Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Мицелиальные грибы и возможность их использования для детоксикации ксенобиотиков в почве

Диссертация: Мицелиальные грибы и возможность их использования для детоксикации ксенобиотиков в почве
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Секретирует соединение, время удерживания которого при офВЭЖХ совпадает со временем удерживания гидроксиатразина. БЛАГОДАРНОСТЬ АВТОР СЕРДЕЧНО БЛАГОДАРИТ СВОИХ УЧИТЕЛЕЙ: НАУЧНОГО РУКОВОДИТЕЛЯ ДОКТОРА БИОЛОГИЧЕСКИХ НАУК, ПРОФЕССОРА, ЗАВЕДУЮЩЕГО КАФЕДРОЙ СИСТЕМНОЙ ЭКОЛОГИИ ЭКОЛОГИЧЕСКОГО ФАКУЛЬТЕТА РУДН ПРОФЕССОРА Ю.П.КОЗЛОВА, НАУЧНОГО КОНСУЛЬТАНТА ДОКТОРА ХИМИЧЕСКИХ НАУК, ПРОФЕССОРА, ЗАВЕДУЮЩЕГО… Читать ещё >

Содержание

  • Обзор литературы
  • ГЛАВА 1. Мицелиальные грибы как неотъемлемый компонент биоценоза и фактор почвообразования и плодородия почв
  • ГЛАВА 2. Применение триазиновых гербицидов в сельском хозяйстве
  • ГЛАВА 3. Триазиновые гербициды в почве
    • 3. 1. Поведение атразина в почве. Абиотическая составляющая
    • 3. 2. Атразин и биота почв
    • 3. 3. Влияние триазинов на почвенные грибы
  • ГЛАВА 4. Пути превращения атразина в почве
    • 4. 1. Фиторемедиация
    • 4. 2. Атразин и почвенные микроорганизмы
    • 4. 3. Деградация атразина грибами
  • Экспериментальная часть
  • ГЛАВА 5. Материалы и методы
  • Объекты исследования
  • Выделение и характеристика микроорганизмов
  • Идентификация компонентов сообщества неспорулирующих мицелиальных грибов ИНБИ
  • Методы изучения внеклеточных ферментов грибов
  • Культивирование грибов в присутствии атразина
  • Анализ содержания атразина
  • Анализ содержания атразина с помощью ИФА. и его производных с помощью офВЭЖХ
  • Адсорбция целлюлаз и ЦДГ на аморфоной целлюлозе
  • Разложение атразина бесклеточной системой
  • ГЛАВА 6. Результаты и их обсуждение
    • 6. 1. Влияние атразина на термофильные микромицеты, выделенные из саморазогревающегося растительного компоста
      • 6. 1. 1. Компонентный состав сообщества термофильных микромицетов
      • 6. 1. 2. Влияние атразина на отдельные штаммы термофильных микромицетов
    • 6. 2. Влияние атразина на мезофильные мицелиальные грибы — компоненты сообщества ИНБИ 2−26 и базидиальные грибы
      • 6. 2. 1. Влияние атразина на базидиальные грибы — возбудители «белой гнили» древесины
        • 6. 2. 1. 1. Идентификация компонентов сообщества неспорулирующих мицелиальных грибов ИНБИ 2−26, выделенного из загрязненных ксенобиотиками тропических почв
      • 6. 2. 2. Влияние атразина на компоненты сообщества ИНБИ
        • 6. 2. 2. 1. Развитие грибов на плотных средах с атразином
      • 6. 2. 3. Разложение атразина грибами в жидкой культуре
    • 6. 3. Секреция ферментов мицелиальными грибами-компонентами сообщества ИНБИ 2−26 и влияние на нее атразина
      • 6. 3. 1. Синтез лакказы грибом ИНБИ 2−26+ и его стимулирование атразином
      • 6. 3. 2. Синтез целлобиозодегидрогеназы и целлюлаз на бесцеллюлозных средах грибом Chaetomium sp. ИНБИ 2−26-и его стимуляция атразином
    • 6. 4. Возможные пути разложения атразина почвенным грибом Chaetomium sp. ИНБИ
      • 6. 4. 1. Синтез грибом метаболита, аналогичного дехлорированному гидроксипроизводному атразина
      • 6. 4. 2. Разложение атразина модельной системой
  • Выводы
  • Благодарность

