Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Динамика минерализации и трансформации лабильных фрагментов органического вещества гумусово-аккумулятивного горизонта дерново-подзолистой почвы

ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Выявлены существенные различия в хроматограммах распределения амфифильных фракций в составе ГВ для исходных образцов после минерализации, после обработки ТЖ и последовательных обработок ТЖ и 0,1 н. КаОН, с последующей минерализацией. По степени амфифильности в составе ГВ для исходных образцов были получены три пика: один пик, характеризующий гидрофильную, и два, соответствующих гидрофобной… Читать ещё >

Содержание

  • 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. ПОСТУПЛЕНИЕ ОРГАНИЧЕСКИХ ОСТАТКОВ
    • 1. 2. МИНЕРАЛИЗАЦИЯ ОРГАНИЧЕСКИХ ОСТАТКОВ
    • 1. 3. ГУМИФИКАЦИЯ ОРГАНИЧЕСКИХ ОСТАТКОВ
    • 1. 4. СТРОЕНИЕ И СВОЙСТВА ОРГАНИЧЕСКОГО ВЕ ЩЕСТВА ПОЧВЫ
  • 2. ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. ТЕРРИТОРИЯ И ОБЪЕКТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 2. МОДЕЛЬНЫЕ ЭКСПЕРИМЕНТЫ
    • 2. 3. ФРАКЦИОНИРОВАНИЕ ГВ МЕТОДОМ ЖИДКОСТНОЙ ХРОМАТОГРАФИИ ГИДРОФОБНОГО ВЗАИМОДЕЙСТВИЯ
    • 2. 4. ФРАКЦИОНИРОВАНИЕ ГВ ПО МОЛЕКУЛЯРНЫМ МАССАМ МЕТОДОМ ГЕЛЬ-ФИЛЬТРАЦИИ
    • 2. 5. , 3С-ЯМР СПЕКТРОСКОПИЯ
  • 3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ
    • 3. 1. МОДЕЛИРОВАНИЕ ПРОЦЕССОВ МИНЕРАЛИЗАЦИИ НАТИВНОГО И МЕЧЕНОГО ОРГАНИЧЕСКОГО ВЕЩЕСТВА ГУМУСОВО-АККУМУЛЯТИВНОГО ГОРИЗОНТА ДЕРНОВО-ПОДЗОЛИСТОЙ ПОЧВЫ
    • 3. 2. ВКЛЮЧЕНИЕ, 4С В СОСТАВ АМФИФИЛЬНЫХ ФРАКЦИЙ ОРГАНИЧЕСКОГО ВЕЩЕСТВА ГУМУСОВО-АККУМУЛЯТИВНОГО ГОРИЗОНТА ДЕРНОВО-ПОДЗОЛИСТОЙ ПОЧВЫ
    • 3. 3. РАСПРЕДЕЛЕНИЕ 14С ПО МОЛЕКУЛЯРНЫМ МАССАМ В ОРГАНИЧЕСКОМ ВЕЩЕСТВЕ ГУМУСОВО-АККУМУЛЯТИВНОГО ГОРИЗОНТА ДЕРНОВО-ПОДЗОЛИСТОЙ ПОЧВЫ
    • 3. 4. ИЗУЧЕНИЕ ОСОБЕННОСТЕЙ СТРОЕНИЯ ГК ДЕРНОВО-ПОДЗОЛИСТОЙ ПОЧВЫ МЕТОДОМ 13С-ЯМР СПЕКТРОСКОПИИ
  • 4. ВЫВОДЫ

Динамика минерализации и трансформации лабильных фрагментов органического вещества гумусово-аккумулятивного горизонта дерново-подзолистой почвы (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность

Органическое вещество почв, несмотря на двухвековую историю его изучения, до сих пор привлекает внимание исследователей в связи с его особой ролью в формировании почвенного профиля, химических и физических свойств почвы и ее плодородия. В последние десятилетия значительно возрос интерес к органическому веществу как важнейшему резервуару углерода в связи с проблемой изменения климата. В связи с этим большое внимание уделяется изучению устойчивости ОВ к биоминерализации, которая, как правило, оценивается по среднему времени жизни (МЯТ) или времени оборачиваемости (т = 1/к, где к — коэффициент минерализации). По этому признаку разными исследователями предлагается выделять различные пулы: метаболическое, активное, медленное, пассивное [52]- легкоразлагаемое органическое вещество, гумус лабильный биоактивный, гумус стабильный биоактивный, относительно биоинертный гумус [8]. Очевидно, что наиболее чутко на изменения климата и другие внешние воздействия реагируют наименее устойчивые к биоминерализации (лабильные) компоненты, поэтому определение их содержания и скоростей их образования представляет несомненный научный интерес.

