процессе на биологических факультетах университетов при чтении спецкурсов и включены в соответствующие разделы лекций общего курса по физиологии растений.

Апробация работы. Основные положения работы были доложены на 9-й и 10-й Международных Пущинских школах-конференциях молодых ученых «Биология — наука XXI века» (Пущино, 2005, 2006), на X и XI нижегородских сессиях молодых ученых (Нижний Новгород, 2005, 2006), на IV Международной научной конференции «Регуляция роста, развития и продуктивности растений», (Минск, 2005), на I (IX) Международной конференции молодых ботаников в Санкт-Петербурге (Санкт-Петербург, 2006), на Втором Международном симпозиуме «Сигнальные системы клеток растений: Роль в адаптации и иммунитете» (Казань, 2006), на конференции «Физиология растенийфундаментальная основа современной фитобиотехнологии» (Ростов-на-Дону, 2006).

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 9 работ.

Структура и объем диссертации

Диссертация состоит из введения, обзора литературы, изложения методов исследований, результатов исследований и их обсуждения, заключения, выводов и списка литературы (147 работ, в том числе 95 иностранных). Работа изложена на 110 страницах, содержит 13 рисунков и 3 таблицы.

выводы.

1. Действие салициловой кислоты в концентрациях 100 и 500 мкМ на проростки гороха в течение 15 и 60 минут приводило к незначительному снижению интенсивности перекисного окисления липидов и небольшой активации антиоксидантной системы клетки. Обработка проростков гороха салицилатом в течение 2 часов вызывала усиление ПОЛ. Одновременно наблюдалось угнетение работы антиоксидантной системы, особенно СОД под действием 500 мкМ салициловой кислоты.

2. При длительном введении (7 суток) 500 мкМ салициловой кислоты в клетках проростков гороха наблюдалось снижение интенсивности ПОЛ и суммарной активности антиоксидантной системы, но при этом активность СОД увеличивалась. В хлоропластах также наблюдалось снижение содержания продуктов ПОЛ, тогда как активность антиоксидантной системы возрастала.

3. СК в концентрации 500 мкМ оказывала более сильное влияние на прои антиоксидантный статус клеток гороха, по сравнению со 100 мкМ СК.

4. Длительное (7 суток) воздействие СК в концентрации 500 мкМ способствует адаптации проантиоксидантной системы растений гороха к последующей гипертермии.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Проведенные исследования показали, что кратковременная (до 120 минут) обработка листьев гороха салициловой кислотой в концентрациях 100 и 500 мкМ приводила к колебаниям уровня ПОЛ и активности АО-системы клеток гороха в зависимости от концентрации и продолжительности действия салицилата. Выявлено, что в процессе роста гороха на среде, содержащей 500 мкМ СК в течение 7 суток наблюдалось заметное снижении уровня ПОЛ и активация АО-системы клеток и хлоропластов гороха. После начала влияния высокой температуры на растения, обработанные салицилатом в течение длительного времени, СК не позволила усилиться процессу липопероксидации. Это может объясняться качественной работой АО-системы, активность которой была на достаточно высоком уровне еще до начала действия гипертермии, по сравнению с контрольными растениями, и продолжала активироваться по мере действия теплового шока. Полученные результаты позволяют заключить, что одним из механизмов повышения стрессовой устойчивости растений под влиянием салициловой кислоты является ее воздействие на про-антиоксидантную систему растений.

Показать весь текст

Список литературы

  1. А.А. Активные формы кислорода и иммунитет растений // Усп. Совр. Биол. 1991. — Т. 111. — Вып. 5. — С. 722 734.
  2. А.А., Лапикоа В. П., Николаев О. Н., Степанов А. И. Зависящая от активированного кислорода защита риса от пирикуляриоза с помощью рибофлавина и розеофлавина // Биохимия. 2000. — Т.65. — Вып. 11. — С. 1530−1537.
  3. А.И. Микросомальное окисление . М.: Наука, 1975. -328с.
  4. В.А. Механизмы стресса и перекисное окисление липидов // Усп. Совр. Биол. 1991. — Т. 111. — Вып. 6. — С. 923 931.
