Π”ΠΈΠΏΠ»ΠΎΠΌ, курсовая, ΠΊΠΎΠ½Ρ‚Ρ€ΠΎΠ»ΡŒΠ½Π°Ρ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π°
ΠŸΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒ Π² написании студСнчСских Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚

ΠœΠΎΠ΄Π΅Π»ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ ΠΊΠΎΠΎΡ€Π΄ΠΈΠ½Π°Ρ†ΠΈΠΈ биологичСски Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹Ρ… соСдинСний с тСрапСвтичСскими мишСнями

Π”ΠΈΡΡΠ΅Ρ€Ρ‚Π°Ρ†ΠΈΡΠŸΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒ Π² Π½Π°ΠΏΠΈΡΠ°Π½ΠΈΠΈΠ£Π·Π½Π°Ρ‚ΡŒ ΡΡ‚ΠΎΠΈΠΌΠΎΡΡ‚ΡŒΠΌΠΎΠ΅ΠΉ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹

ΠœΠΎΠ΄Π΅Π»ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ тСрмодинамичСских ΠΈ ΡΡ‚Ρ€ΡƒΠΊΡ‚ΡƒΡ€Π½Ρ‹Ρ… ΠΏΠ°Ρ€Π°ΠΌΠ΅Ρ‚Ρ€ΠΎΠ² ΠΊΠΎΠΎΡ€Π΄ΠΈΠ½Π°Ρ†ΠΈΠΈ Π½Π°Π±ΠΎΡ€Π° 86 тСрапСвтичСски Π·Π½Π°Ρ‡ΠΈΠΌΡ‹Ρ… Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ² ΠΊΠΈΠ½Π°Π· ΠΈ ΠΈΡ… 42 ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠ² с ΠΏΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒΡŽ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Π° молСкулярного Π΄ΠΎΠΊΠΈΠ½Π³Π° Π΄Π°Π»ΠΎ ΠΎΠ±Ρ‰ΡƒΡŽ Ρ‚ΠΎΡ‡Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ 77% Π² ΠΎΡ‚Π½ΠΎΡˆΠ΅Π½ΠΈΠΈ прСдсказания ΠΏΠ°Ρ€ Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚-ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ‚ΠΎΡ€. Настоящая Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π° посвящСна исслСдованию особСнностСй примСнСния ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠ² модСлирования свободной энСргии ΠΈ Π³Π΅ΠΎΠΌΠ΅Ρ‚Ρ€ΠΈΠΈ ΠΊΠΎΠΎΡ€Π΄ΠΈΠ½Π°Ρ†ΠΈΠΈ низкомолСкулярных… Π§ΠΈΡ‚Π°Ρ‚ΡŒ Π΅Ρ‰Ρ‘ >

