Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Клеточные механизмы нейроиммунных взаимодействий в реализации ориентировочно-исследовательского поведения

Диссертация: Клеточные механизмы нейроиммунных взаимодействий в реализации ориентировочно-исследовательского поведения
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

В то же время, иммунная и нервная системы не только обладают общим полем гуморальных факторов (включающим интерлейкины, интерфероны, простагландины, нейромедиаторы, нейропептиды и др.), но и постоянно контактируют посредством своих клеточных элементов, характеризующихся выраженным фенотипическим и функциональным сходством (Хаитов P.M., 1997; Kadiiski D et al., 2001). Как указывалось выше… Читать ещё >

Содержание

  • СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ СОКРАЩЕНИЙ
  • ЧАСТЬ I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
  • Глава 1. Афферентное звено взаимодействия-иммунной* и*нервной' систем
  • Глава 2. Цитокины в качестве мессенджеров нейроиммунных взаимодействий
    • 2. 1. Продукция цитокинов ИКК в процессе иммуногенеза и их участие в. реализации поведенческих реакций
    • 212. Цитокины и их рецепторы в головном мозге, и их участие в реализации поведенческих реакций
  • Глава 3. Нейромедиаторы и нейропептиды в регуляции поведенческих реакций
    • 3. 1. Моноаминергические системы мозга и их роль в регуляции поведенческих реакций
    • 3. 2. Взаимодействия моноаминов и нейропептидов в механизмах регуляции поведенческих реакций
  • Глава 4. Взаимодействия цитокинов и нейромедиаторных систем головного мозга в механизмах регуляции поведенческих реакций.60'
  • Глава 5. Исследовательское поведение, как важный фактор жизненной активности и соматического здоровья
  • ЧАСТЬ II. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
  • ЧАСТЬ III. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ И ИХ
  • ОБСУЖДЕНИЕ
  • Глава 6. Структурно-функциональные особенности ЦНС у животных с различным уровнем ориентировочно-исследовательского поведения
    • 6. 1. Параметры ориентировочно-исследовательского поведения у экспериментальных животных различных видов
    • 6. 2. Структурно-функциональные особенности сенсомоторной коры головного мозга экспериментальных животных с различным уровнем ориентировочно-исследовательского поведения
    • 6. 3. Экспрессия генов ИЛ-1Р, ИЛ-1-Р первого типа, ЭПО-Р и содержание цитокинов в лизатах головного мозга животных с различным уровнем ориентировочно-исследовательского поведения
  • Глава 7. Функциональные особенности иммунной системы у экспериментальных животных с различным уровнем ориентировочно-исследовательского поведения
    • 7. 1. Клеточный и гуморальный иммунный ответ, пролиферативная активность ИКК у экспериментальных животных с различным уровнем ориентировочно-исследовательского поведения
    • 7. 2. Экспрессия генов ИЛ-1(3, ИЛ-1-Р первого типа, ЭПО-Р и продукция цитокинов клетками селезенки экспериментальных животных с различным уровнем ориентировочно-исследовательского поведения
  • Глава 8. Влияние стимуляции гуморального и клеточного звеньев иммунной системы на параметры ориентировочно-исследовательского поведения
  • Глава 9. Влияние трансплантации иммунокомпетентных клеток на параметры ориентировочно-исследовательского поведения у сингенных животных с активным и пассивным типами поведения
    • 9. 1. Влияние трансплантации моноцитарно-макрофагальных клеток селезенки на функциональную активность нервной и иммунной систем у экспериментальных животных
    • 9. 2. Влияние трансплантации неприлипающих к пластику клеток селезенки на функциональную активность иммунной и нервной систем у экспериментальных животных

    Глава 10. Влияние трансплантации ИКК на характерные проявления функциональной активности иммунной и нервной систем у животных с различным уровнем ориентировочно-исследовательского поведения в состоянии хронической зависимости от морфина.

    ОБСУЖДЕНИЕ.

Клеточные механизмы нейроиммунных взаимодействий в реализации ориентировочно-исследовательского поведения (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность проблемы. Новая интегративная наука, психонейроиммунология, появившаяся в последней трети XX века, с каждым годом все больше привлекает внимание исследователей. Это обусловлено тем, что понимание функционального единства нервной и иммунной систем, характера взаимодействия, между ними открывает впечатляющие перспективы в самых различных областях экспериментальной и клинической медицины, позволяет пересмотреть лечебную тактику при борьбе со многими заболеваниями.

Общность иммунной и нервной систем к настоящему времени является хорошо известным фактом и подтверждается наличием у этих систем памяти, способности воспринимать и перерабатывать информацию, формировать ответа также существованием сетевых взаимоотношений и саморегуляции функций (Толкунов Б.Ф., 1978; Козлов В. А с соавт., 1982; Девойно JI.B. с соавт., 1998;2009; Акмаев И. Г., 1996; Wegent D.A., Blalock J.E., 1997; Raber J. 1998; Cohen F. 1999; Yayley S 1999; Корнева E.A. 2000; Судаков K.B., 2000; Wong M. 2000; Turin N. 2001; Anisman M. 2002, 2003; Dantzer R. 2000, 2004; Elenkov J. et al., 2000, 2006; Wrona D. 2006; Мюльберг A.A. 2006 и др.).

Взаимодействие основных адаптационных систем организма подразумевает регулирующее влияние со стороны иммунной системы на функции центральной нервной системыпри этом одной из ключевых проблем является расшифровка связи между процессами высшей нервной деятельности и иммунным статусом человека и животных. Однако, именно этот аспект является одним из наименее изученных в нейроиммунологии.

Известно, что нервная система испытывает влияние со стороны иммунной системы. Показано, что продукты ИКК обладают психои нейротропной активностьюучаствуют в физиологических механизмах памяти, регуляции сна и бодрствования, активности гипоталамо-гипофизарно-надпочечниковой системы, реализации стресс-реакции (Девойно Л.В. 1991, 1998; Raber J. 1998; Krueger J.V. et al., 1998; Cohen F.

1999; Yayley S. 1999; Корнева E.A. с соавт., 2000, 2003;Wong M. 2000; Turin N. 2001; Anisman M. 2002, 2003; Арушанян Э. Б., Бейер Э. В., 2004; Dantzer R. 2003, 2004, 2006; Elenkov J. 2006; Wrona D. 2006; Мюльберг A.A. 2006; Jaferi A., Bhatnager S., 2007; Quah N., Banks W.A. 2007 и др.). Формирование иммунного ответа на различные антигены, равно как и действие на организм активаторов иммунной системы, сопровождается модуляцией процессов высшей нервной деятельности, в том числе поведения, модификация которого имеет адаптивное значение (Buttini М., Boddeke Н., 1995; Хаитов P.M., 1997; Dantzer R., Wollman Е., 1998; Blutte R. 1998; Vidal J., 1999; Клименко В. М., 1999; Hanisch U.K., 2001; Ветлугина Т. П. 2001; Мошкин М. П. с соав. 2003; Shen Y-A et al., 2004; Weil Z.V., et al, 2006; Lane E.L., et al, 2006; Ching S., et al, 2006; Hopkins S.J., 2007; Учакин П. Н. 2008 и др.).

Тем не менее, вопрос о том, какими путями может реализоваться афферентное звено взаимодействия иммунной и нервной систем остается спорным. В качестве триггерных факторов, приводящих к модуляции высшей нервной деятельности в процессе иммуногенеза, выступают изменение мембранного потенциала активированных ИКК и продуцируемые ими цитокины (интерлейкины, интерфероны и др.), (Клименко В.М., 1999; Turrin N.P., Plata-Salaman C.R., 2000; Larson S.J., Dunn A. J, 2001; Dantzer R. 2007 и др.). Показано, что строма и паренхима лимфоидных органов имеет богатое представительство афферентных нервных окончаний (Сапин М.Р., 1987; Филиппова Л. В., Ноздрачев А. Д., 2007; Билич Г. Л. Сапин М.Р., 2007; Орлов P.C., Ноздрачев А. Д., 2009 и др.). При этом ИКК и нервные окончания образуют своеобразные синапсы, активирующиеся при изменении мембранного потенциала указанных клеток, а также при воздействии цитокинов, продуцируемых ИКК (Веселовский Н.С., Федулова С. А., 1983; Абрамов В. В., 1988; Feiten S.Y., Feiten D.L., 1991; Bluthe, R. M. et al., 1994, 1996; Dantzer R. et al., 1999).

Установлено, что клетки мозга (нервные и глиальные) подобно клеткам иммунной системы, несут на мембране рецепторы цитокиновпричем, синтез и продукция ряда цитокинов, равно как и экспрессия их рецепторов в головном мозге, изменяются при воздействии различных иммунных стимулов (Reinisch N., et.al., 1994; Van Dam A., et.al., 1995; Eriksson C., et.al., 2000; Carpenter D. 2002; Dantzer R., 2004; Болдырев А. А., Тунева E. O., 2005; Dantzer R., 2007; Ader R., 2007; Siegel A., Zalcman S.S., 2009 и др.). Можно сказать, что мозг способен «чувствовать» продукцию цитокинов при развитии той или иной иммунной реакции в организме и отвечать на5 эту реакцию синтезом цитокинов в клетках нервной ткани, отражением чего является модуляция процессов высшей нервной деятельности, в том числе и поведенческих реакций. Существенную роль при этом играют и нейромедиаторные системы мозга, активность^ которых также подвержена влиянию со стороны иммунной системы (Hayles S. Et al., 1999; Brebnen К. et.al., 2000; Turrin N.P., Plata-Salaman C.R., 2000; Larson S .J., Dunn-A J., 2001, 2006).

Более того, обнаружено, что синтез некоторых цитокинов, в том числе ИЛ-1 ?,-2,-4,-6,-10,-18,-23, ИЛ-1-Р, ЭИ-Р, ФНОа и др. в структурах мозга, наблюдается не только в результате активации иммунной системы, но и у животных в нормальных физиологических условиях (Neveu P.J., 1998; Клименко В .M, 1999; Dantzer R., 2004, 2006; Siegel A., Zalcman S.S., 2009; Захаров Ю. M., 2007 — 2009 и др.). Следовательно, имеет место базовый уровень экспрессии цитокинов и их рецепторов, равно как и конститутивная выработка большинства прои противовоспалительных цитокинов в мозге, что предполагает их участие в реализации нормальных физиологических функций нервной системы в том числе и в формировании определенного стереотипа поведения.

В то же время, иммунная и нервная системы не только обладают общим полем гуморальных факторов (включающим интерлейкины, интерфероны, простагландины, нейромедиаторы, нейропептиды и др.), но и постоянно контактируют посредством своих клеточных элементов, характеризующихся выраженным фенотипическим и функциональным сходством (Хаитов P.M., 1997; Kadiiski D et al., 2001). Как указывалось выше, в строме и паренхиме лимфоидных органов имеются отростки различных нейронов — сенсорные и вегетативные нервные окончания. В свою очередь, РИСК, как описано в ряде работ, обладают способностью проникать в паренхиму нервной ткани через неповрежденный гематоэнцефалический барьер и непосредственно контактировать с нейронами и глиальными клетками, модулируя их функциональную активность. (Gordon S., et all, 1993; Беляева И. А., с соавт 1999; Hickey W.F., 1999). Поскольку способность к непосредственному контакту и взаимодействию клеток иммунной и нервной систем приобретается на ранних этапах эмбриогенеза (Hickey W.F., 1999), не исключено влияние иммунной системы и, в частности ее клеточных элементов, на формирование и регуляцию поведенческих реакций индивидуума. Тем не менее, именно этот аспект взаимодействия указанных систем остается одним из наименее изученных.

Актуальность исследования афферентной организации взаимодействия иммунной и нервной систем, изучения механизмов ответа мозга на активацию иммунной системы, участия иммуногенных факторов и клеточных элементов иммунной системы в реализации его физиологических функций, в частности поведенческих реакций, определяется как наличием широкого спектра неврозоподобных, аффективно-личностных, когнитивных и поведенческих нарушений, возникающих при вторичных иммунодефицитах вследствие повторных и хронически действующих экологических и социальных стрессоровтак и довольно активным проведением в настоящее время различных иммунотерапевтических мероприятий, в том числе и клеточной терапии, при инфекционных, иммунодефицитных, аллергических, аутоиммунных и других заболеваниях.

Активное поведение в условиях неопределенности (поисковое поведение) — значимый фактор соматического здоровья, предотвращающий возникновение психосоматических заболеваний и повышающий устойчивость организма к стрессу. Напротив, отказ от поиска ведет к снижению сопротивляемости организма, подавляет иммунную систему, являясь тем самым неспецифической и универсальной предпосылкой к развитию самых разнообразных форм патологии (Ротенберг B.C., Аршавский В. В., 1976, 1999; Айрапетянц М. Г. с соавт., 1986; Александер Ф. 2002 и др.) Ориентировочно-исследовательское поведение (ОИП), таким образом, представляет собой один из важнейших типов поведения, который обеспечивает индивидуума знанием об окружающей среде и является существенным психологическим механизмом адаптации высших позвоночных. Изучение механизмов его регуляции со стороны иммунной системы и ее клеточных элементов позволит расширить имеющиеся представления об интегративном взаимодействии иммунной и нервной систем и открывает новые перспективы в профилактике и коррекции психосоматических расстройств.

Ярким примером психосоматической патологии является хроническая зависимость от морфина Морфин, как известно, взаимодействует с опиатными рецепторами головного мозга и обладает выраженным влиянием на поведенческие реакции. Вместе с тем, известны и его супрессивные эффекты (как прямые, так и опосредованные через центральные механизмы) на функции иммунной системы (Peterson Р.К., et al., 1998; Ветлугина Т. П., 2001; Saurer Т.В., et al., 2003) — в связи с чем актуальным и социально значимым является разработка эффективных методов профилактики и терапии патологии нервной и иммунной систем организма, возникающих у наркозависимых, равно как и поиск новых подходов к реабилитации последних.

В связи с вышеизложенным, цель исследования заключалась в установлении особенностей функционирования иммунной системы у экспериментальных животных с различным уровнем ОИП и выявлении закономерностей изменения ОИП при активации иммунной системы и при трансплантации ИКК с определенными функциональными характеристиками.

В рамках поставленной цели решались следующие задачи:

1. Определить характер ориентировочно — исследовательского поведения у экспериментальных животных и провести морфологическое исследование сенсомоторной коры головного мозга животных с различным уровнем ОИП.

2. Охарактеризовать уровень мРНК ИЛ-10, ИЛ-1-Р, ЭПО-Р и содержание цитокинов в лизатах клеток головного мозга животных с активным и пассивным типами ОИП.

3. Исследовать интенсивность клеточного и гуморального иммунного ответа, пролиферативную активность иммунокомпетентных клеток, уровень мРНК ИЛ-1(3, ИЛ-1-Р1 и ЭПО-Р и содержание цитокинов в лизатах селезенки, культуральных супернатантах моноцитарно-макрофагальной и лимфоидной фракций спленоцитов животных с активным и пассивным типами ОИП.

4. Определить характер изменения параметров ОИП у животных с его различным уровнем при стимуляции клеточного и гуморального звеньев иммунной системы.

5. Исследовать влияние трансплантации неразделенных клеток селезенки на параметры ОИП у сингенных животных с активным и пассивным типами ОИП.

6. Изучить влияние трансплантации моноцитарно-макрофагальных клеток селезенки на функциональную активность нервной системы (ОИП, экспрессию генов ИЛ-1(3, ИЛ-1-Р и ЭПО-Р в клетках головного мозга) и иммунной системы (клеточный и гуморальный иммунный ответ, пролиферативную активность иммунокомпетентных клеток, экспрессию генов ИЛ-1(3, ИЛ-1-Р и ЭПО-Р в спленоцитах) у сингенных животных с с активным и пассивным типами ОИП.

7. Изучить влияние трансплантации непирилипающих к пластику клеток селезенки на функциональную активность нервной системы (ОИП, экспрессию генов ИЛ-10, ИЛ-1-Р и ЭПО-Р в клетках головного мозга) и иммунной системы (клеточный и гуморальный иммунный ответ, пролиферативную активность иммунокомпетентных клеток, экспрессию генов ИЛ-1Р, ИЛ-1-Р и ЭПО-Р в спленоцитах) у сингенных животных с активным и пассивным типами ОИП.

8. Изучить влияние трансплантации иммунокомпетентных клеток на характерные проявления функциональной активности иммунной и нервной систем у экспериментальных животных в состоянии хронической зависимости от морфина.

Основные результаты исследования и их новизна:

Научная новизна работы заключается в том, что в результате проведенных исследований продемонстрирована взаимосвязь уровня ОИП с особенностями структурнофункциональной организации ЦНС и функциональной активности иммунной системы у экспериментальных животных.

Показано, что мыши (СВА х С57ВЪ/6)Р1 с активным типом ОИП характеризуются относительно большим количеством нейронов в сенсомоторной коре головного мозга по сравнению с мышами с пассивным типом ОИП. У последних, в свою очередь, в коре мозга выявлены выраженные перицеллюлярные отеки, тенденция к увеличению количества клеток-теней и наличие групп сжатых клеток.

При этом установлено, что клетки головного мозга мышей (СВА х С57ВЬ/6)Р1 с пассивным типом ОИП отличаются от таковых у мышей с активным типом поведения более высокой экспрессией генов ИЛ-1(3 и ИЛ-1Р первого типа, равно как и превалирующим содержанием цитокинов ИЛ-1Р, ИЛ-6, ФНОа, ИНФу в их лизатах. Впервые выявлена относительно высокая экспрессия гена ЭПО-Р в клетках головного мозга мышей (СВА х С57ВЬ/6)Р1 с активным типом ОИП. Показано стимулирующее влияние ЭП на показатели моторного и исследовательского компонентов ОИП.

Впервые показаны различия синтеза и продукции ряда цитокинов ИКК мышей (СВА х C57B1/6)F1 с активным и пассивным типом ОИП. Так, у мышей с высоким уровнем ОИП в клетках селезенки выявлена более низкая экспрессия гена ЭПО-Р. В тоже время у этих животных установлен относительно высокий уровень мРНК ИЛ-1-Р первого типа в спленоцитах и мРНК ИЛ-lßв их моноцитарно-макрофагальной фракции. При этом в лизатах спленоцитов мышей с активным типом ОИП показано более высокое содержание цитокинов ИЛ-6, ФНОа и ИНФу, равно как и ИЛ-1 ?, ИЛ-6, ФНОа в культуральном супернатанте их моноцитарно-макрофагальной фракции. Неприлипающие к пластику клетки селезенки мышей (СВА х C57B1/6)F1 с активным типом ОИП отличаются повышенной продукцией ИЛ-6.