  5. В. А., Блехман Н. Н., Голотин В. Г., Кудряшов Ю. Б. v Перекисное окисление и стресс. СПб.: Наука, 1992.148 с.
  6. М.В., Сахабутдинова А. Р., Файхутдинова Р. А., Кильдиярова И. А., Шакирова Ф. М. Влияние салициловой кислоты на содержание гормонов в корнях и рост проростков пшеницы при водном дефицитете // Агрохимия. 2001. — № 2. — С. 51−54.
  7. А.Д., Моженок Т. П. Неспецифический адаптационный синдром клеточной системы. Л.: Наука, 1987. — 230с.
  8. Е.Б., Архипова Г. В., Голощапов А. Н., Молочкина Е. М., Хохлов А. Г. Мембранные липиды как переносчики информации // Биоантиокислители в регуляции метаболизма в норме и патологии /Под ред. А. И. Журавлева. М.: Наука, 1982. — С.74−83.
  9. Э.А., Федина А. Б., Кулаева О. Н. Сравнительное изучение влияния салициловой кислоты и 2−5-олигоаденилатов на синтез белка в листьях табака при тепловом шоке // Физиология растений. 1999. — Т.46, № 1. — С. 16−22.
  10. В.А. Надежность растительной клетки и стресс // Надежность и гомеостаз биологических систем. Киев: Наукова Думка, 1987. — С. 96−100.
  11. Ю.А. Свободнорадикальное окисление липидов и физические свойства липидного бислоя II Биофизика. 1987. -Т. 32. — Вып. 5. — С. 830−844.
  12. Ю.А., Арчаков А. И. Перекисное окисление липидов в биологических мембранах. М.: Наука, 1972. — 252с.
  13. С.В., Адамовская В. Г., Левицкий А. П., Молодченкова 0.0. Изме-нение белок протеинкиназного комплекса озимой пшеницы под действием салициловой кислоты // Физиология и биохимия культурных растений. -1997. — Т.29. — С. 363−369.
  14. С. Медико-биологическая статистика. М.: «Практика», 1999. 459 с.
  15. А.Н., Тарчевский И. А. Лиоксигеназная сигнальная система // Физиол. Раст. 1999. — Т. 46. — Вып. 1. — С. 132−142.
  16. Д.М. Надежность растительных систем. Киев: Наукова Думка, 1983. — 366с.
  17. А.П. Сигнальные молекулы растений для активации защитных реакций в ответ на биотический стресс//Физиология растений 2003. — Т.50, № 3. — С.465−474.
  18. Е.Е. Биологическая роль супероксидного анион-радикала и супероксиддисмутазы в тканях организма // Усп. Совр. Биол. -1989. Т. 108. — Вып. 1 (4). — С.3−18.
  19. А.И. Развитие идей Б.И. Тарусова о роли цепных процессов в биологии // Биоантиокислители в регуляции метаболизма в норме и патологии / Под ред. А. И. Журавлева. -М.: Наука, 1982.-С. 3−36.
  20. Н.К., Меньщикова Е. Б. Активированные кислородные метаболиты в биологических системах // Усп. Совр. Биол. 1993. -Т. 113.-Вып. З.-С. 286−296.
  21. .Н., Игнатова Л. К., Овчинникова В. И., Хоробрых С. А. Фотовосстановление продукта аскорбатпероксидазной реакции в тилакоидах гороха // Биохимия. 1997. — Вып. 10. — С.1264−1271.
  22. А.В. К вопросу о регуляторной роли активных форм кислорода в клетке // Биохимия. 1998. — Т. 63. — Вып. 9. — С. 1305−1306.
  23. B.C. Клинико-биохимическая лабораторная диагностика: Справочник: В 2-х томах. Т. 2. Минск: Интерпрессервис, 2003. — 463с.
  24. О.А. Свойства плазмалеммы морозостойких растительных клеток // Усп. Совр. Биол. 1988. — Т. 106. -Вып. 1(4). — С. 143−157.
  25. Л.Н., Веселов А. П., Гончарова Т. А., Синицына Ю. В. Перекисное окисление липидов и антиоксидантная система защиты в хлоропластах гороха при тепловом шоке // Физиология растений. -1997. Т.44, № 5. — С. 725- 730.
