Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Сублетальное действие вируса ядерного полиэдроза на непарного шелкопряда: Lymantria dispar L

Диссертация: Сублетальное действие вируса ядерного полиэдроза на непарного шелкопряда: Lymantria dispar L
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Затухания вспышек массового размножения насекомых часто связаны с эпизоотиями, которые вызывают бакулови-русы (Вейзер, 1972; Гулий, Голосова, 1975; Гулий, Рыбина, 1988; Myers, 1988; Berriman, 1995; Kukan, 1999, Milks, Myers, 2001). Однако проблема сохранения и распространения вирусов в популяции насекомых-хозяев является предметом дискуссии на протяжении последних трех десятилетий. Часть… Читать ещё >

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
  • ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Биология, экология и вредоносность непарного шелкопряда (Lymaпtria dispar L.)
    • 1. 2. Вирусные болезни насекомых
      • 1. 2. 1. Симптомы и патогенез бакуловирусных инфекций насекомых
      • 1. 2. 2. Преодоление вирусной инфекции насекомыми
    • 1. 3. Латентность бакуловирусов
      • 1. 3. 1. Латентные вирусные инфекции у насекомых
      • 1. 3. 2. Активация латентной вирусной инфекции у насекомых
    • 1. 4. Эпизоотология вирусных болезней насекомых
    • 1. 5. Пути передачи бакуловирусов в популяции насекомых. ф 1.5.1. Горизонтальная передача
      • 1. 5. 2. Вертикальная передача
    • 1. 6. Влияние вирусных инфекций на насекомых
  • ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
    • 2. 1. Насекомые
    • 2. 2. Стерилизация поверхности яиц
    • 2. 3. Вирус ядерного полиэдроза
    • 2. 4. Инфицирование гусениц непарного шелкопряда вирусом ядерного полиэдроза
    • 2. 5. Активация латентной вирусной инфекции
    • 2. 6. Анализ биологических показателей непарного шелкопряда
    • 2. 7. Определение этиологии смертности гусениц
    • 2. 8. Диагностика скрытого вируса
    • 2. 9. Статистическая обработка экспериментальных данных
  • ГЛАВА 3. Влияние вируса ядерного полиэдроза на
  • Родительское поколение непарного шелкопряда
    • 3. 1. Смертность гусениц непарного шелкопряда от полиэдроза
    • 3. 2. Влияние вируса на время развития гусениц
    • 3. 3. Влияние вируса на вес куколок, соотношение полов, плодовитость имаго и фертильность яиц
  • ГЛАВА 4. Отдаленное действие вирусной инфекции в поколениях и Е2 непарного шелкопряда
    • 4. 1. Влияние инфицирования вирусом поколения Г на длительность развития гусениц в поколениях Гх и Е2 непарного шелкопряда
    • 4. 2. Влияние инфицирования вирусом поколения Г на вес куколок самок и соотношение полов в поколениях р! и Т2 непарного шелкопряда
    • 4. 3. Влияние инфицирования вирусом поколения Г на плодовитость имаго и фертильность яиц в поколении р непарного шелкопряда
  • ГЛАВА 5. Вертикальная передача вируса ядерного полиэдроза непарного шелкопряда

5.1. Влияние доз вируса и возраста, в котором инфицировали гусениц родительского поколения, на проявление спонтанного и индуцированного полиэдроза в дочерних поколениях (Г], и Е2) непарного шелкопряда.

5.2. Влияние пола насекомых, выживших после инфекции, на уровень вертикальной передачи вируса поколению Ех.

Сублетальное действие вируса ядерного полиэдроза на непарного шелкопряда: Lymantria dispar L (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Затухания вспышек массового размножения насекомых часто связаны с эпизоотиями, которые вызывают бакулови-русы (Вейзер, 1972; Гулий, Голосова, 1975; Гулий, Рыбина, 1988; Myers, 1988; Berriman, 1995; Kukan, 1999, Milks, Myers, 2001). Однако проблема сохранения и распространения вирусов в популяции насекомых-хозяев является предметом дискуссии на протяжении последних трех десятилетий. Часть исследователей полагает, что вирусы могут длительное время сохраняться в среде обитания насекомых, а эпизоотии возникают на пике численности популяции, когда увеличивается вероятность контакта насекомых с вирусом (Tanada, Omi 1974; Podgwait et al., 1979; Thompson et al., 1981; Mohamed et al., 1982; Kaupp, 1983; Andreadis, 1987; Carruthers et al., 1988; Olofsson, 1987; Weseloh, Andreadis, 1996; Fuxa et al., 2001). Другие авторы (Гершензон, 1967; Fuxa et al., 1999, 2001; Boots et al., 2003) считают, что в популяциях насекомых присутствует латентный вирус, который активируется под действием различных стресс-факторов, v вызывая гибель насекомых. Основными аргументами, которые выдвигаются в поддержку этой гипотезы, являются отсутствие порога плотности насекомых для передачи вирусной инфекции, а также защищенность скрытого вируса от факторов внешней среды. Кроме того, с помощью методов молекулярной биологии показана интеграция бакуловирус-ного генома в клеточный геном насекомых-хозяев у большой вощинной моли Galleria mellonella L. (Кок и др., 1983), тутового шелкопряда Bombyx mori L. (Мирюта и m др., 1985; Yamao et al., 1999) и непарного шелкопряда Lymantria dispar L. (Ильиных и др., 1995). Поэтому многие авторы (Murray, Elkinton, 1989; Kukan et al., 1999; Myers et al., 2000; Milks, Myers, 2001; Ilynykh et al., 2004), в том числе и сторонники гипотезы длительного сохранения вируса в среде обитания насекомых, полагают, что в популяциях с низкой плотностью основным путем поддержания вирусной инфекции является вертикальная передача в виде скрытого вируса. Однако в настоящее время остается во многом неясным, то каким образом происходит формирование латентной вирусной инфекции у насекомых, и в течение какого периода скрытая вирусная инфекция может быть индуцирована под воздействием стресс-факторов.

Сублетальное инфицирование насекомых может сопровождаться различными отклонениями в развитии хозяина (Mardan, Harein, 1984; Patil et al., 1989; Sait et al., 1994 bGoulson, Cory 1995; Goldberg et al., 2002; Matthews et al., 2001; Milks, 1998; Shapiro, Robertson, 1987), что впоследствии может оказывать влияние на по-пуляционную динамику насекомого (Anderson, May, 1981; Boots, Norman, 2000), поскольку один из его эффектов заключается в снижении плодовитости имаго (Sait et al., 1994 bGoldberg et al., 2002). В настоящее время существуют лишь единичные исследования по изучению сублетального действия вирусов на развитие насекомых родительского и дочернего поколений в зависимости от дозы вируса и возраста, в котором инфицируют насекомых (Goulson, Cory 1995; Myers et al., 2000). В отношении непарного шелкопряда — вида, имеющего высокую биологическую и экономическую значимость — также имеются лишь спорадические исследования по изучению вертикальной передачи вируса ядерного полиэдроза (Shapiro, Robertson, 1987; Murray, Elkinton, 1989; Myers et al., 2000). В вышеназванных работах рассматривалось действие вируса только на родительское и дочернее (Fx) поколения непарного шелкопряда, не проводилась идентификация скрытой вирусной инфекции и не исследовалась способность вируса к индукции вирусной репликации.