Мицелиальные грибы и возможность их использования для детоксикации ксенобиотиков в почве (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность проблемы. В условиях возделывания монокультур невозможно обойтись без агрохимических методов повышения урожайности, в том числе применения гербицидов. Постоянный рост вносимого количества препаратов приводит к накоплению в почвах и грунтовых водах гербицидов в количествах, значительно превышающих предельно-допустимые концентрации (ПДК). Среди используемых препаратов для борьбы с сорняками, болезнями и вредителями сельскохозяйственных культур стойкие и кумулятивные гербициды представляют особую опасность. К ним относятся триазиновые гербициды (атразин, его метаболит диэтилатразин, третбутилазин и др.), остаточные количества которых обнаруживаются в почве спустя 10 и более лет после применения. По трофическим цепям эти токсичные ксенобиотики попадают в организм человека. В настоящее время обнаружены такие негативные аспекты их воздействия на биологические объекты, как мутагенный, аллергенный, канцерогенный [Лозановская И.Н., 1998]. Поэтому первоочередная задача современной стратегии охраны окружающей среды в области сельского хозяйства — постоянное снижение остаточных количеств гербицидов и возвращение в оборот загрязненных сельскохозяйственных угодий. С экологической точки зрения восстановление таких земель с помощью естественной микрофлоры является наиболее эффективным подходом.

В почвах разложение стойких ксенобиотиков осуществляется, главным образом, бактериями и почвенными грибами. По последним оценкам вклад в разложение гербицидов почвенными бактериями и грибами примерно одинаков [Ostrofsky, 2002]. Механизмы детоксикации триазиновых гербицидов бактериями изучены весьма подробно [Wacket et al., 2002, Ralebitso et al., 2002, Головлева JI.A., 2003]. В свою очередь, разрушению триазиновых гербицидов мицелиальными грибами посвящено крайне мало работ. Известно [Мицевич и др., 2000], что видовое разнообразие микромицетов в загрязненных почвах заметно снижается. Это позволяет говорить об адаптации отдельных видов грибов к повышенному содержанию стойких ксенобиотиков и о возможности поиска среди них перспективных видов деструкторов.

Цели и задачи исследования: Целью работы являлось изучение влияния модельного ксенобиотика атразина (2-хлор-4-(^-этил)-6-(Ь1-изопропил)-1,3,5-триазина), одного из наиболее распространенных триазиновых гербицидов, на мицелиальные грибы различных экологических ниш. Для достижения поставленной цели были поставлены следующие задачи:

— выделить чистые культуры термофильных и мезофильных микромицетов, принимающих участие в процессах детоксикации ксенобиотиков в почве и поверхностных почвенных слоях;

— охарактеризовать систематическую принадлежность выделенных штаммов и их физиолого-биохимические особенности;

— оценить способность штаммов к деградации атразина;

— изучить механизм деградации атразина мицелиальными грибами.

1. Нецеллюлолитические {Humicola spp.) и целлюлолитические {Penicillium spp., Papulaspora sp.) культуры термофильных мицелиальных грибов, выделенные из саморазогревающихся растительных компостов, не разлагают в заметной степени атразина за 3 нед. в жидкой культуре, однако ксенобиотик может изменять не только родовой, но и внутривидовой состав популяции, противоположным образом влияя на разные штаммы одного вида.2. В разлагающем атразин сообществе мезофильных мицелиальных грибов ИНБИ 2−26, выделенном из загрязненной диоксинами тропической почвы, с помощью ПЦР-анализа фрагментов генов 5S-, 18Sи 28S-pPHK идентифицирован продуцент целлобиозодегидрогеназы Chaetomium sp. ИНБИ 2−26-.3. В жидкой минимальной среде с содержанием ксенобиотика 20 мг/л оба гриба разлагают 70% атразина за 4 нед. На плотной среде грибы способны развиваться при содержании атразина до 500 мг/л, однако рост ИНБИ 2;

26- при этом задерживается на 6 сут., а рост ИНБИ 2−26+ - на 21 сут.4. Малые концентрации атразина (до 50 мг/л) на 20−30% стимулируют рост Chaetomium sp. РШБИ 2−26- и оказывают защитное влияние при адаптации гриба к повышенной температуре.5. Атразин стимулирует лакказную активность штамма ИНБИ 2−26+ на плотной среде, хотя корреляции его разложения с активностью лакказы в жидкой среде не обнаружено.6. Впервые установлена способность гриба-продуцента ИНБИ 2−26;

синтезировать целлобиозодегидрогеназу на бесцеллюлозных средах. Синтез иДГ запаздывает по сравнению с синтезом целлюлаз и р глюкозидазы на 7−14 сут, причем, в отличие от преимущественно связанной с мицелием р-глюкозидазы, ЦЦГ преимущественно выделяется в среду. Атразин (20 мг/л) стимулирует синтез ЦДГ, целлюлаз и р глюкозидазы продуцентом.7. Впервые установлена возможность разложения около 50% атразина (100.

