Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Разложение растительной и микробной биомассы и трансформация азота в серой лесной почве

ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Практическая значимость работы. Результаты исследований могут быть использованы при оценке и прогнозировании изменений азотного режима почв, при разработке целевых программ по ограничению антропогенной эмиссии парниковых газов, воспроизводству органического вещества почвы в агроэкосистемах путем эффективной утилизации растительных остатков. Полученные константы скорости минерализации растительной… Читать ещё >

Содержание

  • ГЛАВА 1. РАСТИТЕЛЬНЫЕ ОСТАТКИ И ПЛОДОРОДИЕ ПОЧВЫ (Обзор литературы)
    • 1. 1. Физические, химические и биологические функции растительных остатков в почве
    • 1. 2. Количество и качество растительных остатков в зависимости от вида и способа возделывания культур
    • 1. 3. Закономерности и особенности разложения растительных остатков 26 в почве
    • 1. 4. Растительные остатки как источник азота и фактор регулирования его трансформации в почве

Разложение растительной и микробной биомассы и трансформация азота в серой лесной почве (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность проблемы. Предотвращение деградации почвы и уменьшение риска экологических нарушений при производстве устойчиво высокого урожая сельскохозяйственных культур, всесторонняя биологизация агротехнологий и приоритетность органических средств воспроизводства почвенного плодородия — отличительные черты современных систем земледелия. Большое значение в решении этих задач отводится рациональному использованию пожнивно-корневых остатков и побочной продукции, увеличению доли промежуточных, сидеральных и бобовых культур в структуре севооборотов. Растительные остатки служат органической матрицей для новых почвенных агрегатов, источником аминокислот, лигнина и полифенолов, из которых образуются гумусовые вещества, комфортной средой колонизации почвенных микроорганизмов, в биомассе которых накапливаются значительные запасы потенциально-минерализуемых соединений углерода и азота. Поэтому поступление в почву органического вещества растительных остатков является одним из ключевых условий оптимизации свойств и режимов почвы, снижения потерь азота минеральных удобрений, повышения продуктивности сельскохозяйственных культур (Ганжара, 1997; Кудеяров, 1999; Назарюк, 2002 и другие).

Работы Александровой (1980), Аристовской (1980), Кононовой (1963), Бернса и Мартина (Burns, Martin, 1986), Дженкинсона (Jenkinson, 1977) и других авторов внесли существенный вклад в развитие теории микробной трансформации растительных остатков. Применение меченых по 13С, 14С, 15N материалов, способов количественного измерения микробной биомассы, методов математического моделирования позволило получить новые сведения о характере разложения в почве растительной и микробной биомассы, установить их роль в формировании активных пулов углерода и азота в почве, показать участие разных трофических групп микроорганизмов в трансформации поступающего в почву органического вещества (Фокин, 1996; Семенов и др., 2001; Lundquist et al, 1999; Mueller et al, 1998; Nicolardot et al, 2001; Trinsoutrot et al, 2000a- 2000b и другие). Вместе с тем, остается актуальным определение факторов, контролирующих скорость разложения растительных остатков, количественной оценки эффективности ассимиляции и минерализации углерода и азота микроорганизмами, обеспечения синхронизации минерализационно-иммобилизационных превращений азота с потреблением его растениями. Решение этих задач особенно важно при выборе оптимальных сроков и способов внесения повышенных норм растительной биомассы в почву, обеспечивающих пролонгированное улучшение плодородия почвы, эффективное секвестрирование углерода и стабилизацию азота с агрономическими и экологическими эффектами.

Цель и задачи исследований. Целью работы было исследование влияния разлагающихся остатков растительной и бактериальной биомассы на иммобилизационно-минерализационную оборачиваемость азота в почве и его газообразные потери.

В задачи исследований входило:

1. Определить скорость разложения в почве растительной и бактериальной биомассы в зависимости от внесенного количества и отношения C/N в ее составе;

2. Показать динамику включения в микробную биомассу почвы азота, высвобождающегося при разложении органических веществ;

3. Установить нетто-размеры минерализации и иммобилизации азота в почве в присутствии свежего органического вещества;

4. Оценить степень сопряжешюсти минерализацнонно-нммобшшзацнонных превращений азота с динамикой и размерами его потерь.

Научная новизна. Определены константы минерализации бактериальной массы и фитомассы разных культур, отличающейся по физиологической зрелости и отношению C/N. Показано, что скорость минерализации фитомассы, в отличие от бактериальной массы (C/N=4.7), снижается по мере увеличения внесенного количества при обратной зависимости с отношением C/N. Установлены критические отношения C/N в разлагающемся органическом веществе, при которых преобладает нетто-минерализация азота (C/N<10) или краткосрочная (C/N<20), умеренно-продолжительная (C/N<35) и долговременная (C/N>50) его нетто-иммобилизация. Показано, что азот растительной и бактериальной массы эффективно и быстро используется почвенными микроорганизмами, а степень его реминерализации зависит от обеспеченности почвенных микроорганизмов углеродом разлагающегося материала. Определены удельные величины неттоиммобилизации азота на единицу внесенного в почву углерода растительных остатков с разным отношением C/N при низкой и высокой обеспеченности почвы минеральным азотом. Получены новые данные, свидетельствующие как об ограничивающем, так и о стимулирующем эффекте внесенной в почву фитомассы на газообразные потери азота в зависимости от иммобилизационного или минерализациошюго статуса азотного режима. Показано влияние азотного удобрения, фитомассы, влажности почвы на эмиссию закиси азота, а также уточнены «эмиссионные коэффициенты» для разных ее источников.

Практическая значимость работы. Результаты исследований могут быть использованы при оценке и прогнозировании изменений азотного режима почв, при разработке целевых программ по ограничению антропогенной эмиссии парниковых газов, воспроизводству органического вещества почвы в агроэкосистемах путем эффективной утилизации растительных остатков. Полученные константы скорости минерализации растительной и бактериальной биомассы могут быть использованы в моделях трансформации органического вещества почвы. В целях рационального применения азотных удобрений расчет их доз следует производить, исходя из количества поступившего в почву углерода растительных остатков и удельной величины нетто-иммобилизации азота на единицу углерода.

Поддержка и благодарности. Работа выполнена в лаборатории почвенных циклов азота и углерода Института физико-химических и биологических проблем почвоведения РАН по планам НИР Института, в рамках проекта РФФИ (№ 01−448 536 «Разложение органического вещества и потоки углерода и азота в почве») и ФЦНТП (гос. контракт № 43.016.11.1625). Автор выражает искреннюю признательность и благодарность заведующему лабораторией доктору биологических наук, профессору В. Н. Кудеярову, старшему научному сотруднику, кандидату биологических наук Т. В. Кузнецовой, старшему научному сотруднику, кандидату биологических наук Л. А. Иванниковой, научному сотруднику Н. А. Семеновой, ведущим инженерам Е. М. Гультяевой, Л. Н. Розановой и В. АЛеошко за помощь в организации исследований и всестороннюю поддержку на разных этапах выполнения работы.

ВЫВОДЫ.

1. Разложение растительной и бактериальной биомассы в серой лесной почве имело отчетливую двухстадийную динамику с быстрой короткой и продолжительной медленной минерализацией при резком или плавном переходе от одной стадии к другой. Скорость разложения бактериальной массы с высоким содержанием азота (C/N=4.7) не зависела от внесенного количества, а фитомассы овса (C/N=26) снижалась по мере увеличения дозы. Отношение C/N в разлагающемся материале наиболее точно диагностирует начальную фазу минерализации. При расширении отношения C/N в фитомассе константа скорости ее минерализации снижалась. В зеленой фитомассе преобладали быстроразлагаемые (^>0.2 сут" 1) соединения, а в зрелой — медленноразлагаемые (^>0.02 сут" 1).

