Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Генотипирование вируса африканской чумы лошадей различных серотипов

Диссертация: Генотипирование вируса африканской чумы лошадей различных серотипов
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Доказана возможность использования разработанных тест-систем для лабораторной диагностики вируса африканской чумы лошадей у экспериментально-зараженной лошади и в вируссодержащих образцах. Геном вируса АЧЛ был выявлен в образцах крови, селезёнки, печени, сердца, почек и других внутренних органов. При экспериментальном заражении лошади вирусом АЧЛ (штамм 9 серотипа «Уттар-Прадеш») регистрировали… Читать ещё >

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
  • ВВЕДЕНИЕ
    • 1. 1. Актуальность темы
    • 1. 2. Степень разработанности проблемы
    • 1. 3. Цель и задачи исследования
    • 1. 4. Научная новизна результатов исследований
    • 1. 5. Теоретическая и практическая значимость работы
    • 1. 6. Степень достоверности и апробация результатов работы
    • 1. 7. Публикации научных исследований
    • 1. 8. Основные положения, выносимые на защиту
    • 1. 9. Объём и структура работы
    • 1. 10. Личный вклад соискателя
  • 2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 2. 1. Характеристика вируса АЧЛ
      • 2. 1. 1. Морфология вириона АЧЛ
      • 2. 1. 2. Компоненты вириона АЧЛ
      • 2. 1. 3. Механизм вирусной репликации
      • 2. 1. 4. Структурная организация генома и полипептидный состав вируса
      • 2. 1. 5. Устойчивость к физико-химическим воздействиям
      • 2. 1. 6. Антигенные свойства вируса АЧЛ
    • 2. 2. Восприимчивые к АЧЛ животные
    • 2. 3. Природные очаги и роль переносчиков при вспышках АЧЛ
    • 2. 4. Клиническая картина АЧЛ
    • 2. 5. Эпизоотическая ситуация по АЧЛ в мире
    • 2. 6. Диагностика АЧЛ
      • 2. 6. 1. Выделение вируса из проб патологического материала
      • 2. 6. 2. Индикация вируса при помощи реакции связывания комплимента
      • 2. 6. 3. Индикация вируса АЧЛ при помощи реакции диффузной преципитации
      • 2. 6. 4. Типизация вируса. Реакция нейтрализации
      • 2. 6. 5. Реакция задержки гемагглютинации
    • 2. 7. Применение ПЦР в индикации вируса АЧЛ
    • 2. 8. Филогенетический анализ вируса АЧЛ молекулярно-генетическими методами

Генотипирование вируса африканской чумы лошадей различных серотипов (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

1.1 Актуальность темы. Африканская чума лошадей (африканская чума однокопытных) (A4JI) — вирусная болезнь, протекающая остро и подостро, характеризуется лихорадкой, отеками подкожной клетчатки и кровоизлияниями во внутренних органах. Болезнь относится к группе трансмиссивных инфекций, передается кровососущими насекомыми, носит сезонный характер, проявляясь в теплое, влажное время года (Сюрин В.Н. и др.1991). Экономический ущерб от этой инфекции слагается из падежа животных и затрат, связанных с проведением противоэпизоотических мероприятий (Сюрин В. Н. и др. 1991).

По современной классификации возбудитель африканской чумы лошадей принадлежит к роду Orbivirus семейства Reoviridae. Наличие сегментированного генома предопределяет появление реассортантов, что, в свою очередь, может привести к возникновению вариантов вируса с новыми биологическими свойствами. На данный момент известно о 9 серотипах A4JI.

