Разработка биоконсерванта на основе иммобилизованных клеток бактериоции образующих стартовых культур

ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Биоконсервация, основанная на антагонизме микроорганизмов бактериоцинами, — перспективный подход сохранения продуктов питания. По технологическим свойствам наибольший интерес для мясной промышленности представляют бактерии рода Pediococcus, продуцирующие бактериоцин педиоцин, активный против санитарно-показательной и патогенной микрофлоры, в т. ч. против Listeria monocytogenes, пищевого патогена… Читать ещё >

Содержание

ГЛАВА 1. ЛИТЕРАТУРНЫЙ ОБЗОР
- 1. 1. Бактериоцины — природные консерванты
- 1. 2. Определение и классификация бактерицинов
- 1. 3. Механизмы синтеза pi действия бактериоцинов
- 1. 4. Факторы, влияющие на синтез бактериоцинов
- 1. 5. Потенциал педиоцинов в биоконсервировании
- 1. 6. Генетические детерминанты синтеза педиоцинов
- 1. 7. Иммобилизация микробных клеток

Разработка биоконсерванта на основе иммобилизованных клеток бактериоции образующих стартовых культур (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

В мясной промышленности, по-прежнему, одной из основных задач остается обеспечение безопасности сырья и готовых продуктов и продление их сроков годности. Эффективное ингибирование санитарно-показательной и патогенной микрофлоры при производстве мясопродуктов осуществляется за счет внесения стартовых культур. В процессе своей жизнедеятельности они синтезируют специфические метаболиты: молочную кислоту, диацетил, а также бактериоцины, подавляющие при прямом антагонизме нежелательную микрофлору.

Применение стартовых культур в мясной промышленности ограничивается производством ферментированных мясопродуктов, так как микроорганизмы, входящие в состав бактериальных препаратов, в большинстве своем являются мезофильными. В ходе тепловой обработки при достижении температуры 70±2 °С в центре продукта наблюдается практически полное прекращение роста мезофильной микрофлоры и частично термофильных и спорообразующих бактерий в вегетативной форме. Качество готового продукта зависит от начальной обсемененности сырья и эффективности вносимых консервантов. Иммобилизация стартовых культур позволяет сохранить клетки живыми в продукте при термообработке. Снижение скорости роста бактериальных клеток с помощью их иммобилизации способствует увеличению секреции вторичных метаболитов, в том числе бактериоцинов. Кроме этого, иммобилизация позволяет повысить стабильность плазмид, кодирующих важные технологические характеристики, а также способность клетки синтезировать бактериоцины.

Данная работа направлена на обеспечение высокого качества и безопасности мясных продуктов и продления их сроков годности за счет использования биотехнологического потенциала стартовых культур.

Биоконсерванты на основе иммобилизованных клеток продуцентов бактериоцинов могут использоваться в пищевой промышленности в качестве альтернативы искусственным консервантам и является частью барьерных технологий.

ВЫВОДЫ.

1. С помощью экспресс-метода осуществлен скрининг штаммов из коллекции МГУ lib, продуцирующих бактериоцины, активные в отношении условно-патогенной микрофлоры: Salmonella typhymurium LT2, Proteus vulgaris АТСС 13 315, E. coli K-12 С 600, Staphylococcus aureus subsp. aureus 209P. Выбран ряд наиболее конкурентоспособных штаммов-продуцентов, относящихся к родам Lactobacillus, Pediococcus, Staphylococcus. Методом перпендикулярных штрихов выявлен бактериоциногенный штамм Lb. plantarum 7К, подавляющий микроорганизмы гомологичного вида Lb. plantarum 21, Lb. plantarum 32.

2. Исследован плазмидный профиль штаммов-продуцентов бактериоцинов Р. pentosaceus 55, P. pentosaceus 23, P. acidilactici 27, P. pentosaceus 28, Р. acidilactici 38. У штаммов P. acidilactici 27 и 38 обнаружены плазмиды размером ~ 11 тпн. Элиминацией доказана плазмидная локализация генов, кодирующих синтез бактериоцинов в штаммах P. acidilactici 27 и 38.

3. Подобраны параметры микрокапсулирования штаммов P. acidilactici 27 и 38, которое осуществлялось методом вытеснения смеси, состоящей из суспензии клеток в физиологическом растворе концентрацией 10 lg КОЕ/мл и 1,5%-ного альгината натрия в соотношении 1: 5 в 0,1 М раствор кросс-агента СаСЬ, позволяющие получить микрокапсулы правильной сферической формы размером ~ 0,6 мм.

