Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Совершенствование методов специфической профилактики и лабораторной диагностики гриппа лошадей

Диссертация: Совершенствование методов специфической профилактики и лабораторной диагностики гриппа лошадей
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Личный вклад соискателя. Экспериментальные исследования, анализ и обобщение результатов выполнены автором самостоятельно при участии научного руководителя доктора ветеринарных наук, профессора Юрова К. П. Электронная микроскопия вируса гриппа лошадей проводилась совместно с к.б.н. Надточей Г. А., исследования с использованием молекулярных методов (ПЦР и генотипирование вируса гриппа) выполнены… Читать ещё >

Содержание

  • Список сокращений
  • 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Краткая историческая справка
    • 1. 2. Морфология и химический состав вируса гриппа
    • 1. 3. Антигенная структура вируса гриппа
    • 1. 4. Патогенез гриппозной инфекции
    • 1. 5. Эпизоотология гриппа лошадей
    • 1. 6. Лабораторная диагностика гриппа лошадей
    • 1. 7. Иммунитет и специфическая профилактика
  • 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 2. 1. Материалы, экспериментальные модели и условия экспериментов
    • 2. 2. Методы исследований
  • 3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ 56 3.1 Изучение иммунобиологических свойств эпизоотического 56 штамма А/лошадь 2/Битца/07 ВГЛ
    • 3. 1. 1. Определение видовой принадлежности штамма ВГЛ «А/лошадь 56 2/Битца/07»
    • 3. 1. 2. Генотипирование и филогенетический анализ штамма 58 «А/лошадь 2/Битца/07» ВГЛ
    • 3. 1. 3. Патогенностъ эпизоотического штамма 64 «А/лошадь 2/Битца/07» ВГЛ
    • 3. 1. 4. Определение условий для максимального накопления 66 штамма вируса «А/лошадь 2/Битца/07»
    • 3. 1. 5. Стабильность биологических свойств штамма 67 «А/лошадь 2/Битца/07» ВГЛ при хранении
    • 3. 1. б Иммуногенная активность инактивированных 68 штаммов вируса гриппа лошадей второго подтипа
    • 3. 2. Серологический мониторинг вируса гриппа лошадей
    • 3. 2. 1. Анализ распространённости вируса гриппа лошадей
    • 3. 2. 2. Циркуляция вируса гриппа лошадей НЗМ8 в популяции собак
    • 3. 3. Совершенствование инактивированной 74 поливалентной вакцины против гриппа лошадей
    • 3. 3. 1. Определение иммуногенной активности усовершенствованной 74 инактивированной поливалентной вакцины против гриппа лошадей на основе эпизоотического штамма «А/лошадъ 2/Битца/07»
    • 3. 3. 2. Динамика формирования поствакциналъного 76 иммунитета у лошадей на усовершенствованную вакцину инактивированную поливалентную против гриппа лошадей
    • 3. 4. Разработка тест системы ИФА для серологической 79 диагностики гриппа лошадей
    • 3. 4. 1. Очистка и концентрирование вируса гриппа лошадей
    • 3. 4. 2. Получение специфической к ВГЛ сыворотки крови лошадей
    • 3. 4. 3. Получение конъюгатов антител с пероксидазой хрена
    • 3. 4. 4. Отработка оптимальных условий постановки 82 иммуноферментного анализа
    • 3. 4. 5. Определение позитивного и негативного порогов для 84 разграничения специфической и неспецифической реакции
    • 3. 4. 6. Сравнительная оценка результатов ИФА и РТГА при 86 диагностике гриппа лошадей
  • 4. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ
  • ВЫВОДЫ
  • ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

Совершенствование методов специфической профилактики и лабораторной диагностики гриппа лошадей (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность проблемы. Грипп — острое высококонтагиозное респираторное вирусное заболевание человека и животных, характеризующееся поражением слизистых оболочек верхних дыхательных путей, лихорадкой, симптомами общей интоксикации, нарушением деятельности сердечно-сосудистой и нервной систем [12,27,36]. Возбудителем гриппа является РНК-содержащий, оболочечный вирус, принадлежащий к роду ¡-пйиепгаукив, к семейству Ог1:1ютухоутс1ае [4].

Вирусы гриппа являются причиной регулярных инфекции, от единичных случаев до обширных эпизоотий и панзоотий, как среди людей, так и среди животных [12,43,167]. Частые эпизоотии гриппа лошадей обусловлены биологическими особенностями возбудителя данного заболевания, одной из которых является изменчивость поверхностных гликопротеинов возбудителя — гемагглютинина (НА) и нейраминидазы (ЫА). В настоящее время различают два типа антигенной изменчивости — частичная и полная. В результате частичного изменения антигенной структуры вируса могут появляться новые штаммы возбудителя гриппа. При полной антигенной изменчивости, вспышки гриппозной инфекции вызываются не только новыми штаммами, но и подтипами вируса, вследствие чего иммунитет, образующийся после переболевания, не защищает от заражения другим типом [36,73].

Важной особенностью вируса гриппа является способность подавлять защитные функции самого организма — клеточный и местный иммунитет слизистых оболочек верхних дыхательных путей (ВДХ). В результате при заболевании происходит нарушение целостности эпителия ВДХ, что способствуют размножению бактериальной микрофлоры, приводящему к различным осложнениям, проявляющимся патологическими процессами в лёгких и сердце [38].

Гриппозная инфекция лошадей по симптоматике, причинам возникновения болезни методам лечения и профилактике мало отличается от гриппозной инфекции людей. Это связано с тем, что вирус гриппа человека и вирус гриппа лошадей относятся к типу А. Существует 3 типа вируса гриппа: А — поражает людей, млекопитающих и птиц, В — поражают только человека, С — поражают людей и свиней [4].

Грипп лошадей вызывают два подтипа возбудителя: А/лошадь 2/(НЗЫ8), чаще всего поражающий лошадей, и А/лошадь 1/(Н7Ы7), который в настоящее полностью элиминировал в популяции лошадей, либо эта инфекция протекает субклинически [36].

В настоящее время грипп лошадей периодически регистрируют в большинстве стран мира. При этом отмечают существенный ущерб коневодству вследствие снижения племенной и спортивной ценности переболевших лошадей, затрат на лечение, карантинных мероприятий, срыва планов спортивных соревнований и других экономически значимых причин.

Важной особенностью гриппозной инфекции последних лет является её распространение среди вакцинированного поголовья лошадей. При этом отмечают несколько стёртое, атипичное течение гриппа, что затрудняет первичную диагностику гриппа у лошадей (на основании клинических признаков) [78,58,123].