В настоящее время в мире сохраняется неблагоприятная эпизоотическая ситуация по A4J1. В период с 1999 г. до 2011 г. в странах Африки (ЮАР, Нигерия, Намибия, Свазиленд, Лесото, Зимбабве) ежегодно регистрировались вспышки A4J1. Вспышки A4JI были зарегистрированы в Испании и Португалии в 1989 году, в Алжире и Марокко (1989;1991 гг.), в Эфиопии (2003 г.), в Сенегале (2007 г.) и в Южной Африке (2008;2009 гг.). Вспышка АЧЛ, произошедшая в Сенегале в 2007 г., была вызвана 2, 7 и 9 серотипами вируса. Она длилась 4 месяца, нанеся ущерб в 1,4 миллиона евро (Akakpo A.J., Diouf N. et al. 2007). Последняя вспышка была зарегистрирована в ЮАР в мае 2013 года. В настоящее время в странах Африки циркулируют 2, 3, 7 и 9 серотипы АЧЛ (www.oie.int.).

По данным Росстата за 2009 год в нашей стране насчитывается 1354 тысячи лошадей, из которых сельскохозяйственным предприятиям принадлежит 417 тысяч голов, что составляет 30,8% от общей численности: фермерским хозяйствам — 177 тысяч (13,1%) и частным владельцам — 760 тысяч.

56,1%). Из данных статистики видно, что наибольшее число лошадей принадлежит частным лицам, что связано с увеличением популярности конного спорта среди населения. В последние годы возрастает импорт лошадей из неблагополучных по A4J1 регионов, таких, как страны Аравийского полуострова и Африки, что актуализирует проблему контроля данной болезни и требует совершенствования средств и методов экспресс-диагностики A4JI.

6 Выводы.

1. Разработана тест-система для выявления генома вируса африканской чумы лошадей методом ОТ-ПЦР в режиме реального времени, позволяющая выявлять до 1,0 ^ ТЦД50/см РНК вируса АЧЛ.

2. При экспериментальном заражении лошади вирусом АЧЛ (штамм 9 серотипа «Уттар-Прадеш») регистрировали острую форму течения болезни, о чём свидетельствует наблюдаемая клиническая и патологическая картины, а также выявление генома вируса АЧЛ с помощью ОТ-ПЦР в режиме реального времени.

3. Доказана возможность использования разработанных тест-систем для лабораторной диагностики вируса африканской чумы лошадей у экспериментально-зараженной лошади и в вируссодержащих образцах. Геном вируса АЧЛ был выявлен в образцах крови, селезёнки, печени, сердца, почек и других внутренних органов.

4. Установлена первичная структура участков 2, 7 и 10 сегментов генома вируса АЧЛ для создания банка нуклеотидных последовательностей штаммов, хранящихся в коллекции микроорганизмов ГНУ ВНИИВВиМ Россельхозакадемии. Нуклеотидные последовательности участков 7,10 сегментов вируса АЧЛ штамма «Уттар-Прадеш» депонированы в международную базу данных ОепВапк (УР7-КС904 541-К83-КС904 542).

5. На основании филогенетического анализа последовательностей 2,7 и 10 сегментов вирусной РНК изолятов вируса АЧЛ («А-501″, „ОБ“, „114″, „Кагеп“ ,“ № 452″ ,» 18/60−100″, «Уттар-Прадеш») установлена их гомология с аналогичными последовательностями штаммов, имеющихся в ОепЬапк (1ЧСВ1) соответствующих серотипов, на основании чего сделан вывод о их принадлежности к данным серотипам.

7 Практические предложения.

Методические рекомендации по выявлению РНК вируса африканской чумы лошадей методом полимеразной цепной реакции в режиме реального времени", утвержденные академиком-секретарём Отделения ветеринарной медицины РАСХН Смирновым A.M. 15.08.2013 г., предлагаются для использования в научно-исследовательских лабораториях, занимающихся генодиагностикой.

В схему лабораторной диагностики вируса A4JI рекомендуется включить тест-систему «АЧЛ/ОТ-ПЦР РВ/5», для выявления генома вируса A4J1 методом ОТ-ПЦР отбирать пробы крови, селезёнки, лёгких, печени и сердца.

Для паспортизации штаммов вируса A4JT предлагается средство генотипирования изолятов на основе ПЦР и нуклеотидного секвёнирования амплифицированных фрагментов кДНК.

Полученные нуклеотидные последовательности 2, 7 и 10 сегментов генома использованы для характеристики штаммов вируса A4JI, депонированных в музее вирусных штаммов ГНУ ВНИИВВиМ Россельхозакадемии.

