Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Структурно-функциональные механизмы адаптации гипоталамуса и продолговатого мозга растущего организма к стрессовым воздействиям

Диссертация: Структурно-функциональные механизмы адаптации гипоталамуса и продолговатого мозга растущего организма к стрессовым воздействиям
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Под влиянием длительных сроков стрессового воздействия в паравентрикулярном ядре, латеральной гипоталамической области, дорсальном ядре блуждающего нерва и медуллярных ретикулярных ядрах растущих крыс наряду с нарастанием гистологических и ультраструктурных признаков повреждения нейронов обнаруживаются выраженные иммуногистохимические изменения, свидетельствующие о существовании нейромедиаторной… Читать ещё >

Содержание

  • Глава I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Медицинские аспекты воздействия стрессовых факторов на организм человека и экспериментальных животных
    • 1. 2. Гистофизиология стресс-реализующих и стресс-лимитирующих систем организма
    • 1. 3. Гистофизиология ЦНС при стрессе
      • 1. 3. 1. Гистофизиология гипоталамуса млекопитающих животных и человека в условиях воздействия стрессовых факторов окружающей среды
      • 1. 3. 2. Гистофизиология ядер продолговатого мозга млекопитающих животных и человека в условиях воздействия стрессовых факторов окружающей среды
  • Глава II. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. Общие сведения
    • 2. 2. Методика постановки эксперимента
    • 2. 3. Иммуногистохимическое исследование
    • 2. 4. Морфометрия и статистическая обработка
    • 2. 5. Электронно-микроскопическое исследование
  • Глава III. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 3. 1. Морфофункциональная характеристика гипоталамуса у растущих крыс
      • 3. 1. 1. Морфофункциональная характеристика супраоптического ядра гипоталамуса
      • 3. 1. 2. Морфофункциональная характеристика паравентрикуляр-ного ядра гипоталамуса
      • 3. 1. 3. Морфофункциональная характеристика дугообразного ядра гипоталамуса
      • 3. 1. 4. Морфофункциональная характеристика латеральной гипотал амической области
      • 3. 1. 5. Морфофункциональная характеристика вентромедиального ядра гипоталамуса
      • 3. 1. 6. Морфофункциональная характеристика дорсомедиального ядра гипоталамуса
      • 3. 1. 7. Морфофункциональная характеристика заднего перивен-трикулярного ядра гипоталамуса
      • 3. 1. 8. Морфофункциональная характеристика медиального сосцевидного ядра гипоталамуса
      • 3. 1. 9. Морфофункциональная характеристика латерального сосцевидного ядра гипоталамуса
    • 3. 2. Морфофункциональная характеристика продолговатого мозга у растущих крыс
      • 3. 2. 1. Морфофункциональная характеристика ядра одиночного пути
      • 3. 2. 2. Морфофункциональная характеристика заднего ядра блуждающего нерва
      • 3. 2. 3. Морфофункциональная характеристика двойного ядра
      • 3. 2. 4. Морфофункциональная характеристика гигантоклеточного ретикулярного ядра
      • 3. 2. 5. Морфофункциональная характеристика латерального ретикулярного ядра
      • 3. 2. 6. Морфофункциональная характеристика парвоклеточного ретикулярного ядра
      • 3. 2. 7. Морфофункциональная характеристика промежуточного ретикулярного ядра
  • Глава IV. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ СОБСТВЕННОГО ИССЛЕДОВАНИЯ
  • ВЫВОДЫ

Структурно-функциональные механизмы адаптации гипоталамуса и продолговатого мозга растущего организма к стрессовым воздействиям (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность исследования.

В последние годы всё большее внимание исследователей привлекает проблема регуляции различными отделами нервной системы деятельности жизненно важных систем организма в зависимости от изменения условий окружающей среды (в частности, под влиянием антропогенных, в том числе стрессовых, факторов) и возраста (Дюжикова Н.А. и др., 2003; Хитров Н. К., Салтыков А. Б., 2003; Судаков К. В. 2005; Wagner D. et al, 2000; Bult A. et al., 2001; Danilczuk Z. et al., 2005).

На протяжении ряда лет с использованием различных методов продемонстрированы аспекты влияния стресса на организм человека и лабораторных животных (Reul J.M. et al., 2000; Mitchell E.S. et al., 2002), показана роль стрессовых факторов в патогенезе нарушений нервной и эндокринной регуляции (Гриневич В.В., 1997; Писарев В. Б., Потанин М. Б., 2001; Болдырев А. А., 2003; Бажанова Е. Д., Теплый Д. Л., 2004) деятельности органов сердечно-сосудистой (Zolnierczuk-Kieliszek D. et al., 2003; Walton K.G. et al., 2004), дыхательной (Marshall G.D., 2004; Miyake M. et al., 2004), пищеварительной (Choo D. et al., 2002; Miyake M. et al., 2004), иммунной (Акма-ев И.Г., Гриневич В. В., 2003; Irifune Т. et al., 2004; Turner-Cobb J.M. et al., 2004) и других систем. При этом в преобладающем большинстве работ в качестве объекта исследования выступает взрослый организм. При изучении влияния экзогенных факторов на растущий организм важен период онтогенеза, в течение которого действует внешний стимул, поскольку незрелые в структурном и функциональном плане регуляторные системы не обеспечивают всю полноту и адекватность компенсаторно-приспособительных реакций (Parker Е.А. et al., 2004). Так, по данным М. М. Санчеса (Sanchez М.М. et al., 1998) ранний отрыв крысят от матери и социальная изоляция приводят к выраженным изменениям гипоталамо-гипофизарно-надпочечниковой оси. Кроме того, завершение гистогенеза центральной нервной системы, происходящее неравномерно в постнатальном периоде, может изменяться под влиянием экзогенных факторов (Garcia-Ovejero D. et al., 2003).

Патологические эффекты стресса, оказывающие выраженное влияние на сердечно-сосудистую систему взрослого организма и способствующие возникновению стрессорных повреждений миокарда, ишемиче-ской болезни сердца продемонстрированы на большом клиническом и экспериментальном материале (Меерсон Ф.З., 1984; Писарев В. Б., 1990; Судаков К. В., 2005). Однако физиологические и структурные аспекты реализации механизмов регуляции жизненно важных систем растущего организма в условиях воздействия стрессовых факторов остаются малоизученными и противоречивыми.

В своих исследованиях на взрослых крысах К. P. Patel с соавторами (Patel К. Р et al., 2000) также показали, что острый стресс приводит к увеличению нейрональной активности, выявляемой через 6−8 недель с помощью иммуноцитохимической реакции (определение c-Fos белка), в нейронах паравентрикулярного, супраоптического, медиального преоптического ядер гипоталамуса, а также в переднем и заднем гипоталамусе.

Различия в сердечной деятельности подростков под влиянием психологического напряжения обусловлено непосредственно вагусными механизмами, проявляющимися в изменении амплитуды респираторной синусовой аритмии (Porges S.W., 1995;1999; Spalding T.W. et al., 2000).

Другие исследователи (de Sousa Buck H. et al., 2001) акцентируют внимание на роли невагусных ядер продолговатого мозга, топографически расположенных между афферентными путями и структурами, ассоциированными с кардиоваскулярными и респираторными рефлексами. Нейроны этих ядер, по мнению авторов, способны напрямую переключать поток информации с первичных афферентов на эфферентные ядра, среди которых помимо n. Ambiguus, обозначены ядра ретикулярной формации.

По данным М. М. Безруких с соавторами (Безруких М.М. и др., 2003) первые недели обучения в начальной школе характеризуются достаточно низким уровнем и неустойчивостью работоспособности, очень высоким уровнем напряжения сердечно-сосудистой системы, а также низкими показателями координации (взаимодействия) различных систем организма между собой.

В последние десятилетия в Волгоградском государственном медицинском университете на кафедрах патологической анатомии и гистологии, цитологии, эмбриологии совместно с Волгоградским научным центром РАМН и Администрации Волгоградской области активно ведутся научно-исследовательские работы по изучению влияния антропогенных факторов окружающей среды на развивающийся организм.

Однако, по-прежнему, остаётся открытым вопрос о характере и степени вовлечения в адаптационные реакции отделов центральной нервной системы (Goos H.J. & Consten D., 2002), обеспечивающих нервную регуляцию гомеостаза, в частности структур гипоталамуса и мозгового ствола.

Цель исследования.

Целью настоящего исследования является получение комплексной морфологической характеристики и определение закономерностей структурных проявлений адаптации ядер гипоталамуса и продолговатого мозга растущего организма, принимающих участие в механизмах системного ответа на стрессовые воздействия различной длительности.

Задачи исследования:

1. Исследовать структурные и нейротопографические изменения, возникающие в крупнои мелкоклеточных ядрах гипоталамуса растущего организма под воздействием различных сроков и моделей стрессового воздействия в сравнении с контролем того периода онтогенеза.

2. Выявить морфологические изменения и нейротопографические взаимоотношения ядерных образований продолговатого мозга растущего организма и их зависимость от сроков и моделей стрессового воздействия в сравнении с контролем того периода онтогенеза.

3. Охарактеризовать структурно-функциональные механизмы адаптации гипоталамуса и ствола головного мозга развивающегося организма к стрессовому воздействию в зависимости от исходного возраста.

4. Выделить направленность тенденций морфологических преобразований формирующихся стволовых структур на основе закономерности протекания этапов общего адаптационного синдрома.

Для решения поставленных задач на моделях иммобилизационного и эмоционально-болевого стресса различной продолжительности была проведена комплексная оценка динамики морфологических изменений компонентов ядерных образований продолговатого мозга (ядра ретикулярной формации, автономные ядра, сенсорные ядра), переднего, среднего и заднего отделов гипоталамуса с использованием классических, нейрогистоло-гических, иммуногистохимических и электронно-микроскопических методов, а также компьютерного морфометрического анализа.

Научная новизна исследования.