Заболевание иммунизированных против гриппа лошадей обусловлено появлением новых эпизоотических штаммов возбудителя, против которых существующие на сегодня коммерческие вакцины не способны обеспечить напряжённого иммунитета.

Для профилактики гриппа лошадей в РФ используют инактивированные вакцины, включающие штаммы вируса 1-го и 2-го подтипов, эффективность которых зависит от состава производственных штаммов, которые по их антигенной структуре должны быть максимально близки к полевым, эпизоотическим штаммам возбудителя [34].

В борьбе с гриппом лошадей особое место занимает своевременная диагностика заболевания, основанная на клинических, серологических и вирусологических исследованиях. Согласно рекомендациям экспертной группы МЭБ по гриппу лошадей (OIE Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial animals, 2010) наиболее эффективным методом диагностики гриппозной инфекции лошадей являются реакция торможения гемагглютинации (РТГА) и одиночный радиальный гемолиз (ОРГ). Несмотря на специфичность и воспроизводимость РТГА и ОРГ данные методы имеют определённые ограничения, связанные с подавлением агглютинации эритроцитов неспецифическими ингибиторами, что имитирует ложноположительные результаты РТГАвариабельностью эритроцитовколебаниями активности комплементавозможными погрешностями при визуальном учёте реакции и т. д. [12].

Применение метода иммуноферментного анализа (ИФА) позволяет повысить достоверность результатов, обеспечивает большую информативность анализа и возможность его автоматизации при массовых исследованиях.

Целью нашей работы являлось совершенствование инактивированной поливалентной вакцины против гриппа лошадей путём включения в её состав нового эпизоотического штамма возбудителя и разработка тест — системы ИФА для диагностики гриппа лошадей.

Для достижения поставленной цели были определены следующие задачи:

1. Изучить иммунобиологические свойства вновь изолированного вируса гриппа лошадей (НЗИБ) на модельных (лабораторных) животных и развивающихся куриных эмбрионах.

2. Провести сравнительное изучение сегмента ИР генома ¦ вновь выделенного штамма («А/лошадь 2/Битца/07») ВГЛ методом секвенирования к ДНК, определить его положение на «филогенетическом древе» гриппозных вирусов (НЗШ).

3. Обосновать и подготовить рекомендации для использования нового эпизоотического штамма вируса гриппа лошадей (НЗМ8) в качестве производственного.

4. Изготовить в условиях биофабрики опытно-промышленную серию инактивированной поливалентной вакцины на основе эпизоотического штамма «А/лошадь 2/Битца/07» и определить её эффективность в соответствии с требованиями нормативно-технической документации.

5. Разработать тест-систему ИФА для выявления антител к вирусу гриппа лошадей.

Научная новизна. Типирован и охарактеризован новый эпизоотический штамм вируса гриппа лошадей второго подтипа (НЗМ8) «А/лошадь 2/Битца/07».

Определена нуклеотидная последовательность фрагмента 5' сегмента — гена нуклеопротеина. Сравнительным анализом нуклеотидной последовательности сегмента ИР показано наибольшее сходство штамма «А/лошадь 2/Битца/07» с вирусами «А^шпе/Мог^оНа/1/2008 (99,6%), «А/еяшпе/А1та1у/26/2007» и «А/еяише/Стап8и/7/2008» (99,2%), принадлежащими к американскому генотипу линии Флорида сублинии 2, что 8 подтверждает принадлежность российского штамма «А/equine 2/Bitsa/07» ВГЛ к американскому генотипу линии ВГЛ.

Методами иммунологического мониторинга показано, что вирус доминировал в популяции лошадей в период эпизоотии гриппа 2007 г. на территории нескольких регионов России, а позже в Монголии.

Практическая значимость работы. На основании результатов исследований, представленных в диссертационной работе, разработана, изготовлена, испытана и предложена для внедрения в ветеринарную практику инактивированная поливалентная вакцина против гриппа лошадей, обладающая высокой иммуногенностью и соответствующая требованиям МЭБ (OIE Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial animals, 2010). Для этого проведена комиссионная апробация нового штамма вируса гриппа лошадей H3N8 — 2-го подтипа «А/лошадь 2/Битца/07, по результатам которой Методической комиссией ФГУ ВГНКИ принято решение о целесообразности использования штамма «А/лошадь 2/Битца/07» в составе инактивированной поливалентной вакцины против гриппа лошадей.

Штамм «А/лошадь 2/Битца/07» вируса гриппа лошадей паспортизирован и депонирован во Всероссийской государственной коллекции штаммов микроорганизмов, используемых в ветеринарии и животноводстве (ФГУ «ВГНКИ»).

Разработана тест-система ИФА для выявления антител к вирусу гриппа лошадей (H3N8). Оптимизированы условия её использования при исследовании сывороток крови животных. Установлено, что специфичность и воспроизводимость диагностической тест-системы коррелируют с результатами, полученными методом реакции торможения гемагглютинации, а высокая чувствительность позволяет выявить специфические антитела в более высоких титрах.

Основные положения, выносимые на защиту. Полученные результаты исследований позволяют вынести на защиту следующие основные положения:

• Результаты идентификации, генотипирования и изучения иммунобиологических свойств эпизоотического штамма «А/лошадь 2/Битца/07» вируса гриппа лошадей, позволяющие использовать его в качестве производственного штамма при изготовлении вакцины.

• Данные исследований по совершенствованию инактивированной поливалентной вакцины против гриппа лошадей, обеспечивающие в соответствии с рекомендациями МЭБ, при её применении высокую иммуногенность против штаммов вируса, находящихся в активной циркуляции.

• Результаты разработки и применения тест-системы ИФА, позволяющие повысить достоверность иммунологического мониторинга на грипп лошадей второго подтипа (НЗЫ8).

Апробация работы. Материалы диссертации доложены и обсуждены на отчётных заседаниях Учёного совета ГНУ ВИЭВ (2008;2010 гг.), на 10-м Конгрессе Всемирной Конской Ветеринарной Ассоциации (Москва, 2008 г.), на международной научно-практической конференции, посвященной 40-летию ВНИИТИБП «Научные основы производства ветеринарных биологических препаратов» — Москва, ВНИТИБП, 9−10 декабря 2009 г. Основные положения, выводы и практические предложения обсуждены и одобрены на межлабораторном совещании сотрудников ГНУ ВИЭВ, 14 октября 2010 г., а также на научно-техническом совете ФГУП «Курская биофабрика».

