Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Идентификация сортов косточковых культур с помощью ПЦР — анализа

Диссертация: Идентификация сортов косточковых культур с помощью ПЦР — анализа
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Косточковые культуры, как и большинство плодовых растений, имеют очень продолжительный ювенильный период, исчисляемый годами. Для описания морфологических характеристик, таких как форма плода, его окраска, вкусовые качества, химический состав и так далее, необходимо 5−6 лет, чтобы растение вступило в период плодоношения. Только на данной фазе развития создаются условия для оценки всех… Читать ещё >

Содержание

  • Используемые сокращения
  • Глава 1. Идентификация косточковых культур на основе молекулярно-генетических маркеров
    • 1. 1. Типы молекулярно-генетических маркеров
    • 1. 2. Морфологические маркеры
    • 1. 3. Биохимические маркеры
    • 1. 4. Маркеры ДНК
      • 1. 4. 1. ИРЬР — маркеры
      • 1. 4. 2. ПНР
      • 1. 4. 3. ИАРО — маркеры
      • 1. 4. 4. АРЬР — маркеры
      • 1. 4. 5. БЗИ. — маркеры
      • 1. 4. 6. КБЯ — маркеры
      • 1. 4. 7. Ретротранспозоны
      • 1. 4. 8. БЫР — маркеры
    • 1. 5. Выделение растительной ДНК
    • 1. 6. Подбор праймеров
  • Глава 2. Материалы и методы
    • 2. 1. Объекты исследования
    • 2. 2. Методы исследования
      • 2. 2. 1. Выделение растительной ДНК
      • 2. 2. 2. Амплификация ДНК
      • 2. 2. 3. Электрофорез в агарозном геле и визуализация продуктов амплификации
    • 2. 3. Обработка результатов анализа
  • Глава 3. Результаты исследований и их обсуждение
    • 3. 1. Модификация протокола выделения ДНК из растений косточковых культур (слива, вишня, черешня)
    • 3. 2. Выбор праймеров
    • 3. 3. Идентификация косточковых культур
      • 3. 3. 1. Идентификация сортов и ценных форм косточковых культур
      • 3. 3. 2. Обнаружение гибридов косточковых культур
      • 3. 3. 3. Кластерный анализ родственных связей косточковых культур
    • 3. 4. Характеристика эффективности праймеров и их комбинаций
    • 3. 5. Экономические затраты на проведение анализов для сортовой идентификации
    • 3. 6. Обсуждение результатов
  • Выводы
  • Рекомендации для практического использования

Идентификация сортов косточковых культур с помощью ПЦР — анализа (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Косточковые культуры, как и большинство плодовых растений, имеют очень продолжительный ювенильный период, исчисляемый годами. Для описания морфологических характеристик, таких как форма плода, его окраска, вкусовые качества, химический состав и так далее, необходимо 5−6 лет, чтобы растение вступило в период плодоношения. Только на данной фазе развития создаются условия для оценки всех морфологических характеристик, используемых впоследствии для проведения апробационных мероприятий. Кроме того, для регистрации сорта необходимо его сравнение со стандартным сортом при тех же самых условиях выращивания. А в связи с быстрым развитием селекции ежегодно появляются десятки новых сортов плодовых растений, требующих паспортизации.

Возникшие проблемы могут быть решены применением молекулярных маркеров на основе ДНК. Эти маркеры используются на очень ранних фазах развития растения. Так, применение данных маркеров для идентификации молодых сеянцев в первый год развития позволит не дожидаться начала плодоношения. Для выделения ДНК подходит любой растительный материал — кора, корневые отростки, листья, почки, цветки, пыльца, и даже гербарий. Препараты ДНК хранятся длительное время и многократно применяются для анализа.

В отличие от морфологических признаков, которые варьируют при разных погодных условиях, ДНК — маркеры не зависят от влияния окружающей среды. По сравнению с другими молекулярными маркерами (белковыми или иными биохимическими) маркеры на основе ДНК обладают огромным, «почти безграничным», потенциалом полиморфизма.

ДНК — маркеры позволяют ускорить селекционный процесс, так как идентификация исходного материала и анализ результатов скрещивания могут быть выполнены в достаточно короткий период времени. Таким образом, облегчается подбор родительских пар для скрещивания, поиск родительского материала в гибридных формах и анализ интрогрессии полезных признаков от исходных форм потомкам.

Маркирование сортового материала обеспечит контроль за его однородностью и стандартностью при закладке маточных насаждений, сортовой прочистке садов и при реализации посадочного материала.

ДНК — технологии позволят оценить значительное разнообразие аборигенных и интродуцированных, дикорастущих и культурных форм растений и на основе молекулярных исследований создать коллекцию зародышевой плазмы для селекционного использования Применение молекулярных подходов в изучении филогении уточнит спорные вопросы систематики плодовых культур. Установление родственных связей прояснит происхождение многих сортов с неизвестными родословными.

Наконец, молекулярная идентификация и паспортизация сортов и ценных форм плодовых культур расширит возможности системы защиты авторских прав селекционеров.

Научная новизна. Адаптирована методика выделения ДНК из различных тканей и органов косточковых культур (сливы, алычи, вишни и черешни), модифицирован буфер для лизирования растительных тканей. Предложено использовать для экстрагирования ДНК из саженцев растений, находящихся в состоянии покоя, камбиальные ткани растений.

Отобраны праймеры и их комбинации для проведения сортовой идентификации внутри каждого вида. Определены оптимальные температурные режимы отжига олигонуклеотидов. Выполнена идентификация сортов сливы, алычи, вишни и черешни. Впервые получены данные о сортовом полиморфизме косточковых культур на основе результатов молекулярных исследований. Выявлены праймеры и их комбинации, позволяющие получить уникальные профили ДНК каждого сорта. У ряда сортов получены уникальные фрагменты. Проведена оценка изученных праймеров и их комбинаций на пригодность для проведения сортовой идентификации косточковых культур. Впервые продемонстрированы данные родства сортов косточковых культур на уровне анализа ДНК.

Практическая значимость. Предложена методика, включающая протокол выделения ДНК и набор необходимых праймеров, позволяющая проводить сортовую идентификацию косточковых культур. Получены результаты для создания базы данных сортов сливы, алычи, вишни и черешни, которая в дальнейшем позволит проводить сортовую идентификацию, оценивать гибридные формы и выполнять анализ родословных различных образцов растений. Уникальные наборы фрагментов ДНК сортов косточковых культур помогут осуществлять независимую экспертную оценку сортов с целью защиты прав селекционеров. Выявленное генетическое родство сортов может быть использовано для уточнения вопросов их происхождения.

Апробация работы. Материалы исследований доложены на III Московском международном конгрессе «Биотехнология: состояние и перспективы развития» (Москва, 14−18 марта 2005 г.), международной научно-практической конференции «Развитие наследия И. В. Мичурина и подготовка кадров» (Мичуринск — наукоград, 8−9 сентября 2005 г.), на I Всероссийской конференции «Биотехнология как инструмент сохранения биоразнообразия растительного мира» (Волгоград, 26−29 августа 2006 г.), на 7-ой молодежной научной конференции (Москва, 4 апреля 2007 г.), на заседаниях Ученого совета и секции ягодных культур ГНУ ВСТИСП (2004 -2007 гг.).

Публикации. По материалам диссертации опубликовано шесть научных работ.

Выводы.

1. В результате проведенных исследований показана возможность использования маркерной системы на основе анализа полиморфизма умеренно повторяющихся последовательностей для сортовой и видовой идентификации косточковых культур (слива, алыча, вишня, черешня).

2. Для косточковых культур модифицирована методика выделения ДНК с использованием оригинального лизирующего буфера и показана эффективность ее использования при проведении сортовой идентификации.

3. Для выделения ДНК, пригодной для ПЦР — анализа, наиболее эффективным оказалось применение коммерческого набора для экстракции ДНК Diatom DNA Prep 200 и введение в состав лизирующего буфера сорбитола.