Цель исследования. Изучить сублетальное действие вируса ядерного полиэдроза на родительское и дочерние поколения (Fi и F2) непарного шелкопряда.

Задачи исследования.

1.Изучить влияние возраста, в котором инфицировали гусениц непарного шелкопряда и дозы вируса ядерного полиэдроза на развитие родительского и дочерних (Fi и F2) поколений насекомого.

2.Идентифицировать скрытую вирусную инфекцию у непарного шелкопряда.

3.Исследовать проявление спонтанного и индуцированного полиэдроза в дочерних поколениях (Fi и F2) насекомого .

Научная новизна. Впервые изучено воздействие вируса на развитие родительского и дочерних поколений непарного шелкопряда в зависимости от возраста, в котором инфицировали гусениц и дозы вируса. Показано, что латентная вирусная инфекция может формироваться в результате воздействия бакуловируса на выживших после инфицирования насекомых, а также может быть индуцирована в дочерних поколениях под воздействием стресс-фактора. Установлено, что уровень вертикальной передачи вируса ядерного полиэдроза у непарного шелкопряда в значительной степени зависит от возраста, в котором инфицировали гусениц родительского поколения.

Практическая значимость. В ходе проведенных исследований установлено, что вирус ядерного полиэдроза оказывает значительное влияние на развитие родительского и дочерних поколений непарного шелкопряда. Кроме того, показано, что сублетальное инфицирование гусениц родительского поколения способствует переходу вируса в латентное состояние, что обеспечивает вертикальную передачу вируса между генерациями насекомого. Полученные результаты могут быть использованы в прогнозах динамики численности непарного шелкопряда и оптимизации метода контроля численности насекомого.

Апробация работы. Материалы диссертации были представлены на Российской научно-практической конференции (Иркутск, март 2002), на XII съезде Русского Энтомологического общества (Санкт-Петербург, август 2002), на Сибирской зоологической конференции (Новосибирск, сентябрь 2004), на 11-й Межрегиональной научной конференции паразитологов Сибири и Дальнего Востока (Новосибирск, сентябрь 2005). По материалам диссертации опубликовано 10 работ, 1 работа находится в печати.

Структура и объем диссертации

Диссертация изложена на 108 странице машинописного текстасостоит из введения, 5 глав, заключения, выводов и списка литературы. Работа иллюстрирована 13 рисунками и 4 таблицами.

ВЫВОДЫ.

1. Инфицирование гусениц родительского поколения вирусом ядерного полиэдроза приводит к снижению биологических показателей как у особей, выживших после заражения, так и у их потомков в течение двух генераций. У насекомых увеличивается время развития гусениц, снижается вес куколок и плодовитость имаго.

2. Выжившие особи родительского поколения передают скрытый вирус последующим генерациям непарного шелкопряда. В течение двух поколений (период наблюдения) скрытый вирус способен к активации и формированию острой вирусной инфекции.

3. Вертикальная передача вируса ядерного полиэдроза у непарного шелкопряда между поколениями Ех и осуществляется практически на одном уровне.

4. Проявление спонтанного и индуцированного полиэдроза в поколениях Бх и Е2 выше, если инфицирование гусениц родительского поколения вирусом осуществляется в старших возрастах.

• 5. Передача вируса поколениям и Г2 осуществляется независимо от половой принадлежности выживших после инфицирования насекомых. Количество насекомых, погибших от спонтанного и индуцированного полиэдроза, не различается среди потомков особей, один из родителей которых в поколении Б был инфицирован вирусом .

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Исследования, проведенные в данной работе, а также литературные данные свидетельствуют о том, что сублетальная вирусная инфекция может оказывать влияние на развитие насекомых. Установлено, что заражение гусениц 11-го и 1У-го возрастов непарного шелкопряда различными концентрациями ВЯП (106, 5×10ь, 105 полиэдров/мл) оказывает значительное влияние на развитие родительского и дочерних поколений насекомого. У выживших после инфицирования насекомых в родительском поколении наблюдалось увеличение длительности развития гусениц, снижение веса куколок самок и плодовитости имаго. В большей степени сублетальное действие на насекомых было выражено при инфицировании гусениц родительского поколения во 11-м возрасте.

Результаты, полученные в эксперименте по изучению отдаленного действия вирусной инфекции на развитие дочерних поколений (Б} и Г2) непарного шелкопряда показали, что инфицирование гусениц родительского поколения различными концентрациями ВЯП оказывает значительное влияние на развитие насекомых в поколениях Б]. и • Таким образом, полученные данные свидетельствуют о том, что отклонения в развитии у насекомых в дочерних поколениях являются следствием инфицирования гусениц родительского поколения вирусом ядерного полиэдроза.

В исследованиях по изучению вертикальной передачи вируса установлено, что латентная вирусная инфекция может формироваться в результате инфицирования насекомых вирусом, и может быть индуцирована воздействием стресс-фактора в дочерних поколениях. На проявление спонтанного и индуцированного полиэдроза в поколениях Ех и Е2 значительное влияние оказывал возраст, в котором инфицировали гусениц родительского поколения. Инокуляции гусениц родительского поколения вирусом в старших возрастах приводит к повышению уровня передачи вируса последующим поколениям. Также проведенные нами исследования показали, что передача вируса практически не зависит от пола инфицированных насекомых, что свидетельствует о способности передачи вируса как женскими, так и мужскими особями. Кроме того, установлено, что передача вируса у непарного шелкопряда между поколениями и Е2 осуществляется практически на одном уровне.

Таким образом, проведенные нами исследования показывают, что инфицирование гусениц родительского поколения вирусом ядерного полиэдроза вызывает снижение биологических показателей у родительского и дочерних поколений непарного шелкопряда. Кроме того, инфицирование насекомых сублетальными дозами ВЯП способствует переходу вируса в латентное состояние и обеспечивает вертикальную передачу вируса между генерациями насекомого.