Показать весь текст

Список литературы

  1. , А. Н. Инфекционные и инвазионные болезни лошадей/ А. Н. Бурдов М.: Колос-1976. -С.52−61.
  2. , В. В. Молекулярная эволюция и филогенетический анализ.-М. :Бином, 2009.-С.90.
  3. , Д.В. ПЦР в реальном времени/ Д.В. Ребриков// М.: Бином -2009. -С.10−19.
  4. , В.Н. Ветеринарная вирусология.-2-e изд., перераб. и доп./ В. Н. Сюрин, Р. В. Белоусова, Н. В. Фомина.//-М.: Агропромиздат, 1991. -С.431.
  5. Эпизоотология с микробиологией М.: Агропромиздат, 1987. -С. 338−341.
  6. , К. П. Инфекционные болезни лошадей/ К. П. Юров М.: Росагропромиздат, 1991. -С.78−80.
  7. A comparison of the nucleotide sequences of cognate NS2 genes of three different orbiviruses/ V. Van Staden, J. Theron, B. J. Greyling, H. Huismans, L. H. Nel // Virology -1991. -Vol.185. -P.500−504.
  8. African horse sickness in Senegal: serotype identification and nucleotide sequence determination of segment S10 by RT-PCR. / C. Sailleau, J. Seignot, B. Davoust, E. Cardinale, B. Fall, C. Hamblin, S. Zientara // Vet. Record 2000. — Vol. 146. -P.107−108.
  9. Alexander, R.A. Studies on the neurotropic virus of horse sickness/ R.A. Alexander// Onderstepoort J. -1936, -Vol.17. -P.l 1−16.
  10. An outbreak of African horse sickness in dogs/L.B.J. VanRensburg, J. De Clerk, H.B. Groenewald, W.S. Botha // J. S. Afr. Vet. Assoc. -1981. -Vol.52. -P.323−325.
  11. Application of the polymerase chain reaction to the detection of African horse sickness viruses -1995/ S. Zientara, C. Sailleau, S. Moulay, A. Wade-Evans, C. Cruciere // J. Virol. Meth. 1995. -Vol. 53. -P. 47−54.
  12. Basak, A.K. Crystal-structure of the top domain of African horse sickness virus VP7 comparisons with bluetongue virus VP7/ A.K. Basak, P. Gouet, J. Grimes // J. Virol. — 1996. -Vol.70.- P.3797−3806.
  13. Basic Local Alignment Search Tool/NCBI3neKTpoHHbrapecypc. -PeacHMflocTyna: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/.- National center of biotechnology information.
  14. Bluetongue virus detection by two real-time RT-qPCRs targeting two different genomic segments/ J.F. Toussaint, C. Sailleau, E. Breard, S. Zientara, K. De Clercq// J. Virol. Meth.-2007.-Vol. 140. -P.l 15−123.
  15. Bouayoune, H. The Culicoides vectors of African horse sickness virus in Morocco: distribution and epidemiological implications/H.Bouayoune, J. Touti // Arch. Virol. Suppl. -1998.-Vol.l4.-P.l 13−125.
  16. Bourdin, P. Ecology of African horse sickness/ P. Bourdin // Proceedings Third international conference on equine infectious diseases, 1972, Paris, France. -P. 1230.
  17. Braverman, Y. Repellency of synthetic and plant-derived preparations for Culicoides imicolaiY. Braverman, A. Chizov-Ginsburg // Med. Vet. Entomol. -1997. -Vol.11.-P. 355−360.
  18. Bremer, C. W. A gel electrophoretic study of the protein and nucleic acid components of African horse sickness virus/C. W. Bremer // Onderstepoort Journal of Veterinary Research -1976. -Vol.43. -P. 193−199.
  19. Bremer, C. W. Characterization and cloning of the African horse sickness genome/C.W.Bremer, H. Huismans, A. A. Van-Dijk // Journal of General Virology -1990.- Vol.71. -P.793−799.