Поскольку основная масса органического вещества во многих типах почв сосредоточена в верхних гумусированных горизонтах, необходимо получение данных о содержании лабильных компонентов, их принадлежности к различным пулам ОВ почв (микробной биомассе, водорастворимому ОВ, непрочно связанному с минеральными компонентами ОВ), скоростях их 3 минерализации и возможных механизмах их образования (регенерации). Изучение трансформации лабильных соединений гумуса в природных условиях представляет сложную задачу, поскольку их минерализация полностью или частично компенсируется новообразованием. Выделить вклад минерализационных процессов в динамику гумуса в почве можно с помощью меченых органических соединений, но только при условии, что «поведение» меченых атомов вследствие их «включения» в состав гумуса отражает его динамику в почве [43, 44]. Как правило, в экспериментах с меченной по углероду растительной биомассой скорость ее минерализации значительно выше, чем нативного органического вещества, поскольку длительность экспериментов не позволяет достичь должной ч степени гумификации внесенных меченых растительных тканей.

Поскольку в образовании гумуса принимают участие низкомолекулярные органические соединения либо вследствие реакций конденсации [12], либо через стадию образования и трансформации микробной биомассы, можно предположить, что при внесении микроколичеств низкомолекулярных меченых соединений через сравнительно короткий промежуток времени динамика минерализации меченого углерода будет близка к динамике минерализации нативного органического вещества.

Цель исследования — выявить закономерности минерализации и трансформации нативных и новообразованных лабильных фрагментов органического вещества гумусово-аккумулятивного горизонта дерново-подзолистой почвы

Для достижения поставленной цели решали следующие задачи:

1. Изучение динамики минерализации нативного и меченного изотопом 14С органического вещества гумусово-аккумулятивного горизонта на разных сроках взаимодействия в полевых условиях с меченными по углероду органическими веществами, исходно внесенными в виде глюкозы, глицина и урацила.

2. Изучение включения изотопа 14С, внесенного в форме низкомолекулярных органических соединений (глюкозы, глицина и урацила), в состав амфифильных фракций органического вещества гумусового горизонта дерново-подзолистой почвы.

3. Выявление изменений амфифильных фракций органического вещества и распределения изотопа 14С в них после минерализации в лабораторном модельном эксперименте.

4. Изучение включения изотопа 14С, внесенного в форме низкомолекулярных органических соединений, в состав разных по молекулярной массе компонентов органического вещества гумусового горизонта дерново-подзолистой почвы.

5. Выявление изменений различных по молекулярной массе компонентов органического вещества и распределения изотопа 14С в них после минерализации в лабораторном модельном эксперименте.

6. Выявление особенностей строения гумуса горизонта АЕ

1 -з дерново-подзолистой почвы методом С-ЯМР спектроскопии.

Научная новизна исследования

Впервые получены данные по включению индивидуальных органических соединений (глюкозы, глицина и урацила), поступающих с растительным опадом, в состав лабильных фрагментов гумусово-аккумулятивного горизонта дерново-подзолистой почвы за разные промежутки времени. Выявлены закономерности минерализации и трансформации нативных и меченых лабильных фрагментов органического вещества.

Практическая значимость работы

Проведенные исследования минерализации и трансформации лабильных фрагментов органического вещества гумусово-аккумулятивного горизонта могут быть использованы для прогнозирования стабильности гумусного состояния дерново-подзолистой почвы. Показано, что меченное, образовавшееся за 20 месяцев органическое вещество по свойствам приближается к нативному органическому веществу и может имитировать его поведение в модельных экспериментах.

Апробация работы

Результаты исследований были представлены на XVIII и XIX Международных конференциях студентов, аспирантов и молодых ученых «Ломоносов» (Москва, 2011, 2012), а также на заседаниях кафедры химии почв факультета почвоведения МГУ имени М. В. Ломоносова.

Публикации

По теме диссертации опубликовано 5 работ, из них 3 статьи в журналах, рекомендованных ВАК.