  26. Л.Н., ВеселовА.П, Синицына Ю. В., Еликова Е. А. Продукты перекисного окисления как возможные посредники между воздействием повышенной температуры и развитием стресс-реакции у растений // Физиол. Раст. 1999. — Т. 46. — Вып. 2.-С. 218−222.
  27. В.П., Гайворонская Л. М., Аверьянов А. А. Возможное участие активных форм кислорода в двойной индукции противоинфекционных реакций растения // Физиол. Раст. 2000. -Т. 47.-Вып. 1.-С. 160−162.
  28. Ли-Джун Ван, Вей-Дун Хуан, Джи-Чен Джан, Фей-И Юй. Транспорт С-салициловой кислоты в молодых растениях винограда, подверженных тепло-вому шоку // Физиология растений. 2004. Т.51, № 2. С. 217−222.
  29. Е.Л., Вартанян Л. С. Супероксиддисмутаза: определение активности по ингибированию фотосенсибилизированной хемилюминисценции глицилтриптофана // Биохиия. 2000. — Т. 65. — Вып. 5. — С. 704 708.
  30. А.С., Исайкина Е. Е. Кальциевый статус и холодовое повреждение проростков кукурузы // Физиол. Раст. 1997. — Т. 44, № 3. — С. 392−396.
  31. А.С., Левина Е. Е. Влияние экзогенных модификаторов перекисного окисления на холодовое повреждение листьев огурца // Физиол. Раст. 1997. — Т. 44, № 3. — С. 397−403.
  32. С.С., Маркова И. В. Участие салициловой кислоты в гравитро-пизме у растений // Докл. АН СССР. 1991. Т.316. С. 1014−1016.
  33. М.И. Активированный кислород и окислительные процессы в мембранах растительной клетки // Итоги науки и техники. Сер. «Физиол. Раст.». -М.: ВИНИТИ, 1989. 120с.
  34. Минибаева Ф. В, Гордон Л. Х. Продукция супероксида и активность внутриклеточной пероксидазы в растительных тканях при стрессе//Физиология растений. 2003. — Т.50, № 3. — С. 459 464.
  35. Новицкая Г. В, Суворова Т. А. Изменение липидного состава мембранных фракций проростков озимой пшеницы при низкотемпературной адаптации // Физиол. Раст. 1994. — Т. 41, № 4.-С. 539−545.
  36. Г. Э. Активные формы кислорода и люстра Чижевского // Биохимия. 2001. — Т. 66. — Вып. 1. — С. 123−126.
  37. А.В. Взаимодействие активного кислорода с ДНК // Биохимия. 1997. — Т. 62. — Вып. 12. — С. 1571−1578.
  38. А.В. О регуляторной роли активных форм кислорода // Биохимия. 1998. — Т. 63. — Вып. 9. — С. 1307−1308.
  39. В.П. Старение организма особая биологическая функция, а не результат поломки сложной живой системы: биохимичечское обоснование гипотезы Вейсмана // Биохимия. -1997.-Т. 62.-Вып. 11.-С. 1394−1399.
  40. В.П. О биохимических механизмах эволюции и роли кислорода // Биохимия. -1998. Т. 63. — Вып. 11. — С. 1570−1585.
  41. И.Д., Гаришвили Т. Г. Метод определения малонового диальдегида с помощью тиобарбитуровой кислоты // Современные методы в биохимии / Под ред. В. Н. Ореховича. -М.:Медицина, 1977. С. 66−68.
  42. И.А. Сигнальные системы клеток растений. М.: Наука, 2002. 293с.
  43. И.А. Элиситор-индуцируемые сигнальные системы и их взаимодействие // Физиол. Раст. 2000. — Т. 47, № 2. — С. 321 331.
  44. И.А., Максютова И. Н., Яковлева В. Г. Влияние салициловой кислоты на синтез белков в проростках гороха // Физиология растений. 1996. Т.43, № 5. — С. 667−671.
  45. И.А., Максютова Н. Н., Яковлева В. Г., Гречкин А. Н. Янтарная кислота—миметик салициловой кислоты//Физиология растений. 1999. — Т.46, № 1. — С.23−28.
