Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Изменение микрофлоры полости рта на ранних стадиях ортодонтического лечения на несъемной аппаратуре

Диссертация: Изменение микрофлоры полости рта на ранних стадиях ортодонтического лечения на несъемной аппаратуре
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Воздействие на внеклеточную ДНК матрикса микробных биопленок приводит к изменению их свойств. Создаются условия для повышенияэффективности антимикробной терапии воспалительных процессов полости рта у пациентов, проходящих лечение на несъемной ортодонтической аппаратуре. О особенностями выживания бактерий в биопленках в значительной степенисвязана неэффективность антимикробной терапии… Читать ещё >

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
  • ГЛАВА 1. СОВРЕМЕННЫЙ ВЗГЛЯД НА МИКРОФЛОРУ ПОЛОСТИ РТА. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Микрофлора полости рта и ее роль в развитии стоматологических заболеваний
    • 1. 2. Микробные биопленки
    • 1. 3. Микрофлора полости рта у пациентов с зубочелюстными аномалиями
    • 1. 4. Влияние ортодонтического лечения на микрофлору полости рта
    • 1. 5. Коррекция микрофлоры полости рта у пациентов с зубочелюстными аномалиями
    • 1. 6. Микробиологические аспекты гигиены полости ртау пациентов, находящихся на ортодонтическом лечении
  • ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. Общая характеристика обследованных и принятых на лечение пациентов
    • 2. 2. Клинические методы исследования
    • 2. 3. Рентгенологическое обследование
    • 2. 4. Материал для микробиологического исследования
    • 2. 5. Микроорганизмы
    • 2. 6. Питательные среды
    • 2. 7. Антисептики
    • 2. 8. Диски с антибиотиками для определения чувствительности. к антибактериальным препаратам
    • 2. 9. Диагностические диски
    • 2. 10. Ферментные препараты
    • 2. 11. Микробиологические методы исследования
      • 2. 11. 1. Культивирование аэробных и факультативно-анаэробных микроорганизмов
      • 2. 11. 2. '. Культивирование анаэробных, микроорганизмов
      • 2. 11. 3. Количественное определение. микроорганизмов в клиническом материале
      • 2. 11. 4. Идентификация выделенных микроорганизмов
      • 2. 11. 5. Определение чувствительности к антимикробным препаратам
      • 2. 11. 6. Определение минимальной подавляющей концентрации антибиотиков
      • 2. 11. 7. Получение микробных биопленок в стеклянных флаконах
      • 2. 11. 8. Получение микробных биопленок в чашках Петри
      • 2. 11. 9. Получение микробных биопленок в пластиковых планшетах
      • 2. 11. 10. Получение внеклеточного матрикса
      • 2. 11. 11. Выявление генов 168 рибосомальной ДНК в межклеточном матриксе
      • 2. 11. 12. Электрофорез в агарозном геле
    • 2. 12. Статистические методы
  • ГЛАВА 3. ОЦЕНКА СТОМАТОЛОГИЧЕСКОГО СТАТУСА ПАЦИЕНТОВ ДО НАЧАЛА ОРТОДОНТИЧЕСКОГО ЛЕЧЕНИЯ НА НЕСЪЕМНОЙ АППАРАТУРЕ И НА РАННИХ СТАДИЯХ ЛЕЧЕНИЯ
    • 3. 1. Результаты клинического обследования полости рта через 4недель после лечения
    • 3. 2. Результаты клинического обследования через 8−10недель
    • 3. 3. Результаты клинического обследования через 12 недель
    • 3. 4. Обсуждение результатов исследования
  • ГЛАВА 4. ДИНАМИКА ИЗМЕНИЯ МИКРОФЛОРЫ ПОЛОСТИ РТА У ПАЦИЕНТОВ, ПРОХОДЯЩИХ ЛЕЧЕНИЕ НА НЕСЪЁМНОЙ ОРТОДОНТИЧЕСКОЙ АППАРАТУРЕ
    • 4. 1. Микрофлора полости рта
    • 4. 2. Изменение микрофлоры полости рта при ортодонтическом лечении несъемной аппаратурой
    • 4. 3. Колонизация поверхности несъемной аппаратуры в ходе ортодонтического лечения
    • 4. 4. Внеклеточная ДНК в биопленках микробов, выделенных изполости рта при лечении несъемной ортодонтической аппаратурой
  • ГЛАВА 5. ДЕЙСТВИЕ АНТИСЕПТИКОВ И ДНКазы НА БИОПЛЕНКИ БАКТЕРИЙ НОРМАЛЬНОЙ МИКРОФЛОРЫ, ОБРАЗУЮЩИХСЯ ПРИ ОРТОДОНТИЧЕСКОМ ЛЕЧЕНИИ НЕСЪЕМНОЙ АППАРАТУРОЙ
    • 5. 1. Микроскопическое исследование
    • 5. 2. Выделение и идентификация микробов

Изменение микрофлоры полости рта на ранних стадиях ортодонтического лечения на несъемной аппаратуре (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность темы

.

Наличие в полости рта ортодонтического аппарата ухудшает условия для ее самоочищения, осложняет уход за зубами и создает условия, благоприятствующие отложению мягкого зубного налета. В связи с этим отмечается высокое микробное обсеменение поверхностей зубов и ортодонтических аппаратов с покрытием их обширным мягким налетом [Хамитова Н.Х., 1986; Горонкина С. М., 1996; Sukontapatipark W. et al., 2001], что, в свою очередь, ухудшает процессы реминерализации эмали и ведет к нарушению ее структуры. Также наблюдается значительное изменение состава микрофлоры полости рта, которое проявляется увеличением числа патогенных и условно-патогенных микроорганизмов, явлениями дисбактериоза [Ростокина Е.Б., 1979; Карницкая И. В., 1999]. Перечисленные факторы способствуют повышению распространенности кариеса зубов и воспалительных заболеваний пародонта [Перова Е.Г., 2000; Арсенина О. И. и др., 2005; Perinetti G. et al., 2004; Sallum E.J. et al., 2004; Speer C., 2004].

Несмотря на очевидную актуальность, проблема распространения условно-патогенных и патогенных микроорганизмов* при лечении зубочелюстых аномалий на несъемной ортодонтической аппаратуре остается недостаточно изученой. Современные генетические исследования показали, что 95−99% нормальной микрофлоры пока неизвестны и не поддаются культивированию. Кроме бактерий в полости рта находятся археи, грибы, простейшие и различные вирусы [Samaranayake L. P, 2006; Quivey R.G. Jr., 2006]. Особенности существования микроорганизмов в различных биотопах полости рта тесно связанны с их способностью образовывать стойкие микробные сообщества, получившие название биопленки.

Биопленка является^ идеальной нишей для обмена генетической информацией между бактериями. Передача генов в биопленках наблюдается в 10−500 раз чаще, чем в планктонных клетках [Li Y.H. et al., 2001; Wuertz S., 1999; Roberts A.P. et al., 1999; Ghigo J. M., 2001]. В биопленке происходит ускоренный горизонтальный перенос генетического материала и она становится совершенной средой для появления микроорганизмов с новыми патогенными свойствами, устойчивостью к антимикробным препаратам и способностью к выживанию в различных условиях. Перераспределение генов в микробных биопленках полости рта приводит к формированию штаммов устойчивых к антисептикам/дезинфектантам и антибиотикам [Stewart P. S., 2002; Keren T., Shah D., Spoering D., Kaldalu N., and Lewis K., 2004].

