Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Взаимодействие холинергических и пуринергических механизмов регуляции спонтанной квантовой секреции медиатора в нервно-мышечном соединении лягушки

Диссертация: Взаимодействие холинергических и пуринергических механизмов регуляции спонтанной квантовой секреции медиатора в нервно-мышечном соединении лягушки
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Изменение интенсивности выделения медиатора из нервного окончания является эффективным способом обеспечения синаптической пластичности. Один из конкретных механизмов, контролирующих нейросекрецию, связан с активацией пресинаптических рецепторов медиаторами и комедиаторами. В нервно-мышечном синапсе медиатор ацетилхолин (АХ), выделяющийся в ходе предшествующей активности или в неквантовой форме… Читать ещё >

Содержание

  • 1. ВВЕДЕНИЕ
    • 1. 1. Актуальность исследования
    • 1. 2. Цель и задачи исследования
    • 1. 3. Положения, выносимые на защиту
    • 1. 4. Научная новизна
    • 1. 5. Научно-практическая ценность
    • 1. 6. Апробация работы
  • 2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 2. 1. Метаболизм АТФ в синапсе
    • 2. 2. Гидролиз АТФ в синаптической щели
    • 2. 3. Классификация пуринергических рецепторов 1 б
      • 2. 3. 1. Классификация Р1 рецепторов
      • 2. 3. 2. Агонисты и антагонисты аденозиновых рецепторов
      • 2. 3. 3. Характеристика вторичных посредников аденозиновых рецепторов
      • 2. 3. 4. Физиологическая роль аденозиновых рецепторов
        • 2. 3. 4. 1. А1 рецепторы
        • 2. 3. 4. 2. А2а рецепторы
        • 2. 3. 4. 3. Взаимодействие между А1 и А2а рецепторами
        • 2. 3. 4. 4. А2Ь рецепторы
        • 2. 3. 4. 5. АЗ рецепторы
      • 2. 3. 5. Р2 рецепторы
        • 2. 3. 5. 1. Агонисты и антагонисты Р2 рецепторов
        • 2. 3. 5. 2. Характеристика вторичных посредников Р2У рецепторов
    • 2. 4. Аддитивность эффектов АТФ и аденозина
    • 2. 5. Никотиновые холинорецепторы
      • 2. 5. 1. Агонисты и антагонисты никотиновых холинорецепторов
      • 2. 5. 2. Функциональная роль никотиновых холинорецепторов
    • 2. 6. Мускариновые холинорецепторы
      • 2. 6. 1. Агонисты и антагонисты мускариновых холинорецепторов
      • 2. 6. 2. Подтипы мускариновых холинорецепторов
      • 2. 6. 3. Строение мускариновых холинорецепторов 35 2.6.3.1. Характеристика вторичных посредников мускариновых холинорецепторов
      • 2. 6. 4. Физиологическая роль мускариновых холинорецепторов
      • 2. 6. 5. Мускариновая регуляция секреции медиатора
    • 2. 7. Регуляция Са2+ проводимости нервной терминали как механизм модулирования квантовой секреции пуринами и холиномиметиками
      • 2. 7. 1. Р1 рецепторы и пресинаптические кальциевые каналы
      • 2. 7. 2. Р2У рецепторы и пресинаптические кальциевые каналы
      • 2. 7. 3. Мускариновые рецепторы и пресинаптические кальциевые каналы
    • 2. 8. Взаимодействие ацетилхолиновых и пуриновых рецепторов
  • 3. ОБЪЕКТ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 3. 1. Объект исследования
    • 3. 2. Ванночка и система перфузии
    • 3. 3. Растворы 50 3.3.1. Система локальной аппликации растворов
    • 3. 4. Электрофизиологические методы исследования 51 3.4.1. Отведение синаптических потенциалов 52 3.4.2 Усиление и регистрация синаптических потенциалов
    • 3. 5. Статистическая обработка экспериментальных данных
  • 4. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
    • 4. 1. Угнетающее действие аденозина, АТФ и карбахолина на спонтанную квантовую секрецию медиатора
    • 4. 2. Спонтанная секреция медиатора при совместном действии аденозина и карбахолина
    • 4. 3. Спонтанная секреция медиатора при совместном действии аденозина и АТФ
    • 4. 4. Спонтанная секреция медиатора при совместном действии АТФ и карбахолина
    • 4. 5. Исследование участия пресинаптических никотиновых холинорецепторов в модулирующем действии карбахолина на спонтанную секрецию медиатора
    • 4. 6. Исследование участия мускариновых холинорецепторов в регуляции спонтанной квантовой секреции
    • 4. 7. Эффект никотина и охотреморина-М на частоту МПКП на фоне действия аденозина
    • 4. 8. Исследование взаимодействия холинергических и аденозиновых рецепторов в процессе угнетения спонтанной квантовой секреции
      • 4. 8. 1. Эффект карбахолина на спонтанную секрецию при блокировании Р1 рецепторов
      • 4. 8. 2. Эффект аденозина на спонтанную секрецию при блокировании холинорецепторов
    • 4. 9. Изучение влияния ингибирования пресинаптических в-белков на угнетающий эффект карбахолина и пуринов
      • 4. 9. 1. Влияние коклюшного токсина на угнетающий эффект карбахолина
      • 4. 9. 2. Влияние коклюшного токсина на угнетающий эффект аденозина

      4.10. Исследование эффектов аденозина и карбахолина при увеличении концентрации ионов кальция в нервной терминали 86 4.10.1. Эффект локальной аппликации ионов калия на частоту МПКП в присутствии аденозина и карбахолина

      4.10.2. Эффект локальной аппликации иономицина на частоту МПКП в присутствии аденозина и карбахолина 89 4.10.3. Эффект локальной аппликации раствора сахарозы на частоту МПКП в присутствии аденозина и карбахолина

Взаимодействие холинергических и пуринергических механизмов регуляции спонтанной квантовой секреции медиатора в нервно-мышечном соединении лягушки (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

1.1. Актуальность исследования.

Изменение интенсивности выделения медиатора из нервного окончания является эффективным способом обеспечения синаптической пластичности [Miller, 1998]. Один из конкретных механизмов, контролирующих нейросекрецию, связан с активацией пресинаптических рецепторов медиаторами и комедиаторами. В нервно-мышечном синапсе медиатор ацетилхолин (АХ), выделяющийся в ходе предшествующей активности или в неквантовой форме, активирует пресинаптические холинорецепторы, а освобождающийся совместно с ним комедиатор АТФ — P2Y рецепторы нервной терминали [Giniatullin, Sokolova, 1998]. Известно, что как АХ, так и АТФ угнетают секрецию медиатора из двигательного нервного окончания [Van der Kloot, 1993,1997; Giniatullin, Sokolova, 1998; Sokolova et al., 2003, Ь]. Более того, аналогичным эффектом обладает и аденозин, являющийся продуктом деградации АТФ [Meriney, Grinnell, 1991; Redman, Silinsky, 1994; Sebastiao, Ribeiro, 2000; Silinsky, 2004]. Установление способности этих агонистов угнетать квантовую секрецию поднимает вопрос о том, какое влияние на выделение медиатора они оказывают при их совместном действии. Такая постановка вопроса оправдана тем, что в литературе есть указания на то, что пресинаптические пуриновые рецепторы в нервно-мышечном синапсе функционально связаны с холинорецепторами [Hamilton, Smith, 1991; Salgado et al., 2000; Oliveira et al., 2002], что проявляется в неадцитивном действии их агонистов на квантовую секрецию и даже в устранении эффектов агонистов одних рецепторов антагонистами других.

Кроме того, показано, что агонисты холинорецепторов, активируя постсинаптическую мембрану, стимулируют освобождение аденозина из мышечного волокна [Pitchford et al., 1992]. Это дает основание предполагать, что пресинаптический эффект холиномиметиков может быть не прямым, а опосредованным через систему пуринорецепторов. Таким образом, решение вопроса о взаимодействии холинергической и пуринергической систем регуляции позволит, с одной стороны, ближе подойти к пониманию физиологической роли пресинаптических ауторецепторов, а с другой, более детально представить молекулярный механизм модуляции процесса выделения квантов медиатора.

выводы.

Исходя из результатов работы, нами были сделаны следующие выводы:

1. В нервно-мышечных синапсах лягушки агонисты пуриновых рецепторов аденозин и АТФ, активируя пресинаптические пуриновые рецепторы, снижают интенсивность спонтанной квантовой секреции медиатора.

2. Холиномиметик карбахолин угнетает спонтанную секрецию квантов медиатора, активируя пресинаптические мускариновые рецепторы. Снижение частоты МПКП в присутствии карбахолина не опосредовано выбросом аденозина из мышечного волокна в ответ на активацию постсинаптической мембраны.

3. Действие карбахолина и аденозина на спонтанную секрецию неаддитивно, но величина угнетения частоты МПКП зависит от последовательности подачи агонистов: после развития пресинаптического эффекта аденозина карбахолин не проявлял активности, в то же время аденозин на фоне развившегося действия карбахолина снижал частоту МПКП, но этот эффект был достоверно меньше.

4. Действие аденозина и АТФ, а также карбахолина и АТФ на частоту МПКП аддитивно, что свидетельствует об активации различных механизмов угнетения спонтанной секреции.

5. М2 и А1 рецепторы не образуют функционального комплекса на пресинаптической мембране, поскольку антагонисты А1 рецепторов не предотвращают развитие пресинаптических эффектов карбахолина, а антагонисты холинорецепторов не влияют на эффект аденозина.

6. Блокирование в-белков коклюшным токсином снижает пресинаптический эффект агонистов ацетилхолиновых и пуриновых рецепторов нервного окончания, но не устраняет его.

•.

Аденозин и карбахолин оказывают угнетающее действие на увеличение частоты МПКП, вызванное как усилением входа Са2+ в нервную терминаль, так и путем его извлечения из внутриклеточных депо.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

В нервно-мышечном соединении секретируемые совместно АХ и АТФ, а также АДЕ, образующийся при ферментативном разложении АТФ и выделяющийся из сокращающихся мышц [Восктап е1 а1., 1975; Восктап, МсКег1е, 1983; СипЬа, БеЬазйао, 1993; ЯЛеко е1 а1., 1996], являются активными аутоингибиторами секреции медиатора из двигательных нервных окончаний. Поэтому, правомерным было предположить, что пурины и АХ могут каким-то образом взаимодействовать в процессе модуляции квантовой секреции.

В ходе проведенных исследований, мы обнаружили, что эффекты АДЕ и негидролизуемого аналога АХ КХ на частоту МПКП, отражающую интенсивность спонтанной квантовой секреции, неаддитивны. В то же время, пресинаптический угнетающий эффект АТФ и КХ был аддитивен. В подтверждение полученных ранее данных [вшаШНт, 8око1оуа, 1998; БокоЬуа е1 а1., 2003, Ь] мы также наблюдали аддитивность эффектов АДЕ и АТФ на спонтанную секрецию. Вместе, эти данные, с одной стороны, предполагают отличие пресинаптических механизмов, активируемых АТФ от механизмов угнетения секреции, реализуемых АДЕ и КХ. С другой же стороны, они указывают на возможность взаимодействия ХР и АДЕ рецепторов, или на конвергенцию действия исследуемых агентов к одним и тем же этапам процесса экзоцитоза медиатора нервно-мышечном соединении лягушки.