  46. С., Чаба И., Сеней И. Роль СОД в окислительных процессах клетки и метод её определения в биологических материалах//Лабораторное дело. -1985. Вып.11. — С. 578−681.
  47. Ф.М. СК—индуктор устойчивости растений//Агрохимия. 2000, № 11. — С.87−95.
  48. Ф.М. Неспецифическая устойчивость растений к стрессовым факторам и ее регуляция. Уфа: Гилем, 2001. 159с.
  49. В.Е. Влияние высокой температуры на активность фотосинтеза, реакции Хилла и некоторых ферментов хлоропластов пшеницы // Физиол. Раст. 1994. — Т.41. — Вып.5. -С. 726−730.
  50. Alscher R.G., Donahue J.L., Cramer C.L. Reactive oxygen species and antioxidants: relationships in green cells // Physiol. Plantarum. -1997.-V.100.-P. 224−233.
  51. Anderson M.D., Chen Z., Klessig D.F. Possible involvement of lipid peroxidation in salicylic acid-mediated induction of PR-1 gene expression // Phytochem. -1997. -V. 47, № 6. P. 555−566.
  52. Apostol!., Heistein P.F., Low P. S. Rapid stimulation of an oxidative burst during elicitation of cultured plant cell // Plant Physiology. -1989.-Vol.90.-P. 106−116.
  53. Arnon D. L., Allen M.B., Whatly Z.B. Photosyntesis by isolated chloroplasts. Genetic concept and companison of free photochemical reaction // Biochem. Biophys. Acta. 1956. — V. 20, № 2. — P. 449 445.
  54. Asada К., Takahashi M. Production and scavenging of active oxygen in photosynthesis // Photoinhibition / Eds. D. Kile, C.B. Osmond, C.J. Arntzen. Amsterdam: Elsevier, 1987. — P. 227−287.
  55. Bao Y., Williamson G., Mannervik В., Jemth P. Reduction of thymine hydroperoxide by phospholipid hydroperoxide glutathione peroxidase and glutathione transferases // FEBS Lett. 1997. — V. 410, № 2−3. -P. 210−212.
  56. Barbier-Brygoo H., Joyard J., Pugin A., Ranjeva R. Intracellular compartmentation and plant cell signaling // Trends Plant Sci. 1997. -V. 2.-№ 6.-P. 214−222.
  57. Baudouin E., Charpenteau M., Ranjeva R., Ranty B. Involvement of active oxygen species in the regulation of tobacco defence gene by phorbol ester // Plant Science. -1999. V. 142. — P. 67−72.
  58. Becana M., Moran J.F., Iturbe-Ormaexte I. Iron-dependent oxygen free radical generation in plants subjected to environmental stress: toxicity and antioxidant protection // Plant Soil. 1998.- V. 201. — P. 137−147.
  59. Bent A.F. Plant didease resistance genes: function meet structure // Plant Cell. -1996. Vol.8. — P. 1757−1771.
  60. Blumwald E., Aharon G.S., Lam B.C.-H. Early signal transduction pathways in plant pathogen interaction // Trends Plant Sci. 1998. -V. 3, № 9. — P. 342−346.
  61. Bowler C., Aliotte Т., De Loose M., Van Montagu M., Inze D. The induction of manganese superoxide dismutase in response to stress in Nicotiana plumbaginifolia // EMBO Journ. 1989. — V. 8, № 1. -P. 31−38.
  62. Bowler С., Fluhr R. The role of calcium and activated oxygens as signals for controlling cross-tolerance // Trends Plant Sci. 2000. -V.6, № 6. — P.241−244.
  63. Bowler C., Montagu M., Inze D. Superoxide dismutase and stress tolerance // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1992. — V. -43. — P.83−116.
  64. Camp W.V., Montagu M.V., Inze D. H202 and NO: redox signals in desease resistance // Trends Plant Sci. 1998. — V. 3, № 9. — P. 330 334.
  65. Casano L.M., Zapata J.M., Martin M., Sabater B. Chlororespiration and poising of cyclic electron transport. Plastoquinone as electron transporter between thylakoid NADH dehydrogenase and peroxidase // J. Biol. Chem. 2000. — V. 275, № 2. — P. 942−948.