  20. Chomczynski, P. Single step method for RNA isolation by acid guanidiniumthiocyanate-phenol-chloroform extraction 1987/ P. Chomczynski, N. Sacchi// Anal. Biochem. 1987. — Vol.162. -P. 156−159.
  21. Clarke, D.H. Techniques for hemagglutination and hemagglutination-inhibition with arthropod-borne viruses / D.H.Clarke,, J. Casals // Am. J. Trop. Med. Hyg. -1958. Vol. 7 № 5.p.561−573.
  22. Cytology of monkey kidney cells infected with African horsesickness virus/Y.Ozawa,, I.G. Hopkins, A. Hazrati, A. Modjitabai, P. Kaveh// Nature (Lond.) -1965.-Vol.206-P. 1321−1323.
  23. Davies, F. Elephants and Zebras as possible reservoir hosts for african horse sickness virus/F. Davies, S. Otieno//Vet.Res. -1977.-Vol.100.-P. 291−291.
  24. Detection of African horse sickness virus by dot-blot hybridization using a digoxigenin-labeled probe/S. Moulay, S. Zientara, C. Sailleau, C. Cruciere // Molecular and Cellular Probes. -1995.- Vol.9. -P.233−237.
  25. Detection of African horse sickness virus by reverse transcription PCR/M. Stone-Marschat, A. Carville, A. Skowronek, W.W. Laegried // Journal of Clinical Microbiology -1994.- Vol.32.-P.697−700.
  26. Diagnosis of the African horse sickness virus serotype 4 by a one-tube, one manipulation RT-PCR reaction from infected organs/ S. Zientara, C. Sailleau, S. Moulay, C. Cruciere //J. Virol. Meth. 1994. — Vol.46. -P. 179−188.
  27. DuToit, R.M. The transmission of bluetongue and horse sickness by Culicoides/R. M. DuToit // Onderstepoort Journal of Veterinary Science and Animal Industry -1944. -Vol.19. -P.7−16.
  28. Epidemiology of African horse sickness: duration of viraemia in zebra {Equus burchelli)/ B.J. Barnard, R. Bengis, D. Keet, E. H. Dekker // Onderstepoort J. Vet. Res. 1994.- Vol.61. -P. 391−393.
  29. Erasmus, B.J. The pathogenesis of African horse sickness/ B.J. Erasmus// In Proceedings of the 3rd international conference of equine infectious diseases. Edited by Bryans J.T., Gerber H. 1973, Paris, France. -P. 1−11.
  30. Expression and characterization of the two outer capsid proteins of African horsesickness virus: the role of VP2 in virus neutralization/Martinez Torrecuadrada, J. L., H. Iwata, A. Venteo, J. I. Casal, P. Roy. // Virology.-1994.-Vol.202. -P.348−359.
  31. Germer, S. Single-tube genotyping without oligonucleotide probes/ S. Germer, Higuchi R. // Genome Res. -1999. Vol.9. -P.72−78.
  32. Gillies, S. Viral RNA polymerases: electron microscopy of reovirus reaction cores -1971/ S. Gillies, S. Bullivant, A.R. Bellamy // Science. 1971. — Vol. 174. P. 694 696.
  33. Grubman, M. J. Identification and characterization of the structural and nonstructural proteins of African horse sickness virus and determination of the genome coding assignments/M. J. Grubman, S. A. Lewis // Virology -1992.- Vol.186. -P.444−451.
  34. Hamblin, C. Antibodies in horses, mules and donkeys following monovalent vaccination against African horse sickness /C. Hamblin, P. S. Mellor, S.D. Graham // Epidemiol. Infect. -1991. -Vol.104.-P.365−371.
  35. Hazrati, A. Proceedings of 3rd International Conference on equine infectious diseases held at Paris/A. Hazrati //Paris -P.69−80.
  36. Henning, M.W. African horse sickness, perdesiekte, pestis equorum/ M.W. Henning// In Animal diseases of South Africa. Central News Agency Ltd, Pretoria, 1956.-P.789−808.
