Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Репаративная регенерация периферических нервов крыс после механической альтерации и фармакологической модификации

Диссертация: Репаративная регенерация периферических нервов крыс после механической альтерации и фармакологической модификации
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

При травмировании нерва его регенерация осложняется развитием ишемии и гипоксии из-за повреждения мелких сосудов в месте травмы. Известно, что гипоксические состояния сопутствуют практически любой патологии (Лукьянова, 1991). В последнее время экспериментально и клинически обоснована возможность использования в качестве антигипоксического средства при ишемических состояниях организма компонента… Читать ещё >

Содержание

  • ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Физиология процессов дегенерации и регенерации травмированного нерва
      • 1. 1. 1. Валлеровская дегенерация
      • 1. 1. 2. Состояние нейронов спинномозгового узла после травмы
      • 1. 1. 3. Скорость процессов дегенерации в травмированных нервах
      • 1. 1. 4. Регенерация нервных волокон
    • 1. 2. Применение пчелиного яда и экзогенных убихинонов в биологии и медицине
      • 1. 2. 1. Экзогенные убихиноны
      • 1. 2. 2. Пчелиный яд
  • ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
  • ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ И ИХ
  • ОБСУЖДЕНИЕ
    • 3. 1. Исследование восстановления характеристик вызванных потенциалов после пережатия нерва
    • 3. 2. Исследование регенерации нервных волокон пережатого нерва гистологическими методами
    • 3. 3. Исследование динамики посттравматических процессов в спинномозговых узлах L3 и L
    • 3. 4. Модификация процесса репаративной регенерации кожного нерва при воздействиеи убихинона Q-10 и пчелиного яда

Репаративная регенерация периферических нервов крыс после механической альтерации и фармакологической модификации (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность проблемы. Проблема восстановления функций при повреждении периферических нервов в клинической медицине определяется стойким характером расстройства движений, чувствительности и вегетативно-трофических нарушений, развивающихся вслед за поражением нервного ствола, длительными сроками и не всегда удовлетворительными результатами лечения больных (Челышев, 2006; Fugleholm, Schmalburg, Krarup, 2000). Наиболее частыми формами травматического повреждения нервов, возникающими вследствие техногенного травматизма на производстве, при дорожно-транспортных происшествиях, в ходе военных действий, являются размозжение, ушиб, растяжение, а также сдавление с наличием или отсутствием разрыва нервного ствола. Однако эффективность репарации структуры и функции поврежденной ткани с применением лечебных мероприятий и лекарственных средств остается относительно низкой. Это во многом связано с малой изученностью динамики регенерации нервов после травмы. Для исследования воздействия модулирующих средств на посттравматический процесс необходимы более полные данные о динамике репаративной регенерации поврежденного нерва. Клиницистов интересует полнота морфологического и функционального восстановления нервов (Сотников, 1995). Количественные параметры регенеративных и дегенеративных процессов, происходящих в периферических нервах после альтерации пережатием, представленные в литературе, весьма противоречивы (Hamilton, Fredman, 1998; Swett, Hong, Miller, 1995; Olivera, Mazzer, Barbieri et al., 2001; Kamijo, Kojama, Oikawa et al., 2003; Рагинов, 2006; и др.). Это может быть связано с различием в условиях осуществления альтерации нерва. В литературе, посвященной исследованию деструктивных и регенеративных процессов, идущих в периферических нервах после пережатия практически нет точных указаний на условия осуществления травмы нерва, хотя вероятно, динамика этих процессов зависят от таких факторов как длительность осуществления пережатия, сила давления, размер травмы. В последнее время некоторые исследователи осуществляют стандартизацию условий проведения пережатия. А именно, Beer G. М., Steurer J., Meyer V.E. (2001) сконструировали и описали в статье «Standardizing nerve crushes with a non-serrated clamp» зажим для осуществления дозированного пережатия нерва, позволяющий воздействовать на нерв с определенной силой.

Olivera Е. F., Mazzer N., Barbieri С. N., Selli М. (2001) провели исследование посттравматических процессов в седалищном нерве крыс после пережатия с различной силой давления (100 г., 500 г., 15 000 г.) и при стандартных размерах травмы (5 мм) и времени воздействия (10 мин.).

Актуальным является вопрос о темпах и характере репаративной регенерации периферических нервов в зависимости от степени тяжести травмы.

Учитывая важность проблемы, в современной медицине ведется активный поиск эффективных терапевтических средств для стимуляции регенеративных процессов после травмы. Среди различных классов физиологически активных веществ в этом плане представляют интерес природные соединения. Широко известны терапевтические эффекты пчелиного яда в отношении нервной, сердечно-сосудистой и иммунной систем (Крылов, 1995; Кривцов и др., 2004). При этом вводимая доза яда во многом может определять физиологический эффект. Так, нейротропные эффекты яда могут проявляться не только поражением миелиновой оболочки от токсических доз (Орлов, 1972), но и, наоборот, в малых дозах стимулировать миелинизацию нервных волокон мозга крыс в модельных опытах с их демиелинизацией (Кочеткова, 1998; Кривопалов, 1998).