4. Получение четких и воспроизводимых профилей ампликонов сортов сливы, алычи, вишни и черешни обеспечивают системы праймеров Paw S5, Paw S6, Paw Sll, Paw S16, Paw S5 + Paw S6, Paw S5 + Paw SI 1, Paw S6 + Paw SI 1, Paw S6 + Paw S16, Paw SI 1 + Paw S16.

5. Сортовая идентификация сортов сливы и алычи успешно выполняется совместным использованием комбинаций праймеров Paw S5 + Paw S6 и Paw S6 + Paw SI6, сортов черешни — 5-тью праймерами и комбинациями праймеров (Paw S5, Paw SI6, Paw S5 + Paw S6, Paw S5 + Paw SI 1, Paw S6 + Paw SI6), вишни — 3-мя (Paw SI6, Paw S5 + Paw S6, Paw S6 + Paw SI6).

6. Наиболее эффективными для идентификации любого сорта сливы, алычи, вишни или черешни оказались комбинации праймеров Paw S5 + Paw S6 и Paw S6 + Paw SI6.

7. У сортов сливы домашней (Евразия 21, Нарач, Величавая, Венгерка московская), алычи гибридной (Кубанская комета, Шатер), сливы китайской (Красный шар, Скороплодная), вишни обыкновенной (Склянка розовая, Гриот московский, Память Еникеева, Память Сахарова, Ширпотреб черная), войлочной вишни Натали, черешни (Орловская янтарная, Мулатка, Крымская, Фатеж, Гастинец, Итальянка) в профилях ДНК было выявлено 32 уникальных фрагмента ДНК, которые предоставляют дополнительные возможности для проведения сортовой идентификации.

8. В профилях ДНК сортов сливы, алычи, вишни и черешни определены 29 мономорфных фрагментов для проведения видовой идентификации косточковых культур. Установлено, что комбинация праймеров Paw S5 + Paw S6 различает культуры по полиморфным фрагментам. Однозначную идентификацию косточковых культур обеспечивает праймер Paw SI6.

9. Использованные системы праймеров позволили провести кластеризацию сортов и построить дендрограммы, отражающие родословные изученных сортов и их видовую принадлежность.

10. Материальные затраты на проведение сортовой идентификации 100 образцов косточковых культур составляют в среднем 40 086,62 рублей, на проведение сортовой идентификации одного образца — 400,87 рублей.

Рекомендации для практического использования.

1. Для экономии средств, времени и трудовых ресурсов использовать предложенную нами методику идентификации косточковых культур на разных этапах селекционных программ от подбора родительских форм до апробационных мероприятий при Госсортоиспытании.

2. Для получения качественных препаратов ДНК использовать коммерческий набор Diatom DNA Prep 200 производства ООО «Компания Биоком» с модификацией лизирующего буфера.

3. В качестве растительного материала для выделения ДНК у саженцев плодовых растений косточковых культур, находящихся в состоянии покоя, использовать камбиальные ткани.

4. При проведении сортовой идентификации косточковых культур использовать комбинации праймеров Paw S5 + Paw S6 и Paw S6 + Paw SI6, видовой идентификации — праймер Paw SI6.

5. Созданный сортовой каталог электрофореграмм косточковых культур использовать для паспортизации сортов, а затем и для защиты прав селекционеров.

