Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Иммуномодулирующее действие пектиновых полисахаридов

Диссертация: Иммуномодулирующее действие пектиновых полисахаридов
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Актуальность проблемы. Пектины представляют собой сложные гетерополисахариды, относящиеся к классу гликаногалактуронанов, кислых растительных полисахаридов (Оводов, 2009). Пектиновые вещества инкрустируют стенки растительных клеток и входят в состав межклеточного пространства высших наземных растений, морских трав и ряда пресноводных водорослей (Popper, 2008). Пектины образуют матрикс, связующий… Читать ещё >

Содержание

  • Глава I. Обзор литературы
    • 1. Общие сведения о пектиновых веществах X
  • Роль пектинов в растительной клеточной стенке
  • Общая схема строения пектинов
  • Физиологическая активность пектинов 19 Методологические подходы к изучению связи между строением и физиологической активностью пектинов
    • 2. Структурно-химическая характеристика пектинов европейского
  • Севера России 30 Пектиновые вещества, продуцируемые культурами клеток растений
    • 3. Иммуномодулирующее действие пектинов 36 Действие растительных полисахаридов на иммунную систему 39 Иммунная система кишечника и феномен оральной толерантности
  • Глава II. Материалы и методы исследования
    • 1. Характеристика пектинов и их фрагментов, использованных в работе 5 j
    • 2. Объект исследования
    • 3. Растворы и реактивы
    • 4. Скрининг иммуномодулирующей активности
    • 5. Определение способности лейкоцитов крови секретировать цитокины ex vivo
    • 6. Оценка подвижности лейкоцитов
    • 7. Определение антиген-специфичного иммунного ответа
    • 8. Измерение проницаемости кишечной стенки для белка
    • 9. Индукция пищевой толерантности 70 1О Модель эндотоксинового шока
    • 11. Модель воспаления толстой кишки
    • 12. Определение противовоспалительного действия
    • 13. Определение примеси ЛПС
    • 14. Статистическая обработка результатов
  • Глава III. Результаты исследования
    • 1. Выявление пектинов, обладающих иммуномодулирующим действием
    • 2. Ингибирующее действие галактуронанов на активность лейкоцитов ^
    • 3. Действие на активность фагоцитов пектинов с различной степенью метилэтерифицирования
    • 4. Иммуномодулирующее действие пектина сабельника болотного
    • 5. Сравнение иммуностимулирующей активности пектинов с различным типом строения разветвленной области
    • 6. Зависимость иммуномодулирующего действия от молекулярной массы пектинов
    • 7. Влияние примесей на иммуномодулирующее действие пектинов
    • 8. Защитное действие пектинов при гиперактивации иммунной системы
    • 9. Иммуноадъювантное действие лемнана 137 10 Масса тела и внутренних органов у мышей, получивших пектины
  • Глава IV. Обсуждение результатов
    • 1. Зависимость иммуномодулирующего действия от строения главной углеводной цепи пектинов
  • Медико-биологическое значение способности галактуронана снижать иммунную реактивность
    • 2. Зависимость иммуномодулирующего действия от строения разветвленной области пектиновой макромолекулы
    • 3. Полипотентность структуры — уникальное свойство пектиновой макромолекулы
  • Концепция регуляции иммунитета пектиновыми полисахаридами
    • 4. Новые виды физиологической активности пектинов
  • Защитное действие пектинов при гиперактивации иммунной 184 системы
  • Усиление иммунного ответа на пероральный антиген
  • Ингибирование пищевой толерантности

Иммуномодулирующее действие пектиновых полисахаридов (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность проблемы. Пектины представляют собой сложные гетерополисахариды, относящиеся к классу гликаногалактуронанов, кислых растительных полисахаридов (Оводов, 2009). Пектиновые вещества инкрустируют стенки растительных клеток и входят в состав межклеточного пространства высших наземных растений, морских трав и ряда пресноводных водорослей (Popper, 2008). Пектины образуют матрикс, связующий микрофибриллы целлюлозыобеспечивают ионный транспорт и водный режим, влияют на прорастание семян, рост и развитие растения, выполняют защитную роль во взаимоотношениях растения с фитопатогенами (Cabrera et al., 2008). В этой связи, структура пектиновых веществ зависит от многих параметров и может существенно изменяться в процессе роста и развития растения. Динамичность структуры пектинов обеспечивается нерегулярным блочным характером строения углеводной цепи, которая содержит различные макромолекулярные фрагменты линейной и разветвленной областей (Voragen et al., 2009).

Широкое распространение, относительная легкость выделения и высокая физиологическая активность сделали привлекательным практическое применение пектинов. Поэтому в настоящее время проводится интенсивное изучение связи между структурой и активностью пектиновых полисахаридов. Исследование действия пектинов на иммунитет заслуживает особого внимания в связи с чрезвычайно важной ролью, которую играет иммунная система в жизнеобеспечении организма. Пектины являются перспективными кандидатами для разработки средств иммуномодулирующей терапии. Представляется актуальным выяснение изменений иммунной реактивности при пероральном введении пектинов в зависимости от их строения, что является ключевым подходом в выяснении молекулярных основ регуляции резистентности организма посредством влияния на иммунную систему желудочно-кишечного тракта.

Составляющими компонентами пектинов являются следующие структурные элементы: гомогалактуронан, рамногалактуронан-I (RG-I), ксилогалактуронан и апиогалактуронан (Round et al., 2010). Очевидно, что данные полисахариды, существенно отличающиеся своим строением, могут оказывать различное физиологическое действие. Поэтому итоговый результат действия на иммунитет определяется, в первую очередь, соотношением пектиновых полисахаридов. Однако особенности иммуномодулирующего действия фрагментов пектиновых макромолекул ранее не изучались. Кроме того, сами пектиновые полисахариды отличаются у различных растений: гомогалактуронан — степенью метилэтерифицирования и молекулярным весомфрагмент RG-I — тонким строением боковых цепей, состоящих из остатков арабинозы, галактозы и ряда других нейтральных моносахаридовксилои апиогалактуронаныстепенью разветвленности и.т.д. В зависимости от сырья, метода выделения и полноты очистки в составе пектинов могут присутствовать различные примеси, которые могут сами по себе оказывать действие на иммунную систему. В настоящее время нет достаточных сведений для анализа зависимости иммуномодулирующего действия пектинов от особенностей их строения и наличия сопутствующих примесей.

Сравнение активности пектинов с различным типом построения углеводной цепи представляется целесообразным подходом для решения указанной проблемы. Однако исследования физиологической активности проводятся с использованием коммерческих пектинов, главным образом, цитрусового и яблочного, при этом не учитывается структурное разнообразие пектинов, встречающихся в природе. В этой связи представляют интерес пектины растений европейского Севера России, среди которых обнаружены пектины, имеющие строение, характерное для всех пектинов, а также пектины с уникальными чертами строения (Оводов и др., 2009). Всестороннее изучение пектинов растений европейского Севера России предоставляет возможность выявления структурных особенностей пектиновой макромолекулы, важных для проявления иммуномодулирующей активности. Большое прикладное значение этих исследований заключается в том, что они открывают перспективу создания новых подходов в иммунотерапии и в создании лечебных и профилактических препаратов.

Цель исследования — установить вклад структурных элементов макромолекулы в иммуномодулирующее действие пектинов.

Задачи исследования:

1 .Выявить пектины, обладающие иммуномодулирующим действием.

2.Определить зависимость иммуномодулирующего действия от содержания остатков галактуроновой кислоты в пектине.

3.Исследовать влияние пектинов с различной степенью метилэтерифицирования на активность фагоцитов.

4.Установить особенности иммуномодулирующего действия пектинов, содержащих участки разветвленного галактуронана.

5.Сравнить иммуностимулирующее действие пектинов, отличающихся строением разветвленной области макромолекулы.

6.Определить зависимость иммуномодулирующего действия от молекулярной массы пектинов.

7.Установить влияние примесей на иммуномодулирующее действие пектинов.

8.Изучить способность пектинов снижать гиперактивацию лейкоцитов.

9.Выявить область макромолекулы, обуславливающую иммуноадъювантное действие, и определить механизм усиления иммунного ответа лемнаном.

Основные положения, выносимые на защиту:

1.Пектины при пероральном введении оказывают иммуномодулирующее действие, характер и направленность которого зависят от строения линейных и разветвленных областей макромолекулы.

2.Способность снижать иммунную реактивность более распространена среди пектинов, чём иммуностимулирующее действие, так как обусловлена областью галактуронана, образующего главную углеводную цепь всех пектинов.

3.Иммуностимулирующая активность проявляется только при определенном строении боковых цепей в разветвленной области пектиновой макромолекулы.

4.Существует несколько механизмов взаимодействия пектинов с иммунной системой. Часть из них приводит к усилению, а часть к снижению функциональной активности лейкоцитов.

5.В результате перорального введения пектинов происходит как системное, так и локальное изменение функциональной активности лейкоцитов.

Научная новизна. Впервые выявлены области пектиновой макромолекулы, обуславливающие стимулирующее или подавляющее действие на иммунную реактивность. Теоретически обоснован и впервые применен оригинальный методологический подход к изучению зависимости физиологической активности от строения пектиновых веществ. Он включает в себя сочетание сравнительного анализа физиологической активности пектинов с установленным строением и изучение активности фрагментов пектиновой макромолекулы, полученных с помощью кислотного и ферментативного гидролиза.

Впервые проведено сравнительное комплексное изучение иммуномодулирующей активности пектинов всех видов, с которыми может взаимодействовать иммунная система человека. А именно, изучено действие на иммунитет пектинов, выделенных из растений, не употребляемых в пищу, пектинов из клеточных культур, из ряда съедобных растений, а также коммерческих пектинов, применяемых в пищевой промышленности. При этом в качестве мишени воздействия пектинов определена функциональная активность основных звеньев иммунитета — фагоцитоза, антиген-специфического клеточного и гуморального иммунного ответа. В результате скрининговых исследований выявлены растения европейского Севера^ России, содержащие физиологически активные пектины: Установлены особенности действия на иммунитет пектинов, имеющих необычное химическое строение.

Впервые охарактеризовано иммуномодулирующее действие^ пектинов при их пероральном введенииНайдены новые виды физиологической активности пектинов: ингибирование токсического действия липополисахарида (ЛПС), защитное действие на стенку толстойкишки и усиление иммунного ответа на перорально введенныйантиген. Выявлены особенности противовоспалительного действия пектинов, в частности, его превентивный характер. Обнаружено, что механизм иммуностимулирующего действия связан с увеличением проницаемости кишечной^ стенки под действием пектинов. На основании, множественности и разнонаправленное&tradeиммуномодулирующего. действия сформулирована концепция о регуляции иммунитета млекопитающих пектинами, поступающими* в составе растительной пищи.

Теоретическая и практическая значимость. Результаты исследования вносят вклад в понимание общебиологических принципов регуляции иммунной устойчивости, млекопитающих. Расширены представления о механизме противовоспалительного и противовопухолевого действия пищевых волокон. Выявленные особенности позволяют отличить иммуномодулирующее действие пектинов от эффекта других биологически активных соединений в составе многокомпонентных средств фитотерапии и растительной пищи.

На основе выявленной зависимости активности от строения разработаны рекомендации по усовершенствованию методов выделения пектинов с заданными свойствами. Приоритет конкретных технологических решений подтвержден двумя патентами РФ на изобретения. Получено экспериментальное обоснование применения биотехнологических подходов для получения физиологически активных полисахаридов. Высокомолекулярные галактуронаньь можно рассматривать в качестве нового класса биомаркеров, определение содержания которых в продуктах питания, перспективно для оценки рациона питания.