При исследовании функциональной активности ИКК у мышей (СВА х C57B1/6)F1 с высоким и низким уровнем ОИП выявлены также достоверные различия в их пролиферативной активности. Показано, что животные с активным типом ОИП характеризуются относительно более высокой спонтанной и митогениндуцированной пролиферативной активностью тимоцитов и спленоцитов.

Впервые установлено, что характер изменениями параметров ОИП у мышей (СВА х C57B1/6)F1 при формировании как гуморального, так и клеточного иммунного ответа определяется исходным поведенческим < статусом животных. Впервые продемонстрирована прямая зависимость между уровнем ОИП и выраженностью реакции ГЗТ, характеризующей состояние клеточного звена иммунной системы. Данная зависимость показана у мышей линий Balb/c, С57В1/6, (СВА х C57BL/6)F1 и у крыс Wistar и OXIS, характеризующихся высокими и низкими параметрами поведения в тесте «открытое поле» соответственно, что указывает на ее универсальный характерболее того, у последних продемонстрировано также дозозависимое повышение показателей горизонтальной двигательной активности при формировании клеточного иммунного ответа.

Научная новизна работы заключается также в том, что впервые продемонстрирована возможность направленного изменения уровня ОИП у животных путем трансплантации иммунокомпетентных клетоки установлены клеточные и молекулярные механизмы влияния клеток селезенки на параметры ОИП экспериментальных животных с различным поведенческим статусом в норме и в состоянии хронической зависимости от морфина.

Теоретическая и практическая значимость исследования.

Теоретическая, значимость работы заключается в установлении принципиально нового феномена: направленного изменения параметров ОИП у экспериментальных животных путем трансплантации ИКК с определенными функциональными характеристиками. Представленные в работе результаты, раскрывающие основные механизмы влияния ИКК на ОИП, значительно расширяют существующие представления о процессах функционального взаимодействия двух важнейших гомеостатических систем организма — нервной и иммунной. Выявленные взаимосвязи между функциональной активностью иммунной системы и уровнем ОИП у интактных животных, а также закономерности влияния активации иммунной системы, ее клеточного и гуморального звеньев на параметры ОИП раскрывают механизмы иммунорегуляции форм поведения как врожденных, так и приобретенных в ходе индивидуального опыта.

Практическая значимость полученных результатов заключается в обосновании целесообразности оценки и учета индивидуально-типологических особенностей пациента при проведении иммунотерапевтических мероприятий, в частности, клеточной терапии, поскольку имеются основания полагать, что при этом имеет место не только ожидаемый непосредственный эффект на уровне иммунной системы реципиента, но и опосредованный эффект на функции центральной нервной системы. Выявленные в работе закономерности и взаимосвязи между параметрами поведения и функциональной активностью иммунной системы открывают новые перспективы в самых различных областях экспериментальной и клинической медициныпозволяют расширить возможности как иммунокоррекции (в том числе посредством коррекции поведенческих функций) — так и регуляции поведения путем воздействия на параметры иммунитета. Практическая ценность работы заключается также в том, что предложенная экспериментальная модель и полученные результаты могут быть использованы для разработки новых биологических методов и стратегии патогенетической терапии различных форм психосоматических заболеваний, протекающих с нарушением нейроиммунных взаимодействий, в том числе и наркотической зависимости.

Положения, выносимые на защиту.

1. У животных с активным и пассивным типами ОИП различна функциональная активность клеточного звена иммунной системы.

2. Уровень ОИП ассоциирован с уровнем синтеза цитокинов в клетках иммунной системы и ЦНС.

3. Трансплантация иммунокомпетентных клеток является способом изменения ОИП у экспериментальных животных.

Личный вклад автора в проведение исследования.

Все представленные результаты экспериментальных исследований получены лично автором, либо при его непосредственном участии.

Апробация материалов диссертации.

Материалы диссертации представлены в виде докладов на следующих научных мероприятиях: International Congress ISNIM — 99 (Lugano, Switzerland, September, 1999) — Eighth NIDA International Forum on Building International Research (Miami, USA, June, 2003) — Съезде РНОИ (Сочи, 2004) — Drug Discovery Technology / InfoTech Pharma Conference (London, March 2005) — Российско-германском симпозиуме «Патофизиология психических расстройств» (Томск, сентябрь 2006) — Симпозиуме «Дни иммунологии в Сибири» (Омск, 2007) — 3-rd International Conference «Basic Science for Medicine» (Novosibirsk, September, 2007) — Съездах нейроиммунологов.

Санкт-Петербург, май-июнь 2005, 2007, 2009) — Объединенном иммунологическом форуме (Санкт-Петербург, июнь-июль 2008) — «EHRLICH II 2nd World Conference on Magic Bullets» (Nurnberg, Germany, October 2008) — 2nd European Congress of Immunology (Berlin, September, 2009) — шестой Российской конференции по нейроиммунопатологии (Москва, июнь, 2010).

Результаты работы представлены также на итоговых научных сессиях ГУ НИИ клинической иммунологии СО РАМН (Новосибирск, 2000, 2003, 2006) — заседании Президиума СО РАМН (Новосибирск, июнь 2009) — заседании проблемной комиссии МНС № 55.07 «Иммунология» СО РАМН (Новосибирск, сентябрь 2010).

Публикации. По теме диссертации опубликовано 60 научных работ, в том числе в российских и зарубежных изданиях 33 статьи (из них 25 в изданиях, рекомендуемых ВАК для публикации материалов диссертационных работ). Результаты исследований вошли также в монографии «Основы нейроиммунологии», М., 2004; и «Патофизиология психических расстройств», Томск, 2006.

Структура и объем диссертации

.

Диссертация написана в традиционном стиле и состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов исследования, глав, содержащих результаты собственных исследований, обсуждения полученных результатов, заключения и выводов. Диссертация изложена на 251 странице машинописного текста, иллюстрирована 21 рисунком и 21 таблицей. Список цитируемой литературы включает 599 источников, из них 147 работотечественных авторов.

ВЫВОДЫ.

1. Мыши (СВА х С57В1/б)Р1 с активным и пассивным типами ОИП отличаются структурно-функциональными параметрами центральной нервной системы, о чем свидетельствуют относительно низкое количество нейронов в сенсомоторной коре головного мозга, низкая экспрессия гена ЭП-Р и более высокая экспрессия генов ИЛ-1 [3, ИЛ-1-Р первого типа в клетках головного мозга и превалирующее содержание в их лизатах цитокинов ИЛ-1Р, ИЛ-6, ФНОа, ИНФу, регистрируемое у животных с пассивным типом ОИП по сравнению с мышами с активным типом ОИП.

2. Мыши (СВА х С57В1/6)Р1 с активным и пассивным типами ОИП характеризуются различной функциональной активностью ИКК, о чем свидетельствуют: более высокая спонтанная и митогениндуцированная пролиферативная активность клеток тимуса и селезенки у животных с активным типом ОИП по сравнению с таковыми у мышей с пассивным типом ОИПа также различия в синтезе и продукции ряда цитокинов, оцениваемые по экспрессии генов, содержанию цитокинов в лизатах и культуральных супернатантах ИКК. У мышей с активным типом ОИП относительно животных с оппозитным типом поведения регистрируется низкий уровень мРНК ЭП-Р при более высоком уровне мРНК ИЛ-1-Р первого типа в спленоцитах и мРНК ИЛ-1Р в их моноцитарно-макрофагальной фракции. В лизатах спленоцитов мышей с активным типом ОИП установлено более высокое содержание цитокинов ИЛ-б, ФНОа и ИНФу, равно как и ИЛ-1р, ИЛ-6, ФНОа в культуральном супернатанте клеток их моноцитарно-макрофагальной фракции.

3. Выявлена тесная: взаимосвязь между активностью клеточного звена иммуннойсистемы и ОИГ1, демонстрируемая соответствием интенсивности реакции ГЗТ и уровня — ОИП, наблюдаемым у мышей линий Balb/c, С57В1/6, (СВА х C57BL/6)F1 и у крыс Вистар и OXIS, а также дозозависимым повышением уровня ОИП у животных с пассивнымтипом, поведения при стимуляции клеточного звена иммунной системы. .

4. Трансплантация неразделенных клеток селезеньей мышей' (СВА х C57B1/6)F1 от доноров, характеризующихся пассивнымтипом ОИП, сингенным реципиентам с активным, типом ОИП приводит к снижению уровня ОИП реципиентовтрансплантация спленоцитов от доноров, характеризующихся активным типом: ОИП? сингеннымреципиентам с пассивным типом ОИП приводит к повышению у реципиентов уровня данной поведенческой реакции, что свидетельствует о влиянии периферических ИКК на параметры ОИП.

5. Трансплантация моноцитарно-макрофагальных клеток селезенки от мышей (СВА х G57B1/6)F1 с активным типом ОИП' сингенным" реципиентам с: пассивным типом ОИП приводит у реципиентов к повышению параметров вертикальной и горизонтальной двигательной активности на фоне снижения уровня мРНК ИЛ-lßи повышения уровня мРНК ИЛ-1-Р и ЭП-Р в клетках головного мозга. Трансплантация клеток от доноров с пассивным типом ОИП реципиентам с активным типом ОИП сопровождается противоположными изменениями параметров ОИП и экспрессии указанных генов цитокинов в клетках головного мозга, что свидетельствует о влиянии клеток системы мононуклеарных фагоцитовна показатели моторного и исследовательского компонентов ОИП и экспрессию генов цитокинов в клетках головного мозга.

6. Трансплантации моноцитарно-макрофагальных клеток селезенки между сингенными животными с оппозитными типами ОИП приводит к разнонаправленным изменениям функциональных показателей иммунной системы реципиентов, о чем свидетельствуют повышение спонтанной пролиферативной активности тимоцитов, снижение ЛПС-стимулированной пролиферативной активности спленоцитов, повышение уровня мРНК ЭП-Р, снижение уровня мРНК ИЛ-1Р в клетках селезенки и усиление реакции ГЗТ в случае, если донорами служили мыши с активным типом ОИП. При обратном варианте трансплантации, когда донорами выступали животные с пассивным типом ОИП, а реципиентами — мыши с активным типом ОИП, у последних регистрировались противоположные по направленности изменения указанных параметров.

7. Трансплантация неприлипающих к пластику спленоцитов с превалирующим содержанием клеток лимфоидного ряда от мышей (СВА х С57В1/6)Р1 с активным типом ОИП сингенным реципиентам с пассивным типом ОИП приводит у реципиентов к усилению вертикальной двигательной активности на фоне повышения уровня мРНК ЭП-Р и снижения уровня мРНК ИЛ-1-Р в клетках головного мозгатрансплантация указанных клеток от доноров с пассивным типом ОИП реципиентам с активным типом ОИП сопровождается снижением параметров вертикальной двигательной активности на фоне снижения уровня мРНК ЭП-Р в клетках головного мозга, что свидетельствует о влиянии указанных клеток на параметры исследовательского компонентов ОИП и экспрессию гена ЭП-Р в клетках головного мозга.

8. Перекрестная трансплантации фракции спленоцитов, состоящей преимущественно из лимфоидных клеток, между сингенными животными с оппозитными типами ОИП сопровождается изменением функциональных показателей иммунной системы реципиентов, о чем свидетельствует стимуляция пролиферативной активности клеток тимуса и селезенки, снижение экспрессии гена ЭП-Р в спленоцитах и стимуляция гуморального иммунного ответа, оцениваемого по числу АОК в селезенке в случае, если донорами выступали животные с активным типом ОИП. При обратном варианте трансплантации у реципиентов регистрируется повышение спонтанной пролиферативной активности клеток тимуса, снижение митогениндуцированной пролиферативной активности клеток селезенки, равно как и экспрессии в них гена ИЛ-1-Р.

9. Трансплантация моноцитарно-макрофагальньгх клеток селезенки от здоровых сингенных доноров, соответствующих животным в состоянии хронической зависимости от морфина по их исходному поведенческому статусу, приводит у реципиентов к коррекции параметров ОИП до значений, аналогичных здоровым животным на фоне стимуляции гуморального иммунного ответа, о чем свидетельствует повышение числа АОК селезенки, и восстановления сниженной под действием морфина экспрессии гена ИЛ-1 р в селезенке и в головном мозге, что подтверждается повышением уровней соответствующих мРНК.

10. Индивидуально-типологические особенности ориентировочно-исследовательского поведения связаны с функциональными характеристиками иммунной системы, клетки которой при трансплантации способны изменять уровень указанного поведения.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

В’ходе многочисленных специальных экспериментов, направленных на изучение особенностей исследовательского поведения людей и животных, неоднократно было доказано, что указанное поведение следует рассматривать как неотъемлемое проявление жизненной активности любого живого существа. Исследовательское поведение выполняет важнейшую функцию — функцию развитияпоследняя обеспечивает адаптацию организма к динамичному внешнему окружению и в конечном итоге является гарантией выживания данного организма и вида в целом.

Важным для понимания механизмов, лежащих в основе индивидуальных различий ОИП и их физиологического значения является исследование особенностей функционирования физиологических систем у животных и человека с противоположной выраженностью потребности в двигательной активности. Как свидетельствуют результаты собственных исследований и литературные данные в основе индивидуально-типологических различий ОИП лежат не только свойства нервной системы, определяемые структурно-морфологическими, молекулярно-биологическими и биохимическими особенностями функционирования различных образований головного мозга, но и особенности функционирования иммунной системы.

В настоящей работе показано, что ИКК мышей (СВА х С57ВЬ/6)Р1 с активным и пассивным типами ОИП различаются по спонтанной и митоген-индуцированной пролиферативной активностипо экспрессии генов и продукции ряда цитокинов. При этом, формирование как гуморального, так и клеточного иммунного ответа сопровождается модуляцией исследовательского поведения, причем характер изменений ОИП определяется исходным поведенческим статусом животных. Выявлена тесная взаимосвязь между активностью клеточного звена иммунной системы и исследовательским поведением, определяемая соответствием интенсивности развиваемой реакции ГЗТ и уровня ОИП, регистрируемым у мышей линий Balb/c, С57В1/6, (СВА х C57BL/6)F1 и у крыс Вистар и OXISу последних показано также дозозависимое повышение параметров поведения в тесте «открытое поле» при стимуляции клеточного звена иммунной системы. По всей видимости, высокая иммунореактивность, обеспечивающая успешную адаптацию организма в новой антигенной среде, создает также возможность активного поведения особи в условиях неопределенности при освоении незнакомых территорий с новым потенциальным паразитарным окружением, что реализуется в высоком уровне ОИП и позволяет организму сохранить баланс с внешним миром вопреки действию нетипичных и даже угрожающих факторов и обстоятельств. ЦНС получает информацию от иммунной системы, как от сенсорного рецептора, распознающего присутствие антигенаинформация передается в ЦНС посредством нейрогуморальных механизмов, что вызывает закономерные модуляции на уровне электрофизиологических, биохимических и молекулярно-биологических параметров, отражением чего является в частности изменение поведения, модификация которого в процессе активации иммунной системы имеет адаптивное значение.

Вовлечение иммунологических механизмов в реализацию ОИП подтверждается также продемонстрированной в настоящей работе способностью периферических ИКК с определенными функциональными характеристиками при трансплантации направленно изменять параметры указанного поведения животных-реципиентов. Установлено, что клетки селезенки, попадая в организм сингенного, но отличающегося по психофизиологическим показателям реципиента, вызывают у последнего I определенные изменения функциональной активности ЦНС, о чем свидетельствуют изменение параметров ОИП и экспрессии генов цитокинов в клетках головного мозга, на фоне изменения функциональной активности иммунной системы, проявляющейся в модуляции пролиферативной активности клеток тимуса и селезенки, экспрессии генов цитокинов в клетках селезенки и интенсивности иммунного ответа. Можно полагать, что в качестве триггерных факторов, приводящих к изменениям функциональной активности ЦНС у мышей-реципиентов при трансплантации ИКК выступают продуцируемые этими клетками цитокины. По всей видимости, головной мозг реагирует на изменение цитокинового профиля на периферии и отвечает на этот стимул модуляцией как собственного локального синтеза цитокинов, так и активности центральных нейромедиаторных систем, следствием чего и являются регистрируемые изменения параметров ОИП. Известно, что цитокины, гормоны, нейротрансмиттеры, растворимые мессенджеры и их рецепторы, общие для иммунной и нервной систем, выполняют двусторонние коммуникативные функции между указанными гомеостатическими системами организма, в силу чего лимфоидные органы можно рассматривать в качестве чувствительных и эффекторных органов. Учитывая двусторонний характер нейроиммунных взаимодействий, наблюдаемые в собственных исследованиях изменения показателей функциональной активности иммунной системы реципиентов после трансплантации ИКК могут быть следствием как непосредственного воздействия трансплантируемых клеток и продуцируемых ими цитокинов, так и опосредованного влияния ЦНС. В настоящем исследовании показано, что особенности интегративного взаимодействия иммунной и нервной систем, определяющие тип ОИП, определяют также характер изменения указанного поведения при хроническом воздействии морфина, что выражается в неоднозначном эффекте этого наркотического вещества на функциональную активность ЦНС у генетически однородных мышей с активным и пассивным типами ОИП. Наблюдаемые поведенческие сдвиги, равно как и супрессия под действием морфина гуморального иммунного ответа, снижение пролиферативной активности спленоцитов и экспрессии ими и клетками головного мозга гена ИЛ-1 (3, могут быть скорректированы трансплантацией ИКК с определенными функциональными характеристиками, соответствующими таковым у здоровых животных, что позволяет рассматривать трансплантацию ИКК в качестве возможного перспективного биологического метода терапии наркотической зависимости.