Несмотря на длительное изучение модуляции квантовой секреции ХМ, до сих пор не было однозначного ответа на вопрос о том, какие в этом ХР участвуют. При помощи локальной аппликации КХ к синаптической области при блокировании соответствующих рецепторов, нами было показано, что угнетение ХМ спонтанной секреции в нервно-мышечном соединении лягушки опосредуется мускариновыми М2 рецепторами. Этот факт представляет особый интерес в связи с тем, что в реализации эффекта КХ на вызванную секрецию квантов медиатора, помимо МХР [Slutsky et al., 1999, 2001, 2002], было показано участие пресинаптических НХР [Nikolsky et al., 2004].

Кроме того, именно угнетающие спонтанную секрецию квантов АХ механизмы, активируемые М2 рецепторами вовлечены во взаимодействие исследуемых медиаторных систем.

В литературе имеется множество данных о тесном взаимодействии между ионотропными никотиновыми и Р2Х рецепторами в различных объектах [Searl, Silinsky, 1998], включая нервно-мышечное соединение теплокровных [Salgado et al., 2000]. Есть также данные о функциональной связи метаботропных мускариновых и Р1 рецепторов в нервно-мышечном соединении [Correa-de-Sa et al., 1991; Hamilton, Smith, 1991; Somogyi et al., 1994; Parkman et al., 1999; Oliveira et al., 2002].

Наши эксперименты показали, что неаддитивность эффектов КХ и АДЕ не связана с влиянием этих агентов непосредственно на пресинаптические рецепторы друг друга, так как ни один из антагонистов ХР не снимал эффект АДЕ на частоту МПКП, а Р1 антагонисты не влияли на угнетающий эффект КХ. Эти данные опровергают также и наше предположение о способности КХ усиливать выброс АДЕ из мышечного волокна, так как в этом случае угнетающий эффект КХ также должен был либо снижаться, либо исчезать в присутствии Р1 блокаторов.

Аутоингибирующие мускариновые и АДЕ рецепторы являются метаботропными и связаны с мембранными G-белками [Starke et al., 1989, Caulfield, 1993; Fredholm et al., 1994]. Существует несколько типов G-белков, по-разному представленных в различных объектах. В литературе есть данные о том, что в нервно-мышечном соединении теплокровных [Silinsky et al., 1989; Hamilton, Smith, 1991] блокатор Gi/Go белков коклюшный токсин (РТх) предотвращает угнетающее действие АДЕ на квантовую секрецию медиатора. В наших экспериментах, пресинаптический ингибиторный эффект АДЕ на спонтанную секрецию полностью не устранялся обработкой препаратов РТх. Эти данные говорят о том, что в отличие от теплокровных, в нервно-мышечном соединении лягушки угнетающие А1 рецепторы связаны как с РТх-чувствительными, так и РТх-нечувствительными в-белками. Более того, можно также предположить, что кроме хорошо известных А1 рецепторов, АДЕ активирует пресинаптические рецепторы, связанные с РТх-нечувствительными в-белками [Siguira, Ко, 2000]. Эти данные не были результатом неполного блокирования РТх-чувствительных в-белков, так как АТФ при тех же условиях инкубирования препаратов с токсином переставала оказывать угнетающее действие на секрецию АХ. Это, с одной стороны, подтверждает наши выводы о связи Р1 рецепторов с РТх-нечувствительными в-белками, а с другой стороны, еще раз говорит о разных внутриклеточных механизмах функционирования пресинаптических Р1 и Р2У рецепторов в нервно-мышечном соединении лягушки. Следует также заметить, что, несмотря на полное снятие РТх угнетающего действия АДЕ в нервно-мышечном соединении крысы, описанное Е. БШпзку с соавт. (1989), этим авторам также не удалось показать этого в нервно-мышечном соединении лягушки, что может быть объяснено видовыми различиями между теплокровными и холоднокровными животными.

Угнетающее действие КХ, в наших экспериментах, также полностью не снималось РТх, что подтверждает высказанные ранее предположения об активации М2 рецепторами двигательного нервного окончания лягушки двух механизмов, опосредованных О-белками, чувствительными и нечувствительными к РТх [БМзку е1 а1., 2002].

Как известно, ингибиторы секреции обычно действуют или путем закрытия Са, или открытия К+ каналов, или через изменение активности секреторного аппарата [Уи, 8аи§ аи, 1997; Ми11ег, 1998; Меи е! а1., 1999; Еп§ е1шап, МасБегтой, 2004].

Для изучения механизмов аутоингибиторного действия АДЕ и КХ, мы исследовали.

2+ их эффект на частоту МПКП при повышении содержания внутриклеточного Са за счет усиления его входа через потенциалозависимые Са2+ каналы, активируемые деполяризацией пресинаптической мембраны, через искусственные Са2+ каналы, образованные Са2+ ионофором нономицином, и при выбросе Са2+ из внутриклеточных запасов. Для этого мы апплицировали к синаптической области растворы, содержащие 20 ммоль/л КС1, ионофор иономицин и сахарозу. Сахароза, помимо увеличения содержания Са2+ в цитозоле, активирует спонтанную секрецию везикул, немедленно готовых с высвобождению [Stevens, Sullivan, 1998].

В этих экспериментах как АДЕ, так и КХ сохраняли свой эффект, то есть, увеличение частоты МПКП, вызванное аппликацией вышеуказанных активаторов секреции, в их присутствии было достоверно меньше контрольного.

Эти результаты указывают на то, что как АДЕ [Hunt, Silinsky, 1993; Silinsky, Solsona, 1992; Redman, Silinsky, 1995; Scholz, Miller, 1992], так и КХ не оказывает влияния на вход Са в нервную терминаль. Вероятно, общей мишенью для действия АДЕ и КХ в нервно-мышечном соединении амфибий является стратегическая часть секреторного аппарата, расположенная за мембранными ионными каналами и входом.

Са2+ в нервное окончание. Это согласуется с данными других авторов о том, что у лягушки активация АДЕ А1 [Silinsky, 1981, 1984, 1986; Silinsky, Solsona, 1992; Redman, Silinsky, 1994, Miller, 1998; Robitaille et al., 1999; Huang et al., 2002] и мускариновых М2 [Slutskyet al., 1999, 2001; Blackmer et al., 2001] рецепторов угнетает конечную стадию экзоцитоза АХ, снижая способность Са активировать секрецию.

Одним из возможных механизмов действия АДЕ и КХ может быть уменьшение готового к высвобождению пула синаптических везикул (RRP), который может быть Санезависим [Wu, Betz, 1996]. Так, Searl, Silinsky (2003) показали, что АДЕ снижает число квантов медиатора, доступных для секреции из запаса везикул, немедленно готовых к высвобождению. Характеристики ингибирования секреции АХ АДЕ, предполагают, что угнетение имеет место на стадии прайминга везикул в процессе секреции [Redman, Silinsky, 1994; Silinsky et al., 2001]. Таким образом, вызванное АДЕ снижение количества квантов, доступных для освобождения, представляет собой изменение секретивной способности праймированных везикул посредством уменьшения аффинности к.

Са этого количества доступных квантов [8еаг1, ЗШшку, 2003]. I. Б^Бку с соавт. (2001) предположили сходный механизм воздействия на аппарат слияния везикул с плазматической мембраной при активации М2 рецепторов.

Итак, в нашей работе было показано взаимодействие между метаботропными А1 и М2 рецепторами двигательного нервного окончания лягушки, которые не образуют функционального комплекса на пресинаптической мембране и, очевидно, не имеют сайтов связывания для «противоположных» агонистов. Они сопряжены как с РТх-чувствительными, так и РТх-нечувствительными в-белками, механизмы угнетения секреции при их активации не вовлекают угнетение входа Са2+ и конвергирует к конечным стадиям процесса экзоцитоза (Рис. 26).

Интересно, что пресинаптическое действие АТФ (в отличие от АДЕ и КХ), было.

Л I.

Сазависимо, и устранялось РТх, что совпадает с нашими данными о том, что вторичные посредники, вовлеченные в действие АТФ, не участвуют в пресинаптическом действии л I.

АДЕ [8око1оуа е1 а1., 2003, Ь]. Однако, мы обнаружили, что блок пресинаптических Са токов является только компонентом в более сложном пресинаптическом действии АТФ. Наши данные свидетельствуют о том, что АТФ имеет два механизма действия: на Са каналы [8око1оуа & а1., 2003, Ь] и уже после входа Са2+ - на сам секреторный аппарат (Рис. 26).

Таким образом, очевидно, что в нервно-мышечном соединении лягушки, также как во многих других системах, различные механизмы могут работать вместе, модулируя синаптическую передачу, и повышая надежность функционирования двигательной системы в целом.

Нервное окончание.

Аденозин.