Предложено новое направление в иммуномодулирующей терапии, основанное на многофункциональности пектиновых полисахаридов. Результаты исследования открывают перспективу создания новых лекарственных препаратов, биологически активных добавок к пище и функциональных продуктов питания для лечения и профилактики воспалительных заболеваний и эндотоксинемий. Пектины, стимулирующие иммунный ответ на совместно вводимый с ними белковый антиген, могут представлять интерес в качестве иммуноадъювантов для пероральных вакцин.

Данные о нарушении нормальной иммунной толерантности цитрусовым пектином должны учитываться при медико-биологической оценке безопасности пищевых продуктов. Использование в пищевой промышленности пектинов, содержащих примеси глюкозы, должно получить оценку с точки зрения доктрины о продовольственной безопасности России.

Результаты диссертационной работы используются в учебном процессе в Сыктывкарском государственном университете.

Апробация работы. Результаты исследований были представлены лично в виде устных и стендовых докладов на 20-ом Международном симпозиуме по углеводам (г. Гамбург, Германия, 2000 г.), Международной конференции «Иммунофармакология и иммунотерапия» (г.Флоренция, Италия, 2000 г.), 11-ом Европейском симпозиуме по углеводам (г.Лиссабон, Португалия. 2001 г.), Международном симпозиуме «Функциональные продукты питания. Научные и глобальные перспективы» (г. Париж, Франция, 2001 г.), Второй международнойшколе по мукозальной* иммунологии (г.Неаполь,. Италия,.

2002 г.), 10-ом. Братиславском симпозиуме по углеводам5 (г.Смоленице,. Словакия- 2002 г.),. Международной конференции по новым функциональным ингредиентам и продуктам питания (г.Копенгаген, Дания,.

2003 г.). 5-ом и 7-ом Международных симпозиумах по химии природных соединений (г.Ташкент, Узбекистан, 2003 и 2007 гг.), Международной-научной конференции- «Химия, технология и медицинские аспекты природных соединений» (г. Алматы, Казахстан, 2003 г.), Международной летней школе по гликологии (г. Вагенинген, Нидерланды, 2004 г.), 31ей и 4-ой! Международных конференциях общества по изучению природных веществ (г.Нанкин, Китай, 2004 г.- г. Лейзин, Швейцария, 2006 г.), Международной конференции «Иммуностимуляторы в современных вакцинах» (г.Малага, Испания, 2005 г.), Международных конгрессах общества по изучению лекарственных растений (г. Хельсинки, Финляндия, 2006 г.- г. Грац, Австрия, 2008 г.), Международном симпозиуме по фармакологии природных веществ «Фапронатура 2006» (г.Варадеро, Куба, 2006 г.), 1¥—ой Всероссийской научной конференции «Химия и технология растительных веществ» (г.Сыктывкар, 2006 г.), 1У-ом Съезде Российского общества биохимиков и молекулярных биологов (г.Новосибирск, 2008; г.), Научной конференции «Иммуномодуляторы природного происхождения» (г.Владивосток, 2009 г.), Всероссийской научной конференции «Химия и медицина» (г.Уфа, 2010 г.).

Публикации. По теме диссертации опубликовано 68 научных работ, в том числе две монографии, два патента Российской Федерации, 11 статей в зарубежных и 11 статей в Российских рецензируемых журналах, рекомендованных ВАК РФ.

ВЫВОДЫ.

1.Пектиновые полисахариды обладают широким спектром иммуномодулирующей активности, обусловленной строением главной углеводной цепи и разветвленных областей макромолекулы. Выявлено уникальное свойство пектинов — полипотентность структуры в отношении действия на иммунную систему, которое основано на наличии в пектиновой макромолекуле фрагментов, способных снижать или увеличивать иммунную реактивность.

2.Обнаружена высокая противовоспалительная активность галактуронана, представляющего собой фрагмент главной углеводной цепи всех пектинов.

3.Высокая степень метилэтерифицирования остатков галактуроновой кислоты (более 50%) препятствует ингибирующему действию пектинов на активность лейкоцитов.

4.Наличие блоков разветвленного галактуронана вызывает двухфазный характер иммуномодулирующего действия пектина — снижение лейкоцитарной активности сменяется ее увеличением.

5.Пектины, имеющие развитую разветвленную область, которая представлена RG-I или апиогалактуронаном, стимулируют неспецифические (фагоцитоз) и антиген-специфические клеточные иммунные реакции, в частности реакцию гиперчувствительности замедленного типа. Тонкое строение боковых углеводных цепей пектинов определяет способность стимулировать активность лейкоцитов.

6.Иммуномодулирующее действие зависит от молекулярной массы пектинов. Способностью снижать иммунную реактивность обладают пектины и галактуронаны с молекулярной массой свыше 300 кДа.

Иммуностимулирующее действие исследованных пектинов вызывается полисахаридными цепями с молекулярной массой 20−100 кДа.

7.Установлено, что примесь глюкозы в коммерческих пектинах нарушает нормальную толерантность организма к пищевым антигенам.

8.Показано, что пектины и галактуронаны, снижающие активность нейтрофилов, повышают резистентность лабораторных мышей при ЛПС-индуцированной эндотоксинемии, а также защищают стенку толстой кишки от химически индуцированного воспаления.

9.Фрагмент апиогалактуронана обуславливает иммуноадъювантное действие лемнана. Стимуляция гуморального иммунного ответа лемнаном происходит в результате увеличения проницаемости кишечной стенки для антигена.

Ю.Предложена концепция регуляции иммунитета млекопитающих пектиновыми полисахаридами: усиление или ослабление иммунного ответа происходит при образовании различных фрагментов пектиновой макромолекулы в ходе биотрансформации растительной пищи в желудочно-кишечном тракте.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Проведенные исследования выявили вклад структурных элементов макромолекулы в действие пектинов на иммунную реактивность. Установлено, что макромолекула всех пектинов содержит фрагменты, способные снижать или увеличивать активность лейкоцитов. Поэтому пектины, находящиеся в клеточной стенке растений, имеют потенциальную возможность, как к иммуностимулирующему, так и к иммуносупрессорному действию. Таким образом, пектины обладают уникальным свойствомполипотентностью структуры в отношении действия на иммунную систему.

Характер и направленность иммуномодулирующего действия в целом определяется условиями экстракции пектинов из растительного сырья. Изолированный пектин проявляет иммуносупрессорную активность, если при выделении пектина образуются преимущественно высокомолекулярные фрагменты галактуронана со свободными карбоксильными группами. Фрагменты разветвленной галактуронановой цепи частично препятствуют линейному галактуронану стимулировать продукцию противовоспалительных цитокинов, в результате чего эффект пектинов, содержащих такие фрагменты, изменяется со временем. Для проявления иммуностимулирующего действия необходимо наличие в изолированном пектине фрагментов разветвленной области. Однако стимулирующий эффект разветвленной области проявится только в том случае, если ему не препятствует ингибирующий эффект области галактуронана. Возможно, что в некоторых неактивных пектинах разветвленная и линейная области нивелируют действие друг друга. По нашим данным, разделение полисахаридных цепей по молекулярному весу может быть использовано для получения пектинов с заданными свойствами. Значительное присутствие в пектине устойчивых к пектинолизу фрагментов, таких как апиогалактуронан, обуславливает способность пектинов взаимодействовать с белковыми антигенами и стимулировать на них гуморальный иммунный ответ.

Зависимость иммуномодулирующего эффекта от особенностей строения была установлена при пероральном введении пектинов. Следовательно, полученные данные отражают эволюционно закрепленные закономерности реакции иммунной системы на присутствие пектиновых полисахаридов в ЖКТ. Пектиновые фрагменты экстрагируются из растительной пищи при ее переваривании. Соотношение образующихся углеводных цепей галактуронана, рамногалактуронана, апиогалактуронана и других фрагментов определяет функциональную активность лейкоцитов, модулируя тем самым иммунную устойчивость организма. Полученные данные, таким образом, позволяют предложить концепцию регуляции иммунитета млекопитающих пектиновыми полисахаридами. В основе данного представления лежит возможность реализации различных сценариев влияния растительной пищи на иммунную систему, обусловленная полипотентностью структуры пектиновой макромолекулы. Предполагается, что млекопитающие используют полипотентность пектинов путем избирательного поедания растений и изменения свойств гастроэнтеральной среды.