мг/л) при инкубации в течение 10 сут в жидкой среде с адсорбированной на аморфной целлюлозе полиферментной системой целлюлаз и ЦЦГ Chaetomium sp. в присутствии ионов железа (0,1 мМ).8. Обнаружено, что при росте на жидкой среде гриб Chaetomium sp. ИНБИ 2;

26- секретирует соединение, время удерживания которого при офВЭЖХ совпадает со временем удерживания гидроксиатразина. БЛАГОДАРНОСТЬ АВТОР СЕРДЕЧНО БЛАГОДАРИТ СВОИХ УЧИТЕЛЕЙ: НАУЧНОГО РУКОВОДИТЕЛЯ ДОКТОРА БИОЛОГИЧЕСКИХ НАУК, ПРОФЕССОРА, ЗАВЕДУЮЩЕГО КАФЕДРОЙ СИСТЕМНОЙ ЭКОЛОГИИ ЭКОЛОГИЧЕСКОГО ФАКУЛЬТЕТА РУДН ПРОФЕССОРА Ю.П.КОЗЛОВА, НАУЧНОГО КОНСУЛЬТАНТА ДОКТОРА ХИМИЧЕСКИХ НАУК, ПРОФЕССОРА, ЗАВЕДУЮЩЕГО НАУЧНО УЧЕБНЫМ ОТДЕЛОМ БИОХИМИЧЕСКИХ ПРОБЛЕМ ЭКОЛОГИИ ИНБИ РАН РАБРШОВИЧА М.Л., СФ0РМР1Р0ВАВШР1Х ЕГО НАУЧНОЕ МИРОВОЗЗРЕНИЕК.Б.Н. ВАСИЛЬЧЕНКО Л.Г. ЗА ОБУЧЕНИЕ НАВЫКАМ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОЙ РАБОТЫ, ПРЕДОСТАВЛЕНИЕ КУЛЬТУР ГРИБОВ И ЗА ПОМОЩЬ В ВЫПОЛНЕНИИ ОТДЕЛЬНЫХ ЭКСПЕРИМЕНТОВ И ОБСУЖДЕНИИ РЕЗУЛЬТАТОВК.Б.Н. КОРОЛЕВУ О.В. ЗА ЦЕННЫЕ СОВЕТЫ И КРИТИЧЕСКИЕ ЗАМЕЧАНИЯ ПРИ ПОДГОТОВКЕ ДИССЕРТАЦИИК.Б.Н. ВАСИЛЕНКО О.В. ЗА ПРОВЕДЕНИЕ ПЦР-АНАЛИЗА 28S рДНК ГРИБОВК.Х.Н. А.В. ЖЕРДЕВА ЗА ПРЕДОСТАВЛЕНИЕ СПЕЦИФИЧЕСКИХ АНТИТЕЛ НА ATPA3PIHК.Б.Н. ЛАНДЕСМАН О.В. ЗА ПОМОЩЬ В ИФАД.Б.Н. ШАПОШНИКОВА Г. Л. И К.Б.Н. ШЛЕЕВА СВ. ЗА ПРОВЕДЕНИЕ ВЭЖХДИПЛОМНИКОВ САЛТЫКОВУ А., НОВИКОВУ Е.- А ТАКЖЕ ВСЕХ СОТРУДНИКОВ НАУЧНО-УЧЕБНОГО ОТДЕЛА БИОХИМИЧЕСКИХ ПРОБЛЕМ ЭКОЛОГИИ ИНСТИТУТА БИОХИМИИ ИМ. А.Н.БАХА РАН И ОСОБЕННО К.Б.Н. КАРАПЕТЯНА К.Н., К.Т.Н. ФЕДОРОВУ Т.В., К.Б.Н. ЗВЕРЕВУ Е.А., Д.Б.Н. КОМОЛОВУ Г. С, РУСТАМЬЯН Ю.Л., К.Т.Н. ПОПОВУ И.И., К.Б.Н. БОЛОБОВУ А.В. ЗА ПОСТОЯННУЮ ПОМОЩЬ И ПОДДЕРЖКУ.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Т.В. 1. Микробиология подзолистых почв. // Москва. МГУ, 1965. 365 С.
  2. Т.В., Дараган А. Ю. и др. // Изучение микробных пейзажей почвы как средство познания почвенных процессов. // Микробиология. 1967. Т.36. вып.2. С.24−41.
  3. И.П., Зенова Г.М. II Биология почв. // Москва, МГУ, 1983.
  4. М. Я. Немова Г. Н. // Особенности применения гербицидов производных сим-триазина на торфяных почвах. //Агрохимия, 1973, № 12 с.102−110.
  5. Т.И., Захарченко В. А. // Определитель термофильных грибов. // Киев, Наукова думка, 1987.
  6. А.В., Аскадский А. А., Кондращенко В. И., Рабинович M.JI. II Теоретические основы биотехнологии древесных композитов. Т. 2. Ферменты, модели, процессы. // М.:Наука, 2002.354 с. 2
  7. Под ред. Дмитриева Е. А. II Гербициды и почва (экологические аспектыприменения гербицидов) //Москва, МГУ. 1990.
  8. В.А. // Основы учения о почвах. // Москва, Наука, 1973, кн.1, 447с., кн.2,468 С.
  9. Г. Ф. //Гербициды и почва (экологические аспекты применения гербицидов). // Москва, МГУ, 1990.
  10. А.А. И Лигниназы базидиомицетов. // Дисс.. докт. биол. наук. Пущино, 2002.266 с.
  11. И.Н. // Экология и охрана биосферы при химическом загрязнении. //Москва, МГУ, 1998.
  12. М.И., Кретова Л. Г. // Экологические аспекты применения гербицидов в растениеводстве. Обзорная информация. // ВИНИТЭИагропром Москва, 1992. 48 С.
  13. Маличенко С.М. II Влияние симм-триазинов на микрофлору почв // Микробиологический журнал, 1971, Т.ЗЗ. №. 6. С. 734−35.
  14. Н.Н., Белан В.Г. II Сравнительная опасность загрязнения почвы гербицидами производными симм-триазинов и некоторых других шестичленных гетероциклических соединений. // Агрохимия 1997. № 2. С.66−67.
  15. Мельников Н.Н. II Пестициды и регуляторы роста. // Москва, «Химия» 1995.