  66. Cerutti P.A. Prooxidant states and tumor promotion // Science. -1985.-V. 227.-P. 375−381.
  67. Chadna K., Brown S.A. Biosyntesis of phenolic acids in tomato plants infected with Agrobacterium tumefacies II Plant Cell. 1974. -Vol.52. — P. 2041−2046.
  68. Chen Z., Iyer S., Caplan A. Differential accumulation of salicylic acid sensitive catalase in different rice tissues // Plant Phisiol. — 1997. -V. 114.-P. 193−201.
  69. Chernikova Т., Robinson J.M., Lee E.H., Mulchi C.L. Ozone tolerance and antioxidant enzyme activity in soybean cultivars // Photosynth. Res. -2000. -V. 64. P. 15−26.
  70. Cleland C.F., Tanaka O. Effect of daylenght on the ability of salicylic acid to induce flowering in the long-day plant Lemma paucicostata 6746 // Plant Physiology. -1979. Vol.64. — P. 421−422.
  71. Cohen С.К., Norvell W.A., Kochian L.V. Induction of the root cell plasma membrane ferric reductase // Plant Physiol. 1997. — V. 114. -P. 1061−1069.
  72. Conrath U., Chen Z., Ricigliano J.R., Klessing D.F. Two inducers of plant defense responses 2,6-dihloroisonicotinic and salicylic acids, inhibit catalase activity in to-bacco // Proc. Nate. Acad. Sci. USA. -1995. Vol.92, № 16. — P. 7143−7147.
  73. Corpas F.J., Barroso J.В., del Rio L.A. Peroxisomes as a source of reactive oxygen species and nitric oxide signal molecules in plant cell // Trend Plant Sci. 2001. — V. 8, № 4 — P. 145−150.
  74. Dat J.F., Foyer C.H., Scott I.M. Changes in salicylic acid and antioxidants during induced thermotolerance in mustard seedlings//Plant PhysioL-1998(1).-Vol. 118. P.1455−1461.
  75. Dat J.F., Lopez-Delgado H., Foyer C.H., Scott I.M. Parallel changes in H2O2 and catalase during thermotolerance induced by salicylic acid or heat acclimation in mustard seedlings // Plant Physiol. 1998(2) -V. 116.-P. 1351−1357.
  76. Dean R.T., Fu S., Stocker R., Davies. M.J. Biochemistry and pathology of radical-mediated protein oxidation // Biochem. J. 1997. -V. 324.-P. 1−18.
  77. Desikan R., Neill S.J., Hancock J.T. Hydrogen peroxide-induced gene expression in Arabidopsis thaliana // Free Rad. Biol. Med. -2000. -V. 28., № 5. P. 773−778.
  78. Disperger H., Sandermann H. Soluble and microsomal glutathione S-transferase activities in pea seedlings (Pisum sativum L) II Planta. -1979. V.146. — P.643−648.
  79. Doke N. The oxidative burst: riles in signal transduction and plant stress // Oxidative stress and the molecular biology of antioxidant defences // ed. J.G. Scandalios. Cold Spring Harbor, NY: Cold Spring Harbor Laboranjry Press, 1997. — P. 785−813.
  80. Donahue J. L, Okpodu C.M., Cramer C. L, Grabau E. A, Alscher R.G. Responses of antioxidants to paraquat in pea leaves // Plant. Physiol. -1997. V.113. P.249−257.
  81. Draper J. Salycilate, superoxide synthesis and cell suicide in plant defence // Trend Plant Sci. 1997. — V. 2, № 5. — P. 162−165.
  82. Durner J, Klessig D.F. Salicylic acid is a modulator of tobacco and mammalian catalases // J. Biol. Chem. 1996. — V. 272. — P. 2 849 228 501.
  83. Durner J., Shah J, Klessig D.F. Salicylic acid and disease resistance in plants/trends in plant science. -1997. Vol.2,№ 7. — P. 1360−1385.
  84. Edwards R., Dixon D. P, Walbot V. Plant glutathion S-transferases: enzymes with multiple functions in sickness and in health II Trends Plant Sci. -2000. V.3. — № 6. — P. 193−198.