Манипулирование составом пектиновых фрагментов в ЖКТ открывает новое направление в иммуномодулирующей терапии. Можно выделить три основных преимущества применения пектиновых полисахаридов в иммунотерапии. Первое заключается в возможности сочетанного влияния на различные иммунные реакции, что позволяет учесть сложность организации и регуляции иммунной системы. Во-вторых, пектиновые полисахариды модулируют иммунную реактивность воздействуя на стенку кишечника, то есть, не нарушая внутренней среды организма. И, в-третьих, использование пектинов безопасно, так как в основе их иммуномодулирующего действия лежат молекулярные механизмы, сложившиеся в ходе эволюции млекопитающих. Выяснение этих механизмов представляется перспективной задачей будущих исследований.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Бурмистрова A. JL Иммунный гомеостаз и микросимбиоценоз. Метаморфозы и пути развития воспалительных заболеваний кишечника — Челябинск: Челябинский дом печати, 1997 216 с.
  2. OA., Оводова Р. Г., Шашков A.C., Чижов А. О., Гюнтер Е. А., Оводов Ю. С. Структурное исследование арабиногалактана и пектина из каллуса Silene vulgaris II Биохимия. 2006. Т.71. С.798−807.
  3. А.И., Прошева В. И., Гюнтер Е. А., Мельников К. Н. Влияние арабиногалактана и пектина из каллуса смолевки обыкновенной Silene vulgaris на калиевые токи нейрональной мембраны // Альм. клин. мед. 2008. Т.27. С.41−43.
  4. А.И., Прошева В. И., Полле, А .Я. Эффекты пектинового полисахарида из пижмы обыкновенной на ионные каналы нейрональной мембраны // Бюлл. эксп. биол. мед. 2004. № 10. С.439−441.
  5. Ф.В., Головченко В. В., Патова O.A., Дрозд H.H., Макаров В. А., Шашков A.C., Оводов Ю. С. Синтез сульфатированных пектинов и их антикоагулянтная активность // Биохимия. 2010. № 6. С.857−867.
  6. В.Н., Шелухина Н. П. Пектин: химия, технология, применение. М.: Издательство АТН РФ, 1995 387с.
  7. В.А., Бушнева O.A. Стабилизирующее влияние пектинового полисахарида смолевки на электрическую активность синусно-предсердной области сердца у лягушки // Бюлл. эксп. биол. мед. 2007. № 3. С.251−253.
  8. Е.А., Оводов Ю. С. Полисахариды клеточных культур Silene vulgaris II Прикл. биохим. микробиол. 2007а. Т.43, № 1. С.94−101.
  9. Е.А., Оводов Ю. С. Действие ультрафиолетового излучения на рост и полисахаридный состав каллусной культуры Silene vulgaris II Прикл. биохим. микробиол. 2007b. Т.43, № 4. С.518−526.
  10. Е.А., Попейко О. В., Оводов Ю. С. Продуцирование полисахаридов каллусными культурами ряски малой // Прикл. биохим. микробиол. 2008. Т.44, № 1. С. 117−122.
  11. Е.А., Борисенков М. Ф., Оводов Ю. С. Действие ультрафиолета на строение и антиоксидантную активность силенана каллуса смолевки обыкновенной //Прикл. биохим. микробиол. 2009. № 4. С.470−475.
  12. A.C., Лазарева Е. Б. Эффективность пектинов в комплексном лечении гнойно-воспалительных инфекций у больных с неотложной хирургической патологией // Эпидемиол. инфекц. болезни. 2006. № 3. С.47−51.
  13. Г. К. Иммунологический механизм действия полисахаридов дрожжевых клеток. Рига: Зинатне, 1990. — 152 с.
  14. A.A., Жуков H.A., Оводова Р. Г. Химическая характеристика водорастворимых полисахаридов каллусной ткани шиповника морщинистого Rosa rugosa Thumb // Химия растит. Сырья. 2008. № 1. С.51−55.
  15. A.B., Пилат Т. Л. Гигиенические аспекты использования пектина и пектиновых веществ в лечебно-профилактическом питании: пособие для врачей. М. 2009. 44 с.
  16. Д., Райкундалиа Ч. Иммуноферментный анализ // Антитела Методы. В 2-х кн. Кн.2: Пер с англ / под ред. Д. Кэтти, М.: Мир. 1991.-384 с.
  17. С.Н., Спиридонов В. Н. Пектины их свойства и применение //Раст. ресурсы. 1998. Т.34., №.1. СЛ11−119.
  18. В.Ф., Черешнев В. А. Патофизиология дисфункций нейтрофилов // Киров., 1998. 119 с.
  19. В.Г. Клиническая фармакокинетика основа лабораторного мониторинга лекарственных средств (лекция) // Клин. лаб. диагн. 1998. № 3. С.25−32.
  20. И. Л., Утешев Б. С. Иммуномодулирующее действие гетерополисахаридов, выделенных из соцветий ромашки // Антибиотики и химиотерапия. 1992. Т.37, № 6. С. 15−18.
  21. Т.Е. Состояние рынка пектинов в России. // Пищевые ингредиенты. 2004. № 1. С.9−10.
  22. Ю.Н., Оводова Р. Г., Ковалев В. В., Артюков A.A. Противоопухолевая активность зостерина пектина из морской травы Zostera marina II Химиотерапия опухолей в СССР. 1975. № 19. С. 141−144.
  23. Ю.Н., Артюков A.A., Козловская Э. П., Мирошниченко В. А., Еляков Г. Б. Зостерин // Владивосток: Дальнаука., 1997. 211 с.
  24. И.Л., Воропаева Н. Л., Семенова Л. Н., Рашидова С. Ш. Пектин. Тенденции научных и прикладных исследований // Химия природн. соедин. 2000. С.3−11.
  25. Ю.С. Полисахариды цветковых растений: структура и физиологическая активность // Биоорган, химия. 1998а. Т.24. С.483−501.
  26. Ю.С. Избранные главы биоорганической химии. Сыктывкар: Из-ство СГУ., 1998b. 222 с.
  27. Оводов Ю. С Биологически активные пектиновые полисахариды растений Республики Коми. // Север: наука и перспективы инновационного развития / Под ред. В. Н. Лаженцева. Сыктывкар: Из-ство Коми НЦ УрО РАН, 2006. С. 236−255.
  28. Оводов Ю.С. K-антигены бактерий. Строение K-антигенов бактерий. Биохимия. 2006. Т.71. С.1155−1174.
  29. Ю.С. Современные представления о пектиновых веществах // Биоорган, химия. 2009. Т.35. С.293−310.
  30. Ю.С., Головченко В. В., Гюнтер Е. А., Попов C.B. Пектиновые вещества растений европейского Севера' России.- Екатеринбург: УрО РАН., 2009. 105 с.
  31. Р.Г., Бушнева O.A., Головченко В. В., Попов C.B., Оводов Ю. С. Способ получения из растительного сырья полисахаридов, обладающих иммуномодулирующим действием // Патент РФ № 2 149 642, 2000а. Бюлл. № 15.
  32. Р.Г., Бушнева O.A., Шашков А.С, Оводов Ю. С. Выделение и исследование строения полисахаридов из смолевки обыкновенной Silene vulgaris II Биоорган, химия. 2000b. Т.26, № 9. С.686−692.
  33. Р. Г., Головченко В. В., Попов C.B. Выделение и химическая характеристика полисахаридов (вибурнанов) из шрота ягод калины обыкновенной Viburnum opulus II Химия раст. сырья. 1999. № 1. С.53−57.
  34. Р. Г., Головченко В. В., Шашков A.C., Попов C.B., Оводов Ю. С. Структурное исследование- и физиологическая активность лемнана, пектина из Lemna minor LII Биоорган, химия. 2000с. Т.26, № 10. С.743−751.
  35. Р.Г., Бушнева O.A., Шашков A.C., Чижов А. О., Оводов Ю. С. Структурное изучение пектина сабельника болотного Comarum palustre L // Биохимия. 2005. Т.70, № 8. С.1051−1062.
  36. Р.Г., Попов C.B., Бушнева O.A., Головченко В. В., Чижов А. О., Клинов Д. В., Оводов Ю. С. Разветвление галактуронанового кора макромолекулы пектина сабельника болотного Comarum palustre L II Биохимия. 2006. T.71, № 5. C.666−671.
  37. .В., Бутаков A.A., Щельцына Т. Д. Комплекс методов оценки функциональной активности фагоцитирующих клеток для выяснения повышенной чувствительности к инфекционным агентам // Хаитов P.M.,
  38. .В., Истамов Х. И. Экологическая иммунология. М.:ВНИРО, 1995. Гл. 6. С.106−162.
  39. А .Я., Оводова Р. Г., Попов C.B. Выделение и общая характеристика полисахаридов из пижмы обыкновенной, мать-и-мачехи и лопуха войлочного // Химия раст. сырья. 1999. № 1. С.33−38.
  40. А.Я., Оводова Р. Г., Оводов Ю. С. Способ получения из растительного сырья суммы полисахаридов // Патент РФ № 2 176 515, 2001а. Бюлл. № 34.
  41. А.Я., Оводова Р. Г., Шашков А.С, Оводов Ю. С. Выделение и общая характеристика полисахаридов пижмы обыкновенной Tanacetum vulgare LII Биоорган, химия. 2001b. Т.27, № 1. С.52−56.
  42. C.B. Взаимодействие фагоцитов млекопитающих с полисахаридами растений // Сыктывкар: Изд-ство Коми НЦ УрО РАН, 2002. 100с.
  43. Э.Г., Новиков А. И. Медицинские аспекты применения пектина. М.: Мед. книга, 2002. 96 с.
  44. В., Прозоровская М., Демченко В. Экспресс-метод определения средней эффективной дозы и ее ошибки // Фармакол. токсил. 1978. № 4. С.497−502.
  45. В.Г., Сафроненкова И. Г., Селиверстов Н. Г., Ситкин С. И., Тетерина JI.A. Пищевые волокна в клинической практике // Клин, персп. гастроэнтерол. гепатол. 2010. № 1. С.21−28.
  46. Е.П., Туманова Т. В., Оводова Р. Г., Головченко В. В., Зайцева О. О., Соломина О. Н., Степанова Е. С., Оводов Ю. С. Криозащитное действие лемнана, пектина ряски малой // Докл. акад. наук. 2008. № 4. С.559−561.
  47. О.Н., Сведенцов Е. П., Зайцева О. О., Полежаева Т. В., Оводова Р. Г., Головченко В. В., Лаптев Д. С., Худяков А. Н., Степанова Е. С., Оводов Ю. С. Криопротекторные свойства ряда пектинов // Докл. АН. 2010. № 4. С.559−561.
  48. И.А. Механизм повышения резистентности организма животных под действием растительных полисахаридов в норме' и при патологии: Автореф. дисс. .доктора биол.наук. М., 2008.
  49. И. А., Смирнов В. М. Фагоцитозстимулирующее действие полисахаридов донника желтого // Росс, мед.-биол.' вестник им. акад. И. П. Павлова. Рязань: РГМУ, 2003. № 1−2. С. 58−63.
  50. И. А., Порядин Г. В., Смирнов В. М. Действие полисахаридов на систему крови крыс // Бюлл. эксп. биол. мед. 2006″. № 5. С.530−533.
  51. И. А., Порядин Г. В., Смирнов В: М. Механизм повышения неспецифической резистентности организма под действием полисахаридов Донника желтого Ряз. обл. ин-т развития образования. — Рязань, 20 066. 144 с.
  52. М.Т., Ходжаева М. А. Растительные пектиновые вещества. Способы выделения пектиновых веществ // Химия природн. соедин. 1993. С.653−643.
  53. A.M. Эволюция пищеварения и принципы эволюции функций: Элементы современного функционализма. Л.: Наука, 1985. 544 с.
  54. .С., Ласкова И. Л., Афанасьев В. А. Иммуномодулирующая активность гетерополисахаридов ромашки аптечной при воздушном и иммерсионном охлаждении // Эксп. клин, фармакол. 1999. Т.62, № 6. С.52−55.
  55. Ф.С., Кузнецова Г. Г., Батищева С. Ю. Влияние обогащенных пектином пищевых продуктов на свойства потенциально патогенных представителей микрофлоры толстой кишки // Вопр. питания. 2006. № 4. С.46−49.
  56. P.M., Пинегин Б. В., Истамов Х. И. Экологическая иммунология // Москва: ВНИРО. 1995. 219 с.
  57. С. Выделение лимфоцитов и вспомогательных клеток //Лимфоциты. Методы. /Ред.Дж.Клаус. М.:Мир. 1990. Гл. 1. С. 15−65.