2. Внесение корней и надземной массы кукурузы и овса разной физиологической зрелости с C/N от 9 до 99 приводило к увеличению запасов микробного азота в почве в 1.2−2.0 раза с максимумом на 14−28-е сутки. На поздних стадиях трансформации растительного материала содержание микробного азота в почве постепенно снижалось, но оставалось на более высоком уровне, чем на контроле. К концу первой недели в биомассе почвенных микроорганизмов накапливалось 23−65% азота, внесенного с бактериальной и растительной биомассой. Размеры включения в микробную биомассу азота разлагающихся растительных остатков зависели в большей мере от их биохимического состава, чем от отношения C/N.

3. В течение 8-и недельной инкубации минерализовалось 47.9−50.0% азота биомассы Rhodobacter sphaerica без существенной зависимости от внесенного количества. Накопление в серой лесной почве минерализованного азота фитомассы уменьшалось по мере расширения C/N в разлагающемся материале, составив через 8 и 32 недели 1.4−16.7% и 5.9−15.2% от внесенного количества соответственно. Низкое накопление в почве минерализованного азота фитомассы было обусловлено его реиммобилизаций, которая стимулировалась наличием доступного углерода.

4. Размеры минерализации азота растительной биомассы были существенно ниже его ассимиляции микроорганизмами. Внесение фитомассы с C/N<18 было эффективным средством увеличения обеспеченности почвы минеральным и микробным азотом, а добавление растительного материала с отношением C/N>50 способствовало накоплению только азота микробной биомассы. Стимулирование накопления в почве бактериальной массы внесением растительных остатков является эффективным путем увеличения запасов потенциально-минерализуемого азота.

5. Внесение растительных остатков инициирует иммобилизацию как высвобождающегося из растительного материала азота, так и содержащегося в почве. Чем выше была доза растительных остатков, тем продолжительнее оказалась нетто-иммобилизация азота. Разложение бактериальной массы и фитомассы с C/N<10 давало нетто-минерализацию азота, а растительных остатков с более широким отношением углерода к азоту — краткосрочную (C/N<20), умеренно-продолжительную (C/N<35) или долговременную (C/N>50) нетто-, иммобилизацию. Критическое отношение C/N в растительных остатках, при котором преобладает минерализация или иммобилизация азота, была в зависимости от продолжительности инкубации ниже или выше, чем классическое 20−24.

6. Нетто-минерализации азота бактериальной массы в начале и в конце ее разложения составила в среднем 73 мг и 111 мг/г внесенного углерода (160 и 150 173 мг/г С-СОг, соответственно). Удельная величина нетто-иммобилизации азота в почве при внесении растительных остатков с C/N>18 менялась от 1.5 до 10.1 мг/г углерода в зависимости от их вида, дозы и стадии разложения. В период быстрой стадии разложения растительных остатков нетто-иммобилизация азота составляла в среднем 18, а в течение медленной стадии — 0−15 мг/г С-СОг. В почве с азотным удобрением удельные величины нетто-иммобилизации азота были в несколько раз выше, чем при фоновом низком содержании NMHH, достигая 56 мг/г углерода соломы.

7. Газообразные потери азота, высвобождающегося при разложении бактериальной и растительной биомассы, сокращались по мере расширения отношения C/N в субстрате, соответствуя динамике минерализационно-иммобилизационных превращений азота в почве. Чем больше минерализовалось азота растительных остатков, тем выше были его потери из почвы (г=0.973). Потери азота достоверно возрастали по мере увеличение его содержания в фитомассе (г=0.998) и сокращались с расширением отношения C/N (г=-0.698). Инициирование внесением соломы иммобилизации азота удобрений в почве способствовало уменьшению в 1.1−2.3 раза потерь азота из почвы в начале их трансформации. Внесение высоких доз соломы (СС0Л0мы/МУд0брения=34) усиливало газообразные потери азота удобрений.

8. Выделение закиси азота, образующейся при трансформации азотистых соединений, зависит в первую очередь от влажности почвы и условий, контролирующих состояние минерализационно-иммобилизационного цикла азота. Эмиссионный коэффициент азота почвы и удобрений составляет 2.45±0.69 кг N-N20/ra и 0.788±0.168% от внесенного количества, соответственно. В почве из-под леса и луга выделялось в 5.5 и 2 раза больше закиси азота по сравнению с пахотной. Внесение азотного удобрения вызывало существенное увеличение, выделения закиси азота. Добавление в почву небольшого количества растительных остатков приводило к быстрому увеличению эмиссии N20. По мере повышения дозы фитомассы образование N20 лимитировалось иммобилизацией азота в почве.