Таким образом, подводя итог вышеизложенному можно заключить, что нейроиммунные взаимодействия лежат в основе формирования индивидуально-типологических особенностей поведения экспериментальных животных. Выявленные взаимосвязи между показателями функциональной активности иммунной и центральной нервной систем у животных с различным типом ОИП, равно как и закономерности изменения поведения при активации иммунной системы и при трансплантации ИКК с определенными функциональными характеристиками позволяют расширить имеющиеся представления об интегративном взаимодействии двух важнейших регуляторных систем организма, выполняющих в организме базисные функции по адаптации к изменяющимся условиям внешней и внутренней среды и открывают новые перспективы в профилактике и коррекции психосоматических расстройств, расширяя возможности как иммунокоррекции, в том числе посредством коррекции поведенческих функцийтак и регуляции поведения путем воздействия на функциональные параметры иммунной системы.

Показать весь текст

Список литературы

  1. H.A., Рожанец В. В. Влияние пептидов на мембранные процессы как основа их моноаминергических механизмов. //В кн.: Фармакология нейропептидов. M., 1982.-С.40−45.
  2. В.В. Взаимодействие иммунной и нервной систем. Новосибирск: Наука. Сиб. Отд-ние, 1988. — 165с.
  3. В.В., Абрамова Т. Я., Егоров Д. Н., Вардосанидзе К. В. Высшая нервная деятельность и иммунитет. Новосибирск, 2001.-123с.
  4. В.В., Абрамова Т. Я., Гонтова И. А., Козлов В. А., Маркова Е. В., и др. Основы нейроиммунологии. М., 2004.- 264 с.
  5. A.A. Исследование механизмов памяти с помощью физиологически активных соединений. M .: Наука, 1981.- 188 с.
  6. И. М. Значение прореальных извилин коры больших полушарий головного мозга в воспроизведении и сохранении эмоции страха у собак. //В кн.: Механизмы деятельности головного мозга. Тбилиси: Мецниереба, 1975.-С. 31−40.
  7. И.М., Иорданишвили Г. С., Чиквадзе В. Н. О роли биогенных аминов в механизмах памяти. //Докл. АН СССР.- 1973.-Т. 212.-№ 6.-С. 1479−1481.
  8. М.Г., Хоничева Н. М., Мехедова, А .Я. Поисковая активность и устойчивость организма к экстремальным воздействиям. // В кн.: Поисковая активность, мотивация и сон. Баку: ЭЛМ, 1986.- С.3−11.
  9. Ф. Психосоматическая медицина. Принципы и практическое применение. М.: Эксмо, 2002. 453 с.
  10. С.А., Колесников О. Л. Влияние пирогенала на состояние нервной и иммунной систем мышей с разным исходным уровнем ориентировочно-исследовательского поведения. //Мед. иммунология.-2006.-Т.8.-№ 2−3.-С.117−118.
  11. Э.Б., Бейер Э. В. Взаимосвязь психоэмоционального состояния и иммунной системы. //Успехи физиол. наук.- 2004.- Т.35.-№.4.- С. 49−64.
  12. В.В., Ротенберг B.C. Влияние различных типов поведенческих реакций и эмоциональных состояний на патофизиологические и клинические синдромы. //Успехи физиол. наук.-1978.- Т.9.- №.3.- С. 49−72.
  13. Гб.Аршавский В. В., Ротенберг B.C. Поисковая активность и ее влияние на экспериментальную и клиническую патологию. //Журн. высшей нервной деятельности.-1976. № 2. — С.78.
  14. Ф. Б., Мовсумов Г. Д., Магеррамова Л. М. Влияние белкового дефицита в пище на условнорефлекторную деятельность животного. // Известия АН Азерб. (серия биолог, наук).- 2000.-№ 1−3.-С. 111−118.
  15. И.П. Биохимия мозга. Изд -во Санкт -Петерб. Унив -та, 1999.328 с.
  16. И. П. Малые пептиды в норме и при патологии. //Патофизиол. и эксперимен. терапия.- 1982.-№ 4.-С. 13−27.
  17. И.П. Сигнальные молекулы и социальное поведение. //Нейрохимия.- 2001.-Т.18.-№ 4.-С. 243−250.
  18. И.П., Сарычева Н. Ю., Власова Т. И., Калихевич В. Н., Каменский A.A. Коррекция тафцином фармакологически вызванныхнарушений поведения белых крыс. //Бюлл. экспер. биол. и мед.- 1987.Т. 103.-№ 2.-С. 178−181.
  19. A.C., Мидзяновская И. С., Кузнецова Г. Д. и др. Возможные механизмы формирования типологических особенностей поведения крыс линии WAG/Rij. //Журнал высш. нервн. деят.- 2001.- Т.51.-№ 6.-С.709−716.
  20. A.C. Высшая нервная деятельность. СПб.: Изд-во «Лань», 2002.416 с.
  21. A.C. Системно-структурный анализ механизмов поведения. //В кн.: Физиология поведения. Нейрофизиологические закономерности (ред. АС. Батуев). Л.: Наука, 1986.- С.7−22.
  22. И.А., Гусев Е. И., Чехонин В. П. и др. Гематоэнцефалический барьер. // Журн. неврол. и психиатр.- 1999. Т. 8. С. 57−62.
  23. О. Генетически обусловленная изменчивость поведения у крыс и ее биохимические препараты. //Журн. высш. нервн. деят.- 1978.Т. 28, №. 2.-С .314−321.
  24. Г. Л. Сапин М.Р. Анатомия человека. Книга 2. Изд-во: Оникс Мир и Образование Харвест, 2007.-480 с.
  25. А. А., Тунева Е. О. // Биол. мембраны.- 2005. -Т. 22.- С. 142— 145.
  26. Ю.С., Шабанов П. Д. Нейрохимические механизмы извлечения следов памяти. Л.: Наука, 1986.-150 с.
  27. Я., Бурешова О., Хьюстон Д. П. Методики и основные эксперименты по изучению мозга и поведения. М., 1991.-399 с.
  28. A.B. Модулирующее действие коротких пептидов на моноаминергические процессы мозга как основа их психотропного эффекта. //Вопросы мед. химии, — 1984.-Т. 30.-№. 3.- С. 56−63.
  29. A.B., Звартау Э. Э., Козловская М. М. Психофармакология эмоций. М.: Медицина, 1976.-327 с .
  30. A.B., Козловская М. М. Моноаминергические механизмы регулирующего влияния ряда коротких пептидов при моделировании патологии поведения. //Патол. физиол. и эксперимен. терапия.- 1984.-№ З.-С. 60−67.
  31. Н.В. Влияние хронического эмоционального стресса на состояние перекисного окисления липидов в тканях и крови эмоциональных и неэмоциональных крыс. //Бюлл. экспер. биол. и мед.-1985.-Т.100.-№ 5.-С. 12−17.
  32. E.H., Лямина C.B., Шимшелашвили Ш. Л. и др. Sp-D контролирует баланс Thl и Th2 цитокинов и обладает признаками эндогенного фактора репрограммирования макрофагов.// Фундаментальные исследования.- 2010.- № 6 С. 28−36.
  33. Н. С., Федулова С. А. Два типа кальциевых каналов в соматической мембране нейронов спинальных ганглиев крыс // Докл. АН СССР. 1983. — Т. 263, № 3. -С.747.
  34. Т.П., Иванова С. А., Невидимова Т. И. Клиническая иммунология в психиатрии и наркологии. Томск, 2001. 92 с.
  35. В.Г. Иммунология. М.: Академия, 2004.- 520 с.
  36. О.В., Альперина Е. Л., Подгорная Е. К. и др. Изменения уровня допамина и его метаболитов в структурах мозга и иммвунокомпетентных органах при формировании иммунного ответа. // Бюлл. экспер. биол. и мед.- 1990.-Т.110.-№ 7.- С. 66−68.
  37. Г. Г., Меликов Э. М. Нейрохимические механизмы гиппокампа, тета -ритм и поведение. М .: Наука, 1986.- 184 с .
  38. Г. Г. Функциональная дифференциация моноаминов гиппокампа и амигдалы в механизме сенсорного подкрепления. //В сб.: Современные проблемы нейробиологии. Тбилиси, 1986.- С. 85−86.
  39. Л. М., Доведова Е. Л., Попова Н. С. Эффекты тетрапептида тафцина на макро- и микроуровнях. //Нейрохимия. 1997.- Т. 14.-№ 1.-С. 40−47.
  40. Л.М., Камышева A.C., Чеботарёва Т. Л. и др. Морфохимическая характеристика мозга крыс линии Вистар, различающаяся по локомотивной активности в открытом поле. //Журн. высшей нервн. деят.- 1991. -Т. 41.- № 2.- С. 300 -305.
  41. Л.М. Роль нейромедиаторов и белков в генетико-функциональной организации мозга животных. // Онтогенез.- 2001. -Т.32.- С. 35−40.
  42. В.М., Орлова Н. В. Взаимодействие моноаминергических систем в процессах выработки и закрепления временных связей. // Журн. высш. нервн. деят.- 1982.-Т. 32.- С. 1109−1115.
  43. В.М., Орлова Н. В. Индивидуальные особенности поведенческих реакций и моноаминергических систем мозга у крыс.
  44. В кн.: Индивидуальный мозг: Структурные основы индивидуальных особенностей поведения. М.: Наука, 1993.- С. 68−81.
  45. Е.А. Эмоциональная память и ее механизмы. М.: Наука, 1980. 187 с.
  46. Е.А., Семенова Т. П. Нейромедиаторные основы исследовательского поведения животных и его связь с условнорефлекторной деятельностью . //В кн.: Поисковая активность, мотивация и сон. Баку: Елм., 1986.- С. 26−32.
  47. Е.А., Семенова Т. П., Чубаков А. Р., Бобкова Н. В. Реципрокность взаимоотношений 5-ОТ и НА систем мозга и ее значение для регуляции поведения в норме и патологии. Пушино, ОНТИ НЦБИ АН СССР, 1985.-59 с.
  48. Н.В., Степаничев М. Ю. Биохимические корреляты индивидуально-типологических особенностей поведения крыс. // Журн. высш. нерв. деят. -1997. -Т.47. -№ 2. С.329−338.
  49. Г. В. Адренергические и холинергические механизмы регуляции • ¦ функций лимфоидных клеток. Иммунофизиология (ред. Е.А. Корнева).
  50. СПб.:Наука, 1993.- С.243−293.
  51. Л.В., Альперина Е. Л. Анализ взаимодействия дофаминергической и серотонинергической систем в иммуномодуляции. //Физиол. журнал СССР.- 1984.-Т.70.-№ 2.- С.239• 246.
  52. Л.В., Альперина Е. Л., Гевортян М. М., Чейдо М. А. Взаимодействие Д. и Д2 дофаминовых рецепторов в модуляции иммунного ответа. // Бюлл. эксперим. биол. и мед.- 2006. Т. 141. — № 5. — С.488−490.
  53. Л.В., Альперина Е. Л., Кудрявцева H.H., Попова Н. К. Изменение иммунного ответа у мышей-самцов с агрессивным и субмиссивными типами поведения. //Физиол. журнал СССР.- 1991.-Т.77.-№ 12.- С.62−67.
  54. Л.В., Идова Г. В., Альперина Е. Л. Нейромедиаторные системы мозга в модуляции иммунной реакции (дофамин, серотонин, ГАМК). //Нейроиммунология.- 2005.-Т.З.-№ 1.- С.1−8.
  55. Л.В., Идова Г. В., Альперина Е.Л.
  56. Психонейроиммуномодуляция: поведение и иммунитет. Рольнейромедиаторной установки мозга". Новосибирск: Наука, 2009. -168с.
  57. Л.В., Ильюченок Р. В. Моноаминергические системы в регуляции иммунных реакций. Новосибирск: Наука. Сиб. Отд-ние, 1983. -1234с.
  58. Е.Л., Монаков М. Ю. Особенности метаболизма нейромедиаторов в корково-подкорковых структурах мозга крыс, различающихся по поведенческим характеристикам. // Бюлл. эксперим. биол. и мед.- 2000. -Т. 130. № 9. — С. 289−291.
  59. Н.И., Лоскутова Л. В. Дофаминергические механизмы памяти и внимания. Новосибирск. Изд-во СО РАМН, 2003.- 276 с.
  60. Ю.М. Неэритропоэтические функции эритропоэтина. // Российский физиологический журнал им. И. М. Сеченова.- 2007. Т.93.-№ 6.- С. 592−608.
  61. Захаров Ю. М Цитопротекторные функции эритропоэтина. //Клиническая нефрология.- 2009.- № 1.- С. 16−21.
  62. З.А., Полетаева И. И., Резникова Ж. И. Основы этологи и генетики поведения. Изд-во МГУ: Изд-во «Высшая школа», 2002. 383 с.
  63. Т.М. Содержание биогенных аминов в некоторых отделах мозга крыс с различной устойчивостью сердечно-сосудистых реакций в условиях эмоционального стресса. Автореф. дисс. канд. биол. наук. М., 1979.- 22 с.
  64. Р.Ю. Нейрохимические механизмы мозга и памяти. Новосибирск: Наука, 1977.-235 с .
  65. Р.Ю., Дубровина Н. И., Попова Е. В. Исследование взаимодействия поведенческого стереотипа мышей и эффектов активации пресинаптических дофаминовых рецепторов при угашении и амнезии. // Журн. высш. нерв, деят.- 2001.- Т. 51.- Вып.4.- С. 467−472.
  66. , Х.Ю., Агаев Т. М., Семенова Т. П. Индивидуальные особенности поведения: моноаминергические механизмы. Баку: «Нурлан», 2007. 228 с.
  67. A.A., Калихевич В. Н., Сарычева Н. Ю. Временные характеристики действия тафцина на поведенческие реакции. //Бюлл. экспер. биол. и мед.- 1986.-Т. 101.- № 1.- С. 55−57.
  68. С.А., Симбирцев A.C. Цитокины. //СПб.:Изд-во «Фолиант», 2008.- 552 с.
  69. С.А., Симбирцев A.C., Воробьев A.A. Эндогенные иммуномодуляторы. СПб.: Изд-во «Гиппократ», 1992.- 256 с.
  70. В.М. Цитокины и поведение. // Вестник Росс, военно-мед. акад.- 1999. № 2. — С. 53−57.
  71. В.М., Зубарева O.E. Нейробиология цитокинов: поведение и адаптивные реакции. // Российский физиол. журнал им. И. М. Сеченова.- 1999.- Т. 85.- № 9.- С. 1244−1254.
  72. В. Е. Пептиды регуляторы функций мозга. Рига: «Зинатие 1984.- 181 с.
  73. О.Л., Артамонов С. А., Симбирцев A.C. Комплексная оценка влияния препарата бестим на иммунную и нервную системы. //Вестник уральской мед. акад. науки.- 2006.-№ 3−1(14).- С.93−97.-N.
  74. В.Ф., Сериков И. С. Динамика проявления поведенческой аудиогенной активности крыс при действии модулированного электромагнитного поля. //Журн. высш. нервн. деят.- 2000.-Т. 50.-№ 5.-С. 878−882.
  75. Р.И. Нейрохимические основы обучения и памяти. М.: Наука, 1989.- 160 с .
  76. Л.В. (отв. ред.) Физиологическая генетика и генетика поведения. Руководство по физиологии. Л., 1981.
  77. Л.В. Эволюционно-генетические аспекты поведения. М.: Наука, 1991.-256 с.
  78. Д.А., Болондинский В. К. Нейрохимические аспекты эмоциональной реактивности и двигательной активности крыс в новой обстановке . //Успехи физиол. наук.- 1986.-Т. 17.-№ 1.- С. 92−109.
  79. Э.Ф., Ашмарин И. И., Колихевич В. Н. Психотропные свойства и влияние на обучение тетрапептида тафтсина. //Фармакол. и токсикол.- 1981.3.- С. 275−279.
  80. Н.С. Умственные способности и возраст. М.: Педагогика, 1971. 280 с.
  81. Л.М. Профилактическое влияние отрицательно заряженных аэроионов при остром стрессе у крыс с различными типологическими особенностями поведения. // Журнал высшей нервной деятельности.-1996.-Т. 46.-№ 3. С. 564−570.
  82. A.A., Уваров В. Ю. Структура и функции нейропоэтинов. //. Молек. Медицина.- 2003.-Т.2.- С. 14−30.
  83. Мамедов 3. Г. Моноаминергические механизмы пластичности нервной клетки. Баку, 2002.-244 с.
  84. Т., Фрич Э., Сэмбрук Дж. Молекулярное клонирование. Пер. с англ. М., 1984.-479 с.
  85. A.JI. К оценке основных характеристик поведения крыс в тесте „открытое поле“. // Журн. высш. нервн. деят.- 1981. Т. 31.- № 2. -С. 301 -307.
  86. Маркель A. JL, Галактионов Ю. К., Ефимов В. М. Факторный анализ поведения крыс в тесте открытого поля. // Журн. высш. нервн. деят.-1988. Т.38.-№ 5. — С. 855−863.
  87. Маркель A. JL, Бородин П. М., Хусаинов P.A., Плотни-ков В. В. Генетическая детерминация эмоционального поведения у крыс. //В кн.: Управление поведением животных. Доклады участников II Всесоюзн. конф. по поведению жи-вотных. М.: Наука, 1977.- с. 195−196.
  88. Е.В., Громыхина Н. Ю., Козлов В. А. Зависимость синтеза и продукции интерлейкина-1 от функционального состояния мононуклеарных фагоцитов. //Иммунология.- 1990.- № 4.- С. 52−54.
  89. О. Поведение животных. Изд-во „Мир“, 1982.- 360 с.
  90. A.A., Козырев С. А., Никитин В. П., Шерстнев В. В. Избирательное влияние антител к белку SMP-69 на активность командных нейронов оборонительного поведения виноградных улиток. //Росс, физиолог, журнал.- 2003.-Т. 89.- С. 389−396.
  91. М.П., герлинская JI.A., Евсиков В. И. иммунная система. • и реализация поведенческих стратегий размножения при паразитарныхпрессах//Журнал общей биологии.- 2003.- Т.64.-№ 1.- С.23−44.
  92. P.C., Ноздрачев А. Д. Нормальная физиология: Учебник. Изд-во:"Гэотар- Медиа», 2009.- 688 с.
  93. И.П. Двадцатилетний опыт объективного изучения высшей нервной деятельности (поведения) животных. М.: Медгиз, 1951.- 505 с.
  94. В., Георгиев В., Русинов К. Нейромедиаторные взаимодействия в головном мозге. //В кн.: Исследование механизмов нервной деятельности. М.: Наука, 1984.- С. 145−146.
  95. Н.К. Роль серотонина в экспресии генетически детерминированного защитно оборонительного поведения. //Генетика.- 2004.-Т. 40.-№ 6.- С. 770−778.