Рис. 26 Схема механизмов угнетающего действия АХ и пуринов на спонтанную квантовую секрецию медиатора в нервно-мышечном соединении лягушки.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Э.А., Никольский Е. Е., Гиниатуллин Р. А. Эффект холинергических агентов на спонтанную квантовую секрецию медиатора в нервно-мышечном синапсе лягушки // Нейрофизиология. 1986. — Т. 18. — № 5. — С. 586−593.
  2. Р.А., Соколова Е. М. Модулирующая роль АТФ в нервно-мышечном синапсе // Рос. физиол. журнал, им. И. М. Сеченова 1998. -№ 10. -С. 1132−1138.
  3. А.Л., Халиуллина P.P., Анучин А. А. Эффекты экзогенного N0 на секрецию медиатора и ионные токи двигательного нервного окончания // Бюлл. Эксп. Биол. Мед. 1999а. — Т. 128. -№. 8. — С.144−147.
  4. Е.Е., Гиниатуллин Р. А. Прекращение пресинаптического действия карбахолина тубокурарином // Бюлл. Экспер. Биол. Мед. 1979. — Т. 2. — С. 171−174.
  5. Е.Е., Бухараева Э. А. Мускариновые агонисты не влияют на процесс спонтанной квантовой секреции медиатора из двигательного нервного окончания лягушки // Бюлл. Эксп. Биол. Мед. 1987. — Т. 103. — № 2. — С. 183−185.
  6. В.И., Селянко А. А., Деркач В. А. Нейроиальные холинорецепторы. М.: Наука. -1987.-С. 343.
  7. Abbracchio M.P. ATP in brain function // Purinergic approaches in experimental therapeutics // Ed. Jacobson K.A., Jarvis M.F. London: Wiley-Liss. Inc. — 1997. — P. 383−404.
  8. Abbs E.T., Joseph D.N. The effects of atropine and oxotremorine on acetylcholine release in the rat phrenic nerve-diaphragm preparations // Br. J. Pharmacol. 1981. — Vol. 73. — P. 481 483.
  9. Adams P.R., Brown D.A., Constanti A. Pharmacological inhibition of the M-current // J. Physiol. 1982. — V. 332. — P. 223−262.
  10. Allen T.G., Brown D.A. M2 muscarinic receptor-mediated inhibition of the Ca2+ current in rat magnocellular cholinergic basal forebrain neurones // J. Physiol. 1993. — Vol. 466. — P. 173−189.
  11. Alves-do-Prado W., Prado W.A. Neuromuscular facilitation induced by muscarinic antagonists in the rat isolated diaphragm // Gen. Pharmacol. 1993. — Vol. 24. — P. 15 011 504.
  12. Arenson M.S. Muscarinic inhibition of quantal transmitter release from the magnesium -paralysed frog sartorius muscle//Neuroscience. 1989. — Vol. 30. — P. 927−836.
  13. Arnon A.M., David G., Hevron E., Yaari Y. Calcium currents in frog motor nerve terminals // Soc. for Neurosci. Abstr. 1988. — Vol. 14. — 31.4.
  14. Augustine G.J. How does calcium trigger neurotransmitter release? // Curr. Opin. Neurobiol. -2001.-Vol. 11.-P. 320−326.
  15. Barajas-Lopez C., Espinosa-Luna R., Zhu Y. Functional interaction between nicotinic and P2x channels in short-term cultures of guinea-pig submucosal neurons // J. Physiol. 1998. -Vol. 513.-P. 671−683.
  16. Barlow R.B., Berry K.J., Glenton P.A.M., Nickolau N.M., Soh K.S. A comparison of affinity constants for muscarine-sensitive acetilcholine receptors in guinea-pig atrial pacemaker cells at 29 °C and 37 °C // Br. J. Pharmacol. 1976. — V. 58. — P. 613−620.
  17. Barr E., Daniel L.C., Leslie S.W. Synaptosomal calcium uptake unaltered by adenosine and 2-chloroadenosine // Biochem. Pharmacol. 1985. — Vol. 34. -P. 713−715.
  18. Beech D.J., Bemheim L., Hille B. Pertussis toxin and voltage dependence distinguish multiple pathways modulating calcium channels of rat sympathetic neurons // Neuron. -1992.-Vol. 8.-P. 97−106.
  19. Beeler T.J., Jona I., Martonosi A. The effect of ionomycin on calcium fluxes in sarcoplasmic reticilum vesicles and liposomes // J. Biol. Chem. 1979. — Vol. 254. — P. 6229−6231.
  20. Belardinelli L., Curtis A.B., Bertolet B. Binding of the novel nonxanthine A 2a adenosine receptor antagonist 3H. SCH58261 to coronary artery membranes // Circ. Res. 1996. — Vol. 79.-N6.-P. 1153−60.
  21. Bellingham M.C., Berger A.J. Presynaptic depression of excitatory synaptic inputs to rat hypoglossal motoneurons by muscarinic M2 receptors // J. Neurophysiol. 1996. — Vol. 76. -P. 3758−3770.
  22. Bennet M .R., H 0 S. P robabilistic s ecretion o f quanta from n erve t erminals in avian c iliary ganglia modulated by adenosine // J. Physiol. -1991. Vol. 440. — P. 513−527.
  23. Beme R.M., Knabb R.M., Ely S.W., Rubio R. Adenosine in the local regulation of blood flow: a brief overview // Feder. Proceed. 1983. — Vol. 42. — P. 3136−3142.
  24. Berridge M.J. Inositol triphosphate and diacylglycerol as second messenger //Biochem. J. -1984. V. 220. -N. 2. — P. 345−360.
  25. Bernheim L., Beech D.J., Hille B. A diffusable second messenger mediates one of the pathways coupling receptors to calcium channels in rat sympathetic neurons // Neuron. -1991.-Vol. 6.-P. 859−867.
  26. Blackmer T., Larsen E.C., Takahashi M., Martin T.F.U., Alford S., Hamm H.E. G protein Py subunit-mediated presynaptic inhibition: regulation of exocytotic fusion downstream of Ca2+ entry // Science. 2001. — Vol. 292. — P. 293−297.
  27. BockmanE.L., Beme R.M., Rubio R. Release of adenosine and lack of release of ATP from contracting skeletal muscle // Pfluegers Arch. 1975. — Vol. 355. — P. 229−241.
  28. Bockman E.L., McKenzie J.E. Tissue adenosine content in active soleus and gracilis muscles of cats // Am. J. Physiol. 1983. — Vol. 244. — H552-H559.
  29. Bolton T.B., Kitamura K. Evidence that ionic channels associated with the muscarinic receptor of smooth muscle may admit calcium // Brit. J. Pharmacol. 1983. — V. 78. — N. 2. -P. 405−415.
  30. Bonner T.I., Buckley N.J., Young A.C., Brann M.R. Identification of family of muscarinic acetylcholine receptor genes //Science. 1987. — V. 237. — N. 4814. — P. 527−532.
  31. Borst J.G.G., Sakmann B. Calcium influx and transmitter release in a fast CNS synapse // Nature. 1996. — Vol. 383. — P. 431−434.
  32. Boue-Grabot E., Barajas-Lopez C., Chakfe Y., Blais D., Belanger D., Emerit M. B., Seguela P. Intracellular crosstalk and physical interaction between two classes of neurotransmitter-gated channels // J. Neurosci. 2003. — Vol. 23. -N. 4. — P. 1246−1253.
  33. Boue-Grabot E., Emerit M.B., Toulme E., Seguela P., Garret M. Cross-talk and co-trafficking between rhol/GABA receptors and ATP-gated channels // J. Biol. Chem. 2004. — Vol. 279. -N. 8.-P. 6967−6975.
  34. Bourque M.J., Robitaille R. Endogenous peptidergic modulation of perisynaptic Schwann cells at the frog neuromuscular junction // J. Physiol. 1998. — Vol. 512. — P. 197−209.
  35. Bowman W.C., Marshall I.G., Gibb A.J., Harborne A.J. Feedback control of transmitter release at the neuromuscular junction // Trends Pharmacol. Sci. 1988 — Vol. 9. — N. 1. — P. 16−20.
  36. Boyer J.L., Downes C.P., Harden T.K. Kinetics of activation of phospholipase C by P2 purinergic receptor agonists and guanidine nucleotides // J. Biol. Chem. 1989. — Vol. 264. -P. 884−890.
  37. Boyer J.L., Lazarowski E.R., Chen X-H, Harden T.K. Identification of P2Y-purinergic receptor that inhibits adenylyl cyclase but does not activate phospholipase C // J. Pharmacol. Exp. Ther. 1993. — Vol. 261.- P. 1140−1146.
  38. Brading A.F., Sneddon P. Evidence for multiple sources of calcium for activation of the contractile mechanism of guinea-pig taenia coli on stimulation with carbachol // Brit. J. Pharmacol. 1980. — V. 70. — N. 2. — P. 229−240.
  39. Brake A.J., Julius D. Signalling by extracellular nucleotides // Ann. Rev. Cell and Develop. Biol. 1996. — Vol. 12. — P. 19−41.
  40. Brayan P.T., Marshall J.M. Adenosine receptor subtypes vasodilatation in rat skeletal muscle during systemic hypoxia: a role for A1 receptors // J. Physiol. 1999. — Vol. 514. — P. 151 162.
  41. Breitwiesser G., Szabo G. Uncoupling of cardiac muscarinic and beta-adrenergic receptors from ion channels by guanine nucleotide analogue // Nature. 1985. — V. 317. — N. 6037. -P. 530−540.• 110
  42. Brown D.A., Adams P.R. Muscarinic suppression of a novel voltage-sensitive K±current in a vertebrate neurone//Nature. 1980. — V. 283. — N. 5748. — P. 673−676.
  43. Brown D.A., Forward A., Marsh S.J. Antagonist discrimination between ganglionic and ileal muscarinic receptors // Br. J. Pharmacol. 1980. — V. 71. — P. 362−364.
  44. Brown J.H., Brown S.L. Agonists differentiate muscarinic receptors that inhibit cyclic AMP formation from those that stimulate phosphoinositide metabolism // J. Biol. Chem. 1984. -V. 259.-N. 6. -P. 3777−3781.
  45. Brown S.J., James S., Reddington M., Richardson P.J. Both Ai and A2a purine receptors regulate striatal acetylcholine release // J. Neurochem. 1990. — Vol. 55. — P. 31−38.
  46. Bruner G., Murphy S. UTP activates multiple second messenger systems in cultured rat astrocytes //Neurosci. Lett. 1993. — Vol. 162. — P. 105−108.
  47. Bukharaeva E.A., Ipatova T., Nikolsky E.E., Vyskonil F. The effect of carbachol and a-bungarotoxin on the frequency of miniature endplate potentials at the frog neuromuscular junction // Exp. Physiol. 2000. — Vol. 85. — N. 2. — P. 125−131.
  48. Burke S.P., Nadler J.V. Regulation of glutamate and aspartate release from slices of thehippocampal CA1 area: effects of adenosine and baclofen // J. Neurochem. 1988. — Vol. 51. -P. 1541−1551.
  49. Capogna M., Ghwiler B.H., Thompson S.M. Presynaptic inhibition of calcium-dependent and -independent release elicited with ionomycin, gadolinium and a-latrotoxin in the hippocampus // J. Neurophysiol. 1996. — Vol. 75. — P. 2017−2028.
  50. Carlson S.S., Wagner J.A., Kelly R.B. Purification of synaptic vesicles from Elasmobranch electric organ and the use of biophysical criteria to demonstrate purity // Biochem. 1978. -Vol. 17.-P. 1188−1199.
  51. Carlson B J., Raftery M.A. Specific binding of ATP to extracellular sites of Torpedo acetylcholine receptor // Biochemistry. 1993. — Vol. 32. — P. 7329−7334.
  52. Catterall W.A. Structure and regulation of voltage-gated Ca channels // Ann. Rev. Cell Dev. Biol. 2000. — Vol. 16. — P. 521−555.