3.5.1.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Внесение соломы замедляло использование растениями азота из почвы и удобрений на ранних фазах развития кукурузы. По мере реминерализации свежеиммобилизованного азота удобрений темпы его потребления растениями возрастали. При отношении углерода соломы (Ссол.) к минеральному азоту удобрения (]МУд.) 11 растения потребляли почти такое же количество азота удобрения и почвы, как и при внесении одного азотного удобрения. С расширением отношения Ссол/Муд. до 34 использование азота удобрений кукурузой снижалось с 51 до 27% от внесенного, а урожай сухого вещества достоверно уменьшался.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Л.С., Гетманец А. Я., Турчин З. В. Общий и хозяйственный вынос элементов питания озимой пшеницы // Агрохимия. 1978. № 5. С. 50−56.
  2. О.Е. Агрометерологические аспекты использования азота бобовыми растениями при внесении соломы / Круговорот и баланс азота в системе почва -удобрение растение — вода. — М.: Наука. 1979. С.39−42.
  3. В.В., Агеева З. С. Накопление в различных звеньях севооборота пожнивно-корневых остатков и содержание в них азота, фосфора и калия // Агрохимия. 1978. № 2. С. 105−109.
  4. Агрохимические методы исследования почв. М.: Наука. 1975. 656 с.
  5. В.Б., Завлин А. А., Акулов П. Г., Соловиченко В. Д., Азаров Б. Ф. Влияние типов севообротов, спообов основной обработки почвы и уровней удобренности на содержание минерального азота в черноземе типичном // Агрохимия. 2003. № 3. С.5−17.
  6. Л.Н. Органическое вещество почвы и процессы его трансформации. Л.: Наука. 1980. 287 с.
  7. Ю.Е., Карпухина Е. А., Прилепский Н. Г. Растительный покров окрестностей Пущина. Пущино. 1992. 178 с.
  8. Е.И. Накопление и разложение растительных остатков полевых культур и влияние их на баланс органического вещества и питательных элементов в дерново-подзолисгой почве // Агрохимия. 1978. № 4. С. 57−63.
  9. В.М. Изменение серых лесных почв при сельскохозяйственном использовании //Почвоведение. 1979. № 1. С. 37−47.
  10. В.М. Палеокриогенез и современное почвообразование. ОНТИ. Пущино: 1995. 320 с.
  11. Т.В. Микробиологические процессы почвообразования. Л.: Наука. 1980. 187 с.
  12. .П. К истории формирования серых лесных почв Среднерусской лесостепи // Почвоведение. 1992. № 3. С. 5−18.
  13. В.Б. Влияние сидератов на продукционные процессы в севообороте // Вестник Российской академии сельскохозяйственных наук. 2002. № 1. С. 77−80.
  14. A.M., Косянчук В. П. Возделывание картофеля с использованием сидератов // Земледелие. 1999. № 4. С. 26.
  15. Биоценозы окрестностей Пущина. Сборник научных, трудов. Пущино. 1990. 154 с.
  16. С.А., Благодатская Е. В., Горбенко А. Ю., Паников Н. С. Регидратационный метод определения микробной биомассы в почве // Почвоведение. 1987. № 4. С. 64−71.
  17. И.К., Лихачев А. Ф. Влияние зерно-льняно-травяных севооборотов на агрохимические свойства почвы и оценка продуктивности севооборотов // Агрохимия. 1971. № 5. С. 25−30.
  18. П.Т., Ступаков И. А. Влияние корневых и пожнивных остатков на плодородие почвы и урожай конопли // Агрохимия. 1973. № 2. С. 83−89.
  19. А.Н., Кудеяров В. Н. Определение нитратов в почве, воде и растениях // Химия в сельском хозяйстве. 1982. № 4. С. 49−51.
  20. Е.А. Оптимизация пищевого режима серых лесных почв // Оптимизация свойств почв Нечерноземья и повышение их плодородия (Научные труды). М. 1984. с. 35−42.
  21. М.Г. Корневые остатки в поукосных посевах источник биологического азота в почве. //Агрохимия. 1977. № 4. С. 28−30.
  22. В.А., Лукьяненков И. И., Минеев В. Г. и др. Органические удобрения в интенсивном земледелии. М.: Колос. 1984. 303 с.
  23. Ю.М., Попова Ж. П., Новиков М. Н. и др. Сидераты как фактор биологизации земледелия // Земледелие. 1999. № 1. с. 44.
  24. Н.Ф. Концептуальная модель гумусообразования // Почвоведение. 1997. № 9. С. 1075−1080.
  25. Н.Ф., Солодова Т. А. О скорости разложения свежих органических веществ в почвах // Современные процессы почвообразования и их регулирование в условиях интенсивных систем земледелия. М.: 1985. С. 18−23.
  26. М.Л., Романовская А. А., Карабань Р. Т., Конюшков Д. Е., Назаров И. М. Эмиссия закиси азота при использовании минеральных удобрений в России // Почвоведение. 2000. № 8. С. 943−950.
  27. А.В., Придворев Н. И., Верзилин В. В. Трансформация послеуборочных остатков и содержание водорастворимого гумуса в черноземе выщелоченном // Агрохимия. 2004. № 2. С. 13−22.
  28. А.В., Придворев Н. И., Морозова Е. В. Трансформация послеуборочных остатков и содержание в почве подвижных гумусовых веществ // Агрохимия. 2001. № 11. С. 26−33.
  29. Г. И., Кочетова Т. Г. О величине компенсирующих доз азотных удобрений // Проблема азота в интенсивном земледелии. Новосибирск: 1990. С. 2829.
  30. А.А., Пасынков А. В., Пономарев М. И., Козлова J1.M., Пасынкова Е. Н. Роль бобовых культур в земледелии Кировской области // Агрохимия. 2002. № 6. С. 66−71.
  31. Г. А. Лекции по природоведческой микробиологии. М.: Наука. 2004. 348 с.
  32. А.С., Руцкая С. И., Колибабчук Т. В. Влияние удобрений на потребление элементов питания культурами зерно-свекловичного севооборота на черноземе оподзоленном //Агрохимия. 2003. № 6. С. 39−46.
  33. Земельный вопрос / Под ред. Е. С. Строева М.: Колос. 1999. 535 с.
  34. С.Н. Влияние расчетных доз минеральных удобрений на продуктивность полевых культур и баланс гумуса в звене севооборота с занятым и сидеральным паром на черноземе обыкновенном в Среднем Поволжье // Агрохимия. 2001. № 3. С. 9−13.
  35. Л. А. Способ определения кинетики минерализации органического вещества почвы // Патент. 1993. SU № 1 806 375 A3.
  36. Л.А. Способ опрежедения минерализации органических веществ в почве по количеству продуцируемого С02 // Методы исследований органического вещества почв. М.: Россельхозакадемия ГНУ ВНИПТИОУ. 2005. С. 376−385.
  37. П.К., Семенова А. Б. Свежее органическое вещество и плодородие почвы // Труды Саратовского с.-х. института. Саратов: СХИ. 1969. Т. 24. С. 27−57.
  38. С. С. Биологический круговорот веществ в земледелии на карбонатном черноземе// Агрохимия. 1978. № 2. С. 75−83.
  39. В.Е. Накопление питательных веществ за счет пожнивных и корневых остатков зерновых культур в обыкновенном черноземе // Агрохимия. 1981. № 2. С. 49−53.
  40. Е.М. Эффективность сидератов в севооборотах адаптивного земледелия // Научные основы стратегии адаптивного растениеводства Северо-Востока Европейской части России: Материалы науч.-пракг. конф. Киров, 1999. 4.1. С. 200−207.
  41. Т.Г. Влияние удобрений на накопление корневых и пожнивных остатков культурами зерно-картофельного севооборота на дерново-подзолистой почве//Агрохимия. 1971. № 5. С. 19−24.
  42. Г. В., Куликова А. Х., Корнеев Е. А., Хвостов Н. В. Использование соломы для удобрения гороха на типичном черноземе лесостепи Поволжья // Агрохимия. 2002. № 11. С. 43−49.
