Разработка тест-систем для оценки мукозального и клеточного иммунитета птиц
Научная новизна исследований. Впервые в отечественной ветеринарной лабораторной диагностике разработаны методы комплексной оценки мукозального иммунитета птиц с использованием современных лабораторных тест-систем, включая молекулярно-биологические исследования. Испытаны различные адьюванты в составе экспериментальных инактивированных вакцин для местного применения против НБ. На биологической… Читать ещё >
Содержание
- 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
- 1. 1. Иммунная система птиц
- 1. 1. 1. Основные иммунокомпетентные органы птиц
- 1. 1. 2. Факторы врожденного иммунитета
- 1. 1. 3. Факторы приобретенного иммунитета
- 1. 1. 3. 1. Клеточный иммунитет
- 1. 1. 3. 3. Мукозальный иммунитет
- 1. 1. Иммунная система птиц
- 1. 2. Методы оценки клеточного и мукозального иммунитета
- 1. 2. 1. Традиционные методы исследования
- 1. 2. 2. Современные методы
- 1. 2. 2. 1. Клеточный иммунный статус
- 1. 2. 2. 1. Оценка гуморального иммунитета
- 1. 2. 2. 2. Количественный метод оценки иммунного ответа — проточная цитофлуориметрия
- 1. 3. 1. Живые противовирусные вакцины
- 1. 3. 2. Инактивированные противовирусные вакцины
- 1. 3. 3. Роль и механизм действия адъювантов в составе вакцин
- 1. 3. 4. Мукозальные вакцины
Разработка тест-систем для оценки мукозального и клеточного иммунитета птиц (реферат, курсовая, диплом, контрольная)
Актуальность темы
Поверхности слизистых респираторного и желудочно-кишечного тракта представляют собой основные ворота для проникновения большинства патогенов, поражающих птиц. Защитные реакции слизистых оболочек играют роль наружного барьера, предохраняя организм от воздействия различной патогенной микрофлоры. Этот тип иммунного ответа получил название иммунитета слизистых оболочек или мукозального иммунитета. Резистентность слизистых имеет важное значение при кишечных и респираторных болезнях птиц (Ньюкаслская болезнь, инфекционный бронхит кур, микоплазмозы), а также играет важную роль при пероральном и аэрозольном методе иммунизации.
Для повышения эффективности и упрощения техники применения иммунологических препаратов в последние годы разрабатываются новые типы вакцин. Одним из перспективных направлений являются мукозальные вакцины, главными компонентами которых являются специфический антиген и природные или синтетические вещества, обладающие мукоадгезивной активностью, вводимые интраназально или перорально.
Преимуществом мукозальных вакцин при локальной иммунизации является формирование более широкого спектра иммунного ответа по сравнению с парентерально вводимыми вакцинами и высокая безопасность.
Создание и испытания препаратов для защиты слизистых оболочек расширяют наши представления о закономерностях функционирования мукозальной иммунной системы.
В связи с этим, разработка методов оценки мукозального иммунитета играет важную роль, позволяя спрогнозировать тип, динамику и направление иммунного ответа, что особенно важно для исследований по оценке резистентности к возбудителям болезней.
Степень разработанности проблемы. Вопросам оценки клеточного и мукозального иммунитета птиц посвящены работы ряда зарубежных авторов [25, 26, 28]. В связи с интересом к снижению побочных действий, связанных с введением вакцины и выработке специфических типов иммунитета очевидна целесообразность разработки новых вариантов вакцин, вакцинных адъювантов и способов их оценки [39, 52, 53, 123].
На данный момент существует необходимость сравнения и установления корреляции между различными количественными и качественными методами с целью построения общей картины иммунного ответа.
К настоящему времени иностранными авторами разработано несколько тест-систем для оценки клеточного и мукозального иммунитета. Lambrecht В. и сотр. разработали сэндвич-вариант ИФА для выявления у-интерферона [34]. С помощью ИФА AL-Garib S.0 были определены кинетика и распределение классов иммуноглобулинов к вирусу НБ [68, 96]. Применение метода проточной цитофлуориметрии позволило количественно охарактеризовать субпопуляции лимфоцитов. В работах Dalgaard T.S. и сотр. (2010), Fair J.M. и сотр. (2008), Bridle B.W. и сотр. (2006) показана их зависимость от возраста птицы и типа иммунного ответа [78, 98, 184]. Kaizer Р. и сотр. (2000) предложили методы исследований клеточного иммунитета по экспрессии цитокинов на основе ПЦР [69, 109]. В составе мукозальных препаратов для вакцинопрофилактики болезней птиц L. Ilium и сотр. (2001), F. Rauw и сотр. (2010) были испытаны новые типы вакцинных адъювантов и описаны способы оценки их эффективности [53, 92]. Большой интерес представляют исследования Jayawardane G.W.L и сотр. (1995), Kapczynski D. R. и сотр. (2005), Collison E.W. и сотр. (2000), доказывающие значение клеточных и гуморальных факторов для защиты от заражения [61, 107, 113].
Однако данные, полученные разными исследователями при изучении иммунных реакций птиц, имеют большие отличия и носят противоречивый характер. В РФ Колабской J1.C. (1987) были предложены методы исследований отдельных направлений клеточного иммунитета птиц, но в комплексе глубокого изучения различных факторов иммунного ответа не проводилось [7, 8, 9, 11]. До текущего времени надёжных и достоверных диагностических тест-систем по оценке мукозального и клеточного иммунитета не разработано.
Цель и задачи исследования
Цель данной работы состояла в разработке современных диагностических тест-систем для оценки мукозального и клеточного иммунитета.
Для осуществления поставленной цели необходимо было решить следующие задачи:
1) Оптимизировать методы отбора проб секреторных жидкостей с поверхностей слизистых оболочек для получения качественных образцов, позволяющих проводить оценку мукозального иммунитета.
2) Разработать методы комплексной оценки иммунитета:
— клеточного (иммунофенотипирование и оценка пролиферации лимфоцитов, анализ экспрессии цитокинов, количественное определение интерферона);
— мукозального (выявление иммуноглобулинов классовА, ^М в секреторных жидкостях);
— гуморального (выявление специфических иммуноглобулинов класса М).
3) С помощью разработанных методов изучить иммунный ответ цыплят на введение различных вакцинных препаратов против НБ: коммерческие живые и инактивированные вакциныинактивированные вакцины, содержащие мукозальные адъюванты.
4) Определить взаимосвязь между изучаемыми показателями местных факторов защиты и гуморального иммунитета.
5) Изучить зависимость между уровнем защиты и параметрами иммунного ответа вакцинированной птицы до и после контрольного заражения высоковирулентным вирусом НБ с помощью разработанных методов.
Научная новизна исследований. Впервые в отечественной ветеринарной лабораторной диагностике разработаны методы комплексной оценки мукозального иммунитета птиц с использованием современных лабораторных тест-систем, включая молекулярно-биологические исследования. Испытаны различные адьюванты в составе экспериментальных инактивированных вакцин для местного применения против НБ. На биологической модели с контрольным заражением цыплят высоковирулентным вирусом НБ установлены параметры местных и системных иммунных реакций, обеспечивающие устойчивость птиц к заболеванию и гибели.
Практическая значимость исследований. На основании экспериментальных исследований предложены методы комплексной оценки поствакцинального и постинфекционного иммунитета, которые могут быть использованы в лабораторной практике. В результате проведённых исследований разработаны, одобрены учёным советом и утверждены директором ФГБУ «ВНИИЗЖ» следующие нормативные документы:
Методические указания по выявлению специфических к вирусу ньюкаслской болезни иммуноглобулиновА, ^М и в секреторных жидкостях кур в непрямом варианте иммуноферментного анализа";
Методические рекомендации по отбору проб лакримальной жидкости, смывов зоба и респираторного тракта";
Методические рекомендации по отбору и окрашиванию пейеровых бляшек";
Методические рекомендации для количественного определения куриного интерферонау в биологических жидкостях и культуральных суспензиях методом ИФА".
Методические рекомендации по подготовке проб для иммунофенотипирования и количественной оценке субпопуляций лимфоцитов с использованием проточной цитофлуориметрии";
Методика анализа экспрессии цитокинов кур с помощью ПЦР в режиме реального времени при автоматизации сбора реакционной смеси";
Методические рекомендации по оценке пролиферативной активности лимфоцитов, выделенных из крови и селезенки кур, с использованием Alamar Blue";
Разработанные методические указания и рекомендации используются при проведении исследований по оценке мукозального и клеточного иммунитета.
Публикации научных исследований. По теме диссертации опубликовано 8 научных работ, в том числе 2 работы в изданиях, рекомендованных ВАК Министерства образования и науки РФ.
Соответствие диссертации паспорту научной специальности. В соответствии с формулой специальность 03.02.02 «Вирусология» представляет собой область науки, занимающуюся исследованием вирусов, их происхождения, состава, строения, генетики, морфологии, механизмов размножения, аспектов взаимоотношений с клеточными организмами, проблемами противовирусного иммунитета, патогенности вирусов, разработкой мер и средств предупреждения, диагностики и лечения вызываемых вирусами заболеваний.
В диссертационной работе приведены результаты исследований по разработке методов оценки клеточного и мукозального иммунитета птиц и их применению для изучения иммунного ответа цыплят на введение различных вакцинных препаратов против НБ.
Результаты научного исследования соответствуют пунктам 6, 7, 10 паспорта специальности.
Апробация работы. Материалы диссертации представлены, опубликованы и обсуждены на конференции молодых ученых «Актуальные проблемы инфекционной патологии ветеринарной медицины» (г. Покров, ГНУ ВНИИВВиМ, 2009 г.), международной научно-практической конференции молодых ученых «Достижения молодых ученых в ветеринарную практику» (г. Владимир, 2010 г.), заседаниях учёного совета.
ФГБУ «ВНИИЗЖ» 2005;2009 гг., в материалах международной конференции по мукозальным вакцинам в г. Порто (Португалия, 2008 г.).
Личный вклад. Основной объем исследований проведен автором самостоятельно. Консультативную и методическую помощь при выполнении отдельных этапов работы оказывали сотрудники лаборатории диагностики болезней птиц: М. А. Волкова, И. А. Чвала, Н. С. Мудрак, за что автор выражает им признательность.
Основные положения, выносимые на защиту. Разработанные методы для комплексной оценки иммунного ответа. Результаты их применения для изучения иммунного ответа цыплят на введение различных вакцинных препаратов против НБ: живые вакциныкоммерческие инактивированные вакциныинактивированные вакцины, содержащие мукозальные адъюванты. Определение взаимосвязи между изучаемыми показателями местных факторов защиты и гуморальным иммунитетом.
Структура и объём работы. Диссертация изложена на 152 страницах и содержит следующие разделы: введение, обзор литературы, результаты собственных исследований, обсуждение и выводы. Список используемой литературы включает 210 источников, из которых 188 иностранных. Работа включает 33 таблицы и иллюстрирована 30 рисунками.
4. ВЫВОДЫ.
1. Усовершенствованы методы отбора проб секреторных жидкостей со слизистых оболочек, что позволяет получать качественные образцы для оценки мукозального иммунитета.
2. Разработаны методы комплексной оценки клеточного иммунитета. Иммунофенотипирование лимфоцитов методом проточной цитофлуориметрии и анализ экспрессии цитокинов методом ПЦР-РРВ позволили спрогнозировать тип, динамику и направление иммунного ответа. Для определения функциональной активности лимфоцитов и способности иммунной системы к активации разработан метод количественного определения интерферона в сэндвич-варианте ИФА, минимальная чувствительность которого составила 30 пг/мл.
3. Для выявления иммуноглобулинов трех классов (1§-А, 1§-М) в секреторных жидкостях и специфических иммуноглобулинов класса М в крови разработан непрямой вариант иммуноферментного анализа, обладающий специфичностью (97,3 — 99,3%) и чувствительностью (96,0 -99,3%).
4. С помощью разработанных методов установлено, что иммунная реакция цыплят на введение живой вакцины против НБ из штамма «Ла Сота» развивается через 1 нед. и характеризуется преимущественно клеточными факторами защиты, выработкой интерферона и секреторных антител;
— на коммерческие инактивированные эмульсионные вакцины — через 2 нед., при этом основное звено защиты составляет гуморальная реакция;
— на инактивированные вакцины, содержащие мукозальные адъюванты, -через 1 -2 нед. и сочетает клеточные, гуморальные и мукозальные факторы защиты.
5. После контрольного заражения птиц, вакцинированных живой вакциной, отмечали следующие иммунные реакции: повышение уровня №N-7 (в ~16 раз по отношению к контролю) — снижение иммунорегуляторного индекса вследствие роста уровня СБ8+ клеток и повышение уровня гуморальных антител (с 5 до 11, 75 к2). 6. Показано, что цыплята, не имевшие сывороточных антител на протективном уровне, были устойчивы к контрольному заражению вследствие действия факторов клеточного и мукозального иммунитета.
5. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ.
На основании экспериментальных исследований предложены методы комплексной оценки поствакцинального и постинфекционного иммунитета, которые могут быть использованы в лабораторной практике. Разработаны, одобрены учёным советом и утверждены директором ФГБУ «ВНИИЗЖ» следующие нормативные документы:
Методические указания по выявлению специфических к вирусу ньюкаслской болезни иммуноглобулиновМ иО в секреторных жидкостях кур в непрямом варианте иммуноферментного анализа" одобрены учёным советом и утверждёны директором ФГУ «ВНИИЗЖ» (утверждены 23.11.2006 г.);
Методические рекомендации по отбору проб лакримальной жидкости, смывов зоба и респираторного тракта" одобрены учёным советом и утверждёны директором ФГУ «ВНИИЗЖ» (утверждены 08.05.2008 г.);
Методические рекомендации по отбору и окрашиванию пейеровых бляшек" одобрены учёным советом и утверждёны директором ФГУ «ВНИИЗЖ» (утверждены 08.06.2008 г.);
Методические рекомендации для количественного определения куриного интерферонау в биологических жидкостях и культуральных суспензиях методом ИФА" одобрены учёным советом и утверждёны директором ФГУ «ВНИИЗЖ» (утверждены 16.12.2008 г.);
Методические рекомендации по подготовке проб для иммунофенотипирования и количественной оценке субпопуляций лимфоцитов с использованием проточной цитофлуориметрии" одобрены учёным советом и утверждёны директором ФГУ «ВНИИЗЖ» (утверждены 12.09.2008 г.);
Методика анализа экспрессии цитокинов кур с помощью ПЦР в режиме реального времени при автоматизации сбора реакционной смеси" (утверждена 16.12.2008 г.);
Методические рекомендации по оценке пролиферативной активности лимфоцитов, выделенных из крови и селезенки кур, с использованием Alamar Blue" одобрена учёным советом и утверждёна директором ФГУ «ВНИИЗЖ» (утверждены 23.11.2010 г.).
Список литературы
- Ада Г., Рамсей А. Вакцины, вакцинация и иммунный ответ // М.: Медицина, 2002. 328 С.
- Беляков И.М. Иммунная система слизистых // Иммунология. 1997. -№ 4. -С. 7−13.
- Болотников И. А., Конопатов Ю. В. Практическая иммунология сельскохозяйственной птицы. СПб: Наука, 1993. — 205 С.
- Гендон Ю.З. Мукозальные вирусные вакцины: успехи и проблемы // Вопросы вирусологии. 2003. — № 4. — С. 3−10.
- Жаров А. В. Патологическая анатомия сельскохозяйственных животных: учебник для вузов / ред. В. П. Шишков, A.B. Жаров 3-е изд., перераб. и доп. — М.: Колос, 1995. — 543 С.
- Игнатов П.Е. Иммунитет и инфекция. Возможности управления / М.: Время, 2002. — 352 С.
- Колабская JI.C. Иммуноглобулины птицы // Птицеводство. -1987. № 9. — С. 35−36.
- Колабская JI.C. Пути повышения неспецифической резистентности птиц // Система мероприятий по обеспечению эпизоотического благополучия и эффективности птицеводческих хозяйств промышленного типа: сб. науч. Тр. М, 1987. С. 46−47.
- КоляковЯ.Е. Ветеринарная иммунология// М.: Агропромиздат, 1986.-272 С.
- Конопатов, Ю.В., Макеева Е. Е. Основы иммунитета и кормления сельскохозяйственной птицы / СПб, 2000. 204 С.
- Лагуткин H.A., Седых О. Г. Влияние некоторых факторов на иммунитет: обзор // Диагностика, профилактика и меры борьбы с особо опасными, экзот. и зооантропоноз. болезнями животных: Междунар. науч.-практ. конф. — Покров, 2000. — С. 103−104.
- Манин Т.Б. Усовершенствование методов ретроспективной диагностики и оценки поствакцинального иммунитета ньюкаслскойболезни птиц: диссертация канд. биол. наук. Владимир, 2000. — 135 С.
- Медуницын Н.В. Вакцинология / М.: Триада-Х, 2010. 512 С.
- Основы инфекционной иммунологии / В. В. Макаров, A.A. Гусев, Е. В. Гусева, О. И. Сухарев. Владимир: Фолиант, 2000. — 176 С.
- Особенности иммунитета слизистых оболочек: обзор лит. / О. В. Кухаркина и др. Владимир: ФГУ «ВНИИЗЖ», Владимир, 2007. — 77 С.
- Ройт А., Бростофф Дж., Мейл Д. Иммунология. М.: Мир, 2000. — 592 С.
- Селезнев С.Б. Структурная организация иммунной системы птиц и млекопитающих. М.: Изд-во РУДН, 1999. — 32 С.
- Сергеев В.А., Непоклонов Е. А., Алипер Т. И. Вирусы и вирусные вакцины. М.: Библионика, 2007. — 524 С.
- Троценко Н.И. Практикум по ветеринарной вирусологии М.: Колос, 1999.-272 С.
- Чупина O.A. Использование эксплантатов трахеи куриных эмбрионов и цыплят для изучения возбудителей инфекционных респираторных болезней птиц: диссертация канд. биол. наук. Владимир, 2009. — 135 С.
- Ярилин A.A. Основы иммунологии М.: Медицина, 1999. — 607 С.
- A mucosal IgA-mediated excretory immune system in vivo / J.K. Robinson, T.G. Blanchard, A.D. Levine et al. // Immunology. 2001. — Vol. 166 — P. 3688−3692.
- A simple method to measure cell viability in proliferation and cytotoxicity assays/ R.C. Borra, M.A. Lotufo, S.M. Gagioti et al. // Braz. Oral Res.-2009.- Vol. 23, № 3 P. 255−262
- A third sublineage of avian T cells can be identified with a T cell receptor-3-specific antibody / D. Char, P. Sanchez, C. H. Chen et al. // Immnology -1990 -Vol. 145. P. 3547−3555.
- A type-specific avian influenza virus subunit vaccine for turkeys: induction of protective immunity to challege infection / S. Kodihalli, V. Sivanandan, K.V. Nagaraja et al. //Vaccine. -1994. Vol. 12, № 15. — P. 1467−1472
- Abbas A., Lichtman A., Pober J. Cellular and molecular immunology. N Y: W. B. Saunders Company. 1991. — 553P.
- Adjuvant effect of cholera toxin on systemic and mucosal immune responses in chickens infected with E. tenela or given recombinant parasitic antigen per os / F. Girard, P. Pery, M. Naciri, P. Quere // Vaccine. -1999. Vol. 17, № 11−12. -P.1516−1524.
- Alexander D. J. Newcastle disease virus and other avian paramyxoviruses // Laboratory Manual for the Isolation and Identification of Avian Pathogens, 4th ed.-PA, 1998.-P. 156−163.
- Alexander D.J., Senne D.A. Newcastle disease, other avian paramyxoviruses, and pneumovirus infections // Diseases of Poultry. 12th ed. — Ames, 2008. — P. 75−115.
- Analysis of chicken CD4 by monoclonal antibodies indicates evolutionary conversion between avain and mammalian species / M. Luhtala, J. Salomonsen, Y. Hirota et al. // Hybridoma. 1993. Vol. 12 — P. 633−646.
- Antigen delivery strategies for mucosal vaccines / A.J. Husband, S. Bao, S.J. McClure et al. / Int. J. Parasitol. 1996. — Vol. 26, № 8−9. — P. 825−834.
- Aucouturier J., Dupuis L., Ganne V. Adjuvants designed for veterinary and human vaccines // Vaccine. 2001. — Vol.19. — P. 2666−2672.
- B subunit of E. coli enterotoxin as adjuvant and carrier in oral and skin vaccination / E. Fingerut, B. Gutter, M. Goldway et al. // Veterinary Immunology and Immunopathology. 2006. -Vol. 112. -P.253−263.
- Bernot A., Auffray C. Primary structure of ontogeny of an avian CD3 transcript // Proc. Natl. Acad. Sci. 1991.- Vol. 88. — P. 2550−2554.
- Burns R. B. Histology and immunology of Peyer’s patches in the domestic fowl (Gallus domesticus) // Res. Vet. Sci. -1982. Vol. 32. — P. 359−367.
- Chan M. M., Chen C. L., Ager M. Identification of the avian homologues of mammalian CD4 and CD8 antigens / J. Immonol. -1998. Vol. 140. — P. 21 332 138.
- Characterisation of basal expression of selected cytokines in the liver, spleen, and respiratory, reproductive and intestinal tract of hens // M. Kolesarova, V. Spisakova, M. Matulova et al. Veterinarni Medicina. 2011. — Vol. 56, № 7. -P. 325−332.
- Characteristics of bursal T lymphocytes induced by infectious bursal disease virus /1. J. Kim, S. K. You, H. Kim et al. // J. Virology. 2000. — Vol.74. — P. 8884−8892.
- Characterization and functional properties of a novel monoclonal antibody which identifies a T cell receptor in chickens / J. Cihak, H. W. Ziegler
- Heitbrock, H. Trainer et al. // Eur. J. Immunol. -1988. Vol .18. — P.533−538.
- Chen C. H., T. W. F. Gobel, T. Kubota T cell development in the chicken. Poultry Science. 1994. — Vol. 73. — P.1012- 1018.
- Chen C. L. H., Chanh T. C., Cooper M. D. Chicken thymocyte-specific antigen identified by monoclonal antibodies: Ontogeny, tissue distribution and biochemical characterization // Eur. J. Immunol. 1984. — Vol.14. — P. 385−391.
- Cheng H.W., Eicher D., Chen Y. Effect of genetic selection for group productivity and longevity on immunological and hematological parameters of chickens // Poultry Science. 2001. — Vol. 80. — P. 1079−1086.
- Chi D. S., Thorbecke J. Cytotoxicity of allogeneic cells in chickens. 3. Antibody dependent cell-mediated cytotoxicity in normal and agammaglobulinemic chickens // Cell Immunol.-1981. Vol.64. — P.258−266
- Chicken interferon gene: Cloning, expression and analysis / M. J. Sekellick, A. F. Ferrandino, D. A. Hopkins, P.I. Marcus // J. Interferon. 1994. Vol.14. -P. 71−79.
- Chicken peripheral blood CD3+ CD4- CD8- cells are regulated by endocrine and nerve systems // K. Kushima, K. Yoshida, M. Fudjita et al. // J. Vet. Med. Sci. 2004. -V. 66.-P. 143−148.
- Chicken-activated-T-lymphocyte-antigen (CATLA) recognized by monoclonal antibody INN-CH-16 represents the IL-2 receptor / K. Schauenstein, G. Kronerm, K. Hala et al. // Developmental and Comparative Immunology 1988. — Vol. 12. — P.823−831.
- Chitosan as a novel delivery system for vaccines / L. Ilium, I. Jabbal-Gill, M. Hinchcliffe et al. // Adv. Drug Deliv. Rev. 2001. — Vol. 51, № 3 — P. 81−96.
- Chitosan for mucosal vaccination / I. M. Van der Lubben, J. C. Verhoef, G. Borchard, H. E. Junginger// Adv. Drug Deliv. Rev. 2001. — Vol. 52, № 2 -P.139−144.
- Coadministration of IFN-y enhances antibody responses in chickens/ J.W. Lowenthal, T.E. O’Neil, M. Broadway et al. // Inf. Cyt. Res. 1998. -Vol.18. — P.617−622.
- Comparison of intranasal inoculation of influenza HA vaccine combined with cholera toxin B subunit with oral or parenteral vaccination / Y. Hirabayashi, H. Kurata, H. Funato et al. // Vaccine. 1990. — Vol. 8. — P. 243−248.
- Correlation of haemagglutinin-neuraminidase and fusion protein content with protective antibody response after immunization with inactivated Newcastle disease vaccines / R.A. Maas, M. Komen, M. van Dipen et al. // Vaccine. -2003.-Vol.21.-P. 3137−3142.
- Cox J.C., Coulter A.R. Adiuvants- a classification and review of their modes of action // Vaccine. 1997. — Vol.15. — P.248−256.
- Cytotoxic T cells are critical in the control of infectious bronchitis virus in poultry / E.W. Collison, J. Pei, J. Dzielawa et al. // Developmental and Comparative Immunology. -2000. -Vol.24. -P. 187−200.
- Davison T. F, Kaspers B, Schat K.A. Avian Immunology. Amsterdam: Academic Press, 2008. — 481 P.
- Davison T. F., Morris T. R., Payne L. N. Poultry immunology. Poultry Science Symposium Series. Abingdon, UK: Carfax Publishing Company, 1996.-Vol.24.
- Davison T.F. The immunologist’s debt to the chicken // Br. Poult. Sci. 2003. -Vol. 44. -P.6−21.
- Defense mechanisms against viral infection in poultry: Review / S. H. M Jeurissen, A. G. Boonstra-Blom, S. O. Al-Garib et al. // Vet. Quart. 2000.-Vol.22. P 204−208.
- Del Giudice G., Pizza M., Rappuoli R. Mucosal delivery of vaccines // Methods. 1999.- V. 19, № 1. — P.148−155
- Demaries S. L., Ratcliffe M. J. H. Cell surface and secreted immunoglobulins in B cell development // Handbook of Vertebrate Immunology. London, 1998.-P. 89−92.
- Detection of antibody forming cells directed against Newcastle disease virus and their Ig-class by double immuno-enzyme histochemistry/ S.O. AL-Garib, E. Grays, A.L. Gielkens, G. Koch // Avian Diseases. 2003. -Vol.47, № 2. — P. 453−457.
- Digby M. R., Lowenthal J. W. Coling and expression of the chicken interferon-gamma gene // Inf. Cyt. Res. 1995. — Vol.15. — P.939−945.
- Distinct mechanismis for cross-protection of the upper versus lower respiratory tract through intestinal priming / A.W. Zuercher, H.Q. Jiang, M. C Thurnheer et al. // J. Immunol. 2002. — Vol. 169, № 7. — P. 3920 — 3925.
- ELISPOT and intracellular cytokine staining: Novel assays for quantifying T cell responses in the chicken / M.P. Ariaans, P.M. van de Haar, J.W. Lowenthal et al. // Developmental and Comparative Immunology. 2008. -Vol. 32, № 11, — P.1398−1404.
- Enteritoxin-based mucosal adjuvants alter antigen trafficking and induce inflammatory responses in the nasal tract / F.W. van Ginkel, R.J. Jackson, N. Yoshino et al. // Infect. Immun. 2005. — Vol. 73, № 10. — P. 6892−6902.
- Erf G.F. Immune system function and development in broilers // Center of Excellence for Poultry Science University of Arkansas 1997.
- Erf G.F., Bottje W.G., Bersi T.K. CD4, CD8 and TCR defined T-cell subsets in thymus and spleen of 2- and 7-week old commercial broiler chickens // Veterinary Immunology and Immunopathology. 1998.-Vol.62, № 4.- P.-339−48.
- Erf G.F. Cell-mediated immunity in poultry // Poultry Science. 2004 Vol. 83. P. 580−590.
- Evaluation of CD45+ cells kinetics in the blood of fattening chickens immunized with live or inactivated Newcastle disease vaccine / M. Popovic, M. Balenovi, A.E. Kabalin et al. // Veterinarski arhiv. 2010. — Vol.80 — P.61−69.
- Flow cytometric assessment of antigen-specific proliferation in peripheral chicken T cells by CFSE dilution / T.S. Dalgaard, L.R. Norup, D. Rubbenstroth et al. // Veterinary Immunology and Immunopathology. 2010. -Vol. 138. — P. 85−94.
- Flow cytometric immune profiling of specific-pathogen-free chickens before and after infectious challenges / B.C. Beirao, C.Jr. Favaro, L.S. Nakao et al. // Veterinary Immunology and Immunopathology. 2012. — Vol. 145, P. 32−41.
- Folitse R., Halvorson D.A., Sivanandan V. Efficacy of combined killed-in-oil emulsion and live Newcastle disease vaccines in chickens // Avian Diseases. -1998, — Vol.42, № 1.- P. 173−178.
- Freytag L.C., Clements J.D. Mucosal adjuvants // Vaccine. 2005. — Vol.23. -P.1804−1813.
- Gobel T. W. F. Isolation and analysis of natural killer cells in chickens // Method. Mol. Biol. 2000. — Vol.121. — P.337- 345.
- Gobel T. W. F. Characterization of avian NK cells ontogeny and tissue distribution by a novel NK cell specific MAb // Immunobiology. 1996. -Vol.196. -P.124−125.
- Gogal R.M., Ahmed S.A., Larsen C.T. Analysis of avian lymphocyte proliferation by a new, simple, nonradioactive assay (lympho-pro) // Avian Diseases. 1997. — Vol.41, № 3 — P.714−725.
- Gut associated lymphoid tissue in the chicken. I. Morphology, ontogeny, and some functional characteristics of Peyer’s patches / A. D. Befus, N. Johnston, G. A. Leslie, J. Bienenstock // J. Immunol. 1980. — Vol. 125. — P. 2626−2632.
- Hannat D. Mucosal immunology: overview and potential in the veterinary species // Veterinary Immunology and Immunopathology. 2002. — Vol.87. P.265−267.
- Higgins D. A., Warr G. W. The avian immune response to infectious diseases // Developmental and Comparative Immunology. 2000. — Vol.24. — P.85−101.
- Hilton L.S., Bean A.G.D., Lowenthal J.W. The emerging role of avian cytokines as immunotherapeutics and vaccine adjuvants. Veterinary Immunology and Immunopathology. 2002. — Vol. 85. — P. 119−128.
- Houssaint E., Diez E., Jotereau F. V. Tissue distribution and ontogenic appearance of a chicken T lymphocyte differentiation marker // Eur. J. Immunol- 1985. Vol.15. — P.305−308.
- Hu K-F., Lovgren-Bengtsson K., Morein B. Immunostimulating complex (ISCOMs) for nasal vaccination // Adv. Drug Deliv Rev. 2001. — Vol.51. — P. 149−159.
- Husband A.J., Kramer D.R., Bao S. Regulation of mucosal IgA responses in vivo: cytokines and adjuvants // Veterinary Immunology and Immunopatology. -1996. -Vol.54. -P.179−186
- Immune responses to ISCOM formulation in animal and primate models / A. Sjolander, D. Drane, E. Maraskovsky et al. //Vaccine. 2001. — Vol.19. — P. 2661−2665.
- Immunoglobulin class distribution of systemic and mucosal antibody response to Newcastle disease in chickens / S.O. AL-Garib, AL. Gielkens, E. Grays et al. // Avian Diseases. 2003. — Vol.47, № 1. — P.32−40.
- Immunological basis of differences in disease resistance in the chicken/ B. Zekarias, A. Huurne, W. Landman et al. // Vet. Res. 2002. — Vol.33. -P.109−125.
- Immunophenotyping of chicken peripheral blood lymphocyte subpopulations: individual variability and repeatability/ J.M. Fair, K.J. Taylor-McCabe, Y. Shou, B.L. Marrone // Veterinary Immunology and Immunopatology. 2008 Vol.-125. — P. 268−273.
- Indication of lymphoid leukosis transplantable tumours and the establishment of lymphoblastoid cell lines / W. Okazaki, R. L. Witter, C. Romero et al. // Avian Pathology. 1980. — Vol.9. — P.311−329.
- Induction of protective immunity in chickens oral immunized with inactivated infectious bursal disease virus / S. Hoshi, T. Nakamura, T. Nunoya, T. S. Ueda // Vaccine. 1995. — Vol.13, № 3. — P.245−252.
- Interaction between live avian pneumovirus and Newcastle disease virus vaccines in specific pathogen free chickens / K. Ganapathy, P. Cargill, E. Montiel, R.C. Jones // Avian Pathol. -2005. Vol.34, № 4. — P.297−302.
- Intestinal T lymphocytes in the chicken express an integrin-like antigen // M. Haury, Y. Kasahara, S. Schaal et al. // Eur. J. Immunol. 1993- Vol.23 -P.313−319.
- Janeway C.A. Jr, Medzhitov R. Innate immune recognition // Annu. Rev. Immunol. 2002. — Vol.20. — P. 97−216.
- Jayawardane G.W.L., Spradbrow P.B. Mucosal immunity in chickens vaccinated with the V4 strain of Newcastle disease virus // Veterinary Microbiology. 1995. — Vol.46. — P.69−77.
- Jeurissen S. H. M., Wagenaar F., Janse E. M. Further characterization of M cells in gut-associated lymphoid tissues of the chicken // Poultry Science. -1999. -Vol.78. P.965−972.
- Kaiser P. Avian cytokines // DavisonT. F., Morris T. R., Payne L.N., Poultry Immunology.-1st edn. Abingdon, UK: Carfax Publishing Company, 1996. — P. 83−114.
- Kaiser P., Sonnemans D., Smith L. M. Avian IFN-gamma gene: Sequence analysis suggests probable crossspecies reactivity among galliforms // J. Ifn. Cyt. 1998. — Vol.18. — P.711−719.
- Kaisho T., Akira S. Toll-like receptors and their signaling mechanism in innate immunity // Acta Odontol Scand. 2001. — Vol. 59, № 3. — P. 124−30.
- Kapczynski D.R., Kogut M. Measurement of avian cytokines with real-time RT-PCR following infection with the avian influenza virus // Avian Influenza Virus. Athens, GA. 2008. — P. 127−134.
- Kaufman J. Structure and function of the major histocompatibility complex of chickens // Poultry Immunology. Poultry Science Symposium Series. 1996. -Vol.24. — P. 67−82.
- Kersten G.F.A., Crommelin D.J.A. Liposomes and ISCOMs as vaccine formulations // Biochim. Biophys. Acta. 1995. Vol.1241. — P. l 17−138.
- Kilian M., Mestecky J., Russell M.W. Defense mechanisms involving Fc-dependent functions of immunoglobulin A and their subversion by bacterial immunoglobulin A proteases // Microbiol. Rev. 1988. — Vol.52. — P.296−303.
- Kim I.J., Sharma J.M. IBDV-induced bursal T lymphocytes inhibit mitogenic response of normal splenocytes // Veterinary Immunology and Immunopathology. 2000. Vol.74. — P.47−57
- Koppenheffer T. L. Complement // J. M. Sharma, Section (ed.) Avian Immunology. Handbook of Vertebrate Immunology. San Diego, USA: Academic Press, 1998. — P.99−101
- Leslie G. A., Martin L. Studies on the secretory immunologic system of the fowl. 3 Serum and secretory IgA of the chicken // J. Immunology. 1973. Vol.110. — P. 1−9.
- Leslie G. A., Clem L. W. Phylogen of immunoglobulin structure and function. 3. Immunoglobulin // J. Exp. Med 1969. — Vol.130. — P. 1337−1352.
- Locally produced mucosal IgG in chickens immunized with conventional vaccines for Newcastle disease virus / Z.S. Chimeno, E. Gomez, E. Carrillo, A. Berinstein // Braz. J. Med. Biol. Res. 2008.- Vol.41. — P.318−323.
- Locations of gut-associated lymphoid tissue in the 3-month-old chicken: a review / C. Casteleyn, M. Doom, E. Lambrechts et al. // Avian Pathology -2010. Vol. 39, № 3. — P.143−150
- Low molecular weight chitosan nanoparticles as new carriers for nasal vaccine delivery in mice / A. Vila, A. Sanchez, K. Janes et al. // Eur. J. Pham. Biopharm. 2004. — Vol. 57. — P. 123−131.
- Maccubin D. L., Schierman L. W. MHC restricted cytotoxic response of chicken T cells: Expression, augmentation and clonal characterisation // J Immonol. 1986. — Vol.136. — P.12−16.
- McConell C. D., Adair B. M., MCNulty M. S. Effects of chicken anemia virus on macrophage function in chickens // Avian Diseases. 1993. — Vol. 37. -P. 358−365.
- McDermont M., Bienenstock J. Evidence for a common mucosal immunologic system. Migration of B immunoblasts into intestinal, respiratory, and genital tissues // J. Immunol. 1979. — Vol. 122. — P.1892−1898.
- Medina E., Guzman C.A. Modulation of immune responses following antigen administration by mucosal route // FEMS Immunol. Med. Microbiol. 2000. -Vol. 27, № 4.- P.305−311.
- Meszaros J., Szemeredi M., Tamasi G. Immunization of day-old chickens against Newcastle disease // Acta Vet. Hung. -1992 Vol. 40. — P. 121−127.
- Mucosal and systemic immunization elicited by Newcastle disease virus (NDV) transgenic plants as antigens /A. Berinstein, C. Vazquez-Rovere, S. Asurmendi et al. // Vaccine. -2005. Vol.23. — P.5583−5589.
- Mucosal delivery of inactivated influenza vaccine induces B cell-dependent heterosubtypic cross-protection against lethal influenza A H5N1 virus vaccine. / T.M. Tumpey, M. Renshaw, J.D. Clements, J.M. Katz // Virology. 2001. Vol.74. — P.6105−6116.
- Mucosal immunity to infection with implications for vaccine dvelopment / H.F. Staats, R.J. Jacson, H. Kiyono, J.R. McGhee // Cuur. Opin. Immunol. -1994. Vol.6. — P.572−583.
- Mucosal immunization and adjuvants: a brief overview of recent advances and challenges / J. Holmgren, C. Czerkinsky, K. Eriksson, A. Mharandi // Vaccine.-2003.-Vol.21.-P. 89−95.
- Muir W.I., Bryden W. L., Husband A. J. Immunity, vaccination and the avian intestinal tract // Developmental and Comparative Immunology. 2000. -Vol.24, № 2−3. — P.325−342.
- Nictic oxide inducing factor as a measure of antigen and nitrogen-specific T cell responses in chickens / K. Karaca, I. J. Kim, S. K. Reddy, J. M. Sharma // J. Immunol. Methods. 1996. — Vol.192. — P.97−103.
- Novel adjuvants and vaccine delivery systems / B. Morein, M. Villacres-Eriksson, A. Sjolander, L. Bentsson // Veterinary Immunology and Immunopathology. 1996. — Vol.54. — P.373−384.
- Novel chicken CXC and CC chemokines. C. Sick, K. Schneider, P. Staeheli, K.C. Weining Cytokine 2000. — Vol.12. — P. 181−186.
- Nucleotide sequences of HN gene and gene F fragment of Newcastle disease virus Bor 74 and Bor 82 strains / O.G. Gribanov, S.K. Starov, A.I. Lomakin et al. // Mol. Genetics, Mcrobiol. and Virol. 1999. — Vol.3. — P. 29 -33.
- CTHagan D. Recent advances in vaccine reactions and mucosal administration // J. Pharm. Pharmacol. 1997. — Vol.49. — P. l-10.
- Ogra P.L., Faden H., Welliver R.C. Vaccination Strategies for Mucosal Immune Responses // Clinical Microbiollogy Reviews- 2001. Vol.14, № 2. -P.430−445.
- Pei J., Elwood Briles W., Collisson Memory E. W. T cells protect chicks from acute infectious bronchitis virus infection // Virology. 2003. — Vol.306. -P. 376−384.
- Pei J., Collisson E.W. Specific antibody secreting cells from chickens can be detected by three days and memory B cells by three weeks post-infection with the avian respiratory coronavirus // Comparative Immunology. -2005. Vol.29. — P.153−160.
- Pertile T. L., Sharma J. M., Walser M. M. Reovirus infection in chickens primes splenic adherent macrophages to produce nitric oxide in response to T cell produced factors // Cell Immunology. 1995. — Vol.164. — P.207−216.
- Phenotypic characterization of chicken thymic stromal elements / R. L. Boyd, T. J. Wilson, A. G. Bean et al. // Dev. Immunol. 1992- Vol.2. — P.51−66.
- Protection against influenza virus infection in polymeric Ig receptor knockout mice immunized intranasally with adjuvant-combined vaccines / Y. Asahi, T. Yoshikawa, I. Watanabe et al. // J. Immunol. 2002. — Vol.168, № 6. -P.2930−2938.
- Quere P., Girard F. Systemic adjuvant effect of cholera toxin in the chicken // Veterinary Immunology and Immunopathology. 1999. — Vol.70. — 135−141.
- Qureshi M. A., Heggen C. L., Hussain I. Avian macrophage effector functions in health and disease. The avian immune response to infectious diseases. Special issue // Developmental and Comparative Immunology. 2000. -Vol.24. — P. 103−119.
- Rautenschlein S., Yeh H. Y., Sharma Y. M. The role of T-cellsprotection by an inactivated infectious bursal disease virus vaccine // Veterinary Immunology and Immunopathology. 2002. — Vol.89. — P. 159−167.
- Rautenshelein S., Sharma J. M. Cytokines // Handbook of Vertebrate Immunology. San Diego, USA: Academic Press, 1998. P.95−99.
- Recombinant duck interferon: A new reagent for studying the mode of interferon action against hepatitis B virus / U. Schultz, J. Kock, H. J. Schlicht, P. Staeheli // Virology 1995. — Vol.212. — P.641−649
- Reese S., Dalamani G., Kaspers B. The avian lung-associated immune system: a review // Vet. Res. 2006. — Vol.37. — P. 311−324.
- Rescue of Newcastle disease virus from Cloned cDNA: Evidence that deavability of fusion protein is a major determinant for virulence / B. H. Peeters, O. De Leeuw, G. Koch, A. L. J. Gielkens // J. of Virology. 1999. -Vol.73. — P. 5001−5009.
- Review of Newcastle disease virus with particular references to immunity and vaccination / S. O. A1 Garib, A.L. Gielkens, E. Druys, G. Koch // World"s Poultry Science J. 2003. — Vol.59. -P. 185−200.
- Reynolds D.L., Maraqa A.D. Protective immunity against Newcastle disease: The role of antibodies specific to Newcastle disease virus polypeptides // Avian Diseases. 2000. — Vol. 44, № 1 — P. 138−144.
- Reynolds D.L., Maraqa A.D. Protection immunity against Newcastle disease: The role of cell mediated immunity // Avian Diseases. 2000. — Vol. 44. -P.145−159.
- Role of the harderian gland in immunoglobulin A production in chicken lacrimal fluid / T. Baba, T. Kawata, K. Masumoto, T. Kajikawa // Res. Vet. Sci.- 1990 .- Vol. 49, № 1, — P. 20−24.
- Role of the harderian gland on differentiation and proliferation of immunoglobulin A bearing lymphocytes in chickens / S. Tsuji, T. Baba, T. Kawata, T. Kajikawa // Veterinary Immunology and Immunopathology. -1993. — Vol. 37, № 3−4. — P. 271−283
- Roth J.A. Mechanism bases for adverse vaccine reactions and vaccine failures //Adv. Vet. Med. 1999. — Vol. 41. — P. 681−700.
- Russell P.H., Koch G. Local antibody forming cell responses to the Hitchner B1 and Ulster strains of Newcastle disease virus // Veterinary Immunology and Immunopathology. -1993. Vol.37. — P. 165−180.
- Russell P.H. Newcastle disease virus: virus replication in the harderian gland stimulates lacrimal IgA- the yolk sac provides early lacrimal IgG. // Veterinary Immunology and Immunopathology. 1993. — Vol.37, № 2. — P. 151−163.
- Russell P.H., Ezeifeka G.O. The Hitchner B1 strain of Newcastle disease vims induces high levels of IgA, IgG and IgM in newly hatched chicks. Vaccine. 1995. — Vol.13, № 1. — P. 61−66.
- Schat K.A., Xing Z. Specific and non-specific immune responses to Marek’s disease virus. The avian immune response to infectious diseases.// Developmental and Comparative Immunology. 2000. — Vol.24. — P.201−221.
- Schijns V.E., Mechanism J.C. of vaccine adjuvant activity: initiation and regulation of responses by vaccine adjuvants // Vaccine. 2003. — Vol. 21. -P.829−831.
- Serum and mucosal immune responses to an inactivated influenza virus vaccine induced by epidermal powder immunization / D. Chen, S. Periwal, K. Larrivee et al. // J. of Virology. 2001. — Vol. 75, №.17. — P.7956−7965.
- Severe acute respiratory syndrome vaccine development: experiences of vaccination against avian infectious bronchitis coronavirus/ D. Cavanagh // Avian Pathology. 2003. — Vol. 32, № 6. — P.567−582.
- Senne D.A., King D.J., Kapczynski D.R. Control of Newcastle disease by vaccination 11 Dev. Biol. (Basel).-2004. Vol. 119. — P. 165−170.
- Shafer A.L., Katz J.B., Eernisse K. A Development and validation of a competitive enzyme-linked immunosorbent assay for the detection of type A influenza antibodies in avian serum // Avian Diseases.-1998. Vol.42.-P. 2834.
- Sharma J. M. Avian Cellular Immunology. FL: CRS Press, 1991. — 207p.
- Sharma J. M. Avian Immunology. Handbook of Vertebrate Immunology. -San Diego, USA: Academic Press, 1998. P.73−136.
- Sharma J. M. The structure and function of the avian immune system //Acta Veterinaria Hungarica. 1997. — Vol. 45. — P.229−238.
- Sharma J. M., Okazaki W. Natural killer cell activity in chickens: target cell analysis and effect of antithymocyte serum on effector cells // Infect. Immun. -1981.-Vol. 31.- P. 1078−1085.
- Sharma J.M. Introduction to poultry vaccines and immunity // Adv. Vet. Med. -1999. Vol. 41. — P.481−494.
- Shat K.A., Myers T.J. Avian intestinal immunity // Crit. Rev. Poultry Biol. 1991. Vol. 3. — P.19−34.
- Sowder J. T., Chen C. H., Ager L. L. A large subpopulation of avian T cells express a homologue of the mammalian T receptor // J. Exp. Med. -1988. Vol. 167.- P.315−322.
- Stone H.D. Evalution of inactivated Newcastle disease oil-emulsion vaccines // Avian Diseases. 1980. — Vol. 24. — P. 99−111.
- Stone H.D. The preparation and efficacy of manual emulsified Newcastle disease oil-emulsion vaccines // Avian Diseases. 1991. — Vol. 35. — P.8−16.
- Structure- and oil type-based efficacy of emulsion adjuvants /T. Jansen, M.P.M. Hofmans, M.J.G. Theelen et al. // Vaccine. 2006. — Vol. 24. -P.5400−5405.
- Suarez D.L., Schultz-Cherry S. Immunology of avian influenza virus: A Review // Developmental and Comparative Immunology. 2000. — Vol. 24. — P. 269−283.
- Sundick R. S., Gill-Dixon C. A cloned chicken lymphocyte homologous to both mammalian IL-2 and IL-15 // J. Immunol. 1997. — Vol. 159. — P.720−725.
- Swayne D., Suarez D.L. Highly pathogenic avian influenza // Rev. Sci. Tech. Off. Int. Epiz. 2000. — Vol. 19. — P.463−482.
- T lymphocyte subpopulations diverge in commercially raised chickens / B.W. Bridle, R. Julian, P.E. Shewen et al. // Can. J. Vet. Res. 2006. — Vol. 70. — P. 183−190.
- Takada A., Kida H. Protective immune response of chickens against Newcastle disease, induced by the intranasal vaccination with inactivated virus ,/,/ Veterinary Microbiology. 1996. — Vol. 50. — P. 17−25.
- Thl/Th2 polarization by viral and helminth infection in birds // W.G.J. Degena, N. van Daal, L. Rothwell et al. // Veterinary Microbiology. 2005. -Vol. 105. — P.163−167
- The avian macrophage in cellular immunity / R. R. Dietert, K. A. Golemboski, S. E. Bloom et al. // Avian Cellular Immunology / J.M. Sharma (ed.). FL, 1991. — P.71−95.
- The mucosal immune system: from fundamental concepts to vaccine development // J.R. McGhee, J. Mestecky, M.T. Dertzbaugh et al. // Vaccine. -1992. Vol. 10.-P.75−88.
- The origin of IgA in chicken bile: its rapid active transport from blood / M.E. Rose, E. Orlans, A.W.R Payne, P. Hesketh // Eur. J. Immunol. 1981.- Vol. 11. — P.561−564
- Thiagarajan D., Ram G. C, Bansal M.P. Optimum conditions for in vitro chicken IL-2 production and its in vivo role in Newcastle disease vaccinated chickens // Veterinary Immunology and Immunopathology. 1999. — Vol. 67, № 1.- P.79−91.
- Timms L. M., Bracewell C. D., Alexander D. J. Cell-mediated and humoral immune response of chickens to infectious bronchitis // Br. Vet. J. 1980. — Vol. 136. — P.349−356.
- Toivanen A., Toivanen P. Avian Immunology: Basis and Practice. FL: CRS Press, 1987. — Vol. 1−2
- Tomasi T.B., Bienenstock J. Secretory immunoglobulins // Adv. Immunol. 1968.-Vol. 9.-P. 1−96.
- Toth T.E. Nonspecific cellular defence of the avian respiratory system: a review // Developmental and Comparative Immunology. -2000. Vol. 24. -P. 121−139.
- Turkey and chicken interleukin-2 cross react in in vitro proliferation assay despite limited amino acid sequence identity / S. Lawson, L. Rothwell, P. Kaiser//J. Ifn. Cyt. Res. 2000. — Vol. 20. — P. 161 -170.
- Type I IFN as a vaccine adjuvant for both systemic and mucosal vaccination against influenza virus / L. Bracci, I. Canini, M. Venditti et al. // Vaccine. -2006.-Vol. 24. -P.56−57.
- Vaccination against Newcastle disease with a recombinant baculovirus hemaggluttnin-neuraminidase subunit vaccine / E. Nagy, P. J. Krell, G. C. Dulac, J. B. Derbyshire // Avian Diseases. 1991. — Vol. 35. -P. 585−590.
- Van Eck J.H. Vaccination of Fowl with Inactivated Newcastle Disease Vaccine by the Respiratory Route // Avian Pathology. 1990. — Vol. 19. — P. 313−330.
- Vandaveer S.S., Erf G.F., Durdik J.M. Avian T helper one/two immune response balance can be shifted toward inflammation by antigen delivery to scavenger receptors//Poultry Science. -2001.- Vol.80, № 2. P. 172−181.
- Virosome and ISCOM vaccines against Newcastle disease: preparation, characterization and immunogenicity / A. Homhuan, S. Prakongpan, P. Poomvises et al. // Eur. J. of Pharmaceutical Sciences. -2004. Vol.22. -P.459−468.
- Virulent Newcastle disease virus elicits a strong innate immune response in chickens/ A. R. Cary, S. Leonardo, I. Cornax et al. // J. General Virology. -2011.-Vol. 92, № 4.- P.931−939.
- Warr G. W., Major K. E., Higgins D. A. IgY: clues to the origin of modern antibodies // Immunology Today. 1995. — Vol. 16. — P.392−398.
- Wassung K. W, Challenging the theory of artificial immunity // Nature medicine. 2000
- Wigley P., Keiser P. Avian cytokines in health and disease // Brazillian J. of Poultry Science. -2003.-Vol.5, № 1.-P.1−14.
- Wu C.C., Thiagarajan D., Lin T.L. ELISPOT assay for detection of antibody secreting cells to infectious bursal disease virus in chickens // Poultry Science. -1998. -Vol.77. P.662−665.
- Xie Z., Stone H.D. Immune response to oil-emulsion vaccines with single or mixed antigens of Newcastle disease, avian influenza, and infectious bronchitis // Avian Diseases. 1990. Vol.34. — P. 154−162.
- Yun C. H., Lillehoj H. S., Lillehoj E. P. Intestinal immune responses to coccidiosis // Developmental and Comparative Immunology. 2000. — Vol.24. -P.303−324.
- Zarzaur B.L., Kudsk K.A. The mucosa-associated limphoid tissue structure, function, and gerangements // Shock. 2001. — Vol. 15, № 6 — P. 411−420.