  58. Э.И., Бездетко Г. Н., Янькова В. И. Протективное действие зостерина при экспериментальном токсическом поражении печени // Бюлл. СО РАМН 1998. № 1. С.51−55.
  59. Ю.С., Хасина Э. И., Ковалев В. В., Шевцова О. И., Шестакова С. В. Эффективность пищевых некрахмальных полисахаридов при экспериментальном токсическом гепатите // Вопр. питания 2000. № 1−2. С.22−26.
  60. ХотимченкоЮ.С., Одинцова М. В., Ковалев В. В. Полисорбовит. -Томск: Изд-во НТЛ, 2001. 132 с.
  61. О.В. Выделение, структурная идентификация и химическая модификация пектиновых веществ растения амарант и некоторых модельных соединений: Автореферат дисс. канд. хим. наук. Казань, 2000. 20 с.
  62. Abbott D.W., Boraston A.V. Structural biology of pectin degradation by Enterobacteriaceae И Microbiol. Mol. Biol. Rev. 2008. Vol.72. P.301−316.
  63. Ajani U.A., Ford E.S., Mokdad A.H. Dietary fiber and C-reactive protein: findings from national health and nutrition examination survey data // J. Nutr. 2004. Vol.134. P. l 181−1185.
  64. Allen A.A., Flemstrom G., Garner A.S. Gastroduodenal mucosal protection //Physiol. Rev. 1993. Vol.73. P.823−826.
  65. Anderson J.W., Baird P., Davis R.H., Ferreri A., Knudtson M., Koraym A., Waters V., Williams C.L. Health benefits of dietary fiber // Nutr. Bull. 2009. Vol.67. P.188−205.
  66. Andoh A., Bamba Т., Sasaki M. Physiological and anti-inflammatory roles of dietary fiber and butyrate in intestinal functions // J. Parenter. Enteral. Nutr. 1999. Vol.23. P.70−73.
  67. Arslan N., Kar F. Filtration of sugar-beet pulp pectin extract and flow properties of pectin solutions // J. Fd. Eng. 1998. Vol.36. P. 113−122.
  68. Aspinall G.O. The polysaccharides. -Vol.1. -London.: Acad. Press Inc. -1982a. 340 p.
  69. Banic M., Brkic T., Anic B., Ljubicic N. Effect of cyclosporine in a murine model of experimental colitis//Dig. Dis. Sei. 2002. Vol.47. P.1362−1368.
  70. Barbeau, E. Interactions between dietary proteins and the immune system: implications for oral tolerance and food- related diseases // Fd. Proteins and Lipids. 1997. Vol.156. P.183−193.
  71. Barbier M., Thibault J.-F. Pectic substances of cherry fruits // Phytochemistry. 1982. Vol.21. P. l 11−115.
  72. Bashir M.E.H., Andersen P., Fuss I.J., Shi H.N., Nagler-Anderson C. An enteric helminth infection protects against an allergic response to dietary antigen // J. Immunol. 2002. Vol. 169. P.3284−3292.
  73. Bergman M., Djaldetti M., Salman H., Bessler H. Effect of citrus pectin on malignant cell proliferation // Biomol. Pharmacother. 2010. Vol.64. P.44−47.
  74. Bergstedt-Lindqvist, S., Moon H.B., Persson U., Moller G., Heusser C, Severinson E. Interleukin 4 instructs uncommitted B lymphocytes to switch to IgGl and IgE // Eur. J. Immunol. 1988. Vol.18. P. 1073−1077.
  75. Blandizzi C., Natale G., Gherardi G., Lazzeri G., Marveggio C., Colucci R., Carignani D., Del Tacca M. Acid-independent gastroprotective effects of lansoprazole in experimental mucosal injury // Dig. Dis. Sci. 1999. Vol.44. P.2039−2050.
  76. Bloom P.D., Boedeker E.C. Mucosal immune responses to intestinal bacterial pathogens // Semin. Gastrointest. Dis. 1996. Vol.7. P.151−166.
  77. Borovikova, L.V. Vagus nerve stimulation attenuates the systemic inflammatory response to endotoxin. Nature. 2000. Vol.405. P.458−462.
  78. Boyaka P.N., Marinaro M., Jackson R.J., van Ginkel F.W., Cormet-Boyaka E., Kirk E., Kensil C.R., McGhee J.R. Oral QS-21 requires early IL-4 help for induction of mucosal and systemic immunity // J. Immunol. 2001. Vol.166. P.2283−2290.
  79. Bruneau N., Bendayan M., Gingras D., Ghitescu L., Levy E., Lombardo D. Circulating bile salt-dependent lipase originates from the pancreas via intestinal transcytosis // Gastroenterology. 2003. Vol.124. P.470−480.
  80. Buisseret P. Drug treatment of allergic gastroenteritis // Am. J. Clin. Nutr. 1980. Vol.33. P.865−871.
  81. Burks A.W., Laubach S., Jones S.M. Oral tolerance, food allergy, and immunotherapy: implication for future treatment // J. Allerg. Clin. Immunol. 2008. Vol.121. P.1344−1350.
  82. Bushneva O.A., Ovodova R.G., Shashkov A.S., Ovodov Yu.S. Structural studies on hairy region of pectic polysaccharide from campion Silene vulgaris (iOberna behen L.) // Carbohydr. Polym. 2002. Vol.49. P.471−478.
  83. Cabrera J.C., Boland A., Messiaen J., Cambier P., Cutsen P.V. Egg box conformation of oligogalacturonides: the time-dependent stabilization of the elicitor-active conformation increases its biological activity // Glycobiology. 2008. Vol.18. P.473−482.
  84. Caffall K.H., Mohnen D. The structure, function, and biosynthesis of plant cell wall pectic polysaccharides // Carbohydr. Res. 2009. Vol.344. P. 1879−1900.
  85. Cammisotto P.G., Gingras D., Bendayan M. Transcytosis of gastric leptin through the rat duodenal mucosa // Am. J. Physiol. Gastrointest. Liver Physiol. 2007. Vol.293. P. G773-G779.
  86. Carpita N.C., Gideaut D.M. Structural models of primary cell walls in flowering plants: consistency of molecular structure with the physical properties of the walls during growth // Plant J. 1993. Vol.3. P. 1−30.
  87. Carpita N.C., McCann M. The cell wall // Biochemistry and molecular biology of plants. / Eds. B. Bushman, W. Gruissem, R. Jones. Am. Soc. Plant Physiol. 2000. P.52−108.
  88. Chen Y. Peripheral deletion of antigen-reactive T-cells in oral tolerance // Nature. 1995. Vol.376. P.177−180.
  89. Chen Y., Kuchroo V.K., Inobe J. Regulatory T cell clones induced by oral tolerance: suppression of autoimmune encephalomyelitis // Science. 1994. Vol.265. P.1237−1240.
  90. Chen C. H, Sheu M.T., Chen T.F., Wang Y.C., Hon W.C., Liu D.Z., Chung T.C., Liang Y.C. Suppression of endotoxin-induced proinflammatory responsesd by citrus pectin through blocking LPS signaling pathways // Biochem. Pharmacol. 2006. Vol.72. P.1001−1009.
  91. Chihara G., Maeda Y., Hamuro J. Inhibition of mouse sarcoma 180 by polysaccharides from Lentinus edodes (Berk.) sing // Nature. 1969. Vol.222. P.687−692.
  92. Christensen S.H. Pectins // Fd Hydrocoll. 1986. Vol.3. P.205−230.
  93. Chung Y., Chang S.Y., Chang Y.K. Kinetic analysis of oral tolerance: memory lymphocytes refractory to oral tolerance // J. Immunol. 1999. Vol.163. P.3692−3698.
  94. Chung Y., Lee S.H., Kim D.H., Kang Ch.Y. Complementary role of CD4+CD25+ regulatory T cells and TGF -a in oral tolerance // J. Leukoc: Biol. 2005.Vol.77. P.906−916.
  95. Cloutier M., Gingras D., Bendayan M. Internalization and transcytosis of pancreatic enzymes by the intestinal mucosa // J. Histochem. Cytochem. 2006. Vol.54. P.781−794.
  96. Coenen G.J., Bakx E.J., Verhoef R.P., Schols H.A., Voragen A.G.J. Identification of the connecting linkage between homo- or xylogalacturonan and rhamnogalacturonan type III Carbohydr. Polym. 2007. Vol.70. P.224−235.
  97. Compton R., Williams D., Browder W. The beneficial effect of enhanced macrophage function on the healing of bowel anastomoses // Amer. Surg. 1996. Vol.62. P.14−18.
  98. Czop J.K., Kay J. Isolation and characterization of P-glucan receptors on human mononuclear phagocytes// J. Exp. Med. 1991. Vol.173. P. 1511−1520.
  99. Dandona P., Aljada A., Chaudhuri A., Mohanty P., Garg R. Metabolic syndrome: a comprehensive perspective based on interactions between obesity, diabetes, and inflammation // Circulation. 2005. Vol.111. P. 1448−1454.
  100. Ditter B., Urbaschek R., Urbaschek B. Ability of various adsorbents to bind endotoxins in vitro and to prevent orally induced endotoxemia in mice // Gastroenterology. 1983. Vol.84. P. 1547−1552.
  101. Duan X., Cheng G., Yang E., Ruenroengklin N., Lu W., Luo Y., Jiang Y. Modification of pectin polysaccharides during ripening of postharvest banana fruit //Fd. Chem. 2008. Vol.111. P. 144−149.
  102. Dubois B., Chapat L., Goubier A., Papiernik M., Nicolas J.F., Kaiserlian D. Innate CD4+CD25+ regulatory T cells are required for oral tolerance and inhibition of CD8+ T cells mediating skin inflammation // Blood. 2003. Vol.102. P.3295−3301.
  103. Eastwood M., Kritchevsky D. Dietary fiber: how did we get where we are? // Annu. Rev. Nutr. 2005. Vol.25. P. 1−8.
  104. Eftimiadi C., Buzzi E., Tonetti M., Buffa P. Short-chain fatty acids produced by anaerobic bacteria alter the physiological responses of human neutrophils to chemotactic peptide // J. Infect. 1987. Vol.14. P.43−53.
  105. Elson C.O., Beagley K.W., Sharmanov A.T., Fujihashi K. Hapten-induced model of murine inflammatory bowel disease: mucosa immune responses and protection by tolerance // J. Immunol. 1996. Vol.157. P.2174−2185.
  106. El-Tinue A.H., El-Safic A.S., Nour • A.A. A chemical study of pumpkin pectins substances//Trop. Sci. 1983. Vol.24. P.173−183.
  107. Elwell W.E., Dehn W.M. Pectic content of plant materials // Plant Physiol. 1939. Vol.14. P.809−816.
  108. Eriksson I., Andersson R., Aman P. Extraction of pectic substances from dehulled rapeseed // Carbohydr. Res. 1997. Vol.301. P. 177−185.
  109. Espevik T., Otterlei M., Skjak-Braek G. The involvement of CD14 in stimulation of cytokine production by uronic acid polymers // Eur. J. Immunol. 1993. Vol.23. P.255−261.
  110. Fisher H., Griminger P., Sestman E.R., Brush M.K. Dietary pectin and blood cholesterol // J. Nutr. 1965. Vol.86. P. l 13.
  111. Foitzik T., Kruscheweski M. Does microcirculation play a role in the pathogenesis of inflammatory bowel diseases // Int. J. Colorect. Dis. 1999. Vol.14. P.29−34.
  112. Friedman A., Weiner H.L. Induction of anergy or active suppression following oral tolerance is determined by antigen dosage // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1994. Vol.9. P.6688−6692.
  113. Fujihashi K., Dohi T., Kweon M.N., McGhee J.R., Koga T., Cooper M.D., Tonegawa S., Kiyono H. y8 T cells regulate mucosally induced tolerance in a dose dependent fashion // Int. Immunol. 1999. Vol.11. P. 1907−1916.
  114. Fukunaga T., Araki Y., Yasuoka T., Sasaki M., Fujiyama Y. Effects of the soluble fibre pectin on intestinal cell proliferation fecal short chain fatty acid production and microbial population // Digestion. 2003. Vol.67. P.42−49.