  16. Подред. акад. А. Ф. Ченкина. И История развития и проблемы защиты растений.//Москва, 1997.350с.
  17. Agrow World Crop Protection News Feb. 26 2003, Mar. 28, 2003 www.agrow.crop.com
  18. Asma D., Yesilada О. II Effect of paraquat on cellular defense enzymes and glutathione level of Funalia trogii. // Folia Microbiol (Praha) 2002.V.47. № 4. P. 413−6.
  19. Armstrong D.E., Chesters G. II Adsorption catalyzed chemical hydrolysis of atrazine. // Environ. Sci. Technol. 1968. V.2 P.683−689.
  20. Arnold S.M., Hickey W.J., Harris R.F., Talaat R.E. II Integrating chemical and biological remediation of atrazine and s-triazine-containing pesticide wastes. // Environ. Toxicol.Chem. 1996. V.15. P. 1255−1262.
  21. Bariusso E., Feller C.H., Calvet R., Cerri С. II Sorption of atrazine, terbutryn and 2,4-D Herbicides in Two brazilian oxisols.// Geoderma. 1992. V.53. P. 155−167.
  22. Basker A., Kirkman J.H., MacGregor A.N. II Changes in potassium availability and other soil properties due to soil ingestion by earthworms. // Biology and Fertility of Soils 1994. V.17. P.154−158.
  23. R.M. & Khan S.U. II Degradation by Pseudomonas: N-Dealkylation and dehalogenation of atrazine and its metabolites. // J. Agric. Food Chem. 1986. V.34. P. 746−749.
  24. J.M., Sjoblad R.D. Minard R.D. // Polymerization of phenolic intermediates of pesticides by a fungal enzyme. // Experientia 1977. Dec 15- V.33.P. 1564−6.
  25. Bollag J.M., Myers C.J., Minard R.D. II Biological & chemical interactions of pesticides with soil organic matter. // 1992. V. 123−124. P. 205−17.
  26. Carder J. P.- Hoagland K. D. И Combined effects of alachlor and atrazine on benthic algalcommunities in artificial streams. // Environ. Toxicol. Chem. 1998. V.17. P.1415−1420.
  27. Clark G.M., Goolsby D.A., and W.A. Battaglin. II Seasonal and annual load of herbicides from the Mississippi River basin to the Gulf of Mexico. // 1999. Environ. Sci. Technol. V.33. P.981−986.
  28. X.Clay S.A., and W.C. Koskinen. II Adsorption and desorption of atrazine, hydroxyatrazine, and S-glutathiane atrazine on two soils. // Weed Sci. 1990. V.38. P. 262−266.
  29. Chan K.H., Chu W. II Modeling the reaction kinetics of Fenton’s process on the removal of atrazine. // Chemosphere 2003. V. 51. P. 305−311.
  30. Y. И The fungi of wheat straw compost. II. Biochemical and physiological studies. // 1967. Trans. Br. Mycol. Soc. V.50. P.667−677.
  31. A.Clark G.M., Goolsby D. A. II Occurrence and load of selected herbicides and metabolites in the lower Mississippi River. // The Science of the Total Environment 2000 V. 248. P. 101−113.
  32. Cook A.M., Grossenbacher H., Htitter R. II Bacterial degradation of N-cyclopropylmelamine. // Biochem J 1984. V.222. P.315−320.
  33. Cook A.M., Beilstein P., Grossenbacher H., Htitter R. II Ring cleavage and degradative pathway of cyanuric acid in bacteria. // Biochem J 1985. V. 231.P. 25−30.
  34. Dorfler U., and Scheunert I. II S-triazine herbicides in rainwater with special reference to the situation in germany. // Chemosphere. 1997. V. 35. P.77−85.
  35. Dzantiev B.B., Zherdev A.V., Romanenko O.G., Sapegova L.A. II Development and comparative study of different immunoen2yme techniques for pesticides detection. // Int. J. Environ. Anal. Chem. 1996. V. 38. P. 95−111.
  36. Erickson L.E., Lee H.K. // Degradation of atrazine and related s-triazines. // Crit. Rev. Environ. Control. 1989. V.19. P. l-13.