Личный вклад соискателя. Экспериментальные исследования, анализ и обобщение результатов выполнены автором самостоятельно при участии научного руководителя доктора ветеринарных наук, профессора Юрова К. П. Электронная микроскопия вируса гриппа лошадей проводилась совместно с к.б.н. Надточей Г. А., исследования с использованием молекулярных методов (ПЦР и генотипирование вируса гриппа) выполнены совместно с к.б.н Алексеенковой C.B., к.б.н. Юровым Г. К., исследования по оптимизации иммуноферментного анализа для диагностики гриппа лошадей выполнены совместно с к.б.н. Юровым Г. К. и Сайдаровой М.М.

Публикации результатов исследований. По материалам диссертации опубликовано 5 научных работ в периодических изданиях, материалах научных конференций и международного конгресса.

Объём и структура диссертации. Диссертация изложена на 146 страницах машинописного текста, включает введение, обзор литературы, материалы и методы, результаты собственных исследований, обсуждение результатов исследований, выводы, список литературы, приложение. Диссертация иллюстрирована 9 таблицами и 12 рисунками.

Список литературы

включает 180 источников, в том числе 142 работы зарубежных авторов.

выводы.

1. Определены условия культивирования вируса, обеспечивающие его репродукцию с сохранением инфекционной и гемагглютинирующей л активности не менее 7,0 ЭИД50/СМ и 8,0 log2 соответственно.

2. Расшифрована нуклеотидная последовательность фрагмента генов нуклеопротеина и гемагглютинина. Сравнительный анализ нуклеотидных последовательностей сегментов ЫР и НА выявил наибольшее сходство штамма «А/лошадь 2/Битца/07» с вирусами «А/ецшпе/Мо1^оНа/1/2008.

99, 6%), «А/еяшпе/А1та1у/26/2007» и «А/еяшпе/Оап8и/7/2008» (99,2%), принадлежащими к американскому генотипу линии Флорида сублинии 2.

3. Изучены иммунобиологические свойства эпизоотического штамма гриппа лошадей 2-го подтипа. Эпизоотический штамм «А/лошадь 2/Битца/07» биологически активен и стабилен.

4. Иммунологическими исследованиями показано, что вспышки гриппозной инфекции последних лет (2007;2008 гг.) на территории Башкирии, Ростовской и Московской областей, а также на территории Монголии были вызваны вирусом гриппа лошадей второго подтипа (НЗШ) американского генотипа.

5. Эпизоотический штамм «А/лошадь 2/Битца/07», введенный в состав производственных штаммов, используемых при изготовлении инактивированной поливалентной вакцины против гриппа лошадей в соответствии с рекомендациями МЭБ обеспечивает высокий уровень гуморального иммунного ответа, как у лабораторных, так и естественно восприимчивых животных (лошадей).

6. Разработанная иммуноферментная тест-система для выявления специфических антител к вирусу гриппа второго типа (НЗШ) в сыворотках крови лошадей, обеспечивает получение достоверных результатов при их тестировании в разведении 1:100. Анализ сывороток лошадей с использованием разработанной диагностической системы ИФА позволил выявить на 4,6% больше положительных проб в сравнении с титрованием в РТГА.

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ.

На основании проведенных исследований разработаны и предложены для практического использования:

— Усовершенствованная инактивированная поливалентная вакцина против гриппа лошадей на основе штаммов вируса гриппа лошадей: ШШ, НЗШ (европейская линия) и НЗШ (американская линия).

— Тест-система для выявления антител к вирусу гриппа лошадей второго подтипа (НЗИ8) методом иммуноферментного анализа.

Материалы диссертации — использованы при разработке нормативно — технической документации на производство промышленных серий инактивированной поливалентной вакцины против гриппа лошадей:

— «Инструкция по применению вакцины против гриппа лошадей инактивированной поливалентной)», утверждённой Россельхознадзором, 2 июля 2010 г.

— «Методическое наставление по ретроспективной диагностике гриппа лошадей методом иммуноферментного анализа», утвержденное директором ГНУ ВИЭВ, 22 октября 2010 г.

— Стандарт ФГУП «Курская биофабрика» СТО 482 909−048−2010 Метод изготовления и контроля посевных материалов вакцинных штаммов А/лошадь 1/Прага/56, А/лошадь 1/Кембридж/63, А/лошадь 2/Битца/07, А/лошадь 2/Франция/98 вируса гриппа лошадей Технические условия, утвержденный генеральным директором ФГУП «Курская биофабрика» 29 октября 2010 г.