  43. М.М. Органическое вещество почв, его природа, свойства и методы изучения. М.: Изд-во АН СССР. 1963. 314 с.
  44. Д.А. Агрохимия азотных удобрений. М.: Наука. 1976. 223 с.
  45. Н.И. Накопление растительных остатков и питательных веществ в почве культурами севооборота. // Агрохимия. 1977. № 3. С. 61−65.
  46. М.И. Использование клевера лугового и микроэлемента меди в ресурсосберегающей технологии возделывания яровой твердой пшеницы на черноземе выщелоченном // Агрохимия. 2002. № 2. С. 32−41.
  47. В.Н. Азотно-углеродный баланс в почве // Почвоведение. 1999. № 1.С. 73−82.
  48. В.Н. К методике определения общего азота в почвах и растениях // Агрохимия. 1972. № 11. С. 125−128.
  49. В.Н. Колориметрическое определение аммонийного азота в почвах и растениях феноловым методом // Агрохимия. 1965. № 6. С. 146−151.
  50. В.Н. Цикл азота в почве и эффективность удобрений. М.: Наука. 1989.216 с.
  51. В.Н. Азотный цикл и продуцирование закиси азота // Почвоведение. 1999. № 8. С. 988−998.
  52. Т.В., Тулина А. С., Семенов В. М., Кудеяров В. Н. О сопряженности процессов метаболизма углерода и азота в почве // Почвоведение. 1998. № 7. С. 832−839.
  53. Т.В., Семенов А. В., Ходжаева А. К., Иванникова J1.A., Семенов
  54. B.М. Накопление азота в микробной биомассе серой лесной почвы при разложении растительных остатков // Агрохимия. 2003. № 10. С. 3−12.
  55. Ф.И. Количество растительных остатков в почвах полевых культур и его определение по урожаю основной продукции // Агрохимия. № 8. 1977. С.36−43
  56. Ф.И., Белозеров С. М., Диваченко B.C. Изменение параметров биологического круговорота азота, фосфора и калия при использовании промежуточных кулыур на дерново-подзолистых почвах // Агрохимия. 1985. № 9.1. C. 68−75.
  57. О.А. Превращение в почве и использование растениями азота зеленого удобрения / Круговорот и баланс азота в системе почва удобрение -растение — вода. — М.: Наука. 1979. С. 42−44.
  58. А.Ю. Влияние сидерации на урожайность льна-долгунца на дерново-подзолистой почве//Агрохимия. 2001. № 9. С. 40−46.
  59. В. Г. Пути экологизации и биологизации земледелия Центрального экономического района // Агроэкологическая оптимизация земледелия. ВНИИЗиЗПЭ. Курск: 2004. С. 75−80.
  60. В.Г. Севооборот и биологизация земледелия // Вест. с.-х. науки. 1992. № 2. С. 19−25.
  61. A.M. Воспроизводство плодородия почв в Нечерноземной зоне. М.: Россельхозиздат. 1982. 143 с.
  62. П.И. Растительные остатки полевых культур севооборота и их влияние на некоторые показатели плодородия легких супесчаных почв // Агрохимия. 1981. № 6. С. 93−101.
  63. .Н. Газовый режим почвы. М.: Агропромиздат. 1988. 105 с.
  64. А.А., Калинина В. Р., Резанов П. Н. Влияние антропогенного фактора на структуру и функциональность ландшафтов южного Подмосковья // Вестник Московского Ун-та. Сер. Почвоведение 1990. № 6. С. 30−36.
  65. А.Ш., Мамилов Ш. З., Звягинцев Д. Г. ' Влияние трудногидролизуемых источников углерода на динамику микробной биомассы и дыхание почвы // Вестник Московского Ун-та. Сер. 17. Почвоведение. 1999. № 1. С. 51−54.
  66. Н.А., Степанов А. Л., Умаров М. М. Особенности микробной трансформации азота в водопрочных агрегатах почв разных типов // Почвоведение. 2001. № 10. С. 1261−1267.
  67. В.М. Баланс и трансформация азота в агроэкосистемах. Издательство СО РАН. Новосибирск: 2002.257 с.
  68. В.Л. Влияние возделывания и приемов заделки промежуточных сидератов на урожайность яровых культур и показатели плодородия светло-серых лесных почв Нижегородской области: Автореф.дис.. канд. с.-х. наук. Йошкар-Ола. 1999. 17с.
  69. И.М., Безлер Н. В., Боронтов O.K. Влияние удобрений и зяблевой обработки чернозема выщелоченного на почвенную микрофлору и продуктивность культур севооборота //Агрохимия. 2004. № 2. С. 5−12.
  70. М.Н. Сидераты в СССР: сегодня и завтра // Земледелие. 1991. № 1. С. 63−64.
  71. Н.Л., Софьин А. В., Кудрявцева Н. Н., Карпачевский Л. О., Зубкова Т. А., Романов В. И. Современные представления и биохимических процессах в почве//Вестник Московского Ун-та. Сер. 17. Почвоведение. № 2. 2001. С. 13−19.
  72. Рекомендации для исследования баланса и трансформации органического вещества при сельскохозяйственном использовании и интенсивном окультуривании почв. Отв. Редактор Л. Л. Шишов. М.: Почвенный институт им. В. В. Докучаева. 1984. 96 с.
  73. А.А., Баршадская С. И., Молчанов И. Б. Агроэкологические аспекты возделывания озимой пшеницы на обыкновенном черноземе Западного Предкавказья // Вестник Российской академии сельскохозяйственных наук. 2005. № 1. С.28−31.
  74. А.Д. Пожнивно-корневые остатки и их роль в изменении условий почвенного плодородия //Агрохимия. 1976. № 1 С. 95−100.
  75. В.М., Кузнецова Т. В., Кудеяров В. Н. Иммобилизационно-мобилизационные превращения азота в серой лесной почве. // Почвоведение. 1995. № 4. С. 472−479.
  76. В.М., Кузнецова Т. В., Кудеяров В. Н. Высвобождение доступного для растений азота при минерализации активной фазы органического вещества почвы // Почвоведение. 1995. № 6. С. 732−739.
  77. В.М., Иванникова Л. А., Кузнецова Т. В., Семенова Н. А. Роль растительной биомассы в формировании активного пула органического вещества почвы//Почвоведение. 2004. № 11. С. 1350−1359.
  78. В.М., Кузнецова Т. В., Иванникова Л. А., Семенова Н. А., Лисова Е. П. Участие растительной биомассы в формировании активной фазы почвенного азота// Агрохимия. 2001. № 7. С. 5−12.
  79. В.М., Кузнецова Т. В., Кудеяров В. Н. Определение содержания и скорости обновления азота активной фазы почвы в опыте с 15N мечеными удобрением и почвами. //Почвоведение. 1999. № 4. С. 512−520.
  80. В.М., Семенов A.M., Ван Бругген А.Х.К., Феррис X., Кузнецова Т. В. Трансформация азота почвы и растительных остатков сообществом микроорганизмов и микроскопических животных // Агрохимия. 2002. № 1. С. 5−11.
  81. В.М., Кузнецова Т. В., Ходжаева А. К., Семенова Н. А., Кудеяров В. Н. Почвенная эмиссия закиси азота: влияние природных и агрогенных факторов // Агрохимия. 2004. № 1. С.30−39.
  82. В.В., Янишевский Ф. В., Муравин Э. А. Использование ячменем меченного азота растительной массы бобовых культур с разным соотношением C:N при применении ингибитора нитрификации // Агрохимия. 2000. № 6. С. 42−51.
  83. Ю.И., Сидорова Г. М. Роль пожнивно-корневых остатков полевых культур в балансе органического вещества почвы. // Проблемы гумуса в земледелии. Новосибирск. 1986. С. 60−62.
  84. А.Ф. Накопление корневых и пожнивных остатков полевых культур в почве и содержание в них питательных веществ // Агрохимия. 1981. № 8. С. 70−74.
  85. А.А. Иммобилизация и использование азота минеральных удобрений при внесении с растительными остатками //Агрохимия. 1975. № 5. С. 13−16.
  86. А.А. Использование растениями азота почвы и удобрений // Агрохимия. 1978. № 2. С. 15−19.