Показать весь текст

Список литературы

  1. И. С. Атлас вреднейших насекомых леса. -М.: Лесная промышленность. 1973. — С. 128.
  2. И.П., Воробьев A.A. Статистические методы в микробиологических исследованиях. J1.: Медгиз. -1962. — 310 с.
  3. Ю.Н., Кравцов Б. А. Опыт морфометриче-ского анализа географических популяции непарного шелкопряда по совокупности признаков // Пространственно-временная структура лесных биогеоценозов. Новосибирск. — 1981. — С. 96−112.
  4. С. А. Биологическое подавление популяции шелкопряда-монашенки в Западной Сибири: опыт применения и анализ результатов // Сиб. экол. ж. 1995. — Вып. 2. — № 5. — С. 466−473.
  5. С.А. Вирозы насекомых. В кн. Патогены насекомых: структурные и функциональные аспекты. Под ред. Глупова В. В. М.: 2001 — С. 20−75
  6. О. В. Непарный шелкопряд и вирус ядерного полиэдроза: некоторые аспекты взаимодействия и эффективность биологического контроля // Научные труды Моск. гос. унив. леса. -1998. № 294. — Ч. 1. — С. 165−175.
  7. В.И. Массовые появления непарного шелкопряда в Европейской части СССР. М.: Наука. — 1984.
  8. А. Защита леса от насекомых-вредителей. -М.: Агропромиздат. 1990 — 288 с.
  9. Н.В. Биологическая защита растений. -М.: Агропромиздат. 1986. — 278 с.
  10. Я. Микробиологические методы борьбы с вредными насекомыми. М.: Колос. — 1972. — 640 с.
  11. Я., Бриггс Д. Д. Определение патогенов // Микроорганизмы в борьбе с вредными насекомыми и клещами (ред. М.С. Гиляров). М.: Колос. — 1976. — С.17−53.
  12. Г. А. Трофическая и синтетическая теории динамики численности насекомых // Зоол. журн. 1971. -Т. 50. — Вып. 3. -С. 361−372.
  13. H.H. Спонтанные и искусственные эпизоотии, вызываемые энтомопатогенными вирусами // Вирусы насекомых. Новосибирск. — 1974. — С. 93−113.
  14. H.H. Энтомопатогенные вирусы. Новосибирск: Наука. — 1976. — 286 с.
  15. H.H., Барановский В. И., Ларионов Г. В., Литвина Л. А. Вирусы изолированные от насекомых-вредителей сельского и лесного хозяйства в Сибири. В кн. Вирусы насекомых Новосибирск: Наука. — 1974. — С. 3−11.
  16. H.H., Нурлыбаева Р. Н. Изучение трансфазной и трансовариальной передачи вирусов ядерного поли-эдроза капустной совки и гранулеза капустной и репной белянок. В кн. Вирусы насекомых Новосибирск: Наука. -1974. — С. 82−88
  17. А.И. Биология непарного шелкопряда и меры борьбы с ним // Вестн. сел. хоз-ва. 1958. — № 4. — С. 101−107.
  18. А. И. Лесная энтомология. М.: Высшая школа. -1982. — 384 с.
  19. А.И. Патология леса. М.: Лес. Пром-ть. — 1978. — 270 с.
  20. С.М. Основные черты эпизотологии вирусных болезней насекомых. В кн.: Исследования по биологическому методу борьбы с вредителями сельского и лесного хозяйства. — Новосибирск. — 1964. — С. 36 — 39.
  21. С.М. Основы современной генетики. Киев: Наук, думка. — 1983. — С. 170−191.
  22. В.В., Бахвалов С. А. Механизмы резистентности насекомых при патогенезе // Успехи современной биологии 1998. — Вып. 4.- Т. 118. — С. 466−482.
  23. В. В. Вирусные инфекции пилильщиков массовых вредителей лесов в Среднем Приобье // Автореф. дис.. канд. биол. наук. — Новосибирск, 1967. — 20 с.
  24. В.В., Голосова М. А. Вирусы в защите леса от вредных насекомых. М.: Лес. Пром-ть. — 1975. — 166 с.
  25. В.В., Иванов Г. М., Штерншис М. В. Микробиологическая борьба с вредными организмами. М.: Колос. -1982. — 272с.
  26. В.В., Рыбина С. Ю. Вирусные болезни насекомых и их диагностика. Кишинёв: Штиинца. — 1988. — 125 с.
  27. Дж. Нехромосомная наследственность. М.: Мир. — 1966. — 288 с.
  28. Г. И., Тарасевич Л. М. Применения метода флюоресцирующих антител для обнаружения полиэдренного агента в яйцах (грене) тутового шелкопряда // Вопр. вирусологии. 1968. — № 1. — С. 89−93.
  29. И.Ф. Общая и молекулярная генетика. Новосибирск: Сиб. Унив. Изд-во. — 2003. — 479 с.
  30. А.И. «Непарный шелкопряд и меры борьбы с ним». М., Л.: Гослесбумиздат. — 1959. — 62 с.
  31. А.И. (ред.) Надзор, учет и прогноз массовых размножений хвое и листогрызущих насекомых в лесах СССР. — М.: 1965. — 142 с.
  32. А.И., Тропин И. В. Надзор, учет и прогноз массовых размножений хвое- и листогрызущих насекомых в лесах СССР. М.: Лесная промышленность — 1965. — 525с.
  33. А. В. Индуцируемость бакуловирусной инфекции в различные периоды онтогенеза непарного шелкопряда // Вопр. вирусологии. 2000. — № 1. — С. 42−45.
  34. A.B. Методика культивирования непарного шелкопряда в лабораторных условиях / / Биотехнология. -1997. № 9−10. — С.27−30.
  35. A.B. Оценка чувствительности шелкопряда-монашенки к вирусу ядерного полиэдроза // Лесное хозяйство. 1997. — № 3. — С.50−51.
  36. A.B. Шелкопряд-монашенка: действие бакуло-вирусной инфекции в онтогенезе // Автореф. дис. канд. наук. Новосибирск. — 1990.
  37. A.B., Бахвалов С. А., Моховиков С. М. Естественное вирусоносительство у массовых видов насекомых-фитофагов и его взаимосвязь с жизнеспособностью хозяев // Вопр. вирусологии. 1995.- № 4. — С. 186−187.
  38. A.B., Мамонтова С. А., Петров B.C. Изучение трансгенерационной передачи вируса ядерного полиэдроза непарного шелкопряда // Вопр. вирусологии. 1997. — № 2. — С. 88−90.
  39. A.B., Чуйкова Г. В., Идентификация природных изолятов вируса ядерного полиэдроза шелкопряда-монашенки (Lymantria monacha L.) // Вопр. вирусологии. 1989. — № 1. — С. 84−89.
  40. Инге-Вечтомов С. Г. Цитогены и прионы: цитоплазмо-тическая наследственность без ДНК? // Соросовский образовательный журн. 1996. — № 5. — С. 11−18.
  41. Ю. А., Карпов А. Е. Возникновение ядерного полиэдроза у листогрызущих садовых вредителей под влиянием некоторых удобрений // С.-хозяй. биол. 1974. -Т. IX. — С. 470 — 471.
  42. Ю.А., Карпов А. Е. Возникновение ядерного полиэдроза у листогрызущих садовых вредителей под влиянием некоторых минеральных и органических соединений // С-хозяй. биол. -1974. Т. IX. — С. 470−472.