При травмировании нерва его регенерация осложняется развитием ишемии и гипоксии из-за повреждения мелких сосудов в месте травмы. Известно, что гипоксические состояния сопутствуют практически любой патологии (Лукьянова, 1991). В последнее время экспериментально и клинически обоснована возможность использования в качестве антигипоксического средства при ишемических состояниях организма компонента дыхательной цепи митохондрий — убихинона (CoQ) (Донченко, 1988; Лукьянова, 1997; Крылов, Лукьянова, 2004). Таким образом, применение пчелиного яда и убихинона-10 в качестве терапевтических средств при травме периферических нервов может способствовать процессу регенерации.

Цель и задачи исследования

Целью работы было исследование динамики репаративной регенерации периферических нервов: кожного (п. saphenus) и седалищного (п. ischiadicus) у крыс при неполном и полном передавливании на участках длиной 2 мм или 4 мм, и ее модификации пчелиным ядом и убихиноном-10.

В задачи работы входило:

1. Исследовать восстановление характеристик вызванных потенциалов (скорости, амплитуды, формы ВП) в седалищном нерве у крыс и лягушек после неполного пережатия нерва.

2. Изучить восстановление характеристик вызванных потенциалов (скорости, амплитуды, формы) кожного нерва крыс после полного пережатия на участках различной длины, и восстановление активности нерва при раздражении механорецепторов кожи.

3. Исследовать динамику изменения количества нервных волокон в дистальном участке кожного нерва крыс после альтерации на участках различной длины.

4. Дать количественную и качественную характеристику нейронов спинномозговых узлов (СМУ) L3 и L4 крыс после полного пережатия кожного нерва на участках различной длины в динамике регенерации.

5. Изучить модифицирующее воздействие пчелиного яда и убихинона на репаративную регенерацию кожного нерва крыс.

Научная новизна. Впервые проведено исследование деструктивных и регенеративных процессов, происходящих в периферических нервах и СМУ у крыс после альтерации нервов полным пережатием на участках различной длины. Обнаружено влияние степени тяжести травмы на восстановление миелиновых оболочек в период до 30 суток после травмы и отсутствие различий в динамике деструктивных процессов в СМУ L3 и L4, восстановления количества нервных волокон в альтерированном нерве после травм различной степени тяжести. Показано уменьшение количества нейронов СМУ L3 и L4 до 10 суток после альтерации нерва и отсутствие изменения количества нейронов в последующий период до 50 суток после травмы. Установлено стимулирующее воздействие пчелиного яда и убихинона-10 на восстановление миелиновых оболочек регенерирующих волокон.

Научно-практическая значимость. Выявленные закономерности протекания регенеративных и деструктивных процессов в кожном нерве и СМУ L3 и L4 после полного пережатия нерва на участках различной длины в дальнейшем могут быть применены для моделирования травм периферических нервов в исследовательских работах медико-биологических отраслей науки, а также в учебной работе — при изучении соответствующих разделов учебных дисциплин физиологии, патофизиологии, гистологии, человека и животных в учебных программах биологических, сельскохозяйственных и медицинских вузов. Использованная модель репаративной регенерации кожного нерва, выполненная в стандартизированных условиях, может быть применена для оценки эффективности репаративного процесса с помощью различных терапевтических воздействий.

Полученные результаты позволяют обосновать применение пчелиного яда и убихинона-10 в медицинской практике при терапии травм периферических нервов.

Основные положения, выносимые на защиту:

Механическое пережатие седалищного нерва крыс и лягушек и кожного нерва крыс, вызывающее полный разрыв осевых цилиндров нервных волокон на участке альтерации, приводит к дегенеративным изменениям в нейронах и спинномозговых узлах, выражающихся на 10-е сутки после альтерации в максимальном снижении количества миелиновых волокон дистального участка травмированного нерва, а также снижением амплитуды и скорости вызванных потенциалов в нерве.

При полном пережатии различной степени тяжести (на участках различной длины) кожного нерва крыс различия в регенеративных процессах обнаружены в динамике восстановления миелиновых оболочек нервных волокон до 30 суток после травмы.

Увеличение количества миелинизированных волокон в участке нерва, расположенном дистальнее места травмы, скорости прорастания поврежденных нервных волокон к коже после альтерации нерва на участках различной длины, регистрируемые в период 10−50 суток, не зависят от степени тяжести травмы (2 или 4 мм).

Применение пчелиного яда и убихинона-10 стимулирует процесс миелинизации травмированных волокон кожного нерва крыс.

Апробация работы. Материалы, представленные в диссертации, доложены на XIII Международном совещании и VI школе по эволюционной физиологии, посвященным памяти академика JI.A. Орбели и 50-летию Института эволюционной физиологии и биохимии им. И. М. Сеченова (Санкт-Петербург, 2006) — на Научно-практической конференции с международным участием «Актуальные вопросы эволюционной, возрастной и экологической морфологии» (Белгород, 2006) — на расширенном заседании кафедры физиологии и биохимии человека и животных, 2007,.

Структура и объем диссертации

Материалы диссертации изложены на 101 странице машинописного текста, иллюстрированы 2 таблицами и 29 рисунками. Работа состоит из введения, обзора литературы, характеристики материалов и методов исследования, результатов исследования, обсуждения, заключения, выводов и списка литературы, содержащего 165 источников, их них 77 на иностранных языках.

ВЫВОДЫ.

1. Механическое пережатие седалищного нерва крыс и лягушек и кожного нерва крыс с силой 5*106 Па вызывает полный разрыв всех осевых цилиндров нервных волокон на участке альтерации.