Π‘ΠΎΠ΄Π΅Ρ€ΠΆΠ°Π½ΠΈΠ΅

  • Бписок сокращСний
  • 1. Π›ΠΈΡ‚Π΅Ρ€Π°Ρ‚ΡƒΡ€Π½Ρ‹ΠΉ ΠΎΠ±Π·ΠΎΡ€
    • 1. 1. Π‘Ρ‚Ρ€ΠΎΠ΅Π½ΠΈΠ΅ ΠΈ Ρ„ΡƒΠ½ΠΊΡ†ΠΈΠΈ ΠΏΡ€ΠΎΡ‚Π΅ΠΈΠ½ΠΊΠΈΠ½Π°Π·
      • 1. 1. 1. ΠžΠ±Ρ‰ΠΈΠ΅ свСдСния ΠΎ ΠΏΡ€ΠΎΡ‚Π΅ΠΈΠ½ΠΊΠΈΠ½Π°Π·Π°Ρ…
      • 1. 1. 2. Π‘Ρ‚Ρ€ΡƒΠΊΡ‚ΡƒΡ€Π° ΠΏΡ€ΠΎΡ‚Π΅ΠΈΠ½ΠΊΠΈΠ½Π°Π·
      • 1. 1. 3. Π˜Π½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ ΠΊΠΈΠ½Π°Π·
      • 1. 1. 4. АВЀ-ΠΊΠΎΠ½ΠΊΡƒΡ€Π΅Π½Ρ‚Π½Ρ‹Π΅ ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹ ΠΏΡ€ΠΎΡ‚Π΅ΠΈΠ½ΠΊΠΈΠ½Π°Π· ΠΈ ΠΈΡ… ΡΠ΅Π»Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ
    • 1. 2. ΠœΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ молСкулярного Π΄ΠΎΠΊΠΈΠ½Π³Π°
      • 1. 2. 1. ВСорСтичСскиС основы ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Π°
      • 1. 2. 2. ΠœΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Ρ‹ сканирования повСрхности ΠΏΠΎΡ‚Π΅Π½Ρ†ΠΈΠ°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠΉ энСргии
    • 1. 3. РасчСт свободной энСргии связывания
      • 1. 3. 1. ΠœΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ Π²ΠΎΠ·ΠΌΡƒΡ‰Π΅Π½ΠΈΠΉ свободной энСргии
      • 1. 3. 2. ΠœΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Ρ‹ Π»ΠΈΠ½Π΅ΠΉΠ½ΠΎΠΉ коррСляции свободной энСргии
      • 1. 3. 3. ΠŸΡ€ΠΈΠ±Π»ΠΈΠΆΠ΅Π½ΠΈΡ Π°Π΄Π΄ΠΈΡ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹Ρ… Π²ΠΊΠ»Π°Π΄ΠΎΠ² Π² ΡΠ²ΠΎΠ±ΠΎΠ΄Π½ΡƒΡŽ ΡΠ½Π΅Ρ€Π³ΠΈΡŽ связывания
      • 1. 3. 4. ИспользованиС эмпиричСских Ρ„ΡƒΠ½ΠΊΡ†ΠΈΠΉ
    • 1. 4. Π’ΠΈΡ€Ρ‚ΡƒΠ°Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΉ скрининг
      • 1. 4. 1. Π’Π²Π΅Π΄Π΅Π½ΠΈΠ΅
      • 1. 4. 2. ΠœΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ структурной Ρ„ΠΈΠ»ΡŒΡ‚Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ
    • 1. 5. Π€Ρ€Π°Π³ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°ΠΌΠΈ ΠΏΠΎΠ΄Ρ…ΠΎΠ΄ ΠΊ ΠΏΠΎΠΈΡΠΊΡƒ Π½ΠΎΠ²Ρ‹Ρ… лСкарств
      • 1. 5. 1. Π‘ΠΎΠ·Π΄Π°Π½ΠΈΠ΅ лСкарств Π½Π° ΠΎΡΠ½ΠΎΠ²Π΅ ΠΌΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΠ° дСйствия
      • 1. 5. 2. ΠŸΡ€ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Ρ‹ поиска лСкарств с ΠΏΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒΡŽ Ρ„Ρ€Π°Π³ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π½ΠΎΠ³ΠΎ ΠΏΠΎΠ΄Ρ…ΠΎΠ΄Π°
  • 2. Π­ΠΊΡΠΏΠ΅Ρ€ΠΈΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½Π°Ρ Ρ‡Π°ΡΡ‚ΡŒ
    • 2. 1. ΠšΠΎΠΌΠΏΡŒΡŽΡ‚Π΅Ρ€Π½Ρ‹Π΅ ΠΏΡ€ΠΎΠ³Ρ€Π°ΠΌΠΌΡ‹, ΠΈΡΠΏΠΎΠ»ΡŒΠ·ΠΎΠ²Π°Π½Π½Ρ‹Π΅ Π² Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π΅
    • 2. 2. ΠŸΠΎΡΡ‚Ρ€ΠΎΠ΅Π½ΠΈΠ΅ ΠΌΠΎΠ΄Π΅Π»Π΅ΠΉ Ρ‚Ρ€Π΅Ρ…ΠΌΠ΅Ρ€Π½ΠΎΠΉ структуры Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ²
    • 2. 3. ΠŸΠΎΡΡ‚Ρ€ΠΎΠ΅Π½ΠΈΠ΅ ΠΌΠΎΠ΄Π΅Π»Π΅ΠΉ Ρ‚Ρ€Π΅Ρ…ΠΌΠ΅Ρ€Π½Ρ‹Ρ… структур Π»ΠΈΠ³Π°Π½Π΄ΠΎΠ²
    • 2. 4. Π Π°Π·Π±ΠΈΠ΅Π½ΠΈΠ΅ ΠΌΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ» извСстных лСкарств Π½Π° Ρ„Ρ€Π°Π³ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Ρ‹
    • 2. 5. Π”ΠΎΠΊΠΈΠ½Π³ ΠΈ Π²ΠΈΡ€Ρ‚ΡƒΠ°Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΉ скрининг
    • 2. 6. ΠžΡ†Π΅Π½ΠΊΠ° свободной энСргии образования комплСксов Π±Π΅Π»ΠΎΠΊ-Π»ΠΈΠ³Π°Π½Π΄
    • 2. 7. РасчСт ΠΏΠ°Ρ€Π°ΠΌΠ΅Ρ‚Ρ€ΠΎΠ² точности модСлирования ΠΊΠΎΠΎΡ€Π΄ΠΈΠ½Π°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠ² ΠΏΡ€ΠΎΡ‚Π΅ΠΈΠ½ΠΊΠΈΠ½Π°Π·
    • 2. 8. Бтруктурная Ρ„ΠΈΠ»ΡŒΡ‚Ρ€Π°Ρ†ΠΈΡ Ρ€Π΅Π·ΡƒΠ»ΡŒΡ‚Π°Ρ‚ΠΎΠ² Π²ΠΈΡ€Ρ‚ΡƒΠ°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠ³ΠΎ скрининга
    • 2. 9. Π Π°Π½ΠΆΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ Ρ€Π΅Π·ΡƒΠ»ΡŒΡ‚Π°Ρ‚ΠΎΠ² Π²ΠΈΡ€Ρ‚ΡƒΠ°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠ³ΠΎ скрининга
    • 2. 10. РасчСт ΠΏΠ°Ρ€Π°ΠΌΠ΅Ρ‚Ρ€ΠΎΠ² обогащСния Π²ΠΈΡ€Ρ‚ΡƒΠ°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠ³ΠΎ скрининга
    • 2. 11. Π’ΠΈΠ·ΡƒΠ°Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΉ Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ· Π³Π΅ΠΎΠΌΠ΅Ρ‚Ρ€ΠΈΠΈ комплСксов Π±Π΅Π»ΠΎΠΊ-Π»ΠΈΠ³Π°Π½Π΄
    • 2. 12. Π’Ρ‹Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ Ρ„Π°Ρ€ΠΌΠ°ΠΊΠΎΡ„ΠΎΡ€ΠΎΠ² Ρ„Ρ€Π°Π³ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π½Ρ‹Ρ… ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠ²
    • 2. 13. Π­ΠΊΡΠΏΠ΅Ρ€ΠΈΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠ΅ ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ эффСктивности связывания соСдинСний с Π±Π΅Π»ΠΊΠ°ΠΌΠΈ-мишСнями
      • 2. 13. 1. ΠŸΡ€ΠΎΡ‚Π΅ΠΈΠ½ΠΊΠΈΠ½Π°Π·Ρ‹ ЕрЬА2 ΠΈ ΠΠ‘К
      • 2. 13. 2. ΠŸΡ€ΠΎΡ‚Π΅ΠΈΠ½ΠΊΠΈΠ½Π°Π·Π° БОК
      • 2. 13. 3. ΠœΡƒΡ‚Π°Π½Ρ‚Π½Π°Ρ Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΠ° ΠΏΡ€ΠΎΡ‚Π΅ΠΈΠ½ΠΊΠΈΠ½Π°Π·Ρ‹ ABL1 T
  • 3. Π Π΅Π·ΡƒΠ»ΡŒΡ‚Π°Ρ‚Ρ‹ ΠΈ ΠΎΠ±ΡΡƒΠΆΠ΄Π΅Π½ΠΈΠ΅
    • 3. 1. ΠœΠΎΠ΄Π΅Π»ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ ΠΊΠΎΠΎΡ€Π΄ΠΈΠ½Π°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΏΡ€ΠΎΡ‚Π΅ΠΈΠ½ΠΊΠΈΠ½Π°Π· с ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ‚ΠΎΡ€Π°ΠΌΠΈ
      • 3. 1. 1. ΠŸΠΎΡΡ‚Ρ€ΠΎΠ΅Π½ΠΈΠ΅ ΠΏΠΎΠ»Π½ΠΎΠ°Ρ‚ΠΎΠΌΠ½Ρ‹Ρ… ΠΌΠΎΠ΄Π΅Π»Π΅ΠΉ Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ²
      • 3. 1. 1. ΠŸΠΎΡΡ‚Ρ€ΠΎΠ΅Π½ΠΈΠ΅ Ρ‚Ρ€Π΅Ρ…ΠΌΠ΅Ρ€Π½Ρ‹Ρ… ΠΌΠΎΠ΄Π΅Π»Π΅ΠΉ Π»ΠΈΠ³Π°Π½Π΄ΠΎΠ²
      • 3. 1. 3. ΠœΠΎΠ΄Π΅Π»ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ ΠΏΡ€ΠΎΡ„ΠΈΠ»Π΅ΠΉ активности ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠ² ΠΏΡ€ΠΎΡ‚Π΅ΠΈΠ½ΠΊΠΈΠ½Π°Π·
      • 3. 1. 4. ΠœΠΎΠ΄Π΅Π»ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ спСктра восприимчивости ΠΊΠΈΠ½Π°Π· ΠΊ ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ‚ΠΎΡ€Π°ΠΌ
      • 3. 1. 5. Π£Ρ‚ΠΎΡ‡Π½Π΅Π½ΠΈΠ΅ ΠΊΠΎΠ½Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΠ°Ρ†ΠΈΠΉ Π±ΠΎΠΊΠΎΠ²Ρ‹Ρ… Ρ€Π°Π΄ΠΈΠΊΠ°Π»ΠΎΠ²
      • 3. 1. 6. ΠœΠΎΠ΄Π΅Π»ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ профиля активности ΠΊΠΈΠ½Π°Π·Π½Ρ‹Ρ… ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠ²
      • 3. 1. 7. Π—Π°Π²ΠΈΡΠΈΠΌΠΎΡΡ‚ΡŒ надСТности модСлирования активности ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ‚ΠΎΡ€Π° ΠΎΡ‚ Π΅Π³ΠΎ Ρ‚ΠΈΠΏΠ° ΠΈ ΠΊΠΎΠ½Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΠ°Ρ†ΠΈΠΈ Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΠ³ΠΎ Ρ†Π΅Π½Ρ‚Ρ€Π° ΠΊΠΈΠ½Π°Π·Ρ‹
    • 3. 2. ИсслСдованиС точности Π²ΠΈΡ€Ρ‚ΡƒΠ°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠ³ΠΎ скрининга
      • 3. 2. 1. ОписаниС тСстового Π½Π°Π±ΠΎΡ€Π° DUD
      • 3. 2. 2. ΠŸΠΎΠ΄Π³ΠΎΡ‚ΠΎΠ²ΠΊΠ° ΠΏΠΎΠ»Π½ΠΎΠ°Ρ‚ΠΎΠΌΠ½Ρ‹Ρ… ΠΌΠΎΠ΄Π΅Π»Π΅ΠΉ Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ²
      • 3. 2. 3. ΠšΡ€ΠΈΡ‚Π΅Ρ€ΠΈΠΈ структурной Ρ„ΠΈΠ»ΡŒΡ‚Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ Ρ€Π΅Π·ΡƒΠ»ΡŒΡ‚Π°Ρ‚ΠΎΠ² Π²ΠΈΡ€Ρ‚ΡƒΠ°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠ³ΠΎ скрининга
      • 3. 2. 4. ΠŸΠΎΠ΄Π³ΠΎΡ‚ΠΎΠ²ΠΊΠ° Π±ΠΈΠ±Π»ΠΈΠΎΡ‚Π΅ΠΊ Π»ΠΈΠ³Π°Π½Π΄ΠΎΠ²
      • 3. 2. 5. ИсслСдованиС точности Π²ΠΈΡ€Ρ‚ΡƒΠ°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠ³ΠΎ скрининга
      • 3. 2. 6. ВлияниС свойств Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ² Π½Π° Ρ‚ΠΎΡ‡Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ Π²ΠΈΡ€Ρ‚ΡƒΠ°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠ³ΠΎ скрининга
      • 3. 2. 7. Бтруктурная Ρ„ΠΈΠ»ΡŒΡ‚Ρ€Π°Ρ†ΠΈΡ Ρ€Π΅Π·ΡƒΠ»ΡŒΡ‚Π°Ρ‚ΠΎΠ² Π²ΠΈΡ€Ρ‚ΡƒΠ°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠ³ΠΎ скрининга
    • 3. 3. Поиск Π½ΠΎΠ²Ρ‹Ρ… Ρ„Ρ€Π°Π³ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π½Ρ‹Ρ… ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠ² EphA2 ΠΈ ΠΠ‘К
      • 3. 3. 1. ΠŸΠΎΡΡ‚Ρ€ΠΎΠ΅Π½ΠΈΠ΅ ΠΏΠΎΠ»Π½ΠΎΠ°Ρ‚ΠΎΠΌΠ½Ρ‹Ρ… ΠΌΠΎΠ΄Π΅Π»Π΅ΠΉ Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ²
      • 3. 3. 2. ΠŸΠΎΡΡ‚Ρ€ΠΎΠ΅Π½ΠΈΠ΅ ΠΌΠΎΠ΄Π΅Π»Π΅ΠΉ Ρ‚Ρ€Π΅Ρ…ΠΌΠ΅Ρ€Π½Ρ‹Ρ… структур Π»ΠΈΠ³Π°Π½Π΄ΠΎΠ²
      • 3. 3. 3. Анализ ΡΡƒΡ‰Π΅ΡΡ‚Π²ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΡ… ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠ² EphA2 ΠΈ ΠΠ‘К
      • 3. 3. 4. Поиск Π½ΠΎΠ²Ρ‹Ρ… ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠ² АБК1 ΠΈ EphA2 ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠΌ Π²ΠΈΡ€Ρ‚ΡƒΠ°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠ³ΠΎ скрининга
    • 3. 4. Π’Π°Π»ΠΈΠ΄ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ Ρ„Ρ€Π°Π³ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π½ΠΎΠ³ΠΎ ΠΏΠΎΠ΄Ρ…ΠΎΠ΄Π° ΠΊ ΠΏΠΎΠΈΡΠΊΡƒ ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠ² in silico
      • 3. 4. 1. Π€Π°ΠΊΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹, Π²Π»ΠΈΡΡŽΡ‰ΠΈΠ΅ Π½Π° Ρ‚ΠΎΡ‡Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ молСкулярного Π΄ΠΎΠΊΠΈΠ½Π³Π° Ρ„Ρ€Π°Π³ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ² лСкарств
      • 3. 4. 2. Π‘Ρ€Π°Π²Π½Π΅Π½ΠΈΠ΅ ΡΠΊΡΠΏΠ΅Ρ€ΠΈΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠΉ ΠΈ Ρ€Π°ΡΡ‡Π΅Ρ‚Π½ΠΎΠΉ энСргии связывания Ρ„Ρ€Π°Π³ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ²
      • 3. 4. 3. Поиск Π½ΠΎΠ²Ρ‹Ρ… Ρ„Ρ€Π°Π³ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π½Ρ‹Ρ… ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠ² ΠΏΡ€ΠΎΡ‚Π΅ΠΈΠ½ΠΊΠΈΠ½Π°Π· CDK2 ΠΈ ABL
      • 3. 4. 4. Π­ΠΊΡΠΏΠ΅Ρ€ΠΈΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½Π°Ρ ΠΏΡ€ΠΎΠ²Π΅Ρ€ΠΊΠ° прСдсказанных ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠ²