  43. А.Е. Активация вируса ядерного полиэдроза как метод борьбы с боярышницей Aporia crategi L. (Lepidoptera: pierida) // Молекулярная биология. -1981. Вып. 29. — С. 81−87.
  44. А.Е. Латентность бакуловирусов и её практическое значение // Молекулярная биология. -197 9. -Вып.22. С. 74−83.
  45. И.М. Экология и физиология непарного шелкопряда. Киев: Наук, думка. — 1983. — 180 с.
  46. И. В. Фауна СССР. Насекомые чешуекрылые Волнянки. М.- Л.: Изд-во АН СССР. 1950. — 581 с.
  47. Кок И.П., Скуратовская И. Н., Строковская Л. И., Ми-рюта Н.Ю., Алексеенко Л. П. Обнаружение интеграции баку-ловирусного и клеточного геномов (ДНК) при латентной инфекции // Молекулярная биология. 1983. — Вып.34. -С. 67−69.
  48. Н.Г., Артомонов С. Д. Двукрылые насекомые- энтомофаги лесных шелкопрядов. Новосибирск: Наука.- 1994. 151 с.
  49. Н.Г., Богданова Д. А. Болезни и вредные насекомые лесных насаждений Новосибирского научного центра СО РАН // Сиб. Биол. Журн. 1992. — №. 4. — С. 53−55.
  50. Е.В. Насекомые-фитифаги лесных биогеоценозов в условиях антропогенного воздействия. Екатеринбург. — 1993. — 137 с.
  51. Е.В., Понамарев В. И., Федоренко С. И., Экология непарного шелкопряда в условиях антропогенного воздействия. Екатеринбург: УрО РАН. — 1998.
  52. Ю.П. Непарный шелкопряд (Ocneria dispar L.) в лесах Красноярского края // Защита лесов Сибири от насекомых вредителей. М.: Изд-во АН СССР. 1963. -С. 30−70.
  53. X., Мертинс Дж. Биологическое подавление вредных насекомых. М.: Мир. -1980. — 430 с.
  54. Г. Ф. Биометрия. М.: Высшая школа. -1990. -352 с.
  55. Г. В., Бахвалов С. А. К вопросу о трансова-риальной передаче вируса ядерного полиэдроза шелкопряда монашенки. // Известия Изв-я СО АН СССР, Изд-во Наука.- 1974. Вып. 15. — С. 60−65
  56. С.А. Возможность сохранения вируса ядерного полиэдроза непарного шелкопряда Lymantria dispar (Lepidoptera Lymantridae) в естественных экосистемах // Проблемы энтомологии в России. С.-П. — 1998. — Т. 1.- С.41−42.
  57. К., Уршпрунг Г. Основы современной генетики. М.: Мир. — 1973. — 270 с.
  58. Н.Ю., Строковская Л. И., Кок И.П., Скуратов-ская И. Н. Обнаружение ковалентно связанной с ДНК клетки генома бакуловируса у большой вощинной моли // Биополимеры и клетка. 1985. — Т. 1.- № 2. — С. 106−108.
  59. A.C., Васильева Т. Г. Непарный шелкопряд в Восточной Сибири // Непарный шелкопряд в Средней и Восточной Сибири. Новосибирск. 1982. — С. 5−19.
  60. Д.Ф. Определение яйцепродукции непарного шелкопряда по куколкам // Зоол. журн. 1951. — Т. 30. — Вып. 3. — С. 229−237 .
  61. A.A. Непарный шелкопряд // Защита и карантин растений. 2000. — № 9. — С. 60−61.
  62. Савотиков А. В, Сметник А. И. (ред.) Справочник по вредителям, болезням растений и сорнякам, имеющим карантинное значение для Российской Федерации. Нижний Новгород: Арника. — 1995. — 231 с.
  63. Э. Ж., Новикова JI. К., Никитина Н. И. Вирусы для защиты леса // Биологическая и интегрированная борьба с вредителями в лесных биоценозах. 198 9. -С.105−109.
  64. Г. И. Непарный шелкопряд в Челябинской области и борьба с ним // Непарный шелкопряд: итоги и перспективы исследований. Красноярск. 1988. — С. 2829.
  65. X. Биологический метод борьбы с вредными насекомыми и сорными растениями. М.: 1964. — 576 с.
  66. JI.M. Вирусы насекомых. М.: Наука. -1975. — 98 с.
  67. Тропин И. В, Ведерников Н. М., Крангауз Г. А. и др. Справочник по защите леса от вредителей и болезней. -М.: Лесная промышленность. 1980. — 376 с.
  68. И., Крит А. Биологические методы борьбы с вредителями / Пер. с нем. Заикиной И. Н. М.: Колос. -1984. — 352 с.
  69. О.А., Деветьярева С. В., Жимерикин В. Н., Бахвалов С. А. Индукция полиэдроза у различных популяций непарного шелкопряда при воздействии субоптимальных факторов // Энтомопатогенные микроорганизмы в лесных биоценозах. Красноярск. 1979. — С.91−97.
  70. Я.В. Очаговая цикличность массовых размножений непарного шелкопряда // Зоол. журн. 194 9. -Т.28. — вып.5. — С. 431−438.
  71. М.Г. Биология бакуловирусов и вирусов цито-плазмотического полиэдроза Кишинев: Штиинца. -1988. -233 с.
  72. Э. Патология насекомых. М.: Изд-во Ин. лит-ры. — 1952. — 838 с.
  73. М.В., Гулий В. В., Северина Н. И. Применения химических стрессоров в вирусологической борьбе с непарным шелкопрядом // Сибирский вестник с.-х. наук. -1977. № 2. — С. 46−48.
  74. Abot A.R., Moscardi F., Fuxa J.R., Sosa-Gomez D.R., Richter A.R. Development of resistance by An-ticarsia gemmatalis from Brasil and United States to a nuclear polyhedrosis virus under laboratory selection // Biol. Control. 1996. Vol. 7. — P. 126−130.
  75. Abul-Nasr S.E., Ammar E.D., Abul-ela S.M. Effects of nuclear polyhedrosis virus on various developmental stages of the cotton leafworm Spodoptera littoralis
  76. Boisd.) // J. Appl. Entomol. 1979. — Vol. 88. — P. 181−187 .
  77. Adams J.R. Introduction and classification of viruses of invertebrates // Atlas of invertebr. viruses (eds. J. R Adams and J.R. Bonami). Boca Raton.: CRC Press, 1991. — P. 1−8.
  78. Adams J.R., McClintock J.T. Baculoviridae. Nuclear polyhedrosis viruses. Part 1. Nuclear polyhedrosis viruses of insects. // Atlas of invert, viruses (eds. J.R. Adams and J.R. Bonami). Boca Raton.: CRC Press, 1991 — P. 87−204.
  79. Allen G.E., Ignoffo C. M. The nucleopolyhedrosis virus of Heliothis: Quantitative in vivo estimates of virulence // J. Invert. Pathol. 1969. — Vol. 13. — P. 378−381.
  80. Anderson R.M., May R.M. Infectious diseases and population cycles of forest insect // Science. 1981. — Vol. 210. — P. 658−661
  81. Andreadis T.G. Transmission. In «Eepizootiology of insect diseases» (eds. Fuxa J.R., Tanada Y.) // Wiley. New York. 1987. — P. 159−176.