  37. E., Paulillo S.M., Manfio G.P. //Biodegradation of the herbicide Diuron in soil by indigenous actinomycetes.// Chemosphere. 1998. V.37. P. 541−548.
  38. Fahr K., Wetzstein H.G., Grey R., Schlosser D. II Degradation of 2,4-dichlorophenol and pentachlorophenol by two brown rot fungi. // FEMS Microbiol Lett. 1999. V.175. P. 127−32.
  39. Farenhorst A., Topp E., Bowman B.T., Tomlin A.D. II Earthworms and the dissipation and distribution of atrazine in the soil profile. // Soil Biology & Biochemistry 2000. V.32. P.23−33.
  40. Felsenstein J. II Confidence limits on phylogenies: an approach using the bootstrap. //Evolution. 1985. V.39. P. 783−791.
  41. Garcinuno R.M., Fernandez-Hernando P., Camara С. И Evaluation of pesticide uptake by Lupinus seeds. I I Water Res. 2003 .V.37. № 14. P.3481−3489.
  42. Helmeczi В. II The effect of herbicides on soil bacteria belonging to certain physiological groups // Acta phytopatol. Acad. Scient.hung. 1977 vol.12, № 112. p. 41−49.
  43. Higson F.K. II Degradation of xenobiotics by white rot fungi. // Rev. Environ. Contam. Toxicol. 1991. V. 122. P. 111−152.
  44. Ilmen M, Saloheimo A., Onnela M.L., Penttila M.E. II Regulation of cellulase gene expression in the filamentous fungus Trichoderma reesei. II Appl. Environ. Microbiol. 1997. V.63. № 4. P. 1298−306.
  45. Khadrani A., Seigle-Murandi F., Steiman R., Vroumsia Т. // Degradation of three phenylurea herbicides (chlortoluron, isoproturon and diuron) by micromycetes isolated from soil.// Chemosphere. 1999. V. 38. P. 3041−3050.
  46. Kimura M. II A simple method for estimating evolutionary rates of base substitutions through comparative studies of nucleotide sequences. // J. Mol. Evol. 1980. V.16. P. 111−120.
  47. Kirby M. F.- Sheahan D. A. II Effects of atrazine, isoproturon, and mesoprop on the macrophyte Lemna minor and the alga Scenedesmus subspicatus. //Bull. Environ. Contam. Toxicol. 1994. V.53. P. 120−126.
  48. Kolpin D.W., Kalkhoff S.J., Goolsby D.A., Sneck-Fahrer D.A., Thurman E.M. II Occurrence of selected herbicides and herbicide degradation products in Iowa’s ground water. // Ground Water 1997. V.35. P.679−688.
  49. Kopriva J. II The toxicity of triazine and diazine based herbicides to fishes.// Agrochemica 1981. V.21. P.344−347.
  50. K. & Martinoia E. II Herbicide metabolism in pants: integrated pathways of detoxification. // P. 279−287 in Pesticide Chemistry and bioscience the food-environment challenge. 1999
  51. Kubicek CP., Messner R., Gruber F., Mach R.L., Kubicek-Pranz E.M. II The Trichoderma cellulase regulatory puzzle: from the interior life of a secretory fungus.// Enzym.Microb.Technol. 1993. V. 15. № 2. P. 90−99.
  52. Kullman S.W. and Matsumura F. II Metabolic pathways utilized by Phanerochaete chryosporium for degradation of the cyclodiene pesticide endosulfan. //Appl. Environ. Microbiol. 1996. V.62. P.593−600.
  53. Levanon D. II Roles of fungi and bacteria in the mineralization of the pesticides atrazine, alachlor, malathion and carbofiiran in soil. // Soil Biology & Biochemistry. 1993. V.25. № 8. P.1097−1105.
  54. Lewis J.A. II Effect of some herbicides on microbial activity in soil //Soil Biol. & Biochem. 1978. V.110. № 2 P.137−141.
  55. Li G.C., Felbeck G.T. И Atrazine hydrolysis as catalyzed by humic acids. // Soil Sci 1972.V.114. P.201−209.
  56. Lytle J. S.- Lytle T. F. II Atrazine effects on estuarine macrophytes Spartina alternijlora and Juncus roemerianus. II Environ. Toxicol. Chem. 1998. V.17. P. 1972−178.
