Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Вариабельность переносимых иксодовыми клещами бактерий семейства Anaplasmataceae на территории азиатской части России

Диссертация: Вариабельность переносимых иксодовыми клещами бактерий семейства Anaplasmataceae на территории азиатской части России
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

К настоящему времени опубликовано большое количество работ, посвященных изучению распространения, видовой и внутривидовой вариабельности эрлихий и анаплазм, циркулирующих на территории США, Европы, Китая, Кореи и Японии, а также установлению их резерву арных хозяев. Показана высокая генетическая вариабельность A. phagocytophilum и установлено, что различные генетические линии A. phagocytophilum… Читать ещё >

Содержание

  • 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Общая характеристика эрлихиозов и их инфекционных агентов
      • 1. 1. 1. История изучения эрлихиозов
      • 1. 1. 2. Систематика представителей семейства Anaplasmataceae. 11 1.1.3 Морфология эрлихий и анаплазм
      • 1. 1. 4. Структура генома
      • 1. 1. 5. Клиника, лечение 2 О
      • 1. 1. 6. Диагностика
      • 1. 1. 7. Эпидемиология
    • 1. 2. Молекулярно-генетическая характеристика отдельных представителей семейства Anaplasmataceae
      • 1. 2. 1. Характеристика бактерий рода Anaplasma
        • 1. 2. 1. 1. Anaplasmaphagocytophilum
        • 1. 2. 1. 1. 1. Специфичные переносчики A. phagocytophilum
        • 1. 2. 1. 1. 2. Резервуарные хозяева A. phagocytophilum на территории США
        • 1. 2. 1. 1. 3. Резервуарные хозяева A. phagocytophilum на территории Евразии
        • 1. 2. 1. 1. 4. Генетическая вариабельность A. phagocytophilum
        • 1. 2. 1. 2. Внутриэритроцитарные анаплазмы
        • 1. 2. 1. 3. Anaplasma bovis
        • 1. 2. 1. 4. Anaplasmaplatys
      • 1. 2. 2. Характеристика бактерий рода Ehrlichia
        • 1. 2. 2. 1. Ehrlichia chaffeensis
        • 1. 2. 2. 1. 1. Распространение Ehrlichia chaffeensis в природных очагах
        • 1. 2. 2. 1. 2. Генетическая вариабельность Е. chaffeensis
        • 1. 2. 2. 2. Ehrlichia canis
        • 1. 2. 2. 3. Ehrlichia ewingii 45 1.2.2Л. Ehrlichia muris
        • 1. 2. 2. 5. Ehrlichia ruminantium
        • 1. 2. 2. 6. Новые генетические варианты эрлихий 48 1.2.3. Характеристика бактерий «Candidatus Neoehrlichia spp.»
        • 1. 2. 3. 1. «Candidatus Neoehrlichia mikurensis»
        • 1. 2. 3. 2. «CandidatusNeoehrlichialotoris»
  • 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
    • 2. 1. Материалы
    • 2. 2. Буферы и основные растворы
    • 2. 3. Медико-биологические образцы
      • 2. 3. 1. Иксодовые клещи
      • 2. 3. 2. Образцы крови и тканей мелких млекопитающих
      • 2. 3. 3. Образцы крови больных
    • 2. 4. Выделение ДНК 56 2.4.1. Выделение ДНК из иксодовых клещей
      • 2. 4. 2. Выделение ДНК из образцов крови
      • 2. 4. 3. Выделение ДНК из образцов ткани
    • 2. 5. Выявление ДНК бактерий из семейства Anaplasmataceae методом полимеразной цепной реакции (ПЦР)
      • 2. 5. 1. Синтетические олигонуклеотиды
      • 2. 5. 2. Постановка ПЦР
      • 2. 5. 3. Электрофоретическая детекция продуктов ПЦР
      • 2. 5. 4. Определения нуклеотидных последовательностей
      • 2. 5. 5. Анализ нуклеотидных последовательностей
      • 2. 5. 6. Номера доступа использованных в работе нуклеотидных последовательностей в базе данных GenBank
    • 2. 6. Проведение иммуноферментного анализа
    • 2. 7. Проведение статистического анализа
  • 3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ
    • 3. 1. Выявление ДНК бактерий семейства Anaplasmataceae в иксодовых клещах
      • 3. 1. 2. Выявление ДНК бактерий семейства Anaplasmataceae в клещах рода Ixodes 63 3.1.2. Выявление ДНК бактерий семейства Anaplasmataceae в клещах
  • Haemaphysalis spp. и Dermacentor silvarum на территории Хабаровского края
    • 3. 2. Выявление ДНК бактерий семейства Anaplasmataceae в мелких млекопитающих
    • 3. 3. Выявление ДНК эрлихий и анаплазм в личинках и нимфах, снятых с мелких млекопитающих
    • 3. 4. Изучение сезонной динамики частоты встречаемости инфицированных эрлихиями и анаплазмами мелких млекопитающих на территории Хабаровского края
    • 3. 5. Молекулярно-генетический анализ бактерий из семейства Anaplasmataceae
      • 3. 5. 1. Изучение генетической вариабельности Е. muris и новых генетических вариантов Ehrlichia spp
      • 3. 5. 2. Изучение генетической вариабельности «Candidatus N. mikurensis»
      • 3. 5. 3. Изучение генетической вариабельности нетипичных бакетерий семейства Anaplasmataceae
      • 3. 5. 4. Изучение генетической вариабельности A. phagocytophilum
    • 3. 6. Выявление аетител к возбудителям ГАЧ и МЭЧ в крови пациентов на территории Новосибирской области

Вариабельность переносимых иксодовыми клещами бактерий семейства Anaplasmataceae на территории азиатской части России (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Иксодовые клещи являются переносчиками не только возбудителей клещевого энцефалита (КЭ) и иксодового клещевого боррелиоза (ИКБ), но и возбудителей так называемых вновь возникших инфекций (emergence infections), наиболее типичными и хорошо изученными представителями которых являются эрлихиозы. К эрлихиозам относят природно-очаговые инфекции, вызываемые бактериями семейства Anaplasmataceae. Эрлихиозы известны с начала 20 века как заболевания различных видов домашних животных, наносящие серьезный вред сельскому хозяйству, однако широкий интерес к изучению данных заболеваний возник после обнаружения среди представителей семейства Anaplasmataceae патогенных для людей видов. В настоящее время известно 5 видов семейства Anaplasmataceae, вызывающих эрлихиоз человека — Neorickettsia sennetsu, Anaplasma phagocytophilum, Ehrlichia chaffeensis, Ehrlichia ewingii и Ehrlichia canis. Кроме того, инфекцию у людей способны вызвать бактерии кандидатного вида «Candidatus Neoehrlichia mikurensis». За исключением бактерий N. sennetsu, передаваемых алиментарным путем при употреблении инфицированной трематодами рыбы, остальные возбудители эрлихиозов человека передаются в результате присасывания инфицированных иксодовых клещей.