Показать весь текст

Список литературы

  1. , И. И. Мир животных: Насекомые. Пауки. Домашние животные/ И. И. Акимушкин. М.: Мысль, 1990. 462 с.
  2. , П.И. Ветеринарная вирусология: Учебное пособие / П. И. Барышников. Барнаул: Изд-во АГАУ, 2006. 113 с.
  3. , Р. В. Ветеринарная вирусология : учебное пособие для высших учебных заведений / Р. В. Белоусова, Э. А. Преображенская, И. В. Третьякова. -М.: КолосС, 2007, 448 стр.
  4. , Б.Ф. Инфекционные болезни животных: Учеб. Пособие / Б. Ф. Бессарабов, Е. С. Воронин и др.- Под ред. А. А. Сидорчука. — М.: КолосС, 2007. —671 с.
  5. , Ю.Ф. Инфекционные болезни животных:/ Ю. Ф. Борисович, Л.В. Кириллов- Под ред. Д. Ф. Осидзе. М.: Агропромиздат, 1987.-288 с.
  6. , Н.Л. Дифференцированное включение геномных сегментов в состав реассортантов вируса гриппа, А при смешанной инфекции / Н. Л. Варич, А. К. Гительман, A.A. Шилов и др. // Вопросы вирусологии. -2009. -№ 1.- С. 7−11.-
  7. Вирусные болезни животных / В. Н. Сюрин, А. Я. Самуйленко, Б. Н. Соловьев, Н. В. Фомина. М.:ВНИТИБП, 1998. — 927с.
  8. , В. Г. Справочник ветеринарного врача / В. Г. Гавриша, И. И. Калюжный. Ростов-на-Дону: Феникс, 1997. 608 с.
  9. Генетика вирусов гриппа: Пер. с анг./ Под ред. П. Пейлиза, Д. У. Кингсбери. М.: Медицина, 1986, 336 с.
  10. , Р.Г. Ветеринарная вирусология: Учебник для студентов вузов/ Р. Г. Госманов, Н. М. Колычев // Изд. 2-е, перераб., доп. издательство КолосС. 2006 312с.
  11. , Л.И. Защитные механизмы организма. Иммунодиагностика и иммунопрофилактика инфекционных болезней животных / Л. И. Ефанова Е.Т. Сайдулдин- Под ред. А. Г. Шахова. Воронеж: ВГАУ, 2004. — 391 с.
  12. Инфекционная патология животных: В 2 т./ Под ред. А .Я. Самуйленко, Б. В. Соловьева, Е. А. Непоклонова, Е. А. Воронина. — М.: ИКЦ «Академкнига», 2006. Т. 1. 1911с.
  13. Инфекционная патология животных: В 2 т./ Под ред. А .Я. Самуйленко, Б. В. Соловьева, Е. А. Непоклонова, Е. А. Воронина. — М.: ИКЦ «Академкнига», 2006. Т.2. — 1911с.
  14. Инфекционные болезни и эпидемиология: Учебник / В. И. Покровский, С. Г. Пак, Н. И. Брико, Б. К. Данилкин. 2-е изд. — М.: ГЭОТАР-Медиа, 2007. -816 е.: ил.
  15. , Н.В. Межвидовая трансмиссия вирусов гриппа, А и проблема пандемий / Н. В. Каверин, Ю. А Смирнов // Вопросы вирусологии. -2003. -№ 3, С. 4−10.
  16. , Г. Н. Грипп / Под ред. Г. Н. Карпухина. СПб.: Гиппократ, 2001. 380с.
  17. , О.И. Вопросы общей вирусологии: Учебное пособие / Под ред. О. И. Киселёва и И. Н. Жилинской. СПб МА им. И. И. Мечникова. 2007.374с.
  18. , А.И. Медицинская микробиология, иммунология и вирусология : учебник мед. вузов / А. И. Коротяев, С. А. Бабичев. СПб.: СпецЛит, 2008.-4-е изд., испр. И доп.- 767 е.: ил.
  19. , А.Н. Бактериальные и вирусные болезни молодняка сельскохозяйственных животных/ А. Н. Куриленко, В. Л. Крупальник, Н. В. Пименов. М.: КолосС, 2005. -296с., 241−245
  20. , Д. Антитела. Методы: Кн.1, Пер. с англ./ Под ред. Д. Кэтти. -М.: Мир, 1991.-287 е., ил.
  21. , Д. Антитела. Методы. Кн. 2: Пер. с англ./ Под ред. Д. Кэтти. -М.: Мир, 1991.-384 е., ил.
  22. , О.М. «Грипп XXI век»/ О. М. Литвинова и др// Тезисы научн. конф. — С.-Петербург 28 сент. — 2 окт. 1997 г.
  23. , Д.К. Ортомиксовирусы / Медицинская вирусология / Под ред. Д. К. Львова и Н. В. Каверина. М.: Медицинское информационное агентство. 2008. С.176−183.
  24. , В. П. Грипп: Пособие для высших учебных заведений / В. П. Малый, М. Г. Романцов, Т. В. Сологуб. — Санкт-Петербург—Харьков, 2007.— 108с.
  25. , В.П. Эволюция рецепторной специфичности гемагглютинина вирусов гриппа при передаче от уток к свиньям и людям/ В.П. Маринина//Вопросы Вирусологии. 2004.- 49. С. 325−30.
  26. , Н.В., Основы иммунопрофилактики и иммунотерапии инфекционных болезней: Учебное пособие /Н.В. Медуницин В. И. Покровский. М.: ГЭОТАР-Медиа. 2005. 526 с.
  27. Методы лабораторной диагностики вирусных болезней животных: В. Н. Сюрин, Р. В. Белоусова, Б. В. Соловьев, Н. В. Фомина. — М.: Агропромиздат, 1986.-351 с.
  28. Нго, Т. Иммуноферментный анализ: Пер. с англ./Под ред. Т. Нго, Г. Ленхоффа М.: Мир, 1988. — 446 с.
  29. .Г. Классификация и номенклатура вирусов позвоночных / Б. Г. Орлянкин, Е. А. Непоклонов, Т. Н. Алипер // Ветеринария. 2001. № 10. С. 15−20.
  30. , В.И. Грипп птиц: происхождение инфекционных биокатастроф / Под редакцией В. И. Покровского. — Санкт-Петербург: «Росток», 2005. С.123−126.
  31. Теория и практика иммуноферментного анализа./А.М. Егоров, А. П. Осипов, Б. Б. Дзантиев, Е.М. Гаврилова-М.: Высш. шк., 1991., 288 е.: ил.
  32. , М. Новые методы иммуноанализа/ М. Тертон, Д. Р. Бангхем, К. А. Колкотт. Пер. с англ. М.: Мир, 1991. — 280с.
  33. , В.П. Ветеринария. Большой энциклопедический словарь. /Под редакцией В. П. Шишкова М.: НИ Большая Российская энциклопедия, 1998. 640 с.
  34. , К.П. Инфекционные болезни лошадей / К. П. Юров. -М.2000:360 с.
  35. , К.П. Профилактика гриппа лошадей / К. П. Юров //Материалы международной научно-практической конференции посвященной 110 летию ВИЭВ. — Москва, октябрь 2008. — С. 303−307.
  36. , К.П. Грипп лошадей /К.П. Юров // Ветеринария. 2009.
  37. , К.П. Инфекционные и паразитарные болезни лошадей / К. П. Юров, В. Т. Заблоцкий, Н. Е. Косминков. М.:3оомедлит, 2010.256 с.
  38. Abd El-Rahim, IH, Hussein M. An epizootic of equine influenza in Upper Egypt in 2000. Rev Sci Tech. // 2004 Dec-23(3):921−30.
  39. Baguelin, M, Newton JR, Demiris N, Daly J, Mumford JA, Wood JL. Control of equine influenza: scenario testing using a realistic metapopulation model of spread. // J R Soc Interface. 2010 Jan 6−7(42):67−79.
  40. Barbie, L, Madic J, Turk N, Daly J. Vaccine failure caused an outbreak of equine influenza in Croatia. // Vet Microbiol. 2009 Jan 1−133(1−2):164−71.