  87. А.А. Усвоение растениями, закрепление в почве и потери азота растительных остатков // Агрохимия. 1979. № 6. С. 12−17.
  88. И.П., Яговенко JI.JL, Поликарпова Н. Я., Козлова В. И. Баланс гумуса серой лесной почвы в севооборотах при разных способах использования люпина // Агрохимия. 1995. № 12. С. 32−39.
  89. И.П., Яговенко JI.JI., Яговенко Г. Л. Экологическая устойчивость севооборотов с люпином и роль в повышении урожайности и сохранении плодородия почвы // Докл. РАСХН. 2000. № 5. С. 27−29.
  90. С.Я., Дорофеевх Е. И. О разложении хвойного опада в южнотаежных почвах разной степени гидроморфизма // Вестник Московского Унта. Сер. 17. Почвоведение. 1999. № 1. С. 3−8.
  91. С.Я., Толпешта И. И., Соколова Т. А. Опыт изучения растительного материала и органогенных почвенных горизонтов методами термического анализа // Вестник Московского Ун-та. Сер. 17. Почвоведение. 1999. № 2 С. 3−10.
  92. В.А. Удобрение соломой и содержание подвижных форм азота в почве // Агрохимия. 1977. № 8. С. 102−107.
  93. О.Д., Соколов М. С., Павлова Т. В. Использование супрессивности почвы в защите растений от корневых инфекций // Агрохимия. 1997. № 8. С. 81−92.
  94. А. Д. Идеи В.В. Докучаева и проблема органического вещества почв // Почвоведение. 1996. № 2. С. 187−196.
  95. В.П. Роль минеральных удобрений в накоплении растительных остатков //Агрохимия. 1979. № 1. С. 60−65.
  96. Г. Г. Влияние обработки почвы на условия минерального питания растений и эффективность удобрений. Обзорная информация. М.: ВНИИТЭИСХ, 1985. с.
  97. Чимитдоржиева Г. Д, Нимаева С. Ш. Мелиоративная роль растительных остатков рапса и ячменя в плодородии лугово-черноземных почв // Сиб. Биол. Журнал. Новосибирск: Наука. 1991. Вып. 5. С. 53−58.
  98. Чуб М.П., Медведев И. Ф., Потатурина Н. В., Пронько В. В. Современное состояние плодородия почв Саратовской области // Агрохимия. 2003. № 4. С. 5−13.
  99. В.В. Поступление и разложение растительных остатков в агроценозах Средней Сибири // Почвоведение. 2001. № 2. С. 204−214.
  100. И.М., Новиков А. А. Послеуборочные остатки полевых культур в зернопропашном севообороте // Агрохимия. 1985. № 1. С.48−51.
  101. И.Н., Букреева С.Л.Разложение меченной 14С пшеничной соломы в субстратах различного гранулометрического состава // Почвоведение. 2004. № 4. С. 485−488.
  102. С.П. Накопление пожнивных и корневых остатков полевых культур в черноземе обыкновенном // Степное земледелие. Киев: 1984. № 18. С.3−6.
  103. Л.Н. Микробная сукцессия при трансформации органического вещества //Почвоведение. 2004. № 8. С. 967−975.
  104. Л.Л., Такунов И. П., Яговенко Г. Л. Влияние люпина на свойства почвы при его запашке на сидерацию // Агрохимия. 2003. № 6. С.71−80.
  105. Acton С. J., Rennie D.A., Paul Е.А. The relationship between polysaccharides to soil aggregation // Canad. J. Soil Sci. 1963. V. 43. P. 201−209.
  106. Ajwa H.A., Tabatabai M.A. Decomposition of different organic materials in soils //Biology andFertil. Soils. 1994. V. 18. P. 175−182.
  107. Allison M.F., Killham K. Response of soil microbial biomass to straw incorporation // J. Soil Sci. 1988. V. 39. P. 237−242.
  108. Ambus P. Jensen E.S. Nitrogen mineralization and denitrification as influenced by crop residue particle size // Plant and Soil. 1997. V. 197. P. 261−270.
  109. Amezketa E. Soil aggregate stability: a review // Journal of Sustainable Agriculture. 1999. V. 14. P. 83−151.
  110. Andersen M.K., Jensen L.S. Low soil temperature effects on short termgross N mineralisation-immobilisation turnover after incorporation of a green manure // Soil Biology andBiochem. 2001. V. 33. P. 511−521.
  111. Angers D.A., Recous S. Decomposition of wheat straw and rye residues as affected by particle size // Plant and Soil. 1997. V. 189. P. 197−203.
  112. Augustin J., Merbach W., Rogasik J. Factors influencing nitrous oxide and methane emission from minerotrophic fens in northeast Germany // Biol. Fertil. Soils. 1998. V.28.P. 1−4.
  113. Aulakh M.S., Doran J.W., Mosier A.R. Soil denitrification significance, measurement, and effects of management // Adv. Soil Sci. 1992. V.18. P. 1−57.
  114. Azam F., Malik K.A., Sajjad M.I. Transformation in soil and availability to plants of 15N applied as inorganic fertilizer and legume residues // Plant and Soil. 1985. V. 86. P. 3−13.
  115. Balesdent J., Balabane M., Major contribution of roots to soil carbon storage inferred from maize cultivated soils // Soil Biology and Biochem. 1996. V. 28. P. 12 611 263.
  116. Barraclough D. The direct or MIT route for nitrogen immobilization: a 15N mirror image study with leucine and glycine // Soil Biology and Biochem. 1997. V. 29. P. 101— 108.
  117. Bending G.D., Turner M.K., Burns I.G. Fate of nitrogen from crop residues as affected by biochemical quality and the microbial biomass // Soil Biology and Biochem. 1998. V. 30. No. 14. P. 2055−2065.
  118. Black A.L. Soil property changes associated with crop residue management in a wheat-fallow rotation // Soil Sci. Soc. Amer. Proc. J. 1973. V. 37. P. 943−946.
  119. Blackmer A.M., Green C.J. Nitrogen turnover by sequential immobilization and mineralization during residue decomposition in soil // Soil Sci. Soc. Am. J. 1995. V. 59. P. 1052−1058.
  120. Bolinder M.A., Angers D.A., Giroux M., Laverdiere M.R. Estimating С inputs retained as soil organic matter from corn (Zea mays L.) // Plant and Soil. 1999. V. 215. P. 85−91.
  121. Bossuyt H., Denef K., Six J., Frey S.D., Merckx R., Paustian K. Influence of microbial populations and residue quality on aggregate stability // Applied Soil Ecology. 2001. V. 16. P. 195−208.
  122. Breland T.A. Modelling mineralization of plant residues in soil: effect of physicalprotection // Biology and Fertil. Soils. 1997. V. 25,233−239.
  123. Bremer E., van Houtum W., van Kessel C. Carbon dioxide evolution from wheat and lentil residues as affected by grinding, added nitrogen, and the absence of soil // Biology and Fertil. Soils. 1991. V. l 1. P. 221−227.t
  124. Bronick С J., Lai R. Soil structure and management: a review // Geoderma. 2005. V. 124. P. 3 -22.
  125. Burns R.G., Martin J.P. Biodegradation of organic residues in soil // Microfloral and Faunal Interactions in Natural, and Agro-ecosystems. M.J.Mitchell, J.P.Nakos (Eds). Boston: 1986. P. 137−202.
  126. Capasso R., Evidente A., Schivo L., Orru G., Marcialis M.A., Cristinzio G. Antibacterial polyphenols from olive oil mill waste waters // J. Applied Bacteriology. 1995. V. 79. P. 393−398.
  127. Castaldi S. Responses of nitrous oxide, dinitrogen consumption to temperature in forest and agricultural light textured soils determined by model experiment // Biol, and Fertil. Soils. 2000. V. 32. P. 67−72.