ΠœΠΎΠ΄Π΅Π»ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ ΠΊΠΎΠΎΡ€Π΄ΠΈΠ½Π°Ρ†ΠΈΠΈ биологичСски Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹Ρ… соСдинСний с тСрапСвтичСскими мишСнями (Ρ€Π΅Ρ„Π΅Ρ€Π°Ρ‚, курсовая, Π΄ΠΈΠΏΠ»ΠΎΠΌ, ΠΊΠΎΠ½Ρ‚Ρ€ΠΎΠ»ΡŒΠ½Π°Ρ)

Помимо Ρ‚Ρ€Π°Π΄ΠΈΡ†ΠΈΠΎΠ½Π½ΠΎΠ³ΠΎ ΠΏΠΎΠ΄Ρ…ΠΎΠ΄Π° ΠΊ ΠΏΠΎΠΈΡΠΊΡƒ Π½ΠΎΠ²Ρ‹Ρ… биологичСски Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹Ρ… соСдинСний, основанного Π½Π° Ρ„СнотипичСском скринингС, Π½Π° ΡΠ΅Π³ΠΎΠ΄Π½ΡΡˆΠ½ΠΈΠΉ дСнь большоС распространСниС ΠΏΠΎΠ»ΡƒΡ‡ΠΈΠ» Π½Π°ΠΏΡ€Π°Π²Π»Π΅Π½Π½Ρ‹ΠΉ поиск ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠ², Π΄Π΅ΠΉΡΡ‚Π²ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΡ… Π½Π° Π·Π°Ρ€Π°Π½Π΅Π΅ ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½Π½ΡƒΡŽ Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ²ΡƒΡŽ (Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚, Ρ€Π΅Ρ†Π΅ΠΏΡ‚ΠΎΡ€, .) Ρ‚Π΅Ρ€Π°ΠΏΠ΅Π²Ρ‚ΠΈΡ‡Π΅ΡΠΊΡƒΡŽ мишСнь. Для ΡƒΡΠΏΠ΅ΡˆΠ½ΠΎΠ³ΠΎ поиска соСдинСний, ΠΎΠ±Π»Π°Π΄Π°ΡŽΡ‰ΠΈΡ… Π·Π°Π΄Π°Π½Π½Ρ‹ΠΌΠΈ качСствами, Π½Π΅ΠΎΠ±Ρ…ΠΎΠ΄ΠΈΠΌΠΎ сущСствСнноС Ρ€Π°Π·Π²ΠΈΡ‚ΠΈΠ΅ Ρ†Π΅Π»Ρ‹Ρ… областСй Π½Π°ΡƒΡ‡Π½ΠΎΠ³ΠΎ знания Π½Π° ΡΡ‚Ρ‹ΠΊΠ΅ Ρ…ΠΈΠΌΠΈΠΈ, Ρ„ΠΈΠ·ΠΈΠΊΠΈ ΠΈ Π±ΠΈΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΠΈ.

Благодаря Ρ€Π°Π·Π²ΠΈΡ‚ΠΈΡŽ ΡΠΊΡΠΏΠ΅Ρ€ΠΈΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠ² структурной Π±ΠΈΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΠΈ, Π² Π½Π°ΡΡ‚оящСС врСмя извСстны Ρ‚Ρ€Π΅Ρ…ΠΌΠ΅Ρ€Π½Ρ‹Π΅ структуры ΠΌΠ½ΠΎΠ³ΠΈΡ… Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ², Π² Ρ‚ΠΎΠΌ числС ΡΠ²Π»ΡΡŽΡ‰ΠΈΡ…ΡΡ тСрапСвтичСскими мишСнями Ρ€Π°Π·Π»ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Ρ… Π·Π°Π±ΠΎΠ»Π΅Π²Π°Π½ΠΈΠΉ. Располагая структурной ΠΈΠ½Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΠ°Ρ†ΠΈΠ΅ΠΉ, ΠΌΠΎΠΆΠ½ΠΎ с ΠΏΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒΡŽ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠ² тСорСтичСской Ρ…ΠΈΠΌΠΈΠΈ ΠΌΠΎΠ΄Π΅Π»ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Ρ‚ΡŒ ΡΠ²ΠΎΠ±ΠΎΠ΄Π½ΡƒΡŽ ΡΠ½Π΅Ρ€Π³ΠΈΡŽ ΠΈ Π³Π΅ΠΎΠΌΠ΅Ρ‚Ρ€ΠΈΡŽ ΠΊΠΎΠΎΡ€Π΄ΠΈΠ½Π°Ρ†ΠΈΠΈ химичСских соСдинСний Π² Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹Ρ… Ρ†Π΅Π½Ρ‚Ρ€Π°Ρ… Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ², ΠΈ Ρ€Π°ΡΡΡ‡ΠΈΡ‚Ρ‹Π²Π°Ρ‚ΡŒ ΡΠΏΠ΅Ρ†ΠΈΡ„ΠΈΡ‡Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ ΠΈΡ… Π΄Π΅ΠΉΡΡ‚вия ΠΏΠΎ ΠΎΡ‚Π½ΠΎΡˆΠ΅Π½ΠΈΡŽ ΠΊ ΠΌΠΈΡˆΠ΅Π½ΠΈ Π²Ρ‹Π±Ρ€Π°Π½Π½ΠΎΠ³ΠΎ заболСвания, Π° Ρ‚Π°ΠΊΠΆΠ΅ ΠΏΡ€ΠΎΡ„ΠΈΠ»ΡŒ сСлСктивности ΠΏΠΎ ΠΎΡ‚Π½ΠΎΡˆΠ΅Π½ΠΈΡŽ ΠΊ ΠΎΡΡ‚Π°Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΌ тСрапСвтичСским мишСням. Π’ Π½Π°ΡΡ‚оящСС врСмя сущСствуСт мноТСство ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠ² молСкулярного модСлирования, ΠΎΠ΄Π½Π°ΠΊΠΎ Ρ‚ΠΎΡ‚ Ρ„Π°ΠΊΡ‚, Ρ‡Ρ‚ΠΎ Π²ΠΎ ΠΌΠ½ΠΎΠ³ΠΈΡ… случаях ΠΈΡ… Ρ‚ΠΎΡ‡Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ оказываСтся Π½Π΅ΡƒΠ΄ΠΎΠ²Π»Π΅Ρ‚Π²ΠΎΡ€ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΠΉ, дСмонстрируСт Π½Π΅ΠΎΠ±Ρ…ΠΎΠ΄ΠΈΠΌΠΎΡΡ‚ΡŒ ΡƒΠ»ΡƒΡ‡ΡˆΠ΅Π½ΠΈΡ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠ².

Настоящая Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π° посвящСна исслСдованию особСнностСй примСнСния ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠ² модСлирования свободной энСргии ΠΈ Π³Π΅ΠΎΠΌΠ΅Ρ‚Ρ€ΠΈΠΈ ΠΊΠΎΠΎΡ€Π΄ΠΈΠ½Π°Ρ†ΠΈΠΈ низкомолСкулярных соСдинСний с Ρ‚СрапСвтичСскими мишСнями Π² Π½Π°ΠΏΡ€Π°Π²Π»Π΅Π½Π½ΠΎΠΌ поискС Π½ΠΎΠ²Ρ‹Ρ… биологичСски Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹Ρ… ΠΌΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ».

Π’ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π΅ ΠΏΡ€Π΅ΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Π»ΠΈΡΡŒ ΡΠ»Π΅Π΄ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΠ΅ основныС Ρ†Π΅Π»ΠΈ:

β€’ ΠœΠΎΠ΄Π΅Π»ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ структур ΠΈ ΡΠ²ΠΎΠ±ΠΎΠ΄Π½Ρ‹Ρ… энСргий образования комплСксов ΠΊΠΈΠ½Π°Π· с ΠΈΡ… ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ‚ΠΎΡ€Π°ΠΌΠΈ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠΌ молСкулярного Π΄ΠΎΠΊΠΈΠ½Π³Π° для прСдсказания сСлСктивности ΠΊΠΈΠ½Π°Π·Π½Ρ‹Ρ… ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠ².

β€’ ИсслСдованиС Ρ„Π°ΠΊΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠ², Π²Π»ΠΈΡΡŽΡ‰ΠΈΡ… Π½Π° Ρ‚ΠΎΡ‡Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ модСлирования ΠΊΠΎΠΎΡ€Π΄ΠΈΠ½Π°Ρ†ΠΈΠΈ органичСских соСдинСний с Π±Π΅Π»ΠΊΠ°ΠΌΠΈ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠΌ Π΄ΠΎΠΊΠΈΠ½Π³Π° ΠΏΡ€ΠΈΠΌΠ΅Π½ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎ ΠΊ ΠΏΠΎΠΈΡΠΊΡƒ Π½ΠΎΠ²Ρ‹Ρ… соСдинСний, Π² ΠΎΡΠΎΠ±Π΅Π½Π½ΠΎΡΡ‚ΠΈ — Ρ„Ρ€Π°Π³ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π½Ρ‹Ρ… соСдинСний, ΡΠ²ΡΠ·Ρ‹Π²Π°ΡŽΡ‰ΠΈΡ…ΡΡ с Π·Π°Π΄Π°Π½Π½Ρ‹ΠΌ Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠΌ — тСрапСвтичСской мишСнью.

β€’ НаправлСнный поиск Π½ΠΎΠ²Ρ‹Ρ… соСдинСний, способных ΠΊ ΠΊΠΎΠΎΡ€Π΄ΠΈΠ½Π°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΈ ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΡŽ каталитичСской активности Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ² ΠΊΠΈΠ½Π°Π·.

1. Π›ΠΈΡ‚Π΅Ρ€Π°Ρ‚ΡƒΡ€Π½Ρ‹ΠΉ ΠΎΠ±Π·ΠΎΡ€

4. ΠžΡΠ½ΠΎΠ²Π½Ρ‹Π΅ Ρ€Π΅Π·ΡƒΠ»ΡŒΡ‚Π°Ρ‚Ρ‹ ΠΈ Π²Ρ‹Π²ΠΎΠ΄Ρ‹.

