Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Образование активных форм кислорода под влиянием ионов уранила и их токсическое действие

Диссертация: Образование активных форм кислорода под влиянием ионов уранила и их токсическое действие
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

В ходе естественного вымывания горных пород богатых изотопами урана и в результате хозяйственной деятельности человека концентрация урана в природе может достигать достаточно высоких значений и варьировать в пределах от 0,01 мкг/л до 12,4 мг/л. Существуют три основных природных изотопа урана: 238U (99,3%), 235U (0,7%) и 234U (0,005%). Обогащенный уран (изотопы 235 и 234) широко применяют как… Читать ещё >

Содержание

  • ЧАСТЬ I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
  • ГЛАВА 1. УРАН
    • 1. 1. УРАН. ОБЩИЕ СВЕДЕНИЯ
    • 1. 2. ВАЖНЕЙШИЕ СВОЙСТВА СОЕДИНЕНИЙ УРАНА
    • 1. 3. ПРИМЕНЕНИЕ УРАНА И ЕГО СОЕДИНЕНИЙ
    • 1. 4. БИОЭКОЛОГИЯ И БИОБЕЗОПАСНОСТЬ СОЕДИНЕНИЙ УРАНА
    • 1. 5. ПОСЛЕДСТВИЯ ДЕЙСТВИЯ УРАНА И ЕГО СОЕДИНЕНИЙ НА 17 БИОСИСТЕМЫ
      • 1. 5. 1. Общий механизм токсического действия урана и его соединений
      • 1. 5. 2. Механизм проникновения соединений урана в организм человека
      • 1. 5. 3. Уран и его соединения как причина патологий
  • ГЛАВА 2. ОБРАЗОВАНИЕ АФК И ОКИСЛИТЕЛЬНЫЙ СТРЕСС
    • 2. 1. АКТИВНЫЕ ФОРМЫ КИСЛОРОДА
      • 2. 1. 1. Перекись водорода (Н2О2)
      • 2. 1. 2. Гидроксильный радикал (*ОН)
      • 2. 1. 3. Синглетный кислород ('Ог)
      • 2. 1. 4. Супероксиданион радикал (О2″)
    • 2. 2. МАРКЕРЫ ОКИСЛИТЕЛЬНОГО СТРЕССА
      • 2. 2. 1. Долгоживущие радикальные формы белка
      • 2. 2. 2. Микроядерный тест
      • 2. 2. 3. Карбонильные производные белков
      • 2. 2. 4. 8-оксогуанин в нуклеиновых кислотах
  • ЗАКЛЮЧЕНИЕ К ОБЗОРУ ЛИТЕРАТУРЫ 39 ЧАСТЬ II. ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ
  • ГЛАВА 3. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 3. 1. МАТЕРИАЛЫ
    • 3. 2. МЕТОДЫ
      • 3. 2. 1. Подготовка и процедура облучения
        • 3. 2. 1. 1. Подготовка проб и облучение
        • 3. 2. 1. 2. Подготовка животных и облучение
      • 3. 2. 2. Работа с животными
        • 3. 2. 2. 1. Уход за животными
        • 3. 2. 2. 2. Забой животных
      • 3. 2. 3. Определение продукции перекиси водорода
      • 3. 2. 4. Определение продукции гидроксильных радикалов
      • 3. 2. 5. Определение концентрации растворенного кислорода в среде
      • 3. 2. 6. Определение продукции долгоживущих радикалов белка
  • ДЖРБ)
    • 3. 2. 7. Определение окислительных модификаций белков по уровню карбонильных производных
    • 3. 2. 8. Определение 8-оксогуанина методом иммуноферментного 47 анализа (ИФА)
    • 3. 2. 9. Определение цитотоксических повреждений в культуре клеток 48 НЕр
    • 3. 2. 10. Оценка генотоксического потенциала ионов уранила 49 микроядерным тестом
    • 3. 2. 11. Работа с митохондриями
      • 3. 2. 11. 1. Выделение митохондрий печени
      • 3. 2. 11. 2. Оценка функциональных параметров митохондрий 5 *
      • 3. 2. 11. 3. Определение Са -емкости в митохондриях печени крысы
      • 3. 2. 11. 4. Образование Н2О2 митохондриями печени ^*
      • 3. 2. 12. Тест на выживаемость
      • 3. 2. 13. Подсчет общего количества клеток периферической крови
      • 3. 2. 14. Исследование поведения животных
      • 3. 2. 14. 1. Тест «Открытое поле»
      • 3. 2. 14. 2. Тест «Черно-белая камера»
  • ЧАСТЬ III. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ И ИХ
  • ОБСУЖДЕНИЕ
  • ГЛАВА 4. ПРООКСИДАНТНЫЕ СВОЙСТВА ИОНОВ УРАНИЛА
    • 4. 1. ОБРАЗОВАНИЕ АКТИВНЫХ ФОРМ КИСЛОРОДА ПОД 56 ДЕЙСТВИЕМ ИОНОВ УРАНИЛА
    • 4. 2. ОБРАЗОВАНИЕ ПОВРЕЖДЕНИЙ БЕЛКА И ДНК ПОД 66 ДЕЙСТВИЕМ ИОНОВ УРАНИЛА
  • ГЛАВА 5. ВЛИЯНИЕ УРАНИЛНИТРАТА НА
  • ФУНКЦИОНАЛЬНЫЕ ПАРАМЕТРЫ МИТОХОНДРИЙ ПЕЧЕНИ 76 МЫШЕЙ И КРЫС
  • ГЛАВА 6. РАДИОМОДИФИЦИРУЮЩИЕ СВОЙСТВА ИОНОВ УРАНИЛА
  • ГЛАВА 7. ВЛИЯНИЕ ИОНОВ УРАНИЛА НА ЭТОЛОГИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ У ЖИВОТНЫХ
  • ВЫВОДЫ
  • СПИСОК ИСПОЛЬЗУЕМОЙ ЛИТЕРАТУРЫ
  • СПИСОК ОСНОВНЫХ СОКРАЩЕНИЙ И ОБОЗНАЧЕНИЙ