Структура и объем работы

Диссертация изложена на 104 страницах и включает в себя 10 таблиц и 34 рисунка. Состоит из введения, 3 глав, выводов и списка литературы, включающего 45 отечественных и 35 зарубежных работ.

4. ВЫВОДЫ

1. Обнаружены существенные различия в масштабах и скоростях минерализации лабильных фрагментов нативного и меченого органического вещества гумусово-аккумулятивного горизонта в условиях лабораторного опыта. Показано, что меченное органическое вещество, сформировавшееся за 20 месяцев после введения исходных меченых веществ в почву, по кинетическим параметрам минерализации приблизилось к органическому веществу нативной почвы.

2. В рамках минерализации в лабораторных условиях выделены две группы органических веществ, существенно различающихся по устойчивости к микробиологической минерализации.

Первая группа — вещества с быстрой минерализацией, к! в 1 2 1 пределах 10″ - 10″ сут". С этой скоростью в течение 41 дня разлагается в лабораторных условиях примерно 2% нативного и 325% меченого органического вещества (в зависимости от времени нахождения меченых веществ в почве).

Вторая группа — вещества со средней скоростью минерализации, к2 в пределах 10″ 3 — 10″ 4сут" !. С этой скоростью разлагается примерно 1% нативного и 1−5% меченого органического вещества.

3. Выявлены различия во включении изотопа 14С, внесенного в форме трех низкомолекулярных органических соединений — глюкозы, глицина и урацила, в состав меченого органического вещества: а) Значительно меньшее включение урацила в состав меченого органического вещества относительно глюкозы и глицина. б) Большее включение урацила в состав лабильных компонентов меченого органического вещества.

4. Выявлены существенные различия в хроматограммах распределения амфифильных фракций в составе ГВ для исходных образцов после минерализации, после обработки ТЖ и последовательных обработок ТЖ и 0,1 н. КаОН, с последующей минерализацией. По степени амфифильности в составе ГВ для исходных образцов были получены три пика: один пик, характеризующий гидрофильную, и два, соответствующих гидрофобной фракции. На хроматограммах для образцов после минерализации произошло полное исчезновение пика 1-ой гидрофобной фракции, что обусловлено частичной минерализацией соединений, дающих данный пик, с отщеплением боковых алифатических цепей, в результате чего происходит возрастание их способности к гидрофобному взаимодействию, и как следствие, «слияние» двух пиков.

5. Проведено изучение распределения изотопа 14С по амфифильным фракциям в составе ГВ для исходных образцов среднесуглинистой дерново-подзолистой почвы, после минерализации, после обработки ТЖ и последовательных обработок ТЖ и 0,1 н. КаОН с последующей минерализацией. Показано, что наибольшие значения отношений содержания 14С в гидрофобной и гидрофильной фракциях ГВ характерны для образцов, в которые метка вносилась в форме глюкозы (0,54), а наименьшие — для варианта с урацилом (0,20).

6. Показано, что за 20 месяцев произошло включение метки, исходно внесенной в форме индивидуальных органических соединений (глюкозы, глицина и урацила), в состав всех фракций, в том числе высокомолекулярных. Изотоп, исходно внесенный в форме глицина, включился в состав высокомолекулярных фракций в большей степени, чем изотоп, внесенный в форме глюкозы, урацил включился в состав высокомолекулярных фракций в наименьшей степени.