  85. Finkel T. Redox-dependent signal transduction // FEBS Lett. 2000. — V. 476. — P. 52−54.
  86. Fletcher D.L., Dillared C.J., Tappel A.Y. Measurement of fluorescent lipid peroxidation products in biological system and tissues // Analyt. Biochem. 1973. — Vol.52. — P. 497−499.
  87. Foyer C.H., Lelandias M., Kunert K.J. Photooxidative stress in plant // Physiol. Plantarum. 1994. -V. 92. — P. 696−717.
  88. Foyer C.H., Lopez-Delgado H., Dat J.F., Scott I.M. Hydrogen peroxide- and glutathione-associated mechanisms of acclamatory stress tolerance and signaling // Physiol. Plant. 1997. V. 100. P. 241−254.
  89. Glass A.D.M. influence of phenolic acid on ion uptake. Inhibition of phosphate uptake // Plant Physiology. 1983. — Vol.51. — P. 10 371 041.
  90. Godber B.L.J., Doel J.J., Sapkota G.P., Blake D.R., Stevens C.R., Eisenthal R., Harrison R. NO fulfills reduction of nitrite to nitric oxide catalyzed by xanthine jxidoreductase // J. Biol. Chem. 2000. -V.275, № 11.-P. 7757−7763.
  91. Guan L.M., Scandalios J.G. Hydrogen peroxide-mediated catalase gene expression in response to wounding // Free Radical Biol. Med. -2000. V.28. — № 8. — P. 1182−1190.
  92. Halliwell В., Gutteridge J.M. Iron and free radical reactions: two aspects of antioxidant protection // TIBS. 1986. — V. 11, № 9. — P. 372−375.
  93. Horemans N., Foyer C.H., Asard H. Transport and action of ascorbate at the plant plasma membrane // Trends Plant Sci. 2000. — V.3 — № 6. — P.263−267.
  94. Iturbe-Ormaexte I., Escuredo P.R., Arrese-lgor С., Becana M. Oxidative damage in pea plants exposed to water deficit or paraquat // Plant Physiol. 1998. — V.116. — P. 173−181.
  95. Klessing D.F., Malamy J. The Salicylic Acid signal in plants // Plant Mol. Biol. 1994. Vol.26. P. 1439−1458.
  96. Kliebenstein D.J., Monde R.A., Last R. L. Superoxide dismutase in Arabidopsis: an eclectic enzyme family with disparate regulation and protein localization // Plant. Physiol. 1998. — V. 118, № 2. — P. 637 650.
  97. Koppenol W.H. The basic chemistry of nitrogen monoxide and peroxynitrite // Free Rad. Biol. Med. -1998. V. 25, № 4/5. — P. 331 338.
  98. Kubo A., Aono M., Nakajima N., Saji H., Tanaka K., Kondo N. Differential responses in activity of antioxidant enzymes to different environmental stress in Arabidopsis thaliana // J. Plant Res. 1999. -V. 112.-P. 279−290.
  99. Lamb C., Dixon R. Oxygen burst in plant disease resistance//Annual Review Plant Physiol. Plant.Mol.Biol.-1997.-Vol.48. P.251−275.
  100. Lee H.I., Leon J., Raskin I. Biosynthesis and metabolism of Salicylic Acid // Proc. Nate. Acad. Sci. USA. 1995. Vol.92. P. 4076−4079.
  101. Lee B.-H., Won S.-H., Lee H.-S., Miyao M., Chung W.-l., Kim l.-J., Jo J. Expression of the chloroplast-localized small heat shock protein by oxidative stress in rice // Gene. 2000. — V. 245. — P. 283−290.
  102. Lowry O., Rosenbrough N., Tarr A., Randoll R. Protein measurement with the Folin Phenol Reagent //1. Biol. Chem. 1951.Vol. 193, № 1. P. 265−275.
  103. Mahalingham R., Fedoroff N. Stress response, cell death and signalling: the many faces of reactive oxygen species//Physiologia Plantarum.-2003.-Vol. 119, № 1. P.56−68.
  104. Matters G.L., Scandalios J.G. Effects of free radical generating gerbicide paraquat on the expression of the superoxide (Sod) genes in maize // Biochem et Biophis. Acta. -1998. V. 882. — P 29−38.
  105. Mehdy M.C. Active oxygen species in plant defense against patogens // Plant Physiol. 1994. — V.105, № 2. — P. 467−472.