  37. , E.A. 3-D reconstruction of bluetongue virus tubules using cryo-electron microscopy -1992 /E.A. Hewat et al. // J. Struct. Biol. 1992.- Vol. 108. -P. 35−38.
  38. Hug, M.M. Gel-precipitin test for the diagnosis of South African horse sickness. MM. Hug, M.Y. Ansari// Bull. Off. Int. Epiz. -1962. Vol.58. -P.694−698.
  39. Huismans H. Characterization of the tubules associated with the replication of three different orbiviruses/ H. Huismans// Virology. 1979. — Vol. 92. -P. 397−406.
  40. Koekemoer J.J. Development of probes for typing African horsesickness virus isolates using a complete set of cloned VP2-genes/J.J.O. Koekemoer // J.Vir.Meth. -2000. Vol.88.-P.135−144.
  41. Koekemoer, J.J.O. Serotype-specific detection of African horsesickness virus byreal-time PCR and the influence of genetic variations/JJ.O. Koekemoer // J.Virol. Meth. -2008. -Vol.154. -P. 104−110.
  42. Koreanmedicallibraryengine/ КМЬЕЭлектронныйресурс. Режим доступа: www.kmle.co.kr. — Korean medical library engine.
  43. Laviada, M. D. Characterization of African horsesickness virus serotype 4 -induced polypeptides in Vero cells and their reactivity in Western immunoblotting/M. D. Laviada, M. Arias, J. M. Sanchez Vizcaino// J. Gen. Virol. -1993. -Vol.74.-P .81−87.
  44. Lubroth, J. African horsesickness and the epizootic in Spain 1987 /J.Lubroth //Equine Pract. -1988.-Vol.l0.-P.26−33.
  45. Martinez Torrecuadrada, J.L. Identification of a linear neutralization domain in the protein VP2 of African horse sickness virus/J. Martinez — Torrecuadrada, J.L. Casal, J.I. Casal// Virology. -1995.-Vol.210.-P.391−399.
  46. McIntosh, B.M. Immunological types of horsesickness virus and their significance in immunization/ B.M. Mcintosh// Onderstepoort J. Vet. Res. -1958. -Vol.35. -P.465−538.
  47. Mellor, P. S. African horse sickness. Review article/ P. S. Mellor, C. Hamblin // Vet.Res. 2004. -Vol.35. -P.445−466.
  48. Mellor, P. S. The multiplication of African horse sickness virus in two species of Culicoides (Diptera: Ceratopogonidae)/ P. S.Mellor, J. Boorman, M. Jennings // Arch. Virol. -1975.- Vol.47. -P. 351−356.
  49. Mellor, P. S. Replication of arboviruses in insect vectors/P.S.Mellor // J. Сотр. Pathol. -2000.- Vol.124 -P.231−247.
  50. Mellor, P. S. Epizootiology and vectors of African horse sickness virus/P.S.Mellor // Сотр. Immunol. Microbiol. Infect. Dis. -1994.-Vol.17.-P. 287- 296.
  51. Mellor, P. S. African horse sickness: transmission and epidemiology/P.S.Mellor // Vet. Res. -1993.-Vol.24.-P. 199−212.
  52. Mellor, P. S. Isolations of African horse sickness virus from vector insects made during the 1988 epizootic in Spain/ P. S.Mellor et al. // Epidemiol. Infect. -1990. -Vol. 105.-P. 447−454.
  53. Mellor, P. S. The multiplication of African horse sickness virus in two species of Culicoides (Diptera: Ceratopogonidae)/?.S.Mellor, J. Boorman, M. Jennings // Arch. Virol. -1975. -Vol. 47.-P. 351−356.
  54. Mertens, P.P. Orbiviruses and coltiviruses general features/P.P.Mertens // In: Webster R.G., Granoff A. (eds) Encyclopedia of virology, vol 2. Academic Press, London, -1994. -P. 941- 956.