7 Показано, что гидрофильная фракция ГК обогащена алифатическими цепочками, спиртовыми и эфирными группами, а гидрофобная — ароматическими фрагментами и карбонильными группами.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Л.Н. Органическое вещество почвы и процессы его трансформации. Л.: Наука, 1980.
  2. БабьеваИ.П., Зенова Г. М, Биология почв. М.: Изд-во МГУ. 1983. 248 с.
  3. Г. И. Гиматомелановые кислоты почв. М., 1985. 73 с.
  4. Л.А. Гумусообразование и гумусное состояние почв. М.: Изд-во МГУ. 1986. 244 с.
  5. Л.А., Копцик Г. Н., Макаров М. И. Трансформация органического вещества почв: Учебное пособие. М.: Изд-во МГУ. 1990.
  6. Л.А., Коротков К. О. Структура населения и биомасса крупных почвенных беспозвоночных ельников и сосняков Валдая // Почвы и продуктивность растительных сообществ. Вып. 3. М. 1976. С. 115−139.
  7. И.А. Методы экспериментальной микологии. Киев: Наукова думка, 1982. 550 с.
  8. И.В., Песочина Л. С., Семенов В. М. Биоминерализация органического вещества в современных пахотных погребенных и ископаемых черноземах // Почвоведение. 2009. № 10. С. 1192−1202.
  9. Г. А., Каницкая Л. В., Кушнарев Д. Ф. Количественная спектроскопия ЯМР природного органического сырья и продуктов его переработки. М.: Химия, 2000.
  10. Л.О. Пестрота почвенного покрова в лесном биогеоценозе. М.: Изд-во Моск. ун-та, 1977. 312 с.
  11. К. И. Биотические компоненты углеродного цикла. Л.: Гидрометиздат, 1988. 248 с.
  12. М.М. Органическое вещество почвы. Его природа, свойства и методы изучения. М.: Изд-во АН СССР, 1963.
  13. П. А. Почвы черноземной области России, их происхождение состав и свойства. С-Пб., 1886.
  14. А. Биохимия. Молекулярные основы структуры и функций клетки. М.: Мир. 1974. 957 с.
  15. В. Г., Родионова JT. П., Быковский Ф. Ф., Абубакар Сирадж. Условия формирования, номенклатурная схема и агроэкологические функции лабильного органического вещества почвы. М., 2009.
  16. Е.Ю. Амфифильные компоненты гумусовых веществ почв. // Почвоведение. 2000. № 6. С. 706−715.
  17. Е.Ю. Гумусовые вещества почв как природные гидрофобно-гидрофильные соединения М.: Геос, 2009. 186 с.
  18. Е.Ю., Шеин Е. В. Функциональная роль амфифильных компонентов гумусовых веществ в процессах гумусо-структурообразования и генезисе почв. // Почвоведение. 2002. № 10. С. 1201−1213.
  19. Е.Ю., Шеин Е. В., Степанов A.A. Лиофильно-лиофобные свойства органического вещества и структура почвы // Почвоведение. 1993. N6. С.122−126.
  20. Д.С. Гумусовые кислоты почв. М.: Изд-во Моск. ун-та, 1974.
  21. Д.С. Гумусовые кислоты почв и общая теория гумификации. М.: Изд-во Моск. ун-та, 1990.
  22. Д.С. Химия почв. М.: Изд-во Моск. ун-та, 1992.
  23. Д.С., Бирюкова О. Н., Суханова Н. И. Органическое вещество почв Российской федерации. М.: Наука, 1996. 254 с.
  24. Д.С., Милановский Е. Ю. Гель-хроматография в почвоведении — возможности и ограничения метода / Современные физические и химические методы исследования почв. М. МГУ. 1987. С. 94−118.
  25. Д.С., Садовникова JI.K., Суханова Н. И. Химия почв. М.: Высшая школа, 2005.
  26. Н.С., Садовникова Л. К., Фридланд В. М. Неспецифические соединения почвенного гумуса. М.: Изд-во МГУ. 1984.
  27. Регуляторная роль почвы в функционировании таёжных экосистем/ Отв.ред. Г. В. Добровольский. М.: Наука, 2002. 368 с.
  28. JI.E., Базилевич Н. И. Динамика органического вещества и биологический круговорот в основных типах растительности. JL: Наука, 1965. 253 с.
  29. А. В. Газовая функция почв // Почвоведение. 2000. № 10. С. 1211−1223.
  30. A.A. Особенности строения амфифильных фракций гуминовых кислот чернозема южного // Почвоведение, 2005. № 8. С. 955−959.
  31. A.A. Особенности строения гуминовых веществ из внутритрещенного материала и генетических горизонтов торфянисто-подзолистой почвы // Почвоведение, 2008. № 8. С. 948 954.
  32. A.A. Получение амфифильных фракций гуминовых кислот и их характеристика // Вестн. Моск. Ун-та. сер. 17. Почвоведение. 2008. № 3. С. 29−32.