Показать весь текст

Список литературы

  1. , Ю.П. Мономорфная видоспецифичная ДНК, выявляемая в полимеразной цепной реакции со случайными праймерами / Ю. П. Алтухов, А. Б. Абрамова // Генетика. 2000. — Т.36. — № 12. — С.1674−1681.
  2. , Ю.П. Генетический мономорфизм вида и его биологическое значение / Ю. П. Алтухов, Ю. Г. Рычков // Журн. Общ. Биол. 1972. — Т.ЗЗ. — С.281−300.
  3. , Ю.П. Полиморфизм ДНК в популяционной генетике / Ю. П. Алтухов, Е. А. Салменкова // Генетика. 2002. — Т.38. — № 9. — С.1173−1195.
  4. , В.А. ДНК маркеры в селекции картофеля / В. А. Бирюкова,
  5. B.C. Зайцев, Э. Е. Хавкин, JI.M. Хромова, И. А. Шилов // Достижения науки и техники АПК. 2003. — № 10. — С.38−41.
  6. , С.А. Полимеразная цепная реакция с универсальными праймерами для изучения геномов / С. А. Булат, O.K. Кобаев, Н. В. Мироненко, Ф. М. Ибатуллин, JI.A. Лучкина, A.B. Суслов // Генетика. 1992. — Т.28. — № 5.1. C.19−28.
  7. Генофонд вишни (Cerasus Mill.) в северных широтах. Каталог коллекции ВИР / РАСХН, ГНЦ РФ ВИР. Вып. 760. — С-Пб., 2004. — 64с.
  8. , В.И. Генетика изоферментов животных и растений / В. И. Глазко, И. А. Созинов. Киев: Урожай, 1993. — 528с.
  9. , С.А. Использование молекулярных маркеров для анализа генома растений / С. А. Гостимский, З. Г. Кокаева, В. К. Боброва // Генетика. 1999. — Т.35. -№ 11.- С.1538−1549.
  10. , В.В. Молекулярные маркеры ДНК в изучении филогении и систематики / В. В. Гречко // Генетика. 2002. — Т.38. — № 8. — С.1013−1033.
  11. Гут, Р. Т. Характерные особенности выделения суммарной ДНК из листьев и почек древесных растений при изучении генетического полиморфизма / Р. Т. Гут, М. В. Радченко, Г. Т. Криницкий // ИВУЗ. Лесной журнал. 2005. — № 5. — С.25−30.
  12. , Т.В. Возможности использованияБЯ ПЦР — анализа в селекции хмеля обыкновенного (НшшЬб 1ири1иБ Ь.) / Т. В. Данилова, Г. И. Карлов // Актуал. пробл. генетики. — М., 2003. — Т.2. — С. 115−117.
  13. , Д.Б. Быстрая и экономичная технология 11АРВ анализа растительных геномов / Д. Б. Дорохов, Э. Клоке // Генетика. — 1997. — Т.ЗЗ. — № 4. — С.443−450.
  14. , Д.Б. ДНК идентификация: проблемы и перспективы / Д. Б. Дорохов, A.M. Сеитова, А. Н. Игнатов, И. Л. Цветков, Т. П. Супрунова, М. Н. Лаптева // Селекция и семеноводство. — 1999. — № 4. — С.44−46.
  15. , А.И. Есть и черешня зимостойкая / А. И. Евстратов // Приусадебное хозяйство. 1998. — № 9. — С.28−30.
  16. , Х.К. Биологические особенности сливы и выведение новых сортов / Х. К. Еникеев. М.: Изд-во АН СССР, 1960. — 322с.
  17. , Г. В. Отдаленная гибридизация косточковых плодовых растений. М.: Агропромиздат, 1985. — 280с.
  18. , М.В. Сравнение многолетней ржи методом ПЦР -амплификации случайных и известных последовательностей / М. В. Забродина, A.A. Шаденков, Э. Е. Хавкин // Биотехнология. 1998. — Т.З. -С.82−86.
  19. , B.C. Идентификация генотипов растений с помощью ПЦР -анализа рассеянных повторяющихся последовательностей R 173 / B.C. Зайцев, Э. Е. Хавкин // Докл. РАСХН. 2001. — Т.2. — С.3−5.
  20. , B.C. ДНК генотипирование сортообразцов вишни и черешни / B.C. Зайцев, Д. Н. Мицых, Э. Е. Хавкин // С. — х. биол. — 2005. — № 3. — С. 123 125.
  21. , П.Л. Геномная дактилоскопия: гипервариабельные локусы и генетическое маркирование / П. Л. Иванов // Мол. биол. 1989. — Т.23. -Вып. 2.-С.341.
  22. , A.B. Полный сортовой каталог средней полосы России / A.B. Исачкин. М.: ЭКСМО — Пресс, Лик пресс, 2001. — 512с.
  23. , Р.Н. Типы молекулярно-генетических маркеров и их применение / Р. Н. Календарь, В. И. Глазко // Физиология и биохимия культурных растений. 2002. — Т.34. — № 4. — С.279−296.
  24. Каталог. Плодовые и ягодные культуры России /ВНИИС им. И. В. Мичурина. Воронеж: Кварта, 2001. — 298с.
  25. Каталог. Сорта плодовых и ягодных культур, выведенных во ВСТИСП / под общ. ред. И. М. Куликова. М., 2006. — 116с.
  26. Каталог. Сорта плодовых, ягодных и цветочно-декоративных культур / РАСХН, ВСТИСП / ред. В. И. Кашин. М.: ИНТЕРМЕКС, 2000. — 160с.
  27. Каталог мировой коллекции ВИР. Выпуск 711. Селекционные достижения ВИР по плодовым культурам за 75 лет / сост. A.A. Юшев. -С.-Пб.: ВИР, 2000.- 100с.
  28. , H.A. Полиморфизм длины рестрикционных фрагментов ДНК и его использование в генетике и селекции растений / H.A. Картель, М. И. Просняк // С. х. биол. -1991. — № 5. — С.41−48.
  29. , H.H. Перспективы использования молекулярных маркеров в селекции кормовых культур / H.H. Козлов, Б. П. Михайличенко, С. И. Ивашута, A.A. Шаденков // С. х. биол. — 1997. — № 3. — С.68−74.
  30. , A.B. Белки растений как генетические маркеры / A.B. Конарев. -М.: Наука, 1983. 320с.
  31. , A.B. Белки семян как маркеры в решении проблем генетических ресурсов растений, селекции и семеноводства / A.B. Конарев, В. Г. Конарев, Н. К. Губарева, Т. И. Пенева // Цитология и генетика. 2000. -Т.34. — № 2. — С.91−104.
  32. , В.Н. Генетическое картирование с помощью ПДРФ анализа у растений / В. Н. Корзун, H.A. Картель // Физиол. и биохим. культур, раст. -1994. — Т.26. — № 6. — С.545−541.
  33. , C.B. Молекулярные маркеры в генетическом картировании растений / C.B. Малышев, H.A. Картель // Мол. биол. 1997. — Т.31. — № 2. -С. 197−208.
  34. A.M. Вишня и черешня / A.M. Михеев, Н. Т. Ревякина. М.: Изд. дом МСП, 2004. — 112с.
  35. A.M. Слива, алыча, терн / A.M. Михеев, B.C. Симонов. М.: Изд. дом МСП, 2005. — 144с.
  36. , B.C. О таксономии Cerasus pumila (L.) Michx. и C. besseyi (Bailey) Linell (Rosaceae) / B.C. Нижников // Ботан. журн. 1977. — T.62. -№ 4. — C.533−536.
  37. Особенности изучения помологических признаков видов и сортов рода Prunus Mill в связи с созданием генетической и стержневой коллекций (Методические указания) / под ред. В. А. Драгавцева. С.-Пб., 2001. — 88с.
  38. , С.А. Изомеры хлорогеновой кислоты у вишни / С. А. Острейко // Вест. с. х. науки. — 1969. — № 3. — С.61−64.
  39. , Н.С. Наследование изоферментов пероксидазы у потомства Prunus domart / Н. С. Пономаренко // Отдаленная гибридизация плодово-ягодных и других многолетних растений. Кишинев, 1994. -С.31−32.
  40. Программа и методика сортоизучения плодовых, ягодных и орехоплодных культур / под общ. ред. E.H. Седова, Т. П. Огольцовой. -Орел: Изд-во ВНИИСПК, 1999. 608с.
  41. , A.C. Генетический анализ / A.C. Серебровский. М., 1970.- 342с.
  42. , Ю.М. Анализ генетических дистанций методом ПДРФ у винограда / Ю. М. Сиволап, Т. Г. Вербицкая, М. И. Тулаева, И. А. Барышева // Цитология и генетика. 1993. — Т.27. — № 6. — С.24−28.
  43. , В.В. Использование ISSR маркеров для молекулярно-генетической идентификации и паспортизации сортов малины / В. В. Соболев, Г. И. Карлов, А. Г. Соболева, A.B. Озеровский, И. В. Казаков, A.A. Феськов // С. — х. биол. — 2006. — № 5. — С.48−52.
  44. , В.В. Сравнение методов RAPD и ISSR — ПЦР при исследовании молекулярно-генетического полиморфизма сортов и видов малины / В. В. Соболев, А. Г. Соболева // Вестн. БГСА. — 2005. — С.3−10.