  106. Metraux J.P., Signer H., Ryals J. Increase in Salicylic Acid at the onset of systemic acquired resistance in cucumber // Science. 1990. Vol.250. P. 1004−1015.
  107. Meuwly P., Molders W., Buchala A., Metraux J.-P. Local and systemic biosynthesis of salicylic acid in infected cucumber plants //Plant Physiol. 1995. — V. 109, № 3. — P. 1107−1114.
  108. Mikolajchyk M., Awotunde O.S., Muszynska G. Osmotic stress induces rapid ac-tivation of a salicylic acid- induced protein kinase and a homolog of protein kinase ASK1 in tobacco cells // Plant Cell. -2000.-Vol.12.-P. 165−178.
  109. Mishra A., Choudhuri M.A. Effect of salicylic acid on heavy metal-induced membrane deterioration mediated by lipoxygenase in rise // Biol. Plant. 1999. — Vol.42. — P. 409−415.
  110. Morel Y., Barouki R. Repression of gene expression by oxidative stress // Biochem. J. -1999. v. 342. — P 481 — 496.
  111. Morris K., Mackerness S.A., Page T. Salicylic acid has a role in regulating gene expression during leaf senescence // Science. 2000. Vol.23. P. 677−685.
  112. Orozco-Cardenas M.L., Narvaez-Vasquez J., Ryan C.A. Hydrogen peroxide acts as a second messenger for the induction of defense genes in tomato plants in response to wounding, systemin, methyl jasmonate// Plant Cell- 2001. -V. 13, № 1.-P. 179−191.
  113. Papadakis A.K., Roubelakis-Angelakis K.A. The generation of active oxygen species differs in tobacco and grapevine mesophyll protoplasts // Plant Physiol. -1999. -V. 211. P. 197−206.
  114. Patterson B.D., Payne L.A., Chen Yi-Zhu, Graham P. An inhibitor of catalase induced by cold in chilling-sensitive plants//Plant Physiol.-1984.-Vol.76, № 4. P.1014−1018.
  115. Prasad Т.К., Anderson M.D., Martin B.A., Stewart C.R. Evidence for chilling-induced oxidative stress in maize seedlings and a regulatory role for hydrogen peroxide // Plant Cell. 1994. V. 6. P. 65−74.
  116. Privalle C.T., Fridovich I. Induction of superoxide dismutase in Escherichia coli by heat shock // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1987. -V. 84.-P. 2723−2726.
  117. Pryor W.A., Squadrito G.L. Oxidative chemistry of nitric oxide: the roles of superoxide, peroxynitril, and carbon dioxide the theoretical perspective II Free Rad. Biol. Med. — 1998. — V.25. — P.392−403.
  118. Rabinowitch H.D., Sklan D. Superoxide dismutase: a possible protective agent against sunscald in tomatose (Lycopersicom esculentum Mill) II Planta. -1980. V.148. — P. 162−167.
  119. Rai K., Sharma S.S., Sharma S. Reversal of ABA- induced stomatal slosur by phenolic compounds // Exp. Bot. 1986. Vol.37. P. 129−134.
  120. Rao M.V., Paliyath G., Ormrod D.P. Ultraviolet-B and ozone-induced biochemical changes in antioxidant enzymes of Arabidopsis thaliana // Plant Physiol. 1996. — V. 110. — P. 125−136.
  121. Rao M.V., Paliyath G., Ormond D. P, Murr D. P, Watkins C.B. Influtence of salicylic acid on H202 production, oxidative stress and H202-metabolizing enzymes//Plant Physiol.-1997.-Vol. 115. P. 137 149.
  122. Raskin I. A role of salicylic acid in plants // Annu. Rev. Plant physiol. Plant Mol.Biol. 1992. Vol.43. P. 436−463.
  123. Raskin I, Ehmann A., Mekander W. R, Meense P.J.P. Salicylic acid -a natural inducter of heat production in Arum lilies // Science. 1987. Vol.237. P. 1601−1602.
  124. Ryals J. A, Neuenschwander U. H, Willits M. G, Molina A, Steiner H. Y, Hunt M.D. Systemic acquired resistance // Plant Cell. 1996. -V. 8.-P. 1809−1819.