  82. Aruga H. Induction of virus infection // Insect Pathology 1963. — Vol. 1. — P. 499−530.
  83. Bergold G.H. Insect viruses // Advances in virus research. 1953. — Vol. 1. — P. 91−139.
  84. Berryman A.A. What causes population cycles of forest Lepidopteral // Trends Ecol. Evol. 1995. Vol. 11. — P. 28−32.
  85. Bierd F.T. The effect of metamorphosis on the multiplication of an insect virus // Can. J. Zool. 1953. — Vol. 31. — P. 300−303.
  86. Bierd F.T. Transmission of some insects viruses with particular reference to ovarial transmission and its importance in the develoment of epizootics // J. Insect. Patol. 1961. — Vol. 3. — P. 352- 380.
  87. Biever K.D., Hostetter D.L. Field persistence of Trichoplusia ni Lepidoptera Noctuidae single embedded nuclear polyhedrosis virus on cabbage foliage // Environ. Entomol. 1985. — Vol. 14. — P. 579−581.
  88. Boots M., Greenman J., Ross D., Norman R., Hails R., Sait S. The population dynamical implication of covert infections in host-microparasite interaction // J. Ann. Ecol.- 2003. Vol. 72. — P. 1064−1072.
  89. Boots M., Norman R. Sublethal infection and the population dynamics of host-microparasite interactions // J. Ann. Ecol.- 2000. Vol. 69. — P. 512−524.
  90. Bouciaus D.G., Johnson D.W., Allen G.E. Effects of host age, virus dosage, and temperature on the infec-tivity of a nucleopolyhedrosis virus against velvetbean caterpillar, Anticarsia germatalis, larvae // Environ. Entomol. 1980 — Vol. 9. — P. 56−61.
  91. Briese D.T. Insect resistance to baculoviruses // The biology of the baculovirus (eds. Federici B.A., Granados R.R.). CRC Press. Boca Raton. FL. — 1987. -Vol. 11. — P. 237−263.
  92. Burand J.P., Kawanishi C.Y., Huang Y.S. Persistent baculovirus infections // The biology of baculovirus. -1986. Vol. 1. — P. 159−157.
  93. Burand J.P., Park E.J. Effect of nuclear polyhidrosis virus infection on development and pupation of gypsy moth larvae // J. Invert. Pathol. 1992. -Vol.60. — P. 171−175.
  94. Burden J.P., Griffiths C.M., Cory J.S., Smith P., Sait S.M. Vertical transmission of granulovirus infection in the Indian meal moth, Plodia interpunctella // Molecular Ecology. 2002. — Vol. 11. — P. 547−555.
  95. Burden J.P., Nixon C.P., Hodgkinson A.E., Posse R.D., Sait S.M. King L.A., Hails R.S. Covert infection as a mechanism for long-term persistence of baculoviruses // Ecology Letters. 2003. — Vol. 6. — P. 524 531.
  96. Carruthers W.R., Cory J.R., Entwistle P.F. Recovery of pine beauty moth (Panolis flammea) nuclear poly-hedrosis virus from pine foliage // J. Invert. Pathol. 1988. — Vol. 52. — P. 27−32.
  97. Cooper D.J. The role of predatory hymenoptera in disseminating a nuclear polyhedrosis virus of Heliotis punctiger // J. Austral. Entomol. Soc. 1981. — Vol. 20. — № 2. — P. 145−150.
  98. Cory J.S., Hails R.S., Sait S.M. Baculovirus ecology. // The Baculoviruda (ed. by Miller L.K.), Plenum. Press, N.-Y. 1997. — P. 301−339.
  99. David W.A.L. The granulosis virus of Pieris bras-sicae L and its relationship with its host // Adv. Virus Res. 1978. — Vol. 22. — P. 111−161.
  100. Doane C.C. Bioassay of nuclear-polyhedrosis virus against larval instars of the gypsy moth // J. Invert. Pathol. 1969. — Vol. 9. — P. 376−386.
  101. Ehler L.E. Natural enemies of cabbage looper on cotton in the San Joaquin. Valley, Hilgardia, 1977. -P. 45−73.
  102. Elam P., Vail P.V., Schreiber F. Infectivity of Autographa californicae nuclear polyhedrosis virus extracted with digestive fluids of Heliothis zea Estig-mene acrea and carbonate solution // J. Invert. Pathol. 1990. — Vol. 55. — P. 278−283.
  103. Elkinton J.S., Liebhold A.M. Population dynamics of gypsy moth in North America // Ann. Rev. Entomol. -1990. Vol. 35. — P. 571−96.
  104. Else Y., Truts W. Uber die polyederknkhei t von Dasychira pudipunda und deren ubertragung // Ans. Schadlihgskunde. 1966. — Vol. 39. — № 3. — P. 39−42.
  105. Engelhard E.K., Volkman L.E. Developmental resistance within fourth instar Trichoplusia ni orally inoculated with Autographa californica M nuclear polyhe-drosis virus // Virology. 1995. — Vol. 209. — P. 384 389.
  106. Evans H., Shapiro M. Viruses // Manual of techniques in insect pathology (ed. L. Lacey). San Diego. Toronto: Acad. Press, 1997. — P. 17−53.
  107. Evans H.F. Ecology and epizootiology of baculovi-ruses // The Biology of Baculoviruses (eds. R.R. Granados, B. A. Frederici). CRC Press. Boca Raton. — 1986. — V. 11. — P. 86−132.
  108. Evans H.F. Quantitative assessment of the relationship between dosage and response of the nuclear polyhedrosis virus of Mamestra brassicae // J. invert. Pathol. 1981. — Vol. 37. — P. 101−109.
  109. Evans H.F. The influence of larval maturation on responses of Mamestra brassicae L. (Lepidoptera: Noc-tuidae) to nuclear polyhedrosis virus infection // Arch. Virol. 1983. — Vol. 75. — P. 163−170.
  110. Forschler B.T., Young S.Y., Felton G.W. Diet and the susceptibility of Helicoverpa zea (Noctuidae: Lepidoptera) to a nuclear polyhedrosis virus // Environmental Entomology. 1992. — Vol. 21. — P. 1220−122.
  111. Fuxa J.R., Matter M.M., Abdel-rahman A., Micinski S., Richter A.R., Flexner J.L. Persistence and distribution of wild-type and recombinant nucleopolyhedrovi-ruses in soil // Microb. Ecol. 2001. — Vol.41. — P. 222−232.
  112. Fuxa J.R., Mitchell F.L., Richter A.R. Resistance of Spodoptera frugiperda (Lep: Noctuidae) to a nuclear polyhrdrosis virus in field and laboratory // Entomo-phaga. 1988. — Vol. 33. — P. 55−63.
  113. Fuxa J.R., Richter A. R Lack of vertical transmission in Anticarsia germmatalis (Lepidoptera: Noctuidae) nuclear polyhedrosis virus, a pathogen not indigenous to Louisiana // Environ. Entomol. 1993. — Vol. 22. -P. 425−431.