1. ΠœΠΎΠ΄Π΅Π»ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ тСрмодинамичСских ΠΈ ΡΡ‚Ρ€ΡƒΠΊΡ‚ΡƒΡ€Π½Ρ‹Ρ… ΠΏΠ°Ρ€Π°ΠΌΠ΅Ρ‚Ρ€ΠΎΠ² ΠΊΠΎΠΎΡ€Π΄ΠΈΠ½Π°Ρ†ΠΈΠΈ Π½Π°Π±ΠΎΡ€Π° 86 тСрапСвтичСски Π·Π½Π°Ρ‡ΠΈΠΌΡ‹Ρ… Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ² ΠΊΠΈΠ½Π°Π· ΠΈ ΠΈΡ… 42 ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠ² с ΠΏΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒΡŽ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Π° молСкулярного Π΄ΠΎΠΊΠΈΠ½Π³Π° Π΄Π°Π»ΠΎ ΠΎΠ±Ρ‰ΡƒΡŽ Ρ‚ΠΎΡ‡Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ 77% Π² ΠΎΡ‚Π½ΠΎΡˆΠ΅Π½ΠΈΠΈ прСдсказания ΠΏΠ°Ρ€ Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚-ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ‚ΠΎΡ€.

2. ΠΠ΅Π΄ΠΎΡΡ‚Π°Ρ‚ΠΎΡ‡Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ ΡΠΊΡΠΏΠ΅Ρ€ΠΈΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… Π΄Π°Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΎ ΡΡ‚Ρ€ΡƒΠΊΡ‚ΡƒΡ€Π°Ρ… Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹Ρ… Ρ†Π΅Π½Ρ‚Ρ€ΠΎΠ² ΠΊΠΈΠ½Π°Π· ΠΈ ΠΈΡ… ΠΏΠΎΠ΄Π²ΠΈΠΆΠ½ΠΎΡΡ‚ΠΈ обусловливаСт Π±ΠΎΠ»ΡŒΡˆΡƒΡŽ Π΄ΠΎΡΡ‚ΠΎΠ²Π΅Ρ€Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ ΠΎΡ‚Ρ€ΠΈΡ†Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… прСдсказаний (85%) ΠΏΠΎ ΡΡ€Π°Π²Π½Π΅Π½ΠΈΡŽ с ΠΏΠΎΠ»ΠΎΠΆΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΌΠΈ (52%) для модСлирования ΠΊΠΎΠΎΡ€Π΄ΠΈΠ½Π°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΏΠ°Ρ€ Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚-ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ‚ΠΎΡ€ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠΌ Π΄ΠΎΠΊΠΈΠ½Π³Π°.

3. ΠŸΡ€ΠΈΠΌΠ΅Π½Π΅Π½ΠΈΠ΅ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Π° структурной Ρ„ΠΈΠ»ΡŒΡ‚Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ позволяСт ΡΠ½ΠΈΠ·ΠΈΡ‚ΡŒ Π½Π°Ρ‡Π°Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΉ ΠΏΡ€ΠΎΡ†Π΅Π½Ρ‚ Π»ΠΎΠΆΠ½ΠΎΠΏΠΎΠ»ΠΎΠΆΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… прСдсказаний ΠΊΠΎΠΎΡ€Π΄ΠΈΠ½Π°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΏΠ°Ρ€ Π±Π΅Π»ΠΎΠΊ-Π»ΠΈΠ³Π°Π½Π΄ Π² 1.5 Ρ€Π°Π·Π°, ΠΊΠ°ΠΊ Π±Ρ‹Π»ΠΎ ΠΏΠΎΠΊΠ°Π·Π°Π½ΠΎ Π½Π° Π½Π°Π±ΠΎΡ€Π΅ 40 структурно ΠΈ Ρ„ΡƒΠ½ΠΊΡ†ΠΈΠΎΠ½Π°Π»ΡŒΠ½ΠΎ Ρ€Π°Π·Π»ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Ρ… Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ².

4. ΠžΠ±Π½Π°Ρ€ΡƒΠΆΠ΅Π½Π° ΡΠΏΠΎΡΠΎΠ±Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ ΠΏΡ€ΠΎΠΈΠ·Π²ΠΎΠ΄Π½Ρ‹Ρ… 2-гидроксифСнола ΠΊΠΎΠΎΡ€Π΄ΠΈΠ½ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Ρ‚ΡŒΡΡ Π² Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΠΌ Ρ†Π΅Π½Ρ‚Ρ€Π΅ Ρ‚ΠΈΡ€ΠΎΠ·ΠΈΠ½ΠΊΠΈΠ½Π°Π· ЕрЬА2 ΠΈ ΠΠ‘К1 ΠΈ ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Ρ‚ΡŒ ΠΈΡ… Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½ΡƒΡŽ Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ Π² ΠΌΠΈΠΊΡ€ΠΎΠΌΠΎΠ»ΡΡ€Π½ΠΎΠΌ Π΄ΠΈΠ°ΠΏΠ°Π·ΠΎΠ½Π΅ ΠΊΠΎΠ½Ρ†Π΅Π½Ρ‚Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΉ. Π­ΠΊΡΠΏΠ΅Ρ€ΠΈΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½ΠΎ установлСна ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰Π°Ρ Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ Π½Π°ΠΉΠ΄Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… соСдинСний Π² Ρ€ΡΠ΄Ρƒ 20 Ρ‚ΠΈΡ€ΠΎΠ·ΠΈΠ½ΠΊΠΈΠ½Π°Π· Ρ‡Π΅Π»ΠΎΠ²Π΅ΠΊΠ°.

5. Наибольшая Ρ‚ΠΎΡ‡Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ модСлирования структуры комплСксов Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ² с Ρ„Ρ€Π°Π³ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π½Ρ‹ΠΌΠΈ органичСскими соСдинСниями ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠΌ Π΄ΠΎΠΊΠΈΠ½Π³Π° составляСт 83% ΠΈ Π΄ΠΎΡΡ‚игаСтся для соСдинСний, ΡƒΡ‡Π°ΡΡ‚Π²ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΡ… Π² Π½Π°ΠΏΡ€Π°Π²Π»Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… взаимодСйствиях (Π²ΠΎΠ΄ΠΎΡ€ΠΎΠ΄Π½Ρ‹Π΅ связи, координация с ΠΌΠ΅Ρ‚Π°Π»Π»ΠΎΠΌ ΠΈ Ρ‚. Π΄.) ΠΈ ΠΎΠ±Ρ€Π°Π·ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΡ… ΠΊΠΎΠΌΠΏΠ»Π΅ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°Ρ€Π½Ρ‹ΠΉ Π³ΠΈΠ΄Ρ€ΠΎΡ„ΠΎΠ±Π½Ρ‹ΠΉ ΠΊΠΎΠ½Ρ‚Π°ΠΊΡ‚ с Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠΌ. Π’ΠΎΡ‡Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ расчСта свободной энСргии образования комплСксов Ρ„Ρ€Π°Π³ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π½Ρ‹Ρ… соСдинСний с Π±Π΅Π»ΠΊΠ°ΠΌΠΈ, исслСдованная Π½Π° Π½Π°Π±ΠΎΡ€Π΅ 68 комплСксов, составляСт 1,35 ΠΊΠΊΠ°Π»/моль.

6. ΠŸΡ€ΠΈΠΌΠ΅Π½Π΅Π½ΠΈΠ΅ структурной Ρ„ΠΈΠ»ΡŒΡ‚Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΈ ΠΊΠ»Π°ΡΡ‚Π΅Ρ€ΠΈΠ·Π°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΏΠΎΠ·Π²ΠΎΠ»ΠΈΠ»ΠΎ ΠΏΠΎΠ²Ρ‹ΡΠΈΡ‚ΡŒ Ρ‚ΠΎΡ‡Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠ² Π΄ΠΎΠΊΠΈΠ½Π³Π° для модСлирования ΠΊΠΎΠΎΡ€Π΄ΠΈΠ½Π°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΈ ΡΠ²ΠΎΠ±ΠΎΠ΄Π½ΠΎΠΉ энСргии образования комплСксов Ρ„Ρ€Π°Π³ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π½Ρ‹Ρ… соСдинСний с Π±Π΅Π»ΠΊΠ°ΠΌΠΈ, ΠΈ Π½Π°ΠΉΡ‚ΠΈ 4 Π½ΠΎΠ²Ρ‹Ρ… ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ‚ΠΎΡ€Π° ΠΏΡ€ΠΎΡ‚Π΅ΠΈΠ½ΠΊΠΈΠ½Π°Π·Ρ‹ БЭК2 с ΠΊΠΎΠ½ΡΡ‚Π°Π½Ρ‚Π°ΠΌΠΈ ингибирования, Π»Π΅ΠΆΠ°Ρ‰ΠΈΠΌΠΈ Π² ΠΌΠΈΠΊΡ€ΠΎΠΌΠΎΠ»ΡΡ€Π½ΠΎΠΌ Π΄ΠΈΠ°ΠΏΠ°Π·ΠΎΠ½Π΅ ΠΊΠΎΠ½Ρ†Π΅Π½Ρ‚Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΉ.