Подавляющее большинство случаев эрлихиозов (несколько тысяч) зарегистрировано в США, при этом доля летальных исходов составляет 1−3%. В Европе отмечены десятки случаев заболеваний, вызванных A. phagocytophilum и единичные случаи заболеваний, вызванных «Candidatus N. mikurensis» (Strie, 2004; Thomas et al., 2009; von Loewenich et al., 2010). В России первый случай гранулоцитарного анаплазмоза был отмечен в 2000 г. на Дальнем Востоке (Сидельников и др., 2003), позднее серологически подтвержденные случаи заболевания были отмечены в различных областях — на Алтае, в Новосибирской, Иркутской и Пермской областях (Афанасьева и др., 2006; Рудаков и др., 2006; Борисов и др., 2010).

Жизненный цикл эрлихий и анаплазм включает стадии размножения в служащих специфичными переносчиками иксодовых клещах и в являющихся резервуарными хозяевами позвоночных животных (Parola et al, 2005). Таежный клещ Ixodes persulcatus является основным видом иксодовых клещей, обитающим в таежных, лесных и лесостепных зонах России от Прибалтики до Тихого океана. Ранее на территории различных областей России в таежных клещах молекулярными методами были выявлены три вида из семейства AnaplasmataceaeA. phagocytophilum, Ehrlichia muris и, в единичных случаях, «Candidatus N. mikurensis» (Шпынов и др., 2004; Eremeeva et al., 2006; Нефедова и др., 2008).

К настоящему времени опубликовано большое количество работ, посвященных изучению распространения, видовой и внутривидовой вариабельности эрлихий и анаплазм, циркулирующих на территории США, Европы, Китая, Кореи и Японии, а также установлению их резерву арных хозяев. Показана высокая генетическая вариабельность A. phagocytophilum и установлено, что различные генетические линии A. phagocytophilum могут существенно различаться по специфичности к различным видам хозяев и по патогенности для человека. Однако, несмотря на ряд исследований, изучающих распространение эрлихий и анаплазм в клещах I. persulcatus на территории России (Телфорд III и др., 2002; Шпынов и др., 2004; Eremeeva et al. 2006), распространение бактерий семейства Anaplasmataceae в различных видах позвоночных хозяев, а также в различных видах клещей не было изучено. Генетическая гетерогенность А. phagocytophilum и других представителей семейства Anaplasmataceae, распространенных на территории России, также практически не изучена.

Цель работы. Целью настоящей работы являлось проведение молекулярно-генетического анализа представителей семейства Anaplasmataceae, выявленных в клещах и мелких млекопитающих на территории азиатской части России.

Задачи исследования.

1. Изучить распространение и видовое разнообразие бактерий из семейства Anaplasmataceae в иксодовых клещах и мелких млекопитающих на территории Урала, Сибири и Дальнего Востока.

2. Провести молекулярно-генетический анализ выявленных бактерий из семейства Anaplasmataceae на основании сравнения нуклеотидных последовательностей гена 16S рРНК и groESL оперона.

3. Изучить возможность участия возбудителей гранулоцитарного анаплазмоза и моноцитарного эрлихиоза человека в патогенезе переносимых клещами инфекций на территории Новосибирской области.

Научная новизна.

Было впервые проведено комплексное исследование распространения и генетического разнообразия бактерий семейства Anaplasmataceae в иксодовых клещах и мелких млекопитающих на территории азиатской части России. Было показано, что возбудитель гранулоцитарного анаплазмоза человека Anaplasma phagocytophilum, моноцитарные эрлихии Ehrlichia muris и, в единичных случаях, патогенные для людей бактерии «Candidatus Neoehrlichia mikurensis» распространены в различных частях ареала таежного клеща. Было показано, что выявленные в разных регионах образцы Е. muris и «Candidatus N. mikurensis» строго консервативны по гену 16S рРНК и groESL оперону, при этом образцы «Candidatus N. mikurensis» отличаются по groESL оперону от изолятов «Candidatus N. mikurensis» из других стран Европы и Азии. Было показано, что выявленные образцы A. phagocytophilum вариабельны по гену 16S рРНК и groESL оперону и подразделяются на три генетические группы. Выявленные в бурундуках образцы A. phagocytophilum из третьей группы на основании сравнения нуклеотидных последовательностей groESL оперона филогенетически схожи с европейскими изолятами A. phagocytophilum, а выявленные в полевках и бурозубках образцы A. phagocytophilum из первой и второй группы образуют новый кластер.

На территории Хабаровского края в клещах Haemaphysalis spp. и в мелких млекопитающих были обнаружены два новых генетических варианта Ehrlichia spp., которые на основании анализа нуклеотидных последовательностей гена 16S рРНК и groESL оперона не могут быть отнесены ни к одному из известных видов. Кроме того, на территории Хабаровского края и Новосибирской области в клещах Dermacentor silvarum, Haemaphysalis concinna и Ixodes spp. была обнаружена ДНК одиннадцати различных генетических вариантов бактерий из семейства Anaplasmataceae, которые на основании анализа нуклеотидных последовательностей гена 16S рРНК не могут быть отнесены ни к одному из известных родов в семействе.

Практическая значимость.

В результате проведения данной работы было показано, что в различных частях ареала таежного клеща на территории азиатской части России в клещах и мелких млекопитающих распространены два патогенных для людей представителя семейства Anaplasmataceae — A. phagocytophilum и «Candidatus N. mikurensis», что свидетельствует о возможном участии данных возбудителей в патогенезе переносимых клещами инфекций на территории исследуемых областей. Было показано, что на территории Новосибирской области около 2% случаев острых лихорадочных состояний у пациентов, возникающих после присасывания клеща, могут быть верифицированы как случаи гранулоцитарного анаплазмоза и/или моноцитарного эрлихиоза на основании наблюдающейся сероконверсии антител к возбудителям данных инфекций. При этом в большинстве случаев гранулоцитарный анаплазмоз протекал в виде смешанной инфекции с иксодовым клещевым боррелиозом или клещевым энцефалитом.

Апробация работы.

По материалам диссертации опубликовано 12 статей. Результаты работы были представлены на трех российских и двух международных конференциях:

Современная ситуация и перспективы борьбы с клещевыми инфекциями в XXI j веке", Томск, 2006; 3 International Conference «Basic Science for Medicine», Новосибирск, 2007; Научная конференция с международным участием «Актуальные вопросы региональной инфекционной патологии», Иркутск, 2007; 4-я Межрегиональная научно-практическая конференция «Актуальные вопросы неврологии и инфекционных болезней», Новосибирск, 2008; X International Jena Symposium on Tick-borne Diseases, Weimar (Germany), 19−21 марта 2009 г.,.

Структура и объем работы. Диссертация состоит из введения, обзора литературы, экспериментальной части, результатов и их обсуждения, заключения, выводов и списка цитированной литературы. Работа изложена на 128 страницах, содержит 10 рисунков и 15 таблиц. Библиография включает 190 литературных источников.