  114. Fuxa J.R., Richter A.R. Response of nuclear polyhedrosis virus-resistant Spodoptera frugiperda larvae to other pathogens and to chemical insecticides // J. Ivert. Pathol. 1998. — Vol. 55. — P. 272−277.
  115. Fuxa J.R., Richter A.R. Reversion of resistance by
  116. Spodoptera frugiperda to a nuclear polyhedrosis virus // J. Invert. Pathol. 1989. — Vol. 53. — P. 52−56.
  117. Fuxa J.R., Richter A.R. Selection for an increased rate of vertical transmission of Spodoptera frugiperda (Lepidoptera: Noctuidae) nuclear polyhedrosis virus // Environ. Entomol. 1991. — Vol. 20. — P. 603−609.
  118. Fuxa J.R., Richter A.R., Ameen A.O., Hammock B.D. Vertical transmission TnSNPV, TnCPV, AcMNPV, and possibly recombinant NPV in Trichoplusia ni // J. Invert. Patol. 2002. — Vol. 79. — P. 44−54.
  119. Fuxa J.R., Sun J.-Z., Weidner E. H., LaMotte L.R. Stressors and rearing diseases of Trichoplusia ni: evidence of vertical transmission of NPV and CPV // J. Invert. Pathol. 1999. — Vol. 74. — P. 149−155.
  120. Giese R.L., Schneider M.L. Cartographic comparisons of eurasian gypsy moth distribution (Lymantria dispar L.- Lepidoptera: Lymantriidae) // Enr. new. -1979. Vol. 90. — № 1. — P. 1−16.
  121. Gildow F.E., d' Arcy C.J. Cytopathology and experimental post range of Rhopalosiphum padi virus, a small isometric RNA virus infecting cereal grain aphids.// J. Invertebr. Pathol. 1990. — V. 55. — P. 245−257.
  122. Gninenco Y.I., Orlinskii A.D. Outbreaks of lymantria dispar in Russian forest during the 1990s // Bulletin OEPP/EPPO Bulletin. 2003. — Vol. — P. 325−329.
  123. Goldberg A.V., Romanowski V., Federici B.A., Sciocco de Cap A. Effect of the epap granulovirus on its host, Epinotia aporema (Lepidoptera: Tortricida) // J. Invert. Pathol. 2002 — Vol. 80. — P. 148−159.
  124. Goulson D., Cory J.S. Sublethal effects of bacu-lovirus in the Cabbge moth, Mamestra brassicae // Bio. Control. 1995. — Vol. 5. — P. 361−367.
  125. Granados R.R. Infectivity and mode of action of baculoviruses // Biotechnol. Bioeng. 1980. — V. 22. -P. 1377−1405.
  126. Hale W.G., Margham J. P. Collins Reference Dictionary: Biology Collins, Glasgow. 1988.
  127. Harrap K.A., Robertson J.S. A possible infection pathway in the development of a nuclear polyhedrosis virus // J. Gener. Virol. 1968. — V. 3. — P. 221−225.
  128. Hoover K., Grove M.J., Su S. Systemic component to intrastadial developmental resistance in Lymantria dispar to its baculovirus // Biological Control. 2002. Vol. — 25. — P. 92−98.
  129. Hoover K., Stout M.J., Alaniz S.A., Hammock B.D., Duffey S.S. Influence of induced plant defenses in cotton and tomato on efficacy of bacyloviruses // J. of Chemical Ecology. 1998 b. — Vol. 24. — P. 253−270.
  130. Hoover K., Washburn J.O., Volkman L.E. Midgut-based resistance of Heliothis viruscens to baculovirus infection mediated by phytochemicals in cotton // J. of Insect Physioloy. 2000. — Vol. 46 — P. 999−1007.
  131. Hoover K., Yee J.L., Schultz C.M., Hammock B.D., Rocke D.M., Duffey S.S. Effects of plant indentity and chemical constituents on efficacy of baculovirus against Heliothis virescens // J. of Chemical Ecology. 1998 c. — Vol. 24. — P. 221−250.
  132. Hughes D., Possee R.D., King L.A. Activation and detection of a latent baculovirus rambling Mamestra brassica nuclear polyhedrosis virus in M. brassicae insects // Virology. 1993. — Vol. 194. — P. 608 — 615.
  133. Jacques R.P. Occurrence and accumulation of virus of Trichoplusia ni in treated field plots // J. of Invert. Pathol. 1974. — Vol. 23. — P. 140−152.
  134. Jones K.A. Studies on the persistence of Spodop-tera littoralis nuclear polyhedrosis virus on cotton in Egypt // Dissert. Abstr. Intern. 1990. — Vol. 50. -P. 0434.
  135. Jones K.A., Moawad G., McKinley D.J., Grzywacz D. The effect of natural sunlight on Spodoptera litoralis nuclear polyhedrosis virus // Bio. Sci. Technol. 1993. Vol.3. — P. 189−194.
  136. Jurcovicova M. Activation of occult virus infections in larvae of Adoxphyes orana (Lepidoptera: Tor-tricidae) and Barattha brassicae (Lepidoptera: Noctui-dae) by foreign polyhedra // J. Invert. Pathol. 1979. — Vol. 34. — P. 213−223.
  137. Kaupp W.J. Persistence of Neodiprion sertifer (Hy~ menoptera: Diprionidae) nuclear polyhedrosis virus on Pinus contorta foliage // Can. Entomol. 1983. — Vol. 115. — № 8. — P. 869−873.
  138. Kaya H.K., Insect pathogens in natural and microbial control of forest defoliators, in Perspectives inforest entomology (Eds. J.F. Anderson and H.K. Kaya). -N.-Y.: Academic Press, 1976. 251 p.
  139. Keating S.T., Yendol W.G. Influence of selected host plants on gypsy moth (Lepidoptera: Lymantridae) larval mortality caused by a baculovirus // Environ. Entomol. 1987. — Vol. 16. — P. 459−460.
  140. Keating S.T., Yendol W.G., Schultz J.C. Relation ship beween susceptibility of gypsy moth larvae (Lepidoptera: Lymantridae) to a baculovirus and host plant foliage consitituents // Environ. Entomol. 1988. Vol. 17. — P. 952−950.
  141. Keddie B.A., Aponte G.W., Volkman L.E. The pathway of infection of Autographa californicae nuclear polyhe-drosis virus in an insect host // Am. Nat. 1989. -Vol. 153. — P. S61-S74.
  142. Kukan B. Vertical transmission of nucleopolyhedro-virus in insects // J. Invert. Pathol. 1999. — Vol. 74. — P. 103−111.
  143. Kukan B., Myers J.H. DNA hybridization assay for detection of nuclear polyhedrosis virus in tent caterpillars // J. Invert. Pathol. 1996. — Vol. 66. — P. 231−236.
  144. Mardan A.H., Harein P.K. Susceptibility of malathion-resistant Indian meal moth, Plodia Interpunc-tella (Hubner) (Lepidoptera: Pyralidae), to a nuclear polyhedrosis virus and a granulosis virus // Appl. Entomol. Zool. 1984. -Vol.13. — P.79−80.