  115. Fuse K., Bamba T., Hosoda S. Effects, of pectin on fatty acid and glucose absorption and on thickness of unstirred water layer in rat and human intestine // Dig. Dis. Sci. 1989. Vol.34. P. l 109−1116.
  116. Gaboriau-Routhiau V., Moreau M.C. Gut flora allows recovery of oral tolerance to ovalbumin in mice after transient breakdown mediated by cholera toxin or Escherichia coli heat-labile enterotoxin // Pediatr. Res. 1996. Vol.39. P.625−629.
  117. Galvez J., Cruz T., Crespo E., Ocete M., Zarzuelo F. Rutoside as mucosal protective in acetic acid-induced rat colitis // Planta. Med. 1997. Vol.63. P.409−414.
  118. Garna H., Mabon N., Robert C., Cornet C., Nott K., Legros H., Wathelet B., Paquot M. Effect of extraction conditions on the yield and purity of apple pomace pectin precipitated but not washed by alcohol // J. Fd. Sci. 2007. Vol.72. P. C1-C9.
  119. Garcia-Ramallo E., Marques T., Prats N., Beleta ., Kunkel S.L., Goddesart N. Resident cell chemokine expression serves as the major mechanism for leukocyte recruitment during local inflammation // J. Immunol. 2002. Vol.169. P.6267−6473.
  120. Garside P., Mowat A.M., Khoruts A. Oral tolerance in disease // Gut. 1999. Vol.44. P.137−142.
  121. Gerhauser C. Cancer chemopreventative potential of apples, apple juice, and apple components // Planta Med. 2008. Vol.74. P. 1608−1624.
  122. Gilsenan P.M., Richardson R.K., Morris E.R. Thermally reversible acid-induced gelation of low-methoxy pectin // Carbohydr. Polym. 2000. Vol.41. P.339−349.
  123. Girard M., Turgeon S.L., Gauthier S.F. Quantification of the interactions between /?- lactoglobulin and pectin through capillary electrophoresis analysis // J. Agric. Fd. Chem. 2003. Vol.51. P.6043−6049.
  124. Giugliano D., Ceriello A., Esposito K. The effect of diet on inflammation. Emphasis on the metabolic syndrome // J. Amer. Coll. Cardiol. 2006. Vol.48. P.677−685.
  125. Glinsky V.V., Raz A. Modified citrus pectin anti-metastatic properties: one bullet, multiple targets // Carbohydr. Res. 2009. Vol.344. P.1788−1791.
  126. Golovchenko V.V., Ovodova R.G., Shashkov A.S., Ovodov Yu.S. Structural studies of the pectic polysaccharide from duckweed Lemna minor L. // Phytochemistry. 2002. Vol.60. P.89−97.
  127. Golubowska G. Changes of polysaccharide content and texture of potato during French fries production II Fd. Chem. 2005. Vol.90. P.847−851.
  128. Gonda R., Tomoda M., Ohara N., Takada K. Arabinogalactan core structure and immunological activities of ukonan C, an acidic polysaccharide from the rhizome of Curcuma longa //Biol. Pharm. Bull. 1993. Vol.16. P.235−238.
  129. Gonda R., Tomoda M., Shimizu N. Characterization of an acidic polysaccharide with immunological activities from tuber of Pinellia ternata II Biol. Pharm. Bull. 1994. Vol.17. P.1549−1553.
  130. Gonzalez-Molina E., Dominguez-Perles R., Moreno D.A., Garcia-Viguera C. Natural bioactive compounds of citrus limon for food and health // J. Pharm. Biomed. Anal. 2010. Vol.51. P.327−345.
  131. Gulfi M., Arrigoni E., Amado R. In vitro fermentability of a pectin fraction rich in hairy regions // Carbohydr. Polym. 2007. Vol.67. P.410−416.
  132. Gunal O., Oktar B.K., Sungur M., Arbak S. Estradiol treatment ameliorates acetic acid-induced//Inflammation. 2003. Vol.27. P.351−359.
  133. Giinter E.A., Ovodov Yu.S. Changes in cell wall polysaccharides of Silene vulgaris callus during culture // Phytochemistry. 2002. Vol.59. P.703−708.
  134. Harang M., Szodorag P., Paragh G. Atherosclerosis: a complex interplay of inflammatory processes // Clin. Lipidol. 2009. Vol.4. P. 167−187.
  135. Harris P.J., Ferguson L.R. Dietary fibers may protect or enhance carcinogenesis // Mutat. Res. 1999. Vol.443. P.95−110.
  136. Hartman F.W., Schelling V., Harkins H.N., Brush B. Pectin solution as a blood substitute // Ann. Surg. 1941. Vol.114. P.212−224.
  137. Haworth R., Piatt N., Keshav S. The macrophage scavenger receptor type A is expressed by activated macrophages and protects the host against lethal endotoxic shock//J. Exp. Med. 1997. Vol.186. P.1431−1439.
  138. Hayashi A., Gillen A.C., Lott J.R. Effects of daily oral administration of quercetin chalcone and modified citrus pectin on implanted colon-25 tumor growth in Balb-c mice // Alternative Med. Rev. 2000. Vol.5. P.546−552.
  139. Hirano M., Matsumoto T., Kiohara H., Yamada H. Lipopolysaccharide-independent limulus amebocyte lysate activating, mitogenic and anticomplementary activities of pectic polysaccharides from Chinese herbs' // Planta Med. 1994. Vol.60. P.248−252.
  140. Hogles L., Vulevic L. Diet, immunity and functional foods // in Gastrointestinal microbiota and regulation of the immune system. Chapter 7. / Eds. G.B.Huffuagle, M.C.Noverr, 2008. Landes Biosc. and Springer Science. — P.24−54.
  141. Holloway W.D., Tasman-Jones C., Maher K. Pectin digestion in humans // Am. J. Clin. Nutr. 1983. Vol.37. P.253−255.
  142. Inase N., Schreck R.E., Lazarus S.C. Heparin inhibits histamine release from canine mast cells // Am. J. Physiol. 1993. Vol.264. P.387−390.
  143. Ishihara K., Komatsu W., Saito H., Shinohara K. Comparison of the effects of dietary a-linolenic, stearidonic, and eicosapentaenoic acids on production of inflammatory mediators in mice. // Lipids. 2002. Vol.37. P.481−486.
  144. Ishii T., Matsunaga T. Pectic polysaccharide rhamnogalacturonan II is covalently linked to homogalacturonan // Phytochemistry 2001. Vol.57. P.969−974.
  145. Itoh H., Kataoka H., Tomita M., Hamasuna R., Nawa Y., Kitamura N., Koono M. Upregulation of HGF activator inhibitor type 1 but not type 2 along with regeneration of intestinal mucosa // Am. J. Physiol. Gastrointest. Liver. Physiol. 2000. Vol.278−635.
  146. Jarvis M.C. Plant cell wall: supramolecular assemblies // Fd. Hydrocoll. 2009. Vol.20. P.245−253.
  147. Johnston G.R., Webster N.R. Cytokines and the immunomodulatory function of the vagus nerve // Brit. J. Anaesth. 2009. Vol.102. P.452−462.
  148. Joslyn M.A. The chemistry of protopectin // Adv. Fd. Res. 1962. Vol.11. P.1−25.
  149. Kalergis A.M., Ravetch J.V. Inducing tumor immunity through the selective engagement of activating Fey receptors on dendritic cells // J. Exp. Med. 2002. Vol.195. P.1653−1659.
  150. Kang B.K., Schlesinger L.S. Characterization of mannose receptor-dependent phagocytosis mediated by Mycobacterium tuberculosis lipoarabinomannan//Infect. Immunol. 1998. Vol.66. P.2769−2777.
  151. Kardosova A., Capek P. Chemical and C13 NMR of a arabinogalactan from the leaves of Plantago lanceolata L. var. Libor. // Col. Czech. Chem. Commun. 1994. Vol.59. P.2714−2719.
  152. Karpus W.J., Kennedy K.J., Kunkel S.L., Lukacs N. Monocyte chemotactic protein 1 regulates oral tolerance induction by inhibition of T helper cell 1-related cytokines // Exp. Med. 1998. Vol.187. P.733−741.
  153. Kato H., Fujihashi K., Kato R., Yuki Y., MeGhee I. Oral tolerance revisited: prior oral tolerization abrogates Cholera toxin induced mucosal IgA responses // Immunology. 2001. Vol.166. P.3114−3121.
  154. Kendall C.W.C., Esfahani A., Jenkins D.J.A. The link between dietary fibre and human health // Fd. Hydrocoll. 2010. Vol.24. P.42−48.
  155. Kertesz Z.I. The pectic substances // New York, London: Acad. Press. -1951.-629 p. «
  156. Khotimchenko M.Y., Kolenchenko E.A., Khotimchenko Y.S. Zinc-binding activity of different pectin compounds in aqueous solutions // J. Coll. Interface Sci. 2008. Vol.323. P.216−222.
  157. Khotimchenko M.Y., Kolenchenko E.A., Khotimchenko Y.S., Khozhaenko
  158. E.V., Kovalev V.V. Cerium binding activity of different pectin compounds in aqueous solutions // Coll. Surf. B: Biointerfaces. 2010. Vol.77. P. 104−110.
  159. Kiechl S., Egger G., Mayr M., Wiedermann C.J., Bonora E., Oberhollenzer
  160. F., Muggeo M., Xu Q., Wick G., Poewe W., Willeit J. Chronic infections and the risk of carotid atherosclerosis: prospective results from a large population study // Circulation. 2001. Vol.103. P.1064−1070.
  161. Kilpatrick D.C. Immunological aspects of the potential role of dietary carbohydrates and lectins in human health // Eur. J. Nutr. 1999. Vol.38. P.107−117.
  162. Kim J-H., Kang T-W., Ahn Y-K. The effect of plantago-mucilage A from the seeds of Plantago asiatica on the immune responses in ICR mice // Arch. Pharm. Res. 1996. Vol.19. P.137−142.
  163. Kim P.-H., Eckmann L., Lee W.J., Han W., Kagnoff M.F. Cholera toxin and cholera toxin B subunit induce IgA switching through the action of TGF-bll // J. Immunol. 1998. Vol.160. P. l 198−1203.
  164. King D.E., Egan B.M., Woolson R.F., Mainous A.G., Al-Solaiman Y., Jesri A. Effect of a high-fiber diet vs a fiber-supplemented diet on C-reactive protein level // Arch. Intern. Med. 2007. Vol.167. P.502−506.
  165. Kiyohara H., Matsumoto T., Nagai T., Kim S.J., Yamada H. The presence of natural human antibodies reactive against pharmacologically active pectic•jpolysaccharides from herbal medicines // Phytomedicine. 2006. Vol.13. P.494−500.
  166. Kiyohara H., Matsumoto T., Takemoto N. Effect of oral administration of a pectic polysaccharide fraction from a Kampo (Japanese herbal) medicine 'Juzen-taiho-to' on antibody response of mice // Planta Med. 1995. Vol.61. P.429−434.
  167. Kjaer T.M., Frokiaer H. Modulation of ovomucoid-specific oral tolerance in mice fed plant extracts containing lectins // Br. J. Nutr. 2002. Vol.88. P.671−680.
  168. Knaup B., Kempf M., Fuchs A., Valotis A., Kahle K., Oehme A., Richling E., Schreier P. Model experiments mimicking the human intestinal transport and metabolism of D-galacturonic acid and amidated pectin // Mol. Nutr. Fd. Res. 2008. Vol.52. P.840−848.
  169. Ko J.K., Lam F.Y., Cheung A.P. Amelioration of experimental colitis by Astragalus membranaceus through anti-oxidation and inhibition of adhesion molecule synthesis // World J. Gastroenterol. 2005. Vol.11. P.5787−5794.
  170. Kobayashi M., Matsushita H., Yoshida K., Tsukiyama R., Sugimura T.5 Yamamoto K. In vitro and in vivo anti-allergic activity of soy sauce // Int. J. Mol. Med. 2004. Vol.14. P.879−884.