  96. Н.К., Куликов A.B., Колпаков В. Г., Барыкин H.H., Алехина Т. А. Изменения в серотониновой системе мозга крыс, генетически предрасположенных к каталепси. //Журн. высш. нервн. деят.- 1985.-Т. 35.-№ 4.- С. 742−746.
  97. Н.С., Герштейн Л. М., Доведова Е. Л., Качалова Л. М. Соотношение поведенческих, биоэлектрических и цитобиохимических характеристик эффекта тафцина. // Журн. высш. нервн. деят.- 1996.-Т. 46.-№ 1.- С. 163−169.
  98. B.C., Аршавский В. В. Стресс и поисковая активность. //Вопр. физиологии.- 1979.-№ 4.- С. 117−125.
  99. B.C., Бондаренко С. М. Мозг, обучение и здоровье. М.:•• Наука, 1989.-25 с.
  100. B.C., Аршавский В. В. Поисковая активность и адаптация. М.: Наука, 1984, — 192 с.
  101. Л. П. Дьякова С. Л. Связь типологической принадлежности собак с особенностями их поведения при вариациях между вероятностью и ценностью подкрепления, // Журнал высшей нервной деятельности.- 1993.- Т.43. -№ 3.- С. 530.
  102. А.И. Путь к одаренности: исследовательское поведение дошкольников. Издательский дом «Питер», 2004.- 272 с.
  103. М.Р. Лимфатический узел. М.:Медицина, 1987.-110 с.
  104. Т.П. Роль взаимодействия серотонин и норадренергической систем в регуляции поведения. //Журн. высш. нервн. деят.- 1997.-Т. 47.-№ 2.- С. 358−361.
  105. Т.П., Козловская М. М., Вальдман A.B., Громова Е. А. Влияние тафцина и его аналога на обучение, память иисследовательское поведение крыс. //Журн. высш. нервн. деят.- 1988.-Т. 38.-№ 6.- С. 1033−1040.
  106. Т.П. Оптимизация процессов обучения и памяти. Пущино, 1992.-152 с.
  107. Т.П., Гуревич Ч. В., Козловская М. М., Громова Е. А. О роли моноаминергических систем мозга в эффектах тафцина и его аналога на эмоциональное поведение животных. //Физиолог, журн. СССР им. И. М. Сеченова.- 1989.-Т. 75.- № 6.- С. 759−765.
  108. Т.П., Иванов В. А., Третьяк Т. М. Содержание ' серотонина, норадреналина и дофамина в мозге крыс, различающихсяуровнем двигательной активности . //Журн. высш. нервн. деят.- 1979.Т. 29.-№ 3.- С. 640−643.
  109. П.В. Мозг: эмоции, потребности, поведение. Избранные труды. М.: Наука, 2004.-Т .1.-438 с.
  110. П.В. Мотивированный мозг. М.: Наука, 1987.-267 с .
  111. П.В. Стресс как индикатор индивидуально -типологических реакций. //Патофизиология и экспериментальная терапия.- 1992.-№ 4.-С. 83−92.
  112. П.В. Созидающий мозг: нейробиологические основы творчества. М.: Наука, 1993.- 108 с.
  113. А.Д. Среда и поведение: Формирование адаптивного поведения. JL: Наука, Ленингр. отд-ние, 1976.- 211 с.
  114. К.В., Коплик Е. В., Салиева P.M., Каменов З. А. Прогностические критерии устойчивости к эмоциональному стрессу. //В кн.: Эмоциональный стресс, физиологические и медико -социальные аспекты. Харьков: Прапор, 1990.- С. 12−19.
  115. К.В. Индивидуальная устойчивость к эмоциональному стрессу. М.: Горизонт, 1998.- 267 с.
  116. К.В. Физиология, основы и функциональные системы. М.: Медицина, 2000.- 784 с.
  117. Ю.В. Высшие функции мозга и поведение человека. М.: МГУ, 1996.- 201 с.
  118. Ю. В. Донцов Р.Г. Физиология центральной нервной системы. Изд-во «Аспект-Пресс», 2007.- 160 с.
  119. П.Н., Учакина О. Н., Тобин Б. В., Ершов Ф. И. Нейроэндокринная регуляция иммунитета. //Вестник Росс. АМН, 2007.-№ 9.- С. 26−32.
  120. К.Э. Основы зоопсихологии. М.: Российское психологическое общество, 1999. 464 с.
  121. Е.Б. Межполушарная асимметрия исследовательских и эмоциональных характеристик поведения крыс в открытом поле. // Журн. высш. нервн. деят.- 1985. Т. 35.- № 6. — С. 1082 — 1087.
  122. JI.B., Ноздрачев А.Д/ Интероцепция и нейроиммуные взаимодействия. СПб.: Наука, 2007.- 295 с.
  123. P.M., Безносок Е. В., Булгакова JI.B., Червинская Т. А. Проблемы психонейроиммунологии. // Рос. Мед. Ж.- 1997.- 3.- С. 42−47.
  124. Е. Д. Мозг и активация . М.: Изд -во МГУ, 1972.- 382 с.
  125. С.А., Чепурнова Н. Е. Нейропептиды и миндалина. М., 1985.- 128 с .
  126. И.Г. Межсистемные взаимодействия в регуляции гуморального иммунитета: иммуносупрессорные клетки эритроидной природы. Дисс. д-ра. биол. наук. Новосибирск: Институт клинической иммунологии СО РАМН, 1987. 343с.
  127. Т.В., Амстиславская Т. Г., Колосова Н. Г. // Нейрохимия-2002. Т.19. — № 4. — С. 269−273.
  128. Е. А., Мещерякова О. А. Прогнозирование устойчивости к эмоциональному стрессу на основе индивидуального тестирования поведения. //Журн. высш. нервн. деят, — 1990.-Т. 40.-№ 3.- С. 575−583.
  129. A.A. Основы иммунологии. М.: Медицина, 1999. 608с.
  130. A.A. Система цитокинов и принципы ее функционирования в норме и патологии. // Иммунология.- 2000.-№ 1.-С. 7−14.
  131. Abel E.L. Behavior and corticosteroid response of Maudsley reactive and nonreactive rats in the open field and forced swimming test. //Physiol. andBehav.- 1991.-V. 50.-P. 151−155.
  132. Abreu P., Llorente E., Hernandez M.M., Gonzalez M.C. Interleukin-l? stimulates tyrosine hydroxylase activity in the median eminence. // Neuroreport.- 1994.-V.5.- P. 1356−1358.
  133. Ader Robert. Psychoneuroimmunology. University of Chicago Press, 2007- V.l.- 1269 p.
  134. Agnello D., Villa P., Ghezzi P. Increased tumor necrosis factor and interleukin-6 production in the central nervous system of interleukin-10-deficient mice. // Brain Res.- 2000.-V.869.- P. 241−243.
  135. Agnello D., Bigini P., Villa P. et al? Erythropoietin exerts an antiinflammatory effect on the CNS in a model of experimental autoimmuneencephalomyelitis. // Brain Res.- 2002.-V.952.- P. 128−134.
  136. Alicea C., Belkowski S., Eisenstein T.K., et al. Inhibition of primary murine macrophage cytokine production in vitro following treatment with the kappa-opioid agonist U50, 488H. //J. Neuroimmunol.- 1996.-V.64.- P.83−90.
  137. Allen R.D., Staley T.A., Sidman C.L. Differential cytokine expression in acute and chronic murine graft-versus-host-diseases. // Eur. J. Immunol.- 1993. V. -23. — № 2. -P. 333−337.
  138. Allolio B., Schulte H.M., Deuss U., et al. Effect of oral morphine and naloxone on pituitary-adrenal response in man induced by human corticotropin-releasing hormone. //Acta Endocrinol.- 1987.-V.114.- P. 509 514.
  139. Aloisi F., Borsellino G., Care A. et al. Cytokine regulation of astrocyte function: in-vivo studies using cells from the human brain. //Int. J. Dev. Neurosci.- 1995.-V.13.-N.3−4.- P. 265−274.
  140. Aloisi F., Penna J., Cerase J. et al. IL-12 production by central nervous system microglia is inhibited by astrocytes. //J. Immunol.- 1997.-V.159.-N.4.- P. 1604−1612.
  141. Amin A.H., Crawford T.B., Gaddum J.H. The distribution of .• substance P and 5-hydroxydryptamine in the central nervous system of thedog. //J. Physiol.- 1954, V. 126.- P. 596−618.
  142. Anden N.E., Dahlstrom A., Fuxe K., Larsson K., Olson L., Ungerstedt U. Ascending monoamine nervous to the telencephalon and diencephalon. //Acta Physiol. Scand.- 1966.-V. 67.-P. 313−326.
  143. Ando T., Dunn A.J. Mouse tumor necrosis factor-a increases brain tryptophan concentrations and norepinephrine metabolism while activating the HPA axis in mice. // Neuroimmunomodulation- 1999.-V.6.- P. 319−329.
  144. Anforth H.R., Bluthe R.M., Bristow A. et al. Biological activity and brain action of recombinant rat interleukin-1 alpha and interleukin-1 beta. //Eur. Cytokine Netw.- 1998.-V.9.-N.3.- P. 279−288.
  145. Anisman H., Kokkinidis L., Merali Z. Interleukin-2 decreases accumbal dopamine efflux and responding for rewarding lateral hypothalamic stimulation.//Brain Res.- 1996.-V.731.-P. 1−11.
  146. Anisman H., Ravindran A.V., Griffiths J., Merali Z. Endocrine and cytokine correlates of major depression and dysthymia with typical or atypical features. //Mol. Psychiatiy.- 1999.-V.4.- P. 182−188.
  147. Anisman H., Merali Z., Poulter M.O., Hayley S. Cytokines as a precipitant of depressive illness: animal and human studies. // Curr. Pharm. Des.- 2005.-V.11.-N.8.- P. 963−972.
  148. Antelman S.M., Caggiula A.R. Norepinephrine-dopamine interaction and behavior. //Science.- 1977.-V. 195.- P. 648−653.
  149. Asnis G. M., De la Garza R. 2-nd, Kohn S. R. et al. IFN-induced depression: a role for NSAIDs. //Psychopharmacol. Bull.- 2003.-V. 37.-N.3.-P. 29.
  150. Azmitia E.C. Modern views on an ancient chemical: serotonin effects on cell proliferation, maturation and apoptosis. //Brain Research Bull.- 2001.-V. 56.- N. 5.- P. 413−424.
  151. Anisman H., Merali Z. Cytokines, stress and depressive illness: brain-immune interactions. // Ann. Med.- 2003.- V. 35. N. 1.- P. 2−11.
  152. Araujo D.M., Lapchak P.A., Collier B., Quirion R. Localization of interleukin-2 immunoreactivity and interleukin-2 receptors in the rat brain: Interaction with the cholinergic system. // Brain. Res.- 1989.-V.498.- P. 257 266.
  153. Badie B., Schartner J., Vorpahl J., Preston K. Interferon-gamma induces apoptosis and augments the expression of Fas and Fas ligand by microglia in vitro. //Exp. Neurol.- 2000.-V. 162.-N.2 2. P. 290−296.
  154. Ban E., Haour F., Lenstra R. Brain interleukin-1 gene-expression induced by peripheral lipopolysaccharide administration. //Cytokine.- 1992.-V.4.- P. 48−54.
  155. Ban E., Sarlieve L., Haour F. Interleukin-1 binding sites on astrocytes. //Neuroscience.- 1993.-V.52.-N.3.- P. 725−733.
  156. Bandler Richard, Grinder John. Frogs into Princes: Neuro Linguistic Programming. Real People Pr., 1979.- 194 p.
  157. Banks W.A., Kastin A.J., Broadwell R.D. Passage of cytokines across the blood-brain barrier. //Neuroimmunomodulation.- 1995.- V. 2.- N.4.- P. 241−248.
  158. Banks W.A., Kastin A J., Durham D.A. Bidirectional transport of interleukin-1 alpha across the blood brain barrier. //Brain Res. Bull.- 1989.-V.23.- P. 433−437.
  159. Baraban J.M., Aghajanian G.R. Noradrenergic innervation^ of serotoninergic neurons in the dorsal raphe demonstration by electron microscopic autoradiography- //Brain Res.- 1981.-V-.204:-P. 1−11?.
  160. Barkhudaryan N., Dunn A.J. Molecular mechanisms of- actions of- interleukin-6 on the brain, with specials reference to serotonin and the hypothalamo-pituitary-adrenocortical axis. //Neurochem. Res.- 1999.-V.24.-P: 1169−1180. -
  161. Benveniste E.N., Sparacio S.M., Norris J.G., Grenett HE., Fuller G.M. Induction and regulation of interleukinT6 gene expression in rat astrocytes. // J- Neuroimmunol.- 1990--V.30.- P. 201−212.
  162. Berrettini W.H., Alexander R., Ferraro T.N., Vogel W.H. A study of oral morphine preference in inbred mouse strains. // Psychiatr. Genet.- 1994. -Vol. 4. N.2.-P. 81−86.
  163. Berridge C.W., Dunn A.J. A corticotropin-releasing factor antagonist reverses the stress-induced changes of exploratory behavior in mice. //Horm. Behav.- 1987.-V.21.-N.3.- P. 393−401.
  164. Blier P, Szabo S.T., Haddjeri N., Dong J. Properties of noradrenergic neurons: //lilt: Ji Neuropsychopharmacolbgy.- 2000: — V. 3* suppK 1.- P! 36:
  165. Bluthe--. Ri. M, Bristow A,. Mestage- Ji. ef all, central- injections of. interleukin-13 potentiates LPS-induced sickness behavior in rats. //Neuroreport.- 2001 .-V. 12.-N. 18.- P. 3979−3983.
  166. Bluthe, R. M., B. Michaud, K. W. Kelley, R. Dantzer. 1996. Vagotomy attenuates behavioural effects of interleukin-1 injected peripherally but not centrally. //Neuroreport.- V. 7.- P. 1485.
  167. Boehme R.E., Ciaranello R.D. Genetic control of dopamine and serotonin receptors in brain regions of inbred mice. //Brain Res.- 1982.-V.266.- P. 51−65.
  168. Bogdanski D.F., Udenfriend S. Serotonine and monoamine oxidase in. brain. // J. Pharmacol, and Exp. Therap.- 1956.- V. 116.- P. 7−8.
  169. Borowski T., Kokkinidis L., Merali Z., Anisman H. Lipopolysaccharide, central in vivo biogenic amine variations, and anhedonia. // Neuroreport.-1998. -V. 9. -N. 17. P. 3797−3802.
  170. Brebnen K., Hayley S., Zacharko R. et al. Synergistic effects of interleukin-1, interleukin-6, and tumor necrosis factor- central monoamine, corticosterone, and behavioral variations. // Neuropsyhopharmacol.- 2000. -Vol. 22. N. 6. — P. 566−586.
  171. Bret-Dibat J.L., Bluthe R.M., Kent S. et al. Lipopolysaccaride and interleukin-1 depress food-motivated behavior in a vagal-mediated mechanism. //Brain Behav. Immun.- 1995.-V. 9.-N.3.-P. 242.
  172. Brines M., et al., Erythropoietin mediates tissue protection through an erythropoietin and common P-subunit heteroreceptor. // PNAS.- 2004. -V.101.-N.41.-P. 14 907−14 912.
  173. Brines M.L., Ghezzi P., Keenan S. et al. Erythropoietin crosses the blood-brain barrier to protect against experimental brain injury. //. Proc. Natl. Acad. Sci. U S A.- 2000.-V.97.-P. 10 526−10 531.
  174. Brooks S.P., Pask T., Jones L., Dunnett S.B. Behavioural profiles of inbred mouse strains used as transgenic backgrounds. II: cognitive tests. // Genes Brain Behav.- 2005.- V.4.-N.5.- P. 307−317.
  175. Budarf M., Huebner K., Emanuel B. et al. Assignment of the erythropoietin receptor (EPOR) gene to mouse chromosome 9 and human chromosome 19. //Genomics.- 1990.-V.8.- P. 575−578.
  176. Buemi M., Cavallaro E., Floccari F. et al. Erythropoietin and the brain: from neurodevelopment to neuroprotection. // Clinical Science.- 2002.-V.103.- P. 275−282.
  177. Breder C.D., Tsujimoto M., Terano Y. et al. Distribution and characterization of tumor necrosis factor-alpha-like immunoreactivity in the murine central nervous system. // J. Comp. Neurol. -1993. -V. 337.- N24.-P. 543−567.
  178. Cabib S. Strain-dependent behavioural sensitization to amphetamine: role of environmental influences. //Behav. Pharmacol.- 1993.-V.4.- P. 367 374.
  179. Cabib S., Algeri S., Perego C., Puglisi-Allegra S. Behavioral and biochemical changes monitored in two inbred strains of mice during exploration of an unfamiliar environment. // Physiol, and Behav.- 1990. -V. 47.-N. 4.-P. 749−753.
  180. Caferov F. Motivasyon ve emosiyanel reaksiyonlarin duzenlenme mekanizmalarinda opiod peptidlerin rolu. Abstracts of 25 th Congress of the Turkish Physiological Society. Turkiye, Elazig, 1999.- P. 149.
  181. Campbell B.M., Merchant K.M. Serotonin 2C receptors within the basolateral amigdala induce acute fear-like responses in an open-field environment. //Brain Res.- 2003.-V.993.-N. 1−2.- P. 1−9.
  182. Chao C.C., Molitor T. W, Close K., ef alt Morphine- inhibits-:the release of tumor necrosis factor in human peripheral blood mononuclear cell culture.//^Pharmacol, Exp- Ther.- 1992:-?.262:-PI 19−24t
  183. Chesler D.A., Reiss C.S. The role of IFN-gamma- in immune. responses to viral infections of the central nervous system. //Cytokine
  184. Growth Factor Rev.- 2002.-V.13.- P. 441−54.
  185. Chikuma M., Masuda S., Kobayashi T. et al. Tissue-specifc regulation of erytliropoietin production in the murine kidney, brain and uterus. // Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab-- 2000.-V.279.- P. 1242−1248.
  186. Chomczynsky P., Sacchi N. Single-stop method of RNA isolation by acid guanidinum-phenol-chloroform extraction. //Analyt. Biochem-- 1987. -V. 162.-P. 156−159.
  187. Chung I.Y., Benveniste E.N. Tumor necrosis factor alpha production by astrocytes: Induction by lipopolysaccharide, interferon gamma and interleukin 1 beta. //J. Immunol.-1990.-V.144.- P. 2999−3007.