2. Альтерация кожного нерва крыс путем его передавливания приводит к дегенеративным изменениям в нейронах, выражающимся на 10-е сутки после альтерации в максимальном снижении количества миелиновых волокон дистального участка травмированного нерва и тел нейронов в ганглиях L3 и L4, а также снижением амплитуды и скорости вызванных потенциалов в нерве.

3. Репаративная регенерация миелиновых оболочек нервных волокон после альтерации передавливанием наиболее активно протекает до 30-х суток после альтерации и выражается относительным восстановлением скорости проведения вызванных потенциалов по кожному нерву. Скорость миелинизации регенерирующих волокон после передавливания нерва на участке длиной 2 мм выше, чем после передавливания на участке 4 мм только в период до 30 суток после травмы.

4. Увеличение количества миелинизированных волокон в участке нерва, расположенном дистальнее места травмы, скорости прорастания поврежденных нервных волокон к коже после альтерации нерва на участках различной длины, регистрируемые в период 10−50 суток, не зависят от степени тяжести травмы (2 или 4 мм).

5. Терапевтическое введение пчелиного яда или убихинона-10 повышало скорость репаративной регенерации альтерированных нервов крыс, приводя на 10-е сутки к восстановлению скорости проведения ВП в них до 92% (пчелиный яд) и 78% (убихинон-10) от уровня скорости ВП интактных животных.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

После альтерации периферических нервов крыс и лягушек неполным и полным пережатием проведение ВП по миелинизированным нервным волокнам через травмированный участок прекращается. После неполного пережатия проведение ВП восстанавливается в течение часа, так как в травмированном нерве разрывается только часть осевых цилиндров нервных волоконпосле полного пережатия проведение ВП отсутствует до 5 суток после травмы и восстанавливается к 10 суткам, когда регенерирующие нервные волокна прорастают через место травмы в дистальный участок нерва.

Было установлено, что после полного пережатия кожного нерва на участках различной длины степень тяжести травмы не повлияла на динамику элиминации нейронов в СМУ L3 и L4 (к 10 суткам после травмы количество тел нейронов сократилось и далее в период до 50 суток не изменялось). Из-за элиминации части нейронов СМУ полного восстановления количества нервных волокон в травмированном нерве не происходит. На 30 сутки после травмы количество нервных волокон в исследуемом участке нерва достигало максимума (70% от нормы), без дальнейших изменений. Использование пчелиного яда и убихинона-10 в качестве терапевтических средств после альтерации нерва пережатием способствовало ускорению миелинизации нервных волокон. Модификация регенерации оказалась более эффективной при применении пчелиного яда и менее эффективной при применении убихииопа-10.