  171. Kolaczkowska E., Seljelid R., Plytycz B. Role of mast cells in zymosan-induced peritoneal inflammation in Balb/c and mast cell-deficient WBB6F1 mice // J. Leukoc. Biol. 2001. Vol.69. P.33−42.
  172. Kong F., Singh R.P. Digestion of raw and roasted almonds in simulated gastric enviroment//Fd. Biophys. 2009. Vol.4 P.365−377.
  173. Korotkova M., Telemo C., Hanson L., Strandvik B. Modulation of neonatal immunological tolerance to ovalbumin by maternal essential fatty acid intake // Pediatr. Allerg. Immunol'. 2004. Vol.15. P. l 12−122.
  174. Koruda M.J., Rolandelli R.H., Settle R.G., Saul S.H., Rombeau J.L. The effect of a pectin-supplemented elemental diet on intestinal adaptation to massive small bowel resection // J. Parenter. Enteral. Nutr. 1986. Vol.10. P.343−350.
  175. Koubala B.B., Kansci G., Mbome L.I., Crepeau M.J., Thibault J.F., Ralet M.C. Effect of extraction condition on some physicochemical characteristics of pectin from Ameloiree and Mango mango peels // Fd. Hydrocoll. 2008. Vol.22. P.1345−1351.
  176. Krack A. The importance of the gastrointestinal system in the pathogenesis of heart failure // Eur. Heart J. 2005. Vol.26. P.2368−2374.
  177. Kraus J., Franz G. Immunomodulating effects of polysaccharides from medicinal plants. In Microbial Infections, Ed. Friedman H. Plenum Press, New York, 1992. P.299−308.
  178. Kurup P.A., Jayakumari N., Indira M. Diet, nutrition intake, and metabolism in populations at high and low risk for colon cancer. Comparison, intake, and excretion of fiber constituents // Am. J. Clin. Nutr. 1984. Vol.40. P.942−946.
  179. Kweon M.N., Fujihashi K., Wakatsuki Y., Koga T. Mucosally induced systemic T cell unresponsiveness to ovalbumin requires CD40 ligand-CD40 interactions // J. Immunol. 1999. Vol.162. P. 1904−1909.
  180. Larsen J.L. Effect of pectin on secretion in pig jejunal loops challenged to enteropathogenic E. coli or enterotoxin (LT). A preliminary report // Nord. Vet. Med. 1981. Vol.33. P.218−223.
  181. Lee S.H., Starkey P.M., Gordon- S. Quantitative analysis of total macrophage content in adult mouse tissues. Immunochemical studies with monoclonal antibody F4/80 // J. Exp. Med. 1985. Vol.61. P.475−489.
  182. Lee J.C., Pak S.C., Lee S.H. Asian pear pectin administration during presentation inhibits allergic response to ovalbumin in BALB/c mice // J. Altern. Compl. Med. 2004. Vol.10. P.527−534.
  183. Lee J.H., Shim J.S., Chung M.S., Lim S.T., Kim K.H. Inhibition of pathogen adhesion to host cells by polysaccharides from Panax ginseng II Biosci. Biotechnol. Biochem. 2009. Vol.73. P.209−212.
  184. Lee J.H., Shim J.S., Lee J.S., Kim M.K., Chung M.S., Kim K.H. Pectin-like acidic polysaccharide from Panax ginseng with selective anti-adhesive against pathogenic bacteria // Carbohydr. Res. 2006. Vol.341. P. 1154−1163.
  185. Leishman A., Garside P., Mowat A. Induction of oral tolerance in the primed immune system: influence of antigen persistence and adjuvant form // Cell Immunol. 2000. Vol.202. P.71−78.
  186. Leouxel O., Cavalier D.M., Liepman A.H. Keegstra K. Biosynthesis of plant cell wall polysaccharides a complex process // Curr. Op. Plant Biol. 2006. Vol.9. P.621−630.
  187. Levy L. Carrageenan paw edema in the mouse // Life Sci. 1969. Vol.8. P.601−606.
  188. Lichtenstein G.R., Deren J., Kennedy S., Ware J. H, The Bowman Birk protease inhibitor: a novel therapy for patients with active ulcerative colitis // Gastroenterology. 2002. Vol.122. P.60−69.
  189. Lindberg R.L., Johansen M.V., Nilsson C., Nansen P. An immunohistological study of phenotypic characteristics of cells of the inflammatory response in the intestine of Schistosoma bovis- infected goats // Parasitology. 1999. Vol.118. P.91−99.
  190. Linseisen J., Schulze M.B., Saadatian-Elahi M., Kroke A., Miller A.B., Boeing H. Quantity and quality of dietary fat, carbohydrate, and fiber intake in the German EPIC cohorts // Ann. Nutr. Metab. 2003. Vol.47. P.37−46.
  191. Lipkin M., Reddy B., Newmark H., Lamprecht S.A. Dietary factors in human colorectal cancer // Annu. Rev. Nutr. 1999. Vol.19. P.545−586.
  192. Lis H., Sharon N. Lectins: Carbohydrate-specific proteins that mediate cellular recognition // Chem. Rev. 1998. Vol.98. P.637−674.
  193. Liu L.S., Fishman M.L., Hicks K.B. Pectin in controlled drug delivery a review // Cellulose. 2007. Vol.14. P. 15−24.
  194. Liu L., Fishman M.L., Hicks K. B, Kende M. Interaction of various pectin formulations with porcine colonic tissue // Biomaterials. 2005. Vol.26. P.5907−5916.
  195. Liu H.Y., Huang Z.L., Yang G.H., Lu W.Q., Yu N.R. Inhibitory effect of modified citrus pectin on liver metastases in a mouse colon cancer model // World J. Gastrenterol. 2008. Vol.14. P.7386−7391.
  196. Liu L., Wang Z., Pan B., Zhou S. Effect of Rheum tanguticum polysaccharide on TNBS-induced colitis and CD4+T cells in rats // Word. J. Gastoenterol. 2003. Vol.9. P.2284−2288.
  197. Liu S.P., Dong W.G., Wu- D.F., Luo H.S. Protective effect' of angelica sinensis polysaccharide on experimental immunological colon injury in rats.// Word. J. Gastoenterol. 2003. Vol.9. P.2786−2790.
  198. Long E.M., Millen B., Kubes P., Robbins S.M. Lipoteichoic acid induces unique inflammatory responses when compared to other toll-like receptor 2 ligands // PLoS One. 2009. Vol.4 P. e5601.
  199. Lunn J., Buttriss J.L. Carbohydrates and dietary fibre // Nutr. Bull. 2007. Vol.32. P.21−64.
  200. Luyer M.D. Nutritional stimulation of cholecystokinin receptors inhibits inflammation via the vagus nerve. // J. Exp. Med. 2005. Vol.202. P. 1023−1029.
  201. Ma Y., Griffith J., Chasan-Taber L., Olendzki B.C., Jackson E., Stanek E.J., Li W., Pagoto S.L., Hafner A.R., Ockene I.S. Association between fiber andserum C-reactive protein // Am. J. Clin. Nutr. 2006. Vol.83. P.760−766.
  202. Mabley J.G., Pacher P., Liaudet L., Soriano F.G., Hasko G., Marton A., Scabo C., Salzman A.L. Inosine reduces inflammation and impoves survival in a murine model of colitis // Am. J. Physiol. 2003. Vol.284. P. G138-G144.
  203. MacClure R.D., Warren K.W., Fallis L.S. Intravenous pectin solution in the prophylaxis and treatment of shock // Can. Med. Ass. J. 1944. Vol.51. P.206−210.
  204. Mahgoub A. Evaluating the prophylactic potential of zafirlukast against the toxic effects of acetic acid on the rat colon // Toxicol. Lett. 2003. Vol.145. P.79−87.
  205. Mantovani A., Allavena P., Sica A., Balkwill F. Cancer-related inflammation //Nature. 2008. Vol.454. P.436−444.
  206. Mao Y., Kasravi B., Nobaek S., Wang D., Jeppsson B. Pectin-supplemented enteral diet reduces the severity of methotrexate induced enterocolitis in rats // Scand. J. Gastroenterol. 1996. Vol.31. P.558−567.
  207. Matsumoto N., Cyong L.C., Kiyohara H., Matsui H., Abe A., Hirano M., Danbara H., Yamada H. // Int. J. Immunopharmacol. 1993. Vol.15. P.683−693.
  208. Mayer L. Mucosal immunity and gastrointestinal antigen processing // Pediatr. Gastroenterol. Nutrit. 2000. Vol.30. P.4−12.
  209. Mayer L. Mucosal immunity // Pediatrics. 2003. Vol.111. P.1595−1600.
  210. Mesbahi G., Jamalian J., Farahnaky A. A comparative study on functional properties of beet and citrus pectins in food systems. // Fd Hydrocoll. 2005. Vol.19. P.731−738.
  211. Michel C.C., Curry F.E. Microvascular Permeability // Physiol. Rev. 1999. Vol.79. P.212−234.
  212. Mohammad A., Ota F., Kassu A., Sorayya K., Sakai T. Modulation of oral tolerance to ovalbumin by dietary protein in mice // J. Nutr. Sci. Vitaminol. (Tokyo). 2006. Vol.52. P. l 13−120.
  213. Morris V.J., Gromer A., Kirby A.R., Bongaerts R.J.M., Gunning A.P. Using AFM and force spectroscopy to determine pectin structure and (bio)fimctionality // Fd. Hydrocoll. 2010. doi:1Q.1016/i.foodhvd.20Q9.11.015
  214. Myint A.M., Leonard B.E., Steinbusch H.W., Kim Y.K. Thl, Th2, and Th3 cytokine alterations in major depression // J. Affect. Disord. 2005. Vol.88. P.167−173.
  215. Nangia-Makker P., Conclin I., Hogan V., Raz A. Inhibition of human cancer cell growth and metastasis in nude mice by oral intake of modified citrus pectin // J. Natl. Cancer Inst. 2002. Vol.94. P. 1854−1862.
  216. Newberry R.D., Stenson W. F., Lorenz R.G. Cyclooxygenase-2-dependent arachidonic acid metabolites are essential modulators of the intestinal immune response to dietary antigen //Nat. Med. 1999. Vol.5. P.900−906.
  217. Nie Y., Li Y., Wu H. Colloidal bismuth pectin: an alternative to bismuth substrate for a treatment of Helicobacter pylori -positive duodenal ulcer // Helicobacter. 1999. Vol.4. P.128−134.
  218. Nusrat A., Parkos C.A., Liang T.W., Carnes D.K., Madara J.L. Neutrophil migration across model intestinal epithelia: monolayer disruption and subsequent events in epithelial repair // Gastroenterol. 1997. Vol.113. P. 1489−500.
  219. Ohara N., Tomoda M., Shimizu N., Gonda R. Characterization of a novel acidic polysaccharide with immunological activities from the rhizome of the Cnidium officinale.!I Chem. Pharm. Bull. 1994. Vol.42. P. 1886−1889.
  220. Ohsumi Y., Lee Y. Mannose-receptor ligands stimulate secretion of lysosomal enzymes from rabbit alveolar macrophages // J. Biol. Chem. 1987. Vol.262. P.7955−7962.
  221. Olano-Martin E., Williams M.R., Gibson G.R., Rastall R.A. Pectins and pectic oligosaccharides inhibit Escherichia coli 0157: H7 shiga toxin as directed towards the human colonic cell line HT29 // FEMS Microbiol. Lett. 2003. Vol.218. P.101−105.
  222. O’Neill M.A., Ishii T., Albersheim P., Darvill A.G. RhamnogalacturonanTI: Structure and function of a borate cross-linked cell wall pectic polysaccharide // Ann. Rev. Plant Biol. 2004. Vol.55. P.109−139.
  223. O’Neil M.A., York W.S. The composition and structure of plant primary cell walls // The Plant cell wall / Ed. J. K.C. Rose. Oxford: Blackwall Publ. Ltd, Ann. Plant Reviews. 2003. Vol.8. Chapt.l. P. l-54.
  224. Paiva L.A., Gurgel L.A., Silva R.M., Tome A.R. Anti-inflammatory effect of kaurenoic acid a diterpene from Copaifera langsdorffii on acetic acid-induced colitis in rats I I Vascular Pharmacol. 2002. Vol. P.39 303−39 307.