выводы.

1. В результате комплексного изучения распространения бактерий из семейства Anaplasmataceae на территории азиатской части России в иксодовых клещах и мелких млекопитающих была выявлена ДНК Anaplasma phagocytophilum, «Candidatus Neoehrlichia mikurensis», Ehrlichia muris, двух новых генетических вариантов Ehrlichia spp., а также нетипичных бактерий, которые не могут быть отнесены ни к одному из родов семейства Anaplasmataceae.

2. Показано, что возбудитель гранулоцитарного анаплазмоза человека Anaplasma phagocytophilum распространен в клещах Ixodes persulcatus /Ixodes pavlovskyi и в различных видах мелких млекопитающих на территории всех исследуемых областей. На основании анализа последовательностей groESL оперона и гена 16S рРНК образцы A. phagocytophilum подразделяются на три генетические группы, которые различаются также по тропизму к позвоночным хозяевам. Бактерии A. phagocytophilum из первой группы выявлялись в клещах Ixodes spp. и в полевках на территории Сибири и Дальнего Востока, А. phagocytophilum из второй группы — только в полевках и бурозубках на территории Урала, a A. phagocytophilum из третьей группы — в клещах Ixodes spp. во всех исследованных областях и в бурундуках на территории Сибири и Дальнего Востока. Показано, что образцы A. phagocytophilum из первой и второй группы образуют новый филогенетический кластер, ассоциированный с мелкими млекопитающими.

3. Показано, что патогенные для людей бактерии «Candidatus Neoehrlichia mikurensis» распространены в клещах Ixodes persulcatus /Ixodes pavlovskyi и в мелких млекопитающих на территории Сибири и Дальнего Востока, однако частота выявляемости не превышает 0,5%. Впервые показано, что образцы «Candidatus Neoehrlichia mikurensis», выявленные в ареале Ixodes persulcatus, строго консервативны по гену 16S рРНК и groESL оперону и кластеризуются по groESL оперону отдельно от изолятов «Candidatus Neoehrlichia mikurensis» из других стран Европы и Азии.

4. Показано, что предполагаемый возбудитель моноцитарного эрлихиоза человека Ehrlichia muris распространен в клещах Ixodes persulcatus /Ixodes pavlovskyi и в различных видах мелких млекопитающих на территории всех исследуемых областей и является высококонсервативным на основании анализа последовательностей гена 16S рРНК и groESL оперона.

5. Два новых генетических варианта Ehrlichia spp. обнаружены на территории Хабаровского края — Ehrlichia sp. Kh-Hj27 в клещах Haemaphysalis japonica и Ehrlichia sp. Khabarovsk в образцах печени/селезенки мелких млекопитающих. Бактерии Ehrlichia sp. Kh-Hj27 филогенетически схожи с генетическим вариантом эрлихий, выявленном в клещах Haemaphysalis spp. в Японии, а бактерии Ehrlichia sp. Khabarovsk существенно отличаются от других известных генетических вариантов и видов эрлихий. В отличие от А. phagocytophilum и Е. muris, бактерии Ehrlichia sp. Khabarovsk выявлялись в образцах от животных, отловленных до начала периода активности клещей.

6. В клещах Ixodes spp., Dermacentor silvarum и Haemaphysalis concinna на территории Хабаровского края и Новосибирской области обнаружена ДНК нетипичных бактерий из семейства Anaplasmataceae, которые не могут быть отнесены ни к одному из родов данного семейства. Эти бактерии существенно отличаются друг от друга по последовательностям гена 16S рРНК и не образуют отдельную генетическую группу.

7. Показано, что на территории Новосибирской области около 2% случаев острых лихорадочных состояний у людей, возникающих после присасывания клеща, могут быть верифицированы как случаи гранулоцитарного анаплазмоза и/или моноцитарного эрлихиоза на основании наблюдающейся сероконверсии антител к возбудителям данных инфекций.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

В ходе проведения данной работы было изучено распространение и генетическое разнообразие бактерий семейства Anaplasmataceae в ареале таежного клеща I. persulcatus на территории Свердловской, Челябинской, Новосибирской, Иркутской областей и Алтайского края. На всех исследуемых территориях в образцах от клещей I. persulcatus /I. pavlovskyi и от мелких млекопитающих была выявлена ДНК A. phagocytophilum и Е. muris, что подтверждает предположение о повсеместном распространении данных возбудителей в ареале I. persulcatus. ДНК бактерий кандидатного вида, «Candidatus N. mikurensis», которая ранее на территории России была вывлена только в I. persulcatus на территории Омской области, была нами обнаружена в клещах I. persulcatus /I. pavlovskyi и в мелких ' млекопитающих на территории Новосибирской, Иркутской областей и Хабаровского края, однако частота выявляемое&tradeбыла очень низкой и не превышала 0,5%.

На территории Хабаровского края, помимо известных видов, были обнаружены два новых генетических варианта Ehrlichia spp., которые на основании анализа нуклеотидных последовательностей гена 16S рРНК и groESL оперона не могут быть отнесены ни к одному из известных видов. В образцах от около 10% клещей Н. japonica была обнаружена ДНК генетического варианта Ehrlichia sp., названного Ehrlichia sp. Kh-Hj27, а в образцах печени/селезенки от около 15%) мелких млекопитающих была обнаружена ДНК генетического варианта Ehrlichia sp., названного Ehrlichia sp. Khabarovsk.

Кроме того, в различных видах иксодовых клещей, а именно в клещах I. persulcatus //. pavlovskyi на территории Новосибирской области и в клещах I. persulcatus, D. silvarum и Н. concinna на территории Хабаровского края была обнаружена ДНК нетипичных бактерий из семейства Anaplasmataceae, которые на основании анализа нуклеотидных последовательностей гена 16S рРНК не могут быть отнесены ни к одному из родов данного семейства либо к кластеру «Candidatus Neoehrlichia spp.» .

В отличие от A. phagocytophilum и Е. muris, которые были выявлены в большинстве исследованных видов мелких млекопитающих, для бактерий Ehrlichia sp. Khabarovsk характерна специфичность по отношению к определенным видам хозяев. Так, ДНК Ehrlichia sp. Khabarovsk была обнаружена в образцах тканей у около 20% полевок и бурозубок, но лишь в 1 из 359 проанализированных образцов от восточно-азиатских мышей. Среди выявленных бактерий семейства Anaplasmataceae Ehrlichia sp. Khabarovsk является единственным видом, для которого не был установлен вероятный переносчик, и только бактерии Ehrlichia sp. Khabarovsk выявлялись в мелких млекопитающих, отловленных до начала периода активности клещей. Это может свидетельствовать о длительной персистенции Ehrlichia sp. Khabarovsk в мелких млекопитающих либо о возможном участии других переносчиков, помимо иксодовых клещей, в переносе Ehrlichia sp. Khabarovsk позвоночным хозяевам.