  45. , A.A. Полиморфизм белков и его значение в генетике и селекции / A.A. Созинов / отв. ред. Л. И. Корочкин. М.: Наука, 1983. — 272с.
  46. В.Ф. Новые сорта косточковых культур, выведенные в СССР /
  47. B.Ф. Смирнов. М.: Наука, 1972. — 258с.
  48. Сорта плодовых, ягодных, орехоплодных культур и винограда селекции института HAH Белоруси / гл. ред. В. А. Самусь. Самохволовичи, 2003. -80с.
  49. , Г. Е. Полиморфизм длин рестрикционных фрагментов ДНК. Методология и свойства. Обзор / Г. Е. Сулимова // С. х. биол. — 1989. -№ 1. — С.60−67.
  50. , Г. Е. Выделение ДНК из тканей высших растений / Г. Е. Сулимова, А. Г. Слюсаренко / Строение ДНК и положение организмов в системе / под ред. А. Н. Белозерского, A.C. Антонова. М., 1972. — С. 19−34.
  51. , A.B. Применение ДНК маркеров для оценки генетического разнообразия гибридных сеянцев, сортов и видов яблони / A.B. Фортэ // Дисс. к. с. х. н. — Мичуринск, 2002. — 118с.
  52. , A.B. Применение ДНК маркеров для оценки генетического полиморфизма яблони / A.B. Фортэ, Н. И. Савельев, Д. Б. Дорохов. -Мичуринск наукоград: Изд-во ГНУ ВНИИИГиСПР им. И. В. Мичурина, 2004.- 112с.
  53. , Э.Е. Молекулярные маркеры в растениеводстве / Э. Е. Хавкин //
  54. C. х. биол. -1997. — № 5. — С.3−21.
  55. , Э.Е. Молекулярная селекция растений: ДНК технологии создания новых сортов сельскохозяйственных культур / Э. Е. Хавкин // С. -х. биол. 2003. — № 3. — С.26−41.
  56. , Ю.В. ДНК фингерпринтинг и анализ генетического разнообразия у растений / Ю. В. Чесноков // С. — х. биол. — 2005. — № 1. -С.20−40.
  57. Aharon, A. DNA microarrays for functional plant genomics / A. Aharon, 0. Vorst // Plant Mol. Biol. 2001. — V.48. — P.99−118.
  58. Antonius Klemova, K. Molecular markers in Rubus (Rosaceae) research and breeding / K. Antonius — Klemova // J. Hortic. Sci. BioTechnol. — 1999. — V.74. -№ 2.-P. 149−160.
  59. Aranzana, M.J. Development and variability analysis of microsatellite markers in peach / MJ. Aranzana, J. Garsia Mas, J. Carbo, P. Arus // Plant Breed. -2002. — V. 121. — P.87−92.
  60. Arulsekar, S. Isozyme analysis procedures for stone fruits, almond, grape, walnut, pistachio and fig / S. Arulsekar, D.E. Parfitt // HortSci. 1986. — V.21. -P.928−933.
  61. Aruna, M. Genetic relatedness among rabbiteye blueberry (Vaccinium ashei) cultivars determined by DNA amplification using single primers of arbitrary sequence / M. Aruna, P. Ozias Akins, M.E. Austin, G. Kochert // Genome. -1993. — V.36. — P.971−977.
  62. Beaver, J.A. Isozyme diversity in sour, sweet and ground cherry / J.A. Beaver, A.F. Iezzoni, C.W. Ramm // Theor. Appl. Genet. 1995. — V.90. — P.847−852.
  63. Becker, J. Combined mapping of AFLP and RFLP markers in barley / J. Becker, P. Vos, M. Kuiper, F. Salamini, H. Heun // Mol. Gen. Genet. 1995. -V.249. — P.65−73.
  64. Bellini, E. Genetic relationships in japanese plum cultivars by molecular markers / E. Bellini, E. Giordani, V. Nencetti, D. Paffetti // Acta Hort. 1998. -V.478. — P.53−61.
  65. Ben Hayyim, G. Evaluation of isozyme system in Citrus to facilitate identification of fusion products / G. Ben — Hayyim, A. Shani, A. Vardi // Theor. Appl. Genet. — 1982. — V.64. — P. 1−5.
  66. Botstein, D. Construction of a genetic linkage map in man using RFLP / D. Botstein, R.L. White, M. Scolnick, R.W. Davis // Am. J. Human Genet. 1980. -V.32.-P.314−331.
  67. Byrne, D.H. Electrophoretic characterization of diploid plums of the southeastern United States / D.H. Byrne, T.G. Littleton // J. Amer. Soc. Hort. Sei. 1988. — V. l 13. — P.918−924.
  68. Byrne, D.H. Interspecific hybrid verification of plum x apricot hybrids via isozymes analyses / D.H. Byrne, T.G. Littleton // Hort. Sei. 1989. — V.24. -P.132−134.
  69. Byrne, D.H. Characterization of isozyme variability in apricots / D.H. Byrne, T.G. Littleton // J. Amer. Soc. Hort. Sei. 1989. — V. l 14. — P.674−678.
  70. Caetano Anolles, G. DNA fingerprinting: a strategy for genome analysis / G. Caetano — Anolles, B.J. Bassam, P.M. Gresshoff // Plant. Mol. Biol. Rep. -1991. — V.9. — P.292−305.
  71. Cantini, C. DNA fingerprinting of tetraploid cherry germplasm using simple sequence repeats / C. Cantini, A.F. Iezzoni, W.F. Lamboy, M. Botizki, D. Struss // J. Amer. Soc. Hort. Sei. 2001. — V. l26. — P.205−209.
  72. Chaparro, J.S. Targetted mapping and linkage analysis of morphological, isozyme and RAPD markers in peach / J.S. Chaparro, D.J. Werner, D. O’Malley, R.R. Sederoff// Theor. Appl. Genet. 1994. — V.87. — P.805−815.
  73. Chevreau, E. Inheritance and linkage of isozyme loci in pear (Pyrus communis L.) / E. Chevreau, S. Leuliette, M. Gallet // Theor. Appl. Genet. 1997. — V.94. -P.498−506.
  74. Cipriani, G. Screening RAPD primers for molecular taxonomy and cultivar fingerprinting in the genus Actinidia / G. Cipriani, R. Di Bella, R. Testolin // Euphytica. 1996. — V.90. — № 2. — P.169−174.
  75. Chung, K. Classification of native and cultivated Pyrus species in Korea by isozyme band patterns / K. Chung, K. Ko // J. Korean Soc. Hortic. Sci. 1995. -V.36. — P.829−835.
  76. Colosi, J.C. Tissue grinding with ball bearing and vortex mixer for DNA exstraction / J.C. Colosi, B.A. Schaal // Nucl. Acid. Res. 1993. — V.21. — № 4. -P.1051−1052.
  77. Crowhurst, R.N. Restriction fragment length polymorphism in genus Actinidiaceae / R.N. Crowhurst, R. Lints, R.G. Atkinson, R, C. Gardner // Plant. Syst. Evol. 1990. — V.172. — P.193−203.
  78. Davis, T.M. Template mixing: a method of enhancing detection in interpretation of codominant markers / T.M. Davis, H. Yu, K.M. Haigis, P.J. McGowan // Theor. Appl. Genet. 1995. — V.91. — P.582−588.
  79. Degani, C. Enzyme polymorphism in mango / C. Degani, R. El Batsri, S. Gazit// J. Amer. Soc. Hort. Sci. — 1990. — V. l 15. — P.844−847.
  80. Degani, C. A comparison of genetic relationship measures in strawberry (Fragaria x ananassa Duck) based on AFLP, RAPD and pedigree data / C.
  81. Degani, L.J. Rowland, J.A. Saunders, S.C. Hokanson, E.L. Ogden, A. Golan-Goldhirsh, G.J. Galetta // Euphytica. 2001. — V. 117. — P. 1−12.
  82. Dellaporta, S.L. A plant DNA minipreparation: version II / S.L. Dellaporta, J. Wood, J.B. Hicks // Plant Mol. Biol. Rep. 1983. — V. l — P.19.
  83. Deng, Z.N. Identification of in vivo and in vitro lemon mutation mutants RAPD markers / Z.N. Deng, A. Gentile, E. Nicolosi, A. Domina Vardi, E. Tribulato // J. Hort. Sci. 1995. — V.70. — P. l 17−125.
  84. DeWald, M.G. Identification of pineapple cultivars by isozyme genotypes / M.G. DeWald, G.A. Moore, W.B. Sherman // J. Amer. Soc. Hort. Sci. 1988. -V.l 13. -P.935−938.