Показать весь текст

Список литературы

  1. И.П. Вопросы классификации и формулировка диагноза заболеваний периферической нервной системы // Журнал невропатологии и психиатрии, 1986. № 4. С.498−502.
  2. Н.М., Орлов Б. Н., Корнева Н. В., Крылов В. Н. Физиологический анализ кардиотоксического действия пчелиного яда // Резюме работ 24 Межд. конгр. по пчеловодству. Буэнос-Айрес: Апимондия, 1973. С. 3−4.
  3. Н. М., Зевеке А. В. Физиологический анализ гипотензивного действия пчелиного яда // Уч. зап. Горьк. ун-та. Сер. Биол. Горький, 1967. Вып. 82. С.25−47.
  4. Л. В., Жолос А. В. Апамин высокоспецифический и эффективный блокатор некоторых кальцийзависимых калиевых проводимостей // Нейрофизиология. 1988. Т. 20, № 6. С. 833−846.
  5. Ю.Э., Ципарсоне Р. Т. Тоннельные невропатии лучевого нерва в локтевой области // Журнал невропатол. и психиатр. 1981, № 12 С.1813−1817.
  6. Н.А. Применение пчелиного яда при некоторых заболеваниях нерв ной системы // Матер, межд. симп. по применению продуктов пчеловодства в медицине и ветеринарии в Москве. Бухарест: Апимондия, 1972. С. 44−47.
  7. , Г. И. Сравнительное морфометрическое исследование чувствительных нейронов черепно- и спинномозговых узлов при перерезке их отростков / Г. И. Бородаевская, А. Ф. Никифоров // Архив анат., гист. и эмбр.- 1976.- т. 71, № 8.-С. 52−55.
  8. Е. Б., Храпова Н. Г. // Успехи химии. 1985. Т. 54. С. 1540−1558.
  9. О.В., Елецкий Ю. К. Основы гистологии с гистологической техникой. М., 1982. 304 с.
  10. Ю.Гелашвили Д. Б., Егоров В. В., Савинов Г. М. Сравнительный анализ действия апамина и токсинов скорпиона на ЦНС // Механизмы действия зоотоксинов. Горький, 1981. С. 17−24.
  11. Голу б В. Ф. Периферический отрезок поврежденного нерва в развитии нервных дистрофий. Саранск, 1954. 76с.
  12. , А.Г. Проблемные вопросы стимуляции репаративных процессов и организации синаптической зоны в поврежденной области мозга // Восстановительные процессы в нервной системе и их коррекция.- Горький, 1990.- С. 6−12.
  13. З.Дерюгина А. В. Исследование электрофоретической подвижности и агрегационных свойств эритроцитов при действии пчелиного яда и его препаратов: Автореф. канд. дис. Н. Новгород, 1998. 20 с.
  14. .С. Общая гистология и гистопатология периферической соматической нервной системы. М., 1965. 340с.
  15. Г. В, Биохимия убихинона (Q). Киев, 1988. 153с.
  16. И.Л. Количественная оценка нейронов и афферентные связи узлов Т12, Т13 и L1 в норме у взрослых крыс // Нижегородский медицинский журнал.-2005.-№ 2.-С.30−34.
  17. Ю.М., Костенецкий А. С. Регенерация поврежденных периферических нервов при ишемии. М., 1953. 280с.
  18. Ю.М. Нормальная и патологическая морфология нейрона. Л., 1965.215с.
  19. С.А., Загрядский П. В. Трудности и перспективы повышения эффективности лечения травматических невропатий. Ставрополь, 1987. 177с.
  20. Р.З. Лечение травм нервных стволов конечностей. Л., 1986. 65 с. 21.3яблов В. И. Проблемные вопросы регенерации нервной системы. Симферополь, 1986. 120 с.
  21. Г. А., Кузнецова А. В., Шудло Н. А. Нейрогистологическая характеристика регенерирующих концов поврежденного нерва в условиях дозированного растяжения// Бюлл. эксперим. биологии и медицины. 1992. № 4 с. 439−442
  22. А.С. Морфология путей и связей центральной нервной системы. М., 1965. 142 с.
  23. В.В. Регенерация нейронов при нейропластических операциях. JL, 1975.200 с.
  24. .М. Регенерация. М., 1986. 245 с.
  25. В. Ф. Влияние пчелиного яда на белковый состав сыворотки крови и проницаемость кровеносных сосудов: Автореф. канд. дис. Горький, 1968. 18с.
  26. А.А. Гистогенез и регенерация тканей. JL, 1984. 232 с.
  27. Коган J1.M. Обольникова Е. А. Самохвалов Г. И. // Хим.-.фармакол. журн.1983. 17, № 4. С. 410 420.
  28. М.Э. Капиллярные сети некоторых органов // 5-й Всесоюзный съезд анатомов, гистологов и эмбриологов / Труды. М., 1951. — С. 178−180.
  29. Конькова J1. Г. Реакция организма на лучевое воздействие в условиях гипотермии: Автореф. канд. дис. Горький, 1968. 21с.
  30. ЗЬКорнева Н. В. Физиологический анализ рефлекторного действия некоторых животых ядов: Автореф. канд. дис. Горький, 1970. 20с.
  31. А. С., Ястребова Е. В., Крылов В. Н. Терапия лучевой болезни пчелиным ядом и солапивеном // Апитерапия сегодня: Сб. матер. 5-й конф. по апитерапии. Рыбное. 1997. С. 90−92.
  32. Н. Г. Воздействие апитоксина на некоторые показатели системы иммунитета в норме и при экспериментальном аллергическом энцефаломиелите Автореф. канд. дис. Челябинск, 1998. 19 с.
  33. Г. Н., Гельфанд В. Б., Попова Э. Н. Деструктивные и репаративные процессы при очаговых поражениях головного мозга. М., 1980. 214 с.