  188. Clare B.J., Hines D.J., Hamilton D.A., Whishaw Q. Movements of exploration intact in rats with hippocampal lesion. //Beh. Brain Res.-2005.-V.163.-N.1.- P. 91−99.
  189. Cloninger C.B., Adolfsson R, Svrakic NM. Mapping genes for human personality. //Nat. Genet.- 1996.-V. 12.- P. 3−4.
  190. Colotta F., Re F., Muzio M., et al. Interleukin-1 type II receptor: a decoy target for IL-1 that is regulated by IL-4. // Science.- 1993.-V.261.- P. 472−475.
  191. Connor T.J., Brewer C., Kelly J.P., Harkin A. Acute stress suppresses pro-inflammatory cytokines TNF-alpha and IL-1 beta independent of a catecholamine-driven increase in IL-10 production. // J. Neuroimmunol.2005. -V.159.-N.1—2.- P. 119−128.
  192. Connor T.J., Leonard B.E. Depression, stress and immunological activation: the role of cytokines in depressive disorders. // Life Sci.- 1998.-V.62.- P. 583−606.
  193. Conran R.M., Nickelson P.A. Brain: distribution, regulation, and relationship to sites of IL-1-induced cellular activation. // Am. J. Anat.-1982. V. 164. — N.2. — P. 133−143.
  194. Constam D.B., Philipp J., Malipiero U.V., ten Diejke P., Schachner M., Fontana A. Differential expression of transforming growth factor beta 1, 2, and 3 by glioblastoma cells, astrocytes and microglia. // Immunol.- 1992.-V.148.-P. 1404−1410.
  195. Cooper A.L., Brouwer S., Hopkins S J., Luheshi G.N., Turnbull A.V., Rothwell N.J. Tumour necrosis factor-a and fever after peripheral inflammation in the rat. //Am. J. Physiol. (Regulatory Integrative Comp. Physiol.).- 1994.-V.36.-P. 1431−1326.
  196. Cremona S., Goujon E., Kelley K.W. et al. Brain typel but not type II IL-1 receptors mediate the effects of IL-1 beta on the behavior in mice. //Am. J. Physiol.- 1998.-V.274.-3 Pt2.- P. 735−740.
  197. Crestani F., Seguy F., Dantzer R. Behavioural effects of peripherally injected interleukin-1: role of prostaglandins. // Brain Res.-1991.-V.542.-N.2.- P. 330−335.
  198. Dahlstrom A., Fuxe K. Evidence for the existence of monoaminecontaining neurons system. 1. Demonstration of monoamines in the cell bodies of brain stem neurons. //Acta Physiol. Scand.- 1964.-V. 62.-Suppl. 32.-P. 1−5.
  199. Dantzer R. Expression and action of cytokines in the brain: mechanisms and and pathophysiological implications. // In: Psychoneuroimmunology (4-th ed.). San Diego (Ca): Elsevier Academic Press (ed. Ader R.), 2007.-V.1.- P. 271−280.
  200. Dantzer R. Cytokine-induced sickness behavior: a neuroimmune response to activation of innate immunity. // Eur. J. Pharmacol.- 2004. V. 500.-N. 1−3.-P. 399−411.
  201. Dantzer, R. Cytokine-induced sickness behavior: mechanisms and implications.//Ann. NY Acad. Sci.- 2001.-V.933.- P. 222.
  202. Dantzer R., Auhert A., Bluthe R.M. et al. Mechanisms of the behavioural effects of cytokines. // Adv. Exp. Med. Biol.- 1999. -V. 461.- P. 83−105.
  203. Dantzer R., Bluthe R. M., Cheusi G. et al. Molecular basis of sickness behavior. //Ann. N.Y. Acad. Sci.- 1998.-V.856. -P. 132−138.
  204. Dantzer R., Bluthe R. M., Laye S. et al. Cytokines and sickness behavior. // Ann. N. Y. Acad. Sci.- 1998.-V. 840.- P. 586.
  205. Dantzer R., Konsman J.P., Bluthe R. M., Kellew K.W. Neural and humoral pathways of communication from the immune system to the brain: parallel or convergent? // Auton. Neurosci.- 2000.-V.85.-N.1−3.- P. 60−65.
  206. Dantzer R., O’Connor J. C., Freund G. G., Johnson R. W., and Kelley K. W., From inflammation to sickness and depression: when the immune system subjugates the brain. // Nature Reviews Neuroscience.- 2008.-V. 9.-N. l.-P. 46−56.
  207. Dantzer R., Wollman E.E. Relationships between the brain and the immune system. //J. Soc. Biol.- 2003.-V.197.-N.2.- P. 81−88.
  208. Dantzer R., Wollman E., Vitkovic L., Yirmiya R. Cytokines and depression: fortuitous or causative association? //Mol. Psychiatry.-1999.-V. 4.-P. 328−332.
  209. Dantzer R., Wollman E. E., Yirmiya R. Cytokines and depression: An update. //Brain, Behavior, and Immunity.- 2002.-V. 16.-N. 5.- P. 501−502.
  210. Dascombe M. J, Rothwell N. J, Sagay B. O, and Stock M.J. Pyrogenic and thermogenic effects of interleukin-1 in the rat. //Am. J. Physiol Endocrinol Metab.- 1989.-V. 256.- E7-E11.
  211. De Boer P., Enrico P., Wright J., et al. Characterization of the effect of dopamine D3 receptor stimulation on locomotion and striatal dopamine levels. //Brain Res.- 1997.-V.758.- P. 83−91.
  212. De La Garza R., Asnis G. M, Pedrosa E., et al. Recombinant human interferon-a does not alter reward behavior, or neuroimmune and neuroendocrine activation in rats. //Prog. Neuropsychopharmacol. Biol. Psychiat.- 2005.-V.29.- P. 781−792.
  213. De La Garza R., Asnis G.M. The non-steroidal anti-inflammatory drug diclofenac sodium attenuates IFN-a induced alterations to monoamine turnover in prefrontal cortex and hippocampus. // Brain Res.- 2003.-V. 977.-P. 70−79.
  214. Dentino A.N., Pieper C. Rao M.K. et al. Association of interleukin-6 and other biologic variables with depression in older people living in the community. // J. At. Geriatr. Soc.- 1999.-V. 4.-N.1.- P. 6.
  215. Dinarello C. Proinflammatory cytokines. // Chest.- 2000.- V. 118. -P. 503 508.
  216. Dinarello C.A. Interleukin-I, interleukin-I receptors and inlerleukin-I receptor antagonist. // Int. Rev. Immunol.- 1998. -V. 16.- №. 5, 6. P. 457 499.
  217. Dovedova E.L., Gershtein L. Neurochemical peptides under the conditions of experimental injury. //Neurochem. Internat.- 1992.-V. 21.- P. 86- 92.
  218. Dunn A.J. Effects of cytokines and infections on brain neurochemistry. // Clin. Neurosci. Res.- 2006.-V. 6.-N.1−2.- P. 52−68.
  219. Dunn A.J., Antoon M., Chapman Y. Reduction of exploratory behavior by intraperitoneal injection of interleukin-1 involves brain corticotropin-releasing factor. // Brain Res. Bull.- 1991.- V.26.-N.4.- P. 539 542.
  220. Dunn A. J, Chuluyan H. The role of cyclo-oxygenase and. lipoxygenase in the interleukin-1-induced activation of the HPA axis: dependence on the route of injection. //Life Sci.- 1992.-V. 51.- P. 219−225.
  221. Dygalof NN., Shishkina G.T. Genetic variations of noradrenaline synthesis- and' reception in the mouse braun and the animal behavior in the new enviroment:. //Ross. EiziolL Zh: im? UM! Sechenova: — 1999. W-85>N: 1 .P. 105−109.
  222. Ebstein R.P., Novick O., Umansky R. et al. Dopamine D4 receptor (D4DR)texon HI! polymorphism" associated’with.the human? personalitytraitof novelty seeking. //Nat. Genet: — 1996:-V. 12.- P. 78−80-
  223. Edwards DJ., Sorisio D.A., Knopf S. Effects of the ?2-adrenoceptor agoni st clenbuterol on tyrosine and tryptophan in plasma and brain of the rat. // Biochcm. Pharmacol.- 1989.-V.38.- P. 2957−2965.
  224. Ek M, Kurasawa M-, Lundeberg E., Ericsson A. Activation: of vagal afferents after intravenous injection1 of interleukin-1 beta: role of endogenous prostaglandins. // J. Neurosci.- 1998.-V.18.-N.22.- P: 9471.
  225. Elenkov I.J., Chrousos G.P. Stress hormones, proinflammatory and antiinflammatory cytokines, and autoimmunity. //Ann. N. Y. Acad. Sci.-2002. -V.966.- P. 290−303.
  226. Elenkov I J., Iezzoni D.G., Daly A., Harris A.G., Chrousos G.P. Cytokine dysregulation, inflammation and well-being. // Neuroimmunomodulation- 2005.-V.12.-N.5.- P. 255−269.
  227. Elenkov I.J., Wilder R.L., Chrousos G.P., Vizi E.S. The sympathetic nerve an integrative interface between two supersystems: the brain and the immune system. //Pharmacol. Rev.- 2000.-V.52.- P. 595−638.
  228. Erbayraktar S., Yilmaz O., Gokmen N. et al. Erythropoietin is a multifunctional tissue-protective cytokine. //Curr. Hematol. Rep.- 2003. -V. 2.- N. 6.- P. 465—470.
  229. Ericsson A., Liu C., Hart R.P., Sawchenko P.E. Type 1 interleukin-1 receptor in the rat. //J. Comp. Neurol.- 1995.-V.361.- P. 681−698.
  230. Falck B., Hillarp N., Thieme G., Torp A. Fluorescence of catecholamines and related compounds condensed with formaldehyde. //J. Histochem. Cytochem.- 1962.-V.10.- P. 348−354.
  231. Farrar W., Vinocour M., Hill J.M. In situ hybridization histochemistry localization of interleukin-3 mRNA in mouse brain. // Blood.-1989.-V.73.-P. 137−140.
  232. Farrell F., Lee A. The erythropoietin receptor and its expression in •' tumor cells and other tissues // Oncologist.- 2004. -V. 9. Suppl. 5.- P. 18−30.
  233. Fassbender K. Schneider S., Bertsch T. et al. Temporal profile of release of inlerleukin-I beta in neurotraurna. // Neurosci. Lett.- 2000- V. 28.- N. 3. P. 135−138.
  234. Felten S.Y., Felten D.L. The innervation of lymphoid tissue. Psychoneuroimmunology/ Ader R. et al (Eds.).- New York: Academic Press,•' 1991.-P.27−71.
  235. Fiore M., Alleva E., Probert Let al. Exploratory and displacement behavior in transgenic mice expressing high levels of brain TNF-alpha. //Physiol. Behav.- 1998.-V.63.-N.4.-P. 571−576.
  236. Fleshner M., Goehler LE., Hermann J., Relton J.K., Maier S.F., Watkins L.R. Interleukin-1 (3 induced corticosterone elevation and hypothalamic NE depletion is vagally mediated. //Brain Res. Bull.- 1995.-V.37.- P. 605−610.
  237. Friedman W.J. Cytokines regulate expression of the type 1 interleukin-1 receptor in rat hippocampal neurons and glia. //Exp. Neurol.-2001.-V.168.-N.1.- P. 32−31.
  238. Friedman H., Newton C., Klein Th.W. Microbial infections, immunomodulations, and drug abuse. //Clin. Microbiol. Rev.- 2003.-V. 16.-N.2.-P. 209−219.
  239. Frischknecht H.R., Siegfried B., Waser P.G. Opioids and behavior: genetic aspects. // Experientia- 1988. -V. 44.-N. 6. P.473−481.
  240. Frommberger U.H., Bauer J., Haselbauer P. et al. Interleukin- 6--• (1L-6) plasma levels in depression and schizophrenia: comparisonbetween the acute state and after remission. //Eur. Arch. I Psychiatry Clin. Neurosci.- 1997.-V.247.-N.4.- P. 228.
  241. Fuche B.A., Pruett S.B. Morphine induces apoptosis in murine thymocytes in vivo but not in vitro: involvement of both opiate and glucocorticoid receptors. //J. Pharmacol. Exp. Ther.-1993.-V.266, — P. 417 423.
  242. Fuxe K. Evidence for the existence of monoamine neurons in the central nervous system. The distribution of monoamine terminals in the central nervous system. //Acta Physiol. Scand.- 1965.-V. 64.- Suppl. 247.- P. 37−85.
  243. Fuxe K., Hokkfelt T., Jonsson J., Jonsson G., Lidbrink P., Ljungdahl A. The origin of the dopamine nerve terminals in limbic and a frontal cortex. Evidence for mesocortico-dopamine neurons. //Brain Res.- 1974.-V. 72.- P. 349−355.
  244. Gaillard R.C. Interaction between the immune and neyroendocrine systems: clinical implications. //J. Soc. Biol.- 2003.-V.197.-N.2.- P. 89−95.
  245. Gamero A.M., Oppengeim J.J. IL-1 can act as number one. //Immunity- 2006.-V.24.-N.1.- P. 16−17.
  246. Gasanov G.G., Melikov E.M. Relay function of hippocampal monoamines in acquired and inborn forms of behavior. //Sov. Scientific Reviews Section.- 1991.-V.5.- part 2.- P. 1−41.
  247. Gayle D., Ilyin S.E., Plata-Salaman C.R. Feeding status and bacterial LPS-induced cytokine and neuropeptide gene expression in hypothalamus. //AJP-Regul. Integr. Comp. Physiol.- 1999.-V.277.-N.4.- P. R1188-R1195.
  248. Goddyn H., Leo S., Meert Th., D’Hooge R. Differences in behavioural test battery perfomance between mice with hippocampal andcerebellar lesion. //Beh. Brain Res.- 2006.-V.173.-N.l, 2.- P. 138−147.
  249. Gordon S., Anderson P.-B., Lawson L., et al. Differentiation and activation of macrophages and microglia in the nervous system. // Discuss. Neurosci.- 1993. -V.19.- N.3−4. P. 69−73.
  250. Gosselin D., Rivest S. Role of IL-1 and TNF in the brain: twenty years of progress on a Dr. Jekyll/Mr. Hyde duality of the innate immune system. //Brain, Behav., and Immun.- 2007.-V.21.-N.3.- P. 281−289.
  251. Gottesmann C. The neurochemistry of waking and sleeping mental activity: The disinhibition-dopamine hypothesis. //Psychiatry and Clinical
  252. Neurosciences.- 2002.-V.56.- P. 345−354.
  253. Grailhe R., Waeber Ch., Dulawa S.C., et al. Increased exploratory activity and altered response to LSD in mice lacking the 5-HT5a receptor. //Neuron.- 1999.-V.22.-N.3.-P. 581−591.
  254. Grimm M.C., Ben-Baruch A., Taub D.D., et al. Opiates transdeactivate chemokine receptors: delta and mu opiate receptor-mediated heterologous desensitization. III. Exp. Med.- 1998.-V. 188.- P. 317−325.
  255. Gromova E.A. Monoaminergic brain systems and their role in the regulation of behaviour. //Sov. Sci. Rev. F. Gen. Biol.- 1988.-V. 2.- P. 679 730.
  256. Gruol D.L., Nelson T.E. Physiological and pathological roles of interleukin-6 in the central nervous system. //Moi. Neurobiol.- 1997.-V.15.-N.3.-P. 307−339.
  257. Guilan D., Baker T.J., Shih L-CN, Lachman L.B. Interleukin 1 of the central nervous system is produced by amoeboid microglia. // Exp. Med.-1986.-V.164.-P. 594−604.
  258. Gutierrez E.C., Banks W.A., Kastin A.J. Murine tumor necrosis factor-alpha is transported from blood to brain in the mouse. //Neuroimmunol.- 1993 .-V. 47.- P. 169−176.
  259. HanischU.K. Microglia as a sourse and target of cytokines.//Glia.2002.-V.40.-N.2.- P. 140−155.
  260. Hanisch U.K., Qurion R. Interleukin-2 as a neuroregulatory cytokine. // Brain Res. Brain Res. Rev.- 1995.-V.21.- P. 246−284.
  261. Hanisch U.K., Prinz M., Angstwurm K. et al. The protein tyrosine kinase inhibitor AG 126 prevents the massive microglia cytokine induclion by pneumococcal cell walls. // Eur. J. Immunol.- 2001.- V.- 31.- N.7. P. 2104−2115.
  262. Hashimoto M., Ishikawa Y., Yokota S. et al. Action site of circulating interleukin-1 on the rabbit brain. //Brain Res.- 1991.- V. 540. P. 217−223.
  263. Hayley S., Brebner K., Lacosta S., Merali Z., Anisman H. Sensitization to the effects of tumor necrosis factor-a: neuroendocrine, central monoamine, and behavioral variations. // J.Neurosci.- 1999.-V.19.- P. 5654−5665.
  264. Haugen P.K., Letourneau P.C. Interleukin-2 enhances chick and rat sympathetic, but not sensory, neurite outgrowth. // J. Neurosci. Res.- 1990.-V.25.- P. 443−452.
  265. Hayley S., Brebner K., Lacosta S. et al. Sensitization 10 to the effects of tumor necrosis factor-alpha: neuroendocrine, central monoamine and behavioral variations. // J. Neurosci.- 1999.- V. 19.- N. 13. P. 56 545 665.
  266. Hebb A.L., Zacharko R.M., Anishman H. Self-stimulation from the mesencephalon following intraventricular interleukin-2 administration.• //Brain Res. Bull- 1998.-V.45.- P. 549−556.
  267. Heijnen C.J. Receptor regulation in neuroendocrine-immune communication: current knowledge and future perspectives. //Brain, Behav.-and Immunity.- 2007.-V.21.-N.1.- P. 1−8.
  268. Hellerstein M. K, Meydani S.N., Meydani M., Wu K., Dinarello C.A. Interleukin-1 -induced anorexia in the rat. Influence of prostaglandins. // J. Clin. Invest.- 1989.-V.84.- P. 228−235.
  269. Heppner F.L., Prinz M., Aguzzi A. Pathogenesis of prion diseases: possible implications of microglial cells. // Prog. Brain. Res.- 2001. V. 132.-P. 737−750.
  270. Hernandez M.C., Florwes R.L., Bayer B.M. Immunosupression by morphine is mediated by central pathways. // J. Pharmacol. Exper. Ther.-1993.-V.267.-P. 1336−1341.