  85. Downey, S.L. Polymorphic DNA markers in black cherry (Prunus serotina) are identified using sequences from sweet cherry, peach and sour / S.L. Downey, A.F. Iezzoni // J. Amer. Soc. Hort. Sci. 2000. — V. l25. — № 1. — P.76−80.
  86. Doyle, J.J. A rapid DNA isolation procedure for small quantities of fresh leaf tissue/J.J. Doyle, J.L. Doyle //Phytochem. Bull. 1987. — V. 19. — P. l 1−15.
  87. Dunemann, F. Genetic relationships in Malus evaluated by RAPD «fingerprinting» of cultivars and wild species / F. Dunemann, R. Kahnau, H. Schmidt // Plant Breed. 1994. — V. l 13. — P.150−159.
  88. Edwards, K. A simple and rapid method for the preparation of plant genomic DNA for PCR analysis / K. Edwards, C. Johnstone, C. Thompson // Nucl. Acids Res. -1991. V. 19. — № 6. — P. 1349.
  89. Eldredge, L. Application of RFLP analysis to genetic linkage mapping in peaches / L. Eldredge, R. Ballard, W.W. Baird, A. Abbott, P. Morgens, A. Callahan, R. Scorza, R. Monet // Hort. Sci. 1992. — V.27. — P.160−163.
  90. Fang, D.Q. Development of molecular markers linked to a gene controlling fruit acidity in citrus / D.Q. Fang, C.T. Federici, M.L. Roose // Genome. 1997. — V.40. — P.841−849.
  91. Flavell, A.J. Retrotransposon based insertion polymorphism (RBIP) for high throughput marker analysis / A.J. Flavell, M.R. Knox, S.R. Pearse, T.H. Ellis et al. // Plant J. — 1998. — V. 16. — № 5. — P.643−650.
  92. Furnier, G.H. Evolution of avocados by DNA restriction fragment variation / G.H. Furnier, M. P. Cummings, M.T. Cleg // J. Hered. 1990. — V.81. — P. 183 188.
  93. Gannavarapu, M. Microsatellite markers in peach (Prunus persica (L.) Batsch): abundance and utility / M. Gannavarapu / MS thesis Clemson Univ. / eds. S.C. Clemsov. Clemson: Clemson Univ., 1998.
  94. Gawel, N. Chloroplast DNA restriction fragment length polymorphism (RFLPs) in Musa species / N. Gawel, R.L. Janet // Theor. Appl. Genet. 1991.- V.81. -P.783−786.
  95. Gerlach, N.K. Kettenreaktionen un Obstbau: Sortenidentifizierung mi Hilfe des DNA Fingerprinting / N.K. Gerlach, R. Stosser // Erwerbsobstbau. — 1998.- Jg.40. № 4. — S.103−106.
  96. Gianfranceschi, L. Simple sequence repeats for the genetic analysis of apple / L. Gianfranceschi, N. Seglias, R. Tarchini, M. Komjanc, C. Gessler // Theor. Appl. Genet. 1998. — V.96. — P.1069−1076.
  97. Goffreda, J.C. Inheritance of isozymes in peach x Prunus kansuensis and peach x Prunus davidiana hybrids / J.C. Goffreda, N.J.M. Amstrong, S.A. Mehlenbacher, N. Versa // Euphytica. -1991. V.54. — P.161−168.
  98. Goldring, A. Isozyme analysis of mature avocado embryos to determine outcrossing rate in a «Hass» plot / A. Goldring, S. Gazit, C. Degani // J. Amer. Soc. Hort. Sci. 1987. — V. l 12. — P.389−392.
  99. Gogorcena, Y. RFLPs for identification of grape cultivars / Y. Gogorcena, S. Arulsekar, A. Dandekar, D.E. Parfitt // HortSci. 1990. — V25. — P. 1081.
  100. Granger, A.R. Sweet cherry cultivar identification by leaf isoenzyme polymorphism / A.R. Granger, G.R. Clarke, J.F. Jackson // Theor. Appl. Genet.- 1993. V.86. — P.458−464.
  101. Gregor, D. Cultivar identification in Prunus domestica using random amplified polymorphic DNA markers / D. Gregor, W. Hartmann, R. Stosser // Acta Hort. 1994. — Y.359. — P.33−40.
  102. Gribbon, B.M. Phylogeny and transpositional activity of Tyl-copia group retrotransposons in cereal genomes / B.M. Gribbon, S.R. Pearce, R. Kalendar et al. // Mol. Gen. Genet. 1999. — V.26. — № 6. — P.883−891.
  103. Gu, W.K. Large-scale, cost-effective screening of PCR products in marker-assisted selection application / W.K. Gu et al. // Theor. Appl. Genet. 1995. -V.91. — № 3. — P.465−470.
  104. Guidet, F. Cloning and characterization of a new rye-specific repeated sequence / F. Guidet, P. Rogowsky, C. Taylor // Genome. 1991. — V.34. -P.81−87.
  105. Guilford, P. Microsatellites in Malus x domestica (apple): abundance, polymorphism and cultivar identification / P. Guilford, S. Prakash, J.M. Zhu, E. Rikkering, S. Gardiner, H. Bassett, R. Forster // Theor. Appl. Genet. 1997. -V.94. — P.249−254.
  106. Gupta, P.K. DNA chips, misroarrays and genomics / P.K. Gupta, J.K. Roy, M. Prasad // Current Sci. 1999. — V.77. — P.875−884.
  107. Gupta, P.K. Single nucleotide polymorphisms: a new paradigm for molecular marker technology and DNA polymorphisms with emphasis on their use in plants / P.K. Gupta, J.K. Roy, M. Prasad // Current Sci. 2001. — V.80. — P.524−535.
  108. Haghighi, K. DNA restriction fragment length variability in the genomes of highbush blueberry / K. Haghighi, J.K. Hancock // HortSci. 1992. — V.27. -P.44−47.
  109. Harada, T. DNA RAPDs detect genetic variation and paternity in Malus / T. Harada, K. Matsukawa, T. Sato, R. Ishikawa, H. Niizeki, K. Saito // Euphytica. — 1993. — V.65. — P.87−91.
  110. Hoepfner, A.-S. DNA fingerprinting useful for monitoring cell identity in micropropagated raspberries / A.-S. Hoepfner, H. Nybom, U. Carlsson, R. Franzen // Acta agricult., sect. B. 1993. — V.143. — P.53−57.
  111. Hormaza, J.I. Early selection in cherry combining RAPDs with embryo culture / J.I. Hormaza // Sci. Hort. 1999. — V.79. — № 1−2. — P.121−126.
  112. Hosaka, K. Peroxidase in various tissues for discrimination of two tuberose Solanum species / K. Hosaka, M. Matsubayasi, 0. Kamijima // Japan J. Bred. -1985. V.35. — P.375−382.
  113. Jarret, R.L. Determining the interspecific origins of clones within the «Saba» cooking banana complex / R.L. Jarret, R.E. Litz // HortSci. 1986. — V.21. -P.1433−1435.
  114. Jeffreys, A.J. Spontaneous mutation rates to new length alleles at tandem repetitive hypervariable loci in human DNA / A.J. Jeffreys, N.J. Royle, V. Wilson, Z. Wong //Nature. 1988. — V.332. — P.278−281.
  115. John, M.E. An efficient method of isolation of RNA and DNA from plants containing polyphenols / M.E. John // Nucl. Acids. Res. 1992. — V.20. -P.2381.
  116. Kaemmer, D. Oligonucleotide and amplification fingerprinting of wild species and cultivars of banana (Musa spp.) / D. Kaemmer, R. Alza, K. Weising, G. Kahl, F.J. Novak // Bio. Techn. 1992. — V.10. — P.1030−1035.
  117. Kalendar, R. IRAP and REMAP: Two new retrotransposon based DNA fingerprinting techniques / R. Kalendar, T. Grob, M.T. Regina, A. Suoniemi, A. Schulman // Theor. Appl. Genet. — 1999. — V.98. — P.704−711.
  118. Kan, I.W. Polymorphism of DNA sequence adjacent to the P-globin structural gene. Its relation to the sickle mutation / I.W. Kan, A.M. Dozy // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1978. — V.75. — P.5631−5635.
  119. Koller, B. DNA markers linked to Malus loribunda 821 scab resistance / B. Koller, L. Gianfranceschi, N. Seglias et al. // Plant. Mol. Biol. 1994. — V.26. -P.597−602.
  120. Koller, B. Identification of apple cultivars using RAPD markers / B. Koller, A. Lehmamn, J.M. Medermott, C. Gessler // Theor. Appl. Genet. 1993. -V.85. — P.901−904.