Образование активных форм кислорода под влиянием ионов уранила и их токсическое действие (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

В ходе естественного вымывания горных пород богатых изотопами урана и в результате хозяйственной деятельности человека концентрация урана в природе может достигать достаточно высоких значений и варьировать в пределах от 0,01 мкг/л до 12,4 мг/л [Depleted Uranium: Sources, Exposure and Health Effects, 2001]. Существуют три основных природных изотопа урана: 238U (99,3%), 235U (0,7%) и 234U (0,005%). Обогащенный уран (изотопы 235 и 234) широко применяют как топливо для атомных электростанций, в бомбах в качестве критической массы. Уран 238 (обеденный, ОУ) в качестве замедлителя быстрых нейтронов в ядерных реакторах и при детонации бомб, в качестве сердечников для бронебойных снарядов, в современной танковой броне, например, танка М-1 «Абраме» [Бекман, 2009]. U-233 также является наиболее перспективным топливом для газофазных ядерных ракетных двигателей. В мирных целях ОУ используют в качестве балласта в судах, самолетах, в роторах маховиков и гироскопов, для придания цвета стеклу и керамике, при тонировании фотографий, в качестве красителя в живописи, в металлургии, при микроскопических исследованиях. В науке используют при радиоизотопном определении возраста пород и минералов.

В почве и воде уран преимущественно встречается в виде свободных ионов уранила (UO2) или в виде их комплексов [Duquene et al., 2010]. Уран обладает пирофорными свойствами, поэтому при авариях самолетов, в которых в качестве балластной массы используют ОУ или при попадании в цель бронебойных снарядов с ураниловыми сердечниками, уран сгорает на воздухе, в результате чего также образуются ионы уранила.

Обычно ОУ хранится в виде отвалов или терриконов открытым способом и, наряду с испытаниями ядерного оружия, представляет серьезную угрозу для экологии планеты в целом [Sheppard et al., 2005]. Давно известно, что ионы уранила на организменном уровне могут быть причиной ряда патологий [Ни et al., 1990], проявляя существенные мутагенные и канцерогенные свойства [Miller et al., 2002]. Подавляющее большинство известных работ сосредоточено на описании феноменологии повреждающего действия ионов уранила [Smith et al., 2009, Cheng et al., 2010, Trenfield et al., 2011, Orona & Tasat, 2012]. Причиной повреждающего действия ионов уранила на организм считают с одной стороны, ярко выраженную радиоактивность изотопов урана [Бекман, 2009], с другой — их химическую токсичность, а именно способность обратимо взаимодействовать с боковыми группами белков и аминокислот (например, с сульфгидрильными), что может приводить к инактивации ряда ферментов [Pible et al., 2010], а так же способность к образованию комплексов, что негативно сказывается на обмене биологически значимых анионов и катионов [Baker, 2012]. Нужно отметить, что механизму химической токсичности ионов уранила традиционно отводится меньшее внимание, так как он наблюдается при остром воздействии и при достаточно высоких концентрациях [Cheng et al., 2010]. Образование активных форм кислорода и окислительных повреждений биополимеров за счет радиоактивности изотопов урана, а так же ингибирование ряда ферментов антиоксидантной защиты и репарации в большинстве случаев приводит к развитию окислительного стресса [George et al., 2011, Orona & Tasat, 2012]. В нашей лаборатории было высказано предположение о том, что существует дополнительный механизм инициации окислительного стресса ионами уранила, который связан преимущественно с физико-химической генерацией АФК под действием этих ионов [Смирнова и др., 2011]. В связи с вышеизложенным, исследование альтернативных процессов лежащих в основе развития окислительного стресса, индуцированного ионами уранила, представляет собой актуальную научную проблему.

ЧАСТЬ I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

выводы.

1. Ионы ураннла в концентрациях 1−100 мкМ в солевых растворах значительно усиливают образование активных форм кислорода, индуцированных видимым светом или теплом, до значений 200 нМ. Вклад естественной радиоактивности урана в процесс образования АФК незначителен.

2. Ионы уранила в концентрации 10 мкМ в сочетании с природным восстановителем — аскорбиновой кислотой, способны обеспечивать в модельной физиологической среде (сыворотка крови, культуральная среда) генерацию активных форм кислорода вплоть до концентраций в десятки микромолей на литр.

3. Ионы уранила в микромолярных концентрациях (1−100 мкМ) индуцируют образование долгоживущих радикальных форм белка in vitro. Уранилнитрат при внутрибрюшинном введении мышам вызывает увеличение содержания карбонильных производных белков в сыворотке крови и количества полихроматофильных эритроцитов, содержащих микроядра, в костном мозге.

4. Показано, что внутрибрюшинное введение уранилнитрата самцам мышей в концентрации вплоть до 0,75 мкг/г и добавление ионов уранила к суспензии митохондрий in vitro до конечной концентрации 390 мкг/мл не влияют существенным образом на скорость дыхания, Са2±емкость митохондрий и скорость образования ими Н202.