  271. Heiringa R.J., Mackenrodt D.B., Barlow J.B. et al. Corticotropin-releasing factor (CRF), but not corticosteron, increases basolateral amigdala CRF-binding protein. //Brain Res.- 2006.-V.1083.-N.1.- P. 21−28.
  272. Hickey WF. Leukocyte traffic in the central nervous system: the participants and their roles. //Semin. Immunol.- 1999.-V.11.- P. 125−137.
  273. Hillhouse E.W., Mosley K. Peripheral endotoxin induces hypothalamic immunoreactive interleukin-1 p in the rat. //Brit. J. Pharmacol.- 1993.-V. 109.-P. 289−290.
  274. Hirsch E., Filipovich Y., Mahendroo M. Signaling via the type IIL-1 and TNF receptors is necessary for bacterially induced preterm labor in amurine model. //Am. J. Obstet. gynecol.- 2006.-V.194.-N.5.- P. 1334−1340.
  275. Hofman F. M., Hanwehr R.I., DinarelloC. A. et al. Immunoregulatury molecules and IL-2 receptors identified in multiple sclerosis brain. // J. Immunol.- 1986.- V. 8. N 11. — P. 3239−3245.
  276. Hoffinan K.E., Maslonek K.A., Dykstra L.A., Lysle D.T. Effect of central administration of morphine on immune status in Lewis and Wistar rats. //Adv. Exp. Med. Biol.- 1995.-V. 373.- P. 155−159.
  277. Hopkins S.J. Central nervous system recognition of peripheral inflammation: a neural, hormonal collaboration. //Acta Biomed.- 2007.-V.78.-N.1.- P. 231−247.
  278. Hughes T. K., Cadet P., Rady P. L., Tyring S. K., Chin R., and Smith E. M. Evidence for the production and action of interleukin-10 in pituitary cells.//Cellular and Molecular Neurobiology.- 1994.-V. 14.-N. l.-P. 59−69.
  279. Hurwitz A.A., Lyman W.D., Guida M.P., Calderon T.M., Berman J.W. Tumor necrosis factor alpha induces adhesion molecules expression on human fetal astrocytes. // J. Exp. Med.- 1992.-V.176.- P.1631−1636.
  280. Ilion S.E., Gayle D., Gonzalez-Gomez I. et al. Brain tumor development in rats is associated with changes in central nervous system cytokine and neuropeptide systems. // Brain Res. Bull.- 1999.- V. 48. -N. 24.- P. 363−373.
  281. Inagaki S., Kitos S. Peptides in the peripheral nervous system. // Progr. Brain Res.- 1986.- V. 66.- P. 269−316.
  282. Ishizuka Y., Ishida Y, Kunitake T., et al. Effects of area postrema lesion and vagotomy on interleukin-1 j3-induced norepinephrine release in the hypothalamic paraventricular nucleus region in the rat. //Neurosci. Lett.-1997.- V. 223.- P. 57−60.
  283. Johansson C.B., Momma S., Clarke D.L., et al. Identification of a neural stem cell in the adult mammalian central nervous system. // Cell.-1999.- V. 96. -N. 21. P. 25−34.
  284. Jones S.L., Nation J.R., Massad P. Immunization against learned helplessness in man. // J. Abnormal Psychology.- 1977.- V.86.- P. 75−83.
  285. Justice B. Evidence of psychosocial influence in disease onset. //The • Cancer Bulletin.- 1986.- V. 38.- P. 241−244.
  286. Juul S.E., McPherson R.J., Farrell F.X. et al. Erythropoietin concentration in cerebrospinal fluid of nonhuman primates and fetal sheep following high-dose recombinant erythropoietin. //Biol. Neonate.- 2004.- V. 85.-P. 138−144.
  287. Juul S.E., Stallings S.A., Christensen R.D. Erythropoietin in the cerebrospinal fluid of neonates who sustained CNS injury. // Pediatr. Res.-1999.- V. 46.-N.5.- P. 543−547.
  288. Kabiersch A., del Rey A., Honegger C. G, Besedovsky H. Interleukin-1 induces changes in norepinephrine metabolism in the rat brain. // Brain Behav. Immun.- 1988.- V.2.- P. 267−274.
  289. Kadiiski D., Svetoslavova M., kristov I., Losev B. Interrelation between cells of the nervous and immune systems in vitro. //Morfologia.-2001 .-V. 119.-N.2.- P. 29−32.
  290. Kafkafi N., Benjamini Y., Sakov A., Elmer G. I, Golani I. Genotype-environment interactions in mouse behavior: a way out of the problem. //Proc. Natl. Acad. Sci. U S A.- 2005.- V.102.-N.12.- P. 4619−4624.
  291. Kamata M., Higuchi H., Yoshimoto M., Yoshida K., Shimizu T. Effect of single intracerebroventricular injection of a-interferon on monoamine concentrations in the rat brain. // Eur. Neuropsychopharmacol.-2000.-V. 10.-P. 129−32.
  292. Kamegai M., Niijima K., Kunishita T., Nishizawa M., Ogawa M., Ueki A., Konishi T., Tabira T. Interleukin-3 as a trophic factor for central colinergic neurons in vitro and in vivo. // Neuron., 1990.-V.4.-P.429−436.
  293. Kapur Sh. Psychosis as a state of aberrant salience: A framework linking biology phenomenology and pharmacology in schizophrenia. // Am. J. Psychiatry.-2003.-V. 160.-P. 13−23.
  294. Kaur D., Cruess D.F., Potter W.Z. Effect of IL-la on the release of norepinephrine in rat hypothalamus. //J. Neuroimmunol.- 1998.- V.90.- P. 122−127.
  295. Kinouchi K., Brown G., Pasternak G., Donner D.B. Identification and characterization of receptors for tumor necrosis factor-a in the brain. // Biochem Biophys Res Gommun.-1991.-rV. 181.- P. 1532−1538-
  296. Kirby S-,. Cook D., Walton W., et al. Proliferation of multipotent hematopoietic cells controlled by truncated erythropoietin receptor transgene. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA.- 1996. V. 93.- N18.- P. 9402−9407.
  297. Konsman J.P., Parnet P., Dantzer R. Cytokine-induced sickness. behaviour: mechanisms and implications. //Trends Neurosci: 2002: -V.25.-N. 2 3--P. 154−159.
  298. Konsman J.P., Tridon V., Dantzer R. Diffiision and action of intracerebroventricularly injected interleukin-1 in the CNS. //Neurosci.-2000.-V.101.-N.4.-P. 957−967.
  299. Kopniczky Z., Dochnal R., Macsai M et al. Alteration of behavior and spatial learning after unilateral entorhinal ablation of rats. //Life Sci.- 2006.-V.78.-N.23.- P. 2683−2688.
  300. Koury M.J., Bondurant M.C. The molecular mechanism of erythropoietin action. // Eur. J. Biochem.- 1992. V.15. — N. 210.-N.3.-P. 649−663.
  301. Krause M., Gwozdz B., Steplewski L., Pogorzelska T. Zdolnose do wytwarzana odruchow warunkowich a metabolism amin katecholowych w mozgowin. //Acta Physiol. Polon.- 1970.- V. 20.-P. 741−748.
  302. Krieger D.T. Brain peptides: What, Where and Why? //Science.-1987.- V. 222.- P. 975−982.
  303. Kubota L., Fang J., Kushlkata 1., Krueger J. M. Interleukin-13 and transforming growth factor-beta 1 inhibit spontaneous sleep in rabbits. //Am. J. Physiol. Regul. Integr. Physiol.- 2000.- V. 279.-N.3.- R786.
  304. Kumai T.T.T., Tanaka M., Watanabe M., Shimizu H., Kobayashi S. Effect of interferon-alpha on tyrosine hydroxylase and catecholamine levels in the brain of rats. // Life Sci.- 2000.- V.67.- P. 663−669.
  305. Kurtz A., Eckardt K.U., Tannahill L. et al. Regulation of erythropoietin production. // Contrib. Nephrol.- 1988.-N. 66. P. 1−16.
  306. Kushikata L., Fang J., Krueger J. M. Interleukin-10 inhibits spontaneous sleep in rabbits. // J. Interferon Cytokine Res.- 1999.- V.19.-N.9.-P. 1025- 1066.
  307. Kushikata T., Earac J., Wang Y., Kruexer J. M. Interleukin-4 inhibits • spontaneous sleep in rabbits. //Am. J. Physiol.- 1998.- V.275.-N.4.-Pt. 2.1. R185.
  308. Kusnecov A.W., Liang R., Shurin G. T-lymphocyte activation increases hypothalamic and amigdaloid expression of CRF mRNA and emotional reactivity to novelty. //J.Neuroscience.- V.19.-N.11.- P. 45 334 543.
  309. Kwamme E. Peptide formation with relation to brain. // Vopr. Biokhim. Mozga.- 1978.- V. 13.- P. 177−188.
  310. Kalyoncu O. A., Tan D., Mirsal H. et al. Major depressive disorder with psychotic features induced by interferon-alpha treatment for hepatitis C in apolydrug abuser. //J. Psychopharmacol.- 2005.- V. 19.-N.1.- P. 102.
  311. Konsman J.P., Lubeshi G.N., Bluthe R.M., Dantzer R. The vagus nerve mediates behavioural depression, but not fever, in response to periferal immune signals- a functional anatomical analysis. //Eur. J. Neurosci.- 2000.-V.12.-N.12.- P. 4434−4446.
  312. Lacosta S., Merali Z., Anisman H. Influence of interleukin-1 beta on exploratory behaviors, plasma ACTH, corticosterone, and central biogenic amines in mice. // Psychopharmacol.- 1998.- V. 137 .- N.24.- P. 351−361.
  313. Lanfumey L., Adrien S. Adartive changes of p -adrenergic receptors after neonatal locus coeruleus lesion: regulation of serotoninergic unit activity. //Synapse.- 1988.- V. 2.- P. 644−649.
  314. Lapchak P.A., Araujo D.M., Quirion R., Beaudet A. Immunoautoradiographic localization of interleukin 2-like immunoreactivityand interleukin 2 receptors (Tac antigen-like immunoreactivity) in the rat brain.//Neuroscience.- 1991.-V.44.-P. 173−184.
  315. Lapchak P.A., Araujo D.M. Interleukin-2 regulates monoamine and opioid peptide release from the hypothalamus. //Neuroreport.- 1993.- V.4.-P. 303−306.
  316. Lapchak P.A. A role for interleukin-2 in the regulation of striatal dopaminergic function. //Neuroreport.- 1992.- V. 3.- P. 165−168.
  317. Larson S.J., Dunn AJ. Behavioral effects of cytokines. //Brain Behav. Immun.- 2001.-V.15.-N.4.- P. 371−387.
  318. Larson S.J. Sussan J. Behavioral and motivational effects of immune system activation. II J. Gen. Psychol.- 2002. — V. 129. -N.4.- P. 401−414.
  319. Laye S., Goujon E., Combe C. et al. Effects of lipopolysaccharide and glucocorticoids on expression of interleukin-1 beta converting enzyme in the pituitary and brain of mice. // J. Neuroimmunol.- 1996.- V. 68. N. 1, 2.- P. 61−66.
  320. Laye S., Parnet P., Goujon E., Dantzer R. Peripheral administration o lipopolysaccharride induces the expression of cytokine transcripts in the brain and pituitary of mice. //Mol. Brain Res.- 1994.-V.27.- P. 157−162.
  321. Ledeboer A., Breve J.J.P., Wierinckx A. et al. Expression and regulation of interleukin-10 and interleukin-10 receptor in rat astroglial and microglial cells. // European Journal of Neuroscience.- 2002.- V. 16.- N. 7.-P. 1175−1185.
  322. Lenard N.R., Gettys T.W., Dunn A.J. Activation of p2- and |33-adrenergic receptors increases brain tryptophan. // J. Pharmacol. Exp. Ther.-2003.-V.305.-P. 653−659.
  323. Lepicard E.M., Joubert C., Hagneau I., et al. Differences in anxiety-related behavior and response to diazepam in Balb/cByJ and C57B1/6J strains of mice. //Pharmacol. Biochem. Behav.- 2000.-V.67.-N.4.- P. 739−748.
  324. Levitt P., Moore R.Y. Noradrenaline neuron innervation of the neocortex in the rat. //Brain Res.- 1978.- V. 139.- P. 219−231.
  325. Liboi E., Carroll M., D’Andrca A., et al. Erythropoietin receptor signals botli proliferation and erythroid-specific differentiation. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA.- 1993.-V. 90.- N 23.- P. 11 351−11 355.
  326. LibermanA.P., Pitha P.M., Shin H.S., Shin M.L. Production of tumor necrosis factor and other cytokines by astrocytes stimulated with lipopolysaccharide or a neurotropic virus. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA.-1989.-V.86.- P. 6348−6352.
  327. Lidov H.G.W., Rice F.L., Molliver M.E. The organization of the chatecholamine innervation of somatosensory cortex: the barrel field of the mouse. //Brain Res.- 1978.-V. 153.- P. 557−584.
  328. Liu T., Clark R.K., Young P.R., White R.F., Barone E.G., Feuerstein G.Z. Tumor necrosis factor-alpha expression in ischemic neurons. // Stroke.-1994.-V.25.-P. 1481−1488.
  329. LyonsaA., McQuillana K., Deighana B.F. et al. Decreased neuronal CD200 expression in IL-4-deficient mice results in increased neuroinflammation in response to lipopolysaccharide. //Brain, Behavior and Immunity.-2009.-V. 23.-N.7.-P. 1020−1027.
  330. Lysle D.T., Hoffman K.E., Dykstra L.A. Evidence for the involvement of the caudal region of the periaqueductal grey in a subset of morphine-induced alteration in the immune status. // J. Pharmacol. Exp. Ther.- 1996.-V.277.-P. 1533−1540.
  331. Luheshi G.N., Bluthe R.M., Rushforth D. et al. Vagotomy attenuates the behavioural but not the pyrogenic effects of interleukin-1 in rats. //Auton. Neurosci.-2000.-V.85.-N.1−3.-P. 127−132.
  332. Maes M., Vandooaeghe E., Ranjan R. et al. Increased serum in. terleukin-l-receptor-antagonist concentrations in major depression. //J.
  333. Affect. Disord.- 1995.- V.36 N. l-2.- P. 29.
  334. Maes M. Cytokines in major depression. //Biol. Psychiatry.1994.- V. 36.- N.7.- P. 498.
  335. Maier S.F., Watkins L.R. Intracerebroventricular interleukin-1 receptor antagonist blocks the enhancement of fear conditioning and interference with escape produced by inescapable shock. //Brain Res.1995.- V. 695.-P. 279−282.
  336. Maier S.F., Watkins L.R. Cytokines for psychologists: implications of. bidirectional immune-to- brain communications for understanding behavior, mood, and cognition. //Psychol. Rev.- 1998.-V.105.- P. 83−107.
  337. Malykh S., Ravich-Scherbo I. Genotypical dependence of the Movement-Related Brain Potentials.// In: Maturation of CNS and Evoked Potentials. Gallai V. (Ed), Amsterdam, Elsevier Science Publishers, 1986. P. 247−252.
  338. Mallo T., Alttoa A., Koiv K., et al. Rats with persistenly low or high exploratory activity: behaviour in tests of anxiety and depression, and extracellular levels of dopamine. //Behav. Brain Res.- 2007.-V.177.-N.2.- P. 269−281.
  339. Maness L.M., Kastin AJ., Banks H. A. Relative contributions of a CVO and the microvascular bed to delivery of blood-bone IL-I alpha to the brain. // Am. J. Physiol.- 1998.- V. 275. -N. 2. Pt. 1. — P. 207−212.
  340. Marler P., Hamilton W. J. Mechanisms of animal behavior. New. York, Wiley, 1966.- 771 p.
  341. Martinez F. O., Sica A., Mantovani A. et al. Macrophage activation and polarization.// Front Biosci.- 2008.- V.13.- P.453−461.
  342. Mayo-Michelson L., Young G.A. Effect of chronic morphine administration and naloxone on EEG, EEG power spectra, and associated behavior in two inbred rat strains. // Pharmacol. Biochem. Behav.- 1992. -V. 42.- N. 4.-P. 815−821.
  343. McCarthy L., Wetzel M., Sliker J.K., et al. Opioids, opioids receptors, and the immune response. //Drug Alcogol. Depend.- 2001.-V.62.- P. 111• 123.
  344. McKelvy J.F., Lin C.J., Chan L. Biosynthesis of brain peptides. //In: Brain peptides: a new endocrinology, Ed. By A.M. Gotto, et al. Amsterdam etc., Elsevier, North Holland Biomed. Press, 1979.- P. 183−196.
  345. McNamara R.K., Levant B.L., Taylor B., et al. C57B1/6 mice exibit reduced dopamine D3 receptor-mediated locomotor-inhibitory function relative to DBA/2J mice. //Neurosci.- 2006.-V.143.-N.1.- P. 141−153.
  346. Maslinska D. The cytokine network and interleukin-15 (IL-15) in brain development. //Folia Neuropathol.- 2001.-V.39.-N.2.- P. 43−47.
  347. Melik E., Babar-Melik E., Ozqunen T., Binokay S. Median raphe nucleus mediates forming long-term but not short-term contextual fear conditioning in rats. //Behavioral Brain Research.- 2000.-V.112.- P. 145−150.
  348. Mellon R.D., Bayer B.M. Evidence for central opioids receptors in the immunomodulatory effect of morphine: review of potential mechanism (s) of action.//J. Neuroimmunol.- 1998.-V.83.-P. 19−28.
  349. Mennini T., De Paola M., Bigini P. et al. Nonhematopoietic erythropoietin derivatives prevent motoneuron degeneration in vitro and in vivo. //Mol. Med.- 2006.-V.12.-N.7−8.- P. 153−160.