Генетическая вариабельность бактерий из семейства Anaplasmataceae была изучена на основании анализа нуклеотидных последовательностей гена 16S рРНК и groESL оперона. Было показано, что выявленные в разных регионах образцы Е. muris и «Candidatus N. mikurensis» строго консервативны по гену 16S рРНК и groESL оперону, при этом нуклеотидные последовательности Е. muris по обоим генетическим локусам схожи с последовательностями изолятов Е. muris из Японии, а образцы uCandidatus N. mikurensis" кластеризуются по groESL оперону отдельно от изолятов «Candidatus N. mikurensis» из других стран Европы и Азии. Выяленные в Хабаровском крае новые генетические варианты Ehrlichia spp. также были высококонсервативны по обоим генетическим локусам, при этом бактерии Ehrlichia sp. Kh-Hj27 были наиболее схожи с генетическим вариантом эрлихий, выявленном в клещах Haemaphysalis spp. в Японии, а бактерии Ehrlichia sp. Khabarovsk существенно отличались от других известных генетических вариантов и видов эрлихий.

Выявленные в различных видах клещей нетипичные бактерии из семейства Anaplasmataceae существенно отличаются друг от друга по последовательностям гена 16S рРНК. Всего в 14 образцах было выявлено 11 различных вариантов нуклеотидных последовательностей, которые образуют гетерогенную группу и не формируют отдельный кластер. Уровень гомологии между различными последовательностями из этой группы варьировал от 92,9 до 100%.

Было показано, что выявленные образцы A. phagocytophilum высоковариабельны и на основании анализа последовательностей groESL оперона подразделяются на три генетические группы, которые различаются также по последовательностям гена 16S pPHK. A. phagocytophilum из первой группы выявлялись в клещах Ixodes spp. и в полевках на территории Сибири и Дальнего Востока, A. phagocytophilum из второй группы — в полевках и бурозубках на территории Урала и из третьей группы — в клещах Ixodes spp. во всех исследованных областях и в бурундуках на территории Сибири и Дальнего Востока. Образцы A. phagocytophilum из третьей группы на основании анализа нуклеотидных последовательностей groESL оперона филогенетически схожи с европейскими изолятами A. phagocytophilum, а образцы A. phagocytophilum из первой и второй группы вместе с единственной известной последовательностью groESL оперона A phagocytophilum из мелких млекопитающих в Европе образуют новый кластер на филогенетическом дереве.