  41. Barnard, BJ, Paweska JT. Prevalence of antibodies against some equine viruses in zebra (Zebra burchelli) in the Kruger National Park, 1991−1992. Onderstepoort. // J Vet Res. 1993 Sep-60(3):175−9.
  42. Barquero, N, Daly JM, Newton JR. Risk factors for influenza infection in vaccinated racehorses: lessons from an outbreak in Newmarket, UK in 2003. // Vaccine. 2007 Oct 23−25(43):7520−9.
  43. Belgrave, J, Allpress RG. Reactions to equine influenza vaccine. Vet Rec. 1986 May 3−118(18):519−20.
  44. Berrios, P. Equine influenza in Chile (1963−1992): a possible human case. // Rev Chilena Infectol. 2005 Mar-22(l):47−50.
  45. Beveridge, WIB, Mahaffey LW, and Rose MA. Influenza in horses. // Vet Rec 1965- 77:57−59.
  46. Binns, MM, Daly JM, Chirnside ED, et Genetic and antigenic analysis of an equine influenza H3 isolate from the 1989 epidemic. // Arch Virol 1993- 130:33−43.
  47. Birch-Machin, I, Rowan A, Pick J, Mumford J, Binns M. Expression of the nonstructural protein NS1 of equine influenza A virus: detection of anti-NSl antibody in post infection equine sera. // J Virol Methods. 1997 May-65(2):255−63.
  48. Boliar, S, Stanislawek W, Chambers TM. Inability of kaolin treatment to remove nonspecific inhibitors from equine serum for the hemagglutination inhibition test against equine H7N7 influenza virus. // J Vet Diagn Invest. 2006 May-18(3):264−7.
  49. Carman, S, Rosendal S, Huber L, Gyles C, McKee S, Willoughby RA, Dubovi E, Thorsen J, Lein D. Infectious agents in acute respiratory disease in horses in Ontario. // J Vet Diagn Invest. 1997 Jan-9(l):17−23.
  50. Chambers, T. M., K. F. Shortridge, P. H. Li, G. Powell, and K. L. Watkins. Rapid diagnosis of equine influenza by the Directigen flu-A enzyme immunoassay. //Vet. Rec. 1994. 135:275−279.
  51. Chambers, TM, Holland RE, Lai ACK. Equine influenza current veterinary perspectives, part 2. // Eq Practice 1995- 17:26−30.
  52. Cowled, B, Ward MP, Hamilton S, Garner G. The equine influenza epidemic in Australia: spatial and temporal descriptive analyses of a large propagating epidemic. // Prev Vet Med. 2009 Nov l-92(l-2):60−70.
  53. Cox, N.J., Fukuda K. Influenza // Infect. Dis. Clin. N. Amer. 1998. vol.12. p.27−37.
  54. Crawford, PC, Dubovi EJ, Castleman WL, Stephenson I, Gibbs EP, Chen L, et al. Transmission of equine influenza virus to dogs. // Science 2005−310:482−5 doi: 10.1126/science.1 117 950.
  55. Crouch, CF, Daly J, Henley W, Hannant D, Wilkins J, Francis MJ. The use of a systemic prime/mucosal boost strategy with an equine influenza ISCOM vaccine to induce protective immunity in horses. // Vet Immunol Immunopathol. 2005 Dec 15−108(3−4):345−55.
  56. Crouch, CF, Daly J, Hannant D, Wilkins J, Francis MJ. Immune responses and protective efficacy in ponies immunised with an equine influenza ISCOM vaccine containing an 'American lineage' H3N8 virus. // Vaccine. 2004 Dec 2−23(3):418−25.
  57. Cullinane, A, Weld J, Osborne M, Nelly M, Mcbride C, Walsh C. Field studies on equine influenza vaccination regimes in thoroughbred foals and yearlings. // Vet J. 2001 Mar-161(2):174−85.
  58. Cunha, RG, Passos WS, Souza MC. Pathogenicity of equine influenza viruses in chickens. // Revista brasileira de biologia 1993 Feb-53(l):29−36.
  59. Daly, JM, Newton JR, Mumford JA. Current perspectives on control of equine influenza. // Vet Res. 2004 Jul-Aug-35(4):411−23.
  60. Daly, JM, Whitwell KE, Miller J, Dowd G, Cardwell JM, Smith KC Investigation of equine influenza cases exhibiting neurological disease: coincidence or association? //J Comp Pathol 2006−134:231−5 .
  61. Daly, JM, Lai ACK, Binns MM, Chambers TM, Barrandeguy M, Mumford JA Antigenic and genetic evolution of equine H3N8 influenza A viruses. // J Gen Virol 1996−77:661−71.
  62. Daly, J. M, Blunden T., Smith K., Dowd G., Davis-Poynter N., Miller J., and MacRae S. 2004. Suspected equine influenza infection in dogs. // Office Int. Epizoot. Bull. 2004(2):50.
  63. Davis, J, Garner MG, East IJ. Analysis of local spread of equine influenza in the Park Ridge region of Queensland Transbound. // Emerg Dis. 2009 Mar-56(l-2):31−8.
  64. Denyer, MS, Crowther JR, Wardley RC, Burrows R. Development of an enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) for the detection of specific antibodies against an H7N7 and an H3N8 equine influenza virus. // J Hyg (Lond). 1984 Dec-93(3):609~20
  65. Dixon, P. M, McGorum BC, Marley C, et al. Effects of equine influenza and tetanus vaccination on pulmonary function in normal and chronic obstructive pulmonary disease affected horses. // Eq. Vet J 1996- 28:157−160.
  66. Donofrio, JC, Coonrod JD, Chambers TM. Diagnosis of equine influenza by the polymerase chain reaction. // J Vet Diagn Invest. 1994 Jan-6(l):39−43.
  67. Fermaglich, DH, Horohov DW. The effect of aging on immune responses. // Vet Clin North Am Equine Pract. 2002 Dec-18(3):621−30, ix.
  68. Folsom, RW, Littlefield-Chabaud MA, French DD, Pourciau SS, Mistric L, Horohov DW. Exercise alters the immune response to equine influenza virus and increases susceptibility to infection. // Equine Vet J. 2001 Nov-33(7):664−9
  69. Foord, AJ, Selleck P, Colling A, Klippel J, Middleton D, Heine HG. Realtime RT-PCR for detection of equine influenza and evaluation using samples from horses infected with A/equine/Sydney/2007 (H3N8). // Vet Microbiol. 2009 May 28−137(l-2):l-9.
  70. Glass, K, Wood JL, Mumford JA, Jesset D, Grenfell BT. Modelling equine influenza 1: a stochastic model of within-yard epidemics. // Epidemiol Infect. 2002 Jun-128(3):491−502.
  71. Guo, Y, Wang M, Kawaoka Y, Ito T, et Characterization of a new avian-like influenza A virus from horses in China. // Virology. 1992−188:245−255.