  53. Caulfield M.P. Muscarinic receptors-characterization, coupling and function // Pharmac. And Therap. -1993. Vol. 58. P. 319−379.
  54. Caulfield M. P, Birdsall NJ. International union of pharmacology. XVII. Classification of muscarinic acetilcholine receptors // 1998. Pharmacol. Rev. — 1998. — Vol. 50. — N. 2. — P. 279−290.
  55. Charest R., Blackmore P.F., Exton J.H. Characterization of responses of isolated rat hepatocytes to ATP and ADP // J. Biol. Chem. 1985. — Vol. 260. — P. 15 789−15 794.
  56. Chen H., Singh Y.N., Dryden W.F. Transduction mechanism involving the presynaptic adenosine receptor at mouse motor nerve terminals // Neurosci. Lett. 1989. — Vol 96. — P. 318−322.
  57. Chen G., van den Pol A.N. Adenosine modulation of calcium currents and presynaptic inhibition of GABA release in suprachiamatic and arcuate necleus neurons // J. Neurophysiol. 1997. — Vol. 77. — P. 3035−3047.
  58. Chrishtofi F.L., Baidan L.V., Fertel R.H., Wood J.D. Adenosine A2 receptor-mediated excitation of a subset of AH/type 2 neurons and deviation of cAMP levels in myentric ganglia of guinea-pig ileum // Neurogastroenterol. 1994. — N. 6. -P. 67−78.
  59. Clapp L.H., Vivauddou M.B., Walsh J.V. Acetylcholine increases voltage-activated Ca current in freshly dissociated smooth muscle cells // Proc. Nat. Acad. Sci. USA 1987. -Vol. 84. -N. 7. -P. 2092−2096.
  60. Clarke P.B.- SchwartzR.D.- PaulS.M.- Pert C.B.- Pert A. Nicotinic binding in rat brain: autoradiographic comparison of 3H. acetylcholine, [3H]nicotine, and [125I]-alpha-bungarotoxin // J. Neurosci. 1985. — Vol. 5. — P. 1307−1315.
  61. Collins A.C.- Evans C.B.- Miner L.L.- Marks M.J. Mecamylamine blockade of nicotine responses: evidence for two brain nicotinic receptors // Pharmacol. Biochem. Behav. 1986. -Vol. 24.-P. 1767−1773.
  62. Correia-de-Sa P., Sebastiao A.M., Ribeiro J.A. Inhibitory and excitatory effects of adenosine receptor agonists on evoked transmitter release from phrenic nerve endings of the rat // Br. J. Pharmacol. -1991. Vol. 103. — P. 1614−1620.
  63. Correia-de-Sa P., Timoteo M.A., Ribeiro J.A. Functional consequences of inhibition of adenosine uptake and metabolism at the rat neuromuscular junction // J. Neurochem. 1993. -Vol. 61.-S82B.
  64. Correia-de-Sa P., Ribeiro J.A. Tonic A2a receptor activation modulates nicotinic autoreceptor function at the rat neuromuscular junction // Eur. J. Pharmacol. 1994. — Vol. 271. — P. 349 355.
  65. CunhaR.A., Johansson B., van der Ploeg I., S ebastiao A.M., Ribeiro J. A., Fredholm B .B. Evidence for functionally important adenosine A2a receptors in the rat hippocampus // Brain. Res. 1994a. — Vol. 649. — P. 208−216.
  66. Currie K.P.M., Fox, A.P. ATP serves as a negative feedback inhibitor of voltage-gated Ca2+ channel currents in cultured bovine adrenal chromaffin cells // Neuron. 1996. — Vol. 16. — P. 1027−1036.
  67. D’Agostino G., Kilbinger H., Chiari M.C., Grana F. Presynaptic inhibitory muscarinic receptors modulating H. acetylcholine release in the rat urinary bladder // J. Pharmacol. Exp. Therap. 1986. — Vol. 239. — P. 522−528.
  68. Dale H.H. The action of certain esters and ethers of choline, and their relation to muscarine // J. Pharmacol. Exp. Ther. 1914. — Vol. 6. — P. 147−190.
  69. Daly J.W., Butts-Lamb P., Padgett W. Subclones of adenosine receptors in the central nervous system: Interaction with caffeine and related methylxanthines // Cell. Mol. Neurobiol. 1983. -Vol. l.-P. 69−80.
  70. Decker M.W., Rueter L.E., Bitner Nicotinic acetylcholine receptor agonists: a potential new class of analgesics//Neuropharmacology-2000. Vol. 39. — P. 2785−2791.
  71. Del Castillo J., Katz B. The effect of magnesium on activity of motor nerve endings // J. Physiol. -1954. Vol. 124. — P. 553−559.
  72. De Lorenzo S., Veggetti M., Muchnik S., Losavio A. Presynaptic inhibition of spontaneous acetylcholine release induced by adenosine at the mouse neuromuscular junction // Br. J. Pharmacol. 2004. — P. 1−12.
  73. Devillers-Theiry A., Galzi J.L., Eisele J.L., Bertrand S., Bertrand J.P., Changeux J.P. Functional architecture of the nicotinic acetylcholine receptor: A prototype of ligand-gated channels // J. Membr. Biol. 1993. — Vol. 136. — P. 97−112.
  74. Diaz-Hernandez M., Pintor J., Miras-Portugal M.T. Modulation of dinucleotide receptor present in rat midbrain synaptosomes by adenosine and ATP // Br. J. Pharmacol. 2000. -Vol. 130.-P. 434−440.
  75. Dilorio P., Ballerini P., Cicarelli R., DiMuzio M., Traversa U., Caciagli F. Ai and A2 receptors involvement in controlling purine and acetylcholine release from rat hippocampalslices //Nucleos. Nucleot. -1991. -Vol. 10.-P. 1237−1238.
  76. Dodge F.A., Rahamimoff R. Co-operative action a calcium ions in transmitter release at the neuromuscular junsction // J. Physiol. 1967. — Vol. 193. — P. 419−432.
  77. Dolezal V., Tucek S. Presynaptic muscarine receptors and the release of acetylcholine from cortical prisms: roles of Ca2+ and K+ concentration // Naunyn-Schmiedeberg's Arch. Pharmac. 1993.-Vol. 348.-P. 228−233.
  78. Dolphin A.C., Forda S.R., Scott R.H. Calcium-dependent currents in cultured rat dorsal root ganglion neurons are inhibited by an adenosine analogue // J. Physiol. 1986. — Vol. 373. — P. 47−61.
  79. Dolphin A. Mechanisms of modulation of voltage-dependent calcium channels by G-proteins // J. Physiol. 1998. — Vol. 506. — P. 3−11.
  80. Domet M.A., Webb C.E., Wilson D.F. Impact of alpha-bungarotoxin on transmitter release at theneuromuscularjunctionoftherat//Neurosci. Lett. 1995.-Vol. 199.-N. l.-P. 49−52.
  81. Dowdall M.J., Boyne A.F., Whittaker V.P. Adenosine triphosphate: A consituant of cholinergic synaptic vesicles // Biochem. J. 1974. — Vol. 140. — P. 1−12.
  82. Dubyak G.R., El-Moatassim C. Signal transduction via P2-purinergic receptors for extracellular ATP and other nucleotides // Am. J. Physiol. 1993. — Vol. 265. — P. 577−606.
  83. Duncan C.J., Publicover S J. Inhibitory effects of cholinergic agents on the release of transmitter at the frog neuromuscular junction // J. Physiol. 1979. — Vol. 294. — P. 91−103.
  84. Dunwiddie T.V. Interactions between the effects of adenosine and calcium on synaptic responces in rat hippocampus in vitro II J. Physiol. 1984. — Vol. 350. — P. 545−559.
  85. Dunwiddie T.V. The physiological role of adenosine in the central nervous system // Int. Rev.
  86. Neurobiol. 1985. — Vol. 27. — P. 63−139.
  87. Dunwiddie T.V. Electrophysiological aspects of adenosine receptor function // Adenosine and adenosine receptors / Ed. Williams M. Clifton (NJ): Humana Press. — 1990. — P. 143−172.
  88. Dunwiddie T.V., Fredholm. Adenosine neuromodulation // Purinergic approaches in experimental therapeutics // Ed. Jacobson K.A., Jarvis M.F. London: Willey-Liss. Inc. -1997.-P. 359−381.
  89. Edwards F.A., Gibb A.J., Colquhoun D. ATP receptor-mediated synaptic currents in the central nervous system // Nature. 1992. — Vol. 359. — P. 144−147.
  90. Engelman H.S., MacDermott A.B. Presynaptic ionotropic receptors and control of transmitter release // Nat. Rev. Neurosci. 2004. — Vol. 5. — P. 135−145.
  91. Evans T., Smith M.M., Tanner L.I., Harden T.K. Muscarinic cholinergic receptors of two cell lines that regulate cyclic AMP metabolism by different molecular mechanism // Mol. Pharmacol. 1984,-V. 26.-N. 3.-P. 395−404.
  92. Evans R.J., Derkach V., Surprenant A. ATP mediates fast synaptic transmission in mammalian neurons // Nature. 1992. — Vol. 357. — P. 503−505.
  93. Evans R.J., Lewis C., Buell G., Valera S., Nirth R.A., Surprenant A. Pharmacological characterization of heterologously expressed ATP-gated cation channels (P2X purinoceptors) // Mol. Pharmacol. 1995. — Vol. 48. — P. 178−183.
  94. Fatt P., Katz B. Spontaneous subthreshold activity at motor nerve endings // J. Physiol. -1952.-Vol. 117.-P. 109−128.
  95. Felder C.C. Muscarinic acetylcholine receptors: Signal transduction through multiple effectors // FASEB J. 1995. — Vol. 9. — P. 619−625.
  96. Feoktistov I., Biaggioni I. Adenosine A2b receptors evoke interleukin-8 secretion in human m ast c ells. An e nprofylline-sensitive m echanism w ith i mplications f or a sthma / /J. Clin. Invest. 1995. — Vol. 96. — P. 1979−1986.
  97. Feoktistov I., Polosa R., Holgate S.T., Biaggioni I. Adenosine A2b receptors: a novel therapeutics target in asthma? // TiPS. 1998. — Vol. 19. — P. 148−153.
  98. Fertuck H.C.- Salpeter M.M. Localization of acetylcholine receptor by 1251-labeled alpha-bungarotoxin binding at mouse motor endplates // Proc. Natl. Acad. Sci. (USA). -1974.-Vol. 71.-P. 1376−1378.
  99. Fillipov A.K., Webb T.E., Brown D.A. P2Y2 nucleotide receptors expressed heterologously in sympathetic neurons inhibit N-type Ca and M-type K currents. // J. Neurosci. 1998. — Vol. 18. — P. 5170−5179.
  100. Fredholm B .B., Hedqvist P. Adenosine a transsynaptic modulator of norephynephrine release? // Catecholamines: basic and clinical frontiers / Ed. Usdin E., Kopin I.J., Barchas J.D. — New York: Pergamon Press. — 1979. — P. 1146−1148.
  101. Fredholm B.B., Duner-Engstrom M., Fastbom J., Hu P. S., Van der Ploeg I. Role of G-proteins, cyclic AMP and ion channels in the inhibition of transmitter release by adenosine // Ann. NY Acad. Sci. 1990. — Vol. 604. — P. 276−288.
  102. Fredholm B.B., Abbracchio M.P., Burnstock G., Daly A.W., Harden T.K., Jacobson K.A., Leff P., Williams M. Nomenclature and classification of purinoceptors // Parmacol. Rev. -1994.-Vol. 46.-P. 143−156.
  103. Fu W-M. Potentiation by ATP of the postsynaptic acetylcholine response at the developing neuromuscular synapses in Xenopus cell culture // J. Physiol. 1994. — Vol. 477. —1. N. 3. -P. 449−457.
  104. Fuder H., Brink A., Meincke M., Tauber U. Purinoceptor-mediated modulation by endogenous and exogenous agonists of stimulation evoked H. noradrenaline release on rat iris // Naun. Schm. Arch. Pharmacol. 1992. — Vol. 345. — P. 417−423.