  121. Korbin, M. Effect of DNA quality on RAPD based identification of strawberry (Fragaria x ananassa) genotypes / M. Korbin, A. Kuras, A. Golis, E. Zurawicz // J. Fruit Ornam. Plant Res. — 2000. — V.8. — № 3−4. — P.105−115.
  122. Krutovskii, K.V., Vollmer S.S., Sorensen F.C. et al. RAPD genome map of Douglas fir / K.V. Krutovskii, S.S. Vollmer, F.C. Sorensen et al. // J. Heredity.- 1998. V.89. — № 3. — P.197−205.
  123. Ky, C.L. Interspecific genetic linkage map, segregation distortion and genetic conversion in coffee (Coffea sp.) / C.L. Ky, P. Barre, M. Lorieux et al. // Theor. Appl. Genet. 2000. — V. 101. — № 4. — P.669−676.
  124. Kumar, A. Plant retrotransposons / A. Kumar, J.L. Bennetzen // Annu. Rev. Genet. 1999. — V.33. — P.479−532.
  125. Labra, M. Extraction and purification of DNA from grapevine leaves / M. Labra, E. Carreno Sanchez, M. Bardini, B. Basso, F. Sala, A. Scienza // Vitis.- 2001. V.40. — № 2. — P.101−102.
  126. Lamboy, W.F. Partitioning of allozyme diversity in wild populations of Malus sieversii L. and implications for germplasm collection / W.F. Lamboy, J. Yu, P.L. Forsline, N.F. Weeden // J. Am. Soc. Hortic. Sei. 1996. — V.121. -P.982−987.
  127. Landegren, U. A ligase mediated gene detection technique / U. Landegren, R. Kaiser, J. Sanders, L. Hood // Sei. — 1988. — V.241. — P.1077−1080.
  128. Lanham, P.G. RAPD fingerprinting of blackcurrant (Ribes nigrum L.) cultivars / P.G. Lanham, R.M. Brennan, C. Hackett, R.J. McNicol // Theor. Appl. Genet. 1995. — V.90. — P.166−172.
  129. Lanham, P.G. Estimation of heterozigosity in Ribes nigrum L. using RAPD markers / P.G. Lanham // Genetica. 1996. — V.98. — P. 193−197.
  130. Lanham, P.G. Genetic characterization of gooseberry (Ribes grossularia subgenus grossularia) germplasm using RAPD, ISSR and AFLP markers / P.G. Lanham, R.M. Brennan // J. Hort. Sei. Biotechnol. 1999. — V.74. — P.361−366.
  131. Lanham, P.G. Genetic diversity within a secondary gene pool for Ribes nigrum L. revealed by RAPD and ISSR markers / P.G. Lanham, A. Korycinska, R.M. Brennan // J. Hortic. Sei. Biotechnol. 2000. — V.75. — № 4. — P.371−375.
  132. Lashermer, P. Molecular characterization and origin of the Coffee arabica L. genome / P. Lashermes, M. C. Combes, J. Robert et al. // Mol. Gen. Genet. -1999. — V.261. — P.259−266.
  133. Lavi, U. Application of DNA markers for identification and breeding of perennial fruit crops / U. Lavi, P Credan., T. Schaap, J. Hiller // Plant Breed. Rev. -N.Y., 1994. V.12. — P.195−226.
  134. Lavi U., Hiller J., Vainstein A., Lahav E., Sharon D. Application of DNA markers for identification and genetic analysis of avocado / U. Lavi, J. Hiller, A. Vainstein, E. Lahav, D. Sharon // J. Amer. Soc. Hort. Sei. -1991. V. l 16. -P. 1078−1081.
  135. Levi A., Rowland L.J., Hartung J.S. Production of reliable randomly amplified polymorphic DNA (RAPD) markers from DNA of woody plants / A. Levi, L.J. Rowland, J.S. Hartung//Hort. Sei. 1993. — V.28. — P. l 188−1190.
  136. Levinson, G. Slipper-strand mispairingia major mechanism for DNA sequence evolution / G. Levinson, G.A. Gutman // Mol. Biol. Evol. 1987. -V.4. -P.203−221.
  137. Lickfeldt, D.W. Comparing three DNA extraction procedures for cost, efficiency and DNA yield / D.W. Lickfeldt, N.E. Hofmann, J.D. Jones, A.M.Hamblin, T.B. Voidt // Hort. Sei. 2002. — V.37. — № 5. — P.822−825.
  138. Litt, M. A hypervariable micosatellite revealed by in vitro amplification of a dinucleotide repeat with the cardiac muscle actin gene / M. Litt, J.A. Luty // Am. J. Genet. 1989. — V.44. — P.397−401.
  139. Lodhi, U. Application of DNA «fingerprints» for identification and genetic analysis of avocado / U. Lodhi, J. Hillel, A. Vainstein, E. Lahav, D. Sharon // J. Amer. Soc. Hort. Sci. -1991. V. l 16. — P. 1078−1081.
  140. Luo, S. Inheritance of RAPD markers in an interspecific Fj hybrid of grape between Vitis quinquangularis and V. vinifera / S. Luo, P. He, X. Zheng, P. Zhou // Sci. Hort. 2002. — V.93. — № 1. — P. 19−28.
  141. Maliepaard, C. Aliening male and female linkage maps of apple (Malus pumila Mill.) using multi allelic markers / C. Maliepaard, F.H. Alston, van Arkel G. et al. // Theor. Appl. Genet. 1998. — V.97. — P.60−73.
  142. Markussen, T. Identification of PCR-based markers linked to the powdery-mildew-resistance gene Pli from Malus robusta in cultivated apple / T. Markussen, J. Kruger, H. Schmidt, F. Dunemann // Plant Breed. 1995. -V.l 14. — P.530−534.
  143. Matsuyama, T. DNA fingerprinting in citrus cultivars / T. Matsuyama, R. Motohashi, T. Akihama, M. Omura // Japan. J. Breed. 1992. — V.42. — P. 155 159.
  144. Mekuria, G.T. Genetic variability between different accessions of some common commercial olive cultivars / G.T. Mekuria, G.G. Collins, M. Sedley // J. Hortic. Sci. Biotechnol. 1999. — V.74. — № 3. p.309−314.
  145. Menendez, R.A. Identification of apple rootstock cultivars by isozyme analysis / R.A. Menendez, F.E. Larsen, R.Jr. Fritts // Identification of applerootstock cultivars by isozyme analysis // J. Amer. Soc, Hort. 1986. — V. 111.-P.933−937.
  146. Messeguer R. Identification of peach cultivars with pollen isozymes / R. Messeguer, P. Arus, M. Carrera // Sci. Hort. 1987. — V.31. — P. 107−117.
  147. Microsatellites. Evolution and Application / eds. D.B. Goldstein, C. Schlotter. N.-Y.: Oxford Univ. Press. Inc. — 1999. — 352p.
  148. Monte Corvo, L. Assessment of relationships among Pynus species and cultivars using AFLP and RAPD markers / L. Monte — Corvo, L. Cabrita, C. Oliveira, J. Leitao // Genet. Res. Crop. Evalut. — 2000. — V.47. — P.257−265.
  149. Monte Corvo, L. ISSR analysis of cultivars of pear and suitability of molecular markers for clone discrimination / L. Monte — Corvo, L. Goulao, C. Oliveira // J. Amer. Soc. Hort. Sci. — 2001. — V.126. — № 5. — P.517−522.
  150. Moore, G.A. Molecular markers / G.A. Moore, R.E. Durham // Biotechnology of perennial fruit crops / eds. F.A. Hammerschlag, R.E. Litz. -Wallingford: CAB International. 1992. — P.105−139.
  151. Mowrey, B.D. Isozyme survey of various species of Prunus in the subgenus Amygdalus / B.D. Mowrey, D.J. Werner, D.H. Byrne // Sci. Hort. 1990. -V.44.-P.251−260.
  152. Mueller, U.G. AFLP genotyping and fingerprinting / U.G. Mueller, L.L. Wolfenbarger// Trends Ecol. Svol. 1999. — V.14. — P.389−394.
  153. Mulcahy, D.L. The use of random amplified polymorphic DNAs to fingerprint apple genotypes / D.L. Mulcahy, M. Cresti, S. Sansavini, G.C. Douglas, H.F. Linskens, G.B. Mulcahy, R. Vignani, M. Pancaldi // Sci. Hort. -1993. V.54. — P.89−96.
  154. Mullis, K. Specific enzymatic amplification of DNA in vitro: the polymerase chain reaction / K. Mullis, F. Faloona, S. Schart, R. Saiki, G. Horn, H. Erlich // Cold spring Harbor Symp. Quant. Biol. 1986. — V.51. — P.263−273.