  128. Chen G.X., Huang G.H., Huang В., Yu K.W., Wu J., Xu H. Nitrous oxide and methane emissions from soil-plant system // Nutrient Cycl. in Agroecosyst. 1997. V. 49. P. 41−45.
  129. Chotte J.L., Ladd J.N., Amato M. Sites of microbial assimilation, and turnover of soluble and particulate 14C-labelled substrates decomposing in a clay soil // Soil Biology and Biochem. 1998. V. 30. P. 205−218.
  130. Cochran V.L., Elliot F.L., Papendick R.L. Carbon and nitrogen movement from surface applied wheat (Triticum aestuorum) straw // Soil Sci. Soc. Amer. J. 1980. V. 44, No 5, P.978−982.
  131. Collins H.P., Elliott E.T., Paustian K., Bundy L.G., Dick W.A., Huggins D.R., Smucker A.J.M., Paul E.A. Soil carbon pools and fluxes in long-term corn belt agroecosystems // Soil Biology and Biochem. 2000. V. 32. P. 157−168.
  132. Corre M.D., Van Kessel C., Pennock D.J. Landscape and seasonal patterns of nitrous oxide emissions in semiarid region // Soil Sci. Soc. Am. J. 1996. V. 60. P. 1806* 1815.
  133. Davenport J.R., Thomas R.L., Mott S.C. Carbon mineralization of corn (Zea mays L.) and bromegrass (Bromus inermis Leyss) components with an emphasis on the below-ground carbon // Soil Biology and Biochem. 1988. V. 20. P. 471−476.
  134. De Gryze S., Six J., Brits C., Merckx R. A quantification of short-term macroaggregate dynamics: influences of wheat residue input and texture // Soil Biology and Biochem. 2005. V. 37. P. 55−66.
  135. De Neve S, Saez S.G., Daguilar B.C., Sleutel S., Hofman G. Manipulating N mineralization from high N crop residues using on- and off-farm organic materials // Soil Biology, and Biochem. 2004. V. 36. P. 127−134.
  136. De Neve S., Hofman G. Modelling N mineralization of vegetable crop residues during laboratory incubations // Soil Biology and Biochem. 1996. V. 28. No. 10/11. P. 1451−1457.
  137. De Neve S., Pannier J., Hofman G. Temperature effects on C- and N-mineralization from vegetable crop residues // Plant and Soil. 1996. V. 181. P. 25−30.
  138. Dejoux J-F., Recous S., Meynard J-M., Trinsoutrot I., Leterme L. The fate of nitrogen from winter-frozen rapeseed leaves: mineralization, fluxes to the environment and uptake by rapeseed crop in spring // Plant and Soil. 2000. V. 218. P. 257−272.
  139. Devevre O.C., Horvvath W.R. Decomposition of rice straw and microbial carbon use efficiency under different soil temperature and moistures // Soil Biology and Biochem. 2000. Vol. 32. P. 1773−1785.
  140. Edwards A.P., Bremner J.M. Microaggregates in soils // J. Soil Sci. 1967. V. 18. P. 64−73.
  141. Elliott L.F., Lynch J.M. The effect of available carbon and nitrogen in straw on soil and ash aggregation and acetic acid production // Plant and Soil. 1984. V. 78. P. 335 343.
  142. Elliott L.F., Papendick R.I. Crop residue management for improved soil productivity //Biol.Agric. and Hort. 1986. V. 3. No. 2−3. P. 131−142.
  143. Falih A.M.K., Wainwright M. Microbial and enzyme activity in soils amended with a natural source of easily available carbon // Biology and Fertil. Soils. 1996. V. 21. P.177−183.
  144. Foereid В., de Neergaard A., Hogh-Jensen H. Turnover of organic matter in a Miscanthus field: effect of time in Miscanthus cultivation and inorganic nitrogen supply // Soil Biology and Biochem. 2004. V. 36. P. 1075−1085.
  145. Fog K. The effect of added nitrogen on the rate of decomposition of organic matter // Biol. Review. 1988. Vol. 63. P. 433−462.
  146. Fox R. H., Myers R. J., Vallis I. The nitrogen mineralization rate of legume residues in soils as influenced by their polyphenol, lignin and nitrogen contents // Plant and Soil. 1990. V. 129. P. 251−259.
  147. Frankenberger W.T., Abdelmagid H.M. Kinetic parameters of nitrogen mineralization rates of leguminous crops incorporated into soil // Plant and Soil. 1985. V. 87. P. 257−271.
  148. Freney J.R. Emission of nitrous oxide from soils used for agriculture // Nutrient Cycl. in Agroecosyst. 1997. V. 49. P. 1−6.
  149. Gaillard V., Chenu C., Recous S. Carbon mineralisation in soil adjacent to plant residues of contrasting biochemical quality // Soil Biology and Biochem. 2003. V. 35. P. 93−99.
  150. Gilmour J.T., Clark M.D., Sigua G.C. Estimation of net nitrogen mineralization from carbon dioxide evolution // Soil Sci. Soc. Amer. J. 1985. V. 49. P. 1398−1402.
  151. Gilmour J.T., Mauromoustakos A., Gale P.M., Norman R.J. Kinetics of crop residue decomposition: variability among crops and years // Soil Sci. Soc. Am. J. 1998. V. 62. P. 750−755.
  152. Gok M., Ottow J.C.G. Effect of cellulose and straw incorporation in soil on total denitrification and nitrogen immobilization at initially aerobic and permanent anaerobic conditions //Biology and Fertil. Soils. 1988. V. 5. P. 317−322.
  153. Green C.J., Blackmer A.M. Residue decomposition effects on nitrogen availability to corn following corn or soybean // Soil Sci. Soc. Amer. J. 1995. V. 59. P. 1065−1070.
  154. Hadas A., Kautsky L., Goek M., Kara E.E. Rates of decomposition of plant residues and available nitrogen in soil, related to residue composition through simulation of carbon and nitrogen turnover// Soil Biol, and Biochem. 2004. V. 36. P. 255−266.
  155. Handayanto E., Cadisch G., Giller K.E. Manipulation of quality and mineralization from legume tree prunings by varying nitrogen supply // Plant and Soil. 1995. V. 176. P. 149−160.
  156. Handayanto E., Giller K.E., Cadisch G. Regulating N release from legume tree prunings by mixing residues of different quality // Soil Biology and Biochem. 1997. V,-29. No. 9/10. P. 1417−1426.
  157. Hansen S., Jensen H.E., Nielsen N.E., Svendsen H. Simulation of nitrogen dynamics and biomass production in winter wheat using the Danish simulation model Daisy. // Fertil. Research. 1991. V. 27. P. 245−259.
  158. Harris R.F., Allen O.N., Chesters G., Attoe O.J. Mechanisms involved in soil aggregate stabilization by fungi and bacteria. // Soil Sci. Soc. Am. Proc. 1964. V. 28. P. 529−532.
  159. Haynes R.J., Mokolobate M.S. Amelioration of Al toxicity and P deficiency in acid soils by additions of organic residues: a critical review of the phenomenon and the mechanisms involved. // Nutrient Cycling in Agroecosystems. 2001. V. 59. P. 47−63.
  160. Heal O.W., Anderson J.M., Swift M.J. Plant litter quality and decomposition: an historical overview // Driven by Nature: Plant Litter Quality and Decomposition. G. Cadish, K.E. Giller (Eds.). CAB International. Wallingford: 1997. P. 47−66.
  161. Heincke M., Kaupenjohann M. Effects of soil solution on the dynamics of N20 emissions: a review //Nutrient Cycl. in Agroecosyst. 1999. V. 55. P. 133−157.
  162. Henriksen T.M., Breland T.A. Evaluation of criteria for describing crop residue degradability in a model of carbon and nitrogen turnover in soil // Soil Biology and Biochem. 1999a. V.31.P. 1135−1149.