  125. Ryter S. W, Tyrrell R.M. Singlet molecular oxygen ('02): a possible effector of eucariotic gene expression // Free Rad. Biol. Med. 1998. -V. 24, № 9.-P. 1520−1534.
  126. Sancarapandi S., Zweier J.L. Evidence against the generation of free hydroxy! radicals from the intaraction of copper, zinc superoxide dismutase and hydrogen piroxide // J. Biol. Chem. — 1999. — V.274. -№ 49. — P.34 576−34 583.
  127. Scandalios J.G. Molecular genetics of superoxide dismutases in plant // Oxidative stress and the molecular biology of antioxidant defences / ed. J.D. Scandalios. Cold spring harbor, NY: Cold spring harbor laboratory press, 1997. — P. 527−568.
  128. Scandalios J.G. Response of plant antioxidant defense genes to environmental stress //Adv. Genet. 1990. — V.28. — P. 1−14.
  129. Scioli J.R., Zilinskas B.A. Cloning and characterization of a cDNA encoding the chloroplastic copper/zinc superoxide dismutase from pea // Genetics. 1998. — V. 85. — P. 7661−7665.
  130. Senaratna Т., Touchell D., Bunn E., Dixon K. Acetyl salicylic acid (Aspirin) and salicylic acid induce multiple stress tolerance in bean and tomato plants // Plant Growth Reg. 2000. — V. 30. — P. 157 161.
  131. Shakirova F.M., Sakhatutdinova A.R., Bezrukova M.V. Changes in hormonal status of wheat seedlings induced by salicylic acid and salinity// Plant. Sci. 2003. Vol.164. P. 317−322.
  132. Shulaev V., Leon J., Raskin I. Is salicylic acid a translocated signal of systemic acquired resistanse in tobacoo? // Plant Call. V. 7. — P. 1691−1701.
  133. Stewart R.R.C., Bewley J.D. Lipid peroxidation associated with accelerated aging of soybean axes II Plant Phisiol. 1980. — V. 65. -P. 245−248.
  134. Strobel N.E., Kuc A. Chemical and biological inducers of systemic acquired resistance to pathogens protect cucumber and tobacco from damage caused by paraquat and cupric chloride II Phytopathol. -1995.-V. 85. -P. 1306−1310.
  135. Tjus S.E., Scheller H.V., Andersson В., Moller B.L. Active oxygen produced during selective excitation of photosystem I is damaging not only to photosystem I, but also to photosystem II // Plant Physiol. 2001.-V. 125, № 4. — P.2007−2015.
  136. Tsang E.W.T., Bowler C., Herouart D., Van Camp W., Villarroel., Genetello C., Van Montagu M., Inze D. Differential regulation of superoxide dismutases in plant exposed to envinronmental stress //
  137. Plant Cell. 1991. -V. 3. — P. 782−792.109
  138. Vernooij В., Friedrich L., Morse A. Salicylic acid is not the translocation signal responsible for inducing systemic acquired resistance but is required in signal transduction // Plant Cell. 1994. Vol.6. P. 959−965.
  139. Wang C., Jarlfors U., Hildbrand D. Regulation and subcellular localization of auxin-induced lipoxygenases // Plant Science. 1999. -V. 148.-P 147−153.
  140. Wojtaszek P. Mehanisms for the generation of reactive oxygen species in plant defence response//Acta Physiol. Plantarum. 1997. -V. 19, № 4.-P. 581−589.
  141. Yalpani N., Enyedi A.J., Leon J., Raskin I. Ultraviolet light and ozone stimulate accumulation of salicylic acid, pathogenesis related proteins and virus resistance in tobacoo // Planta. 1994. — V. 193. — P. 372 376.
  142. Zhou W., Leul M. Uniconasole-induced tolerance of rape plants to heat stress in relation to changes in hormonal level, enzyme activities and lipid peroxidation // J. Plant Growth Reg. 1999. — V. 27. — P. 99−104.
  143. Zhu D., Scandalios J.G. Differential accumulation of manganese-superoxide dismutase transcripts in maize in response to abscisic acid and high osmoticum // Plant Phisiol. 1994. — V. 106. — P. 173 176.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!