Выявление на исследуемых территориях патогенных для людей представителей семейства Anaplasmataceae свидетельствует о потенциальной опасности развития эрлихиозов у людей вследствии присасывания инфицированных клещей. Нам не удалось выявить ДНК инфекционных агентов в образцах крови пациентов, госпитализированных с подозрением на клещевой энцефалит. Однако на основании наблюдающейся сероконверсии антител было показано, что на территории Новосибирской области около 2% случаев острых лихорадочных состояний у пациентов, возникающих после присасывания клеща, могут быть верифицированы как случаи гранулоцитарного анаплазмоза и/или моноцитарного эрлихиоза. При этом в большинстве случаев гранулоцитарный анаплазмоз протекал в виде смешанной инфекции с иксодовым клещевым боррелиозом или клещевым энцефалитом.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Е.С., Благов H.A., Дружинина Т. А., Шалепо Е. В. Клещевые микстинфекции (иксодовый клещевой боррелиоз и гранулоцитарный эрлихиоз человека) в Ярославской области // Эпидемиология и инфекционные болезни. 2008. — № 2. — С. 6−8.
  2. М.В., Воробьёва H.H., Коренберг Э. И., Фризен В. И., Манокина Т. Е. Гранулоцитарный анаплазмоз человека: особенности клинических проявлений в России // Инфекционные болезни. 2006. — Т.4. — № 2. — С. 2428.
  3. В.И. Иксодовые клещи Приамурья. В сборнике: Барашников В. И., Волков В. И. Кровососущие членистоногии и борьба с ними в районах новостроек Дальнего Востока. Ленинград, 1977. С. 17−42.
  4. Д.А., Киселева Е. В. Функциональная роль белков, содержащих анкириновые повторы // Цитология. 2007. Т.49. — № 2. — С. 989−999.
  5. Е.В., Коренберг Э. И., Воробьёва Н. И. Первые данные о клиническом течении моноцитарного эрлихиоза в России // Эпидемиология и инфекционные болезни. 2000. — № 6. — С. 20−23.
  6. H.H., Ливанов С. Е. Зоологические предпосылки существования на Северном Урале инфекций человека, передающихся иксодовыми клещами // Зоологический журнал. -2010.- № 6.-С. 1−8.
  7. H.H., Ливанов С. Г., Панов В. В. Особенности распределения клещей Ixodes persulcatus и Ixodes pavlovsky на границе лесной и лесостепной зон Приобья // Паразитология. 2011. — Т.45. — № 2. — С. 94−103.
  8. В.В., Коренберг Э. И., Ковалевский Ю. В., Горелова Н. Б., Воробьева H.H. Микроорганизмы порядка Rickettsiales у таежного клеща (Ixodes persulcatus Sch.) в Предуралье // Вестник Российской Академии медицинских наук. 2008. — № 7. — С. 47−50.
  9. A.C., Рудаков Н. В., Седых H.H. Эрлихиозы и анаплазмозы в очагах сибирского клещевого риккетсиоза Алтайского края // Детские инфекции. -2009. -№ 2. С. 30−32.
  10. H.A. Биометрия. Изд-во МГУ, 1970. 367 с.
  11. Т.В., Пиневич О. С. Современные особенности микст-инфекций у детей // Сибирский консилиум. 2006. — № 4. — С. 39−43.
  12. Н.В., Шпынов С. Н., Самойленко И. Е., Кумпан JI.B., Решетникова Т. А. Современные подходы к изучению Rickettsiales. II Бюллет. сиб. мед. -2006. Приложение № 1, — С. 111−115.
  13. М.Н. Структура, клиническая характеристика и лабораторная диагностика заболеваний, возбудители которых передаются иксодовыми клещами, у детей: Автореф. дис. канд. мед. наук. М., 2009. — 20 с.
  14. В.Ф., Доронцова В. А., Телегин ВН., Ивлева Н. Г., Добротворский А. К. Особенности распределения Ixodes persulcatus и Ixodes pavlovsky в лесопарковой зоне г. Новосибирска // Паразитология. -1985.-Т. 19.-№ 5.-С. 370−373.
  15. Ю.Н., Медянников О. Ю., Иванов Л. И., Здановская H.H. Первый случай гранулоцитарного эрлихиоза на Дальнем Востоке Российской Федерации //Клин, медицина. 2003. — № 81. — С. 67−68.
  16. Н. В., Романова Е. В., Мельникова О. В., Черноусова Н. Я., Епихина Т. И. Детекция ДНК боррелий комплекса Borrelia burgdorferi sensu lato в крови больных иксодовыми клещевыми боррелиозами // Клин. лаб. диагн. 2006. — № 7. — С. 35−37.
  17. Л.Д. Эпидемиологический надзор и контроль инфекций, передающихся клещами, в Республике Алтай: Автореф. дис. канд. мед. наук. Омск, 2009. — 20 с.
  18. Alberti A., Addis M.F., Sparagano O., Zobba R., Chessa В., Cubeddu Т., Parpaglia M.L., Ardu M., Pittau M. Anaplasma phagocytophilum, Sardinia, Italy //Emerg. Infect. Dis. 2005. — V.ll. — P. 1322−1324.
  19. Alekseev A.N., Dubinina H.V., Van De Pol I., Schouls L.M. Identification of Ehrlichia spp. and Borrelia burgdorferi in Ixodes ticks in the Baltic regions of Russia // J. Clin. Microbiol. 2001. — V.39. — P. 2237−2342.
  20. Allsopp B.A. Natural history of Ehrlichia ruminantium II Vet. Parasitol. 2010. -V.167.-P. 123−135.
  21. Almazan C., Medrano C., Ortiz M., de la Fuente J. Genetic diversity of Anaplasma marginale strains from an outbreak of bovine anaplasmosis in an endemic area 11 Vet. Parasitol. 2008. — V.158. — P. 103−109.
  22. Anderson B.E., Dawson J.E., Jones D.C., Wilson K.H. Ehrlichia chaffeensis, a new species associated with human ehrlichiosis // J. Clin. Microbiol. 1991. -V.29.-P. 2838−2842.
  23. Anderson B.E., Greene C.E., Jones D.C., Dawson J.E. Ehrlichia ewingii sp. nov., the etiologic agent of canine granulocytic ehrlichiosis // Int. J. Syst. Bacteriol. -1992.-V.42.-P. 299−302.
  24. Anderson B.E., Sims K.G., Olson J.G., Childs J.E., Piesman J.F., Happ C.M., Maupin G.O., Johnson B.J. Amblyomma americanum: a potential vector of human ehrlichiosis // Am. J. Trop. Med. Hyg. 1993. — V.49. — P. 239−244.
  25. Bakken J.S., Dumler J.S. Clinical diagnosis and treatment of human granulocytotropic anaplasmosis // Ann. N. Y. Acad. Sci. 2006. — V.1078. — P. 236−247.
  26. Boom R., Sol C.J., Salimans M.M., Jansen C.L., Wertheim-van Dillen P.M., van der Noordaa J. Rapid and simple method for purification of nucleic acids // J. Clin. Microbiol. 1990. — V. 28. — P.495−503.
  27. Bown K.J., Begon M., Bennett M., Woldehiwet Z., Ogden N.H. Seasonal dynamics of Anaplasma phagocytophila in a rodent-tick (Ixodes trianguliceps) system, United Kingdom // Emerg. Infect. Dis. 2003. — V.9. — P. 63−70.
  28. Bown K.J., Lambin X., Ogden N.H., Begon M., Telford G., Woldehiwet Z., Birtles R.J. Delineating Anaplasma phagocytophilum ecotypes in coexisting, discrete enzootic cycles // Emerg. Infect. Dis. 2009. — V. 15. — P. 1948−1954.
  29. Brouqui P., Dumler J. S. Serologic evidence of human monocytic and granulocytic ehrlichiosis in Israel // Emerg. Infect. Dis. 2000 — V.6. — P. 314 315.