ΠŸΠΎΠΊΠ°Π·Π°Ρ‚ΡŒ вСсь тСкст

Бписок Π»ΠΈΡ‚Π΅Ρ€Π°Ρ‚ΡƒΡ€Ρ‹

  1. Hunter, T. Protein kinases and phosphatases: the yin and yang of protein phosphorylation and signaling / T. Hunter // Cell. — 1995. — Vol. 80, № 2. — P. 225−36.
  2. Johnson, L. N. Structural basis for control by phosphorylation / L. N. Johnson, R. J. Lewis // Chem. Rev. — 2001. — Vol. 101, № 8. — P. 2209−42.
  3. Neel, B. G. Protein tyrosine phosphatases in signal transduction / B. G. Neel, N. K. Tonks // Curr. Opin. Cell Biol. — 1997. — Vol. 9, № 2. — P. 193−204.
  4. Saito, H. Histidine phosphorylation and two-component signaling in eukaryotic cells / H. Saito // Chem. Rev. — 2001. — Vol. 101, № 8. — P. 2497−509.
  5. Schlessinger, J. Growth factor signaling by receptor tyrosine kinases / J. Schlessinger, A. Ullrich//Neuron. — 1992. — Vol. 9, № 3. — P. 383−91.
  6. Hubbard, S. R. Protein tyrosine kinase structure and function / S. R. Hubbard, J. H. Till // Annu. Rev. Biochem. — 2000. — Vol. 69. — P. 373−98.
  7. Chen, Z. MAP kinases / Z. Chen, T. B. Gibson, F. Robinson et al. // Chem. Rev. — 2001.
  8. Vol. 101, № 8. — P. 2449−76.
  9. Knighton, D. R. Structure of a peptide inhibitor bound to the catalytic subunit of cyclic adenosine monophosphate-dependent protein kinase / D. R. Knighton, J. H. Zheng, L. F. Ten Eyck et al. // Science. — 1991. — Vol. 253, № 5018. — P. 414−20.
  10. Hanks, S. K. Protein kinases 6. The eukaryotic protein kinase superfamily: kinase (catalytic) domain structure and classification / S. K. Hanks, T. Hunter // FASEB J. — 1995. — Vol. 9, № 8. —P. 576−96.
  11. Johnson, L. N. Active and inactive protein kinases: structural basis for regulation / L. N. Johnson, M. E. Noble, and D. J. Owen// Cell. — 1996. — Vol. 85, № 2. — P. 149−58.
  12. Adams, J. A. Kinetic and catalytic mechanisms of protein kinases / J. A. Adams // Chem. Rev. —2001. — Vol. 101, № 8. — P. 2271−90.
  13. Robertson, S. C. RTK mutations and human syndromes: when good receptors turn bad / S. C. Robertson, J. Tynan, and D. J. Donoghue // Trends Genet. — 2000. — Vol. 16, № 8.1. P. 368.
  14. Muller-Ladner, U. Molecular and cellular interactions in rheumatoid synovium / U. MullerLadner // Curr. Opin. Rheumatol. — 1996. — Vol. 8, № 3. — P. 210−20.
  15. Taylor, S. S. Protein kinase inhibition: natural and synthetic variations on a theme / S. S. Taylor, E. Radzio-Andzelm // Curr. Opin. Chem. Biol. — 1997. — Vol. 1, № 2. — P. 21 926.
  16. Toledo, L. M. The structure-based design of ATP-site directed protein kinase inhibitors / L. M. Toledo, N. B. Lydon, and D. Elbaum // Curr. Med. Chem. — 1999. — Vol. 6, № 9. — P. 775−805.
  17. Broadbridge, R. J. The Src homology-2 domains (SH2 domains) of the protein tyrosine kinase p561ck: structure, mechanism and drug design / R. J. Broadbridge, R. P. Sharma //178
  18. Curr. Drug Targets. — 2000. — Vol. 1, № 4. — P. 365−86.
  19. Lawrence, D. S. Protein kinase inhibitors: the tyrosine-specific protein kinases / D. S. Lawrence, J. Niu // Pharmacol. Ther. — 1998. — Vol. 77, № 2. — P. 81−114.
  20. Blum, G. Substrate competitive inhibitors of IGF-1 receptor kinase / G. Blum, A. Gazit, and A. Levitzki // Biochemistry. — 2000. — Vol. 39, № 51. — P. 15 705−12.
  21. Bridges, A. J. Chemical inhibitors of protein kinases / A. J. Bridges // Chem. Rev. — 2001. — Vol. 101, № 8, —P. 2541−72.
  22. Sausville, E. A. Protein kinase antagonists: interim challenges and issues / E. A. Sausville // Anticancer Drug Des. — 2000. — Vol. 15, № 1. — P. 1−2.
  23. Wang, Z. Structural basis of inhibitor selectivity in MAP kinases / Z. Wang, B. J. Canagarajah, J. C. Boehm et al. // Structure. — 1998. — Vol. 6, № 9. — P. 1117−28.
  24. Zhu, X. Structural analysis of the lymphocyte-specific kinase Lck in complex with nonselective and Src family selective kinase inhibitors / X. Zhu, J. L. Kim, J. R. Newcomb et al. // Structure. — 1999. — Vol. 7, № 6. — P. 651−61.
  25. Brooks, G. The cell cycle and drug discovery: the promise and the hope / G. Brooks, N. B. La Thangue // Drug Discov. Today. — 1999. — Vol. 4, № 10. — P. 455−464.
  26. Lapenna, S. Cell cycle kinases as therapeutic targets for cancer / S. Lapenna, A. Giordano // Nat. Rev. Drug Discov. — 2009. — Vol. 8, № 7. — P. 547−566.
  27. Furet, P. Structure-based design of potent CDK1 inhibitors derived from olomoucine / P. Furet, J. Zimmermann, H. G. Capraro et al. // J. Comput. Aided Mol. Des. — 2000. — Vol. 14, № 5. —P. 403−9.
  28. Krause, D. S. Tyrosine kinases as targets for cancer therapy / D. S. Krause, R. A. Van Etten // N. Engl. J. Med. — 2005. — Vol. 353, № 2. — P. 172−87.
  29. Salih, J. The BCR/ABL-inhibitors imatinib, nilotinib and dasatinib differentially affect NK cell reactivity / J. Salih, J. Hilpert, T. Placke et al. // Int. J. Cancer. — 2010. — Vol. 127, № 9. —P. 2119−28.
  30. Traxler, P. Strategies toward the design of novel and selective protein tyrosine kinase inhibitors / P. Traxler, P. Furet // Pharmacol. Ther. — 1999. — Vol. 82, № 2−3. — P. 195 206.
  31. Schindler, T. Structural mechanism for STI-571 inhibition of abelson tyrosine kinase / T. Schindler, W. Bornmann, P. Pellicena et al. // Science. — 2000. — Vol. 289, № 5486. — P. 1938−42.
  32. Totrov, M. Flexible protein-ligand docking by global energy optimization in internal coordinates / M. Totrov, R. Abagyan // Proteins. — 1997. — Vol. Suppl 1, β„–. — P. 215−20.
  33. Tietze, S. GlamDock: Development and Validation of a New Docking Tool on Several Thousand Protein-Ligand Complexes / S. Tietze, J. Apostolakis // J. Chem. Inf. Model. — 2007. — Vol. 47, № 4. — P. 1657−1672.
  34. Morris, G. M. Automated docking using a Lamarckian genetic algorithm and an empirical binding free energy function / G. M. Morris, D. S. Goodsell, R. S. Halliday et al. // Journal of Computational Chemistry. — 1998. — Vol. 19, № 14. — P. 1639−1662.
  35. Huey, R. A semiempirical free energy force field with charge-based desolvation / R. Huey, G. M. Morris, A. J. Olson et al. // J. Comput. Chem. — 2007. — Vol. 28, № 6. — P. 114 552.
  36. Jones, G. Development and validation of a genetic algorithm for flexible docking / G. Jones, P. Willett, R. C. Glen et al. // J. Mol. Biol. — 1997. — Vol. 267, № 3. — P. 727−48.
  37. Hartshorn, M. J. Diverse, high-quality test set for the validation of protein-ligand docking performance / M. J. Hartshorn, M. L. Verdonk, G. Chessari et al. // J. Med. Chem. — 2007. — Vol. 50, № 4. — P. 726−41.
  38. Thomsen, R. MolDock: a new technique for high-accuracy molecular docking / R. Thomsen, M. H. Christensen//J. Med. Chem. — 2006. — Vol. 49, № 11. —P. 3315−21.
  39. Oshiro, C. M. Flexible ligand docking using a genetic algorithm / C. M. Oshiro, I. D. Kuntz, and J. S. Dixon // J. Comput. Aided Mol. Des. — 1995. — Vol. 9, № 2. — P. 113−30.
  40. Rarey, M. Multiple automatic base selection: protein-ligand docking based on incremental construction without manual intervention / M. Rarey, B. Kramer, and T. Lengauer // J. Comput. Aided Mol. Des. — 1997. — Vol. 11, № 4. — P. 369−84.
  41. Kramer, B. Evaluation of the FLEXX incremental construction algorithm for protein-ligand docking / B. Kramer, M. Rarey, and T. Lengauer // Proteins. — 1999. — Vol. 37, № 2. — P. 228−41.
  42. Jain, A. N. Surflex: fully automatic flexible molecular docking using a molecular similarity-based search engine / A. N. Jain // J. Med. Chem. — 2003. — Vol. 46, № 4. — P. 499−511.
  43. Goodsell, D. S. Automated docking of substrates to proteins by simulated annealing / D. S. Goodsell, A. J. Olson // Proteins. — 1990. — Vol. 8, № 3. — P. 195−202.
  44. Solis, F. J. Minimization by Random Search Techniques / F. J. Solis, R. J. B. Wets // Math. Oper. Res. — 1981. — Vol. 6, № 1. — P. 19−30.
  45. Gohlke, H. Approaches to the description and prediction of the binding affinity of small-molecule ligands to macromolecular receptors / H. Gohlke, G. Klebe // Angew. Chem. Int. Edit. — 2002. — Vol. 41, № 15. — P. 2645−2676.