Свойства бактерий биопленок объясняют, почему стандартная терапия часто не способна справиться с бактериями, в результате чего после завершения курса лечения они способны размножаться и вновь диссеминировать, приводя к формированию обострений и хронизации инфекции.

Особенности действия антимикробных препаратов на бактерии биопленок, формирующихся при ортодонтическом лечении несъемной аппаратурой, остаются практически не изученными. Профилактика распространения инфекции в полости рта и борьба с колонизацией бактериями, способными вызывать воспалительные заболевания полости рта и соматическую патологию, остается чрезвычайно актуальной.

Цель исследования.

Повысить эффективность мер профилактики распространения патогенных и условно-патогенных микроорганизмов у пациентов с зубочелюстными аномалиямипри ортодонтическом лечении несъемной аппаратурой.

Задачи исследования.

1. Изучить микрофлору зубодесневой борозды у пациентов с различными формами зубочелюстных аномалий до установки ортодонтической аппаратуры и в ходе лечения. Дать характеристику биологических свойств микроорганизмов.

2. Выявить встречающиеся устойчивые микробные биопленки. Определить строение возбудителей стабильных микробных биопленок, выявленных у пациентов при использовании несъёмной ортодонтической аппаратуры.

3: Провести сравнительную оценку клинической эффективностиантимикробных препаратов в условиях эксперимента.

4. Предложить схемы профилактики и антимикробной терапии с учетом анализа данных исследования микробных биопленок.

Научная новизна.

Воздействие на внеклеточную ДНК матрикса микробных биопленок приводит к изменению их свойств. Создаются условия для повышенияэффективности антимикробной терапии воспалительных процессов полости рта у пациентов, проходящих лечение на несъемной ортодонтической аппаратуре. О особенностями выживания бактерий в биопленках в значительной степенисвязана неэффективность антимикробной терапии и хронизация* инфекции в стоматологической практике. Результатом низкой эффективности уничтожения микробных биопленок является их длительное существование ворганизме, в том числе в полости рта, и, как следствие, возможность оказывать постоянное влияние на состояние здоровья человека. Таким образом, немногочисленные сообщения в литературе о роли применения антимикробных препаратов, проникающих в микробные биопленки, послужилиоснованием для проведения клинических исследований.

Положения, выносимые на защиту:

1. Формирование микробного пейзажа полости рта анаэробными и аэробными микроорганизмами до начала лечения на несъемной ор-тодонтической аппаратуре и выявление устойчивых микробных биопленок на ранних стадиях ортодонтического лечения на поверхности несъемной ортодонтической аппаратуры.

2. Качественная и количественная оценка возбудителей стабильных микробных биопленок, способных изолироваться от внешней среды, выделенных с поверности несъемной аппаратуры у пациентов, проходящих ортодонтиче-ское лечение.

3. Антимикробные препараты, содержащие ДНКАзу, способные проникать внутрь микробных биопленок. Профилактические и лечебные схемы этио-тропного воздействия, позволяющие учитывать индивидуальную чувствительность бактерий и дающие возможность уменьшить количество осложнений и улучшить результаты лечения.

Практическая значимость.

Полученные данные об образовании устойчивых микробных биопленок на поверхности слизистой оболочки полости рта и несъемной аппаратуре (брекетах) ортодонтических пациентов послужили основанием для разработки эффективных схем применения антимикробных препаратов. Включение в комплекс профилактических и лечебных мероприятий методов этиотропного лечения, разработанных на основе чувствительности бактерий биопленок, позволит уменьшить количество осложнений и улучшить результаты лечения. Внедрение в практику.

Разработанные лечебно-профилактические мероприятия по снижению образования устойчивых микробных биопленок на поверхности слизистой полости рта и несъемной аппаратуры у пациентов с зубочелюстными аномалиями внедрены в практику стоматологической клиники «Стомус» г. Санкт-Петербурга, а также используются при проведений лекций и семинаров для врачей и интернов на кафедре пропедевтики стоматологических заболеваний, кафедре терапевтической стоматологии СПбГМУ им. академика И. П. Павлова, При проведении научных исследований на кафедре челюстно-лицевой хирургии СПбГМУ им. академика И. П. Павлова.

Апробация, работы.

Основные положения диссертации доложены и обсуждены на:

• II Международный молодежный медицинский Конгресс «Санкт-Петербургские научные. чтения» (Санкт-Петербург, 2007);

• III Международный медицинский Конгресс «Санкт-Петербургские научные чтения» (Санкт-Петербург, 2009);

• ЬХУШ Конференция «Актуальные вопросы экспериментальной и клинической медицины» (Санкт-Петербург, 2007);

• Международная конференция «Современные методы диагностики и лечения стоматологических заболеваний» (Воронеж, 2010);

• Всероссийская стоматологическая конференция «Новейшие технологии в стоматологии» (Краснодар, 2010).

Объем и структура работы.

По теме диссертации опубликовано 5 научных работ, из них в журналах, рекомендованных ВАК — 3.

Работа изложена на 134 страницах машинописного текста и состоит из 5 глав, заключения, выводов, практических рекомендаций, списка литературы и приложений. Библиографический список литературы содержит 130 отечественных и 167 иностранных источников. Работа иллюстрирована 15 таблицами и 13 рисунками.

выводы.

1. Среди микроорганизмов, обнаруженных в зубодесневой борозде у пациентов с различными зубочелюстными аномалиями без видимых признаков воспаления тканей пародонта, выделены аэробные бактерии Neisseria spp., Corynebacterium spp., Streptococcus spp.,. Staphylococcus spp., Candida spp. — 60%, и анаэробные бактерии Peptostreptococcus spp., Fusobacterium spp.,. Veillonella spp., Actinomyces spp. и др. — 40%. Через 4−6 недель после установки несъемного ортодонтического аппарата на его поверхности доля анаэробных бактерий уменьшилась до 22%, а через 12 недель составила 6% от выделенных микроорганизмов. Количество аэробных микроорганизмов, способных вызывать воспалительные заболевания слизистой оболочки полости рта, через 12 недель после установки возросло до 94%.

2. Выявленные устойчивые смешанные микробные биопленки, включающие: Fusolactobacterium spp., Veillonella spp., Staphylococcus spp., Streptococcus spp., Neisseria spp., Candida spp., Peptostreptococcus spp., Fusobacterium spp. образующиеся на поверхности несъемной ортодон-тической аппаратуры, имеющие классическое строение и включающие в себя микробные организмы и внеклеточный матрикс. В составе последнего, во всех изученных штаммах обнаружена внеклеточная ДНК, участвующая в поддержании структуры и поддержании и передаче генетической информации.

3. Препарат мультицид в концентрации 250 мг/л совместно с ДНКазой1 10 мг/л обладает способностью в 10 раз большей к разрушению биопленок, сформированных на поверхности несъемной ортодонтической аппаратуры и превосходит по своей эффективности антисептик — хлоргекседин в общепринятой концентрации (2000 мг/л).