  34. И. В. Система крови при экспериментальном аллергическом энцефаломиелите и лечении его апитоксином: Автореф. канд. дис. Челябинск, 1998. 18с.
  35. Э.К. Регенерация / В кн.: Патоморфология нервной системы/ ред. И. Т. Никулеску. Бухарест, 1963. 986 с.
  36. , М.А. Реакция чувствительных нейронов спинномозгового узла на перерезку их периферических и центральных отростков / М. А. Крюков, А. Г. Гретен, П. В. Беличенко // Архив анат., гист. и эмбр.-1990.№ 11.-С.21−28.
  37. В. Н., Дерюгина А. В. Влияние пчелиного яда и его компонентов на электрофоретическую подвижность эритроцитов // Украинский биох. журн. 1998. Т. 70. № 2. С.32−37.
  38. В. Н. Действие пчелиного яда на коронарное кровообращение // Механизмы действия зоотоксинов. Горький, 1974. Т. 3. С. 125−129.
  39. В. Н. Пчелиный яд. Свойства, получение, применение. Н. Новгород, 1995.224с.
  40. В.Б. Определение скорости регенерации нерва в эксперименте// Пат.физиологич. и эксперим. терапия. 1986 № 3 с.73−77.
  41. В. Л. Функциональное состояние эритроцитов в условиях действия на организм природных биологически актвиных веществ (зоотоксинов): Автореф. дис. канд. биол. наук. Ашхабад, 1985. 22 с.
  42. В.И. К вопросу о кровоснабжении поясничного сплетения // Избранные вопросы морфологии нервной системы и кровоснабжениянервов: Труды кафедры нормальной анатомии человека / Челябинский медицинский институт. Челябинск, 1958.-С. 86−93.
  43. Л.Д. Основные проблемы учения о регенерации. М., 1975. 103с.
  44. B.C., Ласков В. Б., Жулев Н. М. Травмы нервов. Воронеж, 1989. 190с.
  45. Э.А. Лечение пчелиным ядом травматических заболеваний нервной системы // Межвуз. сб.: Механизмыдействия зоотоксинов. Горький, 1980. С.58−62.
  46. Э.А. Исследование акупунктурных точек для введения продуктов пчеловодства//Сб. науч. трудов НИИП. Рыбное, 1993.51 .Лудянский Э. А. Апитерапия. Вологда, 1994. 364 с.
  47. Л. Д. // В кн.: Итоги науки и техники. Сер. «Фармакология. Химиотерапевтические средства». М., 1991. Т. 27. С. 11−44.
  48. Л. Д. // Бюлл. экспер. биол. и мед. 1997. Т. 124, № 9. С. 244−254
  49. А.А. Ультраструктурные изменения и репаративные процессы в нервной системе при различных воздействиях. Л., 1991. 245с.
  50. М.Е., Чумасов Е. И. Регенерация седалищного нерва крысы после его различных экспериментальных повреждений// Архив анатомии гистологии и эмбриологии. 1988. № 10 с.30−35.
  51. А.Ф. Афферентный нейрон и нейродистрофические процессы. М., 1973. 168с.
  52. И. Н. Поведенческие аспекты действия пчелиного яда на центральную нервную систему // Вести. Нижегородск. гос. ун-та: Сб. научн. тр. асп. Н. Новгород, 1995. С. 15−16.
  53. .В. О кровоснабжении периферических нервов // Кровоснабжение центральной и периферической нервной системы человека. М., 1950. -С,-258−276.
  54. .Н., Гелашвили Д. Б. Зоотоксикология (ядовитые животные и их яды). М.: Высшая школа, 1985. 280 с.
  55. Е.А. О регенерации блуждающих нервов у человека. М., 1974. 86с.
  56. А.К. Травмы нервных стволов конечностей и их осложнения. Jl., 1982. 178с.
  57. В. И. Применение пчелиного яда как лечебного и противовоспалительного средства при пояснично-крестцовых радикулитах // Автореф. дисс. канд. биол. наук. Харьков, 1968.
  58. И.С. Регенерация нейронов чувствительного узла спинномозгового нерва: Автореферат дисс. докт. мед. наук: 03.00.25/ И. С. Рагинов.-Саранск, 2006.-26с.
  59. И.С., Челышев Ю. А., Шагидулин Г. Ф. Выживание в системе «чувствительный нейрон-шванновская клетка» при стимиуляции регенерации нерва ксимедоном// Бюлл. эксперим. биологии и медицины. 2001. № 3 с.275−278.
  60. , И. С. Взаимодействие чувствительных нейронов и клеток-сателлитов при стимуляции регенерации нерва / И. С. Рагинов, Ю. А. Челышев, Т. Ф. Шагидуллин // Морфология. -2002,-т. 122, № 4.- с. 37−39.
  61. С. А., Бобылева О. А., Крылов В. Н. Анализ гипертензивного эффекта пчелиного яда // Вести. Нижегородск. гос. ун-та: Сб. научн. тр. асп. Н. Новгород, 1995. С.12−14.
  62. К.И., Шаймардаова Г. Ф., Челышев Ю. А. Регенерация нервных волокон при лазерном облучении проекции спинномозговых нервов// Бюлл. эксперим. биологии и медицины 1998. № 3 с. 348−350.
  63. .А., Соломин А. Н. Осложнения при лечении травм нервов конечностей. JL, 1987. 96 с.
  64. П.М. Травматические повреждения нервов.// Руководство по нейротравматологии. М., 1962. Т.6 с.611−677.
  65. И.К., Мусеридзе Д. П. Рост аксонов в органотипической культуре спинного мозга// Бюлл. эксперим биологии и медицины 1990. № 2 с.186−188.
  66. И.К., Мусеридзе Д. П. Стимуляция роста и дифференциация аксонов и дендритов нейронов спинного мозга в тканевой культуре// Бюлл. эксперим. биологии и медицины. 1993. № 12 с. 650−652.