  225. Paulsen B.S., Barsett H. Bioactive pectic polysaccharides// Adv. Polym. Sci. 2005. Vol.186. P.69−101.
  226. Pedersen B., Hoffman-Goetz L. Exercise and the immune system: regulation, integration, and adaptation // Br. J. Sports Med. 2000. Vol.34. P.246−251.
  227. Pereyra R., Schmidt K.A., Wicker L. Interaction and stabilization of acidified casein dispersions with low and high metoxyl pectins // J. Agric. Fd. Chem. 1997. Vol.45. P.3448−3451.
  228. Pereira B.M., Silva B.P., Pereira N.A. Anti-inflammatory and immunologically active polysaccharides of Periandra mediterranea II Phytochemistry. 2000. Vol.54. P.409−413.
  229. Phatak L, Chang KC, Brown G. Isolation and characterization of pectin in sugar-beet pulp. //J. Fd. Sci. 1988. Vol.53. P.830−833.
  230. Pickup J.C. Inflammation and activated innate immunity in the, pathogenesis of type 2 diabetes //Diabetes Care. 2004. Vol.27. P.813−823.
  231. Pienta K.I., Nailk H., Anhtar A. et al. Inhibition of spontaneous metastasis in a rat prostate cancer model by oral administration of modified citrus pectin // J. Natl. Cancer. Inst. 1995. Vol.87. P.348−353.
  232. Pierre P., Denis O., Bazin H., Mbongolo E., Vaerman J.E. Modulation of oral tolerance to ovalbumin by cholera toxin and its B subunit // Eur J. Immunol. 1992. Vol.22. P.3179−3182.
  233. Pirman T., Ribeyre M.C., Mosoni L., remond D., Vrecl M., Salobir J., Agr E. Dietary pectin stimulates protein metabolism in the digestive tract // Nutrition. 2007. Vol.23. P.69−75.
  234. Polle A.Ya., Ovodova R.G., Shashkov A.S., and Ovodov Yu.S. Some structural features of pectic polysaccharide from tansy Tanacetum vulgare L // Carbohydr. Polym. 2002. Vol.49. P.337−344.
  235. Popov S.V., Popova G.Yu., Ovodova R.G., and Ovodov Yu.S. Antiinflammatory activity of the pectic polysaccharide from Comarum palustre II Fitoterapia. 2005b. Vol.76. P.281−287.
  236. Popper Z.A. Evolution and diversity of green plant cell walls // Curr. Op. Plant Biol. 2008. Vol.11. P.286−292.
  237. Pravda J. Radical induction theory of ulcerative colitis // World J. Gastroenterol. 2005. Vol.11. P.2371−2384.
  238. Ptichkina N.M., Markina O.A., Rumyantseva G.N. Pectin extraction from pumpkin with the aid of microbial enzymes. // Fd. Hydrocoll. 2008. Vol.22 P.192−195.
  239. Puhlmann J., Knaus U., Tubaro L. Immunologically active metallic ion-containing polysaccharides of Achyrocline satureoides II Phytochemistry. 1992. Vol.31. P.2617−2621.
  240. Rabbani G.H., Tera T., Zaman B. A rice based diet with green banana or pectin reduced diarrhoea in infants better than a rice alone diet //Gastroenterology. 2001. Vol.21. P.554−560.
  241. Rani B., Kawatra A. Fibre constituents of some foods // Plant Fds. Human Nutr. 1994. Vol.45. P.343−347.
  242. Rao C.V., Chou D., Simi B., Ku H., Reddy B. Prevention of colonic aberrant crypt foci and modulation of large bowel microbial activity by dietary coffee fiber, inulin and pectin//Carcinogenesis. 1998. Vol.19. P.1815−1819.
  243. Ravetch J.V., Bolland S. IgG Fc receptors. // Annu Rev. Immunol. 2001. Vol.19. P.275−279.
  244. Renard C.M., Thibault J.-F., Voragen A.G.J., van den Broek L.A.M., Pilnik W. Studies on apple protopectin. VI: Extraction of pectins from apple cell walls with rhamnogalacturonase // Carbohydr. Polym. 1993. Vol.22. P.203−210.
  245. Reeves P.G., Nielsen F.H., Fahey G.C. AIN-93 purified diets for laboratory rodents: final report of the American Institute of Nutrition adhoc writing committee on the reformulation of the AIN-76A rodent diet. // J. Nutr. 1993. Vol.123. P.1939−1951.
  246. Ridker P.M., Rifai N., Stampfer M.J., Hennekens C.H. Plasma concentration of interleukin-6 and the risk of future myocardial infarction among apparently healthy men // Circulation. 2000. Vol.101. P. 1767−1772.
  247. Roeck A.D., Mels J., Duvetta T., Love A.V., Hendrickx M. Carrot texture degradation kinetiks and pectin changes during thermal versus high-pressure/hogh-temperature proccessing: a comparative study // Fd. Chem. 2010. Vol.120. P. l 104−1112.
  248. Rolandelli H.R., Saul S.H., Settle R.G., Jacobs D.O. Comparison of parenteral nutrition and enteral feeding with pectin in experimental colitis in the rat //Am. J. Clin. Nutr. 1988. Vol.47. P.715−721.
  249. Round A.N., Rigby N.M., MacDougall A.J., Morris V.J. A new view of pectin structure revealed by acid hydrolysis and atomic force microscopy // Carbohydr. Res. 2010. Vol.345. P.487−497.
  250. Rosen H., Gordon S. Monoclonal antibody to the murine type 3 complement receptor inhibits adhesion of myelomonocytic cells in vitro and inflammatory cell recruitment in vivo //J. Exp. Med. 1987. Vol.166. P.1685−1701.
  251. Round A.N., Rigby N.M., MacDougall A.J., Ring S.G., Moriss V.J. // Carbohydr. Res. 2001. Vol.331. P.337−342.
  252. Rowley J.L. Raw apple diet in treatment of diarrhea // Am. J. Nurs. 1934. Vol.34. P.682−684.
  253. Qiu N., Tian Y., Qiao S., Deng H. Apple pectin behavior separated by ultrafiltration // Agric. Sei. Chin. 2009. Vol.8. P. 1193−1202.
  254. M.H., Matsumoto T., Kiyohara H., Yamada H. // Immunology. 1999. Vol.97. P.540−547.
  255. Samsom J., van Berkel N., van Helvoort J., Unger W., Jansen W., Thepen T., Mebius R.E., Verbeek S.S., Kraal G. FcRIIB regulates nasal and oral tolerance: a role for dendritic cells. // J. Immunol. 2005. Vol.174. P.5279−5287.
  256. Sanchez D., Muguerza B., Moulay L., Hernandes R., Mignel M., Aleixandre A. Highly methoxylated pectin improves insulin resistance and other cardiometabolic risk factors in Zucker fatty rats // J. Agric. Fd. Chem. 2008. Vol.56. P.3574−3581.
  257. Sande S.A. Pectin-based oral drug delivery to the colon // Expert Opin. Drug Deliv. 2005. Vol.2. P.441−450.
  258. Sanders L.M., Henderson C.E., Hong M.Y. An increase in reactive oxygen species by dietary fish oil coupled with the attenuation of antioxidant defenses by dietary pectin enhances rat colonocyte apoptosis // J. Nutr. 2004., Vol.134. P.3233−3238.
  259. Satoh H., Hara T., Murakawa D., Matsura M., takata K. Soluble dietary fiber protects against nonsteroidal anti-inflammatory drug-indiced damage to the small intestine in cats //Dig. Dis. Sci. 2010. Vol.55. P. 1264−1271.
  260. Sawabe Y.Y., Nakagomi K., Iwagami S., Suzuki S., Nakazawa H. Inhibitory effects of pectic substances on activated hyaluronidase and histamine release from mast cells // Biochim. Biophys. Acta. 1992. Vol.1137. P.274−278.
  261. Shepherd V.L., Hoidal J.R. Clearance of neutrophil-derived myeloperoxidase by the macrophage mannose receptor // Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 1990. Vol.2. P.335−340.
  262. Shi H.N., Liu H.Y., Nagler-Anderson C. Enteric infection acts as an adjuvant for the response to a model food antigen. // J. Immunol. 2000. Vol.165. P.6174−6182.
  263. Schley P.D., Field C.J. The immune enhancing effects of dietary fibers and prebiotics // Br. J. Nutr. 2002. Vol.87. P. S221-S230.
  264. Schmidgall J., Hensel A. Bioadhesive properties of polysaccharides against colonic epithelial membranes // Int. J. Biol. Macromol. 2002. Vol.30. P.217−225.
  265. Schols H.A., Bakx E.J., Shipper D., Voragen A.G.J. A xylogalacturonan subunit present in the modified hairy regions of apple pectin // Carbohydr. Res. 1995. Vol.279. P.265−279.
  266. Schols H.A., Voragen A.G.J. The Chemical structure of pectins // Pectins and their Manipulation / Ed G.B.Seymour and J.P.Knox Oxford: Blackwell Publ., 2002. P. 1−29.
  267. Sendl A., Mulinacci N., Vincieri F., Wagner H. Anti-inflammatory and immunologically active polysaccharides of Sedum telephium II Phytochemistry. 1993. Vol.34. P.1357−1362.
  268. Sengelov H., Kjeldsen L., Kroeze W., Berger M., Borregaard N. Secretory vesicles are the intracellular reservoir of complement receptor in human neutrophils // J. Immunol. 1994. Vol.153. P. 804−810.
  269. Sepehri H., Roghani M., Houdebine M.L. Oral administration of pectin-rich plant exract enchances C3 and C4 complement concentration in woman colostrums //Reprod. Nutr. Dev. 1998. Vol.38. P.255−260.
  270. Sharma R., Van Damme E.J.M., Peumans W.J. Lectin binding reveals divergent carbohydrate expression in human and mouse Peyer’s patches // Histochem. Cell Biol. 1996. Vol.105. P.459−465.
  271. Shepetkin I.A., Quinn M.T. Botanical polysacchrides: macrophage immunomodulation and therapeutic potential // Intern. Immunopharmacol. 2006. Vol.6. P.317−333.
  272. Shi H.N., Liu H.Y., Nagler-Anderson C. Enteric infection acts as an adjuvant for the response to a model food antigen // J. Immunol. 2000. Vol.165. P.6174−6182.
  273. Shimizu N., Tomoda M., Takada K., Gonda R. The core structure and immunological activities of glycyrrhizan UA, the main polysaccharide from the root of Glycyrrhiza uralensis II Chem. Pharm. Bull. 1992. Vol.40. P.2125−2128.
  274. Sila D.N., Smout C., Elliot F., Loev A.V., Hendrickx M. Non-enzymatic depolymerization of carrot pectin: — toward a better understanding of carrot texture during thermal processing // J. Fd. Sci. 2006. Vol:71. P. E1-E9.
  275. Smith P.D., Meng G., Shaw G.M., Li L. Infections of gastrointestinal tract macrophages by HIV-1' // J- Leuk. Biol. 1997. Vol-62. P:72−77.
  276. Sriamornsak P., Wattanakorn N., Takeuchi H. Study on the mucoadhesion mechanism of pectin by atomic force microscopy and mucin-particle method // Carbohydr. Pol. 2010. Vol.79. P.54−59.
  277. Srikanta B: M., Siddaraju M.N., Dharmesh S.M. A novel phenol-bound pectic polysaccharide from Decalepis hamiltonii with multi-step ulcer preventive activity // World J. Gastroenterol. 2007. Vol.13. P.5196−5207.
  278. Steege J., Buurman W., Arends J., Forget P. Presence of inducible, nitric oxide synthase, nitrotyrosine, CD68, and GDI4 in the small intestine in celiac disease // Lab. Invest. 1997. Vol.77. P.29−36.
  279. Stein G.M., Edlund U., Pfuller U., Bussing A., Schietzel M. Influence of polysaccharides from Viscum album L. on human lymphocytes, monocytes and granulocytes in vitro II Anticancer Res. 1999. Vol.19. P.3907−3914.