  57. Macek K.J., Buxton K.S., Sauter S., Gnilka S., Dean J. W. II Chronic toxicity of atrazine to selected aquatic invertebrates and fishes. // EPA-600/3−76−047. U.S. Environmental Protection Agency. Duluth, NM. 1976.
  58. Maheshwari R., and Kamalam P. Т. II Isolation and culture of a thermophilic fungus, Melanocarpus albomyces, and factors influencing the production and activity of xylanase. II J. Gen. Microbiol. 1985. V.131. P.3017−3027.
  59. Mandelbaum R.T., Allan D.L., Wackett L.P. II Isolation and characterization of a Pseudomonas sp. that mineralizes the s-triazine herbicide atrazine. // Appl Environ Microbiol 1995. V.61.P.1451−1457.
  60. Masaphy S., Henis Y., Levanon D. II Manganese-enhanced biotransformation of atrazine by the white rot fungus Pleurotus pulmonarius and its correlation with oxidation activity. //Appl. Environ. Microbiol. 1996. V.62. P. 3587−93.
  61. Masaphy Y., Henis В., Krinfeld and D. Levanon. II In-vitro N-de-ethylation of atrazine by cell-free extract of Pleurotus pulmonariusis induced by Mn2+. // Biotechnology Letters, 1997. V. 19., No 9. P. 861−864.
  62. MehargA.A. II Bioavailability of atrazine to soil microbes in the presence of the earthworm Lumbricus terrestris. И Soil Biology & Biochemistry 1996. V. 28. P.555−559.
  63. Miller M., Palojarvi A., Rangger A., Reeslev M., and Kjoiler А. И The use of fluorogenic substrates to measure fungal presence and activity in soil // Appl. Envir. Microbiol. 1998. V.64. P. 613−617.
  64. Moreau C., Mouvet С. II Sorption and desorption of atrazine, deethylatrazine and hydroxyatrazine by soil and aquifer solids. // Journal of Environmental Quality 1997. V.26. P.416−424.
  65. Mulbry W. II Purification and characterization of a inducible s-triazine hydrolase from Rhodococcus corallinus NRRLB-15444R. I I Appl. Environ. Microbiol. 1994. V.60. P.613−618.
  66. Nearpass D.C. II Effects of soil acidity on the adsorption, penetration and persistence of simazine. // Weed Science 1965. V.13. P.341−346.
  67. Nearpass D.C. II Adsorption of picloram by humic acids and humin. // Soil Science 1976. V.121. P.272−277.
  68. N., Jones M.N., Tipping E. И The interaction of some pesticides and herbicides with humic substances. // Analitica Chimica Acta. 1996. V.327. P.191−201.
  69. Nishimura K., Yamamoto M., Nakagomi Т., Takiguchi Y., Naganuma Т., Uzuka Y. II Biodegradation of triazine herbicides on polyvinylalcohol gel plates by the soil yeast Lipomyces starkeyi. II Appl. Microbiol. Biotechnol. 2002. V.58.№ 6. P.848−852.
  70. Ohkawa H., Imaishi H., ShiotaY., Yamada S. II Cytochrome P450s and other xenobiotic metabolizing enzymes in plants, in Pesticide Chemistry And Bioscience The Food-Environment Challenge, Royal Society of Chemistry // 1999. P.259
  71. J. 71, Winner R. W., Moore M.V. II A four-day survival and reproduction toxicity test for Ceriodaphnia dublia.// Environ. Toxicol. Chem. 1991. V.10. P.217−224.
  72. Pinheiro R., Belo I., Mota M. II Oxidative stress response of Kluyveromyces marxianus to hydrogen peroxide, paraquat and pressure. // Appl. Microbiol. Biotechnol. 2002. V.58. № 6. P.842−847.
  73. S. В. И Feasibility of bioremediation by white-rot fungi. // Appl. Microbiol. Biotechnol. 2001. V.57. P.20−33.
  74. Radosevich M., Traina S.J., Yue-Li H., Tuovinen O.H. II Degradation and mineralization of atrazine by a soil bacterial isolate. // Appl. Environ. Microbiol. 1995. V.61. P.297−302.