4. В ходе статистической обработки опытных данных процесса микрокапсулирования выведено уравнение множественной регрессии, позволяющее установить диаметр микрокапсул в зависимости от концентрации альгината натрия, микробных клеток и хлорида кальция.

5. Показана высокая выживаемость (90%) микрокапсулированных клеток штаммов P. acidilactici 27 и 38 без использования протекторных сред при температуре минус 18 °C в течение 6 месяцев с сохранением их гликолитической активности.

Установлено, что в ходе термической инактивации иммобилизованных штаммов Pediococcus acidilactici 27 и 38 при 72 °C в течение 60 мин остается 57% жизнеспособных клеток. Методом просвечивающей электронной микроскопии установлено, что термическая обработка микрокапсулированных штаммов не изменяет морфологию клеток, следовательно, не снижает общую метаболическую активность, характерную только для целостной структуры клетки.

6. Разработан биоконсервант «Витасфер» для производства термически обработанных мясных изделий на основе микрокапсулированных клеток бактериоцинсинтезирующих штаммов P. acidilactici 27 и 38 и проект технической документации на препарат. Проведена опытно-промышленная выработка биоконсерванта «Витасфер» в условиях «Центра высоких технологий» ГОУ ВПО «Московский энергетический институт (Технический университет)».

7. На модельных фаршевых системах определена рациональная концентрация биоконсерванта для использования в технологии мясопродуктов, составляющая 9 lg КОЕ/г и позволяющая продлить срок годности за счет ингибирования санитарно-показательной микрофлоры. Обоснованы сроки годности опытных образцов полукопченой и вареной колбас с использованием биоконсерванта: для полукопченой — 20 сут вместо 15 сут и для вареной — 7 сут вместо 3 сут.

8. Промышленная апробация биоконсерванта «Витасфер» осуществлена в условиях ИП «Балаковский мясной двор». Установлено, что по физико-химическим, органолептическим показателям опытные образцы полукопченой колбасы не отличались от контрольных образцов, в опытных образцах с использованием биоконсерванта наблюдалось замедление окислительных и гидролитических процессов, а также торможение развития посторонней микрофлоры.