  350. Merali Z., Lacosta S., Anisman H. Effects of interleukin-lp and mild stress on alterations of norepinephrine, dopamine and serotonin neurotransmission: a regional microdialysis study. //Brain Res.-1997.-V.761.- P. 225−235.
  351. Meyers C.A. Mood and cognitive disorders in cancer patients receiving cytokine therapy. //Adv. Exp. Med. Biol.- 1999.-V.461.- P.75−81.
  352. Miller N.E. Some psychophysiological studies of motivation and of the behavioral effects of illness. // Bull. Brit. Psychol. Soc.- 1964.- V. 17.-P. 1−20.
  353. Minor T.R., Huang Q., Folley E.A. Cytokine-purine interactions in behavioral depression in rats. //Integrative Physiological and Behavioral Science.- 2003.- V. 38.- N.3.- P. 189−202.
  354. Myint A. M., Schwarz M J., Steinbusch H. W. M., Leonard B.E. Neuropsychiatry disorders related to interferon and interleukins treatment // Metab. Brain Dis.- 2009.-V.24.- P.55−68.
  355. Mizuno T., Sawada M., Marunouchi T., and Suzumura A. Production of interleukin-10 by mouse glial cells in culture. // Biochem. Biophys. Res. Comm.- 1994.-V.205.-P. 1907−1915.
  356. Mogensen J., Wortwein G., Plenge P., Mellerup E.T. Serotonin, locomotion, exploration, and place recall in the rat. // Pharmacol. Biochem. and Behav.- 2003.-V.75.-N.2.- P. 381−395.
  357. Mohankumar S.M.J., MohanKumar P. S, Quadri S.K. Specificity of interleukin-lp-induced changes in monoamine concentrations in hypothalamic nuclei: blockade by interleukin-1 receptor antagonist. //Brain Res. Bull.- 1998.-V.47.- P. 29−34.
  358. Montkowski A., Landgraf R., Y assouridis A. et al. Central administration of IL-1 reduces anxiety and induces sickness behavior in rats. //Pharmacol. Biochem. Behav.- 1997.-V. 58.- P. 329−336.
  359. Moreira T., Cebers G., Salehi M., WagnerA., Liljequist S. Impaired long-term habituation is dissociated from increased locomotor activity after• sensorimotor cortex compression. // Behavioural Brain Research.- 2006. -V. 167.-N.1.-P. 9−22.
  360. Morgane P., Jacobs M.S. Raphe projections to the locus coeruleus in the rat. // Brain Res. Bull.- 1979.-V. 4.- P. 519−534.
  361. Morice E., Denis C., Giros B., Nosten-Bertrand M. Phenotypic expression of the targeted null-mutation in the dopamine transporter gene varies as a function of the genetic background. // Eur. J. Neurosci.- 2004.-V. 20, — P. 120−126.
  362. Mosmann T.R., Cherwinski H. Bond M.W. et al. Two types of murine ' helper T cell clone. 1. Definition according to profiles of lymphokineactivities and secreted proteins. // J. Immunol.- 1986. -V. 136.- N. 7.- P. 2348−2357.
  363. Muller N. Role of cytokine network in the CNS and psychiatric disorders. //Nervenarzt.- 1997.-V.68.-N.1.- P. 11−20.
  364. Muller N., Ackenheil M. Psychoneuroimmunology and the cytokine action in the CNS: implications for psychiatric disorders. //Progr. Neuropsychopharmacol. Biol. Psychiatry.- 1998.-V. 22.- N.I.- P. 1−33.
  365. Murphy N.P., Lam H.A., Maidment N.T. A comparison of morphine-induced locomotor activity and mesolimbic dopamine release in C57BL6, 129Sv and DBA2 mice. // J. Neurochem.- 2001. V. 79. — N. 3. — P. 626−635.
  366. Nagai A., Nakagawa E., Choi H.B. et al. Erythropoietin and erythropoietin receptors in human CNS neurons, astrocytes, microglia, and oligodendrocytes grown in culture. // J. Neuropathol. Exp. Neurol.- 2001.-V.60.-N.4.-P. 386−392.
  367. Najjar V.A., Nishioka K. Tuftsin: a natural phagocytosis stimulating peptide. //Nature.- 1970.- V. 228.- P. 672−673.
  368. Nelovkov A., Areda T., Innos J., et al. Rats displaing distinct exploratory activity also have different expression pattern of gamma-amonibutyric acid and cholecystokinin-related genes in brain regions. //Brain Res.- 2006.-V. 1100.-N. 1.- P. 21−31.
  369. Nieoullon A., Cjquerel A. Dopamine: a key regulator to adapt action, emotion, motivation and cognition.//Curr. Opin. Neurol.- 2003.-V.16.-N.2.-P. 3−9.
  370. Nishioka K., Constantopoulos A., Satoh P. S., Najjar V.A. The characteristics, isolation and synthesis of the phagocytosis stimulating peptide tuftsin. //Biochem. Biophys. Res. Commun.- 1972.- V. 47.- P. 172 179.
  371. O’Hearn E., Molliver M. Organization of raphe-cortical projections in rat a quantitative retrograde stude. //Brain Res. Bull.- 1984.-V.-13.-N.6.- P. 709−726.
  372. Oprica M., Zhu S., Goiny M., et al. Transgenic overexpression of interleukin-1 receptor antagonist in the CNS influences behavior, serum corticosterone and brain monoamines. //Brain, Behav. Immun.- 2005.-V.19.-N.3.- P. 223−234.
  373. Otero G.C., Merril J.E. Cytokine receptors on glial cells. // Glia.-1994.-V. 11.-P. 117−128.
  374. Pahan K., Khan M., Singh 1. Interleukin-10 and interleukin-13 inhibit proinflammatory cytokine-induced ceramide production through the activation of phosphatidylinositol 3-kinase. // J. Eurochem.- 2000.- V. 75. -N. 2.- P. 576−582 .
  375. Parnet P., Kelley K.W., Bluthe R.M., Dantzer R. Expression and regulation of interleukin-1 receptors in the brain. Role of cetokines-induced sickness behavior. //J.NeuroimmunoL- 2002.-V.125.-N.1−2.- P. 5−14.
  376. Pawlak C.R., Schwarting R.K.W. Striatal microinjection of interleukin-2 and rat behaviour in the elevated plus-maze. //Behav. Brain Res.- 2006.-V. 168.-N.2,3P. 339−344.
  377. Pearse A.G.E. The diffuse neuroendocrine system and the APUD concept: related endocrine peptides in brain, intestine, pituitary, placenta and anuran cutaneous glands. //Med. Biol.- 1977.-V. 55.- P. 115−125.
  378. Peterson P.K., Molitor T.W., Chao C.C. The opioid-cytokine. connection. // J. Neuroimmunol.- 1998. V. 83. — N. 1−2. — P. 63−69.
  379. Pettito J.M., McCathy D.B., Rinker C., Hunag Z., Getty T. Modulation of behavioral and neurochemical measures of forebrain dopamine function in mice by species-specific interleukin-2. //J. Neuroimmunol.- 1997.- V.73.-P. 183−190.
  380. Plata-Salaman S., Turrin N. Cytokine interactions and V cytokine balance in the brain: relevance to neurology and psychiatry. //Mol. Psychiatry.- 1999.- V.4.-N.4. P. 302−306.
  381. Pan W., Banks W.A., Kastin A J. Permeability of the blood-brain and blood-spinal cord barriers to interferons. // J. Euroimmunol.- 1997. -V. 76. -N.l, 2.- P. 105−111.
  382. Pavlov V.A., Tracey K.J. Neural regulators of innate immune responses and inflammation. //Cell. Mol. Life Sci.- 2004.-V.61.- P. 23 222 331.
  383. Plotkin S.R., Banks W.A., Kaslill A.J. Comparison of saturable. transport and extracellular pathways in the passage of interleukine-la acrossthe blood-brain barrier. //J. Neuroimmunol.- 1996.-V.67.-N.1.- P. 41−47.
  384. Plotkin S.R., Banks W.A., Maness L.M., Kaslill A.J. Differential transponort of rat and human interleukin-I alpha across the blood-brain barrier and blood-testis barrier in rats. // Brain Res.- 2000.- V. 881.- N.l.- P. 57−61.
  385. Pollak, Y., Ovadia, H., Orion, E., and Yinniya, R. The EAE-associated behavioral syndrome: II. Modulation by anti-inflammatory treatments. //J. Neuroimmunology.- 2003.-V.137.- P. 100−108.
  386. Pousset F., Cremona S., Dantzer R., Kelley K., Parnet P. IL-10 and IL-4 regulate type-I and type-II IL-1 receptors expression on IL-1 beta-activated mouse primary astrocytes. // J. Neurochem.- 2001.-V.79.-N.4.- P. 726−736.
  387. Powell S.B., Paulus M.P., Hartman D.S., et al. RO-10−5824 is a selective dopamine D4 receptor agonist that increases novel object exploration in C57 mice. //Neuropharmacol.- 2003.-V.44.-N.4.- P. 473−481.
  388. Pousset F., Cremona S., Dantzer R., Kelley K., Parnet P. Interleukin-4 and interleukin-10 regulate IL-lp induced mouse primary astrocyte activation: a comparative study. // Glia.- 1999.-V.26.-N.1.- P. 12−21.
  389. Pruett S.B., Han Y.C., Fuchs B.A. Morphine suppress primary humoral immune response by a predominantly indirect mechanism. //J. Pharmacol. Exper. Ther.- 1992.-V.262.- P. 923−928.
  390. Qiu Y.H., Cheng C., Dai L., Peng Y.P. Effect of endogeneus catecholamines in lymphocytes on lymphocyte function. //J. Neuroimmunol.- 2005.-V.167.-N.1−2.- P. 345−52.
  391. Quan N. and Banks W. A. Brain-immune communication pathways. // Brain, Behavior, and Immunity.- 2007.-V. 21.-N. 6.- P. 727−735.
  392. Quan N., Sundar S.K., Weiss J.M. Induction of interleukin 1 in various brain regions after peripheral and central injections of lipopolysaccharide. //Neuroimmunol.- 1994.-V. 49.-P. 125−134.
  393. Quan N., Whiteside M., Herkenham M. Time course and localization patterns of interleukin-lp messenger RNA expression in brain and pituitaryafter peripheral administration of lipopolysaccharide. //Neuroscience.- 1998.-V.83.- P. 281−293.
  394. Quan N., Zhang Z., Emery M. et al. Detection of interleukin-I bioactivity in various brain regions of normal healthy rats. // Neuroimmunomodulation.- 1996.-V. 3. -N. 1. P. 47−55.
  395. N., 5undar S.K., Weiss J. M. Induction of interleukin-1 in varios brain regions after peripheral and central injections of lipopolysaccharide. //J. Neuroimrnunol.- 1994.-V. 49.-N.1−2.- P. 125.
  396. Raber J., Sorg O., Horn T.F. et al. Inflammatory cytokines: putative regulators of neuronal and neuro-endocrine functions. //J. Brain Res. Rev.-1998.- V.26.- N.2,3.- P. 320−326.
  397. Rady P. L., Smith E. M., Cadet P., Opp M. R., Tyring S. K., and Hughes Jr.T.K. Presence of interleukin-10 transcripts in human pituitary and hypothalamus. //Cellular and Molecular Neurobiology.- 1995.-V. 15.-N. 2.• P. 289−296.
  398. Reichenberg A., Yirmiya R., Schuld A., et al. Cytokine- associated emotional and cognitive disturbances in humans. //Archives of General Psychiatry.- 2001.-V.58.- P. 445−452.
  399. Rich I.N., Heit W., Kubanek B. Extrarenal erythropoietin production '' by macrophages. // Blood.-1982.- V.60.-N.4.- P. 1007−1008.
  400. Righi M., Mori L., De Libero G., Sironi M. et al: Monokine production by microglia cell clones.//Eur. J. Immunol.- 1989.-V.19.-N.8.-P. 1443−1448.
  401. Rodrigues-Arias M., Pinazo J., Minarro J., Stinus L. Effects of SCH-23 390, raclopride, and haloperidol on morphine withdrawal-induced agression in male mice. //Pharmacol. Biochem. Behav.- 1999.-V.64.-N.1-P. 123−130.
  402. Roque Susana, Correia-Neves Margarida, Mesquita Ana Raquel, Palha Joana Almeida, and Sousa Nuno. Interleukin-10: A Key Cytokine in Depression? //Cardiovascular Psychiatry and Neurology .- 2009 Article ID 187 894.-P. 5.
  403. Rotenberg V.S. The revised monoamine hypothesis: Mechanism of antidepressant treatment in the- context of behavior. //Integr. Physiol. Behav. Sci.- 1994.-V. 29.-P. 182−188.
  404. Rotenberg V.S., Alexeyev V.V. Essential Hypertension: A psychosomatic feature or a psycho-somatic disease? A differential analysis of cases. in terms of search activity concept. //Dynamic Psychiatry.- 1981.- V.14.- P. 129−139.
  405. Rotenberg V.S., Arshavsky W. Psychophysiology of hemispheric asymmetry: The «entropy» of right hemisphere activity. //Integr. Physiol. Behav. Sci.-1991.-V.26.-P. 183−188.
  406. Rotenberg V.S., Arshavsky W. Search activity and its impact on experimental and clinical pathology. //Activitas Nervosa Superior (Praha).- 1979.-N. 21.-P. 105−115.
  407. Rotenberg V.S., Schattenstein A. Neurotic and psychosomatic disorders. Interdependence in terms of the search activity concept. //Pavlovian J. f Biol. Scie.- 1990.-V. 25.- P. 43−47.
  408. Rotenberg V. S., Korostoleva J.S. Psychological aspects of the search activity and learned helplessness in psychosomatic patients and healthytestees. //Dynamische Psychiatrie/Dynamic Psychiatry.- 1990.-V. 120.-N.121.-P. 1−13.
  409. Rothwell N.J. Annual review prize lecture cytokines killers in the brain? //J. Physiol.- 1999.- V.514.- N.I.- P. 3−17.
  410. Rothwell N.J. Mechanisms of the pyrogenic actions of cytokines. //Eur. Cytokine Net.- 1990.-V.1.- P. 211−213.
  411. Rothwell N.J., Luheshi G.N. lnterleukin 1 in the brain: biology, pathology and therapeutic target. // Trends Neurosci.- 2000.- V. 23.-N. 12.-P. 618−625.
  412. Ryu J., Pyo H, Jou 1., Joe E. Thrombin induces NO release from cultured rat microglia via protein kinase C, mitogen-activated protein kinase, and NF-kappa B. // J. Biol. Chem.- 2000.- V. 275. N. 39. — P. 2 995 529 959.
  413. Saavedra J.M., Brownsteen M., Palkovits M., Kizer J.S., Axelrod J. Tyrosine hydroxylase and dopamine-(3 -hydroxylase: distribution in the individual rat hypothalamic nuclei. //J. Neurochem.- 1974.-V. 23.- P. 869 871.
  414. Salamone J.D. The involvement of nucleus accumbens dopamine in appetitive and aversive motivation. //Behav. Brain Res.- 1994.-V.61.-P. 117−133.
  415. Salamone J.D., Cousins M.S., Snyder B.J. Behavioral functions of nucleus accumbens dopamine: Empirical and conceptual problems with the anhedonia hypothesis. //Neurosci. Biobehav. Rev.- 1997.-V. 21.- P. 341−359.
  416. Samad N., Batool F., Haleem D.J. Neurochemical and behavioral effects of 8-OT-DPAT following to exposure to restraint stress in mice. // Pharmacol. Reports.- 2007.-V.59.- P. 173−180.
  417. Sanders V.M. Interdisciplinary research: noradrenergic regulation of adaptive immunity. //Brain, Behav. Immunity.- 2006.-V.20.-N.1.- P. 1−8.
  418. Sanford L.D., Yang L., Wellman L.L. et al. Mouse strain differencesin the effects of corticotropin releasing hormone (CRF) on sleep and wakefulness. //Brain Res.- 2008.-V.1190.- P. 94−104.
  419. Santhanam A.V., Katusic Z.S. Erythropoietin and cerebral vascular protection: role of nitric oxide. //Acta Pharmacol. Sin.- 2006.-V.27.-N. 11.- P. 1389−1394.
  420. Sasaki R., Masuda S., Nagao M. Erythropoietin: multiple physiological functions and regulation of biosynthesis. // Biosci. Biotechnol. Biochem.- 2000.- V. 64.-N. 9.- P. 1775−1793.
  421. Sawada M., Itoh Y., Suzumura A., Marunouchi T. Expression of Cytokine receptors in cultured neuronal and glial cell. //Neurosci. Lett.-1993.-V.160.-P. 131−134.
  422. Sawada M., Hara N., Maeno T. Reduction of the acetylcholine-induced K+ current in identified Aplysia neurons by human interleukin-1 and interleukin-2. // Cellular and Molecular Neurobiology.- 1994.-V.14.-N.2.- P. 175−184.
  423. Saurer T.B., Carrigan K.A., Ijames S.G., Lysle D.T. Morphine-induced alteration of immune status are blocked by the dopamine D2 likereceptor agonist 7-OH-DPAT. // J. Neuroimmunol.- 2003. V. 148. — N. 12. -P. 54−62.
  424. Sebire G., Hery C., Peudenier S., Tardieu M. Adhesion proteins on human microglial cells and modulation of their expression by IL-1 alpha and TNF alpha. //Res. Virol.-1993.-V.144.-P.47−52.
  425. Sei Y., Yoshimoto K., Mclnture T., et al. Morphine-induced thymic hypoplasia is glucocorticoid-dependent. // J. Immunol.- 1991.-V.146.- P.194−198.
  426. Schobitz B., De Kloet E.R., Holsboer F. Gene expression and function of interleukin 1, Inleukin 6 and tumor necrosis factor in the brain. //
  427. Prog. Neurobiol.- 1994. V.44.-N.4. — P. 397−432.
  428. Schwartz J.C., Costentin J., Martres M.P. et al. Modulation of receptor mechanisms in the CNS: Hyper-and hyposensitivity to catecholamines. //Neuropharmacology.- 1978.-V. 17.- P. 665−685.
  429. Segall M.S. Crnic L.S. An animal model for the behavioral effects of interferon. //Behav. Neurosci.- 1990.-V.104.- P. 612−618.