  280. Strasser G.R., Amado R. Pectic substances from red beet {Beta vulgaris L. var. conditiva). Part II. Structural characterization of rhamnogalacturonan II // Carbohydr. Polym. 2002. Vol.48. P.263−269.
  281. Strobel S., Mowat A. Immune responses to dietary antigens: oral tolerance // Immunol. Today. 1998. Vol.19. P.173−177.
  282. Su S.-B., Silver P.B., Wang P., Chan C.C., Caspi R.R. Cholera toxin prevents Thl-mediated autoimmune disease by inducing immune deviation // J. Immunol. 2004. Vol.173. P.755−761.
  283. Suzuki K., Totsuka M., Nakaji S., Yamada M. Endurance exercise causes interaction among stress hormones, cytokines, neutrophil dynamics, and muscle damage // J. Appl. Physiol. 1999. Vol.87. P. 1360−1367.
  284. Szabo G. Moderate drinking, inflammation, and liver disease // Ann. Epidemiol. 2007. Vol.17. P. S49-S54.
  285. Takai T. Roles of Fc receptor in autoimmunity. // Nat. Rev. Immunol. 2002. Vol.2. P.580−585.
  286. Tammariello A.E., Milner J.A. Mouse models for unraveling the importance of diet in colon cancer prevention // J. Nutr. Biochem. 2010. Vol.21. P.77−88.
  287. Thibault J.F., Renard C.M.G.C., Axelos M.A.V., Roger P. Crepeau, M.J. Studies of the length of homogalacturonic regions in pectins by acid hydrolysis // Carbohydr. Res. 1993. Vol.238. P.271−286.
  288. Thimm J.C., Barritt D.J., Ducker W.A., Melton L.D. Pectins influence microfibril aggregation in celery cell walls: an atomic force microscopy study // J. Struct. Biol. 2009. Vol.168. P.337−344.
  289. Titus R.G., Chiller J.M. Orally induced tolerance. Definition at cellular level //Int. Archs. Allerg. Immunol. 1981. Vol.65. P.323−338.
  290. Thornton B.P., Vetvicka V., Pitman M. Analysis of the sugar specificity and molecular location of the (3-glucan-binding lectin site of complement receptor type 3 (CDlib/CD 18) // J. Immunol. 1996. Vol.156. P. 1235−1246.
  291. Togawa J., Nagase H., Tanaka K., Inamori M., Sekihara H., Lactoferrin reduces colitis in rats via modulation of the immune system and correction of cytokine imbalance // Am. J. Physiol. Gastrointest. Liver Physiol. 2002. Vol.283. P: 187−195.
  292. Tolstoguzov V. Some thermodynamic considerations in food-formulation // Fd. Hydrocoll. 2003. Vol.17. P. 1−23.
  293. Tomoda M., Gonda R., ShimizuN., Ohara N. Characterization of an acidic polysaccharide having immunological activities from the tuber of Alisma orientale //Biol. Pharm. Bull. 1994a. Vol.17. P.572−576.
  294. Tomoda M., Hirabayashi K., Shimizu N. The core structure of ginsenan PA, a phagocytosis-activating polysaccharide from the root of Panax ginseng II Biol. Pharm. Bull. 1994b. Vol.17. P:1287−1291.
  295. Tomoda M., Matsumoto K., Shimizu N. An acidic polysaccharide with immunological activities from the root of Paeonia lactiflora II Biol. Pharm. Bull. -1994c. Vol.17. P. l 161−1164.
  296. Tomoda M., Miyamoto H., Shimizu N. Characterization of two polysaccharides having activity on the reticuloendothelial system from the root of Rehmannia glutinosa II Chem. Pharm. Bull. 1994d. Vol.42. P.625−629.
  297. Tompkins C.A. Food product for treatment of infantile diarrhea. US patent 2.139.139−1938.
  298. Topping D.L., Clifton P.M. Short-chain fatty acids and human colonic function: roles of resistant starch and nonstarch polysaccharides // Physiol. Rev. 2001. Vol.8l.P. 1031−1054.
  299. Tracey. K. Physiology and immunology of the cholinergic antiinflammatory pathway // J. Clin. Invest. 2007. Vol.117. P.289−296.
  300. Truswell A.S., Beynen A.C. II Dietary Fiber / Ed T.E. Schweizer, C.A. Edwards. Lnd.: Springer Verl., 1992. P.295−348.
  301. Udall J.N., Pang K., Fritze L., Kleinman R., Walker W.A. Development of gastrointestinal mucosal barrier. I. The effect of age on intestinal permeability to macromolecules // Pediatr. Res. 1981. Vol.15. P.241−244.
  302. Ulevitch R.J., Tobias P. S. Receptor-dependent mechanisms of cell stimulation by bacterial endotoxin // Annu. Rev. Immunol. 1995. Vol.13. P.437−457.
  303. Umar S., Morris A.P., Kourouma F., Sellin J.H. Dietary pectin and calcium inhibit colonic proliferation in vivo by differing mechanisms // Cell Prolif. 2003. Vol.36. P.361−375.
  304. Vazques-Torres A., Jones-Carson J., Baumler A. Extraintestinal dissemination of Salmonella by CD18-expressing phagocytes // Nature. 1999. Vol.401. P.804−807.
  305. Verdu E.A., Deng Y., Bercik P., Collins S.M. Modulatory effects of estrogen in two murine models of experimental colitis // Am. J. Physiol. Gastrointest. Liver Physiol. 2002. Vol.283. P. G27-G36.
  306. Voragen A.G.J., Coenen G.J., Verhoef R.P., Schols H.A. Pectin, a versatile polysaccharide present in plant cell walls // Struct. Chem. 2009. Vol.20. P.263−275.
  307. Vos A.P., M’Rabet L., Stahl B., Boehm G., Garssen J. Immune-modulatory effects and potential- working mechanisms of orally applied nondigestible carbohydrates // Clin. Rew. Immunol. 2004. Vol.27. P.97−140.
  308. Wagner H. Immunostimulants of plant origin // Croatica Chem. Acta. 1995. Vol.68. P.615−626.
  309. Wagner H., Stuppner H., Wolfram S., Zenlc M. Immunologically active polysaccharides of Echinacea purpurea cell cultures // Phytochemistry. 1988. Vol.27. P. l 19−126.
  310. Wai W., Alkarkhi A.F.M., Easa A.M. Effect of extraction conditions on yield and degree of esterification of durian rind pectin: an experimental design // Fd. Bioprod. Proc. 2010. Vol.88. P.209−214.
  311. Wang L., Brown J.R., Varki A., Esko J.D. Heparin’s anti-inflammatory effects require glucosamine // J. Clin. Invest. 2002. Vol.110. P.127−136.
  312. Wang X.S., Dong Q., Zuo J.P., Fang J.N. Structure and potential immunological activity of a pectin from Centella asiatica (L.) Urban // Carbohydr. Res. 2003. Vol.338. P.2393−2402.
  313. Wang H. Nicotinic acetylcholine receptor alpha7 subunit is an essential regulator of inflammation//Nature. 2003. Vol.421. P.384−388.
  314. Wang J.H., Luo J.P., Zha X.Q. Structural feature of a pectic polysaccharide from the stems of Dendrobium nobile Lindl. // Carbohydr. Polym. 2010. Vol.81.P. 1−7.
  315. Wang T.J., Gona P., Larson M.G., Levy D., Benjamin E.J., Vasan R.S. Multiple biomarkers and the risk of incident hypertension // Hypertension. 2007. Vol.49. P.432−438.
  316. Walter R.H., Sherman R.M., Lee C.Y. A comparison of methods for polyuronide methoxyl determination // J. Fd. Sci., 1983. Vol.48. P. 1006−1007.
  317. Ware J.H., Wan X.S., Newberne P., Kennedy A.R. Bowman-birk inhibitor concentrate reduces colon inflammation in mice with dextran sulfate sodium-induced ulcerative colitis // Dig. Dis. Sci. 1999. Vol.44. P.986−990.
  318. Weickert M.O., Pfeiffer A.F.N. Metabolic effects of dietary fiber consumption and prevention of diabetes // J. Nutr. 2008. Vol.138. P.439−442.
  319. Weiner H.L. Oral tolerance: immune mechanisms and treatment of outoimmune diseases // Immunol. Today. 19 971 Vol.18. P.335−343.
  320. Wellen K., Hotamisligi G.S. Inflammation, stress, and diabetes. // J. Clin. Invest. 2005. Vol.115. P. l 111−1119.
  321. Westerng B., Yousif O., Michaelsen T.E., Knutsen S.H., Samuelsen A.B. Pectin isolated from white cabbage structure and complement-fixing activity // Mol. Nutr. Fd. Res. 2006. Vol.50.746−755.
  322. Will F., Dietrich H. Characterization of residual pectins from raspberry juices II Carbohydr. Polym. 1994. Vol.25. P. 155−160.
  323. Wu H., Dwyer K.M., Fan Z., Shircore A., Fan J., Dwyer J.H. Dietary fiber and progression of atherosclerosis: the Los Angeles atherosclerosis study // Am. J. Clin. Nutr. 2003. Vol.78. P. 1085−1091.
  324. Wu L., Zaborina O., Zaborin A., Chang E.B., et al. High molecular-weight polyethylene glycol prevents lethal sepsis due to intestinal Pseudomonas aeruginosa II Gastroenterology. 2004. Vol.126. P.488−498.
  325. Yamada K., Tokunaga Y., Ikeda A. et al. Effect of dietary fiber on the lipid metabolism and immune function of aged Sprague-Dawley rats // Biosci. Biotechnol. Biochem. 2003. Vol.67. P.429−433.
  326. Yamaoka Y., Kawakita T., Kishihara T., Nomoto K. Effect of a traditional Chinese medicine Bu-Zhong-Yi-Qi-Tang on the protection against an oral infection with Listeria monocytogenes II Immunopharmacology. 1998. Vol.39. P.215−223.
  327. Yang L., Zhang L.M. Chemical structutal and chain cinformational characteristic of some bioactive polysaccharides isolated from natural sources // Carbohydr. Polym. 2009. Vol.76. P.349−361.
  328. Yapo B.M. Pectin quantity, composition and physicochemical behavior as influenced by the purification process // Fd. Res. Intern. 2009a. Vol.42. P. 1197−1202.
  329. Yapo B.M. Biochemical characteristics and gelling capacity of pectin from yellow passion fruit rind as affected by acid extractant nature // J. Agric. Fd. Chem. 2009b. Vol.57. P.1572−1578.
  330. Yeoh S., Shi J., Langrish T.A.G. Comparisons between different techniques for water based extraction of pectin from orange peels // Desalination. 2008. Vol.218. P.229−237.
  331. Yoo S.-H., Fishman M.L., Hotchkiss A.T. Jr., Lee H.G. Viscometric behavior of high-methoxy and low-methoxy pectin solutions // Fd. Hydrocoll. 2006. Vol.20. P.62−67.
  332. York W.S., Darvill A.G., McNeil M.A., Stevenson T.T., Albersheim P. Isolation and characterization of plant cell walls and cell-wall components // Meth. Enzymol. 1986. Vol.118. P.3−40.
  333. Yu K.W., Kiyohara H., Matsumoto T., Yang H.C., Yamada H. Characterization of pectic polysaccharides having intestinal immune system modulating activity from rhizomes of Atractylodes lancea DC // Carbohydr. Polym. 2001. Vol.46. P.125−134.
  334. Zablackis E., Huang J., Miiller B. Characterization of the cell-wall polysaccharides of Arabidopsis thaliana leaves // Plant Physiol. 1995. Vol.107. P.265−267.
  335. Zhao Z., li J., Wu X., Dai H., Gao X., Liu M., Tu P. Structures and immunological activities of two pectic polysaccharides from fruits of Ziziphus jujube Mill. Cv jinsixiaozao Hort. // Fd. Res. Intern. 2006. Vol.39. P.917−923.
  336. Ziv E., Bendayan M. Intestinal absorption of peptides through the enterocytes // Microsc. Res. Technol. 2000. Vol.49. P.346−352.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!