Показать весь текст

Список литературы

Блинкова Л.П. Бактериоцины: критерии, классификация, свойства, методы выявления // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. -2003.-№ 3.-С. 109−113.
Варфоломеев С.Д. Биосенсоры // Соросовский образовательный журнал. -1997. -№ 1.-С. 45−49.
ГОСТ 10 444.11−89. Продукты пищевые. Методы определения молочнокислых микроорганизмов. Введ. 01.01.91. — М.: Госстандарт России: Изд-во стандартов, 2004. — 15 с.
ГОСТ 10 444.12−88. Продукты пищевые. Метод определения дрожжей и плесневых грибов. Введ. 01.01.90. — М.: Госстандарт России: Изд-во стандартов, 2001. — 8 с.
ГОСТ 23 042–86. Мясо и мясные продукты. Методы определения жира. -Введ. 01.01.88. — М.: Госстандарт России: Изд-во стандартов, 2003. 5 с.
ГОСТ 8558.1−78. Продукты мясные. Методы определения нитрита. — Введ. 01.01.80. М.: Госстандарт России: Изд-во стандартов, 2003. — 11 с.
ГОСТ 9957–73. Колбасные изделия и продукты из свинины, баранины и говядины. Метод определения хлористого натрия. Введ. 01.07.74. — М.: Госстандарт России: Изд-во стандартов, 2001. — 4 с.
ГОСТ 9958–81. Изделия колбасные и продукты из мяса. Методы бактериологического анализа. — Введ. 01.01.83. М.: Госстандарт России: Изд-во стандартов, 2003. — 14 с.
ГОСТ 9959–91. Продукты мясные. Общие условия проведения органолептической оценки. Введ. 01.01.93. — М.: Госстандарт России: Изд-во стандартов, 2003. — 9 с.
ГОСТ Р 51 479−99. Мясо и мясные продукты. Метод определения массовой доли влаги. Введ. 01.01.01. — М.: Госстандарт России: Изд-во стандартов, 2006. — 7 с.
ГОСТ Р 51 487−99. Масла растительные и жиры животные. Методопределения перекисного числа. Введ. 01.01.01. — М.: Госстандарт России: Изд-во стандартов, 2008. — 8 с.
ГОСТ Р 50 457−92. Жиры и масла животные и растительные. Определение кислотного числа и кислотности. Введ. 01.01.94. — М.: Госстандарт России: Изд-во стандартов, 2006. — 8 с.
ГОСТ Р 50 814−95. Мясопродукты. Методы определения пенетрации конусом и игольчатым индентором. Введ. 01.08.96. — М.: Госстандарт России: Изд-во стандартов, 2003. — 8 с.
Егоров Н.С., Баранова И. П. Бактериоцины. Образование, свойства, применение // Антибиотики и химиотерапия. 1999. — № 6. — С. 33−40.
Журавская Н.К., Алехина JI.T., Отряшенкова JI.M. Исследование и контроль качества мяса и мясопродуктов. М.: Агропромиздат, 1985. — 296 с.
Коган М.Б., Пожариская JI.C., Рындина В. П., Фрейдлин Е. М. Физико-химический и бактериологический контроль в мясной промышленности. М.: Пищевая промышленность, 1971. -462 с.
Котельникова Е.А., Гельфанд М. С. Выработка бактериоцинов грамположительными бактериями и механизм транскрипционной регуляции // Генетика. 2002. — том 38. — № 6 — С. 758−772.
Кузьмина Н.А. Основы Биотехнологии Электронный ресурс. Режим доступа: hltp://\n>v. biofechnolog. ru/aboutbook. htm
Лысак В.В., Желдакова Р. А. Микробиология: методические рекомендации к лабораторным занятиям и контроль самостоятельной работы студентов // Мн.: БГУ, 2002.- 100 с.
Маниатис Т., Фрич Э., Сэмбрук Дж. Молекулярное клонирование. М.: Мир, 1984.-479 с.
Просвечивающая электронная микроскопия Электронный ресурс. —
Режим доступа: http://tem.genebee.msu.ги/equipment, htm
Санитарно-эпидемиологическая оценка обоснования сроков годности и условий хранения пищевых продуктов. МУК 4.2.1847−04. М.: Минздрав России, 2004. — 32 с.
Синицын А.П., Райнина Е. И., Лозинский В. И., Спасов С. Д. Иммобилизованные клетки микроорганизмов. М.: МГУ, 1994. — 288 с.
Axelsson L., Hoick A., Birekland S.-E., Aukrust Т., H. Bloom H. Cloning and nucleotide sequence of a gene from Lactobacillus sake LB 706 necessary for sakacin A production and immunity // Appl. Environ. Microbiol. 1993. — V. 59. — 28 682 875.
Bennik M.H.J., Smid E.J., Gorris L.G.M. Vegetable associated Pediococcus parvulus produces pediocin PA-1 // Appl. Environ. Microbiol. 1997. — V. 63. — № 5.-P. 2074−2076.