  155. Murray, M.G. Rapid isolation of high molecular weight DNA / M.G. Murray, W.F. Thompson // Nucl. Acids Res. 1980. — V.8. — P.4321−4325.
  156. Nei, M. Mathematical model for studying genetic variation in terms of restriction endonucleases / M. Nei, W.H. Li // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. -1979. V.76. — P.5269−5273.
  157. Nicolosi, E. Cytrus phylogeny and genetic origin of important species as investigated by molecular markers / E. Nicolosi, Z.N. Deng, A. Gentile, S. La Malfa, G. Continella, E. Tribulato // Theor. Appl. Genet. 2000. — V.100. -P.l 155−1166.
  158. Nybom, H. DNA fingerprinting a useful tool in fruit breeding / H. Nybom // Euphytica. — 1994. — V.77. — № 1−2. — P.59−64.
  159. Nybom, H. DNA fingerprints can distinguish cultivars of blackberries and raspberries / H. Nybom, B.A. Schaal, S.H. Rogstad // Acta. Hort. 1989. -V.262. — P.305−310.
  160. Nybom, H. Genetic variation detected by use of the M13 «DNA fingerprint» probe in Mains, Prunus and Rubus (Rosaceae) / H. Nybom, S.H. Rogstad, B.A. Schaal // Theor. Appl. Genet. 1990. — V.79. — P.153−156.
  161. Nybom, H. Minisatellite DNA «fingerprints» can distinguish Rubus cultivars and estimate their degree of relatedness / H. Nybom, H.K. Hall // Euphytica. -1991. V.53. — P.107−111.
  162. Nybom, H. DNA «fingerprinting» applied to paternity analysis in apples (Malus x domestica) / H. Nybom, B.A. Schaal // Theor. Appl. Genet. 1990a. -V.79. — P.763−768.
  163. Nybom, H. DNA «fingerprintings» reveal genotypic distributions in natural populations of blackberries and raspberries (Rubus. Rosaceae) / H. Nybom, B.A. Schaal // Am. J. Bot. 1990b. — V.77. — P.883−888.
  164. Ohgawara, T. Somatic hybrid plants obtained by protoplast fusion between Citrus sinensis and Poncitrus trifoliate / T. Ohgawara, S. Kobayashi, E. Ohgawara, H. Uchimiya, S. Ishii // Theor. Appl. Genet. 1985. — V.71. — P. 1−4.
  165. Oliveira, C.M. Molecular typing of Pyrus based on RAPD markers / C.M. Oliveira, M. Mota, L. Monte Corvo, L. Goulao, D.M. Silva // Sci. Hort. -1999. — V.79. — № 3.4. p. 163−174.
  166. Ortiz, A. E. Analysis of plum cultivars with RAPD markers / A. Ortiz, R. Renaud, I. Catzada, E. Ritter // J. Hort. Sci. 1997. — V.72. — № 1. — p.1−9.
  167. Paglia, G. PCR based multiplex DNA fingerprinting techniques for the analysis of conifer genomes / G. Paglia, M. Morgante // Mol. Breed. — 1998. -V.4 — P. 173−177.
  168. Paran, J. Development of reliable PCR based markers linked to downy mildew resistance genes in lettuce / J. Paran, R.W. Michelmore // Theor. Appl. Genet. — 1993. — V.85. — P.985−993.
  169. Parent, J.-G.D. Identification of raspberry cultivars by nonradioactive DNA fingerprinting / J.-G. Parent, D. Page // Hort. Sci. 1992. — V.27. — P. 1108−1110.
  170. Parent, J.-G.D. Identification de cultivars de framboisier par l’analyse d’AND polymorphe amplifie au hazard (RAPD) / J.-G. Parent, M.G. Fortin, D. Page // Can. J. Plant Sci. 1993. — V.72. — P. l 115−1122.
  171. Peijc, I. Comparative analysis of genetic similarity among maize inbred lines detected by RFLPs, RAPDs, SSRs, and AFLPs /1. Peijc, P. Ajmorne Marsan, M. Morgante et al. // Theor. Appl. Genet. — 1998. — V.97. — P.1248−1255.
  172. Powell, W. The comparison of RFLP, RAPD and SSR (misrosatellite) markers for germplasm analysis / W. Powell, M. Morgante, Ch. Andre, M.
  173. Hanfey, J. Vogel, S. Tingey, A. Rafalsky // Mol. Breed. 1996. — V.2. — P.225−238.
  174. Qu, X. Genetic diversity in muscadine and American bunch grapes based on Randomly Amplified Polymorphic DNA (RAPD) analysis / X. Qu, J. Lu, O. Lamikanra // J. Am. Soc. Hortic. Sei. 1996. — V.121. — P.1020−1023.
  175. Rafalski, J.A. Novel genetic mapping tools in plants: SNPs and LD-based approaches / J.A. Rafalski // Plant Sei. 2002. — V.162. — P.329−333.
  176. Rallo, P. Development of simple sequence repeats (SSRs) in olive tree (Olea europaea L.) / P. Rallo, G. Dorado, L. Martin // Theor. Appl. Genet. 2000. -V.101. — № 5/6. — P.984−989.
  177. Reynders, S. Study of the genetic relationships within the subgenus Prunophora. Restriction maps of the ribosomal genes in P. cerasifera and P. spinosa / S. Reynders, G. Salesses // Acta Hort. 1990. — V.283. — P.17−25.
  178. Rogowsky, P.M. The R173 Family of rye-specific repetitive DNA sequences: a structural analysis / P.M. Rogowsky, S. Manning, J.-Y. Liu, P. Langridge // Genome. 1991. — V.34. — P.88−95.
  179. Rogowsky, P.M. Polymerase chain reaction based mapping of rye involving repeated DNA sequences / P.M. Rogowsky, K.M. Shepherd // Genome. 1992. — V.35. — № 4. — P.621−626.
  180. Saiki, R.K. Primer-directed enzymatic amplification of DNA with termostable DNA polymerase / R.K. Saiki, D.H. Gelfond, S. Stoffel, S.J.
  181. Scharf, R. Higuchi, G.T. Horn, K. B. Mullis, H.A. Erlich // Sei. 1988. — V.239. -P.487−491.
  182. Schierwater, B. Arbitrary amplified DNA in ecology and evolution / B. Schierwater, A. Ender, W. Schroth et al. // DNA markers: Protocols, applications and over-views / eds. G. Caetano Anolles, P.M. Gresshoff. -N.Y., 1997.-P.313−330.
  183. Sharon, D. Application of DNA fingerprints for identification and genetic analysis of Carica papaya and other Carica species / D. Sharon, J. Hiller, A. Vainstein, U. Lavi // Euphytica. 1992. — V.62. — P. 119−126.
  184. Shimada, T. Studies on phylogeny and phyletic evolution in Prunus species / T. Shimada / PhD Thesis. Kobe Univ. Hyogo, Japan, 1996. — P. 18−23.
  185. Shimada, T. Genetic diversity of plums characterized by random amplified polymorphic DNA (RAPD) analysis / T. Shimada, H. Hayama, T. Haji, M. Yamaguchi, M. Yoshida // Euphytica. 1999. — V.109. — P.143−147.
  186. Shimada, T. Genetic diversity of cherries characterized by RAPD analysis / T. Shimada, T. Shiratory, H. Hayama, K. Nishimura, Yamaguchi, M. Yoshida // J. Japan. Soc. Hort. Sei. 1999. — V.68. — № 5. p.984−986.
  187. Singer, M.F. SINEs and LINEs: highly repeated short and long interspersed sequences in mammalian genomes / M.F. Singer // Cell. 1982. — V.28. — P.422−434.
  188. Southern, E.M. Detection of specific DNA fragments separated by gel electrophoresis / E.M. Southern // J. Mol. Biol. 1975. — V.98. — P.503−517.
  189. Stegemann, H. Potato proteins: genetic and physiological changers, evaluated by one and two — dimensional PAA — gel techniques / H. Stegemann, H. Francksen, V. Masco // Zeitschrift fur Naturforschung. — 1973. — V.23. — P.722−732.
  190. Stiles, J.I. Using randomly amplified polymorphic DNA for evaluating genetic relationships among papaya cultivars / J.I. Stiles, C. Lemme, S. Sondur, M.B. Morshidi, R. Manshardt // Theor. Appl. Genet. 1993. — V.85. — P.697−701.