  163. Henriksen T.M., Breland T.A. Nitrogen availability effects on carbon mineralization, fungal and bacterial growth, and enzyme activity during decomposition of wheat straw in soil // Soil Biology and Biochem. 1999b. V. 31. P. 1121−1134.
  164. Herman W.A., McGill W.B., Doormaar J.F. Effects of initial chemical composition on decomposition of roots of three species // Canad. J. Soil Science. 1977. V. 57. P. 205−215.
  165. Hunt H.W. A simulation model for decomposition in grasslands // Ecology. 1977. V. 58. P. 469−484.
  166. Jans-Hammermeister D.C., McGill W.B. Evaluation of three simulation models used to describe plant residue decomposition in soil // Ecological Modelling. 1997. V. 104. P. 1−13.
  167. Janzen H.H., Kucey R.M.N. C, N, and S mineralization of crop residue as influenced by crop species and nutrient regime // Plant and Soil. 1988. Vol. 106. P. 3541.
  168. Jastrow J.D. Soil aggregate formation and the accrual of particulate and mineral-associated organic matter // Soil Biology and Biochem. 1996. V. 28. P. 665- 676.
  169. Jenkinson D.S. Studies on decomposition of plant material in soil. V. The effects of plant cover and soil type on the loss of carbon from 14C-labelled rye grass decomposing under field conditions // J. Soil Sci. 1977. V. 28. P. 424−434.
  170. Jenkinson D.S., Rayner J.H. The turnover of soil organic matter in some of the Rothamsted classical experiments // Soil Science. 1977. V. 123. No 5. P. 298−305.
  171. Jensen E.S. Mineralization-immobilization of nitrogen in soil amended with low C: N ratio plant residues with different particle sizes // Soil Biology and Biochem. 1994. V.26. P. 519−521.
  172. Jensen E.S. N immobilization and mineralization during initial decomposition of 15N-labeled pea and barley residues // Biology and Fert. Soils. 1997. V. 24. P. 39−44.
  173. Jones D.L., Shannon D., Murphy D.V., Farrar J. Role of dissolved organic nitrogen (DON) in soil N cycling in grassland soils // Soil Biology and Biochem. 2004. V. 36. P. 749−756.
  174. Kaiser E.A., Kohrs К., Kucke M., Schnug E., Munch J.C., Heinemeyer O. Nitrous oxide release from arable soil: importance of perennial forage crops // Biol, and Fertil. Soils. 1998. V. 28. P. 36−43.
  175. Keyser P., Kirk Т.К., Zeikus J.G. Lignolytic enzyme of Phanaerochaete chrysosporium synthetized in the absence of lignin in response to nitrogen starvation // Journal of Bacteriology. 1978. V. 135. P. 780−797.
  176. Klemedtsson L., Klemedtsson K. A, Moldan F., Weslien P. Nitrous oxide emissions from Swedish forest soils in relation to liming and simulated increased N-deposition //Biol. Fertil. Soils. 1997. No 25. P. 290−295.
  177. Kogel-Knabner I. The macromolecular organic composition of plant and microbial residues as inputs to soil organic matter // Soil Biology and Biochem. 2002. V. 34. P.-139−162.
  178. Kogel-Knabner I. Biodegradation and humification processes in forest soil. Soil Biol. Biochem. 1993. V. 8. P. 101−135.
  179. Korsaeth A., Henriksen T.M., Bakken L.R. Temporal changes in mineralization and immobilization of N during degradation of plant material: implications for the plant N supply and nitrogen losses // Soil Biology and Biochem. 2002. V. 34. P. 789−799.
  180. Kuo S., Sainji U.M. Nitrogen mineralization and availability of mixed leguminous and non- leguminous cover crop residues in soil // Biology and Fertil. Soils. 1998. V. 26. P. 346−353.
  181. Ladd J.N., Oades J.M. Amato M. Microbial biomass formed from 14C, 15N-. labelled plant material decomposing in soil in the field // Soil Biol, and Biochem. 1981. V. 13 P. 119−126.
  182. Ladd J.N., Amato M., Grace P.R., Van Veen J.A. Simulation of 14C turnover through the microbial biomass in soils incubated with 14C-labelled plant residues // Soil Biology and Biochem. 1995. V. 27. P. 777−783.
  183. Lai R. Soil carbon sequestration to mitigate climate change // Geoderma. 2004. V. 123. P. 1 -22.
  184. Maljanen M., Hytonen J., Martikainen P.J. Fluxes of N20, CH4 and C02 on afforested boreal agricultural soils // Plant and Soil. 2001. V. 231. P. 113−121.
  185. Martens D.A. Plant residue biochemistry regulates soil carbon cycling and carbon sequestration // Soil Biology and Biochem. 2000. V. 32. P. 361−369.
  186. Mary В., Recous S., Robin D. A model for calculating N fluxes in soil using 15N tracing // Soil Biology and Biochem. 1998. V. 30. P. 1963−1968.
  187. Mosier A., Kroeze C., Nevison C., Oenema O., Seitzinger S., Van Cleemput O. Closing the global N20 budget: nitrous oxide emissions through the agricultural nitrogen cycle//Nutrient Cycl. in Agroecosyst. 1998. V. 52. P. 225−248.
  188. Mosier A., Kroeze C. A new approach to estimate emissions of nitrous oxide from agriculture and its implication to the global nitrous oxide budget // IGACtivites Newsletter. 1998. N.12. P.17−25.
  189. Moorhead D.L., Sinsabaugh R.L., Linkins A.E., Reynolds J.F. Decomposition processes: modeling approaches and applications // The Science of the Total Environment. 1996. V.183.P. 137−149.
  190. Mueller Т., Jensen L.S., Nielsen N.E., Magid J. Turnover of carbon and nitrogen in a sandy loam soil following incorporation of chopped maize plants, barley straw and blue grass in the field// Soil Biology and Biochem. 1998a. V.30. P.561−571.
  191. Miiller С., Sherlock R.R., Williams P.H. Mechanistic model for nitrous oxide emission via nitrification and denitrification // Biol, and Fertil. Soils. 1997. V. 24. P. 231 238.
  192. Neely C.L., Beare M.H., Hargrove W.L., Coleman D.C. Relationships between fungal and bacterial substrate-induced respiration, biomass and plant residue decomposition // Soil Biology and Biochem. 1991. V. 23. P. 947−954.
  193. Nguluu S.N., Probert M.E., Myers R. J.K., Waring S.A. Effect of tissue phosphorus concentration on the mineralisation of nitrogen from stylo and cowpea residues // Plant and Soil. 1996. V. 191. P. 139−146.
  194. Nicolardot B. Molina J.A.E. Allard M.R. С and N fluxes between pools of soil organic matter: Model calibration with long-term incubation data // Soil Biology and Biochem. 1994. V. 26. P. 235−243.
  195. Nicolardot В., Fauvet G., Cheneby D. Carbon and nitrogen cycling through soil microbial biomass at various temperatures // Soil Biology and Biochem. 1994. V. 26. No. 2. P.253−261.
  196. Nicolardot В., Recous S., Mary B. Simulation of С and N mineralisation during crop residue decomposition: a simple dynamic model based on the C: N ratio of the residues. // Plant and Soil. 2001. V. 228. P. 83−103.
  197. Nobre A.D., Keller M., Crill P.M., Harriss R.C. Short-term nitrous oxide profile dynamics and emission response to water, nitrogen and carbon additions in two tropical soils//Biol, and Fertil. Soils. 2001. V. 34. P. 363−373.