  105. Ganguly D.K., Das M. Effects of oxotremorine demonstrate presynaptic muscarinic and dopaminergic receptors on motor nerve terminals // Nature. 1979. — Vol. 278. — P. 623−625.
  106. Gilman A.G. G-proteins and dual control of adenylate cyclase // Cell. 1984. — V. 36. -N.3.-P. 577−579.
  107. Gilman A.G. G-proteins: transducers of receptor-generated signals // Annu. Rec. Biochem. 1987. -V. 56.-P. 615−649.
  108. Giniatullin R.A., Sokolova E.M. ATP and adenosine inhibit transmitter release at the frog neuromuscular junction through distinct presynaptic receptors // Br. J. Pharmacol. 1998. -vol. 124.-P. 839−844.
  109. Ginsborg B.L., Hirst G.D.S. The effects of adenosine on the release of transmitter from the phrenic nerve of the rat // J. Physiol. 1972. -Vol. 224. — P. 611−628.
  110. Glowatski E., Ruppersberg J.P. Zenner H.P. Rusch A. Mechanically and ATP-induced currents of mouse outer hair cells are independent and differentially blocked by D-tubocurarine // Neuropharmacol. 1997. — Vol. 36. — P. 1269−1275.
  111. Goldberg N.D., Haddox M.K. Cyclic GMP metabolism and involvement in biological regulation // Ann. Rev. Biochem. 1977. — V. 46. — P. 823−896.118
  112. Goncalvez J., Queiroz G. Facilitatory and inhibitory modulation by endogenousadenosine of noradrenaline release in the epindymal portion of rat vas deferens // Naun. Schm. Arch. Pharmacol. 1993. — Vol. 348. — P. 367−371.
  113. Greene R.W., Haas H.L. The elecrtophysiology of adenosine in the mammalian central nervous system //Prog. Neurobiol. -1991. Vol. 36. — P. 329−341.
  114. Graves A.R., Lewin K.A., Lindgren K.A. Nitric oxide, cAMP and the biphasic muscarinic modulation of ACh release at the lizard neuromuscular junction // J. Physiol. -2004. Vol. 559. — N. 2. — P. 423−432.
  115. Grinnell A.D., Pawson P.A. Dependence of spontaneous release at frog junctions on synaptic strength, external calcium and terminal length // J. Physiol. 1989. — Vol. 418. — P. 397−410.
  116. Grishin S., Shakirzyanova A., Giniatullin A., Afzalov R.,. Giniatullin R. Mechanisms of * ATP action on motor nerve terminals at the frog neuromuscular junction // Eur. J. Neurosci.-2005. в печати.
  117. Haggblad J., Heilbronn E. Release of acetylcholine at the motor endplate of the rat -evidence against a muscarinic acetylcholine autoreceptor // Br. J. Pharmacol. 1983. — Vol. 80.-P. 471−476.
  118. Hamilton B.R., Smith D.O. Autoreceptor-modulated purinergic and cholinergic inhibition of motor nerve terminal calcium currents in the rat // J. Physiol. 1991. — Vol. 432. — P. 327 341.
  119. Hammer R., Berrie C.P., Birsall N.J.M., Burgen A.S.V., Hulme E.C. Pirenzepine distinguishes between subclasses of muscarinic receptors // Nature. 1980. — V. 283. — P. 90−92.
  120. Hardman J.G. Cyclic nucleotide and smooth muscle contraction: some conceptual and experimental consideration // Smooth muscles. London. Edward Arnold. -1981. P. 249 262.
  121. Hazeki O., Ui M. Modification by islet-activating proteins of receptor-mediated regulation of cyclic AMP accumulation in isolated rat hear cells // J. Biol. Chem. — 1981. — V. 256. N. 6. — P. 2856−2862.
  122. Hille B. G-protein-coupled mechanisms and nervous signalling // Neuron. 1992. — Vol. 9.-P. 187−195.
  123. Hille B. Modulation of ion-channel function by G-protein-coupled receptors // Trends Neurosci. 1994. — Vol.17. — P. 531−535.
  124. Hirsh J.K., Searl T J., Silinsky E.M. Regulation by Rab3 A of an endogenous modulator of neurotransmitter release at mouse motor nerve endings // J. Physiol. 2002. — Vol. 545. — P. 337−343.
  125. Hogg R.C., Raggenbass M., Bertrand D. Nicotinic acetylcholine receptors: from structure to brain function // Rev. Physiol. Biochem. Pharmacol. 2003. — Vol. 147. — P. 1 -46.
  126. Hsu K.S., Huang C.C., Gean P.W. Muscarinic depression of excitatory synaptic transmission mediated by the presynaptic M3 receptors in the rat neostriatum // Neurosc. Letters. 1995. — Vol. 197. P. 141−144.
  127. Huang S.-M., Kitamura A., Akita T., Narita K., Kuba K. Adenosine depresses a Ca2±independent step in transmitter exocytosis at frog motor nerve terminals // Eur. J. Neurosci. — 2002.-Vol. 15.-P. 1291−1298.
  128. Hubbard J.I., Jones S.F., Landau E.M. An examination of the effects of osmotic pressure changes upon transmitter release from mammalian motor nerve terminals // J. Physiol. (Lond).- 1968. Vol. 197. — P. 639−657.
  129. Hume RI, Honig MG. Excitatory action of ATP on embryonic chick muscle // J. Neurosci.- 1986. Vol. 6. — N. 3. — P. 681−690.
  130. Hunt J.M., Silinsky E.M. Ionomycin-induced acetylcholine release and its inhibition by adenosine at frog motor nerve endings // Br. J. Pharmacol. 1993. — Vol. 110. — P. 828−832.
  131. Igusa Y. Adenosine 5Mriphosphate activates acetylcholine receptor channels in cultured Xenopus myotomalmuscle cells // J. Physiol. 1988. — Vol. 405. — P. 169−185.
  132. Ikeda S. Voltage-dependent modulation of N-type calcium channels by G-protein py subunits // Nature. 1996. — Vol. 380. — P. 255−262.
  133. Illes P., Klotz K.-N. Loshe M.J. Signalling by extracellular nucleotides and nucleosides // Naunyn-Schmiedeberg s Arch. Pharmcol. 2000. — Vol. 362. — P. 295−298.
  134. Ilouz N., Branski L., Parnas H., Linial M. Depolarization affects the binding properties of muscarinic acetylcholine receptors and their interaction with proteins of the exocytic apparatus//J. Biol. Chem. 1999. — Vol. 274. — P. 29 519−29 528.
  135. Israel M., Lesbats, Meunier F.M., Stinnakre J. Postsynaptic release of adenosine triphosphate induced by single impulse transmitter action // Proc. R. Soc. B. 1976. — Vol. 193.-P. 461−468.
  136. Jacobson K.A., Kim H.O., Siddiqi S.M., Olah M.E., Stiles G., von Libitz D.K.J.E. A3 adenosine receptors: Design o f s elective 1 igands and therapeutics prospects / /Drugs of the Future. -1995. Vol. 20. — P. 689−699.
  137. Jacobson K.A. Adenosine A3 receptors: novel ligands and paradoxical effects // TiPS. -1998.-Vol. 19. -P. 184−191.
  138. Jarvis S.E., Magga J.M., Beedle A.M., Braun J.E.A., Zamponi G.W. G protein modulation of N-type calcium channels is facilitated by physical interactions between syntaxin 1A and GPy // J. Biol. Chem. 2000. — Vol. 275. — P. 6388−6394.
  139. Jarvis S.E., Zamponi G.W. Interactions between presynaptic calcium channels, cytoplasmic messengers and proteins of the synaptic vesicle release complex // Trends Pharmacol Sci. 2001. — Vol. 22. — P. 519−525.
  140. Joseph S.K., Thomas A.P., Williams R.J., Irvine R.F., Williamson J.R. Myoinositol 1,4,5-triphosphate, a second messenger for the hormonal mobilization of itracellular Ca2+ in liver // J. Bio. Chem. 1984. — V. 259. — N. 5 — P. 3077−3081.
  141. Kashani A. H., Chen B-M., Grinnell A.D. Hypertonic enhancement of transmitter release from frog motor nerve terminals: Ca independence and role of integrins // J. Physiol. -2001. Vol. 530. — N. 2. — P. 243−252.
  142. Katz B., Miledi R. The effect of calcium on acetylcholine release from motor nerve terminals // Proc. R. Soc. Lond. B. Biol. Sci. 1965. — Vol. 161. — P. 496−503.
  143. Katz B. The release of neuronal transmitter substance // Springfield, IL: Thomas. 1969.
  144. Katz B. Quantal mechanism of neural transmitter release // Science. 1971. — Vol. 173. — P.123−126.
  145. Khakh B.S., Henderson G. Modulation of fast synaptic transmission by presynaptic ligand-gated cation channels // J Auton Nerv Sist. 2000 — Vol. 81. — N. 1−3. — P. 110−121.
  146. G.J., Colmers W.F. 4-Aminopiridine and low Ca2+ differentiate presynaptic inhibition mediated by neuropeptide Y, baclofen and 2-chloroadenosine in rat hippocampal CA1 in vitro II Br. J. Pharmacol. 1992. — Vol. 105. — P. 470−474.
  147. Kohno Y.Ji.X., Mawhorter S.D., Koshiba M., Jacobson K.A. Activation of A3 adenosine receptors on human eosinophils elevates intracellular calcium // Blood. 1996. — Vol. 88. — P. 3569−3574.
  148. Krnjevic K. Chemical nature of synaptic transmission in vertebrates // Physiol. Rev. -1974. V. 54. — N. 2. — P. 418−540.
  149. Lee K.S., Reddington M. Autoradiographic evidence for multiple CNS binding sites for adenosine derivatives // J. Neurosci. 1986. — Vol. 19. -P. 535−549.
  150. Li J.M., Fenton R.A., Brownell-Wheeler H., Powell C.C., Peyton B.D., Cutler B.S., Dobson J. G Adenosine A2A receptors increase endothelial cell nitric oxide // J. Surg. Res. -1998.-Vol. 80.-P. 357−364.
  151. Linden J. Structure and function of Al adenosine receptors // FASEB. J. 1991. — Vol. 5. -P. 2668−2676.
  152. Linden J. Cloned adenosine A3 receptors: pharmacological properties, species differences and receptor functions // TiPS. 1994. — Vol. 15. — P. 298−306.
  153. Lindgren C.A., Laird M.V. Nitroprusside inhibits neurotransmitter release at the frog neuromuscular junction // NeuroReport. 1994. — Vol. 5. — P. 2205−2208.
  154. Lindstrom J. Neuronal nicotinic acetylcholine receptors // Ion channels. 1996. — Vol. 4. -P. 377−450.
  155. Linial M., Llouz N., Parnas H. Voltage-dependent interaction between the muscarinic ACh receptor and proteins of the exocytotic machinery // J. Physiol. 1997. — Vol. 504. — P. 251−258.
  156. Liou J. C., FuW.M. Additive effect ofADP and CGRP in modulation of acetylcholine receptor channel in Xenopus embryonic myocytes // Br. J. Pharmacol. 1995. — Vol. 115. — N. 4.-P. 563−568.
  157. Liu G-S, Downey J.M., Cohen M.V. Adenosine, ischemia and preconditioning // Cardiovasc. 1994. — Vol. 28. — P. 1057−1061.
  158. Llinas R. Calcium and transmitter release in squid synapse // Soc. Neurosci. Symp. II. -1977.-P. 139−160.
  159. Loffelholz K., Pappano A.J. The parasympathetic neuroeffector junction of the heart // Pharmacol. Rev. 1985. — V. 37. — N. 1. — P. 1−24.
  160. Lopate G., Pestronk A. Autoimmune myasthenia gravis // Hosp. Prac. 1993. — Vol. 28. -P. 109−131.