  55. Meyden, C. H. Encephalities and chorioretinitis associated with neurotropic African horse sickness virus infection in laboratory workers/ C. H. Meyden et al.// S. Afr. Med. J. -1992. -Vol. 81.-P. 451−454.
  56. Molecular epidemiology of African horse sickness virus based on analyses and comparisons of genome segments 7 and 10/ S. Zientara, C. Sailleau, E. Plateau, S. Moulay, P.P.C.Mertens, C. Cruciere // Arch. Virol. -1998. -Vol.14. -P.221−234.
  57. Molecular epidemiology of the African horse sickness virus S10 gene. -2008/ M. Quan, M. Vuuren, P. J. Howell, D. Groenewald, A. J. Guthrie // J. Gen. Virol. -2008.-Vol. 89. -P.1159−1168.
  58. Moss, S. R. Comparison of the non-structural protein, NS2 of tick-borne orbiviruses/ S. R. Moss, L. D. Jones, P. A Nuttall// Virology -1992.-Vol.187. -P.841−844.
  59. Neutralizing epitopes of African horsesickness virus serotype 4 are located on VP2/T.G.Burrage, R. Trevejo, M. Stone-Marschat, W.W. Laegreid.// Virology.-1993.-Vol.196.-P.799−803.
  60. Newsholme, O.A. Morphological study of the lesions of African horse sickness -1983/ O. Newsholme, G. Bedford, R. DuToit // Onderstepoort J. Vet. Res. 1983.-Vol.50. -P. 7−24.
  61. Parvi, K.M. Isolation of vaccine strains of African horse sickness virus from brains of two horses given polyvalent vaccine/ K.M. Parvi, C.R. Anderson // Indian J. Vet. Sci. Anim. Husb. -1963. Vol.33. -P. 215−219.
  62. Purification and properties of virus perticles, infectious sub-viral particles, cores and VP7 crystals of African horsesickness virus serotype 9/ J. N. Burroughs, R. S.
  63. CTHara, C. J. Smale, C. Hamblin, A. Walton, R. Armstrong, P. P. C. Mertens//J.Gen.Virol. -1994.- Vol.75. -P.1849−1857.
  64. Rafyi, A. Horsesickness/ A. Rafyi // Bull. Off. Int. Epizoot. 1961.- Vol.56. -P.216−250.
  65. Real-time fluorogenic reverse transcription polymerase chain reaction assay for detection of African horse sickness virus/ C. Gomez-Tejedor, M. A. Cubillo, C. Rubio, E. Romero, M.A. Jimenez-Clavero // J. Vet. Diagn. 2000. — Vol.20. -P.325−328.
  66. Real-time, multiplex PCR assays/ C.T. Wittwer, M.G. Herrmann, C.N. Gundry, K.S. Elenitoba-Johnson // Methods 2001.- Vol.25. -P.430−442.
  67. Rodriguez, M. Current status of diagnosis and control of African horse sickness/M. Rodriguez, H. Hooghuis, M. Castano // Veterinary Research -1993.-Vol.24. -P.189−197.
  68. Rodriguez, M. African horsesickness in Spain/ M. Rodriguez, H. Hooghuis, M. Castano// Vet. Microbiol. -1992.- Vol.33. -P. 129−142.
  69. Roy.P. African horse sickness virus structure -1994/ P. Roy, P. P. C. Mertens, I. Casal // Comp. Immun. Microbiol. Infect. Dis. 1994. — Vol. 17, №¾. -P.243−273.
  70. Roy P. Bluetongue virus genetics and genome structure. Review article/P. Roy// Virus Res. -1989.-Vol.13. -P. 179−206.
  71. Sequence conservation among the cognate nonstructural NS3/3A protein genes of six bluetongue viruses/ G.Y.Hwang, Y.Y.Yang, J.F.Chiou, J. K.K.Less // Virus Res. -1992.- Vol.23. -P. 151−161.
  72. Shah, K.V. Investigation of African horse-sickness in India, study of the natural disease and the virus /K. V. Shah// Ind. J. vet. Sci. -1964. Vol.3. -P. 1−14.
  73. Stoltz, M.A. Subcellular localization of the nonstructural protein NS3 of African horse sickness virus/ M.A., Stoltz et al. // Onderstepoort J. Vet. Res. 1996. -Vol.63.-P. 57−61.