4. Использование пациентами, проходящими лечение на несъемной ортодонтической аппаратуре, геля на основе антисептика мультицид и.

ДНКазы1 способствует улучшению гигиены полости рта, снижению воспалительных заболеваний полости рта, снижению микробной об-семененности зубов, что связано со способностью ДНКазы1 воздействовать на внеклеточную ДНК матрикса микробных биопленок, образующихся на поверхности несъемной ортодонтической аппаратуры.

РЕКОМЕНДАЦИИ ПРАКТИЧЕСКОМУ ЗДРАВООХРАНЕНИЮ.

1. Для профилактики осложнений заболеваний твердых и мягких тканей полости рта перед началом ортодонтического лечения у пациентов с зубочелюстными аномалиями необходима санация полости рта, а также проведение профессиональной гигиены полости рта перед установкой несъемной аппаратуры и 1 раз в три месяца на всех этапах ортодонтического лечения.

2. При лечении с помощью несъемной ортодонтической аппаратуры рекомендовано использование индивидуальных средств гигиены с периодическим микробиологическим контролем качественного и количественного состава микрофлоры полости рта, один раз в три месяца.

3. В качестве антимикробной терапии рекомендовано назначать использование мультицида 250мг/л в сочетании с ДНКазой! 10 мг/л в форме геля начиная со второй недели ортодонтического лечения на несъемной ортодонтической аппаратуре, и 1 или 2 раза в день после чистки зубов без последующего ополаскивания полости рта, курсом 7 дней (один раз в три месяца).

ГЛАВА 6.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Ортодонтия, важнейший раздел стоматологии, изучает этиологию и патогенез зубочелюстных аномалий у человека, а также подходы и методы, устраняющие эти патологии в различных возрастных группах. В современной стоматологии ортодонтия стала связующим звеном, краеугольным камнем между многими разделами не только в стоматологии, но и между общедисциплинарными предметами, такими как терапия, хирургия, оториноларингология, общая ортопедия, акушерство и гинекология, педиатрия. Современные подходы к лечению стоматологических пациентов редко обходят своим вниманием ортодонтию. И это легко понять, так как в основе множества стоматологических заболеваний лежат нарушение прикуса и неправильное положение зубов, а также дисфункции ВНЧС. В связи с этим ортодонти-ческая помощь (лечение) стали сегодня актуальны. Следует отметить, что современная ортодонтия располагает различными методами и способами лечения практически всех возрастных групп пациентов, начиная с раннего детства (0−3 года), до лиц преклонного возраста (60 и более лет).

Это стало возможным с развитием высоких технологий при изготовлении ортодонтической аппаратуры как съемной, так и несъемной. Приход цифровых технологий в* рентгене и компьютерной томографии радикально изменил к лучшему диагностику и планирование лечения в ортодонтии.

На сегодняшний день не представляется возможным качественно проведенное лечение пародонтологических и ортопедических пациентов без участия врача-ортодонта, обладающего современными взглядами и знаниями, работающего авангардными методами и аппаратурой. Исходя из этого понятна актуальность проведенного исследования. Количество пациентов, проходящих лечение на несъемной аппаратуре (брекет-системах) возрастает с каждым годом.

Многие факторы окружающей среды влияют на состав, биологическую активность и патогенность микроорганизмов, способных обитать в полости рта человека. Установлено, что различные виды лечения заболеваний полости рта могут сопровождаться распространением патогенных микроорганизмов. Показано также, что использование несъемной аппаратуры значительно затрудняет поддержание нормальной гигиены, способствует образованию зубной бляшки и формированию новых зон ретенции зубного налета, что-предрасполагает к размножению и распространению микроорганизмов. В свою очередь, с увеличением числа зубных бляшек и распространения в них различных микробов, включая грибы рода Candida spp., связывают появление гингивитов и склонность к поражению пародонта. В наших исследованиях показано, что при использовании несъемной аппаратуры в полости рта происходит изменение состава нормальной микрофлоры. В связи с этим, целью настоящего исследования было качественное и количественное изучение состава микроорганизмов, колонизующих использующуюся при ортодонти-ческом лечении несъемную аппаратуру, а также десневую борозду.

В результате изучения микрофлоры при лечении с использованием несъемной аппаратуры установлено, что на протяжении всего срока наблюдения (12 недель) происходит изменение микрофлоры десневой брозды и формирование биопленок на поверхности несъемной аппаратуры. У обследованных выявлено появление в биопленках значительного количества энтеI робактерий и грибов рода' Candida spp.. Подобная1 тенденция совместного распространения грамотрицательных бактерий и одноклеточных грибов наблюдалась и ранее, что свидетельствует о формировании сложных биопленок, включающих неродственные микроорганизмы. Ранее установлено, что ортодонтическое лечение с использованием съемной и несъемной аппаратуры приводит к увеличению числа зубных бляшек и образующих их бактерий. При этом показано, что большие изменения возникают при использовании несъемной аппаратуры. Состав формирующейся микрофлоры, свидетельствует об увеличении опасности развития' у пациентов гингивита и пародон-тита. Выявленные нами на поверхности несъемной аппаратуры и в десневой борозде микроорганизмы являются потенциальными возбудителями поражений пародонта (Peptostreptosoccus spp., Fusobacterium spp., Veillonella spp., Staphylococcus spp., Sreptococcus spp., Neisseria spp., Bifidobacterium spp., Corynebacterium spp.), слизистой оболочки полости рта (Staphylococcus spp., Sreptococcus spp., Neisseria spp., Candida spp.) причиной галитоза (Peptostreptosoccus spp., Fusobacterium spp.), а также ряда соматических заболеваний. Вновь сформированные на поверхности аппаратуры микробные биопленки, как и все микробные сообщества, отличаются от изолированных клеток по эффективности действия на них различных противомикробных препаратовантисептиков и антибиотиков. Очевидно, что при этом меняется и действие продуктов микробной природы, влияющих на состояние организма человека, в том числе и на вероятность возникновения новых поражений полости рта.

Полученные в настоящей работе данные указывают, что в ходе лечения, в связи с распространением бактерий, образуются новые сложные микробные биопленки и формируются условия для возникновения различных поражений полости рта. Для предотвращения развития новых заболеваний на фоне ортодонтической терапии необходима разработка специальной профилактики для предотвращения усиления микробной колонизации поверхности несъемной аппаратуры и десневой борозды.

Использованные штаммы бактерий, относящиеся к представителям нормальной микрофлоры полости рта, изолированные у пациентов с несъемной аппаратурой при ортодонтическом лечении, образовывали монои смешанные биопленки. Следует отметить, что полученный штамм Streptococcus mitis хорошо формировал биопленки в выбранных условиях, в то время как Neisseria subfiava как монокультура росли плохо. В то же время, в присутствии выбранного штамма Streptococcus mitis и Neisseria subfiava формировали устойчивую смешанную биопленку.