5. Уранилнитрат в концентрации 0,75 мкг/г проявляет радиомодифицирующие свойства, уменьшая выживаемость самцов мышей при внутрибрюшинном введении его непосредственно после действия ионизирующей радиации в летальных и сублетальных дозах. Фактор изменения дозы при таком введении в пересчете на ионы уранила равен 0,9.

Показать весь текст

Список литературы

  1. P.M., Булдаков Л. А., Губанов В. А. и др. Крупные радиационные аварии: последствия и защитные меры. Под общей ред. Л. А. Ильина и В. А. Губанова. /М.: ИздАТ, 2001. 752 с.
  2. И.Н. Уран. // М.: Изд-во МГУ, 2009. 300 с.
  3. Р.Н., Н.М. Титова, Ю. А. Дыхно, П. В. Лапешин, Е. В. Кудряшова, A.A. Савченко. Окислительная модификация белков и липидов плазмы крови больных раком легкого. // Сибирский онкологический журнал, 2009. Т. 4(34). С. 48−51.
  4. Р.Н., Н.М. Титова. Карбонильные производные белков у больных раком легкого. // Сибирский онкологический журнал, 2007. Т. 2. С. 6−10.
  5. К.Н., С.А. Гармаш, Н. В. Белослудцева, С.П. Белова, A.B. Бережнов, C.B. Гудков. Исследование механизмов цитотоксического действия уранилнитрата. // Биофизика, 2012. Т. 57. Вып. 5. С. 789−795.
  6. Л.А., Калмансон А. Э. Спектры электронного и парамагнитного резонанса облученных нативных и денатурированных белков. // Доклады Академии наук СССР, 1957. Т. 117. № 1. С. 30−34.
  7. В.И., Масалимов Ж. К., Усачева A.M. Определение 8-оксогуанина в ДНК методом хемилюминесцентного иммуноферментного анализа. // Биохимия, 1999. Т. 64(7). С. 958−964.
  8. А.П. Аналитическая химия урана. // М.: Издательство АН СССР, 1962.431 с.
  9. М.Г., Никишин Г. И. Химия ацильных радикалов в растворе. // Успехи химии, 1971. T. XL. Вып.1. С. 1959 -1994.
  10. С.А. Образование активных форм кислорода при совместном действии низких концентраций ионов уранила и ряда физических факторов. // Фундаментальные исследования, 2012. № 9 (4). С. 961−964.
  11. С.А., Карп О. Э., Смирнова B.C., Гудков C.B. Прооксидантные свойства ионов уранила, индуцированные видимым светом. // Известия Национальной академии наук Беларуси. Серия биологическая, 2012. Т.З. С. 44−46.
  12. ГН 2.1.5.1315−03. Предельно допустимые концентрации (ПДК) химических веществ в воде водных объектов хозяйственно-питьевого и культурно-бытового водопользования. // М: Стандарт, 2003. 152 с.
  13. Ю.И., Левицкий Е. Л., Гольдштейн Н. Б., Литошенко, А .Я. Перекисное окисление липидов и эндогенная ДНК-полимеразная активность фракций изолированного хроматина печени крыс. // Бюл. эксперим. биологии и медицины, 1989. Т. 57 (№ 3). С. 296—298.
  14. Н.Г., Беляев В. А. Радиоактивные выбросы в биосфере. // Справочник. М.: Энергоатомиздат, 1991. 255 с.
  15. Е.Е., Бурмистров С. О., Ходов Д. А., Поротов И. Е. Окислительная модификация белков сыворотки крови человека. Методы ее определения. // Вопросы медицинской химии, 1995. Т. 41, № 1. С. 24−26.
  16. , С.Д., Иванов, A.B. Светокислородный эффект в клетках и перспективы его применения в терапии опухолей. // Квант. Электроника, 1999. Т. 29. С. 192 214.
  17. Н.К., Ланкин В. З., Меньшикова Е. Б. Окислительный стресс: биохимический и патофизиологический аспекты. // М.: МАИК «Наука Интерпериодика», 2001. 343 с.
  18. В.К., Цыб А.Ф. Профессиональный риск: от популяционных исследований к индивидуальному прогнозу (на примере радиационной эпидемиологии). // Профессия и здоровье: Матер. 1 Всерос. конгресса. М., 2002. С. 60−61.
  19. Л.А. Радиационные аварии: медицинские последствия и опыт противорадиационной защиты. // Атомная энергия, 2002. Т. 92. № 2. С. 143−152.
  20. Н. Н., Ильинских И. Н., Новицкий В. В., Ванчугова Н. Н. Микроядерный анализ и цитогенетическая нестабильность. // Изд. Томского университета, 1992. 272 с.
  21. Х.Ю., Т.М. Агаев, Т.П. Семенова. Индивидуальные особенности поведения. // Баку, «Нурлан», 2007. 228 с.
  22. Кац Дж., Е. Рабинович. Химия урана: уран, как элемент, его бинарные соединения, гидраты окислов и оксигалогениды. // ИЛ. М., 1954. 487 с.
  23. Д.Ю., С.И. Заичкина. Методы автоматического анализа клеток и их применение в радиобиологических исследованиях. // Радиационная биология. Радиоэкология, 2000. Т. 40. № 1. С. 15−22.
  24. Т.В., О.Н. Дмитриева, Л. Н. Химкина, Г. А. Пантелеева. Окислительная модификация белков и олигопептидов у больных хроническими дерматозами с синдромом эндогенной интоксикации. //М.: Наука, 2005. 294 с.