Bhunia A., Johnson M.C., Ray B. Direct detection of an antimicrobial peptide of Pediococcus acidilactici in SDS-PAGE // J. Ind. Microbiol. 1987. — V. 2. — № 5. -P. 319−322.
Biswas S.R., Ray P., Johnson M.C., Ray B. Influence of growth conditions on the production of a bacteriocin, pediocin AcH, by Pediococcus acidilactici H // Appl Environ Microbiol.- 1991.-V. 57. -№ 4. P. 1265−1267.
Bukhtiyarova M., Yang R., Ray B. Analysis of the pediocin PA-l/AcH gene cluster from plasmid pSMB74 and its expression in a pediocin-negative Pediococcusacidilactici strain // Appl. Environ. Microbiol. 1994. — V. 60, 3405−3408.
Chikindas M.L., Venema K., Ledeboer A.M. Venema G., Kok J. Expression of lactococcin A and pediocin PA-1 in heterologous hosts // Lett. Appl. Microbiol. -1995.-V. 21. № 3. — P. 183−189.
Cleveland J., Montville T.J., Nes I.F., Chikindas M.L. Bacteriocins: safe, natural antimicrobials for food preservation // Inter J of Food Microbiol. 2001. — № 7. — P. 1−20.
Cutter C.N., Siragusa G.R. Reduction of Brochothrix thermosphacta on beef surfaces following immobilization of nisin in calcium alginate gels // Lett Appl Microbiol. 1996. -V. 23. — № 1. — P. 9−12.
Daeschel M.A., Klaenhammer T. R Association of a 13.6-megadalton plasmid in Pediococcus pentosaceus with bacteriocin activity // Appl Environ Microbiol. 1985. V. 50.-№ 6. -P. 1538−1541.
De Vuyst L., Leroy F. Bacteriocins from lactic acid bacteria: production, purification, and food applications // J Mol Microbiol Biotechnol. 2007. — V. 13. -№ 4.-P. 194−199.
Degnan A.J., Buyong N., Luchansky J.B. Antilisterial activity of pediocin AcH in model food systems in the presence of an emulsifier or encapsulated within liposomes // Int J Food Microbiol. 1993. — V. 18. — № 2. — P. 127−138.
Ding W.K., Shah N.P. Acid, bile, and heat tolerance of free and microencapsulated probiotic bacteria // J Food Sci. 2007 — V. 72. — № 9. — P. M446-M450.
Doleyres Y., Lacroix C. Cell immobilization for the dairy industry // Crit Rev Biotechnol. 1994. -V. 14. -№ 2. — P. 109−134.
Drider D., Fimland G., Hechard Y., McMullen L.M., Prevost H. The Continuing Story of Class Ha Bacteriocins // Microbiol. Mol. Biol. Rev. 2006.- V. 70. — № 2.1. P. 564−582.
Ennahar S., Aoude-Werner D., Sorokine O., van Dorsselear A., Bringel F., Hubert J.C., Hasselmann C. Production of pediocin AcH by Lactobacillus plantarum WHE92 isolated from cheese I I Appl. Environ. Microbiol. 1996. — V. 62. — P. 4381−4387.
Ennahar S., Sashihara Т., Sonomoto K., Ishizaki A. Class Ha bacteriocins: biosynthesis, structure and activity // FEMS Microbiol. Rev. 2000. — V. 24. P. 85 106.
Erkkila S., Bioprotective and probiotic meat starter cultures for the fermentation of dry sausages, Academic dissertation, Helsinki. 2001. — 64 p.
Gillor O., Nigro L.M., Riley M.A. Genetically engineered bacteriocins and their potential as the next generation of antimicrobials // Curr. Pharm. Des. 2005. — V. l 1. -№ 8.-P. 1067−1075.
Foegeding P.M., Thomas A.B., Pilkington D.H., Klaenhammer T.R. Enhanced control of Listeria monocytogenes by in situ-produced Pediocin during dry fermented sausage production // Appl Environ Microbiol. 1992. — V. 58. — № 3. — P. 884−890.
Galvez A., Abriouel H., Lopez R.L., Omar N.B. Bacteriocin-based strategies for food biopreservation // Int J Food Microbiol. 2007. — V. 120. — № (1−2). — P. 5170.
Garneau S., Martin N.I., Vederas J.C. Two-peptide bacteriocins produced by lactic acid bacteria // Biochim. 2002. — V.84. — P. 577−592.
Giraffa G., Gatti M., Beltzame A. Antimicrobial activity of lactic acid bacteriaisolated from fermented meat products // Ann. Microbiol. Enzimol. 1994. — V. 44. -№ l.-P. 29−34.
Gonzalez C., Kunka B.S. Plasmid associated bacteriocin production and sucrose fermentation in Pediococcus acidilactici II Appl. Environ. Microbiol. 1987. — V.53.-P. 2534−2538.
Grahami D.C., McKay L.L. Plasmid DNA in strains of Pediococcus cerevisiae and Pediococcus pentosaceus II Appl. Environ. Microbiol. 1985. — V. 50. — № 2. — P. 532−534.