Впервые с помощью применения комплексного метода, включающего системный многоуровневый подход, компьютерный морфометрический анализ, включающий в себя построение морфометрических нейронных моделей изучаемых областей нервной системы, была получена развернутая качественная и количественная характеристика тканевых и клеточных элементов ядерных образований гипоталамуса и продолговатого мозга растущих крыс на моделях иммобилизационного и эмоционально-болевого стресса, а также в контрольной группе. С применением методов электронной микроскопии и иммуногистохимии были изучены процессы формирования нейронов и нейро-глиальных взаимодействий на уровне тканевого микрорайона в условиях воздействия различных сроков и видов стрессовых факторов. Впервые изучена динамика возрастных и реактивных изменений в нейропиле белка нейрофиламентов №" -200 с использованием пакета программ количественного анализа данных «Видеотест-Морфо-4» (Россия) в ответ на стрессовое воздействие.

Теоретическое значение.

Работа носит фундаментальный характер и представляет развернутую морфологическую характеристику тканевых, клеточных, субклеточных и молекулярных элементов ядерных образований гипоталамуса и продолговатого мозга растущих крыс в норме и в условиях воздействия стрессовых факторов, а также выявляет особенности протекания структурных преобразований в формирующихся областях головного мозга.

Практическая значимость работы заключается в выявлении морфологических изменений в центрах головного мозга обеспечивающих разнонаправленную регуляцию гомеостаза у растущего организма в условиях воздействия стрессовых факторов, что позволяет значительно расширить существующие представления о механизмах регуляции сердечной деятельности, дыхательного ритма, подвести морфологическую базу для объяснения нарушений формирования вагусного тонуса в раннем постнаталь-ном онтогенезе при стрессе. Результаты исследований позволяют детально охарактеризовать нарушения гистогенеза нервной ткани под влиянием длительных сроков стрессового воздействия, которые могут помочь в изучении синдрома внезапной детской смерти, остающегося одними из актуальных в педиатрии, судебной медицине и требующего всестороннего изучения на основании критериев оценки тканевых, клеточных, субклеточных элементов ядерных образований гипоталамуса и продолговатого мозга. Разработанный комплексный многоуровневый подход позволяет проводить динамическую оценку формирующихся структур головного мозга в практике патологоанатомического исследования, судебномедицинской экспертизы, а также при проведении фармакологических исследований и моделировании экспериментальных воздействий.

Внедрение в практику.

Результаты исследования используются при чтении лекций, внедрены в учебный процесс на кафедрах гистологии, цитологии и эмбриологии, патологической анатомии с секционным курсом и курсами патологии и морфологии, анатомии человека ВолГМУ, а также в практику научных исследований в отделе «Общей и экспериментальной патологии» ВНЦ РАМН и ABO. Материалы диссертации были использованы при подготовке к изданию «Атласа по цитологии, гистологии и эмбриологии» (учебное пособие, рекомендовано Департаментом образовательных медицинских учреждений и кадровой политики Министерства здравоохранения РФ в качестве учебного пособия для студентов высших медицинских учебных заведений) (Самусев Р.П. и др., 2004). Получено уведомление о положительном результате формальной экспертизы № 2 005 115 243/14(17 468) из Федерального института промышленной собственности Федеральной службы по интеллектуальной собственности, патентам и товарным знакам на предложенный нами «Способ морфологической диагностики состояния нервной системы для биологического объекта в конкретный период онтогенеза».

Публикации и апробация материалов диссертации.

Материалы диссертации докладывались на Общероссийской конференции с международным участием «Проблемы морфологии (теоретические и клинические аспекты)» г. Сочи (2002) — на Общероссийской конференции с международным участием «Проблемы морфологии (теоретические и клинические аспекты)» г. Сочи (2003) — на Саммите нормальных анатомов Украины и России", г. Тернополь, Украина (2003) — на Всероссийской научной конференции: «Гистологическая наука России в начале XXI века: итоги, задачи, перспективы», г. Москва (2003) — на Третьем Российском конгрессе по патофизиологии с международным участием «Дизрегуляционная патология органов и систем (экспериментальная и клиническая патофизиология)», г. Москва (2004) — на конференции «Современные проблемы науки и образования», Хорватия (2004) — на V Общероссийском съезде анатомов, гистологов и эмбриологов, г. Казань (2004) — на VII Конгрессе международной ассоциации морфологов, г. Казань (2004) — на III конференции «Гомеостаз и эндоэкология», г. Хургада, Египет (2005).

По теме диссертации опубликована 41 печатная работа. Из них — 15 работ в журналах, включенных в перечень ВАК, 2 — в зарубежной печати.

Основные положения, выносимые на защиту.

1. Комплексные морфологические изменения, обнаруживаемые на различных уровнях исследования гипоталамуса и продолговатого мозга растущих крыс в условиях воздействия стрессовых факторов, отражают этапы общего адаптационного синдрома.

2. В условиях острого стрессового воздействия степень и характер морфологических изменений значительно варьируют в зависимости от отдела нервной системы, что отражает различное функциональное значение ядер и областей головного мозга.

3. В поздние сроки стрессового воздействия морфологические изменения, обнаруживаемые на тканевом, клеточном, субклеточном и молекулярном уровнях в большинстве исследованных структур, носят закономерный характер, связанный с нарушением нормального гистогенеза, отставанием процессов роста и формирования нейронов, преимущественного увеличения доли глиоцитов в структуре нейропиля.

4. Нейроны гигантоклеточных ретикулярных ядер растущих крыс в условиях острого стрессового воздействии демонстрируют усиление гете-роморфности популяции, появление клеток с явлениями гиперхроматоза. Обнаруживаемые умеренные сочетанные ультраструктурные изменения со стороны ядра и органелл в части нейронов могут свидетельствовать о повышении их функциональной активности.

5. Комплексный морфологический анализ и оригинальный способ морфологической диагностики состояния нервной системы для биологического объекта в конкретный период онтогенеза путем создании нейронной морфометрической модели позволяют обнаружить отставание процессов созревания различной части нейронов в различных отделах, что можно рассматривать как появление нового соотношения популяций нейронов, которые, по-видимому, имеют различную степень зрелости и функциональной активности. Обнаруживаемый гетероморфизм ярче проявляется при длительных сроках стрессового воздействия и, возможно, отражает изменение скорости роста и генетически детерминированного созревания нейронов, участвующих в механизмах стрессреализующих и стресслими-тирующих систем растущего организма.

Объем и структура диссертации.

Текст диссертации изложен на 373 страницах машинописного текста и состоит из введения, главы I — обзора литературы, представленного тремя частями, в которых изложены современные представления о медицинских аспектах воздействия стрессовых факторов на ЦНС взрослого и растущего организма. Глава II содержит информацию о материалах и методах исследования. Глава III представляет результаты собственных исследований, состоит из 2 частей, каждая из которых состоит из девяти и семи разделов, соответственно. В них дана характеристика результатов исследования. В главе IV приводится обсуждение полученных результатов исследования, которые сформулированы в виде выводов. Диссертация иллюстрирована 17 таблицами, 10 рисунками, 125 микрофотографиями и 45 электронограммами. Библиографический указатель содержит 320 источников: 133 отечественных и 187 зарубежных.

ВЫВОДЫ.

1. Под влиянием стрессовых факторов в крупноклеточных и мелкоклеточных ядрах и областях гипоталамуса растущих крыс отмечаются значительные нарушения морфогенеза, которые характеризуются изменениями, выявляемыми на различных уровнях структурной организации, отражающими этапность протекания общего адаптационного синдрома.

2. В ранние сроки стрессового воздействия (на моделях иммобилизационного и эмоционально-болевого стрессов) выявлены гистологические и ультраструктурные изменения, которые наиболее выражены в ядрах переднего и медиального гипоталамуса, характеризующиеся с одной стороны признаками внутриклеточного и внеклеточного отека, наиболее выраженного в астроцитах и нейронах, спонгиоза, а с другой стороны морфологическими признаками, свидетельствующими об увеличении функциональной активности значительного числа нейронов.

3. При создании нейронной морфометрической модели в условиях стресса обнаруживается отставание процессов созревания нейронов дугообразного ядра, которое можно рассматривать как появление нового соотношения популяций нейронов с различной степенью зрелости. Клеточный гетероморфизм ярче проявляется при длительных сроках стрессового воздействия, что отражает изменение скорости роста и генетически детерминированного созревания нейронов дугообразного ядра.

4. Морфологические, в том числе ультраструктурные, изменения в крупноклеточных ядрах гипоталамуса растущих крыс при длительном стрессовом воздействии носят разнонаправленный характер и свидетельствуют о постепенном нарастании признаков истощения и повреждения в значительной части нейросекреторных клеток.

5. Под влиянием длительного стрессового воздействия в нейропиле ядер переднего гипоталамуса растущих крыс выявляются ультраструктурные изменения, которые характеризуются возникновением внеклеточного отека, а также внутриклеточного отека, особенно выраженного со стороны астроцитов. В латеральной гипоталамической области определяются изменения ультраструктуры миелиновых оболочек, выражающиеся в очаговом разрыхлении миелина на фоне сохранной ультраструктуры аксонов, что свидетельствует о возникновении значительных нарушений глиогенеза, отражающихся на формировании нейроглиальных взаимоотношений в растущем гипоталамусе.

6. В условиях острого стрессового воздействия в латеральных и гигантоклеточных ретикулярных ядрах продолговатого мозга растущих крыс возникают гистологические, иммуногистохимические и ультраструктурные изменения, которые свидетельствуют об усилении функциональной активности ретикулярной формации ствола головного мозга. Отмечается усиление гетероморфности популяции нейронов, появляются клетки с признаками выраженного гиперхроматоза. Обнаруживаемые умеренные сочетанные ультраструктурные и иммуногистохимические изменения со стороны ядра и органелл в части нейронов свидетельствуют о повышении их функциональной активности (фаза первичной активности) и изменении темпов нормального гистогенеза на фоне устойчивости клетки к действию повреждающих стимулов.

7. В условиях острого стрессового воздействия в заднем ядре блуждающего нерва у растущих крыс обнаруживаются структурные признаки, свидетельствующие об усилении функциональной активности части нейронов. Морфологические изменения в двойном ядре характеризуются рядом отличий, сопровождающихся отставанием формирования компонентов цитоскелета аксонов.