В матриксе полученных биопленок была обнаружена внеклеточная ДНК. Во всех изученных пробах матрикса, полученного из монои смешанных биопленок, присутствует внеклеточная ДНК с молекулярной массой, примерно, 30 Кб:

Использованный метод электрофоретического разделения в агарозном геле не показал различий в величине фрагментов ДНК матрикса, полученных из микробных биопленок, образованных монокультурой Streptococcus mitis и смешанных сообществ, сформированных Streptococcus mitis и Neisseria sub-flava. Внеклеточная ДНК, выделенная из смешанных биопленок, при электрофорезе в геле идет единым, не разделенным фронтом, не отличимым от фрагментов, обнаруженных в сообществах, сформированных бактериями одного типа. После обработки ДНКазой1 наблюдалось полное исчезновение полосы, соответствующей 30 кб, полученной после фенольно-хлороформной экстракции из матрикса, что подтверждает природу данной молекулы как ДНК.

Добавление антисептиков и/или ДНКазы изменяло изученные свойства биопленок. В экспериментах были использованы хлоргексидин — 2000 мг/л, мультицид — 250 мг/л и ДНКаза1- 10 мг/л. Концентрация хлоргексидина была выбрана как одна из наиболее используемых в стоматологии. Количества мультицида и ДНКазы 1 были заведомо ниже, поскольку препараты находятся в стадии изучения. Снижение биомассы, зафиксированное фотометрически, обнаружено у всех типов биопленок в присутствии мультицида и ДНКазы! Хлоргексидин обладает собственным поглощением в диапазоне использованных длин волн, что делает невозможным объективную оценку данного показателя. Установлено, что уменьшение количества внеклеточного матрикса указывает на увеличение доступности клеток микробных биопленок по отношению к внешним воздействиям. Представляется, что аналогичная ситуация имеет место и при использовании антисептиков. Обращает на себя внимание, что в пределах использованных концентраций антисептиков и ДНКазы!, максимальное снижение биомассы зарегистрировано в присутствии фермента, действующего на внеклеточную ДНК.

Уровень снижения оптической плотности в присутствии ДНКазы мало различался в биопленках, образованных Streptococcus mitis и смешанной культурой Streptococcus mitis + Neisseria subflava.

Использованные антисептики показали высокую активность по отношению к микробным биопленкам и вызывали в них значительное снижение числа КОЕ. При действии хлоргексидина число КОЕ в биопленках, образованных Streptococcus mitis или их ассоциацией с Neisseria sub? ava снижалось на 6 порядков. Мультицид в этих же условиях снижал число КОЕ на 4 порядка. Вместе с тем, эти данные не позволяют напрямую сравнивать два антисептика между собой, поскольку мультицид был использован в концентрации в 10 раз меньшей, чем хлоргексидин. Полученные результаты позволяют констатировать эффективное действие испытанных антисептиков на бактерии биопленок использованных штаммов. В присутствии ДНКазы1 также было зарегистрировано незначительное снижение числа КОЕ. Совместное использование антисептиков и ДНКазы1 при действии на сформированные бактериальные биопленки приводило к потенцированию антимикробного действия. Хлоргексидин и ДНКаза1 в использованных концентрациях приводили к эрадикации микробных биопленок. Совместное использование муль-тицида и ДНКазы1 увеличивало антимикробную активность в 10 раз по сравнению с действием одного антисептика.

Таким образом, в результате проведенных исследований установлено, что бактерии, относящиеся к нормальной микрофлоре полости рта, выделенные с поверхности зубов и несъемной аппаратуры при ортодонтическом лечении, в выбранных условиях образуют устойчивые микробные биопленки. В матриксе микробных биопленок, сформированных монои смешанными культурами, присутствует внеклеточная ДНК размером около 30 кб. При действии на микробные биопленки использованных антисептиков и ДНКа-зы1, в них происходит уменьшение биомассы и числа КОЕ. Максимальное снижение биомассы происходит в присутствии ДНКазы1. Совместное использование антисептиков и ДНКазы1 приводит к значительному усилению антимикробного действия.

По данным клинических исследований достоверно было обнаружено, что в исследуемой группе, применявшей антисептик мультицид в сочетании с ДНКазой1, по сравнению с контрольной индексы гигиены уменьшались, а пародонтальные индексы не увеличивались. Это дает нам право утверждать, что регулярное применение антисептика мультицид в сочетании с ДНКзой1 у пациентов с несъемной ортодонтической аппаратурой уменьшает риск возникновения заболеваний пародонта и твердых тканей зубов на этапах орто-донтического лечения.