  145. Markwick N., Graves S., Fairbairn F.M., Docherty L.C., Poulton J., Ward V.K. Infectivity of Epiphyas postvittana nucleopolyhedrovirus for New Zealand lea-frollers //Biological Control. 2002. — Vol. 25. — P. 207−241.
  146. Matthews H.J., Smith I., Edwards J. P. Lethal and sublethal effects of a granulovirus on the tomato moth1. canobia oleracea II J. Invert. Pathol. 2001. Vol. 80. — P. 73−80.
  147. McLeod P.J., Young S.Y., Yearion W.C. Application of a baculovirus of Pseudoplusia includens to soybean: efficacy and seasonal persistence II Environ. Entomol.- 1982. Vol. 11. — P. 412−416.
  148. Melamed-Madjar V., Raccah B., The transstadial and vertical transmission of a granulosis virus from the corn borer Sesamia nonagroides // J. Invert. Pathol. -1979. Vol. — P. 259−264.
  149. Merrit D.L. Factors influencing the susceptibility of the beet armyworm, Spodoptera exigua (Hubner,), to a nuclear polyhedrosis virus. University of California, Berkeley. 1977.
  150. Milks M.L. Burnstyn I., Myers J.H. Influence of larval age on the lethal and sublethal effects of nu-cleopolyhedrovirus of Trichoplusia ni in the cabbage looper II Bio. Control. 1998. — Vol. 12. — P. 119 126.
  151. Milks M.L., Myers J.H. The development of larval «resistance to a nucleopolydrovirus is not accompaniedby an increased virulence in virus II Evolutionary Ecology. 2001. — Vol. 14. — P. 645−664.
  152. Milks M.L., Myers J.H., Leptich M.K. Costs and stability of cabbage looper resistance to a nucleopoly-hedrovirus II Evolutionary Ecology. 2002. — Vol. 16.- P. 369−385.
  153. Mohamed M.A., Coppel H.C., Podgwaite J. D Persistent in soil and on foliage of nucleopolihedrosis virusof the European pine sawfly, Neodiprion sertifer (Hy-menortera: Diprionidae) // Environ. Entomol. 1982. -Vol. 11. — P. 1116−1118.
  154. Moscardi F. Assessment of the application of bacu-loviruses for control of Lepidoptera // Annual. Review of Entomology. 1999. — Vol. 44. — P. 257−289.
  155. Murray K., Elkinkton J.S. Environmental contamination of egg masses as a major component of transgeneration transmission of gypsy moth nuclear polyhedrosis virus (LdMNPV) // J. Invert. Pathol. 1989. — Vol. -53. — P. 324−334.
  156. Murray K., Elkinkton J.S. Transmission of nuclear polyhedrosis virus to gypsy moth (Lepidoptera: Lymantridae) eggs via contaminated substrates // Environ. Entomol. 1990. — Vol. 19. — P. 662 — 665.
  157. Murray K., Shields K., Burand J., Elkinton J. The effect of gypsy moth metamorphosis on the development of polyhedrosis virus infection // J. Invert. Pathol. -1991. Vol. — 57. — P. 352−361.
  158. Murray K.D. Nuclear polyhedrosis of the gypsy moth (Lymantria dispar L.): environmental and ecological factors influencing transmission and host susceptibility // Dissert. Abst. Intern. 1992. — Vol. 52. — P. 0633.
  159. Myers J.H. Can a general hypothesis explain population of forest Lepidoptera // Adv. Ecol. Res. 1988. — Vol. 18. — P. 179−284.
  160. Myers J.H., Malacar R., Cory J.S. Sublethal nu-cleopolyhedrovirus infection effects on female pupal weight, egg mass size, and vertical transmission in gypsy moth (Lepidoptera: Lymantriidae) // Envairon. En-tomol. 2000. — Vol. 29. — № 6. — P. 1268−1272.
  161. Myers J.H., Rotman L. Virulence and transmission of infectious diseases in humans insects: evolutionary and demographic patterns // Tree. 1995. — Vol. 10. -P. 194−198.
  162. Neeglund Y.F., Mathad S.B. Transmission of nuclear polyhedrosis virus in laboratory population o the army-worm Mythomna (Pseudaletia) separate // J. Invert. Pathol. 1978. — Vol. 31. — P. 143−147.
  163. O’Relly D.R., Miller L.K. A baculovirus blocs insects molting by producing ecdysyeroid UDP-glucosil transferase // Science. 1989. — Vol. 245. — P. 11 101 112 .
  164. Olofsson E. Environmental persistence of the nuclear polyhedrosis virus of the European pine saw flay in relation to epizootics in Swedish Scots pine forest // J. Invert. Pathol. 1988. — Vol. 52. — P. 119−129.
  165. Podgwaite J.D., Mazzone H.M. Latency of insect viruses // Adv. Virus Res. 1986. — Vol. 31. — P. 293 320 .
  166. Podgwaite J.D., Stone S.K., Zerillo R.T., Bruen R.B. Environmental persistence of the nucleopolyhedro-sis virus of gypsy moth, Lymantria dispar // Environ. Entomol. 1979. — Vol. 8. — № 3. — P. 528−336.
  167. Rothman L.D. Immediate and delayed effects of a viral pathogen and density on tent caterpillar performance // Ecology. 1997. — Vol. 78. — P. 1481−1493.
  168. Rothman L.D., Myers L.K. Debilitating effects of viral disease on host. Lepidoptera // J. Invert. Pathol.- 1996. Vol. 67. — P. 1−10.
  169. Rothman L.D., Myers L.K. Nuclear polyhedrosis virus treatment effect on reproductive potential of western tent caterpillar (Lepidoptera: Lasiocampidae) // Environ. Entomol. 1994. — Vol. — 23. — P. 864−869.
  170. Sait S.M., Begonn M., Thompson D.J. Long-term population dynamics of the Indian meal moth Plodia in-terpunctella // J. Anim. Ecol. 1994 b. — Vol. 63. -P. 861−870.
  171. Sait S.M., Begonn M., Thompson D.J. The effects of a sublethal baculovirus infection in the Indian meal moth Plodia interpunctella // J. Anim. Ecol. 1994 a.- Vol. 63. P. 541−550.
  172. Sait S.M., Gage M.J.G., Cook P.A. Effect of a fertility-reducing baculovirus on sperm numbers and sizesin the Indian meal moth, Plodia interpunctella // Functional Ecology. 1998. — Vol. 12. — P. 56−62.
  173. Santiago-Alvares C., Vargas-Osuna E. Differential mortality between male and female Spodoptera littoralis larvae infected baculovirus // J. Invert. Pathol. 1986. Vol. 47. — P. 374−376.
  174. Santiago-Alvares C., Vargas-Osuna E. Reduction of reproductive capacity of Spodoptera littoralis males by a nuclear polyhedrosis virus // J. Invert. Pathol. 1988. Vol. 52. — P. 142−146.