  72. Guo, Y, Wang M, Zheng GS, Li WK, Kawaoka Y, Webster RG. Seroepidemiological and molecular evidence for the presence of two H3N8 equine influenza viruses in China in 1993−94. // J Gen Virol. 1995 Aug-76
  73. Gupta, AK, Yadav MP, Uppal PK. Single radial immunodiffusion potency test for standardization of indigenous equine influenza vaccine. // Indian journal of experimental biology 1993 Dec-31(12):944−7.
  74. Guthrie, A. J., K. B. Stevens, and P. P. Bosman. The circumstances surrounding the outbreak and spread of equine influenza in South Africa. // Rev. Sci. Tech. 1999.18:179−185.
  75. Hannant, D, Mumford JA, Jessett DM. Duration of circulating antibody and immunity following infection with equine influenza virus. // Vet Rec. 1988 Feb 6−122(6): 125−8.
  76. Hannant, D, Easeman R, and Mumford J. Equine mucosal immune system: Intranasal vaccination with inactivated equine influenza virus protects from infection. // In: Proceedings of the 8th Int Gonf Eq Inf Dis 1998- 50−56.
  77. Hale, B.G.- Randall, R.E.- OrtMn, J.- Jackson, D. The multifunctional NS1 protein of influenza A viruses. // J. Gen. Virol. 2008, 89, 2359−2376.
  78. Heldens, JG, Kersten AJ, Weststrate MW, van den Hoven R. Duration of immunity induced by an adjuvanted and inactivated equine influenza, tetanus and equine herpesvirus 1 and 4 combination vaccine. // Vet Q. 2001 Nov-23(4):210−7.
  79. Heldens, JG, van Loon AA, van de Zande S. Is there a benefit from an early booster vaccination in the control of equine influenza? // Vet J. 2007 Nov-174(3):592−8.
  80. Heldens, JG, Pouwels HG, Derks CG, Van de Zande SM, Hoeijmakers MJ. The first safe inactivated equine influenza vaccine formulation adjuvanted with ISCOM-Matrix that closes the immunity gap. //Vaccine. 2009 Sep 4−27(40):5530−7.
  81. Horohov, DW, Dimock A, Guirnalda P, Folsom RW, McKeever KH, Malinowski K. Effect of exercise on the immune response of young and old horses. // J Vet Res. 1999 May-60(5):643−7.
  82. Ilobi, C. P, Nicolson C, Taylor J, et al. Direct sequencing of the HA gene of clinical equine H3N8 influenza virus and comparison with laboratory derived viruses. // Arch Virol 1998- 143:891−901.
  83. Indal, N, Chander Y, de Abin M, Sreevatsan S, Stallknecht D, Halvorson DA, Goyal SM. Amplification of four genes of influenza A viruses using a degenerate primer set in a one step RT-PCR method. // J Virol Methods. 2009 Sep-160(l-2):163−6.
  84. Karaca, K, Dubovi EJ, Siger L, et al. Evaluation of the ability of canarypox-vectored equine influenza virus vaccines to induce humoral immune responses against canine influenza viruses in dogs. // J.Vet.Res. 2007−68(2):208−212.
  85. Kawaoka, Y., and R. G. Webster. Origin of the hemagglutinin on A/Equine/Johannesburg/86 (H3N8): the first known equine influenza outbreak in South Africa. // Arch. Virol. 1989.106:159−164.
  86. Kawaoka, Y. Equine H7N7 influenza A viruses are highly pathogenic in mice without adaptation: potential use as an animal model. // J. Virol. 1991. 65:3891−3894.
  87. Kawaoka, Y, Gorman OT, Ito T, Wells K, Donis RO, Donatelli I, Webster RG Influence of host species on the evolution of the nonstructural (NS) gene of influenza A viruses. // Virus Res. 1998 Jun-55(2):143−56.
  88. Kuntz-Simon, G, Madec F, Genetic and antigenic evolution of swine influenza viruses in Europe and evaluation of their zoonotic potential. // Zoonoses Public Health. 2009−56:310−325.
  89. Lai, AC, Chambers TM, Holland RE, Jr, et al. Diverged evolution of recent equine-2 influenza (H3N8) viruses in the Western Hemisphere. // Arch Virol. 2001−146:1063−1074.
  90. Lai, AC, Rogers KM, Glaser A, Tudor L, Chambers T. Alternate circulation of recent equine-2 influenza viruses (H3N8) from two distinct lineages in the United States. //Virus Res. 2004−100:159−164.
  91. Lai, AC, Lin YP, Powell DG, et al. Genetic and antigenic analysis of the influenza virus responsible for the 1992 Hong Kong equine influenza epizootic. // Virology 1994- 204:673−679.
  92. Lany, P, Pospisil Z, Zendulkova D, Cihal P, Jahn P. An epizootiologic study of an outbreak of equine influenza in the Czech Republic in the fall of 1995. // Vet Med (Praha). 1997 Feb-42(2):39−42. Czech.
  93. Laporte, V, Lavoie JP. Influenza equin au Quebec: l’epidemie de 2001. // Le Med Vet du Quebec. 2004−34:227, 242, 245.
  94. Livesay, GJ, O’Neill T, Hannant D, Yadav MP, Mumford JA. The outbreak of equine influenza (H3N8) in the United Kingdom in 1989: diagnostic use of an antigen captures ELISA. // Vet Rec. 1993 Nov 20−133(21):515−9.
  95. Lin, D.- Lan, J.- Zhang, Z. Structure and function of the NS1 protein of influenza A virus. // Acta. Biochim. Biophys. Sin. (Shanghai) 2007, 39,155−162.
  96. Lindstrom, S, Endo A, Sugita S, Pecoraro M, Hiromoto Y, Kamada M, Takahashi T, Nerome K. Phylogenetic analyses of the matrix and non-structural genes of equine influenza viruses. //Archives of virology 1998−143(8): 1585−98.
  97. Lunn, D. P, Soboll G, Schram BR, Quass J, McGregor MW, Drape RJ, Macklin MD, McCabe DE, Swain WF, Olsen CW. Antibody responses to DNA vaccination of horses using the influenza virus hemagglutinin gene. // Vaccine. 1999 May 4−17(18):2245−58.
  98. Lupfer, C, Stein DA, Mourich DV, Tepper SE, Iversen PL, Pastey M. Inhibition of influenza A H3N8 virus infections in mice by morpholino oligomers. // Arch Virol. 2008−153(5):929−37.
  99. Mayr, A. Respiratory infectious diseases in horses. Tierarztl Prax Suppl. 1987−2:1−4.
  100. McClure, JT, DeLuca JL, Lunn DP, Miller J. Evaluation of IgG concentration and IgG subisotypes in foals with complete or partial failure of passive transfer after administration of intravenous serum or plasma. // Equine Vet J. 2001 Nov-33(7):681−6.