  67. И. Г., Киреева В. Ф., Полетаева Н. А. Количественные методы определения активности пчелиного яда. Сообщение 1. Гемолитический метод //Яды пчел и змей в биологии и медицине. Горький, 1976. С. 169−179.
  68. О.С., Ястрембски М. Я., Инсежарова Г. М. Морфологический анализ обработки протеазами поврежденных нервов// Бюлл. эксперим. биологии и медицины. 1995. № 4 с.439−443.
  69. П.Ф. Кровоснабжение периферических нервов в связи с их пучковым строением // Сборник работ по изучению нервной системы: Труды института / Воронежский медицинский институт. Воронеж, 1957. — Т.32. -С. 107−116.
  70. А. Е., Пурсанов К. А., Калашникова Jl. М. Пчелы, пчелиный яд, апитоксинотерапия. Н. Новгород., 2006. 388с.
  71. , Ю.А. Факторы поддержания регенерации периферических нервов /Ю.А. Челышев // Успехи физиологических наук.- 1995.- т. 26.- с. 57 77.
  72. , Ю.А. Выживание и фенотипическая характеристика аксотомированных нейронов спинальных ганглиев / Ю. А. Челышев, И. С. Рагинов, Д. С. Гусева, Р. Ф. Масгутов // Морфология.- 2004, — т. 125, № 3.- С. 45.
  73. , Е.И. Динамика восстановления структуры и функции седалищного нерва и рецепторов кожи при реиннервации задней конечности белой крысы / Е. И. Чумасов, Л. Д. Енин, К. М. Светикова, М. Е. Мирошникова // Бюл. Эксп. Биол.-1988.-т. 106, № 12. С. 728−732.
  74. А.К., Джиллиатт Р. У. Заболевания периферической нервной системы. Перевод с англ. М., 1987. 352с. biol. 1996. № 5 р.42−54.
  75. . С. Пчелиный яд и мед в комплексном лечении ряда заболеваний // Матер. Всесоюзн. конф. «Апитерапия. Биология и технология продуктов пчеловодства». Днепропетровск, 1988. С. 115−117.
  76. Aldskogius, Н The reaction of primary sensory neurons to peripheral nerve injury with particular emphasis on transganglionic changes / H. Aldskogius, J.
  77. Aldskogius, H. Effect of sciatic neurectomy on neuronal number and size distribution in the L7 ganglion of kittens / H. Aldskogius, M. Risling // Exp Neurol. 1981.-Vol. 74.-P. 597−604.
  78. Arvidsson, J. A quantitative study of effects of neonatal capsaicin treatment and of subsequent peripheral nerve transection in the adult rat / J. Arvidsson, J. Ygge // BrainRes.-1986.-Vol. 397, N1.-P. 10−16.
  79. Arvidsson, J. Cell loss in lumbar dorsal root ganglia and transganglionic degeneration after sciatic nerve resection in the rat / J. Arvidsson, J. Yagge, G. Grant//Brain Res. 1986.-Vol. 373, N 1−2.-P. 15−21.
  80. В., Lotti S., Lodi R. // Biochimie. 1998. № 80(10). P. 847−853.
  81. Battista A.F., Alban E. Effect of graded ligature compression on nerve conduction. Exp. Neurol. 1983, 80, № 1, 186−194.
  82. Beer G. M., Steurer J., Meyer V.E. Standardizing nerve crushes with a non-serrated clamp. J. Reconstr. Microsurg. 2001 Oct- 17(7): p. 531−534.
  83. Bontioti, E.N. Regeneration and functional recjvery in the upper extremity of rats after various types of nerve injuries / E.N. Bontioti, M. Kanje, L.B. Dahlin // J. Peripher. Nerv. Syst- 2003.- Vol. 8, N3.- P. 159 168.
  84. Busse R., Trogish G., Bassenge E. The role of endotelium in the control of vaskular tone//Basic Res. Cardiol. 1985. V. 80. P. 250−251.
  85. Carbonetto, S. Nerve fiber growth and the cellular response to axotomy / S. «Carbonetto, K. Miller// Current tropics in developmental, biology, 1983.-Chicago: Naples. P. 33 — 76.
  86. Cavanaugh, M.W. Quantitative effect of the peripheral innervation on nerves and spinal ganglion cells / M.W. Cavanaugh // J. Сотр. NeuroL- 1951.- Vol. 94.- P. 181 -219.
  87. Chan A., Reichmann H., Kogel A. et al. // J. Neurol. 1998. № 10. P. 681−685.
  88. Coggeshall, R.E. Central changes in primary afferent fibers following perifheral nerve lesions / R.E. Coggeshall, H.A. Lekan, T.P. Doubell, A. Auchorne et al. // Neuroscience. -1997. -Vol. 77, N 4. -P. 1115−1122.
  89. Devor, M. Proliferation of primary sensory neurons in adult rat dorsal ganglion and the kinetics of retrograde cell loss after sciatic section / M. Devor, R. Gorvin-Lippmann, I. Frank, P. Raber // Somatosens Res. 1985. — Vol 3, N 2. — P. 139 167.
  90. Devor, M. Neurogenesis in adult rat dorsal root ganglia / M. Devor, R. Gorvin-Lippman, I. Frank//Neurosci. Left. 1985.-Vol. 61.-P. 1−2.
  91. Dong Z., Cheng X., Gu Y. Effect of crushing of sciatic nerve on neuron of lumbar spinal cord. Zhongguo Xiu Fu Chong Jian Wai Ke Za Zhi. 1998 Mar- 12(2): 113−116.
  92. Donnerer, J. Regeneration of primary sensory neurons // Pharmacology. -2003.-Vol. 67.-P. 169−181.
  93. Fu, S.Y. The cellular and molecular basis of peripheral nerve regeneration / S.Y. Fu, T. Gordon // Mol Neurobiol. 1997. — Vol. 14. -P. 67 — 116.