  30. Calic S.B., Galvao M.A., Bacellar F., Rocha C.M., Mafra C.L., Leite R. C, Walker D.H. Human ehrlichioses in Brazil: first suspect cases // Braz. J. Infect. Dis. 2004. — V.8. — P. 259−262.
  31. Cao W.C., Gao Y.M., Zhang P.H., Zhang X.T., Dai Q.H., Dumler J.S., Fang L.Q., Yang H. Identification of Ehrlichia chaffeensis by nested PCR in ticks from Southern China // J. Clin. Microbiol. 2000. — V.38. — P. 2778−2780.
  32. Cardoso L., Tuna J., Vieira L., Yisaschar-Mekuzas Y., Baneth G. Molecular detection of Anaplasma platys and Ehrlichia canis in dogs from the North of Portugal // Vet. J. 2010. — V. 183. — P. 232−233.
  33. Chen S.M., Duraler J.S., Bakken J.S., Walker D.H. Identification of a granulocytotropic Ehrlichia species as the etiologic agent of human disease // J. Clin. Microbiol. 1994. — V.32. — P. 589−595.
  34. Davidson W.R., Lockhart J.M., Stallknecht D.E., Howerth E.W. Susceptibility of red and gray foxes to infection by Ehrlichia chaffeensis II J. Wildl. Dis. 1999. -V.35.-P. 696−702.
  35. Dugan V.G., Little S.E., Stallknecht D.E., Beall A.D. Natural infection of domestic goats with Ehrlichia chaffeensis II J. Clin. Microbiol. 2000. — V.38. -p. 448−449.
  36. Ehrlichia phagocytophilum // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2001. — V.51. — P. 2145−2165.
  37. Dumler J.S., Choi K.S., Garcia-Garcia J.C., Barat N.S., Scorpio D.G., Garyu J.W., Grab D.J., Bakken J.S. Human granulocytic anaplasmosis and Anaplasma phagocytophilum II Emerg. Infect. Dis. 2005. — V. 11. — P. 1828−1834.
  38. Eremeeva M.E., Oliveira A., Robinson J.B., Ribakova N., Tokarevich N.K., Dasch G.A. Prevalence of bacterial agents in Ixodes persulcatus ticks from the Vologda Province of Russia // Ann. N. Y. Acad. Sci. 2006. — V.1078. — P. 291 298.
  39. Fehr J.S., Bloemberg G.V., Ritter C., Hombach M., Luscher T.F., Weber R., Keller P.M. Septicemia caused by tick-borne bacterial pathogen Candidatus Neoehrlichia mikurensis //Emerg. Infect. Dis. 2010. — V.16. -P. 1127−1129.
  40. Fishbein D.B., Dawson J.E., Robinson L.E. Human ehrlichiosis in the United States, 1985 to 1990 //Ann. Intern. Med. 1994. — V.120. — P. 736−743.
  41. Foley J.E., Clueit S.B., Brown R.N. Differential exposure to Anaplasma phagocytophilum in rodent species in northern California // Vector Borne Zoonotic Dis. 2008a. — V. 8. — P. 49−55.
  42. Foley J., Nieto N.C., Madigan J., Sykes J. Possible differential host tropism in Anaplasma phagocytophilum strains in the Western United States // Ann. N. Y. Acad. Sci. 2008b. — V. 1149. — P. 94−97.
  43. Foley J.E., Nieto N.C., Massung R., Barbet A., Madigan J., Brown R.N. Distinct ecologically relevant strains of Anaplasma phagocytophilum H Emerg. Infect. Dis. 2009. — V.15. — P. 842−843.
  44. Gongora-Biachi R.A., Zavala-Velazquez J. Castro-Sansores C.J., Gonzalez-Martinez P. First case of human ehrlichiosis in Mexico // Emerg. Infect. Dis. -1999. V.5. — P. 481.
  45. Granquist E.G., Bardsen K., Bergstrom K., Stuen S. Variant -and individual dependent nature of persistent Anaplasma phagocytophilum infection // Acta Vet. Scand.-2010.-V.52.-P. 25.
  46. Grzeszczuk A., Karbowiak G., Ziarko S., Kovalchuk O. The root-vole Microtus oeconomus (Pallas, 1776): a new potential reservoir of Anaplasma phagocytophilum II Vector Borne Zoonotic Dis. 2006. — V.6. — P.240−243.
  47. Hartelt K., Pluta S., Oehme R., Kimmig P. Spread of ticks and tick-borne diseases in Germany due to global warming // Parasitol. Res. 2008. — V.103, Suppl. l.-P. 109−116.
  48. Heppner D.G., Wongsrichanalai C., Walsh D.S., McDaniel P., Eamsila C., Hanson B., Paxton H. Human ehrlichiosis in Thailand // Lancet. 1997. — V.350. -P. 785−786.
  49. Hsieh Y.C., Lee C.C., Tsang C.L., Chung Y.T. Detection and characterization of four novel genotypes of Ehrlichia canis from dogs // Vet. Microbiol. 2010. -V.146.-P. 70−75.
  50. Inokuma H., Ohno K., Onishi T., Raoult D., Brouqui P. Detection of ehrlichial infection by PCR in dogs from Yamaguchi and Okinawa Prefectures, Japan // J. Vet. Med. Sci. 2001. — V.63. -P. 815−817.
  51. Inokuma H., Ohashi M., Jilintai Tanabe S., Miyahara K. Prevalence of tick-borne Rickettsia and Ehrlichia in Ixodes persulcatus and Ixodes ovatus in Tokachi district, Eastern Hokkaido, Japan // J. Vet. Med. Sci. 2007. — V. 69. — P.661−664.
  52. Kawahara M., Tajima T., Torii H., Yabutani M., Ishii J., Harasawa M., Isogai E., Rikihisa Y. Ehrlichia chaffeensis infection of sika deer, Japan // Emerg. Infect. Dis. -2009.-V.15.-P. 1991−1993.
  53. Kocan A.A., Levesque G.C., Whitworth L.C., Murphy G.L., Ewing S.A., Barker R.W. Naturally occurring Ehrlichia chaffeensis infection in coyotes from Oklahoma // Emerg. Infect. Dis. 2000. — V.6. — P. 477−480.
  54. Kocan K.M., de la Fuente J., Blouin E.F., Coetzee J.F., Ewing S.A. The natural history of Anaplasma marginale II Vet. Parasitol. 2010. — V.167. — P.95−107.
  55. Kramer V.L., Randolph M.P., Hui L.T., Irwin W.E., Gutierrez A.G., Vugia D.J., Detection of the agents of human ehrlichioses in ixodid ticks from California // Am. J. Trop. Med. Hyg. 1999. — V.60. — P. 62−65.
  56. Kybicova K., Schanilec P., Hulinska D., Uherkova L., Kurzova Z., Spejchalova S. Detection of Anaplasma phagocytophilum and Borrelia burgdorferi sensu lato in dogs in the Czech Republic // Vector Borne Zoonotic Dis. 2009. — V.9. — P. 655−561.
  57. Lee M., Yu D., Yoon J., Li Y., Lee J., Park J. Natural co-infection of Ehrlichia chaffeensis and Anaplasma bovis in a deer in South Korea // J. Vet. Med. Sei. -2009.-V.71.-P. 101−103.
  58. Liz J.S., Anderes L., Sumner J.W., Massung R.F., Gern L., Rutti B., Brossard M. PCR detection of granulocytic ehrlichiae in Ixodes ricinus ticks and wild small mammals in western Switzerland // J. Clin. Microbiol. 2000. — V.38. — P. 10 021 007.
  59. Liz J.S., Sumner J.W., Pfister K., Brossard M. PCR detection and serological evidence of granulocytic ehrlichial infection in roe deer (Capreolus capreolus) and chamois (Rupicapra rupicapra) II J. Clin. Microbiol. 2002. — V.40. — P. 892−897.
  60. Lotric-Furlan S., Petrovec M., Avsic-Zupanc T., Nicholson W.L., Sumner J.W., Childs J.E., Strle F. Human ehrlichiosis in central Europe // Wien. Klin. Wochenschr. 1998. — V.110.-P. 894−897.