  25. Л.Н., Молофей В. П., Моссэ И. Б., Плотникова С. И. Способность некоторых радиопротекторов маскировать проявление адаптивного ответа в половых и соматических клетках мышей. // Экологическая антропология, 1999. Т. 116. Вып. 103. С. 328−330.
  26. Кракий химический справочник. // Под ред. Рабиновича и Хавина. Химия, 1991. 435 с.
  27. A.M. Радиационный канцерогенез как общебиологическая проблема. // Радиобиология, 1985. Т. 25. № 5. С. 579−584.
  28. И.П. Модели тревоги на мышах: оценка в эксперименте и критика методики. // Экспериментальная и клиническая фармакология, 2000. Т. 63(3). С. 58−62.
  29. Е.Л., Губский Ю. И., Гольдштейн Н. Б., Литошенко А. Я. Перекисное окисление липидов и полимеразные активности фракций хроматина печени крыс при старении. // Бюл. эксперим. биологии и медицины, 1989. Т. 57. № 6. С.693−695.
  30. Н.В. Клинико-эпидемиологические особенности воздействия эколого-гигиенических факторов на опухолевые заболевания желудочно-кишечного тракта. //Автореферат дис. канд. мед. наук. Новосиб. Мед. акад. Новосибирск, 2004. 26 с.
  31. А.Ф., С.Н. Сушко, A.C. Шафорост. Мутагеные и опухолевые эффекты природного урана. // Вести HAH Беларуси. Секция биологических наук, 2011. № 3. С. 111−118.
  32. Е.Б., Зенков Н. К. Антиоксидантны и ингибиторы радикальных окислительных процессов. // Успехи современной биологии, 1993. Т. 113. С. 442−455.
  33. Ю.И., Журавлев В. Ф. Методология прогнозирования отдаленных биологических эффектов и оценка генетических последствий радиационного воздействия. //Атомная энергия, 1983. Т. 55. № 5. С. 306−310.
  34. А. К. Современная радиационная химия: Радиолиз жидкостей и газов. // М.: Наука, 1986. 440 с.
  35. Г. М. Опухолевые эффекты урана. // Гигиена населенных мест. Киев, 2000. № 36. С. 383−391.
  36. Г. Т., Р.Ш. Саркисян, JI.M. Карапетян, Н. Э. Акопян, Ж. С. Саркисян, И.Р. Мадатова. Индивидуальные особенности поведения мышей в тесте «черно-белая камера». // Биологический журнал Армении, 2010. № 1 (62). С. 23−29.
  37. Н.С., Хавинсон В. Х. Роль пептидов в свободнорадикальном окислении и старении организма. // Успехи совр. биол., 2002. Т. 122 (6). С.557−568.
  38. B.C., Гудков C.B., Брусков В. И. 8-оксогуанин и продукты его окисления. Образование в ДНК in vitro под действием тепла, ионов уранила и гамма-излучения. // Saarbrucken. Lambert Academic Pulishing, 2011. 152 с.
  39. B.C., Гудков C.B., Штаркман И. Н., Черников A.B., Брусков В. И. Генотоксическое действие ионов уранила на ДНК in vitro, обусловленное генерацией активных форм кислорода. // Биофизика, 2005. Т. 50(3). С. 456−463.
  40. A.A. Уран и торий в земной коре. // JL: Недра, 1974. 232 с.
  41. Тимофеев-Ресовский Н.В., Савич A.B., Шальнов М. И. Введение в молекулярную радиобиологию. // Медицина, 1981. 320 с.
  42. М.Н., М.И.Рылов. Дозообразующие радионуклиды. // Атомная стратегия, 2006. № 4. С. 16−21.
  43. М.Н., Муратов О. Э. Альтернативный ядерно-топливный цикл: необходимость и актуальность. // Экология промышленного производства, 2009. Вып. 4. С. 40−48.
  44. Трансурановые элементы в окружающей среде. Под ред. У. С. Хэнсона. // М.: Мир, 1985. 344 с.
  45. Ю.О., С.Г. Пивина, Н. Э. Ордян. Поведенческие эффекты кетансерина у пренатально стрессированных самок крыс. // Экспериментальная и клиническая фармакология, 2012. Т.75. № 1. С.12−15.
  46. М.А., Н.Н.Смирнова, З. В. Светлова. Перекисное окисление белков плазмы крови больных сахарным диабетом типа 1. // Пробл. эндокринол., 2003. Т. 49 (4). С. 3 4.
  47. Ю.Б. Хемилюминесцентное определение пероксида водорода. // ЖАХ, 2012. Т. 67 (6). С. 564−572.
  48. ЦыбА.Ф. Медицинские последствия аварии на Чернобыльской АЭС. // Медицинская радиология и радиационная безопасность, 1998. № 1. С. 18−23.
  49. А.В., Брусков В. И. Генерация гидроксильных радикалов и других редокс-активных соединений в морской воде под действием тепла. // Биофизика, 2002. Т. 47(5). С. 773−781.
  50. Н.Г., Нипрук О. В. Уран. Прошлое, настоящее и будущее. Учебное пособие. // Изд-во ИНГУ, 2010. 52 с.
  51. Abramsson-Zetterberg L., Carlsson R., Sand S. The use of immunomagnetic separation of erythrocytes in the in vivo flow cytometer-basedmicronucleus assay. // Mutat Res., 2013. V. 18. P.13−17.
  52. Asadullina N.R., Usacheva A.M., Gudkov S.V. Protection of mice against X-ray injuries by the post-irradiation administration of inosine-5'-monophosphate. // J. Radiat. Res., 2012. V.53. P. 211−216.