  74. Structural insight into African horse sickness infection/ V. Manole, P. Laurinmaki, W. Van Wyngaardt, C.A. Potgieter, I.M. Wright, G.J. Venter, A.A. Van Dijk, B.T. Sewell, S.J. Butcher//J.Virol. -2012. -Vol.86. -P.7858−7866.
  75. Tessler, J. Detection of African Horsesickness Viral Antigens in Tissues by Immunofluorescence/ J. Tessler//Can. J. Comp. Med. -1972. Vol.36 № 2 -P. 167−169.
  76. Theiler, A. African horse sickness/ A. Theiler// South Afr. Dept. Ag. Sci. Bull. -1921.-Vol. 19.-P. 1−29.
  77. Theiler, A. Transmission of horse sickness into dogs/ Theiler A. // Rep. Govt. Vet. Bact. -1906.-P. 160−162.
  78. Thecw//coz'c/esvectors of African horse sickness virus in Morocco: distribution and epidemiological implications/ H. Bouayoune, J. Touti, H. el Hasnaoui, M. Bailys, P. S. Mellor// Arch. Virol. Suppl. -1998. -Vol.14. -P.l 13−125.
  79. The growth of African horse sickness virus in embryonated hen eggs and the transmission of virus by Culicoides variipennis {Diptera:
  80. Ceratopogonidae)/.Boorman, P. S.Mellor, M. Penn, M. Jennings // Arch. Virol. -1975.-Vol.47. -P.343−349.
  81. The role played by Hyalomma dromedarii in the transmission of African horse sickness in Egypt/F.I.Awad, M.M.Amin, S.A.Salama, S. Khide // Bull. Anim. Health Prod. Afr. -1981.- Vol.29. -P.337−340.
  82. The use of African horse sicknes virus NS3 protein, expressed in bacteria, as a marker to differentiate infected from vaccinated horses/M. D. Laviada, P. Roy, J. M. Sanchez Vizcaino, J. I. Casal// Virus Res. -1995.-.Vol.38. -P.205−218.
  83. Thompson, G. M. A review of African horse sickness and its implications for Ireland -2012/ G. M. Thompson- S. Jess- A.K.Murchie // Irish Veterinary Journal -2012.- Vol.65.-9p.
  84. Venter, G.J. African horse sickness epidemiology: vector competence of South African Culicoides species for virus serotypes 3, 5 and 8/G.J.Venter, S.D.Graham, C. Hamblin // Med. Vet. Entomol. -2000. -Vol. 14. -P. 245−250.
  85. Verwoerd, D. W. On the relationship between bluetongue, African horsesickness and reovirus: hybridization studies/ D. W. Verwoerd, H. Huismans// Onderstepoor J. Vet Res. -1969.-Vol.36.-P. 175−180
  86. Veterinary Research A Journal on Animal Infection/ Veterinary Research^eKTpoHHbiii ресурс.-Режим доступа: http://www.vetres.org/.1. Veterinary Research.
  87. Vreede, F.T. Sequence analysis of the RNA polymerase gene of African horse sickness virus/ F.T. Vreede, H. Huismans// Arch. Virol. -1998.- Vol.143. -P.413−419.
  88. WAHIDInterface/ OIE электронный ресурс.- Режимдоступа www.oie.int. -WAHID Interface.
  89. WesternKentuckyUniversity/ WKUэлектронный ресурс. Режим доступа: bioweb.wku.edu — bioweb.wku.edu./courses/biol350/ProtStruct22/Review.html.
  90. Whiley, D.M. Melting curve analysis using hybridization probes: limitations in microbial molecular diagnostic/ D.M. Whiley, T.P. Sloots// Pathology 2005.-Vol.37. -P.254−256.
  91. Zientara, S. Diagnosis of the African horse sickness virus serotype 4 by a one-tube, one manipulation RT-PCR reaction from infected organs / S. Zientara, C. Sailleau, S. Moulay // Journal of Virological Methods. 1994. — Vol. 46. -P. 179 188.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!