Показать весь текст

Список литературы

  1. З.М., Черкасская P.E., Оспанова Г. Б., Сакира М. В. Методические принципы эпидемиологического обследования состояния зубоче-люстной системы у взрослых // Проблемы хирургических инфекций: Материалы 1-й науч.-практ. конф. М., 1984. — С.96−99.
  2. Е.А. Исторический опыт интеграции медицинских наук наоснове изучения заболеваний слизистой рта : Автореф. дис.канд. мед. наук: 07.00.10 / Н.-и. центр «Мед. музей». М., 1993. — 23 с.
  3. Р.Г. Индивидуальная гигиена полости рта при применении современных несъемных ортодонтических конструкций // Стоматология.- 2004. Т.83, № 6. — С.63−64:
  4. A.A. Профилактика кариеса и заболеваний пародонта у детей в период ортодонтического лечения: Автореф. дис.. канд. мед. наук: 14.00.21 / С.-Петерб. гос. мед. ун-т им. акад. И. П. Павлова: СПб., 2002-- 19 с.
  5. О.И., Григорьян A.C., Фролова O.A., Петрунина О. В. Диагностика и лечение воспалительных процессов в пародонте, возникших при ортодонтическом лечении // Институт стоматологии. — 2005. № 1. -С.50−54.
  6. Р.Д., Варава Г. Н., Скляр В:Е. Клеточные и гуморальные механизмы антимикробной защиты ротовой полости // Стоматология. 1977. -Т. 56, № 5. -С.91−98.
  7. Л.Б., Фрейдлин И. С., Калинин В. И. и др. Микробиология и иммунология в стоматологии : Учеб. пособие / Под ред. Л. Б. Борисова, И. С. Фрейдлин. Л.: IЛМИ, 1987. — 81 с.
  8. Е.В., Леонтьев В. К. Биология полости рта. — 2-е изд. — М.: Мед. кн.- Н. Новгород: Изд-во НГМА, 2001. 303 с.
  9. Е.А. Динамика состояния зубов и пародонта у детей при орто-донтическом лечении съемными и несъемными аппаратами // Рос. сто-матол. журн. 2006. — № 1. — С.36−38.
  10. Е.А. Метод профилактики кариеса зубов у детей при ортодонти-ческом лечении // Рос. стоматол. журн. 2005. — № 5. — С.28−30.
  11. Е.А. Методы ведения ортодонтических пациентов? с учетом, им-• мунологического статуса // Рос. стоматол. журн. 2005. — № 3. — С.33−35.
  12. Е.А. Опыт внедрения профилактики кариеса зубов при ортодон-тическом лечении // Институт стоматологии. 2005. — № 2. — С.40−41.
  13. Виллерсхаузен-Ценхен Б., Эрнст К.-П. Влияние бактерий полости рта на поверхности стоматологических полимерных пломбировочных материалов // Клинич. стоматология. 1999. — № 1. — С.4−9.
  14. А.Г. Микробная флора полости рта : пути заселения, распространения, распределения по биотопам полости рта в норме и патологии // Стоматол. обозрение. 2004. — № 1. — С.7−10.
  15. И.В., Останова Г. Б. Вопросы ценообразования при организации специализированной ортодонтической помощи взрослым пациентам в условиях хозрасчета // Стоматология. 1996. — Спец. вып. — С. 1920.
  16. В.А., Сунцов B.F., Вагнер В. Д. Зубочелюстные аномалии и деформации: основные причины развития. Mi: Мед. кн.- Н. Новгород: Изд-во НГМА, 2001.-102 с.
  17. JI.A., Романов А.Е-, Царев В. Н- и др. Сравнительная оценка- антибактериальной активности новых антисептиков, и перспективы их применения в стоматологической практике // Стоматология. 1997. — Т.76, № 2. — С.26−27.
  18. H.A., Прокушева O.A., Поповкина O.A., Наумова В.М: Значение микробиологического контроля за средствами! гигиены полости рта в системе их сертификации // Стоматология. — 1996. Т. 75, № 4. — С.54−55.
  19. С.В. Обоснование современных методов ортопедического и ортодонтического лечения детей с дефектами зубных рядов: Автореф. дисд-ра мед. наук: 14.00.21 / АООТ «Стоматология». М., 1994. 32 с.
  20. С.М., Сегень И. Т. Влияние некоторых факторов на частоту возникновения и интенсивность гингивита у детей в периоде ортодонтического лечения // Вестн. Волгогр. мед. акад. — 1997. № 3. — С. 163−164.
  21. СЛ., Ахметова Г. Х., Мусина Л. Б., Абдуллина З.В., Селюк
  22. Р.Х., Белов Ю. Е. Особенности ортодонтической помощи взрослым // Казан. мед. журн. 1991. — Т. 72, № 5. — С. 393−394.
  23. Е.Г., Заславская М. И., Салина Е. В., Рассанов С. П. Микрофлора полости рта: норма и патология: Учеб. пособие. Н. Новгород: Изд-во НГМА, 2004. — 157 с.
  24. Е.А. Характеристика микробной флоры полости носа, рта и зева при деформациях лица и челюстей. Профилактика послеоперационных гнойно-воспалительных осложнений: Автореф. дис.. канд. мед. наук: (771) / ЦНИИ стоматологии. М., 1969. — 13 с.
  25. Л.П., Хорошилкина Ф. Я. Лечебно-профилактические мероприятия в ортодонтии. Киев: Здоровья, 1993. — 343 с.
  26. Х.А., Ганцев Г. А., Ершов В. Н. Связь между зубочелюст- ' ными деформациями и пародонтопатиями у детей // Стоматология. -1972. Т. 51, № 5. — С. 47−50.
  27. С.Х. Состояние тканей пародонта при глубоком прикусе у взрослых // Стоматология. 1986. — Т.65, № 2. — С.76−78.
  28. Н.М. Ротовая полость важный биотоп организма человека // Институт стоматологии. — 2001. — № 1. — С. 18−21.
  29. И.В. Профилактика негативных изменений в органах и тканях полости рта при ортодонтическом лечении детей у стоматолога : Автореф. дис.. канд. мед. наук: 14.00.21 / Омск. гос. мед. акад. — Омск, 1999.-22 с.
  30. С.Б., Лапшина Г. Н.- Сафиуллина A.M. Видовой состав микрофлоры, выделенной при стоматологических вмешательствах // Казан, вестн. стоматологии. 1996. — № 2. — С. 64-
  31. С.Н. Коррекция гигиены полости рта у больных с внутри-ротовыми шинирующими конструкциями при межчелюстной фиксации :.
  32. Автореф. дис.. канд. мед. наук: 14.00.21 / Ижевск, гос. мед. акад. -Ижевск, 1997. 14 с.
  33. В .Н. Разработка и клиническое применение средств гигиены для ухода за полостью рта и зубными протезами: Автореф. дис.. канд. мед. наук: 14.00.21 /Укр. ин-тусоверш. врачей. Харьков, 1973. — 18 с.
  34. Л.И. Иммунный статус у детей с различной интенсивностью кариеса и хронического гингивита : Автореф. дис.. канд. мед. наук: 14.00.21 / ЦНИИ стоматологии. М., 1988. — 23 с.
  35. И.А., Вдовенко И. В., Чернобаева М. Г., Козлова В. Ю. Адсорбционная и ингибирующая активность календулы и фурацилина на поли-сорбе в отношении микрофлоры ротовой полости // Актуальные вопросы клинической стоматологии. Ставрополь, 1997. — С. 16−18.
  36. С.И., Стрелковский K.M., Варава Г. М. Ортодонтия и проте-зирвоание в детском возрасте. 2-е изд. — Киев: Вища шк., 1987. — 213 с.
  37. O.A., Елизарова Е. М., Фаддева E.H. Лечение гингивита у подростков // Пробл. нейростоматологии и стоматологии. 1997. — № 2. -С. 66−67.