8. В условиях длительного стрессового воздействия определяется выраженный гетероморфизм растущих нейронов ретикулярных медуллярных ядер, обнаруживаемый на клеточном и субклеточном уровнях. Выявлена различная динамика ультраструктурного повреждения нейронов и глиоцитов, в сочетании с признаками внеклеточного отека, расцениваемая как проявление локальных влияний со стороны микроокружения нейронов, а также системных нарушений регуляции гомеостаза.

9. Ультраструктурные изменения в астроцитах медуллярных гигантоклеточных ретикулярных ядер при остром стрессе свидетельствуют об их вовлечении в системные механизмы адаптации растущего организма. Активация аппарата белкового синтеза астроцитов на фоне сохранной ультраструктуры митохондрий на этапе мобилизации рассматривается в качестве механизма сохранения их нейропротекторных функций.

10. Иммуногистохимические и ультраструктурные изменения в нейропиле ретикулярных ядер ствола головного мозга растущих крыс под влиянием острого эмоционально-болевого стресса свидетельствуют о сохранности большинства олигодендроцитов и об активной структурной перестройке аксонов на этапах мобилизации и резистентности. Обнаруженные изменения ультраструктуры миелиновых оболочек аксонов и части олигодендроцитов в медуллярных ретикулярных ядрах являются структурной основой нарушения передачи нервных импульсов в мозговом стволе. Активация аппарата белкового синтеза в олигодендроцитах на фоне сохранной ультраструктуры митохондрий рассматривается в качестве механизма сохранения их функций.

11. При длительном стрессовом воздействии на модели иммобилизационного стресса обнаруживается выраженное снижение объемных размеров перикарионов нейронов, их ядер и цитоплазмы перикарионов в латеральных ретикулярных ядрах продолговатого мозга у растущих крыс. Обнаруженные нами гистологические изменения следует расценивать как проявление отставания процессов роста и дифференцировки нейронов, которые в препубертатном периоде не завершили процессы роста и формирования.

12. В поздние сроки стрессового воздействия гистологические и иммуногистохимические изменения в заднем ядре блуждающего нерва и двойном ядре имеют сходную направленность отражают изменения характера гистогенеза в виде отставания процессов роста и формирования нейронов, количественного увеличения глиоцитов в структуре нейропиля.

13. В ответ на различные виды стрессовых воздействий наиболее выраженные отличия наблюдаются в структурной организации ядер блуждающего нерва и медуллярных ядер ретикулярной формации растущих крыс. Структурные изменения в ядре одиночного пути и латеральном ретикулярном ядре под влиянием иммобилизационного стресса характеризуются нарушением формирования нейро-глиальных взаимоотношений и проявляются отставанием процессов гистогенеза. При длительных сроках воздействия эмоционально-болевого стресса в вышеуказанных ядрах сохраняются нейроны, обнаруживающие на светооптическом и электронно-микроскопическом уровнях признаки достаточно высокой функциональной активности.

14. Под влиянием длительных сроков стрессового воздействия в паравентрикулярном ядре, латеральной гипоталамической области, дорсальном ядре блуждающего нерва и медуллярных ретикулярных ядрах растущих крыс наряду с нарастанием гистологических и ультраструктурных признаков повреждения нейронов обнаруживаются выраженные иммуногистохимические изменения, свидетельствующие о существовании нейромедиаторной дизрегуляции. Наиболее выраженные изменения морфологических свойств глутаматцептивных нейронов под влиянием длительных сроков стрессовых воздействий, обнаруживаемые в латеральных ретикулярных ядрах, свидетельствуют о вовлечении центральных механизмов нейромедиаторной интеграции мозгового ствола растущих крыс, в основе которых лежит специфическая организация молекулярных, нейрохимических свойств ретикулярных ядер продолговатого мозга.