  175. Shapiro M., Robertson J.H. Yield and activity of gypsy moth (Lepidoptera: Lymantriidae) nucleopolyhedro-sis virus recovered from survivors of viral challenge // J. Econ. Entomol. 1987. — Vol. 80. — P. 901−905.
  176. Shapiro M., Robertson J.L. Natural variability of three geographic isolates of gypsy moth (Lepidoptera: Lymantriidae) nuclear polyhedrosis virus // J. Economic. Entomol. 1991. — Vol. 84. — P. 71−75.
  177. Shorey H.H. The biology of Trichoplusia ni (Lepidoptera: Noctuidae). II Factors affecting adult fecundity and longevity // Ann. Entomol. Soc. Amer. 1963.-Vol. 59. — 476−480.
  178. Smits P.H., Vlak J.M. Biological activity of Sholoptera exiqua nuclear polyhedrosis virus against S. exiqua larvae // J. Invert. Patol. 1988. — Vol. 51. P. 107−114.
  179. Stairs G.R. The effect of metamorphosis on nuclear polyhedrosis virus infection on certain Lepidop-tera // Can. J. Microbiol. 1965. — Vol. — 11. — P. 509−512.
  180. Tanada Y., Fuxa J.R. The pathogen population. In epizoothology of insect disease (eds Fuxa J.R., Tanada Y.) Wiley, New York 1987.
  181. Tanada Y., Hess R. Development of nuclear polyhedrosis virus in midgut cells and penetration of virus into the hemocoel of the armyworm Pseudaletia unipuncta II J. Invert. Pathol. 1976. — Vol. 28. — P. 67−76.
  182. Tanada Y., Hess R.T. The cytopathology of baculovirus infections in insects // Insect Ultrast. (eds. R.C. King and H. Akai). N.-Y: Plenum, 1984. — Vol. 2. — P. 517−550.
  183. Tanada Y., Omi E.M. Epizoothology of virus disease in three lepidopterous insect species of alfalfa. // Res. Popul. Ecol. 1974. — Vol. 16. — P. 59
  184. Tanada Y., Omi E.M. Persistence of viruses in field populations of alfalfa insects // J. Invert. Pathol. 1974. — Vol. 23. — P. 360−365.
  185. Teakle R.E., Jensen J.M., Giles J.E. Age-related susceptibility of Heliothis punctiger to a commercial formulation of nuclear polyhedrosis virus // J. Invert. Pathol. 1986. — Vol. 47. — P. 82−92.
  186. Teakle R.E., Jensen J.M., Giles J.E. Susceptibility of Heliothis armiger to a commercial nuclear polyhedrosis virus // J. Invert. Pathol. 1985. — Vol. 46. — P. 166−173.
  187. Thomson C.G., Scott D.W., Wickman B.E. Long-term persistence of the nuclear polyhedrosis virus of the Douglas-fir tussock moth Orgyiga pseudotsugata (Lepi-doptera: Lymantriidae) in forest soil // Environ. Ento-mol. 1981. — Vol. 10. — P. 254−255.
  188. Thorpe K. W., Cook S. P., Webb R. E., et al. Aerial application of the viral enhancer Blankophor BBH with reduced rates o. f gypsy moth (Lepidoptera: Lymantriidae) nucleopolyhedrovirus // Biological Control. -1999. Vol. 16. — P. 209−216.
  189. Vail P.V., Gough D. Effect of Cytoplasmic-polyhedrosis virus on adult cabbage loopers and their progeny // J. Invert. Pathol. 1'970. — Vol. 15. — P. 397−400.
  190. Vail P.V., Gough D. Susceptibility of the pupal stage of the cabbage loopor Trichoplusia ni to nuclearpolyhedrosis virus // J. Invert. Pathol. 1970. — Vol. 15. — P. 211−218.
  191. Vail P.V., Hall I. M., Susceptibility of pupa of the cabbage looper Trichoplusia ni, to nucleopolyhedro-sis virus // J. Invert. Pathol. 1969. — Vol. 14. — P. 227−236.
  192. Volkman L.E. Nucleopolyhedrosisvirus interactions with their insect host // Adv. Virus Res. 1997. Vol. 48. — P. 343−348.
  193. Washburn J.O., Kirkpatrick B.E., Volkman L.E. Insect protection against viruses // Nature. 1996. Vol. 383. — P. 767.
  194. Washburn J.O., Kirpatrick B.A., Volkman L.E. Comparative pathogenesis of Autographa californica M Nuclear Polyhedrosis virus in larvae of Trihoplusia ni and Heliothis virescens // Virology. 1995. — Vol. 209. — P. 561−568.
  195. Webb R. E., Thorpe K. W., Podgwaite J. D., et al. Efficacy of Gypchek against the gypsy moth (Lepidop-t era: Lymantriidae) and residual effects in the year following treatment // J. Entomol. 1999. — Vol. 34. -№ 4. — P. 404−414.
  196. Weseloh R.M., Andreadis T.G. Laboratory assessment of forest microhabitat substrates as sources of the gypsy moth nuclear polyhedrosis virus // J. Invert. Pathol. 1996. — Vol. 48. — P. 27−33.
  197. Wilson M. The family and groups of Baculoviridae. // (ed. Francki R.I.R., Frauqent C.M., Knudson D.L., Brown F.) Classification and nomenclature of viruses. Fifth report of the international Committee on Taxonomy of Viruses. 1991. — P. 117−123.
  198. Wood H.A., Burand J. P. Persistent and productive infections with the Hz-1 baculovirus // Curr. Top. Microbiol. Immunol. 1986. — Vol. 131. — P. 119−134.
  199. Wood H.A., Smith I.R.L., Crook N.E. Dolatent bacu-loviruses exist and what is their impotance? // Proc. 18th Int Cong. Entomol. Vancouver. — 1988. — P. 251.
  200. Woods S.A., Elkinton j.S. Bimodal patterns of mortality from nuclear polyhedrosis virus in gypsy moth (Lymantria dispar) population // J. Invert. Pathol. 1987. Vol. 50. — P. 151−157.
  201. Young O.P., Ham J. Compatibility of two fall army-worm patogens with the predaceous beetle Calosoma sayi (Coleoptera: Carabidae) // J. Entomol. Sci. 1985. -Vol.20. — № 2. — P. 212−218.
  202. Young S.Y. Effect of nuclear poluhedrosis virus in -larvae on post larval stage and dissemination of adults // J. Invert. Pathol. 1990. — Vol. 55. — P. 69−75.
  203. Young S.Y., Yang J. G., Felton G.W. Inhibitory effects dietary tannins on the infectivity of a nuclearpolyhedrosis virus to Helicoverpa zea (Noctuida: Lepi-doptera) // Biological Control. 1995. — Vol. 5. — P. 145−150.
  204. Young S.Y., Yearian W.C. Nuclear polyhedrosis virus infection Pseudoplusia includens (Lep: Noctuidae) larvae: Effect on post larval stages and transmission // Entomophaga. 1982. — Vol. 27. — P. 61−66.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!