  101. Minke, J. M, Toulemonde CE, Dinic S, Cozette V, Cullinane A, Audonnet JC. Effective priming of foals born to immune dams against influenza by a canarypox-vectored recombinant influenza H3N8 vaccine. // J Comp Pathol. 2007 Jul-137 Suppl l: S76−80.
  102. Minke, JM, Toulemonde CE, Coupier H, et al. Efficacy of a canarypox-vectored recombinant vaccine expressing the hemagglutinin gene of equine influenza H3N8 virus in the protection of ponies from viral challenge. // J.Vet.Res. 2007−68(2):213—219.
  103. Morley, P. S.,. Bogdan J. R, Townsend H. G., and Haines D. M. Evaluation of Directigen Flu A assay for detection of influenza antigen in nasal secretions of horses. // Equine Vet. 1995. J. 27:131−134.
  104. Morley, P. S., Townsend H. G., Bogdan J. R., and Haines D. M. Efficacy of a commercial vaccine for preventing disease caused by influenza virus infection in horses. // J. Am. Vet. Med. Assoc. 1999. 215:61−66.
  105. Morley, P. S, Townsend HG, Bogdan JR, Haines DM. Descriptive epidemiologic study of disease associated with influenza virus infections during three epidemics in horses. // J Am Vet Med Assoc. 2000 Feb 15−216(4):535−44.
  106. Muller, I, Jaureguiberry B, Valenzuela PD. Isolation, sequencing and phylogenetic analysis of the hemagglutinin, neuraminidase and nucleoprotein genes of the Chilean equine influenza virus subtypes H7N7 and H3N8. // Biol Res. 2005−38(l):55−67.
  107. Muller, I, Pinto E, Santibanez MC, Celedon MO, Valenzuela PD. Isolation and characterization of the equine influenza virus causing the 2006 outbreak in Chile. // Vet Microbiol. 2009 May 28−137(l-2):172−7.
  108. Mumford, JA, Wood J. Establishing an acceptibility threshold for equine influenza vaccines. // Dev Biol Stand 1992- 79:137−146.
  109. Mumford, J.A., and Wood J. M. WHO/OIE meeting: consultation on newly emerging strains of equine influenza. // Vaccine 1993.11:1172−1175.
  110. Mumford, J. A, Jessett D, Dunleavy U, Wood J, Hannant D, Sundquist B, Cook RF. Antigenicity and immunogenicity of experimental equine influenza ISCOM vaccines. // Vaccine. 1994 Jul-12(9):857−63.
  111. Mumford, J.A., Wilson H., Hannant D., and Jessett D. M. Antigenicity and immunogenicity of equine influenza vaccines containing a Carbomer adjuvant. // Epidemiol. Infect. 1994.112:421−437.
  112. Mumford, J.A., Jessett D. M., Rollinson E. A., Hannant D., and Draper M. E. Duration of protective efficacy of equine influenza immunostimulating complex/tetanus vaccines.//Vet. Rec. 1994. 134:158−162.
  113. Mumford, E. L., J. L. Traub-Dargatz, M. D. Salman, J. K. Collins, D. M. Getzy, and J. Carman. Monitoring and detection of acute viral respiratory tract disease in horses. //J. Am. Vet. Med. Assoc. 1998. 213:385−390.
  114. Nelly, M. Characterisation of equine influenza virus isolates from the 1989 and 1992 influenza outbreaks in Ireland by nucleotide sequence determination of the haemagglutinin 1996. // Vet. Rec. Aug-14(ll):130−133.
  115. Nelson, K. M, Schram B. R, McGregor M. W, Sheoran AS, Olsen C. W, Lunn D.P. Local and systemic isotype-specific antibody responses to equine influenza virus infection versus conventional vaccination. // Vaccine. 1998 Aug-16(13):1306−1313.
  116. Office International des Epizootiesl995 Equine influenza, p. 546−557. Manual of standards for diagnostic tests and vaccines. Office International des Epizooties, Paris, France.
  117. OIE Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial animals, 2010-Vol. 1.- P. 451−463.
  118. Oxburgh, L, Berg M, Klingeborn B, Emmoth E, Linne T. Evolution of H3N8 equine influenza virus from 1963 to 1991. // Virus Res. 1994−34:153−165.
  119. Oxburgh, L, Akerblom L, Fridberger T, Klingeborn B, Linne T. Identification of two antigenically and genetically distinct lineages of H3N8 equine influenza virus in Sweden. // Epidemiol Infect. 1998−120:61−70.
  120. Oxburgh, L, Hagstrom A. A PCR based method for the identification of equine influenza virus from clinical samples. // Vet Microbiol. 1999 Jun 30−67(3):161−74.
  121. Oxburgh, L, Klingeborn B. Cocirculation of two distinct lineages of equine influenza virus subtype H3N8. //J Clin Microbiol 1999- 37:305−309.
  122. Paillot, R, Hannant D, Kydd JH, Daly JM. Vaccination against equine influenza: quid novi? // Vaccine. 2006 May 8−24(19):4047−4061.
  123. Paillot, R, Kydd J. H, MacRae S, Minke JM, Hannant D, Daly JM. New assays to measure equine influenza vims-specific Type 1 immunity in horses. // Vaccine. 2007 Oct 16−25(42):7385−98.
  124. Paillot, R, Grimmett H, Elton D, Daly JM. Protection, systemic IFN gamma, and antibody responses induced by an ISCOM-based vaccine against a recent equine influenza virus in its natural host. // Vet Res. 2008 May-Jun-39(3):21.
  125. Park, A. W, Wood JL, Newton JR, Daly J, Mumford JA, Grenfell BT. Optimising vaccination strategies in equine influenza. // Vaccine. 2003 Jun 20−21(21−22):2862−70.
  126. Park, A. W, Wood JL, Daly JM, Newton JR, Glass K, Henley W, Mumford JA, Grenfell BT. The effects of strain heterology on the epidemiology of equine influenza in a vaccinated population. // Proc Biol Sci. 2004 Aug 7−271(1548):1547−55.
  127. Park, AW, Daly JM, Lewis NS, Smith DJ, Wood JL, Grenfell BT. Quantifying the impact of immune escape on transmission dynamics of influenza. // Science. 2009 Oct 30−326(5953):726−8.
  128. Patterson-Kane, JC, Carrick JB, Axon JE, Wilkie I, Begg AP. The pathology of bronchointerstitial pneumonia in young foals associated with the first outbreak of equine influenza in Australia. // Equine Vet J. 2008 May-40(3):199−203.
  129. Powell, D.G. Viral respiratory disease of the horse. // Vet Clin Noith Am Equine Pract. 1991 Apr-7(l):27−52.