Hammes W.P. Bacterial starter cultures in food production // Food Biotechnol-1990-V. 4.-P. 383−397.
Hammami R., Zouhir A., Hamida J., Fliss I. BACTIBASE: a new web-accessible database for bacteriocin characterization // Microbiol Mol Biol Rev. -2006. V. 70. — № 2. — P. 564−582.
Hansen J.N., Chung Y.J., Liu W., Steen M.T. Biosynthesis and mechanism of action of nisin and subtilin. In G. Jung and H.-G. Sahl (ed.), Nisin and novel 1 antibiotics. Escom. Publishers, Leiden, The Netherlands. 1991. — P. 287−302.
Hoick A., Axelsson L., Huhne K., Krockel L. Purification and cloning of sakacin 674, a bacteriocin from Lactobacillus sake Lb6741IFEMS Microbiol. Lett. 1994. -V. 115.-P. 143−150.
Holo H., Nissen O., Ness I.F. Lactococcin A, a new bacteriocin from Lactococcus lactis subsp. cremoris: isolation, and characterization of the protein and its gene // J. Bacteriol. 1991. — V. 173. — P. 3879−3887.
Holzapfel W. H., Franz С. M. A. P., Ludwig W., Back W., Dicks L. M. T. The Genera Pediococcus and Tetragenococcus. Procaryotes. — 2006. V. 4. — P. 229 266.
Hoover D.G., Walsh P.M., Kolaetis K.M., Daly M.M. A bacteriocin producedby Pediococcus species associated with a 5.5 MDa plasmid // J. Food Prot. 1988. -V. 51.-P. 29−31.
Huang J., Lacroix C., Daba H., Simard R.E. Pediocin 5 production and plasmid stability during continuous free and immobilized cell cultures of Pediococcus acidilactici UL5 // J Appl Bacteriol. 1996. — V. 80. — № 6. — P. — 635−644.
Hugas M., Garriga M., Pascual M., Aymerich M.T., Monfort J. M. Enhancement of sakacin К activity against Listeria monocytogenes in fermented sausages with pepper or manganese as ingredients // Food Microbiol. 2002. — V. 19. — P. 519−528.
Ivanova E., Chipeva V., Ivanova I., Dousset X. and Poncelet D. Encapsulation of lactic acid bacteria in calcium alginate beads for bacteriocin production // J Cult Collect. 2000−2002. — V. 3. — P. 53−58.
Jack W.R., Tagg J.R., Ray B. Bacteriocins of Grampositive bacteria // Microbiol. Rev. 1995. — V. 59. — P. 171−200.
Jack R.W., Bierbaum G., Salh H-G. Lantibiotics and related peptides. Pringer-Verlag. NewYork, 1997. 224 pp.
Klaenhammer T.R. Genetics of bacteriocins producer by lactic acid bacteria // FEMS Microbiol. Rev. 1993. — V. 12. — P. 39−85.
Leroy F., Verluyten J., De Vuyst L. Functional meat starter cultures for improved sausage fermentation // Int. J. Food Microbiol. — 2006. — V. 106. — № 3. — P. 270−85. Rev.
Luchansky J.B., Glass K.A., Harsono K.D., Degnan A.J., Faith N.G., Cauvin В.,
Baccus-Taylor G., Arihara K., Bater В., Maurer A.J., Cassens R.G. Genomic analysis of Pediococcus starter cultures used to control Listeria monocytogenes in Turkey summer sausage // Appl Environ Microbiol. 1992. — V. 58. — № 9. — P. 3053−3059.
McLoughlin A.J., Champagne C.P. Immobilized cells in meat fermentation // CritRev Biotechnol. 1994. -V. 14. -№ 2. — P. 179−192.
Motlagh A.M., Bukhtiyarova M., Ray B. Complete nucleotide sequence of pSMB74, a plasmid encoding the production of pediocin PA-l/AcH in Pediococcus acidilactici //Lett. Appl. Microbiol. 1994. — 18. — P. 305−312.
Millette M., Dupont C., Shareck F., Ruiz M.T., Archambault D., Lacroix M. Purification and identification of the pediocin produced by Pediococcus acidilactici MM33, a new human intestinal strain // J Appl Microbiol. 2008. — V. 104- № 1. -P.269−275.
Miller K.W., Ray P., Steinmetz Т., Hanekamp Т., Ray B. Gene organization and sequences of pediocin AcH/PA-1 production operons in Pediococcus and Lactobacillus plasmids // Lett Appl Microbiol. 2005. — V. 40. — № 1. — P. 56−62.
Muriana P., Klaenhammer T.R. Cloning, phenotypic expression, and DNA sequence of the gene for the lactocin F, an antimicrobial peptide produced by Lactobacillus sp. //J. Bacteriol. 1991. -V. 173. — P. 1779−1788.
Muthukumarasamy P., Holley R.A. Microbiological and sensory quality of dry fermented sausages containing alginate-microencapsulated Lactobacillus reuteri II Int