  33. A.A., Жаркова JI.B., Степанова Е. А. Применение 1Н-ЯМР спектроскопии для характеристики гуминовых веществ // Почвоведение. 1997. № 2. С. 173−177.
  34. Е.А. Химические свойства и строение гуминовых кислот сапропелей. Автореф. дисс.. .канд. биол. наук. М. МГУ. 1986.
  35. С.Я., Боттнер П., Куту М. М. Разложение органического вещества органогенных горизонтов лесных почв в лабораторных условиях//Почвоведение. 1998. № 12. С. 1480−1488.
  36. С.Я., Дорофеева Е. И. О разложении хвойного опада в южнотаежных почвах разной степени гидроморфизма// Вестн. Моск. Ун-та. Сер. 17.
  37. Почвоведение. 1999. № 1. С. 3−8.
  38. И.В. Органическое вещество почвы и его роль в плодородии. Д.: Наука, 1965.
  39. Углерод в экосистемах лесов и болот России./ Под ред. В. А. Алексеева, Р. А. Бердси. Красноярск, 1994. 222 с.
  40. А.Д. Исследование процессов трансформации, взаимодействия и переноса органических веществ, железа и фосфора в подзолистой почве. Автореферат дисс. д-ра биол. наук. Москва. 1975.
  41. А.Д. Участие различных соединений растительных остатков в формировании и обновлении гумусовых веществ почвы. Проблемы почвоведения. М.: Наука, 1978. С. 60—64.
  42. А.Д., Журавлева О. С. Сезонные особенности ^ превращения и транспорта урацила, глицина и глюкозы в почвахподзолистого типа // Почвоведение. 2009. № 4. С. 412−419.
  43. А. Д., Карпухин А. И. Включение продуктов разложения растительных остатков (меченных 14С) в гумусовые вещества // Почвоведение. 1974. № 11. С. 72−78.
  44. А.Д., Лурье А. А., Торшин С. П., Сельскохозяйственная радиология. М.: Дрофа, 2005.
  45. Е.В., Милановский Е. Ю. Роль и значение органического вещества в образовании и устойчивости почвенных агрегатов // Почвоведение. 2003. № 1, С.53−61.
  46. Berg В., Ekbohm G. Litter mass-loss rates and decomposition in some needle and leaf litter types. Long-term decomposition in a Scots pine forest. VII.// Can. J. Bot. V. 69. 1991. P. 1449−1456.
  47. Berg В., Ekbohm G., McClaugherty C. Lignin and holocellulose relations during long-term decomposition of some forest litters. Long-termdecomposition in a Scots pine forest. IV.// Can. J. Bot. V. 62. 1984. P. 2540−2550.
  48. Berg В., Hannus K., Popoff Т., Theander 0. Changes in organic chemical components of needle litter decomposition. Long-term decomposition in a Scots pine forest. I.//Can. J. Bot. 1982. V. 60. P. 13 101 319.
  49. Berg В., McClaugherty C., Johansson M.-B. Litter mass-loss rates in late stages of decomposition at some climatically and nutritionally pine sites. Long-term decomposition in a Scots pine forest. VIII.// Can. J. Bot. V. 71. 1993. P. 680−692.
  50. Berg В., McClaugherty C. Decomposition of litter and soil organic matter = can we distinguish a mechanism for soil organic build up? SCOPE seminar, 1991.
  51. Bernier N., Ponge J.F. Humus forms during the sylvogenic cycle in a mountain spruce forest.// Soil Biol. Biochem. 1994. Vol. 26. P. 183−220.
  52. , N.C. Weil R.R. 2002. The Nature and Properties of Soils 13th Ed. Prentice Hall, NJ. 960 p.
  53. Bridges E., M. Batjes N. H. Soil gaseous emissions and global climate change // Geography. 1996. V. 81(2). P. 155−169.
  54. Gosz I.R. Nitrogen cycling in coniferous ecosystems. // Ecol. Bull. 1981. Vol. 33. P. 45−52.
  55. Grassi M., Gatti G. Nuclear Magnetic Resonance methods in environmental Chemistry.// Annali di Chimia. 1995. V.85. N. 9−10.
  56. Hammel K.E. Fungal degradation of lignin.// Driven by nature. CAB Int. Wallingford. 1997. P. 33−46.
  57. P. G., Rowan R., Mattingly M.A. 1H and 13C-N.M.R. of main humic acids // Organic Geochem. 1980. V. 2. P. 77−85.
  58. Lundquist K., Simonsson R., Tingsvik K. Studies on lignin-carbohydrate linkages in milled wood lignin preparations.// Swed. Pap. J. V. 83. 1980. P. 452−454.