15. Проведенный многоуровневый комплексный морфологический анализ позволяет утверждать, что структурные изменения в центральных бульбарных отделах парасимпатической нервной системы растущего организма, возникающие под влиянием стрессовых факторов, связаны с нарушением генетически детерминированных процессов гистогенеза стволовой части головного мозга, а также выраженными повреждениями ядер гипоталамуса, обеспечивающих посредством нисходящих нервных влияний на вегетативные центры регуляцию гомеостаза.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Т.М., Самусев Р. П. Влияние дозированной гипокинезии на изменение массы тела и периферических органов иммунной защиты растущего организма // Вестник Волгоградской медицинской академии.- 2000, Т.56, № 6.- С. 23−25.
  2. Г. Г. Медицинская морфометрия. Руководство.- М.: Медицина, 1990.-3 84с.
  3. Г. Г. Основы количественной патологической анатомии: Учебное пособие.- М.: Медицина, 2002.- 240с.
  4. Я.И. Нервы желез внутренней секреции и медиаторы в регуляции эндокринных функций. М., Наука, 1981.- 503с.
  5. И.Г. Структурные основы механизмов гипоталамической регуляции эндокринных функций. М.: Наука, 1979.-С. 228.
  6. И.Г. Эндокринные нейроны. В кн.: Руководство по гистологии. В 2 т. T. I. СПб.: СпецЛит, 2001.-С.400−405.
  7. И.Г. Нейроиммуноэндокринология: истоки и перспективы развития // Успехи физиологических наук.- 2003, Т.34, № 4.-С.4−15.
  8. И.Г., Гриневич В. В. Нейроиммуноэндокринология гипоталамуса. М.: Медицина, 2003.- 166 с.
  9. C.B., Заводская И. С., Морева Е. В., Веденеева З. И. Нейрогенные дистрофии и их фармакотерапия.- Л.: Медицина, 1969.- 238 с.
  10. К. В., Судаков К. В. Геном нейронов мозга в организации системных механизмов поведения // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины.- 2003, Т.135, № 2. С.124−131.
  11. П.К. Узловые вопросы теории функциональной системы. М., 1980. — 447 с.
  12. В.Л., Кресюн В. И. Особенности дифференциального подхода к терапии стресс-синдрома с учетом стадийности процесса // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины 1990, № 11.-С.499 -501.
  13. В.П., Брагина Т. А. Структурные основы межнейронной интеграции. Л.: Наука, 1982.- 164 с.
  14. Е.Д., Теплый Д. Л. Участие интерферона-альфа в рефляции апоптоза клеток гипоталамо-гипофизарно-адренокортикальной системы старых мышей при оксидативном стрессе // Морфология. — 2004, Т. 125, № 1. С. 23−26.
  15. И.С., Наточин Ю. В. Обмен веществ в экстремальных условиях космического полета и его имитации // Проблемы космической биологии. М.: Наука, 1973, Т.22. — С.152−159.
  16. М.М., Сонькин В. Д., Фарбер Д. А. Возрастная физиология: (Физиология развития ребенка). М.: Издательский центр «Академия», 2003.- 416с.
  17. В.П., Яковлев В. М., Кукса П. Я. Артериальные сосуды и возраст. М.: Мед., 1986.-224с.
  18. H.H., Чучков В. М., Курникова И. А., Карпова A.B. Цитоархитектоника продолговатого мозга, варолиева моста и среднего мозга крысы: Атлас. Москва: Изд-во «АНК», 2002. — 130 с.
  19. И.Н. Строение и развитие гипоталамуса человека. -Л.: Медицина, 1968.-176 с.
  20. A.A. Роль активных форм кислорода в жизнедеятельности нейрона // Успехи физиологических наук. 2003, Т.34, № 3.-С. 21−34.
  21. Е.О. Нейрохимические механизмы регуляции болевой чувствительности. М.: Изд-во УДН, 1991.- 248 с.
  22. B.JI. Цитология и общая гистология (фундаментальная морфология клеток и тканей человека). СПб.: СОТИС, 2000. — 520 с.
  23. С.С. Руководство по патологической технике. Л., 1947.264 с.
  24. С. В. Изменения объемов ядер клеток супраоптического ядра гипоталамуса у крыс в онтогенезе. Проблемы эндокринологии 1969. Т. 15, № 2, — С. 70—79.
  25. М.В. Физиология и патофизиология гипоталамуса. -М., 1966.-С.216−256.
  26. Войно-Ясенецкий М.В., Жаботинский Ю. М. Источники ошибок при морфологических исследованиях. Л.: Медицина, 1970.- 319с.
  27. А. А., Дедов И. И. Ультраструктурные основы гипоталамической нейросекреции. М., Медицина, 1972.- 240с.
  28. А. А., Дедов И. И., Дедов В. И. Нейросекреторные ядра и нейрогипофиз в раннем онтогенезе крыс // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1973. Т. 64, № 1.-С. 20−33.
  29. С. Медико-биологическая статистика. Пер. с англ. М., Практика, 1999.-459с.30. (Горизонтов П.Д.) Гомеостаз / Под ред. П. Д. Горизонтова.- М., 1976.-576 с.
  30. A.B. Количественное исследование ядерной ДНК внутрисердечных нейроцитов крысы в норме и при некоторых экспериментальных воздействиях. Автореф. дисс.. канд. мед. наук.- М., 1976.- С. 26.
  31. В.В. Крупноклеточный гипоталамус (главные и добавочные ядра): эволюционный, молекулярно-биологический морфофункциональный аспекты // Успехи физиологических наук.- 1997, Т.28, № 4. С. 80−104.
  32. В.В., Воропанова JI.C., Красновская И. А. Дополнительные группы' нонапептидэргических клеток промежуточного мозга у интактных и гипофизэктомированных крыс // Морфология. 1994, Т. 106, № 4−6.-С.38−46.
  33. Н.В., Левшина И. П. Характеристики свободнорадикального окисления и антирадикальной защиты мозга при адаптации к хроническому стрессу // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 1988, № 7, — С.153−155.
  34. A.A., Кондратьев Б. Ю. Практическая морфометрия органов и тканей. Томск: Изд-во Том. ун-та, 1988. — 136 с.
  35. O.A., Христич М., Черниговская Е. В. Морфометрическая характеристика развития нейросекреторных центров у крыс в ходе постнатального онтогенеза // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии,-1982, Т.82, № 3.- С.5−10.
  36. Н. И. О периодах развития структур головного мозга в онтогенезе крысы // Журнал эволюционной биохимии и физиологии. 1981, Т. 27, № 3. -С. 287−291.
  37. А.И., Маслюкова Е. А. Афферентная иннервация шейного отдела пищевода и трахеи в раннем постнаталыюм онтогенезе. // Морфология.- 2004, Т. 125, № 3.-С.54−56.
  38. П.Н. Гистопатология центральной нервной системы (атлас микрофотографий). М., Москва, 1969.- 243с.
  39. А.Ю. Морфофункциональное состояние лимбической системы крыс при стрессе. Автореф. дисс. на соиск.. канд. мед. наук.-Волгоград, 1995.-22 с.
  40. С. В., Семененко В. Г., Кривошеева Л. Г. Возрастные особенности нейросекреторных клеток супраоптических ядер гипоталамуса белых крыс // В кн.: Физиология, биохимия и биофизика возрастного развития. Киев, «Наукова думка», 1980.-С. 219−223.
  41. И.С., Морева Е. Б., Новикова H.A. Фармакологический анализ механизмов стресса и его последствий.- Л.: Медицина, 1981.-314 с.
  42. И.С., Морева Е. В., Сапранов И. С. Роль нервного фактора в развитии и патологии внутренних органов, вызываемой чрезвычайным воздействиям на организм // Физиол. журн. СССР.- 1986, Т.72, № 1.- С.83−92.
  43. И.П., Западнюк В. И., Захария Е. А. Лабораторные животные. Разведение, содержание и использование в эксперименте.- Киев: В ища школа, 1983. С.67−72.
  44. Г. В. Исследование медиального мамиллярного ядра гипоталамуса человека на материале ранних вскрытий // Архив патологии. -1991, № 1.-С. 43 -46.
  45. Л.И. Влияние длительного ограничения мышечной деятельности на организм человека и гипокинетический синдром невесомости //Косм. биол. 1968, № 2.- С.59−63.
  46. Г. М., Данилова О. А. Морфометрическое изучение некоторых гипоталамических центров у крыс после деафферентации медиобазального гипоталамуса // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины.- 1980, Т. 89, вып. 3.- С. 352—354.
  47. В.Я., Погодина В. В., Ройхель В. М. Цитопатологические изменения в мозге человека и животных при прионных болезнях // Морфология. 2003, Т. 123, № 1.- С.24−27.
  48. Т.Н. Внутренняя среда организма. М., «Наука», 1983.- 227 с.
  49. А.Х., Кудрин А. Н., Николаев С. Н. К вопросу о роли свободно-радикального перекисного окисления липидов в патогенезе адреналовых кардионекрозов // Пат. физиол. -1979, № 1.- С.66−67.
  50. А.Н., Блинков С. М., Пуцилло М. В. Атлас нейрохирургической анатомии. М., Медицина, 1991.- 336 с.
  51. A.B. О значении двигательной функции для сохранения жизнедеятельности организма человека // Физиологические проблемы детренированности.-М., 1968.- С.7−34.
  52. И.А., Глазова М. В., Макина Д. М. Взаимодействие между вазопрессинергическими клетками нейросекреторных центров гипоталамуса и щитовидной железы у крыс // Ж. эвол. биох. физиол. 1998, № 6. — С. 683−689.
  53. Р.В. Иллюстрированная энциклопедия по гистологии человека. Пер. с англ. СПб.: СОТИС, 2001.- 536с.
  54. Т.Н., Тизул, А .Я., Кузьмин М. Л., Цыганова Н. И. Клинико-физиологические изменения в организме человека при длительной антиортостатической гипокинезии // Косм, биол.- 1982.- № 2.- С.29−34.
  55. Г. Н. Общая патофизиология нервной системы // Патологическая физиология и экспериментальная терапия.- 1989, № 5.- С.75−84.
  56. Г. Н. Некоторые общебиологические закономерности и базовые механизмы развития общебиологических процессов // Архив патологии. 2001, т. 63, № 6. — С. 44−49.
  57. Г. Н. Дизрегуляционная патология. М., 2002.230 с.
  58. В.И., Сауля А. И. Возрастные особенности изменения массы и сократительной функции сердца крыс // Здравоохранение.- Кишинев, 1987, № 5.- С.31−33.
  59. Г. Ф. Болезни системы кровообращения. -М., 1957.- 300с.
  60. Л.М. О влиянии экстирпации шейных симпатических ганглиев на развитие супраоптического ядра гипоталамуса в постнатальном онтогенезе // Журнал эволюционной биохимии.- 1978а, Т. 14, № 3.- С.278−284.
  61. Л.М. О влиянии экстирпации шейных симпатических ганглиев на развитие паравентрикулярного ядра крыс в постнатальном онтогенезе//Бюллетень экспериментальной биологии и медицины.- 19 786, Т. 8, № 7.- С. 107−110.
  62. Р. Патогистологическая техника и практическая гистохимия.- М., 1969.- 645 с.