  46. Reddy, M. R. Free energy calculations in rational drug design / M. R. Reddy, M. D. Erion. — New York: Kluwer Academic/Plenum Publishers, 2001. 384 p. — ISBN 306 466 767.
  47. Shirts, M. R. Comparison of efficiency and bias of free energies computed by exponential averaging, the Bennett acceptance ratio, and thermodynamic integration / M. R. Shirts, V. S.
  48. Pande // J. Chem. Phys. — 2005. — Vol. 122, № 14. — P. 144 107.
  49. Pearlman, D. A. The lag between the Hamiltonian and the system configuration in free energy perturbation calculations / D. A. Pearlman, P. A. Kollman // J. Chem. Phys. — 1989. — Vol. 91, № 12, —P. 7831−7839.
  50. Straatsma, T. P. Multiconfiguration thermodynamic integration / T. P. Straatsma, J. A. McCammon // J. Chem. Phys. — 1991. — Vol. 95, № 2. — P. 1175−1188.
  51. Hendrix, D. A. A «fast growth» method of computing free energy differences / D. A. Hendrix, C. Jarzynski // J. Chem. Phys. —2001. — Vol. 114, № 14. — P. 5974−5981.
  52. Warshel, A. Dynamics of reactions in polar solvents. Semiclassical trajectory studies of electron-transfer and proton-transfer reactions / A. Warshel // J. Phys. Chem. — 1982. — Vol. 86, № 12. — P. 2218−2224.
  53. Sham, Y. Y. Examining methods for calculations of binding free energies: LRA, LIE, PDLD-LRA, and PDLD/S-LRA calculations of ligands binding to an HIV protease / Y. Y. Sham, Z. T. Chu, H. Tao et al. // Proteins. — 2000. — Vol. 39, № 4. — P. 393−407.
  54. Aqvist, J. A new method for predicting binding affinity in computer-aided drug design / J. Aqvist, C. Medina, and J. E. Samuelsson // Protein Eng. — 1994. — Vol. 7, № 3. — P. 38 591.
  55. Hansson, T. Ligand binding affinity prediction by linear interaction energy methods / T. Hansson, J. Marelius, and J. Aqvist // Journal of Computer-Aided Molecular Design. —1998. — Vol. 12, № 1. —P. 27−35.
  56. Wall, I. D. Binding constants of neuraminidase inhibitors: An investigation of the linear interaction energy method / I. D. Wall, A. R. Leach, D. W. Salt et al. // J. Med. Chem. —1999. — Vol. 42, № 25. — P. 5142−52.
  57. Carlson, H. A. An Extended Linear Response Method for Determining Free Energies of Hydration / H. A. Carlson, W. L. Jorgensen // J. Phys. Chem. — 1995. — Vol. 99, № 26. — P. 10 667−10 673.
  58. Lee, B. The interpretation of protein structures: estimation of static accessibility / B. Lee, F. M. Richards // J. Mol. Biol. — 1971. — Vol. 55, № 3. — P. 379−400.
  59. Hermann, R. B. Theory of hydrophobic bonding. II. Correlation of hydrocarbon solubility in181water with solvent cavity surface area / R. B. Hermann // J. Phys. Chem. — 1972. — Vol. 76, № 19. — P. 2754−2759.
  60. Sitkoff, D. Accurate Calculation of Hydration Free Energies Using Macroscopic Solvent Models / D. Sitkoff, K. A. Sharp, and B. Honig // J. Phys. Chem. — 1994. — Vol. 98, № 7.1. P. 1978−1988.
  61. Lavigne, P. Structure-based thermodynamic analysis of the dissociation of protein phosphatase-1 catalytic subunit and microcystin-LR docked complexes / P. Lavigne, J. R. Bagu, R. Boyko et al. // Protein Sci. — 2000. — Vol. 9, № 2. — P. 252−64.
  62. Stouten, P. F. W. An Effective Solvation Term Based on Atomic Occupancies for Use in Protein Simulations / P. F. W. Stouten, C. Frommel, H. Nakamura etal. // Molecular Simulation. — 1993. — Vol. 10, № 2. — P. 97−120.
  63. Baker, N. A. Poisson-Boltzmann methods for biomolecular electrostatics / N. A. Baker // Methods Enzymol. — 2004. — Vol. 383, β„–. — P. 94−118.
  64. Bashford, D. Generalized born models of macromolecular solvation effects / D. Bashford,
  65. D. A. Case // Annu. Rev. Phys. Chem. — 2000. — Vol. 51, β„–. — P. 129−52.
  66. Mehler, E. L. Electrostatic effects in proteins: comparison of dielectric and charge models /
  67. E. L. Mehler, T. Solmajer // Protein Eng. — 1991. — Vol. 4, № 8. — P. 903−10.
  68. Mehler, E. L. The role of hydrophobic microenvironments in modulating pKa shifts in proteins / E. L. Mehler, M. Fuxreiter, I. Simon et al. // Proteins. — 2002. — Vol. 48, № 2.1. P. 283−92.
  69. Bohm, H. J. The development of a simple empirical scoring function to estimate the binding constant for a protein-ligand complex of known three-dimensional structure / H. J. Bohm // J. Comput. Aided Mol. Des. — 1994. — Vol. 8, № 3. — P. 243−56.
  70. Gohlke, H. Knowledge-based scoring function to predict protein-ligand interactions / H. Gohlke, M. Hendlich, and G. Klebe // J. Mol. Biol. — 2000. — Vol. 295, № 2. — P. 337−56.
  71. Friesner, R. A. Extra precision glide: docking and scoring incorporating a model of hydrophobic enclosure for protein-ligand complexes / R. A. Friesner, R. B. Murphy, M. P. Repasky et al. // J. Med. Chem. — 2006. — Vol. 49, № 21. — P. 6177−96.
  72. Brooks, B. CHARMM: A program for macromolecular energy, minimization, and dynamics calculations / B. Brooks, R. Bruccoleri, B. Olafson et al. // J. Comput. Chem. — 1983. — Vol. 4, № 2. —P. 187−217.
  73. Mehler, E. L. A self-consistent, microenvironment modulated screened coulomb potential approximation to calculate pH-dependent electrostatic effects in proteins / E. L. Mehler, F.182
  74. Guarnieri // Biophys. J. — 1999. — Vol. 77, № 1. — P. 3−22.
  75. Shoichet, B. K. Virtual screening of chemical libraries / B. K. Shoichet // Nature. — 2004.
  76. Vol. 432, № 7019. — P. 862−5.
  77. Rester, U. From virtuality to reality Virtual screening in lead discovery and lead optimization: a medicinal chemistry perspective / U. Rester // Curr. Opin. Drug Discov. Devel. —2008.—Vol. 11,№ 4, —P. 559−68.
  78. Rollinger, J. M. Virtual screening for the discovery of bioactive natural products / J. M. Rollinger, H. Stuppner, and T. Langer // Prog. Drug Res. — 2008. — Vol. 65, β„–. — P. 211, 213−49.
  79. Waszkowycz, B. Large-scale virtual screening for discovering leads in the postgenomic era / B. Waszkowycz, T. D. J. Perkins, R. A. Sykes et al. // IBM Syst. J. — 2001. — Vol. 40, β„–.1. P. 360−376.
  80. Berman, H. M. The Protein Data Bank / H. M. Berman, J. Westbrook, Z. Feng et al. // Nucleic Acids Res. — 2000. — Vol. 28, № 1. — P. 235−42.
  81. Reiss, T. Drug discovery of the future: the implications of the human genome project / T. Reiss // Trends Biotechnol. — 2001. — Vol. 19, № 12. — P. 496−9.
  82. Stahura, F. L. Virtual screening methods that complement HTS / F. L. Stahura, J. Bajorath // Comb. Chem. High Throughput Screen. — 2004. — Vol. 7, № 4. — P. 259−69.
  83. Schneider, G. Virtual screening and fast automated docking methods / G. Schneider, H. J. Bohm // Drug Discov. Today. — 2002. — Vol. 7, № 1. — P. 64−70.
  84. Koppen, H. Virtual screening what does it give us? / H. Koppen // Curr. Opin. Drug Discov. Devel. — 2009. — Vol. 12, № 3. — P. 397−407.
  85. Leach, A. R. An Introduction to Chemoinformatics. / A. R. Leach, V. J. Gillet. Springer, 2003.-255 p. — ISBN 978−1-4020−1347−8.
  86. Cross, J. B. Comparison of several molecular docking programs: pose prediction and virtual screening accuracy / J. B. Cross, D. C. Thompson, B. K. Rai et al. // J. Chem. Inf. Model.2009. — Vol. 49, № 6. — P. 1455−74.
  87. Novikov, F. N. Improving performance of docking-based virtual screening by structural filtration / F. N. Novikov, V. S. Stroylov, O. V. Stroganov et al. // J. Mol. Model. — 2010.
  88. Vol. 16, № 7. — P. 1223−30.
  89. Krogsgaard-Larsen, P. Textbook of Drug Design and Discovery, 3rdEdition. London and New York: Tayor and Francis, 2002 / P. Krogsgaard-Larsen, T. Liljefors, and U. Madsen // Journal of Pharmacy and Pharmacology. — 2003. — Vol. 55, № 10. — P. 1449−1449.
  90. Warr, W. Fragment-based drug discovery / W. Warr // Journal of Computer-Aided Molecular Design. — 2009. — Vol. 23, № 8. — P. 453−458.