  198. Ocio J.A., Brookes P.C., Jenkinson D.S. Field incorporation of straw and its effects on soil microbial biomass and soil inorganic N // Soil Biology and Biochem. 1991. V. 23. P. 171−176.
  199. Palm C.A., Sanchez P.A. Nitrogen release from the leaves of some tropical legumes as affected by their lignin and polyphenols contents // Soil Biology and Biochem. 1991. V. 23. P. 83−88.
  200. Palm C. A, Gachengo C.N., Delve R. J, Cadisch G., Giller K.E. Organic inputs for soil fertility management in tropical agroecosystems: application of an organic resource database // Agric. Ecosyst. Environ. 2001. V. 83. P. 27−42.
  201. Pansu M., Thuries L. Kinetics of С and N mineralization, N immobilization and N volatilization of organic inputs in soil // Soil Biology and Biochem. 2003. V. 35. P. 3748.
  202. Parton W.J., Schimel D.S., Cole C.V., Ojima D.S. Analysis of factors controlling soil organic matter levels in Great Plains grasslands. // Soil Sci. Soc. Am. J. 1987. V. 51. P. 1173−1179.
  203. Piccolo A., Spaccini R., Nieder R., Richter J. Sequestration of a biologically labile organic carbon in soils by humified organic matter // Climatic Change. 2004. V. 67. P. 329−343.
  204. Pittman U. Crop yields and soil fertility as affected by dryland rotations in southern Alberta // Commun. Soil Sci. and Plant Analysis. 1977. V. 8. P. 391−405.
  205. Praveen-Kumar, Jagadish C. Tarafdar, Jitendra Panwar, Shyam Kathju. A rapid method for assessment of plant residue quality. // J. Plant Nutrition and Soil Sci. 2003. V. 166. No. 5. P. 662−666.
  206. Recous S., Robin D., Darwis D., Mary B. Soil inorganic N availability: effect on maize residue decomposition // Soil Biology and Biochem. 1995. V. 27. No 12. P. 15 291 538.
  207. Ridley A.D., Hedlin R.A. Soil organic matter and crop yields as influenced by the frequency of summer fallowing //Can. J. Soil Sci. 1968. V. 48. P. 315−322.
  208. Scalbert A. Antimicrobial properties of tannins // Phytochemistry. 1991. V. 30. P. 3875−3883.
  209. Schomberg H.H., Steiner J.L. Estimating crop residue decomposition coefficients using substrate-induced respiration // Soil Biology and Biochem. 1997. V. 29. P. 10 891 097.
  210. Schulten H.-R., Leinweber P. New insights into organic-mineral particles: composition, properties and models of molecular structure // Biology and Fertil. Soils. 2000. V. 30. P. 39932.
  211. Sims J.L., Frederick L.R. Nitrogen immobilization and decomposition of corn residue in soil and sand as affected by residue particle size // Soil Sci. 1970. V. 109. P. 355−361.
  212. Six J., Bossuyt H., Degryze S., Denef K. A history of research on the link between (micro)aggregates, soil biota, and soil organic matter dynamics // Soil & Tillage Research. 2004. V. 79. P. 7−31.
  213. Six J., Elliott E.T., Paustian K., Doran J.W. Aggregation and soil organic matter accumulation in cultivated and native grassland soils // Soil Sci. Soc. Amer. J. 1998. V. 62. P. 1367−1377.
  214. Srivastava S.P., Dhar N.R. Influence of wheat straw and phosphatic fertilizers on the loss and recovery of added nitrogen in the form of nitrogenous fertilizers // Proc. Nat. Acad. Sci. India. 1983. V. A53. No 4.
  215. Stevens R.J., Laughlin R.J., Burns L.C., Arah J.R.M., Hood R.C. Measuring the contribution of nitrification and denitrification tb the flux of nitrous oxide from soil // Soil Biol, and Biochem. 1997. V. 29. P. 139−151.
  216. Stevens R.J., Laughlin R.J. Measurement of nitrous oxide emissions from agricultural soils //Nutrient Cycl. in Agroecosyst. 1998. V. 52. P. 131−139.
  217. Stott D.E. Kassim G, Jarrell W.M., Martin J.P., Haider K. Stabilization and incorporation into biomass of specific plant carbon during biodegradation in soil // Plant and Soil. 1983. V. 70. P. 15−26.
  218. Thuries L., Pansu M., Feller C., Herrmann P., Remy J.-C. Kinetics of added organic matter decomposition in a Mediterranean sandy soil // Soil Biology and Biochem. 2001. V. 33. P. 997−1010.
  219. Tisdall J.M., Oades J.M. Organic matter and water-stable aggregates in soils // J. Soil Sci. 1982. V. 33. P. 141−163.
  220. I. Recous S., Mary B. Nicolardot В. С and N fluxes of decomposing 13C and 15N Brassica napus L.: effects of residue composition and N content // Soil Biology and Biochem. 2000a. V. 32. P. 1717−1730.
  221. Trinsoutrot I., Recous S., Bentz В., Lineres M., Cheneby D., Nicolardot B. Biochemical quality of crop residues and carbon and nitrogen mineralization kinetics under nonlimiting nitrogen conditions // Soil Sci. Soc. Amer. J. 2000b. V. 64. P. 918−926.
  222. Urquiaga S., Cadisch G., Alves B. J. R., Boddey R.M., Giller K.E. Influence of decomposition of roots of tropical forage species on the availability of soil nitrogen // Soil Biology and Biochem. 1998. V. 30, No 14. P. 2099−2106.
  223. Van Cleemput O. Subsoils: chemo- and biological denitrification, N20 and N2 emissions //Nutrient Cycl. in Agroecosyst. 1998. V. 52. P. 187−194.
  224. Van Hees P.A.W., Jones D.L., Finlay R., Godbold D.L., Lundstrem U.S. The carbon we do not see—the impact of low molecular weight compounds on carbon dynamics and respiration in forest soils: a review // Soil Biology and Biochem. 2005. V. 37. P. 1−13.
  225. Van Scholl L., Van Dam A.M., Leffelaar P.A. Mineralization of nitrogen from incorporated catch crops at low temperatures: experiment and simulation // Plant and Soil. 1997. V. 188. P. 211−219.
  226. Vanlauwe В., Dendooven L., Merckx R. Residue fractionation and decomposition The significance of the active fraction // Plant and Soil. 1994. V. 158. P. 263−274.
  227. Vigil M.F., Kissel D.E. Equations for estimating the amount of nitrogen mineralized from crop residues // Soil Sci. Soc. Amer. J. 1991. V. 55. P. 757−761.
  228. Wagger M.G., Kissel D.E., Smith S.J. Mineralization of N from N-15 labeled crop residues under field conditions // Soil Sci. Soc. Am. J. 1985. V. 49. P. 1220−1226.
  229. Watkins N., Barraclough D. Gross rates of N mineralization associated with the decomposition of plant residues // Soil Biology and Biochem. 1996. V. 28. P. 169−175.
  230. Weier K. L., Doran J. W., Power J. F., Walters D.T. Denitrification and the dinitrogen/nitrous oxide ratio as affected by soil water, available carbon, and nitrate // Soil Sci. Soc. Am. J. 1993. V. 57. P. 66−72.
  231. Whitmore A.P., Groot J.J.R. The decomposition of sugar beet residues: mineralization versus immobilization in contrasting soil types // Plant and Soil. 1997. V. 192. P.237−247.
  232. Wolters V., Invertebrate control of soil organic matter stability // Biology and Fertil. Soils. 2000. V. 31. P. 1−19.
  233. Yadvinder-Singh, Bijay-Singh, Khind C.S. Nutrients transformations in soils amended green manures // Advances in Soil Science (Ed. by B.A. Stewart). 1992. V. 20. P. 237−309.
Заполнить форму текущей работой