  63. Е.Б., Гриневич В. В., Волкова О. В., Акмаев И. К. Эффекты бактериального эндотоксина на секрецию и синтез вазопрессинапри солевой нагрузке у крыс // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины.- 2003, Т.136, № 8.- С.148−151.
  64. К., Эндреци Э. Нейроэндокринная регуляция адаптационной деятельности. Будапешт, 1967.- 219с.
  65. Е.Л. Стереологический анализ абсолютных параметров миокарда крыс при контрастных температурных воздействиях // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины.- 1995, Т. 120, № 7.-С.91−94.
  66. В.В., Лифантьев В. И., Меерсон Ф. З. Функциональное состояние митохондрий сердца в динамике эмоционально-болевого стресса // Кардиология.- 1982, № 6.- С. 118−120.
  67. Ф.З. Патогенез и предупреждение стрессорных и ишемических повреждений сердца.- М.: Мед., 1984.- 271 с.
  68. Ф.З., Пшенникова М. Г. Адаптация к стрессорным ситуациям и физическим нагрузкам,— М.: Мед., 1988. 256 с.
  69. Г. А. Курс патологогистологической техники.- Л.: Медицина, 1969.- 424 с.
  70. Э.С., Ханаева З. С., Буцхрикидзе М. П. // Экспериментальная, клиническая медицина. -1999, № 2.-С.93−94.
  71. П.А. Мозговой ствол // В кн. Руководство по гистологии. В 2 т. Том II. СПб: СпецЛит, 2001. — С.553−563.
  72. H.H., Кузнецов С. Л. Молекулярная биология. -М.:МИА, 2003.-544 с.
  73. А.Л. Нервно-эндокринные факторы при атеросклерозе. М., 1962. — 192 с.
  74. В.О. Физиология центральной нервной системы.-М.: ООО УМК «Психология», 2002.- 377с.
  75. JI.M. Структурная реорганизация миокарда при экстремальных экологических воздействиях // Морфология.- 1997, № 6.- С.18−24.
  76. Л.М., Колесникова Л. В., Непомнящих Г. И. Морфология атрофии сердца. Трехмерная тканевая и ультраструктурная организация.- Новосибирск: Наука, 1989.- 306 с.
  77. H.H. Морфо-функциональное изучение взаимодействий глутаматергической, холинергической и дофаминергической систем в стриатуме // Российский физиологический журнал им. И. М. Сеченова.- 1997, Т. 83, № 1−2.-С.96−101.
  78. С.Н. Конструкция мозга.- Л.: Медицина, 1987. 208с.
  79. И. А. (Красновская И. А.) Функциональная морфология нейросекреторных клеток и задней доли гипофиза белых мышей в условия длительной стимуляции // Цитология.- 1972. Т. 14, № 8.- С. 925−931.
  80. A.B. Адренэргическая регуляция структуры и функции околощитовидных желез //Морфология. 2004, Т.125, № 3.-С.103−108.
  81. В.В. Образ жизни и профилактика сердечно-сосудистых заболеваний // Вестник АН СССР.- 1965.- № 6.- С.5−9.
  82. C.B., Райхлин Н. Т. Руководство по иммуногистохимической диагностике опухолей человека. Казань, 2000.-288с.
  83. В.Б. Динамика морфометрических показателей гипоталамической области крыс в процессе развития иммобилизационного стресса // Архив патологии. 1989, № 1. — С.96.
  84. В.Б. Морфофункциональная организация гипоталамуса при ишемической болезни сердца. Автореф. дис.. д-ра мед. наук.-М., 1990.- С. 24.
  85. В.Б. Механизм формирования интегральной реакции гипоталамуса при психоэмоциональном перенапряжении // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 1991, № 10. — С.444−446.
  86. В.Б. Модульная организация гипоталамуса крыс // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины.- 1992, № 7. С.83−86.
  87. Попкова Е В. Динамика состояния болевой чувствительности и опиоидных систем в структурах головного мозга у крыс при многократных воздействиях стресса и акупунктуры. Автореф. дис.. канд. биол. наук.- М., 1994.-С. 24.
  88. А.И. Глия и роль в нервной деятельности. СПб., Наука, 1993.- 156 с.
  89. . Микроскопическая техника. Пер. с нем. М., Изд-во Иностранной лит., 1954.- 719с.
  90. Р.П., Пупышева Г. И., Смирнов A.B. Атлас по цитологии, гистологии и эмбриологии: учебное пособие для студентов высших медицинских учебных заведений. Москва: ООО Издательский дом «ОНИКС 21 век»: ООО «Издательство „Мир и Образование“, 2004.-400с.
  91. М.Р., Билич Г. Л. Анатомия человека. М., Высшая школа, 1989.-С. 405−483.98. (Саркисов Д.С., Перов Ю.Л.) Микроскопическая техника: Руководство / Под ред. Д. С. Саркисова и Ю. Л. Перова.- М.: Медицина, 1996. 544с.
  92. Л.А., Целлариус Ю. Г. Ультраструктура мышечных клеток сердца при очаговых метаболических повреждениях.- Новосибирск: Наука, 1978.- 143 с.
  93. В.В., Самусев Р. П., Моисеева М. В., Колосова З. Л. Международная гистологическая номенклатура. Омск, 1999.- 156с.
  94. В.В., Степанов С. С. Система субсинаптических единиц как универсальный системообразующий и регулирующий фактор синапсов головного мозга // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 1997, № 7.- С.4−12.
  95. В.В., Степанов С. С., Челышев Ю. А. Нейроглия. В кн.: Руководство по гистологии. В 2 т. Т. I. СПб.: СпецЛит, 2001.- С.405−413.
  96. Е.В. Крупноклеточные ядра гипоталамуса при хронической алкогольной интоксикации. // Дисс. на соиск. уч. степ. канд. мед. наук.- Курск, 2003.- 168 с.
  97. A.B. Структурные особенности нервно-мышечного аппарата сердца развивающегося организма в условиях дозированной гиподинамии и гипокинезии (экспериментально-морфологическое исследование). Автореф. дисс. канд. мед. наук.- Волгоград, 1998.- 18 с.
  98. К.В. Общая теория функциональных систем. М., Медицина, 1984.-223 с.
  99. К.В. Голографический принцип системной организации процессов жизнедеятельности // Успехи физиологических наук. 1997, Т.28, № 4. — С. 3−32.
  100. К.В. Новые аспекты классической концепции стресса // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины.- 1997а.-№ 2.- С.124−130.
  101. К.В. Индивидуальность эмоционального стресса // Журн. Неврологии и психиатрии им. С. С Корсакова. 2005, Т. 105, № 2. -С. 4−12.
  102. К.В., Коплик Е. В., Салиев Р. В. Эмоциональный стресс: физиологические и медико-социальные аспекты. Харьков, 1990.-С.12−19.
  103. К.В., Ульянинский JI.C. Механизмы устойчивости сердечно-сосудистых функций при экспериментальном эмоциональном стрессе // Пат. физиол.- 1988.- № 1.- С.73−77.
  104. К.В., Юматов Е. А. Проблема эмоционального стресса и здоровье // Эмоциональный стресс в современной жизни / Союзмединформ.- М., 1991.- С.1−3.
  105. К. Введение в количественную цито-гистологическую морфологию.- Изд-во академии СРР, 1980.- 191 с.
  106. И.М., Сова P.E., Шефтель В. О., Онипиенко Ф. А. Проблема нормы в токсикологии.- М.: Мед., 1991.-203 с.
  107. . Электронная микроскопия для начинающих.- М.: Мир, 1975.- 324 с.
  108. Ульянинский J1.C. Вегетативная регуляция деятельности сердца при эмоциональном стрессе // Эмоциональный стресс: теоретические и клинические аспекты / Под общ. ред. Судакова К. В., Петрова В.И.-Волгоград: Комитет по печати и информации, 1997.- С.89−93.
  109. .М. Стресс и система кровообращения.- М.: Медицина, 1991.- 320 с.
  110. В.П., Петров A.B., Денисов И. В., Ильичева В. Н., Семенов С. Н. Гистохимические эквиваленты проницаемостигематоэнцефалического барьера при действии ионизирующего облучения // Морфология. 2000, Т. 117, ЖЗ.-С.125.
  111. И.В. Обмен веществ при гиподинамии. М.: Наука, 1982.-254 с.
  112. В.В. Долголетие: действительное и возможное. -Киев, Наук, думка, 1989. 246 с.
  113. Н.К., Салтыков А. Б. Теория функциональных систем // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2003, Т. 136, № 7.-С.4−10.
  114. Н.Б., Шилов А. Г. Возможности применения стереологического анализа в изучении структурной организации клеток и тканей // Применение стереологических методов в цитологии.- Новосибирск, 1974.- С.54−62.
  115. Е.А., Хондкариан O.A. Изменение нервной системы при длительной гипокинезии (клинико-экспериментальное исследование) //Журн. Невропатология, — 1984.- № 12.-С.1761−1788.
  116. В.Н., Сосунов A.A., Гуски Г. Морфологические основы иннервации сердца.- М.: Наука, 1992.- 368 с.
  117. В. Н., Сосунов A.A., Майоров В. Н., Сотников О. С., Семченко В. В. Нервная ткань и нейроглия // В кн.: Руководство по гистологии. В 2 т. T.I. СПб: СпецЛит, 2001.-С. 388−434.
  118. Е.А. Центральные нейрохимические механизмы устойчивости к эмоциональному стрессу. Автореф. дис.. д-ра мед. наук.- М., 1986.-45 с.
  119. Н.И., Губенко В. Г. Метод случайного отбора полей зрения в гистологических препаратах при патоморфологических исследованиях // Арх. патол.- 1978.- № 6.-С.71−72.
  120. Abbas М.М., Evans J.J. Regulation of C-fos protein in gonadotrope cells by oxytocin and gonadotropin-releasing hormone // Neuroendocrinology. -2000, V.71, N.5.-P.292−300.
  121. Al-Abdulla N. A, Martin L.J. Apoptosis of retro gradely degenerating neurons occurs in association with the accumulation of perikaryal mitochondria and oxidative damage to the nucleus //Am. J. Pathol., 1998, V.153, N.2.- P.447−56.
  122. Albiston A.L., Fernando R., Ye S., Peck G.R., Chai S.Y. Alzheimer’s, angiotensin IV and an aminopeptidase // Biol. Pharm. Bull. 2004, V.6. -P.765−767.
  123. An Y., Gao Z., Wang .Z, Yang S., Liang J., Feng Y., Kato K., Nakano M., Okada S., Yamanaka K. Immunohistochemical analysis of oxidative
  124. DNA damage in arsenic-related human skin samples from arsenic-contaminated area of China I I Cancer Lett. 2004, V.214, N.I.- P. l 1−18.
  125. Aragona M., Aragona F. Chronic stress and histological effects on the human central nervous system and other organs // Funct. Neurol.- 1994, V.9, № 3.- P.121−131.
  126. Arancibia S., Rage F., Grauges P., Gomez F., Tapia-Arancibia L., Armario A. Rapid modifications of somatostatin neuron activity in the periventricular nucleus after acute stress // Exp. Brain Res. 2000, V. 134, № 2. -P. 261−267.
  127. Bandaranayake R. C. Karyometric study of hypothalamic neurosecretory neurones under different conditions // Acta anat.- 1974, V. 90, № 3.-P. 431−461.