  59. Masunaga T., Kubota D., Hotta M., Wakatsuku T. Nutritional characteristics of mineral elements in leaves tree species in tropical forest, West Sumatra, Indonesia.// Soil Sci. Plant Nutr. 1998. Vol. 44. № 3. P. 315−329.
  60. Meentemeyer V. Macroclimate and lignin control of litter decomposition rates.//Ecology. 1978. Vol. 59.
  61. Melillo J.M., Aber J.D., Linkins A.E., Ricca A., Fry B. and Nadelhoffer K.J. Carbon and nitrogen dynamics along the decay continuum: plant litter to soil organic matter. In Ecology of arable land. Kluwer Academic Publishers, Norwell, MA. 1989.
  62. Nicolardot B., Mary B., Hdadi K. Taking into account plant quality in models which simulate C and N transformations in soils. Transactions of 17th WCSS. Thailand. 2002.
  63. Northrup R.R., Zengshou Y., Dahlgren R.A., Vogt K.A. Polyphenol control of nitrogen release from pine litter.// Nature. 1995. Vol. 377. P. 227−229.
  64. Post W. M., Emanuel W. R., King A. W. Soil organic matter dynamics and the global carbon cycle // World Inventory of Soil Emission Potentials. Wageningen, 1992. P. 107−119.
  65. Piccolo A. The Supramolecular Structure of Humic Substances// Soil Science. 2001, 166(11). P. 810−832.
  66. P., Interess F.S., Sciacovelli O. 1H-N.M.R. spectra of humic and fulvic acids and their peracetic oxidation products // Geochim. et Cocmochim. Acta. 1980. V. 44. P. 603−609.
  67. Schaumann G. E. Review Article Soil organic matter beyond molecular structure Part I: Macromolecular and supramolecular characteristics. J. Plant Nutr. Soil Science. 2006, 169. P. 145−156.
  68. Schutter M., Dick R. Shifts in substrate utilization potential and structure of soil microbial communities in response to carbon substrates.// Soil Biol. Biochem. 2001. V. 33. P. 1481−1449.
  69. Sciacovelli O., Ruggiero P., Testini C., Interesse F.S. Spectroskopic studies on soil organic fractions I.I.R. and 1H-N.M.R. spectra of methylated and unmethilated fulvic acids // Geochim. et Cocmochim. Acta. 1979. V. 42. P. 411−416.
  70. Sciacovelli O., Sinesi V., Testini C. Spectroskopic studies on soil organic fractions I.I.R. and N.M.R. spectra // Soil Biol. Biochem. 1977. V. 9. P. 287−293.
  71. Swift M.J., Heal O.W., Anderson J.M. Decomposition in terrestrial ecosystems. Blackwell Scientific Publications. Oxford. 1979. 372 p.
  72. Valachovic Y.S., Caldwell B.A., Cromack K., Griffiths R.r. Leaf litter chemistry controls on decomposition of Pacific Northwest treesand woody shrubs.// Can. J. Forest Res. 2004. Vol. 34. № 10. P. 21 312 147.
  73. Verhoeven J.T.A., Toth E. Decomposition of Carex and sphagnum litter in fens: effect of litter quality and inhibition by living tissue homogenates.// Soil Biol. Biochem. 1995. Vol. 27. P. 271−275.
  74. Waksman S. Humus. Origin chemical composition and importance in nature / 2nd. ed. Bailliere Tindall, London. 1938.
  75. Waksman S., Tenney F. G. Composition of natural organic materials and their decomposition in the soil. The influence of nature of plant upon the rapidity of its decomposition // Soil Science. 1928. № 26. P. 155−171.
  76. Wardle D.A. Impact of disturbance on detritus food-webs in agroecosystems of contrasting tillage and weed management practices.// Advances in Ecological Research. 1995. Vol. 26. P. 105−185.
  77. Wardle D.A., Lavelle P. Linkages between soil biota, plant litter quality and decomposition.// Driven by nature. CAB Int. Wallingford. 1997. P. 107−127.
  78. Williams S.T., Gray T.R.G. Decomposition of litter on the soil surface In: DICKINSON, C.H.- PUGH, G.J.F. (Ed.). Biology of plant litter decomposition. London: Academic Press, 1977. V.l. 241 p.
  79. Wilson M.A. Application of nuclear magnetic resonance spectroscopy to the study of the structure of soil organic matter // Soil Science. 1981. V. 32. P. 167−186.
  80. M.A., Collin P.J., Tate K.P. 1H-Nuclear Magnetic Resonance study of soil humic acid // Soil Science. 1983. V. 24. P. 297 304.
Заполнить форму текущей работой