  75. Т.К., Senior E. & van Verseveld H.W. II Microbial aspects of atrazine degradation in natural environments. // Biodegradation. 2002. V.13. P. ll-19.
  76. Roy B. P., Dumonceaux Т., Koukoulas A. A., Archibald F. S. II Purification and characterization of cellobiose dehydrogenase from the white rot fungus Trametes versicolor. II Appl. Environ. Microbiol. 1996. V.62. P. 4417−427.
  77. Sahid I.B., Yap M.Y. II Effects of two acetanilide herbicides on microbial populations and their cellulolytic activities. // Bull. Environ. Contam. Toxicol. 1994. V. 52. P. 61−66.
  78. Saitou N. and Nei M. И The neighbor-joining method: a new method for reconstructing phylogenetic trees. // Mol.Biol.Evol. 1987. V.4. P.406−425.
  79. Selim H.M., Zhou L., Zhu H. // Herbicide retention in soil as affected by sugarcane mulch residue. //J Environ Qual. 2003.V.32. No4. P.1445−54.
  80. Senesi N., Testini С. II Adsorption of some nitrogenated herbicides by soil humic acids. I I Soil Science 1980. V.10. P. 314−320.
  81. Senesi N. II Binding mechanisms of pesticides to soil humic substances. // Science of the Total Environment 1992. V. 123−124. P.63−76.
  82. Senesi N., D’Orazio V., Miano T.M. //Adsorption mechanisms of s-triazine and bipyridylium herbicides on humic acids from hop field soils. // Geoderma. 1995. P.273−283.
  83. Schober U., Lampert W. II Effects of sublethal concentrations of the herbicide atrazine on growth and reproduction of Daphnia pulex. II Bull. Environ. Contam. Toxicol. 1977. V.17. P.269−277.
  84. Shea P.J. II Role of humified Organic Matter in herbicide adsorption. // Weed Technol. 1989. V.3. P.190−197.
  85. Sheets T.J. II Persistence of triazine herbicides in soils. // Residue Rev. 1970. V.32. P.287−310.
  86. Shipitalo M.J., Protz R., Tomlin A.D. II Feeding and casting activity of Lumbricus terrestris and L. rubellus in laboratory culture. // Soil Biology & Biochemistry 1988. V. 20. P.233−237.
  87. Shimomura M, Nomura Y, Zhang W, Sakino M, Lee KH, Ikebukuro K, Karube II Simple and rapid detection method using surface plasmon resonance for dioxins, polychlorinated biphenylx and atrazine. // Analytica Chimica Acta 2001. V. 434. № 2. P. 223−230.
  88. Simon L. Bergerova E. II Influence of selected herbicides on soil microflora and on the activity of certain enzymes // Acta fac. Rerum. Natur. Univ. Comen.Microbiol. 1984 P. 19−27.
  89. Stehouwer R.C., Dick W.A., Traina S.J. II Characteristics ofearthworm burrow linings aecting atrazine sorption. // Journal of Environmental Quality 1993. V.22. P. 181−185.
  90. Stamper D.M., Radosevich M., Hallberg K.B., Traina S. J., Tuovinen O.H. II Ralstonia basilensis M91−3, a denitrifying soil bacterium capable of using s-triazines as nitrogen sources. // Can. J Microbiol. 2002. V.48. P. 1089−98.
  91. Streit В., Peter H. M. II Long term effects of atrazine to selected freshwater invertebrates.//Arch.Hydrobiol. Suppl. 1978. V.55. P.62−77.
  92. Strong L.C., McTavish H., Sadowsky M.J. Wackett L.P. И Field-scale remediation of atrazine-contaminated soil using recombinant Escherichia coli expressing atrazine chlorohydrolase. // Appl. Environ. Microbiol. 2000. V. 2. P. 91−98.
  93. J.K., Jayachandran K., Moorman T.B. // Biodegradation of atrazine by Agrobacterium radiobacter J 14a and use of this strain in bioremediation of contaminated soil. // Appl. Environ. Microbiol. 1998. V.64. P.3368−3375.