  161. Losavio A., Muchnik S. Spontaneous acetylcholine release in mammalian neuromuscular junctions // Am. J. Physiol. 1997. — Vol. 273. — C1835-C1841.
  162. Lu Z., Smith D.O. Adenosine 5"1-triphosphate increases acetylcholine channel opening frequency in rat sceletal muscle // J. Physiol. 1991. — Vol. 436. — P. 45−56.
  163. Lu B., Fu W.M. Regulation of postsynaptic responses by calcitonin gene related peptide and ATP at developing neuromuscular junction // Can. J. Physiol. Pharmacol. 1995. — Vol. 73.-N. 7.-P. 1050−1056.
  164. MacDermott A.B., Role L.W., Siegelbaum S.A. Presynaptic ionotropic receptors and the control of transmitter release // Ann. Rev. Neurosci. 1999. — Vol. 22. — P. 443−485.
  165. Magga J.M., Jarvis S.E., Arnot M.I., Zamponi G.W., Braun J.E.A. Cysteine string protein regulates G protein modulation of N-type calcium channels // Neuron. 2000. — Vol. 28. — P.195.204.
  166. Man-Son-Hing H., Zoran M J., Lukowiak K., Haydon P.G. A neuromodulator of synaptic transmission acts on the secretory apparatus as well as on ion channels // Nature. 1989. — Vol. 341.-P. 237−239.
  167. McGehee D., Heath M., Gelber S., Devay P., Role L.W. Nicotine enhancement of fast excitatory synaptic transmission in CNS by presynaptic receptors // Science 1995. — Vol. 269.-P. 1692−1697.
  168. Mcintosh H.H., Blazynski C. Characterization and localization of adenosine A2 receptors in bovine rod outer segments // J. Neurochem. 1994. — Vol. 62. — P. 992−997.
  169. McKinney M., Richelson E. The coupling of the neuronal muscarinic receptors responses // Ann. Rev. Pharmacol. Toxicol. 1984. — V. 24. — P. 121−146.
  170. Meir A., Ginsburg S., Butkevich A., Kachalsky S.G., Kaiserman I., Ahdut R., Demirgoren S., Rahamimoff R. Ion channels in presynaptic nerve terminals and control of transmitter release // Physiol. Rev. 1999. — Vol. 79. — P. 1019−1088.
  171. Meriney S.D., Grinnell A.D. Endogenous adenosine modulates stimulation induced depression at the frog neuromuscular junction // J. Physiol. -1991. Vol. 443. — P. 441−455.
  172. Mery P.-F., Abi-Gerges N., Nandecasteele G., Jurevicius J., Eschenhagen T., Fischmeister R. Muscarinic regulation of the L-type calcium current in isolated cardiac myocytes // Life Sci. 1997. — Vol. 60. — P. 1113−1120.
  173. Meunier F.M., Israel M., Lesbats B. Release of ATP from stimulated nerve electroplaque junctions // Nature. 1975. — 275.
  174. Miller R.J. Receptor-mediated regulation of calcium channels and neurotransmitter release // FASEB J. Vol. 4. — P. 3291−3299.
  175. Miller R.J. Presynaptic receptors // Ann. Rev. Pharmacol. Toxicol. 1 998. Vol. 3 8. P. 201−227.
  176. Mirotznik R.R., Zheng X., Stanley E.F. G-protein types involved in calcium channel inhibition at a presynaptic nerve terminal // J. Neurosci. 2000. — Vol. 20. — P. 7614−7621.
  177. Mogul D.J., Adams M.E., Fox A.P. Differential activation of adenosine receptors decreases N-type but potentiates P-type Ca current in hippocampal CA3 neurons // Neuron. -1993.-Vol. 10.-P. 327−334.
  178. Morita K., North R.A., Tokimasa T. Muscarinic presynaptic inhibition of synaptic transmission in myenteric plexus of guinea-pig ileum // J. Physiol. 1982. — Vol. 333. — P. 141−149.
  179. Mozrzymas J.W., Ruzzier F. ATP activates junctional and extrajunctional acetylcholine receptor channels in isolated adult rat muscle fibres // Neurosci. Lett. 1992. — Vol. 139. — P. 217−220.
  180. Mulle C., Choquet D., Korn H., Changeux J.P. Calcium influx through nicotinic receptor in rat central neurons: its relevance to cellular regulation // Neuron. 1992. — Vol. 8. — N. 1. -P. 135−143.
  181. Muller D., Loctin F., Dunant Y. Inhibition of evoked acetylcholine release: two different mechanisms in the Torpedo electric organ // Eur. J. Pharmacol. 1987. — Vol. 33. — P. 225 234.
  182. Mynlieff M., Beam K.G. Adenosine acting at an A1 receptor decreases N-type calcium current in mouse motoneurons // J. Neurosci. 1994. — Vol. 14. — P. 3628−3634.
  183. Nakazawa K. ATP-activated current and its interaction with acetylcholine-activated current in rat sympathetic neurons // J. Neurosci. 1994. — Vol. 14. — P. 740−750.
  184. Nakazawa K., Fujimori K., Takanaka A., Inoue K. Comparison of adenosine-triphosphate- and nicotine-activated inward currents in rat phaeochromocytoma cells // J. Physiol. 1991. — Vol. 434. — P. 647−660.
  185. Nazarea M., Okajama F., Kondo Y. P2 purinergic activation of phosphoinositide turnover is potentiated by Ai receptor stimulation of thyroid cells // Eur. J. Pharmacol. 1991. — Vol. 206. — P. 47−52.
  186. Neher E. Vesicle pools and Ca2+ microdomains: new tools for understanding their roles in neurotransmitter release II Neuron. 1998. — Vol. 20. — P. 389−399.
  187. Nicholls D .G. Proteins, transmitters and synapses // B lackwell S ci. Publ. 1 994. — P. 186−199.
  188. Nikolsky E.E., Bukharaeva E.A., Strunsky E.A., Vyskonil F. Depression of miniature endplate potential frequency by acetylcholine and its analogues in frog // Br. J. Pharmacol., -1991.-Vol. 104.-P. 1024−1032.
  189. Nikolsky E.E., Vyskonil F., Bukharaeva E.A., Samigullin D., Magazanik L.G. Cholinergic regulation of the evoked quantal release at frog neuromuscular junction // J. Physiol. 2004. -Vol. 560. (Pt 1).-P. 77−88.
  190. Noma A. GTP-binding proteins couple cardiac muscarinic receptor to potassium channels // Trends Neurosci. 1986. — V. 9. — N. 4. — P. 142−143.
  191. North R.A., Barnard E.A. Nucleotide receptors // Curr. Opinion Neurobiol. 1997. — Vol. 7.-P. 346−357.
  192. Offermanns S., Schultz G. Complex information processing by the transmembrane signalling system involving G proteins // Naun. Schm. Arch. Pharmacol. 1994. — Vol. 350. -P. 329−338.
  193. Olah M.E., Stiles G.L. Adenosine receptor subtypes: Characterization and therapeutic regulation//Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol. 1995. — Vol. 35. — P. 581−606.
  194. Oliveira L., Timoteo M.A., Correa-de-Sa P. Modulation by adenosine of both muscarinic Mi-facilitation and M2-inhibition of 3H.-acetylcholine release from the rat motor nerve terminals // Eur. J. Neurosci. 2002. — Vol. 15. — P. 1728−1736.
  195. Onali P., Olianas M.C. Bimodal regulation of cyclic AMP by muscarinic receptors: Involvement of multiple G proteins and different forms of adenylyl cyclases // Life Sci. -1995.-V. 56.-P. 973−980.
  196. Onge E.S., Otero D.A., Bottiglieri D.F., Meyer E.M. Effects of different s ecretagogues and intracellular messengers on the muscarinic modulation of H.-acetylcholine release // Neurochem. Res. 1986. — Vol. 11. — P. 1547−1556.
  197. Palmer T.M., Stiles G.L. Review: Neurotransmitter receptors, VII. Adenosine receptors // Neuropharmacol. 1995. — Vol. 34. — P. 683−694.
  198. Parkman H.P., Pagano A.P., Ryan J.P. Subtypes of muscarinic receptors regulating gallbladder cholinergic contraction // Am. J. Physiol. 1999. — Vol. 276. — P. 1243−1250.
  199. Parnas H., Segel L., Dudel J., Parnas I. Autoreceptors, membrane potential and regulationof transmitter release // Trends Neurosci. 2000. — Vol. 23. — P. 60−68.
  200. Paton W.D.M., Zaimis E.J. The methonium compounds //Pharmacol. Rev. 1952. — Vol. 4.-P. 219−253.
  201. Patil P.G., de Leon M., Reed R.R., Dubel S., Snutch T.P., Yue D.T. Elementary events underlying voltage-dependent G-protein inhibition of N-type calcium channels // Biophys. J. -1996. Vol. 71. — P. 2509−2521.
  202. Peakman M.C., Hill S.J. Adenosine A2b receptor-mediated cyclic AMP accumulation in primary rat astrocytes//Br. J. Pharmacol. 1994.-Vol. 111.-P. 191−198.
  203. Peteris A., Ogren V.R. Interaction of forskolin with effect of atropine on 3H. acetylcholine secretion in guinea-pig ileum myenteric plexus // J. Physiol. 1988. — Vol. 395. p. 441−453.
  204. Phillis J.W. The pharmacology of purines in the CNS: interactions with psychoactive agents // In Purines: Pharmacol. Physiol. Roles, ed. Stone T.W. (Lond. McMillan Press). -1985.-P. 45−56.
  205. Phillis J.W., Wu P.H. Adenosine and adenosine triphosphate as neurotransmitter/neuromodulators in the brain: the evidence is mounting // Trends Aut. Pharmacol, ed. Kalsner S. Urban and Schwarzenberg, Baltimore, USA. 1982. — P. 237−261.
  206. Pitchford S., West Day J., Gordon A., Mochly-Rosen D. Nicotinic acetylcholine receptor desensitization is regulated by activation-induced extracellular adenosine accumulation // J. Neurosci. 1992. — Vol. 12. — N. 11. — P. 4540−4544.
  207. Post M.A., Kirsch G.E., Brown A.M. Kv2.1 and electrically silent Kv6.1 potassium channel subunits combine and express a novel current // FEBS Lett. 1996. — Vol. 9. N. 399(1−2).-P. 177−182.
  208. Ralevic V., Burnstock G. Receptors for purines and pyrimidines // Pharmocological reviews. 1998. — Vol. 50. — P. 413−492.
  209. Rasgado-Flores H., Sanchez-Armass S., Blaustein M.P., Nachshen D.A. Strontium, barium and manganese metabolism in isolated presynaptic nerve terminals // Am. J. Physiol. 1987. — Vol. 252. — C604-C610.
  210. Rasmussen H., Barrett P.Q. Calcium messenger system: an integrated view//Physiol. Rev. 1984. — V. 64. — N. 3. — P. 938−984.
  211. Redman R.S., Silinsky E.M. ATP released together with acetylcholine as the mediator of neuromuscular depression at the frog motor nerve endings // J. Physiol. 1994. — Vol. 477. -P. 117−127.
  212. Redman R.S., Silinsky E.M. On the simultaneous electrophysiological measurements of neurotransmitter release and perineural calcium currents from frog motor nerve endings // J. Neurosci. Methods. 1995. — Vol. 57. — P. 151−159.
  213. Reid C.A., Bekkers J.M., Clements J.D. N- and P/Q-type Ca2+ channels mediate transmitter release with a similar cooperativity at rat hippocampal autapses // J. Neurosci. -1998.-Vol. 18.-P. 2849−2855.
  214. Ren J., Harty R.F. Presynaptic muscarinic receptors modulate acetylcholine release from rat antral mucosal/submucosal nerves // Digest. Dis. and Science. 1994. — Vol. 39. — P. 1099−1106.