  38. М.Ю. Возможности использования лазерного света в орто-донтии // Наука практике: (Материалы науч. сессии ЦНИИС, посвящ. 35-летию ин-та). — М., 1998. — С. 232−234.
  39. .И., Васильев Н. В., Цыбиков H.H. Иммуногенез, гемостаз и неспецифическая резистентность организма. — М.: Медицина, 1989. — 320 с.
  40. А.О. Зубочелюстные аномалии у взрослых, пути совершенствования организационной и лечебной помощи: (Эпидемиол. и клинич. исслед.): Автореф. дис.. д-ра мед. наук: 14.00.21- 14.00.33 / Моск. мед. стоматол. ин-т. — М., 1994. 34 с.
  41. В.Д. Общебиологические аспекты оценки патологии прикуса в процессе ортодонтического лечения // Новое в стоматологии: Спец. вып. 1997. — № 1. — С.99−104.
  42. A.A., Бриль Е. А. Профилактика кариеса зубов у детей с зубо-челюстными аномалиями и деформациями на этапах ортодонтического лечения // Рос. стоматол. журн. 2006. — № 1. — С. 33−35.
  43. A.A., Бриль Е. А., Кожевникова Т. В. Состояние системы иммунитета у детей на этапах ортодонтического лечения // Институт стоматологии. 2005. — № 3. — С. 44−45.
  44. А.П., Мизина И. К. Зубной налет. 2-е изд. — Киев: Здоровья, 1987. — 80 с.
  45. Л.Е., Гущина Н. В. Воспалительные заболевания пародонта иtвозможности ортодонтического лечения // Пародонтология. 1998. — № 3.-С.31.
  46. В.К., Петрович Ю. А., Круглва Л. Н. О характере воздействия некоторых химических веществ на активность микрофлоры мягкого зубного налета // Стоматология. 1997. — Т. 76, № 3. — С. 5−11.
  47. Л.М. Влияние гигиены полости рта на состояние эмали зуба // Казан, вестн. стоматологии. 1996. — № 2. — С. 61.
  48. Л.М., Косюга С. Ю. Изменение количественного состава микробной флоры зубного налета при интенсификации гигиены полости рта // Стоматология. 1998. — Т. 77, № 6. — С. 7−8.
  49. Л.М., Косюга С. Ю. Изменение количественного состава микробной флоры зубного налета при интенсификации и оптимизации гигиены полости рта // Нижегор. мед. журн. 1998. — № 3. — С. 34−36.
  50. Л.М., Косюга С. Ю. Изменение количественного состава микробной флоры под воздействием профессиональной гигиены полости рта // Актуальные вопросы стоматологии: Сб. науч. работ. Н. Новгород, 1998.-С. 13−17.
  51. Л.М., Кузина Ю. Г. К вопросу о мотивации на уход за полостью рта // Актуальные аспекты стоматологии. Н. Новгород, 1998. — С. 18−20.
  52. В.И., Рисованная О. Н. Исследование in vitro действия свето-терапии на патогенную флору полости рта // Институт стоматологии. -2004.-№ 3.-С. 86−88.
  53. А.И., Воробьева О. Н., Малышева Э. Ф., Малышев Ю. В. Взаимоотношения между естественной колонизацией и адгезией бактерий к буккальному эпителию человека // Журн. микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 1987. — № 2. — С. 18−20.
  54. А.Н., Абаджиди М. А., Маянская И. В. и др. Естественная колонизация буккального эпителия у детей с аллергическими заболеваниями // Рос. педиатр, журн. 1999. — № 3. — С. 47−49.
  55. Э.М., Крылов И. А., Терехова Т. Н. Оценка микробного пейзажа полости рта детей дошкольного возраста, участвующих в программе профилактики кариеса зубов фторированной солью // Современ. стоматология. 1997. — № 3. — С. 14−15.
  56. Т.Ю., Самохвалова З. М., Саблина Г. И. и др. Поражаемость зубов кариесом и связь с состоянием прикуса у детей школьного возраста разных районов г. Иркутска // Бюл. Вост.-Сиб. науч. центра Сиб. отд-нияРос. АМН. 1998. -№ 1.-С. 15−18.
  57. Микробная флора полости рта и ее роль в развитии патологических процессов: Учеб. пособие / Под ред. Е. А. Кузнецова. М., 1996. — 74 с.
  58. У.К. Микробиология кожи человека : Пер. с англ. М.: Медицина, 1986.-493 с.
  59. Г. И., Высоцкий В.В'. Архитектоника популяций бифидобакте-рий: субмикроскопический аспект когезии клеток Bifidobacterium adoles-centis и Bifidobacterium bifidum // Микробиология. 1995. — Т. 64, № 2. -С. 222−227.
  60. И.И. Микробиология полости рта // Биология полости рта / Под ред. Е. В. Боровского, В. К. Леонтьева. М., 1991. — С. 226−260.
  61. О.В. Характеристика органов и тканей полости рта при орто-донтической патологии у лиц с различным уровнем резистентности к кариесу : Автореф. дис.. канд. мед. наук: 14.00Ш / Омск. гос. мед. акад. Омск, 1998. — 23 с.
  62. Г. Б. Технологии ортодонтического лечения в создании пространства здоровья как фактора качества жизни человека : Дис.. д-ра мед. наук в виде науч. докл.: 14.00.21 / ЦНИИ стоматологии. М., 2000! -64 с.
  63. E.F. Профилактика и лечение зубочелюстных аномалий и деформации у детей с нарушениями опорно-двигательного аппарата : Автореф. дис.. канд. мед. наук: 14.00.21 / Краснояр. гос. мед. акад. -Омск, 2000.-25 с.
  64. Л.С., Лильин Е. Т., Титов В. И., Данилина О. А. Соотносительная роль наследственных и средовых факторов в формировании зубоче-люстной системы // Стоматология. 1996. — Т.75, № 2. — С.62−69.
  65. И.Г. Экологическая значимость микрофлоры полости рта в плане стоматологической реабилитации : Автореф. дис.. канд. мед. наук: 03.00.16 / Волгогр. мед. ин-т. Волгоград, 1993. — 23 с.
  66. Е.В. Оценка биологического влияния на организм человека различных видов ортодонтических аппаратов методом электропунктуры по Р. Фоллю: Автореф. дис.. канд. мед. наук: 14.00.21 / Моск. гос. ме-дико-стоматол. ун-т. М., 2000. — 23 с.
  67. И.М., Ефимович О. И., Рабинович О. Ф. и др. Применение имудона в комплексной терапии дисбактериозов полости рта // Клинич. стоматология. 2001. — № 3. — С.70−72.
  68. С.Н., Мороз А. Ф., Шатохина С. Н. Микробиоценоз полости рта у пациентов различных возрастных групп // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2008. — № 3. — С. 74−76.
  69. О.Н. Изучение влияния бактериотоксической светотерапии на экспериментальных животных : Микробиол. исслед.// Рос. стоматол.' журн. 2005. — № 4. — С. 7−9.
  70. Е.Б. Состояние гигиены полости рта у детей, находящихся на ортодонтическом лечении // Стоматология. — 1979. Т. 58, № 6. — С. 38−40.
  71. Руководство по ортодонтии / Под ред. Ф. Я. Хороши л киной. 2-е изд. -М.: Медицина, 1999. — 798 с.
  72. В.А. Кривые. рН после стимуляции протеолитической микрофлоры полости рта мочевиной (карбамидом) // Новое в стоматологии. 1998: — № 2. — С.29−34.