  128. Bao J. et al. Back signaling by the Nrg-1 intracellular domain // J. Cell Biol. 2003, Vol. 161.-P. 1133−1141.
  129. Brain P.F., Nowell N.W. Isolation vs. grouping effects on adrenal and gonadal function in albino mice. I. The male // Gen. Comp. Endocrinol. -1971, № 16. P.149−154.
  130. Beauchaine T. Vagal tone, development, and Gray’s motivational theory: toward an integrated model of autonomic nervous system functioning in psychopathology // Dev. Psychopathol.- 2001, V.13, N. 2.- P.183−214.
  131. Beaulieu J., Champagne D., Drolet G. Enkephalin innervation of the paraventricular nucleus of the hypothalamus: distribution of fibers and origins of input / J. Chem Neuroanat. 1996, V.10, № 2.- P. 79−92.
  132. Beitner-Johnson D., Guitart X., Nestler E.J. Neurofilament proteins and the mesolimbic dopamine system: common regulation by chronic morphine and chronic cocaine in the rat ventral tegmental area // J. Neurosci. 1992 V.12, N.6.-P. 2165−2176.
  133. Berridge M. J., Bootman M. D., Roderick H. L. Calcium signalling: dynamics, homeostasis and remodeling // Nature Reviews Molecular Cell Biology.-2003, V.4, N.7.-P. 517−529.
  134. Binder W., Mousa S.A., Sitte N., Kaiser M., Stein C., Schafer M. Sympathetic activation triggers endogenous opioid release and analgesia within peripheral inflamed tissue // Eur. J. Neurosci. 2004, V.20, № 1. — P.92−100.
  135. Bodineau L, Larnicol N. Brainstem and hypothalamic areas activated by tissue hypoxia: Fos-like immunoreactivity induced by carbon monoxide inhalation in the rat // Neuroscience. 2001, V.108, N.4.-P.643−653.
  136. Bonini P., Cicconi S., Cardinale A., Vitale C., Serafmo A.L., Ciotti M.T., Marlier L.N. Oxidative stress induces p53-mediated apoptosis in glia: p53 transcription-independent way to die//J. Neurosci. Res. 2004, V.75, N.1.-P.83−95.
  137. Boudaba C., Di S., Taslcer J.G. Presynaptic noradrenergic regulation of glutamate inputs to hypothalamic magnocellular neurons // J. Neuroendocrinol.2003, V.15, N.8. P.803−810.
  138. Boulanger L. M., Shatz C. J. Immune signalling in neural development, synaptic plasticity and disease // Nature Reviews Neuroscience.2004, V. 5, N. 7.-P. 521−531.
  139. Bouras C., Magistretti P.J., Morrison J.H. An immunohistochemical study of six biologically active peptides in the human brain // Hum. Neurobiol.-1986, V.5. P.213−226.
  140. Brain P.F., Nowell N.W. Isolation vs. grouping effects on adrenal and gonadal function in albino mice. I. The male. Gen. Comp. // Endocrinol. -1971, № 16.-P.149−154.
  141. Buller K.M. Neuroimmune stress responses: reciprocal connections between the hypothalamus and the brainstem// Stress. -2003, V.6., N.l.-P.l 1−17.
  142. Butt A.M., Ibrahim M., Berry M. The relationship between developing oligodendrocyte units and maturing axons during myelinogenesis in the anterior medullary velum of neonatal rats // J. Neurocytol. 1997, V.26, N.5.-P.327−338.
  143. Carter D.A., Lightman S.L. Modulation of oxytocin secretion by scending noradrenergic pathway: sexual dimorphism in rats // Brain Res. — 1987, V. 406.-P. 313−316.
  144. Chai S.Y., Fernando R., Peck G., Ye S.Y., Mendelsohn F.A., Jenkins T.A., Albiston A.L. The angiotensin IV/AT4 receptor // Cell Mol. Life Sci. 2004, V.61, № 21. — P.2728−2737.
  145. Choo D., Khwaja K., Nori K., Rewinski M» Zeff R., Perdrizet G. In vivo characterization of the molecular-genetic changes in gastric mucosa during the development of acute gastritis and stress ulceration // J. Trauma. 2002, V. 52, N.4.-P. 720−725.
  146. Clementi F., Ceccarelli B. Fine structure of rat hypothalamic nuclei.- In: The hypothalamus. New York: Acad. Press.- 1970. P. 17−43.
  147. Colciago A., Celotti F., Pravettoni A., Mornati O., Martini L., Negri-Cesi P. Dimorphic expression of testosterone metabolizing enzymes in thehypothalamic area of developing rats // Brain Res. Dev. Brain Res. 2005, V.155, № 2. — P.107−116.
  148. Conrad C.D., McEwen B.S. Acute stress increases neuropeptide Y mRNA within the arcuate nucleus and hilus of the dentate gyrus // Brain Res Mol Brain Res., 2000, V. 23, N.79(1−2).- P.102−109.
  149. Cowley, M. A. et al. The distribution and mechanism of action of ghrelin in the CNS demonstrates a novel hypothalamic circuit regulating energy homeostasis //Neuron.-2003, N. 37.- P.649−661.
  150. Curristin S.M., Cao A., Stewart W.B., Zhang H., Madri J.A., Morrow J.S., Ment L.R. Disrupted synaptic development in the hypoxic newborn brain // Proc. Natl. Acad. Sci. USA.- 2002, V.99, N.24.- P. 15 729−15 734.
  151. Curtis A.L., Bello N.T., Connolly K.R., Valentino R.J. Corticotropin-releasing factor neurones of the central nucleus of the amygdala mediate locus coeruleus activation by cardiovascular stress // J. Neuroendocrinol. -2002, № 8.-P. 667−682.
  152. Daftary S.S., Boudaba C., Tasker J.G. Noradrenergic regulation of parvocellular neurons in the rat hypothalamic paraventricular nucleus // Neuroscience. 2000, V.96, № 4. -P.743−751.
  153. Danilczuk Z., Ossowska G., Lupina T., Cieslik K., Zebrowska-Lupina I. Effect of NMDA receptor antagonists on behavioral impairment induced by chronic treatment with dexamethasone // Pharmacol. Rep. 2005, V.57, N.I.-P.47−54.
  154. Davies I., Fotheringham A. P. The influence of age on the response of the supraoptic nucleus of the hyposalamo-neurrohypophyseal system to physiological stress. 11. Quantitative morphology // Mech. Ageing and Develop. -1981.-Vol. 15, № 4. -P. 367−378.
  155. Di S., Malcher-Lopes R., Halmos K.C., Tasker J.G. Nongenomic glucocorticoid inhibition via endocannabinoid release in the hypothalamus: a fast feedback mechanism // J. Neurosci. 2003, V.23, N.12. — P.4850−4857.
  156. Donhoffer A., Sentagothai J. Argirophilic neurosecretion in the hypothalamic ventromedial nucleus // Biochem. And Biol. Sperim.- 1962, V. 1.- P. 267−272.
  157. Ellenberger H.H. Nucleus ambiguus and bulbospinal ventral respiratory group neurons in the neonatal rat // Brain Res. Bull.- 1999, V.50, № 1.-P. 1−13.
  158. Ezzat S., Mader R., Yu S., Ning T., Poussier P., Asa S.L. Ikaros integrates endocrine and immune system development // J. Clin. Invest. 2005, V. 115, № 4. — P.844−848.
  159. Fifkova E., Marsala J. A stereotaxic atlas for the rat / In: Electrophysiological methods in biological research. Praque, 1960. -P. 454−476.
  160. Fowler J.H., McCracken E., Dewar D., McCulloch J. // Brain Res. -2003. Vol. 991, № 1−2. — P. 104−112.
  161. Gai W. P., Geffen L. B., Blessing W.W. Galanin immunoreactive in the human hypothalamus: colocalization with vasopressin-contaning neurons // J. Comp. Neurol. 1990, V. 298.-P.265−280.
  162. Gamallo A., Villanua A., Trancho G., Fraile A. Stress adaptation and adrenal activity in isolated and crowded rats // Physiol. Behav. 1986, № 36.-P.217−221.
  163. Garrido M.M., Fuentes J.A., Manzanares J. Gastrin-releasing peptide mediated regulation of 5-HT neuronal activity in the hypothalamic paraventricular nucleus under basal and restraint stress conditions // Life Sci.2002, V.70, № 25. -P.2953−2966.
  164. Gartner L.P., Hiatt J.L. Color textbook of histology. Philadelphia, 1997.-P.483.
  165. Gauriau C., Bernard J.F. Pain pathways and parabrachial circuits in the rat //Exp. Physiol.- 2002, V. 87, N.2.-P.251−258.
  166. Goos H.J., Consten D. Stress adaptation, Cortisol and pubertal development in the male common carp, Cyprinus carpio // Mol. Cell Endocrinol.-2002, V.197. № 1−2.-P. 105−116.
  167. Graham J.C., Hoffman G.E., Sved A.F. c-Fos expression in brain in response to hypotension and hypertension in conscious rats // J. Auton. Nerv. Syst. 1995, V.55, N. l-2.- P.92−104.
  168. Gulpinar M.A., Yegen B.C. The physiology of learning and memory: role of peptides and stress // Curr. Protein Pept. Sci. 2004, V.5, № 6. -P.457−473.
  169. Hatch A.M., Wiberg G.S., Zawidzka Z., Cann M., Airth J.M., Grice H.C. Isolation syndrome in the rat // Toxicol. Appl. Pharmacol. 1965, № 7.-P.737—745.
  170. Hennessy M.B., Weinberg J. Adrenocortical activity during conditions of brief social separation in preweaning rats // Behav. Neurol. Biol. -1990, № 54.-P.42−55.
  171. Hertz L., Chen Y., Gibbs M.E., Zang P., Peng L. Astrocytic adrenoceptors: a major drug target in neurological and psychiatric disorders? Curr. Drug Targets CNS //Neurol. Disord. -2004, V.3, N.3. P.-239−267.
  172. Holson R.R., Scallet A.C., Turner B.B. Isolation stress revisited: isolation-rearing effects depend on animal care methods // Physiol. Behav. 1991, № 49.-P. 1107−1118.
  173. Irifune T., Tamechika M., Adachi Y., Tokuda N., Sawada T., Fukumoto T. Morphological and immunohistochemical changes to thymic epithelial cells in the irradiated and recovering rat thymus // Arch. Histol. Cytol. -2004, V.67, № 2. P. 149−158.
  174. Ishikawa T., Yang H., Tache Y. Microinjection of bombesin into the ventrolateral reticular formation inhibits peripherally stimulated gastric acid secretion through spinal pathways in rats // Brain Res. 2001, V.918, №l-2.-P.l-9.
  175. Isikhan V., Comez T., Zafer Danis M. Job stress and coping strategies in health care professionals working with cancer patients // Eur. J. Oncol. Nurs. -2004, V.8, N.3. P. 234−244.
  176. Jacobs J.S., Miller M.W. Cell cycle kinetics and immunohistochemical characterization of dissociated fetal neocortical cultures: evidence that differentiated neurons have mitotic capacity // Brain Res. Dev. Brain Res. -2000, V.122, N.1.-P.67−80.
  177. Jones R. Ghrelin on the brain // Nature Reviews Neuroscience.-2003, N. 4.- P.1038−1082.