  53. Baker R.J. New reactivity of the uranyl (VI) ion. // Chemistry, 2012. V.18 (51). P.16 258−16 271.
  54. Barber D.S., Hancock S.K., McNally A.M., Hinckley J., Binder E., Zimmerman K., Ehrich M.F., Jortner B.S. Neurological effects of acute uranium exposure with and without stress. // Neurotoxicol., 2007. V. 28(6). P. 1110−1119.
  55. Beard W.A., Batra V.K., Wilson S.H. DNA polymerase structure-based insight on the mutagenic properties of 8-oxoguanine. // Mutat Res., 2010. V. 703(1). P. 18−23.
  56. Benedetti D., Nunes E., Sarmento M., Porto C., Santos, C.E., Dias J.F., da Silva. Genetic damage in soybean workers exposed to pesticides: Evaluation with the comet and buccal micronucleus cytome assays. // J. Mutat Res., 2013. P. 28−33.
  57. Berlin M. and Rudell B. Handbook on the Toxicology of Metals. // Elsevier, 1979. P.647−658.
  58. Boiler K. Schmid W. Chemishe Mutagenese beim Sauger. Das Knochermark des Chineschen Hamsters in vivo-Test system. Haematologische Befunde nach Behandlung mit Trenimon. // Humangenetik, 1970. V. 11. C. 35−54.
  59. Boncella J.M. Inorganic chemistry: uranium gets a reaction. // Nature, 2008. V. 451(7176). P. 250−252.
  60. Bonda D.J., Wang X., Perry G. Oxidative stress in Alzheimer disease: a possibility for prevention. //Neuropharmacology, 2010. V. 59 (4−5). P. 290- 294.
  61. Brady H. R., B. C. Kone, R. M. Brenner and S. R. Gullans. Early effects of uranyl nitrate on respiration and K+ transport in rabbit proximal tubule. // Kidney International, 1989. V. 36. P. 16−27.
  62. Brugge D., Buchner V. Health effects of uranium: new research findings. // Rev. Environment Health, 2011. V. 26(4). P. 231−249.
  63. Bruskov V.I., Kiselev N.A. Electron microscope study of the structure of Escherichia coli riboomes and CM-like particles. // J. Mol. Biol., 1968. V. 37(3). P. 367−377.
  64. Bruskov V.I., Kiselev N.A. Electron microscopy investigation of the structure of cytoplasmic ribosomes of bean leaves. // J. Mol. Biol., 1968. V. 38(3). P. 443−445.
  65. Cadet J., Ravanat J.L., Taverna Porro M., Menoni H., Angelov D. Oxidatively generated complex DNA damage: tandem and clustered lesions. // Cancer Lett., 2012. V. 327. P.5−15.
  66. Carafolli E., R. Tiozzo, I. Pasqualli-Ronchetti, R. Laschi. A study of Ca2+ Metabolism in Kidney Mitochondria during Acute Uranium Intoxication. // Lab. Invest., 1971. V.25. P.516−524.
  67. Chen T.R. Re-evaluation of HeLa, HeLa S3, and HEp-2 karyotypes. // Cytogenet. Cell Genet., 1988. V. 48(1). P. 19−24.
  68. Cheng K.L., Hogan A.C., Parry D.L., Markich S.J., Harford A.J., van Dam R.A. Uranium toxicity and speciation during chronic exposure to the tropical freshwater fish, Mogurnda mogurnda. // Chemosphere, 2010. V. 79(5). P. 547−554.
  69. Conwell E.M., Park J.H., Choi H.Y. Polarons in DNA: transition from guanine to adenine transport. // J. Phys. Chem. B., 2005. V.109(19). P. 9760−9763.
  70. Crompton M. The mitochondrial permeability transition pore and its role in cell death. //J. Biochemistry, 1999. V. 341. P. 233−249.
  71. De Pinto V., S. Reina, F. Guarino, and A. Messina. Structure of the voltage dependent anion channel: state of the art. // J. Bioenerg. Biomembr., 2008. V. 40. P.139−144.
  72. Dean R.T., Hunt J.V., Grant A.J., Y. Yamamoto, E. Niki. Free radical damage to proteins: the influence of the relative localization of radical generation, antioxidants, and target proteins.//Free Rad. Biol. Med., 1991. V. 11. P. 161−168.
  73. Depleted uranium: sources, exposure and health effects. // J. Pharm Belg., 2001. V.56(3). P. 75−78.
  74. Devasagayam T.P.A., Steenken S., Obendorf M.S.W., Schulz W.A. and Sies H. Formation of 8-hydroxy (deoxy)guanosine and generation of strand breaks at guanine residues in DNA by singlet oxygen. // Biochemistry, 1991. V. 30. P. 6283−6289.
  75. Domingo J.L. Reproductive and developmental toxicity of natural and depleted uranium: a review. // Reprod Toxicol., 2001. V. 15(6). P. 603−609.
  76. Forman H.J. Reactive oxygen species and alpha, beta-unsaturated aldehydes as second messengers in signal transduction. // Ann. N. Y. Acad. Sci., 2010. V. 1203. P.35−44.
  77. Frieauff W., Martus H.J., Suter W., Elhajouji A. Automatic analysis of the micronucleus test in primary human lymphocytes using image analysis. // Mutagenesis, 2013. V. 28(1). P. 15−23.