  73. В.А., Юсуфова М. В., Хютти Н. В. и др. Сравнительная оценка с помощью рН-тестов эффективности применения противомикробных средств в полости рта // Стоматология. 2005. — Т. 84, № 4. — С. 4−7.
  74. Г. А., Кузнецова И. Л., Ушакова Т В., Азовская Т. Н. Состояние полости рта у детей дошкольного возраста // Актуальные вопросы ортодонтического лечения: (Тез. докл. зонал. науч.-практ. конф.). Иркутск, 1990.-С. 88−89.
  75. Т.В., Яцык Г. В., Хан Э.Р. Нормативные показатели формирования микробиоценоза у новорожденных детей // Педиатрия. 1996. — № 1.-С.10−13.
  76. Т.Ю. Профилактика кариеса зубов и заболеваний пародонта у лиц, пользующихся зубными протезами и ортодонтической аппаратурой : Автореф. дис.. канд. мед. наук: 14.00.21 / Ленингр. гос. ин-т усо-верш. врачей. Л., 1990. — 23 с.
  77. Соболева Т. Ю- Результаты профилактики кариеса зубов и заболеваний пародонта у лиц, пользующихся ортодонтическими аппаратами // Новое в стоматологии. 1996. — № 4. — С. 66−75.
  78. С.Р., Конторщикова К. Н., Петрикас А. Ж. Влияние озонированных растворов, применяемых в стоматологической практике, на кислотообразующую микрофлору полости рта // Нижегор. мед. журн. -1997.-№ 2.-С. 66−67.
  79. С.И. Микробиоценоз кожи молочных желез и его биологическая коррекция : Автореф. дис.. д-ра мед. наук: 03.00.07 / Киев. НИИэпидемиологии и инфекц. болезней им. JI.B. Громашевского. — Киев, 1989.-41 с.
  80. Т.Н. Неспецифическая резистентность полости рта у детей дошкольного возраста при профилактике кариеса зубов фторированной солью // Стоматология. 1998. — Т. 77, № 2. — С. 45−46.
  81. Т.Н., Крылов И. А. Содержание стрептококков и лактобацилл в смывах полости рта детей, рацион которых содержит фторированную соль // Новое в стоматологии. 1998. — № 7. — С. 33−35.
  82. Тец В. В. Бактериальные биоплёнки. Антимикробная терапия // Consilium medicum. 2007. — Экстравып. — С. 13−15.
  83. Тец В. В. Бактериальные сообщества // Клеточные сообщества / Под ред. В. В. Теца. СПб., 1998. — С. 15−73.
  84. Тец В. В. Биомембраны микробных сообществ // Учен. зап. С.-Петерб. гос. мед. ун-та им. Павлова. 1997. — Т. 4, № 4. — С. 27−30.
  85. Тец В. В. Микробы ротовой полости-и соматическая патология // Кли-нико-лаб. консилиум. 2007. — № 14. — С. 6−11.
  86. Тец В. В. Микроорганизмы и антибиотики. Заболевания мочевыводя-щих путей. СПб.: KJIE-T, 2005. — 164 с.
  87. Тец В. В. Микроорганизмы и антибиотики. Сепсис. СПб.: Эскулап, 2003.-154 с.
  88. Тец В.В., Заславская Н. В. Выживаемость бактерий, растущих диффуз-но и образующих газон, в присутствии гентамицина и ионов металлов // Труды РАЕН. 2000. — С. 77−82.
  89. Тец В.В., Заславская Н. В. Эффективность действия антибиотиков на бактерии в биопленках // Журн. микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2005. — № 5. — С. 24−26.
  90. Тец В.В., Иванов С. Д., Тец Г. В. и др. Влияние условий культивирования на содержание ДНК бактерий и проницаемость их мембран // Вестн. Рос. АМН. 2005. — № 7. — С. 15−19.
  91. Тец В.В., Орехова Л. Ю., Доморад A.A., Яковлева О. М., Щербакова Д. С., Румянцева O.K., Левкович Д. В. Распространение возбудителей соматических заболеваний в нормальной микрофлоре ротовой полости // Пародонтология. 2007. — № 4. — С. 9−12.
  92. Тец Г. В. Внеклеточная ДНК колониеподобных сообществ // Учен. зап. С.-Петерб. гос. мед. ун-та им. акад. И. П. Павлова. 2003. — Т. 10, № 4. -С. 38−40.
  93. Тец Г. В., Артеменко К. Л. Совместное действие антибиотиков и дезок-сирибонуклеазы на бактерии //Антибиотики и химиотерапия. 2006. -Т. 51, № 6. -С. 3−6.
  94. Р.Х. Сообщества и экосистемы : Пер. с англ. М.: Прогресс, 1980.-327 с.
  95. С.Б. Гигиена полости рта — первичная профилактика стоматологических заболеваний. М.: Б.и., 1999. — 144 с.
  96. С.Б. Гигиена полости рта проблемы и перспективы // Вопросы стоматологии: Сб. науч. работ, посвящ. 70-летию со дня рождения проф. Э. С. Тихонова. — Рязань, 1998. — С. 69−71.
  97. С.Б. Гигиена полости рта в ортодонтии и ортопедической стоматологии. М.: Мед. книга- Н. Новгород: Изд-во НГМА, 2003. -220 с.
  98. С.Б. Гигиена полости рта как метод профилактики заболеваний пародонта // Новое в стоматологии. 2000. — № 4. — С. 60−64.
  99. С.Б. Зубные пасты. СПб.: Человек, 2001. — 272 с.
  100. С.Б. Клинические испытания средств гигиены полости рта для целей сертификации // Учен. зап. С.-Петерб. гос. мед. ун-та им. акад. И. П. Павлова. 2000. — Т. 7, № 2. — С. 130−132.
  101. С.Б. Практическая гигиена полости рта. М.: Б.и., 2002. -328 с.
  102. С.Б. Прикладная гигиена полости рта // Новое в стоматологии: Спец. вып. 2000. — № 6.
  103. С.Б. Роль клинических испытаний в сертификации средств гигиены полости рта // Вопросы стоматологии: Сб. науч. работ, посвящ. 70-летию со дня рождения проф. Э. С. Тихонова. Рязань, 1998. — С.67−69.
  104. С.Б. Современные аспекты сертификации средств гигиены полости рта // Пародонтология. 1996. — № 1. — С.52−56.
  105. Р.В., Царев В. Н. Микрофлора полости рта и ее значение в развитии стоматологических заболеваний // Стоматология для всех. — 1998. № 3−4. — С.22−26.
  106. Р.В., Царев В. Н. Характеристика микробиоценоза полости рта4 здорового человека // Ушаков Р. В., Царев В. Н. Этиология и этиотропнаятерапия неспецифических инфекций в стоматологии. Иркутск., 1997. -Гл. 2.-С. 31−44.
  107. P.A. Современные методы диагностики- планирования и прогнозирования лечения взрослых больных с зубочелюстными аномалиями : Автореф. дис.. д-ра мед. наук: 14.00.211 / С.-Петерб. гос. мед. ун-т им. акад. И. П. Павлова. СПб., 2001. — 36 с.
  108. В.А. Лактобациллы полости рта // Стоматология. 1978. — Т.57, № 3.-С. 20−22. 7 *
  109. В.А. Роль бактериоциногении в регуляции динамики популяции лактобацилл полости рта // Антибиотики. 1981. — Т. 26, № 1. — С. 33−37.
  110. В.А. Характеристика бактериоциногенности лактобацилл полости рта // Стоматология. 1978. — Т. 57, № 6. — С. 19−21.
  111. В.В., Земская Е. А., Дмитриева H.A. и др. Состояние местного иммунитета полости рта при кариесе зубов // Стоматология. — 1995. Т. 74, № 5.-С. 62−64.
  112. В.В., Сахарова Э. Б. Сертификация средств гигиены полости рта с микробологических позиций // Стоматология. 1995. — Т. 74, № 6. — С. 62−64.
  113. Н.Х. Реабилитация после ортодонтического лечения детей, страдающих заболеванием пародонта // Стоматология. 1986. — Т. 65, № 6.-С. 60−61.