  178. Kasting N. W. Simultaneous and independent release of vasopressin and oxytocin in the rat // Canadian J. Physiol. Pharmacol. 1988, V. 66. -P. 22−37.
  179. Kerman I.A., Enquist L.W., Watson S.J., Yates B.J. Brainstem substrates of sympatho-motor circuitry identified using trans-synaptic tracing with pseudorabies virus recombinants // J. Neurosci. 2003, V. 23, №.11.-P.4657−4666.
  180. Kim-Kaneyama, Nose K., Shibanuma M. Significance of nuclear relocalization of ERK½ in reactivation of c-fos transcription and DNA synthesis in senescent fibroblasts // J. Biol. Chem. 2000, V.275. № 27. — P. 20 685−20 692.
  181. Kiss J. Z., Williams T. H. ACTH-immunoreactive boutons form synaptic contacts in the hypothalamic arcuate nucleus of rat: evidence for local opiocortin connections // Brain Res. 1983, V. 263, № 1. -P. 142−146.
  182. Kokare D.M., Dandekar M.P., Chopde C.T., Subhedar N. Interaction between neuropeptide Y and alpha-melanocyte stimulating hormone in amygdala regulates anxiety in rats // Brain Res. 2005, V.1043, № 1−2. — P.107−114.
  183. Krizanac-Benger L., Kapural M., Parkinson F., Cuculo L., Hossain M., Mayberg M.R., Janigro D. Effects of trancient loss of shear stress on blood-brain barrier endothelium: role of nitric oxide and IL-6 // Brain Res. 2003, V.977, N.2.-P. 239−346.
  184. Krukoff T.L., MacTavish D., Jhamandas J.H. Effects of restraint stress and spontaneous hypertension on neuropeptide Y neurones in the brainstem and arcuate nucleus // J. Neuroendocrinol., 1999, V.11, № .9.-P.715−723.
  185. Landgraf R., Wigger A. Born to be anxious: neuroendocrine and genetic correlates of trait anxiety in HAB rats // Stress.- 2003, V. 6, N.2.- P. 111−9.
  186. Lee H. S., Nelms J. L., Nguyen M., Silver R. & Lehman M. N. The eye is necessary for a circadian rhythm in the suprachiasmatic nucleus // Nature Neuroscience.- 2003, N. 6.- P. 111−112.
  187. Leman I.I., Inner I. Craigies neuroanatomy of the rat. New-York, London, 1963. — 230 p.
  188. Lin K. H. K. a. Peng Y. M. Changes in the nuclear volume of rat hypothalamic neurones in old age // Neuroendocrine 1976. V. 21, № 3.-P. 247— 254.
  189. Lonstein J.S. Reduced anxiety in postpartum rats requires recent physical interactions with pups, but is independent of suckling and peripheral sources of hormones // Horm. Behav. 2005, V.47, № 3. — P.241−255.
  190. Lopez J.C. The travels of neuregulin // Nature Rev. Neurosci., 2003, Vol.4, N.8.-P.609.
  191. Lorke D.E., Kwong W.H., Chan W.Y., Yew D.T. Development of catecholaminergic neurons in the human medulla oblongata // Life Sci. -2003, V.73, N.10.-P.1315−1331.
  192. Machado B.H., Bonagamba L.G. Antagonism of glutamate receptors in the intermediate and caudal NTS of awake rats produced no changes in the hypertensive response to chemoreflex activation // Auton. Neurosci.- 2005, V., 117, N.I.- P.25−32.
  193. Mak J.C., Leung H.C., Ho S.P., Law B.K., Lam W.K., Tsang K.W., Ip M.S., Chan-Yeung M. Systemic oxidative and antioxidative status in Chinese patients with asthma // J. Allergy Clin. Immunol. 2004, V. l 14, N.2. — P. 260−264.
  194. Mansi J.A., Laforest S., Drolet G. Effect of stress exposure on the activation pattern of enkephalin-containing perikarya in the rat ventral medulla // J. Neurochem., 2000, V.74, № 6.-P.2568−75.
  195. Marinelli P.W., Quirion R., Gianoulakis C. An in vivo profile of beta-endorphin release in the arcuate nucleus and nucleus accumbens following exposure to stress or alcohol //Neuroscience. 2004, V.127, № 3. — P. 777−784.
  196. Marshall G.D. Neuroendocrine mechanisms of immune dysregulation: applications to allergy and asthma // Ann. Allergy Asthma Immunol. 2004, V.93, N.2 (Suppl 1).- P. l 1−17.
  197. McCann S.M., Licinio J., Wong M.L., Yu W.H., Karanth S., Rettorri V. The nitric oxide hypothesis of aging // Exp. Gerontol. 1998, V.33, № 7−8.-P. 813−826.
  198. McKinley M.J., Albiston A.L., Allen A.M., Mathai M.L., May C.N., McAllen R.M., Oldfield B.J., Mendelsohn F.A., Chai S.Y. The brain renin-angiotensin system: location and physiological roles // Int. J. Biochem. Cell Biol. -2003, V.6.-P. 901−918.
  199. Mendzheritskii A.M., Makletsova M.G., Uskova N.I., Choraian I.O., Mikhaleva I.I. Antistressor effect of delta-sleep-inducing peptide in hypokinetic stress //Ukr. Biokhim. Zh.- 1991, V. 63, № 1.- P.34−37.
  200. Merali Z., Kent P., Anisman H. Role of bombesin-related peptides in the mediation or integration of the stress response // Cell Mol. Life Sci. 2002, V.59, № 2. — P.272−287.
  201. H., Palchaudhuri M., Scheinin M., Flugge G. // Brain Res. -2000. Vol. 880, № 1−2. — P. 147−158.
  202. Michl T., Jocic M., Heinemann A., Schuligoi R., Holzer P. Vagal afferent signaling of a gastric mucosal acid insult to medullary, pontine, thalamic, hypothalamic and limbic, but not cortical, nuclei of the rat brain // Pain. 2001, V.92, N.1−2.-P. 19−27.
  203. Misra U. K, Pizzo S.V.Regulation of cytosolic phospholipase A2 activity in macrophages stimulated with receptor-recognized forms of alpha 2-macroglobulin: role in mitogenesis and cell proliferation // J. Biol. Chem. 2002, V. 277, N. 6. — P. 4069−4078.
  204. Mizoguchi H., Tseng L.F., Suzuki T., Sora I., Narita M. Differential mechanism of G-protein activation induced by endogenous mu-opioid peptides, endomorphin and beta-endorphin // Jpn. J. Pharmacol. 2002, V.89, № 3. — P.229−234.
  205. Molavi B., Mehta J.L. Oxidative stress in cardiovascular disease: molecular basis of its deleterious effects, its detection, and therapeutic considerations // Curr. Opin. Cardiol. 2004, V.19, N.5. — P.488−493.
  206. Moody T.W., Merali Z. Bombesin-like peptides and associated receptors within the brain: distribution and behavioral implications // Peptides. -2004, V.25,№ 3.-P.511−520.
  207. Morell P., Quarles R.H., Norton W.T. Basic neurochemistry.- New York, 1993.-P. 117.
  208. Morgane P.J., Galler J.R., Mokler D.J. A review of systems and networks of the limbic forebrain/limbic midbrain // Prog. Neurobiol. 2005, V.75, № 2.-P. 143−160.
  209. Morinan A., Leonard B.E. Some anatomical and physiological correlates of social isolation in the young rat // Physiol. Behav. 1980, № 24. -P.637−640.
  210. Morrison R.S., Kinoshita Y., Johnson M.D., Guo W., Garden G.A. P-53 dependent cell death signaling in neurons // Neurochemical Research. — 2003, V.28, N.I.- P. 15−27.
  211. Mronga T., Stahnke T., Goldbaum O., Richter-Landsberg C. Mitochondrial pathway is involved in hydrogen-peroxide-induced apoptotic cell death of oligodendrocytes // Glia.- 2004, V.46, N.4.-P.446−455.
  212. Miyake M., Yamasaki M., Hazama A., Nielsen S., Shimizu T. Effects of microgravity on organ development of the neonatal rat // Biol. Sci. Space. 2004, V. 18, № 3.- P. 126−127.
  213. Myaskowski G., Ong G.L., Lukic D., Haldar J. Immobilization stress affects oxytocin and vasopressin levels in hypothalamic and extrahypothalamic sites // Brain Res. 1988, V. 458. — P. 137−141.
  214. Nolte J. The human brain. An introduction to its functional anatomy // The C.V. Mosby company st. Louis, Washington D.C., Toronto, 1988.-P.410.
  215. Nosaka S., Murata K., Kobayashi M., Cheng Z.B., Maruyama J. Inhibition of baroreflex vagal bradycardia by activation of the rostral ventrolateral medulla in rats // Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol.- 2000, V. 279, N.3.-P.1239−1247.
  216. Nouwen E.J., Kuhn E.R. Radioimmunoassay of arginin vasotocin and mesotocin in serum of the Rana ridibunda // Gen. Comp. Endocrinol. 1983, V.50. — P.242−251.
  217. Okere C.O., Waterhouse B.D. Capsaicin increases GFAP and glutamine synthetase immunoreactivity in rat arcuate nucleus and median eminence //Neuroreport. 2004, V.15, N.2.- P. 255−258.
  218. Ouyang Y.B., Giffard R.G. Changes in astrocyte mitochondrial function with stress: effects ofBcl-2 family proteins // Neurochem. Int. 2004, V.45, N.2−3.P.371−9.
  219. Parker E.A., Baldwin G.T., Israel B., Salinas M.A. Application of health promotion theories and models for environmental health // Health Educ. Behav. 2004, V.31, N.4. — P.491−509.
  220. Patel K.P., Zhang K., Kenney M.J., Weiss M., Mayhan W.G. Neuronal expression of Fos protein in the hypothalamus of rats with heart failure // Brain-Res. 2000, Vol.865, N.1.-P.27−34.
  221. Paxinos G., Watson C. The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates / Academic Press, Inc., ed. 2, San Diego, 1986.- 365 p.
  222. Pelligrino L.J., Pelligrino A.S., Cushman A.J. A stereotaxic atlas of the rat brain. New-York, London, 1981. — 122 p.
  223. Perez S.E., Wynick D., Steiner R.A., Mufson E.J. Distribution of galaninergic immunoreactivity in the brain of the mouse // J. Comp. Neurol. 2001, V. 434, N.2.-P.158−185.
  224. Porges S.W. Orienting in a defensive world: mammalian modifications of our evolutionary heritage. A Polyvagal Theory. // Psychophysiology. 1995, V. 32, N.4.-P.301−18.
  225. Porges S.W. Love: an emergent property of the mammalian autonomic nervous system // Psychoneuroendocrinology. 1998, Nov., N.23(8).-P.837−61.
  226. Porges S.W. The Polyvagal Theory: phylogenetic contributions to social behavior//Physiol. Behav.- 2003, V.79, № 3.-P.503−513.
  227. V. (Рааб В.) Адренегическо-холинергическая регуляция обмена веществ и функций сердца // Достижения кардиологии.- М., 1959.-С.67−152.
  228. Ramos E.J., Meguid М.М., Campos А.С., Coelho J.C. Neuropeptide Y, alpha-melanocyte-stimulating hormone, and monoamines in food intake regulation // Nutrition. 2005, V.21, № 2. — P.269−279.
  229. Reed S.F., Ohel G., David R., Porges S.W. A neural explanation of fetal heart rate patterns: A test of the polyvagal theory // Dev. Psychobiol.- 1999, N. 35.-P. 108−118.