  61. Lotric-Furlan S., Rojko T., Petrovec M., Avsic-Zupanc T., Strle F. Epidemiological, clinical and laboratory characteristics of patients with human granulocytic anaplasmosis in Slovenia // Wien. Klin. Wochenschr. 2006. -V.118. -P.708−713.
  62. Martinez M.C., Gutierrez C.N., Monger F., Ruiz J., Watts A., Mijares V.M., Rojas M.G., Triana-Alonso F.J. Ehrlichia chaffeensis in child, Venezuela // Emerg. Infect. Dis. 2008. -V. 14. — P. 519−520.
  63. Massung R.F., Mauel M.J., Owens J.H., Allan N., CourtneyJ.W., Stafford 3rd K.C., Mather T.N. Genetic variants of Ehrlichia phagocytophila, Rhode Island and Connecticut // Emerg. Infect. Dis. 2002. — V.8. — P. 467−472.
  64. Massung R.F., Priestley R.A., Miller N.J., Mather T.N., Levin M.L. Inability of a variant strain of Anaplasma phagocytophilum to infect mice // J. Infect. Dis. -2003.-V.188.-P. 1757−1763.
  65. Massung R.F., Mather T.N., Levin M.L. Reservoir competency of goats for the Ap-variant 1 strain of Anaplasma phagocytophilum. Infect. Immun. 2006. V.74. -P. 1373−1375.
  66. Matsumoto K., Joncour G., Lamanda P., Inokuma H.5 Brouqui P. Detection of Anaplasma phagocytophilum and Ehrlichia sp. HF strains in Ixodes ricinus ticks in Brittany, France // Clin. Microbiol. Infect. 2007. — V. 13. — P. 338−341.
  67. Michalski M., Rosenfield C., Erickson M., Selle R., Bates K., Essar D., Massung R. Anaplasma phagocytophilum in central and western Wisconsin: a molecular survey // Parasitol. Res. 2006. — V.99. — P. 694−699.
  68. Miura K., Rikihisa Y. Virulence potential of Ehrlichia chaffeensis strains of distinct genome sequences // Infect. Immun. 2007. — V.75. — P. 3604−3613.
  69. MMWR. Notifiable diseases/deaths in selected cities weekly information // Morbidity and Mortality Weekly Report. 2009. — V.57. — P. 1396−1407.
  70. MMWR. Final 2009 Reports of Nationally Notifiable Infectious Diseases // Morbidity and Mortality Weekly Report. 2010. — V.59. — 1025−1039.
  71. Morais J.D., Dawson J.E., Greene C., Filipe A.R., Galhardas L.C., Bacellar F. First European case of ehrlichiosis //Lancet. 1991. V.338. — P. 633−634.
  72. Motoi Y., Satoh H., Inokuma H., Kiyuuna T., Muramatsu Y., Ueno H., Morita C. First detection of Ehrlichia platys in dogs and ticks in Okinawa, Japan // Microbiol. Immunol. 2001. — V.45. — P. 89−91.
  73. Ndip L.M., Labruna M., Ndip R.N., Walker D.H., McBride J.W. Molecular and clinical evidence of Ehrlichia chaffeensis infection in Cameroonian patients with undifferentiated febrile illness // Ann. Trop. Med. Parasitol. 2009. — V. 103. — P. 719−725.
  74. Ndip L.M., Ndip R.N., Esemu S.N., Walker D.H., McBride J.W. Predominance of Ehrlichia chaffeensis in Rhipicephalus sanguineus ticks from kennel-confined dogs in Limbe, Cameroon // Exp. Appl. Acarol. 2010. — V.50. — P. 163−168.
  75. Nicholson W.L., Allen K.E., McQuiston J.H., Breitschwerdt E.B., Little S.E. The increasing recognition of rickettsial pathogens in dogs and people // Trends Parasitol. 2010. — V.26. -P.205−212.
  76. Nieto N.C., Foley J.E. Evaluation of squirrels (Rodentia: Sciuridae) as ecologically significant hosts for Anaplasma phagocytophilum in California // J. Med. Entomol. 2008. — V.45. — P. 763−769.
  77. Nieto N.C., Foley J.E. Reservoir competence of the redwood chipmunk (Tamias ochrogenys) for Anaplasma phagocytophilum II Vector Borne Zoonotic Dis. -2009. V.9. — P. 573−577.
  78. Ogden N.H., Bown K., Horrocks B.K., Woldehiwet Z., Bennett M. Granulocytic Ehrlichia infection in ixodid ticks and mammals in woodlands and uplands of the U.K. // Med. Vet. Entomol. 1998. — V.12. — P. 423−429.
  79. Ogden N.H., Casey A.N., Woldehiwet Z., French N.P. Transmission of Anaplasma phagocytophilum to Ixodes ricinus ticks from sheep in the acute and post-acute phases of infection // Infect. Immun. 2003. — V.71. -P. 2071−2078.
  80. Ohashi N., Inayoshi M., Kitamura K., Kawamori F., Kawaguchi D., Nishimura Y., Naitou H., Hiroi M., Masuzawa T. Anaplasma phagocytophilum-infected ticks, Japan//Emerg. Infect. Dis. 2005. — V. 11. — P. 1780−1783.
  81. Paddock C.D., Childs J.E. Ehrlichia chaffeensis: a Prototypical Emerging Pathogen 11 Clin. Microbiol. Rev. 2003. — V.16. — P. 37−64.
  82. Pan H., Liu S., Ma Y., Tong S., Sun Y. Ehrlichia-like organism gene found in small mammals in the suburban district of Guangzhou of China // Ann. N. Y. Acad. Sci. 2003.-V.990.-P. 107−111.
  83. Parkins M.D., Church D.L., Jiang X.Y., Gregson D.B. Human granulocytic anaplasmosis: First reported case in Canada // Can. J. Infect. Dis. Med. Microbiol. 2009. — V.20. — P. 100−102.
  84. Parola P., Inokuma H., Camicas J.L., Brouqui P., Raoult D. Detection and identification of spotted fever group Rickettsiae and Ehrlichiae in African ticks // Emerg. Infect. Dis. 2001. — V.7. — P. 1014−1017.
  85. Parola P., Davoust B., Raoult D. Tick- and flea-borne rickettsial emerging zoonoses // Vet. Res. 2005. — V.36. — P. 469−492.
  86. Perez M., Rikihisa Y., Wen B. Ehrlichia canis-like agent isolated from a man in Venezuela: antigenic and genetic characterization // J. Clin. Microbiol. -1996. -V.34.-P. 2133−2139.
  87. Perez M., Bodor M., Zhang C., Xiong Q., Rikihisa Y. Human infection with Ehrlichia canis accompanied by clinical signs in Venezuela // Ann. N. Y. Acad. Sci. -2006.-V.1078.-P. 110−117.
  88. Petrovec M., Lotric Furlan S., Zupanc T.A., Strle F., Brouqui P., Roux V., Dumler J.S. Human disease in Europe caused by a granulocytic Ehrlichia species //J. Clin. Microbiol. 1997,-V.35.-P. 1556−1559.
  89. Petrovec M., Bidovec A., Sumner J.W., Nicholson W.L., Childs J.E., Avsic-Zupanc T. Infection with Anaplasma phagocytophila in cervids from Slovenia: evidence of two genotypic lineages // Wien. Klin. Wochenschr. 2002. — V.31. -P. 641−647.
  90. Petrovec M., Sixl W., Marth E., Bushati N., Wust G. Domestic animals as indicators of Anaplasma species infections in Northern Albania // Ann. N. Y. Acad. Sei.-2003.-V.990.-P. 112−115.
  91. Pinyoowong D., Jittapalapong S., Suksawat F., Stich R.W., Thamchaipenet A. Molecular characterization of Thai Ehrlichia canis and Anaplasma platys strains detected in dogs // Infect. Genet. Evol. 2008. — V.8. — P. 433−438.
  92. Popov V.L., Chen S.M., Feng H.M., Walker D.H. Ultrastructural variation of cultured Ehrlichia chaffeensis // J. Med. Microbiol. 1995. — V.43. — P. 411−421.