  91. Hajduk, P. J. A decade of fragment-based drug design: strategic advances and lessons learned / P. J. Hajduk, J. Greer // Nat. Rev. Drug Discov. — 2007. — Vol. 6, № 3. — P. 2119.
  92. Hann, M. M. Pursuing the leadlikeness concept in pharmaceutical research / M. M. Hann, T.
  93. Oprea // Curr. Opin. Chem. Biol. — 2004. — Vol. 8, № 3. — P. 255−63.
  94. Congreve, M. Recent developments in fragment-based drug discovery / M. Congreve, G. Chessari, D. Tisi et al. // J. Med. Chem. — 2008. — Vol. 51, № 13. — P. 3661−80.
  95. Hajduk, P. J. Puzzling through fragment-based drug design / P. J. Hajduk // Nat. Chem. Biol.2006. — Vol. 2, № 12. — P. 658−9.
  96. Murray, C. W. Application of fragment screening by X-ray crystallography to beta-secretase / C. W. Murray, O. Callaghan, G. Chessari et al. // J. Med. Chem. — 2007. — Vol. 50, № 6, —P. 1116−23.
  97. Congreve, M. Application of fragment screening by X-ray crystallography to the discovery of aminopyridines as inhibitors of beta-secretase / M. Congreve, D. Aharony, J. Albert et al. // J. Med. Chem. — 2007. — Vol. 50, № 6. — P. 1124−32.
  98. Nienaber, V. L. Discovering novel ligands for macromolecules using X-ray crystallographic screening / V. L. Nienaber, P. L. Richardson, V. Klighofer et al. // Nat. Biotechnol. — 2000.—Vol. 18, № 10, —P. 1105−8.
  99. Jhoti, H. Fragment-based screening using X-ray crystallography and NMR spectroscopy / H. Jhoti, A. Cleasby, M. Verdonk et al. // Curr. Opin. Chem. Biol. — 2007. — Vol. 11, № 5.1. P. 485−93.
  100. Poulsen, S.-A. In Situ Fragment-Based Medicinal Chemistry: Screening by Mass Spectrometry. Fragment-Based Drug Discovery. / S.-A. Poulsen, G. H. Kruppa. Chichester, UK: John Wiley & Sons, Ltd., 2008. P. 159−198. — ISBN 9 780 470 721 551.
  101. Ciulli, A. Probing hot spots at protein-ligand binding sites: a fragment-based approach using biophysical methods / A. Ciulli, G. Williams, A. G. Smith et al. // J. Med. Chem. — 2006.
  102. Vol. 49, № 16. — P. 4992−5000.
  103. Neumann, T. SPR-based fragment screening: advantages and applications / T. Neumann, H. D. Junker, K. Schmidt et al. // Curr. Top. Med. Chem. — 2007. — Vol. 7, № 16. — P. 1630−42.
  104. Miura, T. Fragment screening using surface plasmon resonance optical biosensor technology / T. Miura // Yakugaku Zasshi. — 2010. — Vol. 130, № 3. — P. 341−8.
  105. Kuntz, I. D. The maximal affinity of ligands / I. D. Kuntz, K. Chen, K. A. Sharp etal. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. — 1999. — Vol. 96, № 18. — P. 9997−10 002.
  106. Bembenek, S. Ligand efficiency and fragment-based drug discovery / S. Bembenek, B. Tounge, and C. Reynolds // Drug Discov. Today. — 2009. — Vol. 14, № 5−6. — P. 278−283.
  107. Chessari, G. From fragment to clinical candidate—a historical perspective / G. Chessari, A. J. Woodhead // Drug Discov. Today. — 2009. — Vol. 14, № 13−14. — P. 668−75.
  108. Abad-Zapatero, C. Ligand efficiency indices as guideposts for drug discovery / C. Abad-Zapatero, J. T. Metz // Drug Discov. Today. — 2005. — Vol. 10, № 7. — P. 464−9.
  109. Hubbard, R. Fragment approaches in structure-based drug discovery / R. Hubbard // Journal of Synchrotron Radiation. — 2008. — Vol. 15, № 3. — P. 227−230.
  110. Congreve, M. A 'rule of three' for fragment-based lead discovery? / M. Congreve, R. Carr,
  111. C. Murray et al. // Drug Discov. Today. — 2003. — Vol. 8, № 19. — P. 876−7.
  112. Schade, M. NMR fragment screening: Advantages and applications / M. Schade // IDrugs.2006. — Vol. 9, № 2. — P. 110−3.
  113. Hartshorn, M. J. Fragment-based lead discovery using X-ray crystallography / M. J. Hartshorn, C. W. Murray, A. Cleasby et al. // J. Med. Chem. — 2005. — Vol. 48, № 2. — P. 403−13.
  114. Huber, W. A new strategy for improved secondary screening and lead optimization using high-resolution SPR characterization of compound-target interactions / W. Huber // J. Mol. Recognit. — 2005. — Vol. 18, № 4. — P. 273−81.
  115. Mercier, K. A. Design and characterization of a functional library for NMR screening against novel protein targets / K. A. Mercier, K. Germer, and R. Powers // Comb. Chem. High Throughput Screen. — 2006. — Vol. 9, № 7. — P. 515−34.
  116. Hajduk, P. J. Integration of NMR and high-throughput screening / P. J. Hajduk, D. J. Burns // Comb. Chem. High Throughput Screen. — 2002. — Vol. 5, № 8. — P. 613−21.
  117. Bayley, D. Fragment-based drug design: why it’s so important? Π­Π»Π΅ΠΊΡ‚Ρ€ΠΎΠ½Π½Ρ‹ΠΉ рСсурс. /
  118. D. Bayley, S. Boyd. 2009. — Π Π΅ΠΆΠΈΠΌ доступа: http://www.iotanharma.com/data2/FBDDOverview.pdf, свободный. — Π—Π°Π³Π». с ΡΠΊΡ€Π°Π½Π°.
  119. Artis, D. R. Scaffold-based discovery of indeglitazar, a PPAR pan-active anti-diabetic agent / D. R. Artis, J. J. Lin, C. Zhang et al. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. — 2009. — Vol. 106, № 1. —P. 262−7.
  120. Calderwood, S. K. Heat shock proteins in cancer: chaperones of tumorigenesis / S. K. Calderwood, M. A. Khaleque, D. B. Sawyer et al. // Trends Biochem. Sci. — 2006. — Vol. 31, № 3. —P. 164−72.
  121. Huth, J. R. Discovery and design of novel HSP90 inhibitors using multiple fragment-based design strategies / J. R. Huth, C. Park, A. M. Petros et al. // Chem. Biol. Drug Des. — 2007.—Vol. 70,№ 1. —P. 1−12.
  122. ACD ChemSketch Freeware Π­Π»Π΅ΠΊΡ‚Ρ€ΠΎΠ½Π½Ρ‹ΠΉ рСсурс. Π Π΅ΠΆΠΈΠΌ доступа: http://www.acdlabs.com/resources/freeware/chemsketch, свободный. — Π—Π°Π³Π». с ΡΠΊΡ€Π°Π½Π°.
  123. CORINA Π­Π»Π΅ΠΊΡ‚Ρ€ΠΎΠ½Π½Ρ‹ΠΉ рСсурс. Π Π΅ΠΆΠΈΠΌ доступа: http://www.molecular-networks.com/products/corina, свободный. — Π—Π°Π³Π». с ΡΠΊΡ€Π°Π½Π°.
  124. GAUSSIAN Π­Π»Π΅ΠΊΡ‚Ρ€ΠΎΠ½Π½Ρ‹ΠΉ рСсурс. Π Π΅ΠΆΠΈΠΌ доступа: http://www.gaussian.com, свободный. — Π—Π°Π³Π». с ΡΠΊΡ€Π°Π½Π°.
  125. Humphrey, W. VMD: visual molecular dynamics / W. Humphrey, A. Dalke, and K. Schulten // J. Mol. Graph. — 1996. — Vol. 14, № 1. — P. 33−8,27−8.
  126. Schrodinger. The PyMOL Molecular Graphics System, Version 1.3 Π­Π»Π΅ΠΊΡ‚Ρ€ΠΎΠ½Π½Ρ‹ΠΉ рСсурс.
  127. Π Π΅ΠΆΠΈΠΌ доступа: http://www.pymol.org/pvmoL свободный. — Π—Π°Π³Π». с ΡΠΊΡ€Π°Π½Π°.
  128. PerlMol Perl Modules for Molecular Chemistry Π­Π»Π΅ΠΊΡ‚Ρ€ΠΎΠ½Π½Ρ‹ΠΉ рСсурс. / I. Tubert-Brohman. — Π Π΅ΠΆΠΈΠΌ доступа: http://www.perlmol.org, свободный. — Π—Π°Π³Π». с ΡΠΊΡ€Π°Π½Π°.
  129. Guha, R. The Blue Obelisk-interoperability in chemical informatics / R. Guha, M. T. Howard, G. R. Hutchison et al. // J. Chem. Inf. Model. — 2006. — Vol. 46, № 3. — P. 991−8.
  130. VitasM Laboratory Π­Π»Π΅ΠΊΡ‚Ρ€ΠΎΠ½Π½Ρ‹ΠΉ рСсурс. Π Π΅ΠΆΠΈΠΌ доступа: http://vitasmlab.com, свободный. — Π—Π°Π³Π». с ΡΠΊΡ€Π°Π½Π°.
  131. Enamine Π­Π»Π΅ΠΊΡ‚Ρ€ΠΎΠ½Π½Ρ‹ΠΉ рСсурс. Π Π΅ΠΆΠΈΠΌ доступа: http://www.enamine.net свободный.1. Π—Π°Π³Π». с ΡΠΊΡ€Π°Π½Π°.
  132. Neria, Π•. Simulation of activation free energies in molecular systems / E. Neria, S. Fischer, and M. Karplus // J. Chem. Phys. — 1996. — Vol. 105, № 5. — P. 1902−1921."
  133. Mehler, E. L. Self-Consistent, Free Energy Based Approximation To Calculate pll Dependent Electrostatic Effects in Proteins / E. L. Mehler // J. Phys. Chem. — 1996. — Vol. 100, № 39. —P. 16 006−16 018.
  134. Gasteiger, J. Empirical approaches to the calculation of properties, in Chemoinformatics: a textbook. / J. Gasteiger, T. Engel. Darmstadt, Germany: Wiley-VCH, 2003. — 680 p. -ISBN 978−3-527−30 681−7.
  135. Caliper LifeSciences Π­Π»Π΅ΠΊΡ‚Ρ€ΠΎΠ½Π½Ρ‹ΠΉ рСсурс. Π Π΅ΠΆΠΈΠΌ доступа: http://www.caliperls.com/products/contract-research/in-vitro/kinases/cdk2cyclina-h.htm, свободный. — Π—Π°Π³Π». с ΡΠΊΡ€Π°Π½Π°.
  136. Reaction Biology Corp. Π­Π»Π΅ΠΊΡ‚Ρ€ΠΎΠ½Π½Ρ‹ΠΉ рСсурс. Π Π΅ΠΆΠΈΠΌ доступа: http://www.reactionbiologv.com/Kinases/Invitrogenl00114/ABLl T315I. pdf, свободный.1. Π—Π°Π³Π». с ΡΠΊΡ€Π°Π½Π°.
  137. , P. P. АБ220 is a uniquely potent and selective inhibitor of FLT3 for the treatment of acute myeloid leukemia (AML) / P. P. Zarrinkar, R. N. Gunawardane, M. D. Cramer et al. // Blood. — 2009. — Vol. 114, № 14. — P. 2984−92.