  78. Gajewski E., Rao G., Nackrdien Z., Dizdaroglu M. Modification of DNA bases in mammalian chromatine by radiation generated free radicals. // Biochemistry, 1990. V.29. P. 7876−7882.
  79. Gebicki S., Gebicki J.M. Formation of peroxides in amino acids and proteins exposed to oxygen free radicals. // J. Biochemestry, 1993. V. 289. P. 743−749.
  80. George S.A., Whittaker A.M., Stearns D.M. Photoactivated uranyl ion produces single strand breaks in plasmid DNA. // Chem. Res. Toxicol., 2011. V. 24(11). P.1830−1832.
  81. Giacco F., Brownlee M. Oxidative stress and diabetic complications. //Circ. Res., 2010. V.107 (9). P. 1058−1070.
  82. Giulivi C., Cadenas E. Oxidation of adrenaline by ferrylmyoglobin. // Free Radical Biol. Med., 1998. V. 25(2). P. 175−183.
  83. Halestrap A., McStay G., and Clarke S. The permeability transition pore complex: another view. // J. Biochimistry, 2002. V. 84. P. 153−166.
  84. Harada T., Kashino G., Suzuki K., Matsuda N., Kodama S., Watanabe M. Different involvement of radical species in irradiated and bystander cells. // Int. J. Radiat. Biol., 2008. V. 84. P.809−814.
  85. Hayashi M., Norpa H., Sofuni T. Flow cytometric micronucleus test with mouse peripheral erythrocytes. //J.Mutagenesis, 1992. V. 7(4). P. 257−264.
  86. Hayashi M., Norppa H., Sofuni T., Ishidate M. Jr. Mouse bone marrow micronucleus test using flow cytometry. // J. Mutagenesis, 1992. V. 7(4). P. 251−256.
  87. Hayes J.E., Doherty A.T., Coulson M., Foster J.R., Cotton P.T., O’Donovan M.R. Micronucleus induction in the bone marrow of rats by pharmacological mechanisms. I: glucocorticoid receptor agonism. // Mutagenesis, 2013. V. 28(2). P. 227−232.
  88. Hearne J.A. and White A.G. Hydrolysis of the uranyl ion. // J. Chem. Soc., 1957. P.2168−2172.
  89. Heddle J.A. A rapid in vivo test for chromosomal damage. // Mut. Res., 1973. V. 18. C. 187−190.
  90. Heintze E., Aguilera C., Davis M., Fricker A., Li Q., Martinez J., Gage M.J. Toxicity of depleted uranium complexes is independent of p53 activity. // J. Inorg. Biochem., 2011. V. 105. P. 142−148.
  91. Hirayama H., Tamaoka J., Horikoshi K. Improved immobilization of DNA to microwell plates for DNA-DNA hybridization. // Nucleic Acids Res., 1996. V. 24(20). P. 4098−4099.
  92. Hu Q., Zhu S. Induction of chromosomal aberrations in male mouse germ cells by uranyl fluoride containing enriched uranium. // Mutation Research., 1990. V. 244. P.209 214.
  93. Hunter D. and Haworth R. The Ca -induced membrane transition in mitochondria. I. The protective mechanisms. // Arch. Biochem. Biophys., 1979. V. 195. P. 453−459.
  94. Jena N.R., Mishra P.C. Formation of ring-opened and rearranged products of guanine: mechanisms and biological significance. // Free Radic. Biol. Med., 2012. V. 53. P.81−94.
  95. Jyoti S., Khan S., Afzal M., Siddique Y.H. Micronucleus investigation in human buccal epithelial cells ofgutkha users. //Adv. Biomed. Res., 2012. V. 1. P. 30−35.
  96. Kasai H. Analysis of a form of oxidative DNA damage, 8-hydroxy-2'-deoxyguanosine, as a marker of cellular oxidative stress during carcinogenesis. // Mutat Res., 1997. V. 387. P.147−163.
  97. Kasai H., Nishimura S. Detection and identification of mutagens and carcinogens as their adducts with guanosine derivatives. //Nucleic Acids Res., 1984. V. 12. P. 21 272 136.
  98. Korshunov S.S., Skulachev V.P., Starkov A.A. High protonic potential actuates a mechanism of production of reactive oxygen species in mitochondria. // FEBS Lett., 1997. V. 416(1). P.15−18.
  99. Koyama S., Kodama S., Suzuki K., Matsumoto T., Miyazaki T. and Watanabe M. Radiation-induced long-lived radicals which cause mutation and transformation. // Mutat. Res., 1998. V. 421. P. 45−54.
  100. Kroemer G. and Reed J. Mitochondrial control of cell death. // Nat. Med., 2000. V. 6. P. 513−519.
  101. Kumagai J., Katon H., Miyazaki T., Hidema J. and Kumaga T. Differences Kumagai in the Sensitivity to UVB Radiation of Two Cultivars of Rice (Oryza Sativa L.) based on Observation of Long-Lived Radicals. // J. Radiat. Res., 1999. V. 40. P. 303−310.
  102. Kumar S., Loganathan V.A., Gupta R.B., Barnett M.O. An Assessment of U (VI) removal from groundwater using biochar produced from hydrothermal carbonization. // J. Environ. Manage., 2011. V. 92. P.2504−2512.