J Food Microbiol. 2006. V. 111. — P. 164−169.
Nes I.F., Bao Diep D., HaE Varstein L.S., Brurberg M.B., Eijsink V., Holo H. Biosynthesis of bacteriocins of lactic acid bacteria // Antonie van Leeuwenhoek. -1996.-V. 70.-P. 113−128.
Nettles C.G., Barefoot S.F. Biochemical and genetic characteristics of bacteriocins of food-associated lactic acid bacteria // J. Food Prot. — 1993. 56. — P. 338−356.
Nielsen J.W., Dickson J.S., Crouse J.D. Use of a bacteriocin produced by Pediococcus acidilactici to inhibit Listeria monocytogenes associated with fresh meat // Appl Environ Microbiol. 1990. — V. 56. — № 7. — P. 2142−2145.
Nissen-Meyer J., Havarstein L.S., Holo H., Sletten K., Nes I.F. Association of the lactococcin A immunity factor with the cell membrane: purification and characterization of the immunity factor // J. Gen. Microbiol. 1993. -V. 139. — P. 1503−1509.
Osmanagaoglu O., Beyatli Y., Gunduz U. Cloning and expression of a plasmid-linked pediocin determinant trait of Pediococcus acidilactici F // J Basic Microbiol. -2000. V. 40. — № 1. — P. 41−49.
Osmanagaoglu O., Beyatli Y., Gunduz Т., Sacilik S.C. Analysis of the genetic determinant for production of the pediocin P of Pediococcus pentosaceus Pep 1 // J Basic Microbiol.. 2000. — V. 40. — № 4. — P. 233−241.
Ray S.K., Johnson M.C. Ray B. Bacteriocin plasmids of Pediococcus acidilactici И J. Ind. Microbiol. 1989. — V. 4. — P. 163−171.
Ray S.K., Kim W.-J., Johnson M.C., Ray B. Conjugal transfer of a plasmid encoding bacteriocin production and immunity in Pediococcus acidilactici H // J. Appl. Bacteriol. 1989. — V. 66. — P. 393−399.
Rodriguezf M., Cintas L.M., Casaus P., Martinez M.I., Suarez A., Hernandez P.E. Detection of pediocin PA-1-producing pediococci by rapid molecular biology techniques //Food Microbiol. 1997. -V. 14.-№ 4.-P. 363−371.
Tsen J.H., Huang H.Y., Lin Y.P., King V.A. Freezing resistance improvement of Lactobacillus reuteri by using cell immobilization // J Microbiol Methods. 2007. -V. 70. — № 3 — P. 561−564.
Savadogo A., Ouattara C.A.T., Bassole I.H.N., Traore S.A. Bacteriocins and lactic acid bacteria a minireview // African J Biotechnol. — 2006. — V. 5. — № 9. — P. 678−683.
Scannell A.G., Schwarz G., Hill C, Ross R.P., Arendt E.K. Pre-inoculation enrichment procedure enhances the performance of bacteriocinogenic Lactococcus lactis meat starter culture // Int J Food Microbiol. 2001. — V. 64. — № (1−2). — P. 151−159.
Schved F, Lalazar A, Henis Y, Juven BJ. Purification, partial characterization and plasmid-linkage of pediocin SJ-1, a bacteriocin produced by Pediococcus acidilactici IIJ Appl Bacteriol. 1993. — V. 74. — № 1. — P. 67−77.
Souza E.L., Silva C.A., Sousa C.P. Bacteriocins: molecules of fundamental impact on the microbial ecology and potential food biopreservatives // Braz. arch, biol. technol. 2005. — V. 48. — № 4. — P. 559−566.
Steen M.T., Chung Y.J., Hansen J.N. Characterization of the nisin gene as part of a polycistronic operon in the chromosome of Lactococcus lactis ATCC 11 454 I I Appl. Environ. Microbiol. 1991.-V. 57.-P. 1181−1188.
Van Reenen C.A., Dicks L.M.T., Chikindas M.L. Isolation, purification and characterization of plantaricin 423, a bacteriocin produced by Lactobacillus plantarum // J Appl Microbiol. 1998. — V. 84. — P. 1131−1137.
Vermeiren L., Devlieghere F., Debevere J. Evaluation of meat born lactic acid bacteria as protective cultures for the biopreservation of cooked meat products // Int. J. Food. Microbiol. 2004. — V. 96. — № 2. — P. 149−164.
Yin L.J., Wu C.W., Jiang S.T. Bacteriocins from Pediococcus pentosaceus L and S from pork meat //J Agric Food Chem. 2003. — V. 51. — № 4. — P. 10 711 076.
Zendo Т., Nakayama J., Fujita K., Sonomoto K. Bacteriocin detection by liquid chromatography/mass spectrometry for rapid identification // J Appl Microbiol. -2007. V. 104. — № 2. — P. 499−507.

Заполнить форму текущей работой