  94. Fugleholm, K. Early peripheral nerve regeneration after crushing, sectioning, and freeze studied by implanted electrodes in the cat / K. Fugleholm, H. Schmalbruch, C. Krarup //J Neurosci. 1994. — Vol.14, N 5 Ptl. — P. 2659−2673.
  95. Fugleholm K., Schmalburch H., Krarup C. Post reinnervation maturation of myelinated nerve fibers in the cat tibial nerve: chronic electrophysiological and morphometric studies// Peripher nerv sysnem.2000.№ 5(2).p. 82−95.
  96. Ge X., Spector G.J., Carr C. The pathophysiology of compression injuries of the peripheral facial nerve. Laryngoscope 1982 Oct.- 92, p. 1−15.
  97. Gordon, T. Long-term response to nerve injury / T. Gordon, S.Y. Fu // Adv. Neurol. 1997. — Vol. 72.-P. 185−199.
  98. Groves, M.J. Profile of adult rat sensory neuron loss, apoptpsis and replacement after sciatic nerve crush / M.J. Groves, A. Schanzer, A.J. Simpson et al. II]. Neurocytol.-2003.-Vol. 32, N2.- P. 113−122.
  99. Groves, M.J. Axotomy-induced apoptosis in rat primary sensory neurons / M.J. Groves, T. Christopherson, B. Giometto, F. Scaravilli // Journal of Neurocytology. -1997.-Vol. 26. -P.615−624.
  100. Hallas B.H. Transplantation into the mammalian spinal cord//Expereientia. 1982. v.38 № 6 P.699−701.
  101. Habermann E., Reiz G. Ein Neues Vor fahren zur Gewinnung der kompenenten von Bienengift Jnslesodere des Zentralwirk Samen Peptides Apamin // Biochem.Z., 1965. 341. № 7. P.451.
  102. Hare, W. Reaction of dorsal root ganglion cells to section of peripheral and central processes / W. Hare, J. Hinsey//J. Сотр. Neurol.- 1940.-Vol.73.-P. 489 -502.
  103. Hart, M. A. Primary sensory neurons and satellite cells after peripheral axotomy in the adult rat: timecourse of cell death and elimination / A. Mckay Hart, T. Brannstrom, M. Wiberg, G. Terenghi // Exp. Brain Res. 2002.- Vol. 142, N3, — P. 308−318.
  104. Himes, B.T. Death of some) dorsal root ganglion neurons and plasticity of others following sciatic nerve section in aduit and neonatal rats / B.T. Himes, A. Tessler // J Comp Neurol. 1989. — Vol. 284, N 2. -P. 215−230.
  105. Hirt, A. Uder den Aufbau des Spinalganglions und seine Beziehungen zum sympathicus / A. Hirt // Z. ges. Anat. 1928.- Bd 87.- S. 275 — 318.
  106. Horch K. Guidance of regrowing sensory axons after cutaneous nerve lesions in the cat//Neurophysiology. 1979.42 № 5,1437−1449.
  107. Horch K., Linsey S. J.W. On the number and nature of regeneration myelinated axons after lesions of cutaneous nervs in the cat//Physiology, 1981.313,275−286.
  108. Houenou L., Li L., Lei M., Kent C., Tytell M. Exogenous heat shock cognate protein Hsc 70 prevents axotomy-induced death of spinal sensory neurons.// Cell. Stress. Chaperones.-1996.- V.I.- P.161- 166.
  109. Ide, С. Peripheral nerve regeneration I I Neurosci Res. 1996. — Vol. 25. — P. 101−121.
  110. Kamijo Y., Koyama J., Oikawa S., Koizumi Y. Regenerative process of the facial nerve: rate of regeneration of fibers and their bifurcations// Neurosci. Res. 2003 № 46(2). P. 135−143.
  111. Lee, K.H. Correlation of cell body size, axon size, and signal conduction velocity for individually labelled dorsal root ganglion cells in the cat / K.H. Lee, K. Chung, J.M. Chung, R.E. Coggeshall // J. Сотр. Neurol. 1986.- Vol. 243, N 3, — P. 335−346.
  112. Lekan, HA. Loss of dorsal root ganglion cells concominant with dorsal root axon sprouting following segmental nerve lesions / H.A. Lekan, K. Chung, Y.W. Yoon, J.M. Chung et al. //Neuroscience. 1997. — Vol. 81, N 2. — P. 527−534.
  113. Liss, A.G. Cell loss in sensory ganglia after peripheral nerve injury / A.G. Liss, F.W. af Ekenstam, M. Widerg // Scand J Reconstr Hand Surg. 1994. — Vol. 28. -P. 177−187.
  114. Lozeron, P. Regeneration of unmyelinated and myelinated sensory nerve fibres studied by a retrograde tracer method / P. Lozeron, C. Krarup, H. Schmalbruch // J. Neurosci Methods. 2004. — Vol. 138, N 1 — 2. — P. 225 — 232.
  115. Lundborg G. Structure and function of the intraneural microvessels as related to trauma, edema formation and nerve function // J. Bone Joint Surg. 1975. -Vol. 57a, № 7. p.938−948.
  116. Mackel R., Kunesch E., Waldhoz F. Reinervation of mechanoreceptors in the human glabrous skin// Brain Research. 1983.№ 2. P.49−65.
  117. Marx J.Z. Regeneration in the nervous system// Sciens 1980. v.209 № 4454 P.378−380.
  118. Milner Т., Stein R. The effects of axotomy on the conduction of action potentials in peripheral sensory and motor nerve fibres// J. Neurol., Neurosurg. And Psychiat. l981.№ 6. P.485−496.
  119. Mira J.C. Quantitativ studies of regeneration of rat myelinated nerve fibres: variations in the number and size of regenereting fibres after repeated localized freezing // J.Anatomy. 1979. v. 129. № 1 P. 77−99.