  94. Strand S. II Degradation of Xenobiotic Nitrogen Compounds, Including Munitions// CEWA. 1993. V.3. P. 46−71.
  95. Sullivan J.D., Felbeck G.T. II A study of the interaction of s-triazine herbicides with humic acids from three diferent soils. // Soil Science 1968.V.106. P.42−52.
  96. Tang J., Hoaglang K. D., Siegfried В. II Uptake and bioconcentration of atrazine by selected freshwater algae. // Environ. Toxicol. Chem. 1998. V.17. P. 1085−1090.
  97. Tasli F. Breyl /., Kredl F. II Toxic effects of atrazine on algae. // 1996. V.22. P. 181−185.
  98. Temp U., Eggert С. II Novel Interaction between Laccase and Cellobiose Dehydrogenase during Pigment Synthesis in the White Rot Fungus Pycnoporus cinnabarinus. //Appl. Environ. Microbiol. 1999. V.65. № 2. P.389−395.
  99. Thompson J.D., Gibson T.J., Plewniak F., Jeanmougin F. and Higgins, D.G. II The Clustal X windows interface: flexible strategies for multiple sequence• alignment aided by quality analysis tools. // Nucleic Acids Research. 1997. V.25. P. 4876−4882.
  100. Tomlin A.D., McCabe D., Protz R. II Species composition and seasonal variation of earthworms and their effect on soil properties in southern Ontario, Canada. // Soil Biology &Biochemistiy 1992. V.24. P. 1451−1457.
  101. Topp E., Zhu H., Nour S.M., Houot S., Lewis M, Cuppels D. II Characterization of an atrazine-degrading Pseudaminobacter sp. isolated from Canadian and French agricultural soils. // Appl. Environ. Microbiol. 2000. V. P. 2773−2782.
  102. Topp E. II A comparison of three atrazine-degrading bacteria for soil bioremediation. // Biol. Fertil. Soils 2001. V.33. P.529−534.
  103. Tuguela A-M., Sarna L.P., Webster G.R.B. // Solid phase Microextraction (SPME) of the herbicide atrazine in aqueous soil suspensions. // Intern. J. Environ. Anal. Chem. 1998. V.68. P. 137−153.
  104. Veber K, Zahradnik J., Breyl I., Kredl F. И Toxic effects of atrazine on algae.// Bull. Environ. Contam. Toxicol. 1981. V.27. P.872−876.
  105. Ventura A., Jacquet G., Bermond A., Camel V. II Electrochemical generation of the Fenton’s reagent: application to atrazine degradation. // Water Research 2000. V.36. P. 3517−3522.
  106. Wackett L.P., Sadowsky M.J., Martinez В. II Biodegradation of atrazine and related s-triazine compounds: from enzymes to field studies. // Appl. Microbiol. Biotechnol. 2002. V. 58. P.39−45.
  107. Waddel Т.Е. Bower B.T. II J. Soil Water Conserv. 1988.V.43. № 3 p.241−242.
  108. Weber J.В., Weed S.B., Ward T.M. II Adsorption of s-triazines by soil organic matter. // Weed Science 1969. V.17. P.417−421.
  109. Weber J.B. II Adsorption of s-triazines and montmorillonite as a function of pH and molecular structure. // Soil Science Society American Proceedings 1970. V. 34. P.401−404.
  110. Wetzstein H.-G., Schmeer N., Karl W. II Degradation of the fluoroquinolone enrofloxacin by the brown rot fungus Gloeophyllum striatum: identification of metabolites. //Appl. Environ. Microbiol. 1997. V.63. P.4272−4281.
  111. Yanze-Kontchou C. & Gschwind N. II Mineralization of the herbicide atrazine in soil inoculated with a Pseudomonas strain. // J. Agricul. Food Chem. 1995. V. 43. P. 2291−2294.
  112. G.W., Wardle D.A., Watson R.N. И Responses of soil nematode populations, community structure, diversity and temporal variability to agricultural intensification over a seven-year period. // Soil Biology and Biochemistry 1999. V.31. P.1721−1733.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!