  93. Portillo A., Perez-Martinez L., Santibanez S., Santibanez P., Palomar A.M., Oteo J.A. Anaplasma spp. in wild mammals and Ixodes ricinus from the north of Spain // Vector Borne Zoonotic Dis.- 2011. V. 11. — P. 3−8.
  94. Pusterla N., Anderson R.J., House J.K., Pusteria J.B., DeRock E., Madigan J.E. Susceptibility of cattle to infection with Ehrlichia equi and the agent of human granulocytic ehrlichiosis // J. Am. Vet. Med. Assoc. 2001. — V. 218. — P. 11 601 162.
  95. Ravyn M.D., Korenberg E.I., Oeding J.A., Kovalevskii Y.V., Johnson R.C. Monocytic Ehrlichia in Ixodes persulcatus ticks from Perm, Russia // Lancet. -1999.-V.27.-P. 722−723.
  96. Ravyn M.D., Kodner C.B., Carter S.E., Jarnefeld J.L., Johnson R.C. Isolation of the etiologic agent of human granulocytic ehrlichiosis from the white-footed mouse (Peromyscus leucopus) II J. Clin. Microbiol. 2001. — V.39. — P. 335−338.
  97. Rikihisa Y. The tribe Ehrlichieae and ehrlichial diseases // Clin. Microbiol. Rev. -1991.-V.4.-P. 286−308.
  98. Rikihisa Y. New findings on members of the family Anaplasmataceae of veterinary importance // Ann. N. Y. Acad. Sei. 2006. — V.1078. -P. 438−445.
  99. Rosef O, Paulauskas A, Radzijevskaja J. Prevalence of Borrelia burgdorferi sensu lato and Anaplasma phagocytophilum in questing Ixodes ricinus ticks in relation to the density of wild cervids // Acta Vet. Scand. 2009. — V.51. — P. 47.
  100. Rymaszewska A. Divergence within the marker region of the groESL operon in Anaplasma phagocytophilum II Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis.- 2008. V.27. -P. 1025−1036.
  101. Schouls L.M., van de Pol I., Rijpkema S.G.T., Schot C.S. Detection and identification of Ehrlichia, Borrelia burgdorferi sensu lato, and Bartonellaspecies in Dutch Ixodes ricinus ticks // J. Clin. Microbiol. 1999. — V.37. — P. 2215−2222.
  102. Shibata S., Kawahara M., Rikihisa Y., Fujita H., Watanabe Y., Suto C., Ito T. New Ehrlichia species closely related to Ehrlichia chaffeensis isolated from Ixodes ovatus ticks in Japan // J. Clin. Microbiol. 2000. — V.38. — P. 1331−1338.
  103. Skotarczak B. Canine ehrlichiosis // Ann. Agric. Environ. Med. 2003. — V. 10. -P. 137−141.
  104. Spitalska E., Boldis V., Kostanova Z., Kocianova E., Stefanidesova K. Incidence of various tick-borne microorganisms in rodents and ticks of central Slovakia // Acta Virol. 2008. — V.52. — P. 175−179.
  105. Strle F. Human granulocytic ehrlichiosis in Europe // Int. J. Med. Microbiol. -2004. V.293. — Suppl. 37. — P. 27−35.
  106. Stuen S., Van De Pol I., Bergstrom K., Schouls L.M. Identification of Anaplasma phagocytophila (formerly Ehrlichia phagocytophila) variants in blood from sheep in Norway//J. Clin. Microbiol. 2002.-V.40.-P. 3192−3197.
  107. Stuen S., Moum T., Bernhoft A., Vene S. A paretic condition in an Anaplasma phagocytophilum infected roe deer calf // J. Wildl. Dis. 2006a. — V.42. — P. 170 174.
  108. Stuen S., Moum T., Petrovec M., Schouls L.M. Genetic variants of Anaplasma phagocytophilum in Norvay // Int. J. Med. Microbiol. 2006b. — V.296. — Suppl. 1, — P. 164−166.
  109. Sumner J.W., Childs J.E., Paddock C.D. Molecular cloning and characterization of the Ehrlichia chaffeensis variable-length PCR target: an antigen-expressing gene that exhibits interstrain variation // J. Clin. Microbiol. -1999. V.37. — P. 1447−1453.
  110. Tamamoto C., Seino N., Suzuki M., Kaji K., Takahashi H., Inokuma H. Detection of Ehrlichia muris DNA from sika deer (Cervus nippon yesoensis) in Hokkaido, Japan // Vet. Parasitol. 2007. — V.25. — P.370−373.
  111. Takano A., Ando S., Kishimoto T., Fujita H., Kadosaka T., Nitta Y., Kawabata H., Watanabe H. Presence of a novel Ehrlichia sp. in Ixodes granulatus found in Okinawa, Japan // Microbiol. Immunol. 2009. — V.53. — P. 101−106.
  112. Teglas M.B., Foley J. Differences in the transmissibility of two Anaplasma phagocytophilum strains by the North American tick vector species, Ixodes pacificus and Ixodes scapularis (Acari: Ixodidae) // Exp. Appl. Acarol. 2006. -P.38.-P. 47−58.
  113. Telford III S.R., Dawson J. E, Katavolos P., Warner C.K., Kolbert C.P., Persing D.H. Perpetuation of the agent of human granulocytic ehrlichiosis in a deer tick-rodent cycle // Proc. Natl. Acad. Sci. USA.- 1996. V. l 1. — P.6209−6214.
  114. Thomas R.J., Dumler J.S., Carlyon J.A. Current management of human granulocytic anaplasmosis, human monocytic ehrlichiosis and Ehrlichia ewingii ehrlichiosis // Expert. Rev. Anti. Infect. Ther. 2009. — V.7. — P. 709−722.
  115. Tomassone L., Nunez P., Gurtler R.E., Ceballos L.A., Orozco M.M., Kitron U.D., Farber M. Molecular detection of Ehrlichia chaffeensis in Amblyomma parvum ticks, Argentina // Emerg. Infect. Dis. 2008. — V.14. — P. 1953−1955.
  116. Walker D.H., Ismail N., Olano J.P., McBride J.W., Yu X.J., Feng H.M. Ehrlichia chaffeensis: a prevalent, life-threatening, emerging pathogen // Trans. Am. Clin. Climatol. Assoc. -2004,-V.115.-P. 375−382.
  117. Welinder-Olsson C., Kjellin E., Vaht K., Jacobsson S., Wenneras C. First case of human «Candidatus Neoehrlichia mikurensis» infection in a febrile patient with chronic lymphocytic leukemia // J. Clin. Microbiol. 2010. — V.48. — P. 19 561 959.
  118. Wen B, Cao W, Pan H. Ehrlichiae and ehrlichial diseases in China // Ann. N. Y. Acad. Sei. 2003. — V. 990. — P. 45−53.
  119. Woese C. R, Kandler O., Wheelis M. Towards a natural system of organisms: proposal for domains Archaea, Bacteria, and Eukaria // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1990. — V.87. — P. 4576−4579.
  120. Yu X., Piesman J.F., Olson J.G., Walker D.H. Short report: geographic distribution of different genetic types of Ehrlichia chaffeensis II Am. J. Trop. Med. Hyg. 1997. — V.56. — P. 679−680.
  121. Yu D.H., Li Y.H., Yoon J. S, Lee J. H, Lee M.J., Yu I.J., Chae J. S, Park J.H. Ehrlichia chaffeensis infection in dogs in South Korea // Vector Borne Zoonotic Dis. 2008. — V.8. — P. 355−358.
  122. Zhang X. F, Zhang J. Z, Long S. W, Ruble R. P, Yu X.J. Experimental Ehrlichia chaffeensis infection in beagles // J. Med. Microbiol. 2003. — V.52. — P. 10 211 026.
  123. Zhang L., Shan A., Mathew B., Yin J., Fu X., Zhang J., Lu J., Xu J., Dumler S. Rickettsial seroepidemiology among farm workers, Tianjin, People’s Republic of China//Emerg. Infect. Dis. 2008. -V. 14. — P. 938−940.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!