  215. Ribeiro J.A., Walker J. Action of adenosine triphosphate on endplate potentials recorded from muscle fibres of the rat-diaphragm and frog sartorius // Br. J. Pharmacol. 1973. — Vol. 49.-P. 724−725.
  216. Ribeiro J. A., Walker J. The effects of adenosine triphosphate and adenosine diphosphate on transmission at the rat and frog neuromuscular junctions // Br. J. Pharmacol. 1975. -Vol. 54.-P. 213−218.
  217. Ribeiro J.A., Sa-Almeida A.M., Namorado J.M. Adenosine and adenosine triphosphate decrease 45Ca uptake by synaptosomes stimulated by potassium // Biochem. Pharmacol. -1979. Vol. 28. — P. 1297−1300.
  218. Ribeiro J.A., Sebastiao A.M. Adenosine receptors and calcium: basis for proposing a third (A3) type of adenosine receptor // Prog. Neurobiol. 1986. — Vol. 26. — P. 179−209.
  219. Ribeiro J.A., Sebastiao A.M. On the role, inactivation and origin of endogenous adenosine at the frog neuromuscular junction // J. Physiol. 1987. — Vol. 384. — P. 571−585
  220. Ribeiro A J., Cunha R.A., Correia-de-Sa P., Sebastiao A.M. Purinergic regulation of acetylcholine release // Prog. Brain Res. 1996. — Vol. 109. — P. 231−241.
  221. Robitaille R. Purinergic receptors and their activation by endogenous purines at perisynaptic glial cells of the frog neuromuscular junction // J. Neurosci. 1995. — Vol. 15. -P. 7121−7131.
  222. Robitaille R., Jahromi B.S., Charlton M.P. Muscarinic Ca2+ responces in perisynaptic Schwann cells unblocked by classical muscarinic antagonists // J. Physiol. 1997. — Vol. 504. -P. 337−347.
  223. Robitaille R. Modulation of synaptic efficacy and synaptic depression by glial cells at the frog neuromuscular junction // Neuron. 1998. — Vol. 21. — P. 847−855.
  224. Robitaille R., Thomas S., Charlton M.P. Effects of adenosine on Ca2+ entry in the nerve terminal of the frog neuromuscular junction // Can. J. Physiol. Pharmacol. 1999. — Vol. 77. -P. 707−714.
  225. Roche J.P., Treistman S.N., Ca2+ channel P3 subunit enhances voltage-dependent relief of G-protein inhibition induced by muscarinic receptor activation and Gpy // J. Neurosci. 1998. -Vol. 18.-P. 4883−4890.
  226. Rosemund C., Stevens C.F. Definition of the readily releasable pool of vesicles at hippocampal synapses // Neuron. 1996. — Vol. 16. — P. 1197−1207.
  227. Rouse S.T., Levey A.I. Muscarinic acetylcholine receptor immunoreactivity afterhippicampal commissural/associational pathway lesions: evidence for multiple presynaptic receptor subtypes // J. Comp. Neurol. 1997. — Vol. 380. — P. 382−394.
  228. Rouse S.T., Edmunds S.M., Yi H., Gilmor M.L., Levey A.I. Localization of M (2) muscarinic acetylcholine receptor protein in cholinergic and non-cholinergic terminals in rat hippocampus // Neurosci. Lett. 2000. — Vol. 284. — P. 182−186.
  229. Sajjadi F.G., Takabayshi K., Foster A.C., Domingo R.C., Firestein G.S. Inhibition of TNF-a expression by adenosine // J. Immunol. 1996. — Vol. 156. — P. 3435−3442.
  230. Salgado A.I. Cunha R.A., Ribeiro J.A. Facilitation by P2 receptor activation of acetylcholine r elease from r at m otor n erve t erminals: i nteraction w ith p resynaptic n icotinic receptors // Brain Res. 2000. — Vol. 977. — N. 2. — P. 245−250.
  231. Scanziani M.^Capogna M., Gahwiler B.H., Thompson S.M. Presynaptic inihibition of miniature excitatory synaptic currents by baclofen and adenosien in the hippocampus // Neuron. 1992. — Vol. 9. — P. 919−927.
  232. Scholz K.P., Miller R.J. Analysis of adenosine actions on Ca2+ currents and synaptic transmission in cultured rat hippocampalpyramidal neurones // J. Physiol. 1991. — Vol. 435. -P. 373−393.
  233. Scholz K.P., Miller R.J.Inhibition of quantal transmitter release in the absence of calcium influx by a G protein-linked adenosine receptor in hippocampal synapses // Neuron. 1992. -Vol. 8.-P. 1139−1150.
  234. Schrattenholz A., Roth U., Achunen A., Schager H.J., Godovac-Zimmerman J., Albuquerque E.X., Maelicke A. Identification of purine binding sites on Torpedo acetylcholine receptor // J. Recept. Res. 1994. — Vol. 14. — P. 197−208.
  235. Schweitzer E. Coordinated release of ATP and ACh from cholinergic synaptosomes and its inhibition by calmodulin antagonists // J. Neurosci. 1987. — Vol. 7. — P. 2948−2956.
  236. Searl T.J., Silinsky E.M. Cross-talk between apparently independent receptors // J. Physiol. 1998. — Vol. 513. -N. 3. — P. 629.
  237. Searl T.J., Silinsky E.M. Phorbol esters and adenosine affect the readily releasable neurotransmitter pool by different mechanisms at amphibian motor nerve endings // J. Physiol. 2003. — Vol. 553. -N. 2. — P. 445−456.
  238. Searl T.J., Redman R.S., Silinsky E.M. Mutual occlusion of P2X ATP receptors and nicotinic receptors on sympathetic neurons of the guinea-pig // J. Physiol. 1998. — Vol. 510. -P. 783−791.
  239. Sebastiao A.M., Stone T.W., Ribeiro J.A. The inhibitory adenosine receptor at the neuromuscular junction and hippocampus of the rat: antagonism by 1,3,8-substituted xanthines // Br. J. Pharmacol. 1990. — Vol. 101. — P. 453−459.
  240. Sebastiao A.M., Ribeiro J.A. Evidence for presence of excitatory A2 receptors adenosine receptors in the rat hippocampus // Neurosci. Lett. 1992. — Vol. 138. — P. 41−44.
  241. Sebastiao A.M., Ribeiro J.A. Adenosine A2 receptor-mediated excitatory actions on the nervous system // Prog. Neurobiol. 1996. — Vol. 48. — P. 167−189.
  242. Sebastiao A.M., Ribeiro J.A. Fine-tuning neuromodulation by adenosine // Trends Pharmacol. Sci. 2000. — Vol. 21. — N. 9. — P. 341−346.
  243. Shahraki A, Stone T.W. Interactions between adenosine and metabotropic glutamate receptors in the rat hippocampal slice // Br. J. Pharmacol. 2003. — Vol. 138. — N. 6. — P. 1059−1068.
  244. Shapiro M.S., Wollmuth L.P., Hille B. Modulation of Ca2+ channels by PTX-sensitive G-proteins is blocked by N-ethylmaleimide in rat sympathetic neurons // J. Neurosci. 1994. -Vol. 14. — P. 7109−7116.
  245. Shimony Y., Alnaes E., Rahamimoff R. Is hyperosmotic neurosecretion from motor nerve endings a calcium-dependent process? // Nature. 1977. — Vol. 267. — P. 170−172.
  246. Siguira Y., Ko Ch-P. PTX-sensitive and -insensitive synaptic modulation at the frog neuromuscular junction // Neuroreport. -2000. Vol. 11. — N. 13. -P. 3017−3021.
  247. Silinsky E.M. On the association between transmitter secretion and release of adenine nucleotides from mammalian motor nerve terminals // J. Physiol. 1975. — Vol. 247. — P. 145 162.
  248. Silinsky E.M. Evidence for specific adenosine receptors at cholinergic nerve endings // Br. J. Pharmacol. 1980.-Vol. 71.-P. 191−194.
  249. Silinsky E.M. On the calcium receptor that mediates depolarization-secretion coupling atcholinergic motor nerve terminals // Br. J. Pharmacol. -1981. Vol. 73. P. 413−429.
  250. Silinsky E.M. On the mechanism by which adenosine receptor activation inhibits the release of acetylcholine from motor nerve endings // J. Physiol. 1984. — Vol. 346. — P. 243 256.
  251. Silinsky E.M. The biophysical pharmacology of calcium-dependent acetylcholine secretion//Pharmacol. Rev. 1985. — Vol. 37. — P. 81−132.
  252. Silinsky E.M. Inhibition of transmitter release by adenosine: are Ca 2 +currents depressed or are the intracellular effects of Ca 2 +impaired? // Trends Pharmacol. Sci. 1986. — Vol. 7. -P. 180−185.
  253. Silinsky E.M. Adenosine derivatives and neuronal function // Seminars Neurosci. 1989. -Vol. l.-P. 155−165.
  254. Silinsky E.M. Adenosine decreases both presynaptic calcium currents and neurotransmitter release at the mouse neuromuscular junction // J. Physiol. 2004. -Vol. 558. N. 2.-P. 389−401.
  255. Silinsky E.M., Gerzanich V. On the excitatory effects of ATP and its role as a neurotransmitter in coeliac neurons of the g uinea-pig // J. Physiol. -1993. Vol. 464. — P. 197−212.
  256. Silinsky E.M., Gerzanich V., Vanner S.M. ATP mediates excitatory synaptic transmission in mammalian neurones // Br. J. Pharmacol. 1992. — Vol 106. — P. 762−763.
  257. Silinsky E.M., Hubbard J.I. Release of ATP from rat motor nerve terminals // Nature. -1973. Vol. 243. — P. 404−405.
  258. Silinsky E.M., Redman R.S. Synchronous release of ATP and neurotransmitter within milliseconds of a motor nerve impulse in the frog // J. Physiol. 1996. — Vol. 492. — N3. — P. 815−822.
  259. Silinsky E.M., Searl T.J., Redman R.S., Hirsh J.K. Release and effects of ATP and its derivatives at cholinergic synapses // Drug. Dev. Res. 2001. — Vol. 52. — P. 22−33.
  260. Sims S.M., Singer J.J., Walsh J.V. A mechanism of muscarinic excitation in dissociated smooth muscle cells // Trends Pharmacol. Sci. 1986. — V. 7. Suppl. — P. 28−32.
  261. Skinner M.R., Marshall J.M. Studies on the roles of ATP, adenosine and nitric oxide in mediating muscle vasodilatation evoked in the rat acute systemic hypoxia // J. Physiol. -1996. Vol. 495. — P. 553−560.
  262. Slutsky I., Parnas H., Parnas I. Presynaptic effects of muscarine on ACh release at the frog neuromuscular junction // J. Physiol. 1999. — Vol. 524. — N. 3. P. 769−782.
  263. Slutsky I., Silman I., Parnas H., Parnas I. Presynaptic M2 muscarinic receptors are involved in controlling tyhe kinetics of ACh release at the frog neuromuscular junction // J/ Physiol. 2001. — Vol. 536. — N. 3. — P. 717−725.
  264. Slutsky I., R ashkovan G., P arnas H., P arnas I. Ca2±Independent feedback i nhibition o f acetylcholine release in frog neuromuscular junction // J. Neurosci. 2002. — Vol. 22. — N. 9. -P. 3426−3433.
  265. Slutsky I., Wess J., Gomeza J., Dudel I., Parnas H., Parnas I. Use of knockout mice reveals involvement of M2-muscarinic receptors in control of the kinetics of acetylcholine release // J. Neurophysiol. 2003. — Vol. 89. — P. 1954−1967.
  266. Smith D.O. Sources of adenosine released during neuromuscular transmission in the rat // J. Physiol. -1991. Vol. 432. — P. 343−354.