  230. Reichelt W.H., Liu Y., Luna L., Eigjo K., Reichelt K.L. Early oncogene mRNA expression in HT-29 cells treated with the endogenous colon mitosis inhibitor pyroglutamyl-histidyl-glycine // Anticancer Res. 2002, V.22, № 2A.-P. 991−996.
  231. Reul J.M., Bilang-Bleuel A., Droste S., Linthorst A.C., Holsboer F., Gesing A. New mode of hypothalamic-pituitary-adrenocortical axis regulation: significance for stress-related disorders // Z. Rheumatol.- 2000.-V.59. Suppl. 2.- P. 22−25.
  232. Reynolds E.S. The use of lead citrate at high pH as an electronopaque stain in electron microscopy // J. Cell. Biol. 1963, V. 17.- P.208−212.
  233. Rivier C., Plotsky P.M. Mediation by corticotropin-releasing factor of adenohypophysial hormone secretion // Annu. Rev. Physiol.- 1986, № 48.-P.475189.
  234. Roberts M.P., Hanaway J., Morest O.K. Atlas of the human brain in section. Philadelphia, 1987. — 134 p.
  235. Roman O., Seres J., Pometlova M., Jurcovicova J. Neuroendocrine or behavioral effects of acute or chronic emotional stress in Wistar Kyoto (WKY) and spontaneously hypertensive (SHR) rats // Endocr. Regul. -2004, V.38, № 4. -P.151−155.
  236. Rosenfeld P., Suchecki D., Levine S. Multifactorial regulation of the hypothalamic-pituitary-adrenal axis during development // Neurosci. Biobehav. Rev. 1992, V.16. -P.553−568.
  237. Ruis M.A., te Brake J.H., Engel B., Buist W.G., Blokhuis H.J., Koolhaas J.M. Adaptation to social isolation. Acute and long-term stress responses of growing gilts with different coping characteristics // Physiol. Behav. 2001, V.73, № 4. — P.541−551.
  238. Samson W.K., McDonald J.K., Lumpkin M.D. Naloxon-induced dissociation of oxytocin and prolactin release // Neuroendocrinology. 1985, V.40. -P. 68−71.
  239. Sanchez-Toscano F., Sanchez M.M., Garzon J. Changes in the number of dendritic spines in the medial preoptic area during a premature long-term social isolation in rats //Neurosci. Lett. 1991, № 122. — P.1−3.
  240. Schwerin M., Kanitz E., Tuchscherer M., Brussow K.P., Nurnberg G., Otten W. Stress-related gene expression in brain and adrenal gland of porcine fetuses and neonates // Theriogenology. 2005, V.63, № 4, — P. 1220−1234.
  241. Selye H. A syndrome prodused by diverse noxions agents // Nature.- 1936.-Vol. 138.-P.32.
  242. Sentagothai J. Anatomical considerations. In: Hypothalamic control of the anterior pituitary. Budapest: Akad. Kiado, 1962.- P. 19−105.
  243. Severson C.A., Wang W., Pieribone V.A., Dohle C.I., Richerson G.B. Midbrain serotoninergic neurons are central pH chemoreceptors. Neuroscience, Nov., V.6, N. 11, 2003.- P. l 139−1140.
  244. Sherwood N.M., Timiras P. S. A stereotaxic atlas of the developing rat brain. Los Angelos, London, 1970. — 327 p.
  245. Shirayama Y., Ishida H., Iwata M., Hazama G.I., Kawahara R., Duman R.S. Stress increases dynorphin immunoreactivity in limbic brain regions and dynorphin antagonism produces antidepressant-like effects // J. Neurochem. -2004, V.90, № 5. P. 1258−1268.
  246. R.L., Angevine J.B., Pierce E.T. «Atlas of the mouse brain and spinal cord» / Cambridge, 1971. 372 p.
  247. Simerly R.B. Wired on hormones: endocrine regulation of hypothalamic development // Curr. Opin. Neurobiol. 2005, V.15, № 1. — P.81−85.
  248. Spalding T.W., Jeffers L.S., Porges S.W., Hatfield B.D. Vagal and cardiac reactivity to psychological stressors in trained and untrained men // Med. Sci. Sports. Exerc. -2000, V.32, № 3.-P. 581−591.
  249. Stahnke T., Richter-Landsberg C. Triethyltin-induced stress responses and apoptotic cell death in cultured oligodendrocytes // Glia. 2004, V.46, N.3.-P.334−344.
  250. Stanton M.E., Gutierrez Y.R., Levine S. Maternal deprivation potentiates pituitary-adrenal stress responses in infant rats // Behav. Neurosci. -1988, № 102.-P.692−700.
  251. Stornetta R.L., Guyenet P.G. Distribution of glutamic acid decarboxylase mRNA-containing neurons in rat medulla projecting to thoracic spinal cord in relation to monoaminergic brainstem neurons // J. Comp. Neurol. -1999, V.407, N.3.- P.367−380.
  252. Stys P.K., Jiang Q. Calpain-dependent neurofilament breakdown in anoxic and ischemic rat central axons // Neurosci. Lett. 2002, V.328, N.2. -P.150−154.
  253. Suchecki D., Rosenfeld P., Levine S. Maternal regulation of the hypothalamic-pituitary-adrenal axis in the infant rat: the roles of feeding and stroking // Dev. Brain. Res. 1993, № 75.-P.185−192.
  254. Sutcliffe J. G., de Lecea L. The hypocretins: setting the arousal threshold // Nature Reviews Neuroscience, 2002, V. 3, № 5.- P. 339 -349.
  255. Swaab D.F. The human hypothalamo-neurohypophyseal system in health and disease // Prog. Brain Res.- 1998, V. 119.- P. 577−618.
  256. Takahashi K.A., Cone R.D. Fasting induces a large, leptin-dependent increase in the intrinsic action potential frequency of orexigenic arcuate nucleus neuropeptide Y/Agouti-related protein neurons // Endocrinology. 2005, V. 146, № 3.-P. 1043−1047.
  257. Takahashi K., Wang Q.P., Guan J.L., Kayama Y., Shioda S., Koyama Y. State-dependent effects of orexins on the serotonergic dorsal raphe neurons in the rat // Regul. Pept. 2005, V.126, № 1−2. — P.43−47.
  258. Takuma K., Baba A., Matsuda T. Astrocyte apoptosis: implications for neuroprotection // Prog. Neurobiol. 2004, V.72, N.2.-P. 111 -127.
  259. Telleria-Diaz A., Grinevich V.V., Jirikowski G.F. Colocalization of vasopressin and oxytocin in hypothalamic magnocellular neurons in water deprived rats//Neuropeptides. -2001, V. 35. -P.162−167.
  260. Tolcos M., Tikellis C., Rees S., Cooper M., Wookey P. Ontogeny of calcitonin receptor mRNA and protein in the developing central nervous system of the rat // J. Comp. Neurol. 2003, V.456. №l.-P.29−38.
  261. Tsigos C., Chrousos G.P. Hypothalamic-pituitary-adrenal axis, neuroendocrine factors and stress // J. Psychosom. Res. 2002, V.53, № 4. — P.865−871.
  262. Vazquez D.M., Akil H. Development of pituitary proopiomelanocortin gene and peptide expression: characterization and effect of repeated intermittent maternal isolation // Neuroendocrinology, 1992, № 56.-P. 320−330.
  263. Viveros M.P., Hernandez R., Martinez I., Gonzalez P. Effects of social isolation and crowding upon adrenocortical reactivity and behavior in the rat //Rev. Esp. Fisiol. 1988, № 44. P.315−322.
  264. Wagner D., Salin-Pascual R., Greco M.A., Shiromani P.J. Distribution of hypocretin-containing neurons in the lateral hypothalamus and C-fos-immunoreactive neurons in the VLPO // Sleep Res. Online. 2000, V.3, N.l. -P.35−42.
  265. Walton K.G., Schneider R.H., Nidich S. Review of controlled research on the transcendental meditation program and cardiovascular disease: risk factors, morbidity, and mortality // Cardiol. Rev.- 2004, V.12, N.5.-P.262−266.
  266. Wang L., Martinez V., Vale W., Tache Y. Fos induction in selective hypothalamic neuroendocrine and medullary nuclei by intravenous injection of urocortin and corticotropin-releasing factor in rats // Brain Res. 2000, V. 855, N.l. — P.47−57.
  267. Wigger A., Neumann I.D. Endogenous opioid regulation of stress-induced oxytocin release within the hypothalamic paraventricular nucleus is reversed in late pregnancy: a microdialysis study // Neuroscience. 2002, V.112, № 1. — P. 121−129.
  268. Willmott N.J., Wong K., Strong A.J. A fundamental role for the nitric oxide-G-kinase signaling pathway in mediating intercellular Ca (2+) waves in glia. J. Neurosci. -2000, V.20, N.5.-P. 1767−1779.
  269. Wotjak C.T., Landgraf R., Engelmann M. Vasopressin is differentially released within the paraventricular and supraoptic nuclei of the rat brain in response to emotional and physical stressors // Gottingen Neurobiol. Rep.-1996.-V.2.-P.766.
  270. Xi D., Kusano K., Gainer H. Quantitative analysis of oxytocin and vasopressin messenger ribonucleic acids in single magnocellular neurons from supraoptic nucleus of rat hypothalamus // Endocrinology. 1999, V.140. — P. 46 774 682.
  271. Xu F., Frazier D.T. Role of the cerebellar deep nuclei in respiratory modulation // Cerebellum. 2002, V. l, N.1.-P.35−40.
  272. Xu F., Zhou T., Gibson T., Frazier D.T. Fastigial nucleus-mediated respiratory responses depend on the medullary gigantocellular nucleus // J. Appl. Physiol. 2001, V. 91, N.4.-P.1713−1722.
  273. Yoshioka M., Togashi H., Yamaguchi T., Matsumoto M. Emotional stress and functional development of the rat brain // Nippon Yakurigaku Zasshi. -2005, V.125, № 2. P.77−82.
  274. Yuan L., Brewer C., PiaFf D. Immediate-early Fos protein levels in brainstem neurons of male and female gonadectomized mice subjected to cold exposure // Stress. 2002, V.5, N.4.-P.285−294.
  275. Ziegler D.R., Cullinan W.E., Herman J.P. Organization and regulation of paraventricular nucleus glutamate signaling systems: N-methyl-D-aspartate receptors // J. Comp. Neurol. 2005, V.484, N.l. — P.43−56.
  276. Zhang J.F., Zheng F. The role of paraventricular nucleus of hypothalamus in stress-ulcer formation in rats // Brain Res. 1997, V. 761, N.2. -P. 203−209.
  277. Zheng H., Patterson L.M., Phifer C.B., Berthoud H.R. Brain stem melanocortinergic modulation of meal size and identification of hypothalamic POMC projections // Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 2005, V.289, № 1. — P.247−258.
  278. Zolnierczuk-Kieliszek D., Pacian A., Kozlowska-Panek E. Cardiovascular disease risk factors in the population of secondary school students in Ciechanow//Ann. Univ. Mariae Curie Sklodowska.- 2003-V.58, N.l. P. 89−96.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!