  130. Powell, DG, Watkins KL, Li PH, et al. Outbreak of equine influenza among horses in Hong Kong during 1992. // Vet Rec 1995- 136:531−536.
  131. Renegar, KB Influenza virus infections and immunity: a review of human and animal models. // Lab Anim Sci. 1992 Jun-42(3):222−32.
  132. , A. L. 1988. A/equi-2 influenza in horses in the Republic of South Africa. // J. S. Afr. Vet. Assoc. 59:123−125.
  133. Sherman, J, Thorsen J, Barnum DA, Mitchell WR, Ingram DG. Infectious causes of equine respiratory disease on Ontario standardbred racetracks. // J Clin Microbiol. 1977 Mar-5(3):285−9.
  134. Shinya, K., Watanabe, S., Ito, T., Kasai, N., Kawaoka, Y. (2007). Adaptation of an H7N7 equine influenza A virus in mice. // J. Gen. Virol. 88: 547−553.
  135. Singh, BK, Sinclair R, Gupta AK, Uppal PK, Yadav MP, Mumford JA. Production of monoclonal antibodies against equine influenza A/Equi-2 (H3N8) Indian isolate. // Indian J Exp Biol. 1993 Sep-31(9):774−5.
  136. Skehel, J. J., and D. C. Wiley. Influenza haemagglutinin. // Vaccine. 2002. 20(Suppl. 2):S51-S54.
  137. Slater, J, Hannant D. Equine immunity to viruses. // Vet Clin North Am Equine Pract. 2000 Apr-16(l):49−68.
  138. Soboll, G, Hussey SB, Minke JM, Landolt GA, Hunter JS, Jagannatha S, Lunn DP. Onset and duration of immunity to equine influenza virus resulting from canarypox-vectored (ALVAC (®)) vaccination. // Vet Immunol Immunopathol. 2009 Nov 24.
  139. Smith, BP. Evolution of equine infection control programs. // Vet Clin North Am Equine Pract. 2004 Dec-20(3):521−30, v.
  140. Sovinova, O., B. Tiimova, F. Pouska, and J. Nemec. Isolation of a virus causing respiratory disease in horses. //Acta Virol. 1958.2:52−61.
  141. Spackman, E, Senne DA, Myers TJ, et al. Development of a real-time reverse transcriptase PCR assay for type A influenza virus and the avian H5 and H7 hemagglutinin subtypes. //J.Clin.Microbiol. 2002−40(9):3556−3560.
  142. Spokes, PJ, Marich AJ, Musto JA, Ward KA, Craig AT, McAnulty JM. Investigation of equine influenza transmission in NSW: walk, wind or wing? // N S W Public Health Bull. 2009 Sep-Oct-20(9−10):152−6.
  143. Timoney, PJ. Equine influenza. // Comp Immunol Microbiol Infect Dis. 1996−19:205−211.
  144. Townsend, H. The role of vaccines and their efficacy in the control of infectious respiratory disease of the horse. // In: Proceedings of the 46 th Annual Conv Am Assoc Equine Procter 2000- 21−26.
  145. Truax, R. E, Powell MD, Montelaro RC, Issel CJ, Newman MJ. Cryopreservation of equine mononuclear cells for immunological studies. // Vet Immunol Immunopathol. 1990 Jun- 25(2):139−53.
  146. Van Maanen, C, Bruin G, de Boer-Luijtze E, Smolders G, de Boer GF. Interference of maternal antibodies with the immune response of foals after vaccination against equine influenza. // The Veterinary quarterly 1992 Jan-14(l):13−112.
  147. Van Maanen, C, Cullinane A. Equine influenza virus infections: an update. // Vet Q. 2002 Jun-24(2):79−94.
  148. Van Maanen, C., van Essen G. J., Minke J., Daly J. M., and Yates P. J. Diagnostic methods applied to analysis of an outbreak of equine influenza in a riding school in which vaccine failure occurred. // Vet. Microbiol.. 2003, 93:291 306.
  149. Van Oirschot, JT, Bruin G, de Boer-Luytze E, Smolders G. Maternal antibodies against equine influenza virus in foals and their interference with vaccination. // Zentralbl Veterinarmed B. 1991 Jul- 38(5):391−6.
  150. Wadell, G. H., M. B. Teigland, and M. M. Siegel. A new influenza virus associated with equine respiratory disease. // J. Am. Vet. Med. Assoc. 1963. 143:587−590.
  151. Webster, R. G, Bean WJ, Gorman OT, Chambers TM, Kawaoka Y. Evolution and ecology of influenza A viruses. // Microbiol Rev. 1992−56:152−179.
  152. Webster, R. G. Are equine 1 influenza viruses still present in horses? // Equine Vet. J. 1993. 25:537−538.
  153. Wernery, R., P. J. Yates, U. Wernery, and J. A. Mumford. An equine influenza outbreak in a polo club in Dubai, United Arab Emirates in 1995/96. // Equine Vet J 1999. p. 342−346.
  154. Wilson, WD, Mihalyi JE, Hussey S, Lunn DP. Passive transfer of maternal immunoglobulin isotype antibodies against tetanus and influenza and their effect on the response of foals to vaccination. // Equine Vet J. 2001 Nov-33(7):644−50.
  155. Yamanaka, T, Nemoto M, Tsujimura K, Kondo T, Matsumura T. Interspecies transmission of equine influenza virus (H3N8) to dogs by close contact with experimentally infected horses. // Vet Microbiol. 2009 Jun 21.
  156. Yates, P, Mumford JA. Equine influenza vaccine efficacy: The significance of antigenic variation. // Vet Microbiol. 2000- 74:173−177.-V
  157. МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ
  158. ФЕДЕРАЛЬНАЯ СЛУЖБА. ПО ВЕТЕРИНАРНОМУ И ФИТОСАНИТАРНОМУ НАДЗОРУ1. Россельхознадзор)'
  159. Орликов пер., 1/11, Москва, 107 139″ Для телеграмм: Москва 84 Минроссельхоз факс: (495) 607−5111. тел.:(495) 975−4347 Е-тпП: [email protected] • http://www.fsvps.ru >
  160. Федеральная служба по ветеринарному и фитосанитарному надзору сообщает.
  161. В связи с изложенным, считаем целесообразным ввести в состав штаммов, используемых для производства инактивированной поливалентной, вакцины против гриппа лошадей, новый эпизоотический штамм из числа выделенных в ГНУ «ВИЭВ» в 2007 году.
  162. Заместитель Руководителя /. «Н.А. Власов2910.08 № ФС-НВ-2/109 991. На №.1. Лагере»" 608 0 7 411. УТВЕРЖДАЮ
  163. А/лошадь2/Битца2007″ вируса гриппа лошадей (H3N8) с целью депонирования в коллекции культур микроорганизмов ФГУ «Всероссийский государственный центр качества и стандартизации лекарственных средств для животных и кормов (ФГУ «ВГНКИ»)
Заполнить форму текущей работой

На отлично!