  191. Stockinger, E.J. A linkage map of sweet cherry based on RAPD analysis of a microspore derived callus culture population / E.J. Stockinger, C.A. Mulinix, C.M. Long, T.S. Bretting, A.F. Iezzoni // J. Hered. — 1996. — V.87. — № 3−4. -P.214−218.
  192. Striem, M.J. Genomic DNA fingerprinting of Vitis vinifera by the use of multi-loci probes / M.J. Striem, P. Spiegel Roy, G. Ben — Hayyim, J. Beckmann, D. Gidoni // Vitis. — 1990. — Vitis. — V.29. — P.223−227.
  193. Struss, D. Analysis of sweet cherry (Prunus avium L.) cultivars using SSR and AFLP markers / D. Struss, R. Ahmad, S.M. Southwich, M. Boritzki // J. Amer. Soc. Hort. Sci. 2003. — V.128. — № 6. — P.904−909.
  194. Takeda, T. Classification of apricot varieties by RAPD analysis / T. Takeda, T. Shimada, K. Nomura, T. Ozaki, T. Haji, M. Yamaguchi, M. Yoshida // J. Japan. Soc. Hort. Sci. 1998. — V.67. — P.21−27.
  195. Tautz, D. Hypervariability of simple sequence as a general source for polymorhic DNA markers / D. Tautz // Nucl. Acids Res. 1989. — V.17. -P.6463−6471.
  196. Taylor, B. Isolation of plant DNA and RNA / B. Taylor, A. Powell // Focus. -1982. V.4. — P.4.
  197. Tingley, S.V. Genetic analysis with random amplified polymorphic DNA markers / S.V. Tingley, J.P. del Tufo // Plant Physiol. 1993. — V.101. — P.349−352.
  198. Tobe, V.O. Single well genotyping of diallelic sequence variations by a two-color ELISA-based oligonucleotide ligation assay / V.O. Tobe, S.R. Taylor, D.A. Nickerson // Nucl. Acids Res. — 1996. — V.24. — P.3728−3732.
  199. Torres, A.M. Isozyme of «Duke» and its derivatives / A. M Torres, B.O. Bergh // California avocado society yearbook. 1978. — V.62. — P. l 11−117.
  200. Torres Romero, A.M. Linkage among isozyme, RFLP and RAPD markers in Vicia faba / A.M. Torres — Romero, N.F. Weeden, A. Martin // Theor. Appl. Genet. — 1993. — V.85. — P.937−945.
  201. Yae, B. Classification of Malus domestica cultivars by random amplified polymorphic DNA markers / B. Yae, K. Ko // J. Korean Hort. Sci. 1995. -V.36. — P.824−828.
  202. Vardi, A. Citrus cybrids: production by donor-recipient protoplast-fusion and verification by mitochondrial DNA restriction profiles / A. Vardi, A. Breiman, E. Galun // Theor. Appl. Genet. 1987. — V.75. — P.51−58.
  203. Vassart, G. A sequence in M13 phage detects hypervariable minisatellites in human and animal DNA / G. Vassart, M. Georgies, R. Monsier, H. Brocas, A.S. Lequarre, D. Christophe // Sci. 1987. — V.235. — № 4789. — P.683−684.
  204. Vidal, J.R. Genetic relationships among grapevine varieties grown in different French and Spanish regions based on RAPD markers / J.R. Vidal, M. Coarer, A. Detontaine // Euphytica. 1999. — V. 109. — P. 161−172.
  205. VinterHalter, D.V. The use of peroxidase polymorphism in the identification of apple scion cultivars / D.V. VinterHalter, D.J. James // SciHort. 1983. -V.18.-P.253−261.
  206. Viruel, M.A. A linkage map with RFLP and isozyme markers for almond / M.A. Viruel, R. Messeguer, M.C. de Vicente, J. Garsia mas, P. Puigdomenech, F. Vagras, P. Arus // Theor. Appl. Genet. — 1995. — V.91. -P.964−971.
  207. Vos, P. AFLP: a new technique for DNA fingerprint / P. Vos, R. Hogers, M. Bleeker, M. Reijans, T. van de Lee, M. Homes M, A. Freijters, J. Pot, J. Peleman, M. Kuiper, M. Zabeau // Nucl. Acids Res. 1995. — V.23. — P.4407−4414.
  208. Vos, P. AFLP analysis / P. Vos, M. Kuiper // DNA markers: Protocols, applications and over-views / eds. G. Caetano Anolles, P.M. Gresshoff. -N.Y., 1997.-P.l 15−131.
  209. Wang, D. QTL analysis of flower and fruit traits in sour cherry / D. Wang, R. Karle, A.F. Iezzoni // Theor. Appl. Genet. 2000. — V.100. — P.535−544.
  210. Watillon, B. Use of random cDNA probes to detect restriction fragment polymorphisms among apple clones / B. Watillon, P. Druart, P. DuJardin, R. Kettman, P. Boxus, A. Burny // Sci. Hort. -1991. V.46. — P.235−243.
  211. Waungh, R. Homology of AFLP products in three mapping of barley / R. Waungh, N. Bonar, E. Baird et al. // Mol. Gen. Genet. 1997. — V.255. — № 3. -P.311−321.
  212. Waungh, R. The potential use of restriction fragment length polymorphism in Rubus breeding / R. Waungh, M. Van DeVan, S. Millam, R. Brennan, W. Powel // Acta Hort. 1990. — V.280. — P.541−545.
  213. Weber, J.L. Abundant class of human DNA polymorphism which can be typed using the polymerase chain reaction / J.L. Weber, P.E. May // Am. J. Hum. Genet. 1989. — V.44. — P.388−396.
  214. Weber, J. Mutation of human short tandem repeats / J. Weber, C. Wong // Human Mol. Genet. 1993. — V.2. — P. l 123−1128.
  215. Weeden, N.F. Application of isozymes in plant breeding / N.F. Weeden // Plant Breed. Rev. 1989. — V.6. — P. l 1−54.
  216. Welsh, J. M. Fingerprinting genomes using PCR with arbitrary primers / J. Welsh, M. McClelland//Nucl. Acids Res. -1991. V.18. — P.7213−7218.
  217. Werner, D.J. Catalase polymorphism and inheritance in peach / D.J. Werner // Hort.Sci. 1992. — V.27. — P.41−43.
  218. Wilde, J. Genetic fingerprinting of Teobroma clones using randomly amplified polymorphic DNA markers / J. Wilde, R. Waugh, W. Powell // Theor. Appl. Genet. 1992. — V.83. — P.871−877.
  219. Williams, J.G.K. DNA polymorphisms amplified by arbitrary primers are useful as genetic markers / J.G.K. Williams, A.R. Kubelik, K.J. Livak, J.A. Rafalski, S.V. Tingey//Nucl. Acids Res. 1990. — V.18. — P.6531−6535.
  220. Wright, J.M. Microsatellites: Genetic markers for the future / J.M. Wright, P. Bentzen // Rev. Fish Biol. Fish. 1994. — V.4. — P.384−388.
  221. Wunsch, A. Molecular characterization of sweet cherry (Prunus avium L.) genotypes using peach (Prunus persica L. Batsch) SSR sequences / A. Wunsch, J.J. Hormaza // Heredity. 2002. — № 1. — V.89. -. P.56−63.
  222. Zabeau, M. Selective restriction fragment amplification: a general method for DNA Fingerprinting / M. Zabeau, P. Vos / European Patent Application number: 92 402 629.7, Publication number: EP 0 534 858 Al. 1993. — 32p.
  223. Zacharius, R.M. Concerning the constancy of the protein electrophoresis pattern of a potato tuber variety / R.M. Zacharius // Amer. Potato J. -1971. V. 48. -P.78−83.
  224. Zhivotovsky, LA MIcrosatellite variability and genetic distance / LA Zhivotovsky, MW. Feldman//Proc. Natl Acad Sci. -1995. V.92. -P.l 1549−11 552.
  225. Zietkiewisz, E Genome fingerprinting by sequence repeat (SSR) anchored polymerase chain reaction amplification / E Zietkiewisz, A Rafalski, D. Labuda // Genomics. — 1994. — V20. -P.176−183.
  226. Zhou, L. Genetic analysis and discrimination of sweet cheny cultivars and selections using amplified fragment length polymorphism fingerprints / L. Zhou, F. KappeL, C. Hampson, PA Wiersma, G. Bakkeren//J. Amer. Soc. Hat Sci. -2002. V.127. — P.786−792.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!