  267. Smith D.O., Lu Z. Adenosine derives from hydrolysis of presynaptically released ATP inhibits neuromuscular transmission // Neurosci. Lett. 1991. — Vol. 122. — P. 171−173.
  268. Sokolova E., Nistri A., Giniatullin R. The ATP-mediated fast current of rat dorsal root ganglion neurons is a novel effector for GABAb receptor activation // Neurosci. Lett. 2003. -Vol. 338.-N. 3.-P. 181−184a.
  269. Sokolova E., Grishin S., Shakirzyanova A., Talantova M., Giniatullin R. Distinct receptors and different transduction mechanisms for ATP and adenosine at the frog motor nerve endings // Eur. J. Neurosci. 2003. — Vol. 18. — P. 1254−1264b.
  270. Soliakov L., Gallagher T., Wonnacott S. Anatoxin-a-evoked 3H. dopamine release from rat striatal synaptosomes // Neuropharmacology 1995. — Vol. 34. P. 1535 -1541.
  271. Somlyo A.V., Bond M., Somlyo A.P., Scarpa A. Inositol triphosphate-induced calcium release and contraction in vascular smooth muscle // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1985. — V. 82.-N. 15.-P. 129−145.
  272. Somogyi G.T., Tanowitz M., Groat W.C. Ml muscarinic receptor-mediated facilitation of acetylcholina release in the rat urinary bladder // J. Physiol. 1994. — Vol. 480. — N. 1. — P. 81−89.
  273. Song W.J., Tkatch T., Surmeier D. Adenosine receptor expression and modulation of Ca2+ channels in rat striatal cholinergic interneurons // J. Neurophysiol. 2000. — Vol. 83. — P. 322 332.
  274. Spignoli G., Pedata F., Pepeu G. Ai and A2 adenosine receptors modulate acetylcholine release from brain slices // Eur. J. Pharmacol. 1984. — Vol. 97. — P. 341−342.
  275. Stambaugh K., Jacobson K.A., Jiang J-L., Jiang B.T. A novel cardioprotective function of adenosine Ai and A3 receptors during prolonged simulated ischemia // Am. J. Physiol. -1997. Vol. 273. — H501-H505.
  276. Starke K., Gothert M., Kilbinger H. Modulation of neurotransmitter release by presynaptic autoreceptors // Physiol. Rev. 1989. — Vol. 69. — P. 864−989.
  277. Stevens C.F., Sullivan J.M. Regulation of the readily-releasable vesicle pool by protein kinase C // Neuron. 1998. — Vol. 21. — P. 885−893.
  278. C.F., Williams J.H. «Kiss and run» exocytosis at hippocampal synapses // Proc. Natl. Acad. Sci. USA 2000. — Vol. 97. — P. 12 828−12 833.
  279. Stone T.W. Adenosine in the nervous system. San Diego: Academic Press, 1991.
  280. Tashiro T., Stadler H. Chemical composition of cholinergic synaptic vesicles from Torpedo marmorata based on improved purification // J. Biochem. 1978. — Vol. 90. — P. 479−487.
  281. Thomas S., Robitaille R. Differential frequency-dependent regulation of transmitter releaseby endogenous nitric oxide at the amphibian neuromuscular synapse // J. Neurosci. 2001. -Vol. 21.-N. 4.-P. 1087−1095.
  282. Tian L., Prior C., Dempster J., Marshall I.G. Nicotinic antagonist-produced frecuency-dependent changes in acetylcholine release from rat motor nerve terminals // J. Physiol. -1994. Vol. 476. — N. 3. — P. 517−529.
  283. Umemiya M., Berger A J. Activation of adenosine Ai and Aa receptors differentially modulates calcium channels and glycinergic synaptic transmission in rat brain stem // Neuron. -1994.-Vol. 13.-P. 1439−1446.
  284. Van der Kloot W. Nicotinic agonists antagonize quantal size increases and evoked release at frog neuromuscular junction // J. Physiol. 1993. — Vol. 469. — P. 567−589.
  285. Van der Kloot W., Molgo J. Quantal acetylcholine release at the vertebrate neuromuscular junction // Physiol. Rev. 1994. — Vol. 74. — P. 899−991.
  286. Vannucchi M.G., Pepeu G. Muscarinic receptor modulation of acetylcholine release from rat cerebral cortex and hippocampus // Neurosci. Letters. 1995. — Vol. 190. — P. 53−56.
  287. Wall P.D. Do nerve impulses penetrate terminal arborizations? A pre-presynaptic control mechanism//TINS. 1995. — Vol. 18. — P. 99−103.
  288. Ward J.M.- Cockcroft V.B.- Lunt G.G.- Smillie F.S. Wonnacott, S. Methyllycaconitine: a selective probe for alpha-bungarotoxin neuronal binding sites // FEBS Lett. 1990. — Vol. 270. — P. 45−48.
  289. Wess J. Molecular basis of muscarinic acetylcholine receptor function // Trens Pharmacol. Sci. 1993. — V. 14. — P. 308−313.
  290. Wessler I., Karl M., Mai M., Diener A. Muscarine receptors on the rat phrenic nerve, evidence for posotive and negative muscarinic feedback mechanisms // Naunyn-Schmiedeberg's Arch. Pharmac. 1987b. — Vol. 335. — P. 605−612.
  291. Wessler I. Neurotransmission at the NMJ // Trends Pharmacol. Sci. 1988. — Vol. 9. — P. 125−126.
  292. Wessler I. Control of transmitter release from the motor nerve by presynaptic nicotinic and muscarinic autoreceptors // Trends Pharmacol. Sci. 1989. — Vol. 10. — P. 110−114.
  293. Wessler I. Acetylcholine at motor nerves: storage, release, and presynaptic modulation by autoreceptors and adrenoceptors // Int. Rev. Neurobiol. 1992. — Vol. 34. — P. 283−384
  294. Wessler I., Apel C., Garmsen M., Klein A. Effects of nicotine receptor agonists on acetylcholine release from the isolated motor nerve, small intestine and trachea of rats andguinea-pigs // Clin. Investig. 1992. — Vol. 70. N. 3−4. — P. 182−189.
  295. Wheeler D.B., Randall A., Tsien R.W. Roles of N-type and Q-type Ca2+ channels in supporting hippocampal synaptic transmission // Science. 1994. — Vol. 264. — P. 107−111.
  296. White T.D., Macdonald W.F. Neural release of ATP and adenosine // In Biol. Act. Extrac. ATP. ed Dubyak G.R., Fedan J.S., N-Y Acad. Sci. 1990. — P. 287−299.
  297. Whittaker V.P., Dowdall M.J., Boyne A.F.The storage and release of acetylcholine by cholinergic nerve terminals: recent results with non-mammalian preparations // Biochem. Soc. Symp. 1972. — Vol. 36. — P. 49−68.
  298. Wickman K., Clapham D.E. Ion channel regulation by G proteins // Physiol. Rev. 1995. -Vol. 75.-P. 865−885.
  299. Wonnacott S. Presynaptic nicotinic ACh receptors // Trends Neurosci. 1997. — Vol. 20. -P. 92−98.
  300. Wu L.-G., Betz W.J. Nerve activity but not intracellular calcium determines the time course of endocytosis at the frog neuromuscular junction // Neuron. 1996. — Vol. 17. — P. 769−779.
  301. Wu L.-G., Saggau P. Adenosine inhibits evoked synaptic transmission primarily by reducing presynaptic calcium influx in area CA1 of hippocampus // Neuron. 1994. — Vol. 12.-P. 1139−1148.
  302. Wu L.-G., Saggau P. Presynaptic inhibition of elicited neurotransmitter release // Trends Neurosci. 1997. — Vol. 20. — P 204−212.
  303. Yakel J.L., Warren R.A., Reppert S.M., North R.A. Functional expression of adenosine A2b receptor in Xenopus oocytes // Mol. Pharmacol. 1993. — Vol. 43. — P. 277−280.
  304. Yamada M., Hamamori Y., Yokoyama M. P2-purinoceptor activation stimulates phosphoinositide hydrolysis and inhibits accumulation of c-AMP in cultured ventricular myocytes // Circ. Res. 1992. — Vol. 70. — P. 477−485.
  305. Yao Y., Sei Y., Abbracchio M.P., Kim Y-C., Jacobson K.A. Adenosine A3 receptoragonists protect HL-60 and U-937 cells from apoptosis induced by A3 antagonists // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1997. — Vol. 232. — P. 317−322.
  306. Yawo H., Chuhma N. Preferential inhibition of co-conotoxin-sensitive presynaptic Ca2+ channels by adenosien autoreceptors // Nature. 1993. — Vol. 365. — P. 256−258.
  307. Zamponi G.W., Bounnet E., Nelson D., Nargeot J., Snutch T.P. Crasstalk between G-proteins and protein kinase C mediated by the calcium channel al subunit // Nature. 1997. -Vol. 385.-P. 442−446.
  308. Zamponi G.W., Snutch T.P. Modulation of voltage-dependent calcium channels by G-proteins // Curr. Opin. Neurobiol. 1998. — Vol. 8. — P. 351−356.
  309. Zamponi G.W. Determinants of G-protein inhibition of presynaptic calcium channels // Cell Biochem. Biophysics.-2001.-Vol. 34.-P. 79−94.
  310. Zhang J.F., Ellinor P.T., Aldrich R.W., Tsien R.W. Multiple structural elements in voltage-dependent Ca channels support their inhibition by G-proteins // Neuron. 1996. — Vol. 17. -P. 991−1003.
  311. Zimmermann H. S ignalling v ia A TP i n t he n ervous sy stem / / T rends N eurosci. -1994. — Vol. 17.-P. 420−426.
  312. Ziganshin A.U., Hoyle C.H.V., Burnstock G. Ecto-enzymes and metabolism of extracellular ATP // Drug Dev. Res. 1994a. — Vol. 32. — P. 134−146.
  313. Ziganshin A.U., Hoyle C.H.V., Lambrecht G., Mutscheler E., Baumert H.G., Burnstock G. Selective antagonism by PPADS at P2X -purinoceptors in rabbit isolated blood vessels // Br. J. Pharmacol. 1994b. — Vol. 111. — P. 923−929.
  314. Zimmermann H. Extracellular metabolism of ATP and other nucleotides // Naunyn-Schmiedeberg s Arch. Pharmacol. 2000. — Vol. 362. — P. 299−309.
  315. Zink A., ScherublH., HoflichM., Hescheler J., RaueF. Adenosine A1 receptors inhibitcAMP and Ca2+ mediated calcitonin secretion in C-cells // Horm. Metab. Res. 1995. — Vol. 27.-P. 408−414.
  316. Zhou X., Galligan J.J. Non-additive interaction between nicotinic cholinergic and P2x purine receptors in guinea-pig enteric neurons in culture // J. Physiol. 1998. — Vol. 513. — P. 685 697.
  317. Zhu Y., Ikeda S.R. Adenosine modulates voltage-gated Ca2+ channels in adult rat sympathetic neurons // J. Neurophysiol. 1993. — Vol. 70. — P. 610−620.
  318. Zucker R.S. Exocytosis: a molecular and physiological perspective // Neuron. 1996. -Vol. 17.-P. 1049−1055.
  319. Автор выражает сердечную благодарность Гиниатуллину Рашиду Асхатовичу, а также Никольскому Евгению Евгеньевичу за прекрасное руководство работой, авторитетную помощь в ее выполнении и подготовке диссертации к защите.
  320. Огромная благодарность всем сотрудникам лаборатории Биофизики синаптических процессов КИББ КазНЦ РАН и нормальной физиологии Казанского государственного медицинского университета за неоценимую помощь, постоянную активную поддержку и доброе отношение.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!