  430. Sehie E., BLatteis C. M. Blockade of lipopolysaccharide-induce fever by subdiaphragmatic vagotomy in guinea pigs. // Brain Res.- 1996.-V.726.-N.1−2.-P. 160.
  431. Shen Y.Q., Hebert G., Lin L.Y. et al. Interleukin-1 (3 and interleukin-6 levels in striatum and other brain structures after MPTP treatment: influence of behavioral lateralization. //J. NeuroimmunoL- 2005 .-V. 158.- P. 14−25.
  432. Shimizu N., Hon T., Nakane H. An interleukin-1 beta-induced noradrenaline release inthe spleen is mediated by brain corticotropin-releasing factor: an in vivo microdialysis study in conscious rats. // Brain Behav. Immun.- 1994.-V.8.-N.1.-P. 14−23.
  433. Schobitz B., Pezeshki C., Pohl T., et al. Soluble interleukin- 6 (IL-6) receptor augments central effects of IL-6 in vivo. //'FASEB J.-1995.-V. 9.-P. 659−664.
  434. Shuto H., Kataoka Y., Horikawa T., Fujihara N., Oishi R. Repeated interferon-a administration inhibits dopaminergic neural activity in the mouse brain. //Brain Res.- 1997.-V.747.- P. 348−351.
  435. Siegel A., Zalcman S. S. The Neuroimmunological Basis of Behavior and Mental Disorders. Springer Science and Business Media LLC, 2009. -438 p.
  436. Siegel J. M., Tomaszewski K. S., Nienhuis R. Behavioral organization of reticular formation: Studies in the unrestrained cat II. Cells• related to facial movements. //J. Neurophysiol.- 1983.-V. 50.- N.3.- P. 717−723.
  437. Simen B. B., Duman C. H., Simen A. A., Duman R. S. TNFa signaling in depression and anxiety: behavioral consequences of individual receptor targeting. //Biological Psychiatry.- 2006.-V. 59.-N. 9.- P. 775−785.
  438. Siren A.L., Fratelli M., Brines M. et al. Erythropoietin prevents neuronal apoptosis after cerebral ischemia and metabolic stress. //Proc. Natl. Acad. Sci. USA.- 2001.-V.98.- P. 4044−4049.
  439. Sluzewska A., Rybakawski J., BosTans E. et al. Indicators of • immune activation in major depression. // Psychiatry Res.- 1996.-V.6.1. N.3.-P. 161.
  440. Smith A., Tyrrel D., Coyle K. Effects of interferon alpha in man: a preliminary report. //Psychopharmacology.- 1988.- V. 96.- P. 414−416.
  441. Smith R.S. The immune system is a key factor in the etiology of psycosocial desease. //Med. Hypoth.- 1991.-V.34.-N.1.- P. 49−57.
  442. Spadaro F., Dunn A.J. Intracerebroventricular administration of interleukin-1 to mice alters investigation of stimuli in a novel environment. //Brain Behav. Immun.- 1990.- V.4.-N.4.- P. 308−322.
  443. Sredni-Kenigsbuch D. TH1/TH2 cytokines in the central nervous system. //Int. J. Neurosci.- 2002.-V.112.-N.6.- P. 665−703.
  444. Srinivasan D., Yen J.H., Joseph D.J., Friedman W. Cell type-specific interleukin-1 p signaling in the CNS. // J. Neurosci.- 2004.- V 24.- N. 29.- P. 6482−6488.
  445. Stahl S.M. Neurotransmission of cognition, pt I: Dopamine is a hitchhiker in frontal cortex: Norepinephrine transporters regulatedopamine (Brainstorms). // J. Clin. Psychiatry.- 2003.-V.64.- P. 4−5.
  446. Stohr T., Schulte W.D., Weiner I., Feldon J. rat strain differences in open-field behavior and the locomotor stimulation and rewarding effects of amphetamine. //Pharmacol. Biochem. Behav.- 1998.-V.59.-N.4.- P. 813−818.
  447. Strle K., Zhou J.H., Shen W.H. et al. Interleukin-10 in the brain. // Crit. rev. Immunol.- 2001.-V.21.-N.5.- P. 427−449.
  448. Swaab D.F. Neuropeptides. Their distribution and function in the• brain. //Progr. Brain Res.- 1982.-V.55.- P. 97−122.
  449. Swiergiel A.H., Burunda T., Patterson B., Dunn A.J. Endotoxin- and interleukin-1-induced hypophagia are not affected by noradrenergic, dopaminergic, histaminergic and muscarinic antagonists. //Pharmacol. Biochem. Behav.- 1999.-V.63.- P. 629−637.
  450. Suto G., Kiraly A., Tache Y. Interleukin 1 beta inhibits gastric emptying in rats: mediation through prostaglandin and corticotropin-releasing factor. // Gastroenterology.- 1994.-V.106.-N.6.- P. 1568−1575.
  451. Szabo I., Rojavin M., Bussiere J.L., et al. Suppression of peritoneal macrophage phagocytosis of Candida albicans by opioids. // J. Pharmacol.
  452. Exp. Ther.- 1993.-V.267.- P. 703−706.
  453. Szelenyi J. Cytokines and the central nervous system. // Brain. Res. Bull.- 2001.- V. 54. -N. 4.- P. 329−338.
  454. Takeda H., Tsuji M., Ikoshi H., et al. Effect of 5-HT7 receptorantagonist DR4004 on the exploratory behavior in a novel environment and on brain monoamine dynamics in mice. //Eur. J. Pharmacol.- 2005.-V.518.-N.I.- P. 30−39.
  455. Takeda M., Takahashi M., Matsumoto S. Contribution of activated interleukin receptors in trigeminal ganglion neurons to hyperalgesia via satellite glial interleukin-1 beta paracrine mechanism. //Brain Behav. Immun.-2008. -V.22.-N.7.- P. 1016−1023.
  456. Tancredi V., Zona C., Velotti F., Eusebi F., Santoni A.: Interleukin-2 suppresses established long-term potentiating and inhibits its induction in the rat hippocampus. //Brain. Res.- 1990.-V.525.- P. 149−151.
  457. Terao A., Oikawa M., Saito M. Cytokine-induced change in hypothalamic norepinephrine turnover: -involvement of corticotropin-releasing hormone and prostaglandins. //Brain Res.- 1993.-V.622.- P. 257 261.
  458. F.J., 5chmidt E.D. Interleukin-l-induced plasticity of hypothalamic CRH neurons and long-term stress hyperresponsiveness. // Ann. N. Y. Acad. Sci.- 1998.- V. 840. P. 65−73.
  459. Tilders F.J. SchmidtE. D. Cross-sensitization between immune and non-immune stressors. A role in the etiology of depression? //Adv. Exp. Med. Biol.- 1999.-V. 46.- P. 179−197.
  460. Tilg H., Trehu E., Atkins M.B., Dinarello C.A., Mier J.W. In-terleukin-6 (IL-6) as an anti-inflammatory cytokine: induction of circulating IL-1 receptor antagonist and soluble tumor necrosis factor receptor p55. //Blood.- 1994.-V.83.-P. 113−118.
  461. Todorovic C., Dimitrijevic M., Stanojevic S., et al. Correlation between age-related changes in open field behavior and plaque forming cellresponse in DA female rats. //Int. J. Neurosci.- 2003.-V.113.-N.9.- P. 12 591 273.
  462. Toru-Delbauffe D., Baghdassarian-Chalaye D., Gavaret J.M., Courtin F., Pomerance M., Pierre M. Effects of transforming growth factor (31 on astroglial cell in culture. //J. Neurochem.- 1990.-V.54.- P. 1056−1061.
  463. Toth L.A., Opp M.R. Cytokine- and microbially induced sleep responses of interleukin-10 deficient mice. //Am. J. Physiology.- 2001.-V. 280.-N. 6.- P. 1806−1814.
  464. Tsao C.W., Lin Y.S., Cheng J.T. Effect of dopamine on immune cell proliferation in mice. //Life Sci.- 1997.-V.61.-N.4.- P. 361−371.
  465. Tseng L.F., Brase D.A., Loh H.H. Dopaminergic influence on withdrawal jumping behavior in morphine-dependent mice. // Res. Commun. Chem. Pathol. Pharmacol.-1976. V. 15. — N. 3. — P. 427−435.
  466. Turrin N.P., Plata-Salaman C. R Cytokine-cytokine interactions and the brain. // Brain Research Bull.- 2000. V. 51. — N. 1.- P. 3−9.
  467. Turnbull A.V., Prehar S., Kennedy A.R., Little R.A., Hopkins S.J. Interleukin-6 is an afferent signal to the hypothalamopituitary-adrenal axis during local inflammation in mice. //Endocrinology.- 2003.-V. 144.- P.1894−1906.
  468. Tweardy D.T., Mott P.L., Glaser E.W. Monokine modulation of human astroglioma cell production of granulocyte colony stimulating factor. I: Effects of IL-la and IL-1J3. // J. Immunol.- 1990.-V.144.- P. 2233−2244.
  469. Ungerstedt U. Use of intracerebral injections of 6-hydro-xydopamine as a fool for morphological and functional studies on central catecholamine neurons. 6-Hydroxydopamine and catecholamine neurons. //In: T. Malmorts,
  470. H.Thoenen (Eds.). North-Holland Publ. Comp. Amsterdam, 1971.- P. 315 322.
  471. Unsicker K., Flanders K.C., Cissel D.S., Lafyatis R., Sporn M.B. Transforming growth factor beta isoforms in the adult rat central and peripheral nervous system. //Neuroscience.- 1991.-V.44.-P. 613−625.
  472. Vallieres L., Rivest S. Interleukin-6 is a needed proinflammatory cytokine in the prolonged neural activity and transcriptional activation of corticotropin-releasing factor during endotoxemia. //Endocrinology.- 1999.-V. 140.-P. 38 900−38 903.
  473. Van Abeelen J.H.F. Genetic analysis of behavioural responses to novelty in mice. // Nature.- 1975. V. 23. — P. 238−241.
  474. Van Abeelen J.H.F. Genotype and the cholinergic control of. exploratory behavior in mice //In: Abeelen J.H.F. van (ed.). The Genetics of
  475. Behaviour. Amsterdam- Oxford., 1974.- P. 347−374.555. van Abeelen, J.H.F. The Genetics of Behaviour. Amsterdam: North-Holland Pub. Co., 1974.- 450 p.
  476. Van Borell E., Hurnik J.F. Stereotypic behavior, adrenocortical function, and open field behavior of individually confined gestating sows. //Physiol. Behav.- 1991.-V. 49.- P. 709−713.
  477. Versteeg D., Gugten J., Jong W., Palkovits M. Regional concentrationof norepinephrine and dopamine in rat brain. //Brain Res.- 1976.-V. 113.- P.563.574.
  478. Vidal J: Antibody response to rat erythrocytes and some behaviors in two strains of vice after social isolation. // J. Gen. Psychol.- 1993.-V. 120.- P. 165−176.
  479. Vidal J. Moderate immunodepression does not alter some murine behaviors. // JASNH.- 2002.-V. 1.- N. 3.- P. 43−48.
  480. Vidal J. Effect of reduced immunity on murine behavior. // Psychol: Rep.- 1999.- V.85.-3 Pt. 1.- P. 845−846.
  481. Villa P., Bigini P., Mennini T. et al. Erythropoietin selectively attenuates cytokine production and inflammation in cerebral ischemia by targeting neuronal apoptosis. //J. Exp. Med.- 2003 .-V. 198.- P. 971−975.
  482. Vitkovic L., Konsman J.P., Bockaert J. et al. Cytokine signals propagate through the brain. // Mol. Psychiatiy.- 2000.-V.5.-N.6.- P. 604 615.
  483. Viveros M.P., Fernandes B., Guayerbas N., Fuente M.D. Behavioral characterization of mouse model of premature immunosenscence. //J. Neuroimmunol.- 2001 .-V.l 14.- P. 80−88.
  484. Viviani B., Bartesaghi S., Corsini E. et al. Erythropoietin protects primary hippocampal neurons increasing the expression of brain-derived neurotrophic factor. //J. Neurochem.- 2005.-V.93.-N.2.- P. 412−421.
  485. Wang J.P., Dunn A.J. The role of interleukin-6 in the activation of the hypothalamo-pituitary-adrenocortical axis induced by endotoxin and interleukin-ip. // Brain Res.- 1999.-V.815.- P. 337−348.
  486. Wang L., Zhang Z., Wang Y., Zhang R., Chopp M. Treatment of stroke with erythropoietin enhances neurogenesis and angiogenesis and improves neurological function in rats. //Stroke.- 2004.-V.35.- P. 1732−1737.
  487. Weber R.J., Band L.C., deCosta B., et al. Neural control of immune functions: opioids, opioid receptors and immunosuppression. //NIDA Res.•• Monogr.- 1991.-V.105.-P.96−102.
  488. Weil Z.M., Bowers S.L., Pyter L.M., Nelson R.J. Social interaction alter proinflammatory cytokine gene expression and behavior following endotoxin administration. //Brain, Behav., and Immunity.- 2006.-V.20.-N.l.-P. 72−79.
  489. Wegent D.A., Blalock J.E. Production of peptide hormones and neurotransmitters by the immune system. // Chem. Immunol.- 1997.-V.69.-P. 1−30.
  490. Wheeler R.D., Culhane A.C., Hall M.D. et al. Detection of the interleukin-8 family in rat brain by RT-PCR. // Brain Res. Mol. Brain Res.-2000. -V. 77. -N.2. P. 290- 293.
  491. Wieczorek M., Swiergiel A.H., Pournajafi-Nazarloo H., Dunn A. Physiological and behavioral responses to interleukin-lb and LPS in vagotomized mice. //Physiol. Behav.- 2005.-V.84.-N.4.- P. 500−511.
  492. Wilson C.J., Cohen H.J. Cytokines and cognition the case for a head-to-toe inflammatory paradigm. //J. Am. Geriart. Society.- 2002.-V.50.-N.12.-P. 2041−2054.
  493. Wilder A. Pharmacological dissociation of behavior and EEG sleep patterns in dogs: Morphine, N-allylmorphine and atropine. // Proc. Soc. Exp. Biol. Medical.- 1952.-V. 79.- P. 261−265.
  494. Wimer C.C., Wimer R.E., Roderick T.H. Some behavioral differences associated with relative size of hippocampus in the mouse. // J. Physiol. Psychol.- 1971. -V. 76.- P. 57−65.
  495. Wise R.A., Colle L.M. Pimozide attenuates free feeding: Best scores analysis reveals a motivational deficit. //Psychopharmacology (Berl).-1984.-V.84.-P. 445−451.
  496. Wise R.A., Spindler J., deWitt H. et al. Neuroleptic induced «anhedonia» in rats: Pimozide blocks reward quality of food. //Science.-1978.-V. 201.-P. 262−264.
  497. Wong M.L., Bongiorno P.B., al-Shekhlee A. et al. IL-1 beta, IL-1 receptor type I and iNOS gene expression in rat brain vasculature and perivascular areas. //Neuroreport.- 1996. -V. 7.- N. 15−17. P. 2445−2448.
  498. Wong M.L., Sternberg E.M. Immunological assays for understanding neuroimmune interactions. // Arch. Neurol.- 2000. -V. 57.- N. 7. P. 948 952.
  499. Woodward D.J., Moises H.C., Waterhouse B.D. et al. Modulatory action of norepinephrine in the central nervous system. // Federation Proceeding.- 1979.-V.38.-P. 2109−2116.
  500. Wu Y., Shaghaghi E.K., Jacquot C., Pallardy M., Gardier A.M. Synergism between interleukin-6 and interleukin-l? in hypothalamic serotonin release: a reverse in vivo microdialysis study in F344 rats. //Eur. Cytokine Netw.- 1999.-V.10.- P. 57−64.
  501. Wurtman R.J., Fernstrom J.D. Control of brain neurotransmitter synthesis by precursor availability and nutritional state. //Biochem. Pharmacol.- 1976.-V.25.-P. 1691−1696.
  502. Yamaji R., Okada T., Moriya M. et al. Brain capillary endothelial cells express two forms of erythropoietin receptor mRNA. //Eur. J. Biochem.-1996.-V.239.- P. 494−500.
  503. Yirmiya, R., Behavioral and psychological effects of immune activation: implications for depression due to a general medical condition. //Current Opinion in Psychiatry.- 1997.-N.10.- P. 470−476.
  504. Yoshikai Y., Miake S., Matsumoto T., et al. Effect of stimulation and blockade of mononuclear phagocyte system on the delayed footpad reaction to SRBC in mice. // Immunol.- 1979.-V. 38.-N.3.- P. 577−583.
  505. Yu X., Lin C.S., Costantini F., et al. The human erythropoietin receptor gene rescues human erythropoiesis and developmental defects in the erythropoietin null mouse. //Blood.- 2001.- V. 98.- P. 475−477.
  506. Yu A.C., Lau L.T. Expression of inleieukin-1 alpha, tumor necrosis factor alpha and interleukin-6 genes in astrocytes under ischemic injury. // Neurochem. Int.- 2000.- V. 36.- N.4, 5. P. 369. 377.
  507. Zalcman S. Interleukin-2 potentiates novelty- and GBR 12 909-induced exploratory activity. //Brain Res.- 2001.-V.899.-N.1−2.- P. 1−9.
  508. Zalcman S., Green-Johnson J.M., Murray L., et al. Cytokine-specific central monoamine alterations induced by interleukin-1, -2 and -6. //Brain Res.- 1994.-V.643.-P. 40−49.
  509. Zhang J-J., Terreni L., De Simoni M-G., Dunn A.J. Peripheral interleukin-6 administration increases extracellular concentrations of serotonin and the evoked release of serotonin in the rat striatum. //Neurochem. Int.- 2001.-V.38.- P. 303−308.
  510. Zhu C.G., Sandri C., Akert K. Morphological identification of axoaxonic and dendro-dendritic synapses in the rat substantia gelationosa. //Brain Res.- 1981.-V.230.- P. 25−40.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!