  138. Fabian, M. A. A small molecule-kinase interaction map for clinical kinase inhibitors / M. A. Fabian, W. H. Biggs, 3rd, D. K. Treiber et al. // Nat. Biotechnol. — 2005. — Vol. 23, № 3.1. P. 329−36.
  139. Karaman, M. W. A quantitative analysis of kinase inhibitor selectivity / M. W. Karaman, S. Herrgard, D. K. Treiber et al. // Nat. Biotechnol. — 2008. — Vol. 26, № 1. — P. 127−32.
  140. DesJarlais, R. L. Structure-based design of nonpeptide inhibitors specific for the human immunodeficiency virus 1 protease / R. L. DesJarlais, G. L. Seibel, I. D. Kuntz et al. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. — 1990. — Vol. 87, № 17. — P. 6644−8.
  141. Shoichet, Π’. K. Structure-based discovery of inhibitors of thymidylate synthase / Π’. K. Shoichet, R. M. Stroud, D. V. Santi et al. // Science. — 1993. — Vol. 259, № 5100. — P.1 861 445−50.
  142. Gruneberg, S. Successful virtual screening for novel inhibitors of human carbonic anhydrase: strategy and experimental confirmation / S. Gruneberg, M. T. Stubbs, and G. Klebe // J. Med. Chem. — 2002. — Vol. 45, № 17. — P. 3588−602.
  143. Powers, R. A. Structure-based discovery of a novel, noncovalent inhibitor of AmpC beta-lactamase / R. A. Powers, F. Morandi, and B. K. Shoichet // Structure. — 2002. — Vol. 10, № 7. —P. 1013−23.
  144. Stahl, M. Detailed analysis of scoring functions for virtual screening / M. Stahl, M. Rarey // J. Med. Chem. — 2001. — Vol. 44, № 7. p. 1035−42.
  145. Huang, N. Benchmarking Sets for Molecular Docking /N. Huang, B. K. Shoichet, and J. J. Irwin// J. Med. Chem. — 2006. — Vol. 49, № 23. — P. 6789−6801.
  146. Verdonk, M. L. Virtual screening using protein-ligand docking: avoiding artificial enrichment / M. L. Verdonk, V. Berdini, M. J. Hartshorn et al. // J. Chem. Inf. Comput. Sci. — 2004. — Vol. 44, № 3. — P. 793−806.
  147. Novikov, F. N. Developing novel approaches to improve binding energy estimation and virtual screening: a PARP case study / F. N. Novikov, V. S. Stroylov, O. V. Stroganov et al. //J. Mol. Model. —2009.—Vol. 15, № 11. — P. 1337−47.
  148. Xiao, S. H. An ultrasensitive high-throughput electrochemiluminescence immunoassay for the Cdc42-associated protein tyrosine kinase ACK1 / S. H. Xiao, E. Farrelly, J. Anzola et al. //Anal. Biochem. — 2007. — Vol. 367, № 2. — P. 179−89.
  149. Korkina, L. The chemical defensive system in the pathobiology of idiopathic environment-associated diseases / L. Korkina, M. G. Scordo, I. Deeva et al. // Curr. Drug Metab. — 2009.—Vol. 10,№ 8.— P. 914−31.
  150. Kohyama, N. Inhibition of arachidonate lipoxygenase activities by 2-(3,4-dihydroxyphenyl)ethanol, a phenolic compound from olives / N. Kohyama, T. Nagata, S.
  151. Fujimoto et al. // Biosci. Biotechnol. Biochem. — 1997. — Vol. 61, № 2. — P. 347−50.
  152. , P. 3-Aminopyrazole inhibitors of CDK2/cyclin A as antitumor agents. 1. Lead finding / P. Pevarello, M. G. Brasca, R. Amici et al. // J. Med. Chem. — 2004. — Vol. 47, № 13. —P. 3367−80.
  153. Congreve, M. S. Detection of ligands from a dynamic combinatorial library by X-ray crystallography / M. S. Congreve, D. J. Davis, L. Devine et al. // Angew. Chem. Int. Ed. Engl. — 2003. — Vol. 42, № 37. — P. 4479−82.
  154. Aronov, A. M. Flipped out: structure-guided design of selective pyrazolylpyrrole ERK inhibitors / A. M. Aronov, C. Baker, G. W. Bemis et al. // J. Med. Chem. — 2007. — Vol. 50, № 6. —P. 1280−7.
  155. Gill, A. L. Identification of novel p38alpha MAP kinase inhibitors using fragment-based lead generation / A. L. Gill, M. Frederickson, A. Cleasby et al. // J. Med. Chem. — 2005. — Vol. 48, № 2. — P. 414−26.
  156. Howard, S. Fragment-based discovery of the pyrazol-4-yl urea (AT9283), a multitargeted kinase inhibitor with potent aurora kinase activity / S. Howard, V. Berdini, J. A. Boulstridge et al. // J. Med. Chem. — 2009. — Vol. 52, № 2. — P. 379−88.
  157. Hajduk, P. J. Identification of novel inhibitors of urokinase viaNMR-based screening / P. J. Hajduk, S. Boyd, D. Nettesheim et al. // J. Med. Chem. — 2000. — Vol. 43, № 21. — P. 3862−6.
  158. Frederickson, M. Fragment-based discovery of mexiletine derivatives as orally bioavailable inhibitors of urokinase-type plasminogen activator / M. Frederickson, O. Callaghan, G. Chessari etal. //J. Med. Chem. — 2008. — Vol. 51, № 2. — P. 183−6.
  159. Agnelli, G. A phase II study of the oral factor Xa inhibitor LY517717 for the prevention of venous thromboembolism after hip or knee replacement / G. Agnelli, S. Haas, J. S. Ginsberg et al. // J. Thromb. Haemost. — 2007. — Vol. 5, № 4. p. 746−53.
  160. Pang, Y.-P. Highly Potent, Selective, and Low Cost Bis-tetrahydroaminacrine Inhibitors of Acetylcholinesterase / Y.-P. Pang, P. Quiram, T. Jelacic et al. // Journal of Biological Chemistry. — 1996. — Vol. 271, № 39. — P. 23 646−23 649.
  161. Murray, C. W. Application of Fragment Screening by X-ray Crystallography to p-Secretase / C. W. Murray, O. Callaghan, G. Chessari et al. // J. Med. Chem. — 2007. — Vol. 50, № 6.1. P. 1116−1123.
  162. Hochgurtel, M. Target-induced formation of neuraminidase inhibitors from in vitro virtual combinatorial libraries / M. Hochgurtel, H. Kroth, D. Piecha et al. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. — 2002. — Vol. 99, № 6. — P. 3382−7.
  163. Rath, V. L. Human liver glycogen phosphorylase inhibitors bind at a new allosteric site / V. L. Rath, M. Ammirati, D. E. Danley et al. // Chem. Biol. — 2000. — Vol. 7, № 9. — P. 677−82.
  164. Card, G. L. A family of phosphodiesterase inhibitors discovered by cocrystallography and scaffold-based drug design / G. L. Card, L. Blasdel, B. P. England et al. // Nat. Biotechnol.2005. — Vol. 23, № 2. — P. 201−7.
  165. Burgess, L. E. Potent selective nonpeptidic inhibitors of human lung tryptase / L. E. Burgess, B. J. Newhouse, P. Ibrahim etal. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. — 1999. — Vol. 96, № 15. — P. 8348−52.
  166. Dymock, B. W. Novel, potent small-molecule inhibitors of the molecular chaperone Hsp90 discovered through structure-based design / B. W. Dymock, X. Barril, P. A. Brough et al. //
  167. J. Med. Chem. — 2005. — Vol. 48, № 13. — P. 4212−5.
  168. Hohwy, M. Novel prostaglandin D synthase inhibitors generated by fragment-based drug design / M. Hohwy, L. Spadola, B. Lundquist et al. // J. Med. Chem. — 2008. — Vol. 51, № 7. —P. 2178−86.
  169. Liu, T. BindingDB: a web-accessible database of experimentally determined protein-ligand binding affinities / T. Liu, Y. Lin, X. Wen et al. // Nucleic Acids Res. — 2007. — Vol. 35, β„– Database issue. — P. D198−201.
  170. , P. 3-Aminopyrazole inhibitors of CDK2/cyclin A as antitumor agents. 2. Lead optimization / P. Pevarello, M. G. Brasca, P. Orsini et al. // J. Med. Chem. — 2005. — Vol. 48, № 8, —P. 2944−56.
  171. Kim, K. S. Discovery of aminothiazole inhibitors of cyclin-dependent kinase 2: synthesis, X-ray crystallographic analysis, and biological activities / K. S. Kim, S. D. Kimball, R. N. Misra et al. // J. Med. Chem. — 2002. — Vol. 45, № 18. — P. 3905−27.
  172. Thompson, J. E. Photochemical preparation of a pyridone containing tetracycle: a Jak protein kinase inhibitor / J. E. Thompson, R. M. Cubbon, R. T. Cummings et al. // Bioorg. Med. Chem. Lett. — 2002. — Vol. 12, № 8. — P. 1219−23.
  173. Schlapbach, A. Pyrrolo-pyrimidones: a novel class of MK2 inhibitors with potent cellular activity / A. Schlapbach, R. Feifel, S. Hawtin et al. // Bioorg. Med. Chem. Lett. — 2008. — Vol. 18, № 23. — P. 6142−6.
  174. Furet, P. Structure-based design and protein X-ray analysis of a protein kinase inhibitor / P. Furet, T. Meyer, A. Strauss et al. // Bioorg. Med. Chem. Lett. — 2002. — Vol. 12, № 2. — P. 221−4.
Π—Π°ΠΏΠΎΠ»Π½ΠΈΡ‚ΡŒ Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΡƒ Ρ‚Π΅ΠΊΡƒΡ‰Π΅ΠΉ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚ΠΎΠΉ