Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Фотохимическая активность и перекисный гомеостаз в хлоропластах растений при гипертермическом воздействии

Диссертация: Фотохимическая активность и перекисный гомеостаз в хлоропластах растений при гипертермическом воздействии
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Теоретическая и практическая значимость. Полученные результаты важны для понимания механизмов регуляции защитных систем, обеспечивающих поддержание гомеостаза клеток растений при стрессовых воздействиях. Определены быстрые перестройки работы фотосинтетического аппарата и процессов липопероксидации, которые позволяют растениям противостоять действию повышенной температуры. Знания о механизмах… Читать ещё >

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
  • 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Развитие неспецифического адаптационного синдрома у растений
    • 1. 2. Перекисный гомеостаз растений
    • 1. 3. Ответная реакция фотосинтетического аппарата при стрессе
  • 2. ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 2. 1. Объекты исследований и постановка опытов
    • 2. 2. Анализ фотохимической активности и пигментного состава хлоропластов
    • 2. 3. Анализ продуктов перекисного окисления липидов и компонентов антиоксидантной системы
    • 2. 4. Статистическая обработка данных
  • 3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
    • 3. 1. Изменение фотохимической активности и прооксидантно-антиоксидантного равновесия в хлоропластах гороха при воздействии повышенной температуры на растения разных фаз онтогенеза
    • 3. 2. Влияние коротких экспозиций повышенной температуры на фотохимические процессы и прооксидантно-антиоксидантное равновесие в хлоропластах растений
    • 3. 3. Влияние экзогенного пероксида водорода на фотохимические реакции в изолированных хлоропластах гороха

Фотохимическая активность и перекисный гомеостаз в хлоропластах растений при гипертермическом воздействии (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность проблемы. Выяснение механизмов адаптации растений к изменяющимся условиям окружающей среды, в том числе к повышенной температуре, имеет существенное теоретическое и практическое значение, является одним из важных аспектов современной экологической физиологии растений. Исследование ответной реакции растений, специфических и неспецифических компонентов ответа, его зависимости от видовых особенностей и физиологического состояния объекта необходимо как для познания общих закономерностей реактивности живой системы, так и для решения проблемы повышения сопротивляемости растений к стрессорам, что особенно важно в связи с обострением экологического кризиса. Важнейшей неспецифической реакцией аэробных организмов на неблагоприятные факторы является генерация АФК и индуцируемое ими изменение уровня ПОЛ и активности защитных АО-систем, (Барабой, 1991, Закржевский и др., 1995, Iturbe-Ormaetxe et al., 1998, Курганова и др., 1999). Первыми действию стрессовых факторов подвергаются мембранные системы (Чиркова и др., 1998). В фотосинтезирующих тканях самая высокая степень изменений прооксидантно-антиоксидантного равновесия при каких-либо стрессовых воздействиях характерна для мембран хлоропластов, что связано с повышенной вероятностью генерации АФК при сбоях в работе ФЭТЦ, с одной стороны, и высоким содержанием в мембране легкоокисляемых ненасыщенных жирных кислот, с другой (Мерзляк, 1989, Foyer et al., 1994, Chang, Kao, 1998). Развивающиеся в результате интенсификации процессов липопероксидации перестройки структурной организации мембран отражаются на состоянии фотосинтетической электрон-транспортной цепи (Мерзляк, 1989, Choe et al., 1995). Изменение окислительного статуса клетки и редокс-состояния ФЭТЦ может выступать в роли фактора, модулирующего генную экспрессию при различных видах стресса (Huner et al., 1998, Xiang,.

Oliver, 1998, Creissen et al., 1999, Melis, 1999). Это позволяет предположить, что процессы липопероксидации и функциональное состояние ФЭТЦ тесно взаимосвязаны. К настоящему времени выполнен ряд работ, посвященных изучению изменений, происходящих в работе фотосинтетического аппарата и прооксидантно-антиоксидантном равновесии у растений при действии различных стрессоров (Моргун, Должиков, 1991, Шаркова, 1994, Кренделева и др., 1996, Лукаткин, 1998, Allen, Ort, 2001). Однако, в большинстве экспериментов определения проводились только при продолжительных экспозициях стрессового воздействия, а быстрый ответ фотосинтетического аппарата и прооксидантно-антиоксидантного равновесия практически не исследованы. В последние годы появились данные о том, что сами АФК обладают свойствами физиологически активных молекул и могут непосредственно изменять активность белков (Гамалей, Клюбин, 1996), являться вторичными посредниками стрессорной реакции и экспрессировать хлоропластные и ядерные гены (De Marco et. al., 1996, Wojtaszek, 1997, Casano et al., 2001). Что же касается роли АФК, а особенно Н2О2, в оксигенном фотосинтезе, то в литературе зачастую приводятся противоречивые сведения.

В связи с вышеизложенным, представляется актуальным исследование и взаимосвязи изменений работы фотосинтетического аппарата и перекисного гомеостаза в хлоропластах при формировании ответных реакций растений на неблагоприятные воздействия.

Цель и задачи исследования

Цель работы состояла в изучении механизмов адаптивных изменений фотохимических реакций и перекисного гомеостаза в хлоропластах растений в условиях гипертермии.

Для достижения сформулированной цели были поставлены следующие задачи:

1. Исследовать изменения фотохимической активности и прооксидантно-антиоксидантного равновесия в хлоропластах растений разных фаз онтогенеза при воздействии двухчасовой гипертермии.

2. Определить уровень липопероксидации и состояние антиокислительной системы в хлоропластах после возвращения гипертермированных растений в нормальные температурные условия.

3. Исследовать быстрые изменения работы фотосинтетического аппарата и перекисного гомеостаза в хлоропластах растений при коротких экспозициях теплового шока.

4. Исследовать воздействие на фотохимические процессы в хлоропластах экзогенного пероксида водорода, как возможного регулятора работы фотосинтетического аппарата в стрессовых условиях.

Основные положения, выносимые на защиту:

Изменения фотосинтетической активности и прооксидантно-антиоксидантного равновесия в хлоропластах растений в процессе онтогенеза и при воздействии гипертермии взаимосвязаны.

2-часовая экспозиция 42°С-гипертермии обладает сильным стрессирующим действием: через 2 часа после окончания тепловой обработки интенсивность ПОЛ остается на уровне стрессированных растений, хотя наблюдается увеличение АО-резервов.

Тепловой шок вызывает быстрые перестройки в работе фотосинтетического аппарата и параметров перекисного гомеостаза хлоропластов, которые направлены на уменьшение степени развития окислительного стресса.

Пероксид водорода обладает активирующим действием на процесс циклического фотофосфорилирования и может являться одним из регуляторов работы фотосинтетического аппарата в условиях стресса.

Научная новизна. Впервые исследованы взаимосвязанные изменения фотохимической активности и процессов липопероксидации в хлоропластах в ходе онтогенеза растений и при воздействии повышенной температуры.

Впервые выявлены изменения прооксидантно-антиоксидантного равновесия в хлоропластах после возвращения стрессированных растений в нормальные температурные условия.

Впервые обнаружены быстрые перестройки работы фотосинтетического аппарата и смещение прооксидантно-антиоксидантного равновесия в мембранах хлоропластов в ответ на гипертермию. Продемонстрирована сходная картина ответов на гипертермическую обработку на различных экспериментальных моделях — полевых растениях, проростках и суспензии изолированных хлоропластов.

Показано, что пероксид водорода обладает активирующим действием на процесс циклического фотофосфорилирования.

Теоретическая и практическая значимость. Полученные результаты важны для понимания механизмов регуляции защитных систем, обеспечивающих поддержание гомеостаза клеток растений при стрессовых воздействиях. Определены быстрые перестройки работы фотосинтетического аппарата и процессов липопероксидации, которые позволяют растениям противостоять действию повышенной температуры. Знания о механизмах регуляции систем поддержания гомеостаза могут позволить выработать новые подходы к повышению устойчивости растений к неблагоприятным условиям. Основные выводы и результаты работы используются в учебном процессе на биологическом факультете Нижегородского университета при чтении общего курса «Физиология растений», спецкурсов: «Регуляция метаболизма», «Рост и развитие растений» и «Экологическая биохимия».

Апробация работы. Основные результаты работы доложены на Международной конференции по фундаментальным наукам среди студентов и аспирантов «Ленинские горы-95» (Москва, 1995), International Symposium on Stress and Inorganic Nitrogen Assimilation @ the 2nd FOHS Biostress Symposium (Moscow, 1996), Второй и Третьей Нижегородских сессиях молодых ученых (Нижний Новгород, 1997, 1998), V Международной конференции «Биоантиоксидант» (Москва, 1998), Международной конференции по фундаментальным наукам среди студентов и аспирантов «Ломоносов-99» (Москва, 1999), III съезде фотобиологов России (Воронеж, 2001), Международной научной конференции «Биологические ресурсы и устойчивое развитие» (Пущино, 2001), International Symposium «Plant under Environmental Stress» (Moscow, 2001), 6ой Пущинской школы-конференции молодых ученых «Биология — наука 21го века» (Пущино, 2001), III съезде Биохимического общества России (Санкт-Петербург, 2001), 2-ой и 3-ей Международных конференциях студентов и молодых ученых «Актуальные проблемы современной науки» (Самара, 2001, 2002).

Публикации. По материалам диссертации опубликовано и направлено в печать 19 работ.

Структура и объем диссертации

Диссертация состоит из введения, обзора литературы, методов исследований, результатов исследований и их обсуждения, заключения, выводов и списка литературы (331 работа, в том числе 163 иностранных). Работа изложена на 157 страницах, содержит 23 рисунка и 9 таблиц.

ВЫВОДЫ.

1. Изменения активности фотохимических процессов и прооксидантно-анти-оксидантного равновесия в хлоропластах в процессе онтогенеза растений и при воздействии гипертермии взаимосвязаны: двухчасовая гипертермия вызывает активацию ЦФ, снижение НЦФ и суммарной фотофосфорилирующей активности хлоропластовповышение уровня продуктов ПОЛ сопровождается активацией СОД, ингибированием ГР и уменьшением содержания С8Н.

2. Через 2ч после возвращения гипертермированных растений (в течение 2 часов) в нормальные температурные условия уровень липопероксидации практически не снижается на фоне достоверного увеличения АО-резервов — СОД, ГР, С8Н.

3. Для фотосинтетических процессов и перекисного гомеостаза мембран хлоропластов характерны быстрые неспецифические ответные реакции на стрессовое воздействие. Малые дозы теплового шока (15−30 минут) при стрессировании целых растений вызывают переключение путей транспорта электронов — с нециклического на циклический и сопровождаются развитием окислительного стресса — усилением ПОЛ. После более длительной гипертермии (60−120 минут) сохраняется преобладание ЦФ над НЦФ, и существенно снижается суммарная фотофосфорилирующая активность, при этом равновесие ПОЛ-АО в значительной мере восстанавливается благодаря активации АО системы. Для изолированных хлоропластов характерна большая степень развития окислительных процессов.

4. Пероксид водорода обладает активирующим действием на процесс циклического фотофосфорилирования, не вызывает разобщения транспорта электронов с синтезом АТФ и может являться одним из регуляторов работы фотосинтетического аппарата растений в состоянии стресса.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Обобщая полученные результаты можно заключить, что вызванные гипертермическим воздействием изменения фотохимических реакций и прооксидантно-антиоксидантного равновесия представляют собой комплекс взаимосвязанных реакций, направленных на снижение степени развития опасных для клеток окислительных процессов (рис.23).

Рис. 23. Возможная взаимосвязь изменений фотохимической активности и прооксидантно-антиоксидантного равновесия в хлоропластах при гипертермическом воздействии.

Под влиянием теплового шока происходит быстрое переключение потоков электронов с нециклического на циклический путь, вследствие чего ингибируется работа ФСП, считающейся более «опасной» с точки зрения генерации АФК, чем ФС1. Повышение уровня липопероксидации при небольших экспозициях гипертермии сменяется активацией АО-системы, которая возвращает уровень ПОЛ при длительном воздействии практически до исходного, однако скорость фотохимических реакций продолжает снижаться, дополнительно уменьшая вероятность генерации АФК в хлоропластах. Сдвиги баланса окислительно-восстановительных реакций в хлоропластах и структурные изменения мембран, вызванные процессами липопероксидации, также могут оказывать влияние на функционирование ФЭТЦ. Изменения уровня энергообеспеченности и структурного состояния мембран определяют дальнейшее функционирование хлоропластов в условиях гипертермии.

Показать весь текст

Список литературы

  1. A.A. Активные формы кислорода и иммунитет растений // Усп. совр. биол., 1991. Т. 111. — Вып.5. — С. 722−734.
  2. A.A., Лапикова В. П., Николаев О. Н., Степанов А. И. Зависящая от активированного кислорода защита риса от пирикуляриоза с помощью рибофлавина и розеофлавина // Биохимия, 2000. Т.65. — Вып.11. — С. 1530−1537.
  3. Т.В., Балагурова Н. И., Титов А. Ф. Влияние локального нагрева на тепло, холодо- и солеустойчивость клеток листа и корня растений // Физиол. раст., 1999. Т. 46, № 1. — С.119−123.
  4. A.B. Роль липидов и перекисного окисления в биологической и функциональной активности ДНК // В сб.: Биохимия липидов и их роль в обмене веществ. М.: Наука, 1981. — С. 3−14.
  5. Д.С., Матвеева Н. П., Старостенко Н. В., Ермаков Н. П. Нарушения развития мужского гаметофита табака при локальном нагреве тканей спорофита // Физиол. раст., 1997. Т.44, № 5. — С .725−730.
  6. Т.К., Кауров Ю. Н., Лехимена Л., Давлетшина Л. Н., Мерзляк М. Н., Ловягина Е. Р., Белевич Н. П., Иванов И. И., Рубин А. Б. Окислительные процессы в ФС I термофильных цианобактерий при высоких температурах // Физиол. раст., 2001. Т.48, № 5. — С. 739−745.
  7. В.Ф. Биофизика мембран // Сорос, обр. журн., 1996, № 6. С. 4−12.
  8. А.И., Комиссаров Г. Г. Влияние пероксида водорода на развитие растений // Известия РАН. Сер. Биологическая, 1996. № 5. — С.621- 623.
  9. Ю.Арчаков А. И. Микросомальное окисление. М.: Наука, 1975. — 328 с.
  10. П.Арчаков А. И., Мохосоев И. М. Модификация белков активным кислородом и их распад // Биохимия, 1989. Т.54, Вып.2. — С. 179−186.
  11. В.А. Механизмы стресса и перекисное окисление липидов // Усп. совр. биол. 1991.-Т. 111.-Вып. 6. — С. 923−931.
  12. В.А., Брехман И. И., Голотин В. Г. Перекисное окисление и стресс. СПб.: Наука, 1992. 148с.
  13. А.Д., Моженок Т. П. Неспецифический адаптационный синдром клеточной системы. Л.: Наука, 1987. — 230 с.
  14. Е.Б., Веселовский В. А., Колье O.P. Биоантиокислители в регуляции метаболизма в норме и патологии. М.: Наука, 1982. — 240 с.
  15. Е.Б., Крашаков С. А., Храпова Н. Г. Роль токоферолов в пероксидном окислении липидов мембран // Биол. мембраны, 1998. Т. 15, Вып.2. — С. 137−163.
  16. Н.Г., Буше Н., Карпантье Р. Последействие кратковременного теплового шока на фотохимические реакции в листьях ячменя // Физиол. раст, 1997. Т.44, № 4. — С. 605−612.
  17. Н.Г., Джибладзе Т. Г. Влияние повышенных температур на фотосинтетическую активность у интактных листьев ячменя при низких высоких освещенностях // Физиол. раст., 2002. Т.49, № 3. — С. 371−375.
  18. Ю.А., Арчаков А. И. Перекисное окисление липидов в биологических мембранах. М.: Наука, 1972. — 252 с.
  19. Ю.А. Свободные радикалы в биологических системах // Сорос, обр. журнал., 2000. Т.6, № 12. — С. 13−19.
  20. А.П. Математическая модель возможного триггера обратимого включения режима стресса у растений // Физиол. раст., 2001. Т. 48, № 1. -С.124−131.
  21. А.П., Курганова Л. Н., Ручкова О. В. Влияние теплового шока на белоксинтезирующую систему листьев гороха II Биохимия, 1997. Т.62, Вып.5. — С. 569−573.
  22. А.П., Лобов В. П., Олюнина Л. Н. Изменение в содержании фитогормонов в ответной реакции растений при тепловом шоке и в период его последствия // Физиол. раст., 1998. Т.45, № 5. — С. 709−715.
  23. В.К. Стрессовые белки растений при действии высокой и низкой температуры // В сб.: Стрессовые белки растений. Новосибирск: Наука, 1989. — С. 5−20.
  24. В.К., Боровский Г. Б. Роль стрессовых белков в клетке при гипертермии // Усп. совр. биол., 1994. Т.114, № 1. — С. 85−95.
  25. И.Г., Упоров И. В., Чубаров Т. А., Фечина В. А., Мареева Е. А., Лагримини Л. М. Влияние рН на стабильность анионной пероксидазы табака и ее взаимодействие с перекисью водорода // Биохимия, 1998. -Т.63. Вып.5. — С. 708−715.
  26. И.А., Клюбин И. В. Перекись водорода как сигнальная молекула // Цитология, 1996. Т.38, № 12 — С. 1233−1243.
  27. П.А. Физиология жаро- и засухоустойчивости растений. М.: Наука, 1982. — 280 с
  28. JI.X. Функциональная характеристика адаптивного старения отсеченных корней пшеницы // Физиол. биох. культ, раст., 1992. Т.24, № 2.-С. 128−133.
  29. А.Н., Тарчевский И. А. Липоксигеназная сигнальная система // Физиол. раст., 1999. Т.46, № 1. — С. 132−142.
  30. Д.М. Надежность растительных систем. Киев: Наукова Думка, 1983. — 366 с.
  31. Н.И., Салганик Р. И. Индуцированный синтез БТШ и их роль в адаптации к действию высоких температур // Стрессовые белки растений. Новосибирск: Наука, 1989. — С. 20−43.
  32. Е.Е. Биологическая роль супероксидного анион-радикала и супероксиддисмутазы в тканях организма //Усп. совр. биол., 1989. Т. 108, Вып.1(4). — С.3−18.
  33. Е.Е. Некоторые особенности функционирования ферментативной антиоксидантной защиты плазмы крови человека // Биохимия, 1993. Т.58. — Вып.2. — С. 268−273.
  34. Э.В., Безуглов В. В. Липиды как биоэффекторы. Введение // Биохимия, 1998. -Т.63, № 1. С. 3−5.
  35. О.М., Чайлахян Л. М. Са2±каналы растительных клеток и их регуляция // Усп. совр. биол., 1994. Т.114, № 5. — С 608−617.
  36. .Н. Восстановление кислорода в хлоропластах и аскорбатный цикл // Биохимия, 1998. Т. 63., Вып. 2. — С. 165−170.
  37. .Н., Путвинский A.B., Антонов В. Ф., Владимиров Ю. А. Увеличение протонной проницаемости липосом при перекисном окислении липидов // Биофизика, 1977. — Т.22. — Вып.4. — С. 621−626.
  38. Л.Н., Переход Е. А., Чаленко Г. И., Герасимова Н. Г., Романенко E.H., Зиновьева С. В., Озерецковская О. Л. Активность липоксигенызы в растениях с индуцированной устойчивостью // Физиол. раст., 2000. Т.47, № 4.-С. 516−523.
  39. Ю.Е., Балахнина Т. И., Закржевский О. О. Действие почвенной гипоксии на активацию кислорода и систему защиты от окислительнойдеструкции в корнях и листьях ячменя // Физиол. раст., 1994. Т. 41, № 4. -С. 583−590.
  40. A.B. К вопросу о регуляторной роли активных форм кислорода в клетке // Биохимия, 1998. Т.63. — Вып.9. — С. 1305−1306.
  41. А.Б., Пименов A.M. Каротиноиды как антиоксидантные модуляторы клеточного метаболизма // Усп. совр. биол., 1996. Т. 116, Вып.2. — С. 179−193.
  42. Ф.Г., Тарчевский И. А., Мурсалимова Н. У., Гречкин А. Н. Влияние продукта липоксигеназного метаболизма 12-гидроксидодеценовой кислоты на фосфорилирование белков растения // Физиол. раст., 1999. — Т.46, № 1. — С. 148−152.
  43. М.В., Лукаш А. И., Гуськов Е. П. Роль низкомолекулярных антиоксидантов при окислительном стрессе // Усп. совр. биол., 1993. Т. 113., Вып. 4.-С. 456−471.
  44. И.М., Буболо Л. С., Васьковский М. Д. Увеличение длины и количества мембран тилакоидов в хлоропластах листьев пшеницы в результате теплового шока // Физиол. раст., 1997. Т.44, № 1. — С. 39−44.
  45. В.В. Окисление воды и выделение молекулярного кислорода при фотосинтезе // Сорос, обр. журн., 1996. № 11. — С. 9−12.
  46. A.B., Побежимова Т. П., Войников В. К. Характеристика белков низкотемпературного стресса растений // Физиол. раст., 2000. -Т.47, № 4. С. 624−630.
  47. Л.С., Кулинский В. И. Глутатионтрансферазы // Усп. совр. биол., 1989. Т. 107, Вып.2. — С. 179−194.
  48. Ю.Е., Трунова Т. И. Особенности метаболизма и защитные функции углеводов растений в условиях стресса // Физиол. биох. культ, раст., 1992. Т.24, № 6. — С. 523−533.
  49. Г. Г., Птицин Г. А. Влияние пероксида водорода на фотосинтетическое выделение кислорода // ДАН СССР, 1993. Т.329, № 5. -С. 661−663.
  50. Г. Г. Фотосинтез: взгляд с новых позиций // Хим. физика, 1995. Т.14.№ 1.-С. 20−28.61 .Кондрашова М. Н. Отрицательные аэроионы и АФК// Биохимия, 1999. -Т.64, № 3. С. 430−432.
  51. Н.Е., Антипина А. И., Грабельных О. И., Варакина H.H., Боровский Г. Б., Войников В. К. Митохондриальные низкомолекулярные белки теплового шока и устойчивость митохондриальных злаков к гипертермии // Физиол. раст., 2001. Т.48, № 6. — С. 917−922.
  52. O.A. Свойства плазмалеммы морозостойких растительных клеток //Усп. совр. биол., 1988. Т. 106. — Вып. 1(4). — С. 143−157.
  53. A.A. Синглетный кислород: механизмы образования и пути дезактивации в биологических системах // Биофизика, 1994. Т.39, № 2. -С. 236−250.
  54. Т.Е., Макарова В. В., Кукарских Г. П., Низовская Н. В., Лаврухина О. Г. Фотохимическая активность хлоропластов пшеницы, выращенной при недостатке азота // Биохимия, 1996. Т.61, Вып. 12. — С. 2158−2164.
  55. H.H., Скобелева О. В., Шарова Е. И., Ермаков Е. И. Перекись водорода как возможный посредник в снижении гидравлической проводимости корней пшеницы при солевом стрессе // Физиол. раст., 2002. Т.49, № 3. — С. 412−424.
  56. Г. Р., Усманов И. Ю., Гюли-Заде В.З., Фаттахутдинов Э. Г., Веселов С. Ю. Взаимодействие пространственно разобщенных органоврастений. Соотношение электрических и гормональных сигналов // ДАН СССР, 1990. Т.310, № 6. — С.1511−1514.
  57. В.В., Пустовойтова Т. Н., Яценко И. А., Борисова H.H., Жолкевич В. Н. Стрессорные белки и фитогормоны при адаптации растений Cucumis sativus L. к почвенной засухе // ДАН СССР, 1992. Т.322, № 1.- С.204−207.
  58. Кузнецов В л .В., Старостенко Н. В. Синтез белков теплового шока и их вклад в выживание интактных растений огурца при гипертермии // Физиол. раст., 1994. Т.41, № 3. — С. 374−389.
  59. Вл. В., Хадыров Б. Т., Шевякова Н. И., Ракитин В. Ю. Индукция тепловым шоком солеустойчивости хлопчатника, участие полиаминов, этилена и пролина // Физиол. раст., 1991. Т.38, № 6. — С. 1203−1210.
  60. Вл. В., Шевякова Н. И. Пролин при стрессе: биологическая роль, метаболизм, регуляция // Физиол. раст., 1999. Т .46, №.2. — С. 321−336.
  61. А.И., Морозова Р. П., Николенко И. А., Корниец Г. В., Холодова Ю. Д. Влияние витамина Дз и экдистерона на свободнорадикальное окисление липидов // Биохимия, 1997. Т.62, № 6. — С. 712−715.
  62. О.Н. Физиологическая роль абсцизовой кислоты // Физиол. раст., 1994. Т. 5, № 5. — С. 645−646.
  63. О.Н., Микулович Т. П., Хохлова В. А. Стрессовые белки растений // Совр. пробл. биохимии. М.: Наука, 1991. — С. 174 -175.
  64. Л.Н., Синицына Ю. В., Веселов А. П. Изменение одного из факторов продуктивности растений фотохимической активности хлоропластов — в ответ на гипертермию // Сборник научных трудов КГТУ
  65. Актуальные проблемы сельского хозяйства". Калининград, 2001(6). -4.2. С.141−149.
  66. Л.П., Месянжинов В. В. Молекулярные шапероны // Усп. биол. Химии, 1996. Т.36. — С. 49−86.
  67. А., Расулов В. Г., Лоретто Ф. Исследование теплового повреждения фотосинтеза методами газообмена и флуоресценции хлорофилла // Физиол. раст., 1998. Т.45, № 4. — С. 489−499.
  68. В.З., Осис Ю. Г., Тихадзе А. К. Гидроперокси- и гидроксипроизводные свободных ненасыщенных жирных кислот и фосфолипидов как модификаторы структуры липосомальных мембран // ДАН СССР, 1996. Т.351, № 2. — С. 269−272.
  69. В.П., Гайворонская Л. М., Аверьянов A.A. Возможное участие активных форм кислорода в двойной индукции противоинфекционных реакций растения // Физиол. раст., 2000. Т.47, № 1. — С. 160−162.
  70. Е.Л., Вартанян Л. С. Супероксиддисмутаза: определение активности по ингибированию фотосенсибилизированной хемилюминисценции глицилтриптофана // Биохимия, 2000.-Т.65, № 5. С. 704−708.
  71. Д.А. Десатуразы жирных кислот: адаптивная экспресия и принципы регуляции // Физиол. раст., 1997. Т.44, № 2. — С. 528−540.
  72. A.C., Исайкина Е. Е. Кальциевый статус и холодовое повреждение проростков кукурузы // Физиол. раст., 1997. Т.44, № 3. — С. 392−396.
  73. A.C., Левина Е. Е. Влияние экзогенных модификаторов перекисного окисления на холодовое повреждение листьев огурца // Физиол. раст., 1997. Т.44, № 3. — С. 397−403.
  74. A.C., Шаркаева Э. Ш., Зауралов O.A. Изменения перекисного окисления липидов в листьях теплолюбивых растений при различной длительности холодового стресса // Физиол. раст., 1995. Т. 42, № 4.- С. 607−611.
  75. В.И., Окислительный стресс и механизмы защиты от него у бактерий // Биохимия, 2001. Т.66. — Вып.5. — С. 592−609.
  76. В.Ю., Застрижная О. М. Роль перекиси водорода в фотодыхании С4 растений // Физиол. раст., 1992. — Т. 39, № 4. — С. 70−74.
  77. М.И. Сравнение устойчивости реакции Хилла к высокой температуре и гидролитическим ферментам у двух видов высших растений // Физиол. раст., 1983.- Т.30, Вып.6.- С.1194 1200.
  78. М.И., Тихонов Н. Л. Влияние высокой температуры на процессы электронного транспорта // Биофизика, 1983. Т.28, Вып. 2. — С.284−287.
  79. М.И., Каменцева И. Е. Структурная и функциональная термостабильность ферредоксин-НАДФ-редуктазы из листьев огурца и дыни // Физиол. раст., 1996. Т.43, № 3. — С.462−466.
  80. A.B. Модифицированные препараты супероксиддисмутазы и каталазы для защиты сердечно-сосудистой системы и легких // Усп. совр. биол., 1993. Т.113. — Вып.З. — С. 351−365.
  81. К., Палич Е. Стабильность и авторегуляторные свойства цитоплазматической окислительно-восстановительной системы GSH/GSSG у растений пшеницы при воздействии умеренного водного дефицита // Физиол. раст., 1997. Т.44. — Вып.4. — С. 517−522.
  82. Н.С., Филиппова Л. А., Зубкова Е. П. О функционировании гликолиза и окислительного пентозофосфатного цикла в клетке на свету и в темноте // В сб.: Вопросы взаимосвязи фотосинтеза и дыхания. Томск: ТГУ, 1988.-С. 5−18.
  83. Н.С., Зубкова Е. П., Войцеховская О. В. Взаимодействие фотосинтеза и дыхания у одноклеточных водорослей и С3-растений // Физиол. Раст., 1997. Т.44, № 3. — С. 449−461
  84. И.В., Батов А. Ю., Мошков A.B., Максимов Г. Б., Медведев С. С. Кальций- транспортирующие системы плазмалеммы колеоптилей кукурузы // Физиол. раст., 1995. Т.42, № 2. — С.262−267.
  85. С.С., Батов А. Ю., Мошков A.B., Маркова И. В. Роль ионных каналов в трансдукции ауксинового сигнала // Физиол. раст., 1999. Т.46, № 5.-С. 711−717.
  86. С.С., Маркова И. В. Цитоскелет и полярность растений // Физиол. раст., 1998. -Т.45, № 2. С. 185−197.
  87. Е.И. О возможном принципе регуляции повреждения и защитной реакции клетки // Журн. общ. биол., 1983. Т.44, № 3. — С. 386−397.
  88. Е.И. Принцип регуляции скорости процесса повреждения клетки и реакция защитного торможения метаболизма (РЗТМ) // Журн. общ. биол., 1985. Т.46, № 2. — С. 174−189.
  89. Е.И., Анев В. Н. Обратимый выход К+ из клетки как защитная реакция на неблагоприятные воздействия // Журн. общ. биол., 1991. Т.52, № 1. — С. 14−26.
  90. Е.Б., Зенков Н. К. Антиоксиданты и ингибиторы радикальных и окислительных процессов // Усп. совр. биол., 1993. Т. 113, Вып. 4. — С. 442−455.
  91. М.Н. Активированный кислород и окислительные процессы в мембранах растительной клетки // Итоги науки и техники / ВИНИТИ, серия Физиология растений, 1989. Т.6. — 168с.
  92. М.Н. Активированный кислород и жизнедеятельность растений // Сорос, обр. журнал, 1999. № 9. — С. 20−26.
  93. Д.И. Активация кислорода ферментными системами. М.: Наука, 1982.-256 с.
  94. Методы биохимического исследования растений. / Под. ред. А. И. Ермакова. Л. гАгропромиздат, 1987. 430с.
  95. В. М., Ляхович В. В. Дисмутаза 02″ : физико-химические свойства, каталитический механизм и биологическое значение // Усп. совр. биол., 1976. Т.82. — Вып. З (6). — С. 338−355.
  96. В.Н., Должиков C.B. Влияние быстрого обезвоживания листа на фотосинтетический аппарат и мембранный потенциал тилакоидов // Физиол. раст., 1991. -Т.З8, № 4. С. 641−647.
  97. Г. В., Суворова Т. А. Изменение липидного состава мембранных фракций проростков озимой пшеницы при низкотемпературной адаптации // Физиол. раст., 1994. Т.41, № 4. — С. 539−545.
  98. В.А. Функциональные аспекты биоэлектрогенеза у высших растений // LIX Тимирязевские чтения. Н. Новгород: ННГУ, 1998. 45 с.
  99. В.А., Калинин В. А., Пятыгин С. С., Орлова О. В., Абрамова H.H. Увеличение потенциалчувствительности АТФазной активности плазмалеммы при холодовом закаливании проростков пшеницы // Физиол. раст., 1999. Т.46, № 1. — С.153−158.
  100. В.А., Пятыгин С. С., Крауз В. О., Худяков В. А., Абрамова С. С. Активация электрогенного Н+ -насоса плазматических мембран при адаптации клеток высшего растения к низкой положительной температуре // Физиол. раст., 1994. Т.41, № 4. — С.488−493.
  101. О.В., Пятыгин С. С., Опритов В. А., Калинин В. А. Стабилизирующая роль АТФ-зависимого -насоса в электрогенезе плазмалеммы клеток Cucurbito pepo // Физиол. раст., 1997.- Т.44, № 6. С. 909−914.
  102. А.Н., Азизова O.A., Владимиров Ю. А. Активные формы кислорода и их роль в организме // Успехи биол. хим., 1990. Т.31, № 1. -С. 25−32.
  103. В.М. Основные положения современной теории стресса и неспецифический адаптационный синдром у растений // Цитология, 1995.- Т.37, Вып. ½.-С. 66−91.
  104. В.М., Гордон JI.X. Изменение физиологического состояния клеток корней пшеницы в процессе адаптивного старения // Физиол. раст., 1984.-Т.31, № 6.-С. 1162−1169.
  105. В.М., Пахомов Д. В. Неспецифический адаптационный синдром отсеченных корней // Усп. совр. биол., 1992. Т. 112, № 3. — С. 398−409.
  106. В.М., Чернов И. А. Некоторые особенности индуктивной фазы неспецифического адаптационного синдрома растений // Физиол. раст., 1996. Т. 43, № 6. — С.705−715.
  107. A.B. Роль кислородных радикалов, образующихся при функционировании мембранных редокс-цепей, в повреждении ядерной ДНК//Биохимия, 1996. -Т.61,№ 1. С. 65−71.
  108. A.B., Столяров С. Д. Сравнение Си, 2п-содержащей супер-оксиддисмутазы у лягушек рода Xenopus // Биохимия, 1997. Т.62, Вып.7.- С. 905−907.
  109. H.A. Биометрия. М.: МГУ, 1970. — 367 с.
  110. В.В. Методы биохимического анализа растений /под редакцией В. В. Полевого. Изд-во ЛГУ. 1978, 166 с.
  111. B.B. Физиология растений. M.: Высшая школа, 1989. — 264 с.
  112. A.B., Танкелюн О. В., Полевой В. В. Быстрая дистанционная передача сигнала о локальном стрессовом воздействии у проростков кукурузы // Физиол. раст., 1997. Т.44, № 5. — С.645−651.
  113. Г. А., Комисаров Г. Г. Кинетика выделения кислорода при фотосинтезе в присутствии пероксида водорода// Хим. физика, 1993. -Т. 12, № 11. С. 1460−1463.
  114. Т.Н., Еремин Г. В., Рассветаева Э. Г., Жданова Н. Е., Жолкевич В. Н. Засухоустойчивость, репарационная способность и содержание фитогормонов в листьях полиплоидных растений сливы // Физиол. раст., 1996. Т.43, № 2. — С. 267−271.
  115. С.С., Опритов В. А., Абрамова H.H., Воденеев В. А. Первичная электрическая реакция клеток высшего растения на комбинированное действие стресс-факторов различной природы // Физиол. раст., 1999. -Т.46,№ 4.-С. 610−617.
  116. .Х., Оя В.М., Лайск А. К. Температурная зависимость фотосинтеза в связи с кинетикой рибулозо-1,5-бисфосфаткарбоксилазы и пула рибулозо-1,5-бисфосфата в интактных листьях // Физиол. раст., 1991. -Т.38, Вып.1. С. 15−23.
  117. Н.И. Адаптационные изменения в белковом и аминокислотном обмене у растений в условиях водного стресса // В сб.: Стрессовые белки растений. Новосибирск: Наука, 1989. — С. 113−132.
  118. В.Г., Опритов В. А., Лобов С.А, Тараканов С. А., Худяков В. А. Модификация устойчивости фотосинтезирующих клеток к охлаждению и прогреву после раздражения корней раствором KCl // Физиол. раст., 1999.- Т.46, № 5. С.790−798.
  119. В.Г., Опритов В. А., Федулина С. Б. Преадаптация тканей стебля Cucurbito pepo к повреждающему действию низких температур, индуцированная потенциалом действия // Физиол. раст., 1997. Т.44, № 4.- С.499−510.
  120. В. А. Фенольные антиоксид анты: реакционная способность и эффективность. М.: Наука, 1988. — 248 с.
  121. JI.A., Стальная И. Д. Метод определения гидроререкисей липидов с помощью тиоцианата аммония // Современные методы в биохимии / Под ред. В. Н. Ореховича. М.: Медицина, 1977. -С. 63−65
  122. В.Д., Безряднов Д. В., Гусев М. В., Киташов A.B., Федоренко Т. А. Пероксид водорода ингибирует рост цианобактерий// Биохимия, 1999.-Т.64,№ 1.-С. 60−67.
  123. В.Д., Безряднов Д. В., Гусев М. В., Киташов A.B., Федоренко Т. А. Пероксид водорода ингибирует фотосинтетический транспорт электронов в клетках цианобактерий // Биохимия, 2001. Т.66, № 6. — С. 790−796.
  124. Г. На уровне целого организма. М.: Наука, 1972.-122 с.
  125. A.M., Крашенинникова Г. А., Вахнина JI.B. Этиленообразующий фермент растений // Биохимия, 1995. Т.60, № 7. -С.1005−1014.
  126. Н.Ф. Роль жирных кислот в адаптации проростков кукурузы к температурному стрессу // Вестник С-Петербургского ун-та, 1998. -Сер.З, Вып.2, № 10. С. 85−89.
  127. В. П. О биохимических механизмах эволюции и роли кислорода // Биохимия, 1998. Т.63, Вып.11. — С. 1570−1579.
  128. И.Д. Метод определения диеновой конъюгации ненасыщенных высших жирных кислот // Современные методы в биохимии / Под ред. В. Н. Ореховича. М.: Медицина, 1977. — С. 63−64.
  129. И. Д. Гаришвили Т.Г. Метод определения малонового диальдегида с помощью тиобарбитуровой кислоты // Современные методы в биохимии / Под ред. В. Н. Ореховича. М.: Медицина, 1977. — С. 66−68.
  130. А.П. О криозащитной роли аминокислот в растениях // Физиол. биох. культ, раст., 1992. Т.24, № 6. — С. 560−569.
  131. И.В., Боровский Г. Б., Войников В. К. Накопление термостабильных белков в озимой пшенице при гипертермии // Физиол. раст., 1998. Т.45., Вып.6. — С. 859−865.
  132. И.А. Метаболизм растений при стрессе (избранные труды). Казань: Фэн, 2001. — 448с.
  133. И.А. Сигнальные системы клеток растений. М.: Наука, 2002. — 494с.
  134. И. А. Регуляторная роль деградации биополимеров и липидов // Физиол. раст., 1992. Т.39, № 6. — С. 1215−1223
  135. H.A. Элиситор-индуцируемые сигнальные системы и их взаимодействие // Физиол. раст., 2000. Т.47, № 2. — С. 321−331.
  136. И.А., Максютова H.H., Яковлева В. Г., Гречкин А. Н. Янтарная кислота миметик салициловой кислоты // Физиол. раст., 1999. -Т.46, № 1. — С. 23−28.
  137. А.Н. Регуляция световых и темновых стадий фотосинтеза // Сорос, обр. журн., 1999. № 11. — С. 8−15.
  138. В.В., Островская JI.K. Супероксиддисмутаза при карбонатном хлорозе растений // Физиол. биох. культ, раст. 1986. — Т. 18, № 3. — С. 260−265.
  139. М.С., Андреева И. М., Кузнецов В. В. Кальций как внутриклеточный регулятор синтеза БТШ 96 и термотолерантности клеток растений при гипертермии // Физиол. раст., 1997. Т.44, № 4. — С. 511−516.
  140. Т.Н., Бланк В. Б., Кравец Д. А., Тимесков И. С. Пособие по лабораторным методам исследования. JI: Медицина, 1982. — 58 с.
  141. Г. В. Механизмы адаптации растений к стрессам // Физиол. биох. культ, раст., 1979. Т. 11, № 2. — С. 99.-107.
  142. JI.A., Мамушина Н. С., Зубкова Е. К. Развитие представлений о взаимосвязи фотосинтеза и дыхания // В сб.: Эколого-физиологические аспекты фотосинтеза и дыхания растений. JL: Наука, 1989.-С. 168−183.
  143. Г. Я., Страховская М. Г., Рубин А. Б. Индуцированные светом процессы защиты клеток от фотоповреждений // Биохимия, 2000. Т.65, Вып.6. — С. 865−875.
  144. О. Л., Мело Ф. Р. Осмопротекторы: ответ растений на осмотический стресс // Физиол. раст., 2000. Т.47, № 1. — С. 152−159.
  145. A.A., Застрижная О. М., Климов В. В. Фотоингибирование субхлоропластных препаратов фотосистемы II после воздействия отрицательной температуры // Физиол. раст., 1997. Т.44, № 2. — С. 198−204.
  146. П., Сомеро Дж. Стратегия биохимической адаптации. М.: Мир, 1997. 398 с.
  147. Н. Г. О взаимозаменяемости природных и синтетических антиоксидантов //В сб.: Биоантиокислители в регуляции метаболизма в норме и патологии. М.: Наука, 1982. С. 59−73.
  148. С., Чаба И., Секей И. Роль супероксиддисмутазы в окислительных процессах клетки и метод определения её в биологических материалах // Лабораторное дело. 1985. — Вып. 11. — С. 578−681.
  149. , Т.В., Новицкая Л. О., Блохина О. Б. Перекисное окисление липидов и активности антиоксидантных систем при аноксии у растений с разной устойчивостью к недостатку кислорода // Физиол. раст., 1998. -Т.45, № 1. С. 65−73.
  150. Ф.М. Неспецифическая устойчивость растений к стрессовым факторам и ее регуляция. Уфа.: Гилем, 2001. 161 с.
  151. Ф.М., Безрукова М. В. Изменение содержания АБК и лектина в корнях проростков пшеницы под воздействием 2,4-эпибрассионелида и засоления // Физиол. раст., 1998. Т.45, № 3. — С. 451−455.
  152. Ф.М., Безрукова М. В., Шаяхметов И. Ф. Влияние теплового стресса на динамику накопления АБК и лектина каллуса пшеницы // Физиол. раст., 1995. Т.42, № 5. — С. 700−702.
  153. В.Е. Влияние высокой температуры на активность фотосинтеза, реакцию Хилла и некоторых ферментов хлоропластов пшеницы // Физиол. раст., 1994. Т.41, № 5. — С.726−730.
  154. В.Е. Репарация различных клеточных функций листьев пшеницы после теплового повреждения // Цитология, 1990. Т.32, № 1. -С. 28−34.
  155. В.Е., Буболо JI.C., Каменцева И. Е. Теплоустойчивость клеток и образование ГТШ в клетках листьев пшеницы // Физиол. раст., 1996. -Т.43, № 1. С. 87−93.
  156. И.Ш., Трунова Т. И., Цыдендамбаев В. Д., Верещагин А. Г. Роль липидов клеточных мембран в криозакаливании листьев и узлов кущения озимой пшеницы // Физиол. раст., 1990. Т.37, № 6. — С. 1186−1195.
  157. Allen J.D., Ort D.R. Impacts of chilling temperatures on photosynthesis in warm-climate plants // Trends Plant Sci., 2001. V.6, № 1. — P. 36−42.
  158. Alscher R.G. Biosynthesis and antioxidant function of glutathione in plants // Physiol. Plantarum, 1989. V.77. — P. 457−464.
  159. Alscher R.G., Donahue J.L., Cramer C.L. Reactive oxygen species and antioxidants: relationships in green cells // Physiol. Plant, 1997. V.100. — P. 224−233.
  160. Apelbaum A., Yang S. F. Biosynthesis of stress ethylene induced by water deficit // Plant Physiol., 1981. V.68. — P. 594−596.
  161. Arnon D.L., Allen M.B., Whatley L.B. Photosynthesis by isolated chloroplasts. Genetic concept and comparison of free photochemical reactions // Biochem. at Biophys. Acta.- 1956.- V.20, № 2. P.449.
  162. Asada K. The water-water cycle in chloroplasts: scavenging of active oxygen and dissipation of excess photons // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. V.50. — P. 601−639.
  163. Backhausen J.E., Kitzmann C., Horton P., Scheibe R. Electron acceptors in isolated spinach chloroplasts act hierarchically to prevent over-reduction and competition for electrons // Photosynth. Res., 2000. № 64. — P. 1−13.
  164. Barber J. Photosystem two // BBA, 1998. V.1365. — P. 269−277.
  165. Barbier-Brygoo H., Ephritikhine G., Klambt D., Ghislain M., Guern J. Functional evidence for en auxin receptor at the plasmalemma of tobacco mesophyll protoplasts // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1989. V.86. — P. 891−895.
  166. Barbier-Brygoo H., Joyard J., Pugin A., Ranjeva R. Intracellular compartmentation and plant cell signaling // Trends Plant Sci., 1997. V.2, № 6. -P. 214−222.
  167. Bartoli C.G., Simontacchi M., Guiamet J.J., Montaldi E., Puntarulo S. Antioxidant enzymes and lipid peroxidation during aging of Chrysantemum morifolium RAM petals // Plant Sci., 1995. V.104. — P. 161−168.
  168. Baudouin E., Charpenteau M., Ranjeva R., Ranty B. Involvement of active oxygen species in the regulation of a tobacco defence gene by phorbol ester // Plant Science, 1999. V.142. — P. 67−72.
  169. Becana M., Moran J.F., Iturbe-Ormaexte I. Iron-dependent oxygen free radical generation in plants subjected to environmental stress: toxicity and antioxidant protection // Plant Soil, 1998. V.201. — P. 137−147.
  170. Bendall D.S., Manasse R.S. Cyclic photophosphorylation and electron transport // BBA, 1995. V.1229. — P. 23−38.
  171. Blumwald E., Aharon G.S., Lam B. G-H. Early signal transduction pathways in plant-pathogen interactions // Trends Plant Sci., 1998. V.3, № 9. -P. 342−346.
  172. Bohnert H.J., Nelson D.E., Jensen R.G. Adaptations to environmental stress //Plant Cell, 1995. V.7. — P. 1099−1111.
  173. Bond B.J. Age-related changes in photosynthesis of woody plants // Trends Plant Sci., 2000. V. 6, № 8. — P. 349−353.
  174. Bowler C., Fluhr R. The role of calcium and activated oxygens as signals for controlling cross-tolerance // Trends Plant Sci., 2000. V.6, № 6. — P. 241−244.
  175. Bowler C., Montagu M.V., Inze D. Superoxide dismutase and stress tolerance // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol., 1992. V.43. — P. 83−116.
  176. Breusegem F.V., Vranova E., Dat J.F., Inze D. The role of active oxygen species in plant signal transduction // Plant Sci., 2001. V. 161. — P. 405−414.
  177. Bukhov N., Carpentier R., Samson G. Heterogeneity of Photosystem I reaction centers in barley leaves as related to the donation from stromal reductants // Photosynth. Res., 2001. V.70. — P. 273−279.
  178. Burke J. J., Oliver M.J. Differential temperature sensitivity of pea superoxide dismutases//Plant Physiol., 1992. V.100.-P. 1595−1598.
  179. Camp W.V., Montagu M.V., Inze D. H2O2 and NO: redox signals in desease resistance // Trends Plant Sci., 1998. V.3, № 9. — P. 330−334.
  180. Carvalho L.C., Amancio S. Antioxidant defence system in plantlets transferred from in vitro to ex vitro: effects of increasing light intensity and C02 concentration // Plant Sci., 2002. V. 162. — P. 33−40.
  181. Casano L.M., Martin M., Sabater B. Sensitivity of superoxide dismutase transcript levels and activities to oxidative stress is lower in mature-senescent than in young barley leaves // Plant Physiol., 1994. V. 106. — P. 1033−1039.
  182. Casano L.M., Zapata J.M., Martin M., Sabater B. Chlororespiration and poising of cyclic electron transport. Plastoquinone as electron transporter between thylakoid NADH dehydrogenase and peroxidase // J. Biol. Chem., 2000. V. 275, № 2. — P. 942−948.
  183. Casano L.M., Martin M., Sabater B. Hydrogen peroxide mediates the induction of chloroplastic Ndh complex under photooxidative stress in barley // Plant Physiol., 2001. V.125, № 3. — P. 1450−1458.
  184. Champigny M.L. Integration of photosynthetic carbon and nitrogen metabolism in higher plants // Photosynth. Res., 1995. V.46. — P. 117−127.
  185. Chang C.J. Kao C.H. H2O2 metabolism during senescence of rice leaves: changes in enzyme activities in light and darkness // Plant Growth Regul., 1998.-№ 25.-P.l 1−15.
  186. Chen S, Schopfer P. Hydroxil-radical production in physiological reactions. A novel functions of peroxidase // Eur. J. Biochem., 1999. V.260.- P. 726−735.
  187. Chernikova T., Robinson J.M., Lee E.H., Mulchi C.L. Ozone tolerance and antioxidant enzyme activity in soybean cultivars // Photosynth. Res., 2000. -V.64. P. 15−26.
  188. Choe M., Jackson C., Yu B.P. Lipid peroxidation contributes to age-related membrane rigidity // Free Radical Biol. Med., 1995. V.18. № 6. — P. 977−984.
  189. Cohen C.K., Norvell W.A., Kochian L.V. Induction of the root cell plasma membrane ferric reductase // Plant Physiol., 1997. V. l 14. — P. 1061−1069.
  190. Conconi A.M., Browse J.A., Ryan C.A. Intracellular level of free linolenic and linoleic acids increase in tomato leaves in response to wounding // Plant Physiol, 1996. V. 111, № 3. — P. 797−803.
  191. Conklin P. L, Last R.L. Differential accumulation of antioxidant mRNAs in Arabidopsis thaliana exposed to ozone // Plant Physiol, 1995. V. l09. — P. 203−212.
  192. Corpas F. J, Barroso J. B, del Rio L.A. Peroxisomes as a source of reactive oxygen species and nitric oxide signal molecules in plant cells // Trends Plant Sci, 2001. V. 8, № 4. — P. 145−150.
  193. Creelman R. A, Mullet J.E. Jasmonic acid distribution and action in plants: regulation during development and response to biotic and abiotic stress // Proc. Natl. Acat. Sci. USA, 1995. V.92. — P. 4114−4119.
  194. Crone D, Roeda J, Martin K. L, Hamilton D. A, Mascarenhas J.P. The differential expression of a heat shock promoter in floral and reproductive tissues // Plant, Cell & Envir, 2001. V.24 (8). — P. 864−874.
  195. Cuello J, Quiles MJ. Effects of photoperiod and plant development stage on NADH dehydrogenase and photosystem activities of isolated chloroplasts // Biol. Plant, 2000. V.43 (3). — P. 393−398.
  196. Dat J. F, Lopez-Delgado H, Foyer C. H, Scott I.M. Parallel changes in H202 production and catalase during thermotolerance induced by salicilic acid or heat acclimation in mustard seedlings // Plant Physiol, 1998. V. l 16. — P. 1351−1357.
  197. De Marco A, Roubelakis-Angelakis K.A. The compleksiti of ensymic control of hydrogen peroxide concentration may affect the regeneration potential of plant protoplast // Plant Physiol, 1996. V. l 10. — P.137−145.
  198. De Quiroga G. B, Perez-Campo R, Torres M.L. Antioxidant defences and peroxidation in liver and brain of aged rats // Biochem. J, 1990. V.272. — P. 247−250.
  199. De Vos C.H.R, Kraak L. H, Bino R.J. // Ageing of tomato seeds inviolves glutathione oxidation // Physiol. Plant, 1994. V.92. — P. 131−139.
  200. Desikan R., Neill S. J., Hancock J. T., Hydrogen peroxide-induced gene expression in Arabidopsis thaliana // Free Rad. Biol. Med., 2000. V.28, № 5. -P. 773−778.
  201. Dhindsa R.S., Matowe W. Drought tolerance in two mosses correlated with enzymatic defense against lipid peroxidation // J. Exp. Bot. 1981. — V. 32. — P. 79−91.
  202. Diesperger H., Sandermann H. Soluble and microsomal glutathione S-transferase activities in pea seedlings (Pisum sativum L) // Planta, 1979. -V.146. P. 643−648.
  203. Donahue J.L., Okpodu C.M., Cramer C.L., Grabau E.A., Alscher R.G. Responses of antioxidants to paraquat in pea leaves // Plant Physiol., 1997. V. 113. — P. 249−257.
  204. Draper J. Salycilate, superoxide synthesis and cell suicide in plant defense // Trends Plant Sci., 1997. V.2, № 5. — P. 162−165.
  205. Droog F. Plant glutathione S-transferases, a tile of theta and tau // J. Plant Growth Reg, 1997. V. 16 — P. 95−107.
  206. Edwards R., Dixon D. P, Walbot V. Plant glutathione S-tansferases: enzymes with multiple functions in sickness and in health // Trends Plant Sci. -2000. V.3, № 6. — P. 193−198.
  207. El-Enany A.E. Abscisic acid-responsive proteins induce solinity tolerance in wheat seedlings // Acta Physiol. Plantarum, 2000. V.22, № 1. — P. 53−59.
  208. Elstner E.F. Activated oxygen and free oxygen radicals in pathology: new insights and analogies between animals and plants // Plant Physiol. Biochem, 1999.-V.37.-P. 167−178.
  209. Endo T, Shikanai T, Takabayashi A, Asada K, Sato F. The role of chloroplastic NAD (P)H dehydrogenase in photoprotection // FEBS Lett, 1999. -V.457.-P. 5−8.
  210. Farrant J.M. A comparison of mechanisms of desiccation tolerance among three angiosperm resurrection plant species // Plant Ecol., 2000. V. 151. — P. 29−39.
  211. Feller U., Crafts-Brandner S.J., Salvucci M.E. Moderately high temperatures inhibit ribulose-l, 5-bisphosphate carboxylase/oxygenase (Rubisco) activase-mediated activation of Rubisco // Plant Physiol., 1998. V. l 16. — P. 539−546.
  212. Filek M., Baczek R., Niewiadomska E., Pilipowicz M., Koscielniak J. Effect of high temperature treatment of Vicia faba roots on the oxidative stress enzymes in leaves // Acta Biochim. Pol., 1997. V. 44, № 2. — P. 315−322.
  213. Finkel T. Redox-dependent signal transduction // FEBS Lett., 2000. V.476. — P. 52−54.
  214. Foyer C.H., Lebandais M., Kunert K. Photooxidative stress in plants // Plant Physiol., 1994. V.92. — P.696−717.
  215. Foyer C.H., Lopez-Delgado H., Dat J.F., Scott I.M. Hydrogen peroxide- and glutathione-assosiated mechanisms of acclimatory stress tolerance and signalling // Physiol. Plant, 1997. V. l00. — P. 241−254.
  216. Fridlyand L.E., Backhausen J.E., Scheibe R. Flux control of the malate valve in leaf cells // Arch. Biochem. Biophys., 1998. V.349. — P. 290−298.
  217. Fridovich J. Superoxide dismutases // Annu. Rev. Biochem. 1978. — V. 44. -P. 147−152.
  218. Garcia-Asua G., Lang H.P., Cogdell R.J., Hunter C.N. Carotenoid diversity: a modular role for the phytoene desaturase step // Trends Plant Sci., 1996. -V.3, № 11. P. 445−449.
  219. Godber B.L.J., Doel J.J., Sapkota G.P., Blake D.R., Stevens C.R., Eisenthal R., Harrison R. NO fulfills reduction of nitrite to nitric oxide catalyzed by xanthine oxidoreductase // J. Biol. Chem., 2000. V.275, № 11. — P. 7757−7763.
  220. Gong M., Van Der Luit A.H., Knight M.R., Trewavas A.J. Heat-shock-induced changes in intracellular Ca level in tobacco seedlings in relation to termotolerance // Plant Physiol., 1998 V. l 16. — P.429−437.
  221. Gomer C.J., Ryter S.W., Ferrario A., Rucker N., Wong S, Fisher A. Photodynamic therapy-mediated oxidative stress can induce expression of heat shock proteins // Cancer Res., 1996. V.56. — P. 2355−2360.
  222. Gullner G., Dodge A.D. Effect of synglet oxygen generating substanses on the ascorbic acid and glutathione content in pea leaves // Plant Sci., 2000. -V.154.-P. 127−133.
  223. Gupta A.S., Heinen J.L., Holladay, Burko J.J., Allen R.D. Increased resistance to oxidative stress in transgenic plants that overexpress the chloroplastic Cu/Zn superoxide dismutase // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. -1993.-V. 90.-P. 1629−1633.
  224. Habig W.H., Pabst M.V., Jacoby W.B. Glutathion-S-transferases // J.Biol. Chem, 1974. V.249. — P. 7130−7135.
  225. Havaux M. Carotenoids as membrane stabilizers in chloroplasts // Trends Plant Sci, 1998. V.3, № 4. — P. 147−151.
  226. Heckathorn S. A, Downs C. A, Sharkey T. D, Coleman J.S. The small, methionine-rich chloroplasts heat-shock protein protects Photosystem II electron transport during heat stress // Plant Phisiol, 1998. V. l 16. — P. 439−444.
  227. Honda S.R. The salt respiration and phosphate contens of barley roots // JBIC, 1956. V.31, № 2. -P. 62−76.
  228. Huner N.P.A., Oquist G., Sarhan F. Energy balance and acclimation to light and cold // Trends Plant Sci., 1998. V.3, № 6. — P. 224−230.
  229. Iawata J., Tanaka U. Glutathionereductases «positive» spectrophotometre assayes // Colled. Cresh. Chem. Commun. 1977. — V.42, № 3. — P. 1086- 1089.
  230. Irihimovitch V., Shapiro M. Glutathione redox potential modulated by reactive oxygen species regulates translation of Rubisco large subunite in the chloroplasts // J. Biol. Chem., 2000. V.275, № 21. — P. 16 289−16 295.
  231. Iturbe-Ormaexte I., Escuredo P.R., Arrese-Igor C., Becana M. Oxidative damage in Pea plants exposed to water deficit or paraquat // Plant Physiol. -1998.-V. 116.-P.173−181.
  232. Jakubowski W., Bujinski T., Bartosz G. Oxidative stress during aging of stationary cultures of the yeast Caccharomyces cerevisiae II Free Radical Biol. Med, 2000. V.28, № 5. — P. 659 — 664.
  233. Jansen M.A.K, Gaba V, Greenberg B.M. Higher plants and UV-B radiation: balancing damage, repair and acclimation // Trends Plant Sci, 1998. -V.3, № 4. P.131−135.
  234. Jiang C-Z, Rodermel S. R, Shibles R.M. Regulation of photosynthesis in developing leaves of soybean chlorophyll-deficient mutants // Photosynth. Res, 1997.-№ 51.-P. 185−192.
  235. Jiang Y., Huang B. Effects of caltium on antioxidant activities and water relations associated with heat tolerance in two cool-season grasses // J. Exp. Bot., 2001. V.52, № 355. — P. 341−349.
  236. Kang S., Shi W., Zhang J. An improved water-use efficiency for maize grown under regulated deficit irrigation // Field Crop. Res., 2000. V. 67. P. 207−214.
  237. Karpinski S., Escobar C., Karpinska B., Creissen G., Mullineaux P.M. Photosynthetic electron transport regulates the expression of cytosolic ascorbate peroxidase genes in Arabidopsis during excess light stress // Plant Cell, 1997. V.9.-P. 627−640.
  238. Khorobrykh S.A., Ivanov B.N. Oxygen reduction in a plastoquinone pool of isolated pea thylakoids // Photosynth. Res., 2002. V.71. — P. 209−219.
  239. Kimpel J.A., Nagao R.T., Gorkjiana V., Key J.L. Regulation of the heat shock response in soybean seedlings // Plant Physiol., 1990. V. 94. — P. 988−995.
  240. Kosakivska L.V., Maidebura E.V. ABA, LAA and cytocinin accumulanion under temperature stress by Triticum aestirum L. // Biol. Plant., 1994. V.36. Suppl. — P.276.
  241. Kruk J., Strzalka K. Dark reoxidation of the plastoquinone-pool is mediated by the low-potential form of cytochrome b-559 in spinach thylakoids // Photosynth. Res., 1999. №.62. — P. 273−279.
  242. Kubo A., Aono M., Nakajima N., Saji H., Tanaka K., Kondo N. Differential responses in activity of antioxidant enzymes to different environmental stress in Arabidopsis thaliana // J. Plant Res., 1999. V. l 12. — P. 279−290.
  243. Kumar G.N., Knowles N.R. Oxidative stress results in increased sinks for metabolic energy during aging and sprouting of potato seed-tubers // Plant Physiol. 1996.-V. 112.-P. 1301−1313.
  244. Laisk A., Loreto F. Determining photosynthetic parameters from leaf CO2 exchange and fluorescence parameters // Plant Physiol., 1996. V.100. — P. 903−912.
  245. Law R.D., Crafts-Brandner S.J. Inhibition and acclimation of photosynthesis to heat stress is closely correlated with activation of ribulose-l, 5-bisphosphate carboxylase/oxygenase//Plant Physiol., 1999. V.120. — P. 173−181.
  246. Lee D.H., Lee C.B. Chilling stress-induced changes of antioxidant enzymes in the leaves of cucumber: in gel enzyme activity assays // Plant Sci., 2000. -V.159.-P. 75−85.
  247. Lee B.-H, Won S.-H., Lee H.-S., Miyao M., Chung W.-I., Kim I.-J., Jo J. Expression of the chloroplast-localized small heat shock protein by oxidative stress in rice // Gene, 2000. V. 245. — P. 283−290.
  248. Lidon F.C., Loureiro A.S., Bilho E.A., Nobre P., Costa R. Photoinhibition in chilling stressed wheat and maize // Photosynthetica, 2001. V.39, № 2. — P. 161−166.
  249. Lin J.N., Kao C.H. Effect of oxidative stress caused by hydrogen peroxide on senescence of rice leaves // Bot. Bull. Acad. Sci., 1998. V.39. — P. 161−165.
  250. Liu R-M., Choi J. Age-associated decline in y-glutamilcysteine synthetase gene expression in rats // Free Radical Biol. Med., 2000. V.28, № 4. — P. 566−574.
  251. Liu X., Huang B. Heat stress injury in relation to membrane lipid peroxidation in creeping bentgrass // Crop Sci., 2000. V.40. — P. 503−510.
  252. Loggini B., Scartazza A., Brugnoli E., Navari-Izzo F. Antioxidant defense system, pigment composition, and photosynthetic efficiency in two wheat cultivars subjected to drought // Plant Physiol., 1999. V. l 19. — P. 1091−1099.
  253. Lowry O.N., Rosenbrough N.J., Tarr A.L., Randall R.J. Protein measurement with the Folin phenol reagent // J. Biol. Chem., 1951. V.193, № 1. — P. 265−275.
  254. Mamedov M., Hayashi H., Murata N. Effects of glycine betaine and unsaturation of membrane lipids oh heat stability of photosynthetic electron-transport, and photophosphorylation reactions in Synechocystis PCC 6803 // BBA, 1993.-V.l 142.-P. 1−5.
  255. Mano J. Oxygen evolution from hydrogen peroxide in Photosystem II flash-indused catalatic activity of water oxidizing Photosystem II membranes // Biochem., 1987. — V.26. — P.2491−2496.
  256. Marrs K.A. The functions and regulation of glutathione S-transferases in plants // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol, 1996. V.47. — P. 127−158.
  257. Martin M., Casano L.M., Sabater B. Identification of the ndhA gene as a thylakoid protein synthesized in response to photooxidative treatment // Plant Cell Physiol., 1996. V.37. — P. 293−298.
  258. May M.J., Vernoux T., Leaver C., Montago M.V., Inze D. Glutathione gomeostasis in plants: implications for environmental sensing and plant development // J. Exp. Bot., 1998. V.49. — P. 649−667.
  259. Mehdy M.C. Active oxygen species in plant defense against pathogens // Plant Physiol., 1994. V.105, № 2. — P. 467−472.
  260. Melis A. Photosystem-II damage and repair cycle in chloroplasts: what modulates the rate of photodamage in vivo? // Trends Plant Sci., 1999. V.2, № 2.-P. 130−135.
  261. Monk L.S., Fagerstedt K.Y., Crawford R.M.M. Oxygen toxicity and superoxide dismutase as an antioxidant in physiological stress // Physiol. Plantarum. 1989. — V.76. — P. 456−459.
  262. Munne-Bosch S., Alegre L. Plant aging increases oxidative stress in chloroplasts // Planta, 2002. V.214. — P. 608−615.
  263. Munnik T., Irvine R.F., Musgrave A. Phospholipid signaling in plants // Biochem. Biophys. Acta, 1998. — V.1389. — P. 222−272.
  264. Noctor G., Arisi A.-C.M., Jouanin L., Foyer C.H. Photorespiratory glicine enhances glutathione accumulation in both the chloroplastic and cytosolic compartments // J. Exp. Bot., 1999. V.50. — P. 1157−1167.
  265. Noctor G. Foyer C.H. Ascorbate and glutathione: keeping active oxygen under control // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol., 1998. V.49. — P. 249−279.
  266. Noctor G., Strohm M., Joanin L., Kunert K.J., Foyer C.H., Rennenberg H. Synthesis of glutathione in leaves of transgenic poplar overexpressing gamma.-glutamilcysteine synthetase // Plant Physiol., 1996. V. l 12, № 3. — P. 1071−1078.
  267. Offer T., Russo A., Samuni A. The pro-oxidative activity of SOD and nitroxide SOD mimics // FASEB Journ., 2000. V.14. — P. 1215−1223.
  268. Orozco-Cardenas M.L., Ryan C.A. Hydrogen peroxide is generated systemically in plant leaves by wounding and systemin via the octadecanoid pathway // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1999. V.96. — P. 6553−6557.
  269. Osmond C.B. Grace S.C. Perspectives on photoinhibition and photorespiration in the field: quintessential inefficiencies of the light and dark reactions of photosynthesis? // J. Exp. Bot., 1995. V.46. — P. 1351−1362.
  270. Papadakis A.K., Roubelakis-Angelakis K.A. The generation of active oxygen species differs in tobacco and grapevine mesophyll protoplasts // Plant Physiol., 1999. V.211. — P. 197−206.
  271. Park Y.I., Chow W.S., Andersson J.M. Chloroplasts movement in the shade plant Tradescantia albiflora helps protect Photosystem II against light stress // Plant Physiol, 1996. V. l 11, № 3. — P. 867−875.
  272. Pastens C, Horton I. Effect of high temperature on photosynthesis in beans. I. Oxygen evolution and chlorophyll fluorescence // Plant Physiol, 1996. -V.l 12, № 3. -P.1245−1251.
  273. Pastori G, Mullineaux P, Foyer C. Post-transcriptional regulation prevents accumulation of glutatione reductase protein and activity in the bundle sheath cells of maze // Plant Physiol, 2000. V. l 22. — P. 667−675.
  274. Paulin A, Droillard M.J. Membrane lipid peroxidation during the senescence of cut carnations {Dianthus caryophyllus L.) // Acta Horticult, 1989.-V.261.-P. 51−57.
  275. Polisensky D.H., Braam J. Gold-shok regulation of the arabidopsis THC genes and the effects modulating intracellular calcium levuls // Plant Physiol., 1996. V.14, № 4. — P.1271−1279.
  276. Prasad T.K., Anderson M.D., Martin B.A., Stewart C.R. Evidence for chilling-induced oxidative stress in maize seedlings and a regulatory role for hydrogen peroxide // Plant Cell, 1994. V.6. — P. 65−74.
  277. Prochazkova D., Sairam R.K., Srivastava G.C., Singh D.V. Oxidative stress and antioxidant activity as the basis of senescence in maize leaves // Plant Sci., 2001.-V.161.-P. 765−771.
  278. Pryor W. A., Squadrito G. L. Oxidative chemistry of nitric oxide: the roles of superoxide, peroxynitril, and carbon dioxide the theoretical perspective // Free Rad. Biol. Med., 1998. — V.25. — P. 392−403.
  279. Rao M.V., Paliyath G., Ormrod D.P. Ultraviolet -B and ozone-induced biochemical changes in antioxidant enzymes of Arabidopsis thaliana II Plant Physiol., 1996.-V.110.-P. 125−136.
  280. Ruiz J.M., Blumwald E. Salinity-induced glutathione synthesis in Brassica napus II Planta, 2002. V.214. — P. 965−969.
  281. Ryter S.W., Tyrrell R.M. Singlet molecular oxygen ('O2): a possible effector of eucaryotic gene expression // Free Rad. Biol. Med., 1998. V.24, № 9. — P. 1520−1534.
  282. Sairam R.K., Srivastava G.C. Inductuion of oxydative stress and antioxidant activity by hydrogen peroxide treatment in tolerant and susceptible wheat genotypes // Biol. Plant., 2000. V.43, № 3. — P. 381−386.
  283. Sanders D., Brownlee C., Harper J.F. Communicating with calcium // Plant Cell, 1999. V.ll. — P.691−706.
  284. Sankarapandi S., Zweier J.L. Evidence against the generation of free hydroxyl radicals from the interaction of copper, zinc superoxide dismutaseand hydrogen peroxide // J. Biol. Chem., 1999. V.274, № 49. — P. 34 576−34 583.
  285. Scandalios J.G. Response of plant antioxidant defense genes to environmental stress // Adv. Genet., 1990. V.28. — P. 1−14.
  286. Scandalios J.G. Oxygen stress and superoxide dismutase // Plant Physiol., 1993. V.101. — P. 7−12.
  287. Schafer F.Q., Buettner G.R. Redox environment of the cell as viewed through the redox state of the glutathione disulfide/glutathione couple // Free Radical Biol. Med., 2001.-V.30, № 11.-P. 1191−1212.
  288. Schoffl F., Prandl R., Reindl A. Regulation of the heat-shock response // Plant Physiol., 1998.-V.117.-P. 1135−1141.
  289. Sheptovitsky Y.G., Brudvig G.W. Effect of hydrogen peroxide on plant development // Biochem., 1998. V.37. — P.5052−5059.
  290. Shicanai T., Takeda T., Yamauchi H., Sano S., Tomizawa K-I., Yokota A., Shigeoka S. Ingibition of ascorbate peroxidase under oxidative stress in tobacco having bacterial catalase in chloroplasts // FEBS Lett., 1998. V.428. — P. 47−51.
  291. Smith I.K. Stimulation of glutatione synthesis in photorespiring plants by catalase ingibitors // Plant Physiol., 1985. V.70. — P. 1044−1047.
  292. Spiteller G. Peroxidation of linoleic acid and its relation to aging and age dependent diseases // Mech. Ageing Devel., 2001. V.122. — P. 617−657.
  293. Stevens R.G., Creissen G.P., Millieaux P.M. Characterisation of pea cytosolic glutatione reductase cDNA expressed in transgenic tobacco // Planta, 2000. V.211, № 4. — P.537−545.
  294. Stevens R.G., Creissen G.P., Millieaux P.M. Cloning and characterisation of a cytosolic glutatione reductase cDNA from pea (Pisum sativum L.) and its expression in resonse to stress // Plant Mol.Biol., 1997. V.35. — P. 641−654.
  295. Strid A. Alteration of expression of defensive genes of Pisum sativum after exposure to supplementary ultraviolet-B radiation // Plant Cell Physiol., 1993. -V.34.-P. 949−953.
  296. Suzuki T.C., Krawitz D.C., Vierling E. The chloroplast small heat-shock protein oligomer is not phosphorilated and does not dissociate during heat stress in vivo // Plant Physiol., 1998. V. l 16. — P. 1153−1161.
  297. Swaraj K., Dhandi S., Sheokand S. Relationship between defense mechanisms against activated oxygen species and nodule functioning with progress in plant and nodule development in Cajanus cajan L. Millsp. I I Plant Sci., 1995.-V.l 12.-P. 65−74.
  298. Teicher H.B., Scheller H.V. The NAD (P)H dehydrogenase in barley thylakoids is photoactivatable and uses NADPH as well as NADH // Plant Physiol., 1998. V. 117. — P. 525−532.
  299. Teicher H.B., Moller B.L., Scheller H.V. Photoingibition of Photosystem I in field-grown barley (Hordeum vulgare L.): Induction, recovery and acclimation // Photosynth. Res., 2000. № 64. — P. 53−61.
  300. Tjus S.E., Moller B.L., Scheller H.V. Photoinhibition of Photosystem I damages both reaction center proteins PSI-A and PSI-B and acceptor-side located small Photosystem I polypeptides // Photosyhth. Res., 1999. V.60. -P. 75−86.
  301. Tjus S.E., Scheller H.V., Andersson B., Moller B.L. Active oxygen produced during selective excitation of Photosystem I is damaging not only to Photosystem I but also to Photosystem II // Plant Physiol., 2001. V. l25. — P. 2007−2015.
  302. Tsang E.W., Bowler C., Herouart D., Van Camp W., Inze D. Differential regulation of superoxidedismutases in plants exposed to environmental stress // Plant Cell, 1991. V.3. -P. 783−792.
  303. Walker M.A., Mckersie B.D. Role of ascorbate-glutathione antioxidant system in chilling resistance of tomato // J. Plant Physiol., 1993. V. 141. — P. 234−239.
  304. Wang Z., Reddy V.R., Quebedeaux B. Growth and photosynthetic responses of soybean to short-term cold temperature // Envir. Exp. Bot., 1997. V.37. -P. 13−24.
  305. Weidner M., Fehling E. Heat modification of ribulose-l, 5-biphosphate carboxylase / oxygenase by temperature pretreatment of wheat seedling // Planta, 1985. V.166. — P. 177−127.
  306. Wojtaszek P. Oxidative burst: an early plant response to pathogen infection // Biochem J., 1997. V.322. — P.681−692.
  307. Xiang C., Oliver D. Glutathione metabolic genes coordinately respond to heavy metals and jasmonic acid in Arabidopsis // Plant Cell, 1998. V.10. — P. 1539−1550.
  308. Yamane Y., Kashino Y., Koike H., Satoh K. Effects of high temperatures on photosynthetic systems in spinach: Oxygen evolving activities, fluorescence characteristics and the denaturation process // Photosynth. Res., 1998. V.57. -P. 51−59.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!