  103. Kuznetsov N.A., Koval V.V., Fedorova O.S. Mechanism of recognition and repair of damaged DNA by human 8-oxoguanine DNA glycosylase hOGGl. // Biochemistry, 2011. V. 76(1). P. 118−130.
  104. Leonarduzzi G., Sottero B., Poli G. Targeting tissue oxidative damage by means of cell signaling modulators: The antioxidant concept revisited. // Pharm. Therap., 2010. V. 128. P. 336−374.
  105. Lerebours A., C. Adam-Guillermin, D. Brethes. Mitochondrial energetic metabolism perturbations in skeletal muscles and brain of zebraflsh (Danio rerio) exposed to low concentrations of waterborne uranium. //Aquat. Toxicol., 2010. V. 100. P. 66−79.
  106. Liu G., Men P., Kenner G.H. l-(2-Hydroxyethoxy) methy 1−2-methy 1−3-hydroxy 1−4-pyridinone: a targeted, bifunctional chelating agent for potential uranic detoxification in the kidney. // Hemoglobin., 2011. V. 35(3). P. 291−300.
  107. Lowry O.H., Rosebrough N.J., Farr A.L., Randall R.J. Protein measurement with the Folin phenol reagent. // J. Biol Chem., 1951. V. 193(1). P. 265−275.
  108. Luxford C., Morin B., Dean R.T. and Davies M.J. Histone HI- and amino acid-hydroperoxides can give rise to free radicals which oxidize DNA. // J. Biochem., 1999. V. 344. P. 125−134.
  109. Manevich Y., Held K.D., Biaglow J.E. Coumarin-3-carboxylic acid as a detector for hydroxyl radicals generated chemically and by gamma radiation. // Radiat. Res., 1997. V.148. P. 580−591.
  110. Mao Y., Bakac A. Photocatalytic Oxidation of Aromatic Hydrocarbons. // Inorg. Chem., 1997. V. 35(13). P. 3925−3930.
  111. Markich S.J. Uranium speciation and bioavailability in aquatic systems: an overview. // Scientific World Journal, 2002. V. 2. P. 707−729.
  112. Miller A.C., McClain D. A review of depleted uranium biological effects: in vitro and in vivo studies. // Rev. Environ. Health., 2007. V. 22(1). P. 75−89.
  113. Miller A.C., Stewart M., Rivas R. Preconceptional paternal exposure to depleted uranium: transmission of genetic damage to offspring. // Health Phys., 2010. V. 99(3). P. 371−379.
  114. Minetti M., Scorza G., Pietraforte D. Peroxynitrite induces long-lived tyrosyl radical (s) in oxyhemoglobin of red blood cells through a reaction involving C02 and a ferryl species. // Biochemistry, 1999. V. 38. P. 2078−2087.
  115. Miyake Y., Yamasaki S. Sensing necrotic cells. // Adv. Exp. Med. Biol., 2012. V.738. P.144−52.
  116. Mori T., Ogawa S., Cowely A.W., Ito S. Role of renal medullary oxidative and/or carbonyl stress in salt-sensitive hypertension and diabetes. // J. Clin. Exp. Pharmacol. Physiol., 2012. V.39. P.125−131.
  117. NEA, IAEA Uranium 2005 Resources, Production and Demand — OECD Publishing, 2006.
  118. Nishiura H., Kumagai J., Kashino G., Okada T., Tano K., Watanabe M. The bystander effect is a novel mechanism of UVA-induced melanogenesis. // Photochem. Photobiol., 2012. V. 88. P. 389−397.
  119. Ogawa K., Kanematsu S., Asada K. Intra and extra-cellular localization of «cytosolic» CuZn-superoxide dismutase in spinach leaf and hypocotyls. // Plant Cell Physiol., 1996. V. 37. P. 790−799.
  120. Orona N.S., Tasat D.R. Uranyl nitrate-exposed rat alveolar macrophages cell death: influence of superoxide anion and TNF a mediators. // Toxicol Appl. Pharmacol., 2012. V. 261(3). P. 309−316.
  121. Ostdal H., Davies M.J. and Andersen H.J. Reaction between protein radicals and other biomolecules. // Free Rad. Biol. Med., 2002. V. 33. P. 201−209.
  122. Periyakaruppan A., Sarkar S., Ravichandran P., Sadanandan B., Sharma C.S., Ramesh V., Hall J.C., Thomas R., Wilson B.L., Ramesh G.T. Uranium induces apoptosis in lung epithelial cells. // Arch Toxicol., 2009. V. 83(6). P. 595−600.
  123. Pible O., Vidaud C., Plantevin S., Pellequer J.L., Quemeneur E. Predicting the disruption by U02(2+) of a protein-ligand interaction. // Protein Sci., 2010. V. 19(11). P. 2219−2230.
  124. Pietraforte D., Minetti M. One-electron oxidation pathway of peroxynitrite decomposition in human blood plasma: evidence for the formation of protein tryptophan-centred radicals. // J. Biochem., 1997. V. 321. P. 743−750
  125. Queisser N., Fazeli G., Schupp N. Superoxide anion and hydrogen peroxide-induced signaling and damage in angiotensin II and aldosterone action. // Biol. Chem., 2010. V. 391 (11). P.1265−1279.
  126. Rahmadi A., Steiner N., Munch G. Advanced glycation endproducts as gerontotoxins and biomarkers for carbonyl-based degenerative processes in Alzheimer’s disease. // Clin. Chem. Lab. Med., 2011. V. 49(3). P. 385−391.