  120. Mira J. C., Pecot-Dechavassine M. Effets d’une congelation localisee d’une nerf peripherique sur la conduction de l’influx nerveux, au cours de la degenerescence et de la regeneration. Pflugers Arch., 1971, 330, № 1, P. 5−14.
  121. Oliveira E.F., Mazzer N., Barbieri C.H., Selli M. Correlation between functional index and morphometry to evaluate recovery of the rat sciatic nerve following crush injury: experimental study// Reconstr. Microsurg. 2001 № 17(1). P. 69−75.
  122. Oh, E.J. Changes in nerve growth factor levels in dorsal root ganglia and spinal nerves in a rat neuropathic pain model / E.J. Oh, YAV. Yoon, S.E. Lee, S.K. Hong // Exp. Brain Res. 2000. — Vol. 130. — P. 93−99.
  123. Ohara H., Kanaide H., Nakamura M., A. // J. mol.cell. Cardiol, 1981. V. 138. P. 741−753.
  124. Ochs G., Schenk M., Struppler A. Painful dysaesthesias following peripheral nerve injury: a clinical and electrophysiological study// Brain Research. 1989. № 1. P.228−240.
  125. Olivera E. F., Mazzer N., Barbieri C. N., Selli M. Correlation between functional index and morphometry to evaluate recovery of the rat sciatic nerve following crush injury: experimental study. J. Reconstr. Microsurg. 2001 Jan- 17(1): P. 69−75.
  126. Ohara H., Kanaide H., Nakamura M.//j. Mol. Cell. Cardiol., 1981. V.13, № 8, P. 741−753.
  127. Ranson, S.W. Retrograde degeneration in the spinal nerves / S.W. Ranson // J. Сотр. Neurol. 1906. — Vol. 14.- P. 265−293.
  128. Risling, M. Effects of sciatic nerve crush on the L7 spinal roots and dorsal root ganglia in kittens / M. Risling, H. Aldskogius, С Hildebrand // Exp Neurol. -1983.- Vol. 79, N1.- P. 176−187.
  129. Robinson P. The effect of injury on the properties of afferent fibres in the lingual nerve. J. Oral Maxillofac Surg. 1992 Feb- 30 (1): P. 39−45.
  130. Schmalbruch, H. Loss of sensoiy neurons after sciatic nerve section in the rat // Anat Rec. 1987. — Vol. 219, N 3. — P. 323−329.
  131. Shen, H. Changes in trkA expression in the dorsal root ganglion after peripheral nerve injury / H. Shen, J.M. Chung, RE. Coggeshall, K.S. Chung // Exp Brain Res.-1999.-Vol. 127.-P. 141−146.
  132. R.B., Niaz M.A. // Int. J. Cardiol. 1999. № 68(1). P. 23−29.
  133. Sorensen, B. No further loss of dorsal root ganglion cells after axotomy in p75 neurotrophin receptor knockout mice / B. Sorensen, T. Tandrup, M. Koltzenburg et al. // J. Com. Neurology.-2003.-Vol. 459.-P. 242 250.
  134. Sugavara H., Yamamoto T. et. al. // J. Biochem. 1990. V. 22. P. 477 -480.
  135. Swett ., Hong C., Miller P. Most dorsal root ganglion neurons of the adult rat survive nerve crush injury.// Somatosens. Motor Res.-1995.-V.12.-P.177−189.
  136. Tackmann W., Brennwald J., Nigst H. Sensory electroneurographic parameters and clinical recovery of sensibility in sutured human nerves// J. Neurol. 1983.№ 3.p. 195−206.
  137. Tandrup, T. Delayed loss of small dorsal root ganglion cells after transection of the rat sciatic nerve / T. Tandrup, C.J. Woolf, R.E. Coggeshalt // J Comp Neurol. -2000.-Vol. 422, N2.-P. 172−180.
  138. Terenghi, G. Peripheral nerve regeneration and neurotrophic factors. J Anat. -1999.-Vol. 194.-P. 1 -14.
  139. Toft, P.B. Axonal draching following crush lesions of peripheral nerves of rat / P, B. Toft, K. Fugleholm, H. Schmalbruch // Muscle Nerve. 1988.-Vol. 11, N8. -P. 880−889.
  140. Tohill, M. Stem-cell plasticity and therapy for injuries of the peripheral nervous system / M. Tohill, G. Terenghi // Biotechnol Appl Biochem. 2004. -Vol. 40, N1.-P. 17−24.
  141. Tyndall, D.A. Evaluation of peripheral nerve regeneration following crushing or transection injuries / D.A. Tundall, J.M. Gregg, J.S. Hanker // J. Oral Maxillofac Surg.-1984, — Vol. 42, N5.- P. 314−318.
  142. Verdu, E. Influence of aging on peripheral nerve function and regeneration / E. Verdu, D. Ceballos, J.J. Vilches et al. // J Periph Nerv Syst. 2000. — Vol. 5. — P. 191−208.
  143. Vestergaard, S. Effect of permanent axotomy on number and volume of dorsal root ganglion cell bodies / S. Vestergaard, T. Tandrup, J. Jakobsen // J. Comp Neurol. 1997.-Vol. 388, N2.-P. 307−312.
  144. Wilfrid J. Pathophysiology of nerve following mechanical injury// Amsterdam efc. l988.№ 7. P. 89−108.
  145. Ygge, J. Intercostal nerve transection and its effect on the dorsal root ganglion. A quantitative study on thoracic ganglion cell numbers and sizes in the rat / J. Ygge, H. Aldskogius // Exp Brain Res. 1984. — Vol. 55, N 3. — P. 402 — 408.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!