  127. Rodrigo R., Gonzalez J., Paoletto F. The role of oxidative stress in the pathophysiology of hypertension. // Hypertens Res., 2011. V. 34(4). P. 431−440.
  128. Romano A.D., Serviddio G., Matthaeis A., Bellanti F., Vendemiale G. Oxidative stress and aging. // J. Nephrol., 2010. V. 15. P. 29−36.
  129. Schmid W. The micronucleus test. // Mutat. Res., 1975. V.31. P. 9−15.
  130. Seiler R. Physical setting and natural sources of exposure to carcinogenic trace elements and radionuclides in Lahontan Valley, Nevada. // Chem. Biol. Interact., 2012. V. 196(3). P. 79−86.
  131. Shaki F., Hosseini M.J., Ghazi-Khansari M., Pourahmad J. Toxicity of depleted uranium on isolated rat kidney mitochondria. // Biochim Biophys Acta., 2012. V.1820 (12). P. 1940−1950.
  132. Sheppard S.C., Sheppard M.I., Gallerand M.O., Sanipelli B. Derivation of ecotoxicity thresholds for uranium. // J. Environ Radioact., 2005. V. 79(1). P. 55−83.
  133. Smith S.C., Douglas M., Moore D.A., Kukkadapu R.K., Arey B.W. Uranium extraction from laboratory-synthesized, uranium-doped hydrous ferric oxides. // Environ Sci Technol., 2009. V. 43(7). P. 2341−2347.
  134. Steenken S. Electron transfer in DNA? Competition by ultra-fast proton transfer? // Biol. Chem., 1997. V. 378. P.1293−1297.
  135. Stone E.A., Manavalan S.J., Zhang Y., Quartermain D. Beta adrenoceptor blockade mimics effects of stress on motor activity in mice. // Neuropsychopharmacology, 1995. V. 12(1). P. 65−71.
  136. Sztajnkrycer M.D., Otten E.J. Chemical and radiological toxicity of depleted uranium. // Mil. Med., 2004. V. 169(3). P. 212−216.
  137. Taulan M., Paquet F., Maubert C., Delissen O., Demaille J., Romey M.C. Renal toxicogenomic response to chronic uranyl nitrate insult in mice. // Environmental Health Perspectives, 2004. V. 112. P. 1628−1635.
  138. Taulan M., Paquet F., Argiles A., Demaille J., Romey M.C. Comprehensive analysis of the renal transcriptional response to acute uranyl nitrate exposure. // BMC Genomics, 2006. V.7. P. 1−14.
  139. Taylor D.M., Taylor S.K. Environmental uranium and human health. // Rev. Environ. Health., 1997. V. 12(3). P. 147−157.
  140. Tirmarche M., Baysson H., Telle-Lamberton M. Uranium exposure and cancer risk: a review of epidemiological studies. // Rev Epidemiol Sante Publique., 2004. V. 52(1). P. 81−90.
  141. Uno K., Nicholls S. Biomarkers of inflammation and oxidative stress in atherosclerosis. // Biomark Med., 2010. V. 4 (3). P. 361−373.
  142. Wang H., Liu R" Tu T., Xie L" Sheng K" Chen Y. and Tang X. Properties of radicals formed by the irradiation of wool fibers. // J. Radiat. Res., 2004. V. 45. P. 77−81.
  143. Ward J.F. DNA damage produced by ionizing radiation in mammalian cells: identities, mechanisms of formation and reparability. // Progr. Nucl. Acid Res. Mol. Biol., 1988. V. 35. P. 95−125.
  144. World Nuclear Association. // Supply of Uranium, 2011.
  145. Yao H., Rahman I. Current concepts on oxidative/carbonyl stress, inflammation and epigenetics in pathogenesis of chronic obstructive pulmonary disease. // Toxicol. Appl. Pharmacol., 2011. V. 254(2). P. 72−85.
  146. Yazzie M., Gamble S.L., Civitello E.R., Stearns D.M. Uranyl acetate causes DNA single strand breaks in vitro in the presence of ascorbate (vitamin C). // Chem. Res. Toxicol., 2003. V. 16(4). P. 524−530.
  147. Zoratti M. and Szabo I. Mitochondrial permeability transition. // Biochim. Biophys. Acta, 1995. V. 1241. P. 139−176.
  148. ККК~ кумарин-3-карбоновая кислота-
  149. ОН-ККК- 7-гидроксикумарин-З-карбоновая кислота-
  150. ABTS 2,2'-Azino-bis (3-ethylbenz-thiazoline-6-sulfonic acid) —
  151. G радиационно-химический выход-02 синглетиый кислород-1. ОН~ гидроксильный ион-
  152. ОН* гидроксильный радикал-1. Н202 перекись водорода-02*~ супероксид-анион радикал-
  153. АФК активные формы кислорода-
  154. БСА бычий сывороточный альбумин-
  155. ИФА иммуноферментный анализ-
  156. ККК- кумарин-3-карбоновая кислота-
  157. ПОЛ перекисное окисление липидов-
  158. ПХЭ полихроматофильные эритроциты-
  159. ФИД- фактор изменения дозы-
  160. ФСБ фосфатный буферный раствор-1. ЧБК- черно-белая камера
  161. ЭПР электронный парамагнитный резонанс-1. ХЛ хеми люминесценция-1. МЯ- микроядра
Заполнить форму текущей работой

На отлично!