  114. Ф.Я. Ортодонтия. Дефекты зубов, зубных рядов, аномалии прикуса, морфофункциональные нарушения в челюстно-лицевой области и их комплексное лечение. М.: ООО «Медицинское информационное агенство», 2006. — С.257−258.
  115. Ф.Я., Кузнецова М. Ю., Гуненкова И. В., Зуева С. М. Применение лазерного света для профилактики пародонтальных осложнений при ортодоитическом лечении аномалий положения отдельных зубов // Пародонтология. 1998. — № 2. — С. 3−5.
  116. Ф.Я., Малыгин Ю. М. Эпидемиологическое изучение зу-бочелюстных аномалий и нуждаемость в ортодоитическом лечении // Руководство по ортодонтии / Под ред. Ф. Я. Хорошилкиной. 2-е изд. -М., 1999.-Разд. 1.1.-С. 6−11.
  117. Р.Е. Распространенность зубочелюстных аномалий у взрослого городского населения и нуждаемость его в ортодонтической помощи : Автореф. дис.. канд. мед. наук: 14.00.21 / АО «Стоматология». — М., 1994.-22 с.
  118. Н.М., Кутергина К. А. Новые проблемы в современной отечественной ортодонтии // Пародонтология. 1997. — № 1. — С. 38−39.
  119. А.С., Труфанов М. И. Возможности ортодонтической подготовки взрослых пациентов с заболеваниями пародонта // Пародонтология. 1996. — № 2. — С. 18−20.
  120. О.И. Поражение зубов кариесом у детей в зависимости от соотношения челюстей // Бюл. Вост.-Сиб. науч. центра Сиб. отд-ния Рос. АМН. 1998. — № 1. — С. 95−96.
  121. Adams R.J. The effects of fixed orthodontic appliances on the carogenicity, quantity and microscopic morphology of oral lactobacilli // J. Oral Med. -1967. Vol. 22, № 3. -P.88−99.
  122. Addy M., Shaw W.C., Hansford P., Hopkins M. The effect of orthodontic appliances on the distribution of Candida and plaque in adolescents // Br. J. Orthod. 1982. — Vol. 9, № 3. — P. 158−163.
  123. Ahmer B.M. Cell-to-cell signalling in Escherichia coli and Salmonella enterica // Mol. Microbiol. 2004. — Vol. 52, № 4. — P. 933−945.
  124. Alexander S.A. Effects of orthodontic attachments on the gingival health of permanent second molars // Am. J. Orthod. Dentofacial Orthop. 1991. -Vol. 100, № 4.-P. 337−340.
  125. Amar S., Han X. The impact of periodontal infection on systemic diseases // Med. Sci. Monit. 2003. — Vol. 9, № 12. — P. RA291-RA299.
  126. Amitha H., Munshi A.K. Effect of chlorhexidine gluconate mouth wash on the plaque microflora in children using intra oral appliances // J. Clin. Pediatr. Dent. 1995. — Vol. 20, № 1. — P. 23−29.
  127. Anelli G., Montaruli G. Carie e malocclusioni. Indagine statistico-epidemiologica effettuata su 5399 bambini di eta compresa fra i 3 e i 10 anni in alcune scuole del barese // Min. Stomatol. 1998. — Vol. 47, № 10. — P. 489−497.
  128. Anhoury P., Nathanson D., Hughes C.V. et al. Microbial profile on metallic and ceramic bracket materials // Angle Orthod. 2002. — Vol. 72, № 4. — P. 338−343.
  129. Arendorf T., Addy M. Candidal carriage and plaque distribution before, during and after removable orthodontic appliance therapy // J. Clin. Periodontol. 1998. — Vol. 12, № 5. — P. 360−368.
  130. Asano K. Influence of orthodontic banding on microbiota of tooth surface. //Nippon Kyosei Shika GakkaLZasshi. 1983. — Vol.42, № 1. — P.29−36.
  131. Asikainen S., Alaluusua S. Bacteriology of dental infections // Eur. Heart J. -1993. Vol. 14, Suppl. K. — P. 43−50.
  132. Balestrino D., Haagensen J.A., Rich C., Forestier C. Characterization of type 2 quorum sensing in Klebsiella pneumoniae and relationship with biofilm formation // J. Bacteriol. 2005. — Vol. 187, № 8. — P. 2870−2880.
  133. Bartoszewicz M., Rygiel A., Krzeminski M., Przondo-Mordarska A. Penetration of a selected antibiotic and antiseptic into a biofilm formed on orthopedic steel implants // Ortop. Traumatol. Rehabil. 2007. — Vol. 9, № 3. — P. 310−318.
  134. Bassigny F., Chabre C., Chairay J.P. et al. Parodonte et Orthodontie, chez le patient en cours de croissance // Orthod. Fr. 1984. — Vol. 55, № 1. — P. 203 349.
  135. Bayer M.E., Easterbrook K. Tubular spinae are long-distance connectors between bacteria // J. Gen. Microbiol. 1991. — Vol. 137, № 5. — P. 1081−1086.
  136. Beitlich E., Deichsel E. Moglichkeiten der kieferorthopadisch-prothetischen Zusammenarbeit bei der Versorgung erwachsener Patienten // Zahntechnik. — 1987. Bd. 28, № 3. — S. 104−105.
  137. Bloom R.H., Brown L.R. A study of the effects of orthodontic appliances on the oral microbial flora // Oral Surg. Oral Med. Oral Pathol. 1964. — Vol. 17.-P. 658−667.
  138. Bockelmann U., Janke A., Kuhn R. et al. Bacterial extracellular DNA forming a defined network-like structure // FEMS Microbiol. Lett. 2006. — Vol. 262, № 1.-P. 31−38.
  139. Botha S.J. Oral lactobacilli isolated from teenage orthodontic patients // J. Dent. Assoc. S. Afr. 1993. — Vol. 48, № 4. — P. 177−181.
  140. Brading M.G., Jass J., Lappin-Scott H.M. Dynamics of bacterial biofilm formation // Microbial biofilms / Ed. by H.M. Lappin-Scott, J.W. Costerton.- Cambridge, 1995. P. 46−63.
  141. Campanac C., Pineau L., Payard A. et al. Interactions between biocide cati-onic agents and bacterial biofilms // Antimicrob. Agents Chemother. 2002.- Vol. 46, № 5. P. 1469−74.
  142. Certosimo F.J., Connelly ER., Paul B.F. et al. Accessing restoration margins: a multidisciplinary approach // Gen. Dent. 2000. — Vol. 48, № 3. — P. 278−282.
  143. Chambless J.D., Hunt S.M., Philip S.S. A three-dimensional computer model of four hypothetical mechanisms protecting biofilms from antimicrobials // Appl. Environ. Microbiol. 2006. — Vol. 72, № 3. — P. 2005−2013.
  144. Characklis W.G. Biofilm processes // Biofilms / Ed. by W.G. Characklis, K.C. Marshall. New York, 1990. — P. 195−231.
  145. Chen C. Periodontitis as a biofilm infection // J Calif. Dent. Assoc. —2001. -Vol. 29, № 5.- P. 362−369.
  146. Chen C., Rich S.K. Biofilm // Basics dimensions of dental hygiene. -2003.-Vol. l.-P. 22−25.
  147. Coffin G.S. Parotitis during orthodontic treatment // Am. J. Dis. Child. -1975.-Vol- 129, № 3.-P. 393.
  148. Cordasco G., Crupi P., Lo Giudice G. et al. Studio epidemiologico sulla frequenza della carie e delle malocclusioni in eta' scolare // Stomatol. Medi-terr. 1989. — Vol. 9, № 2. -P. 179−184.
  149. Costerton J.W., Stewart P. S., Greenberg E.P. BacteriaLbiofilms: a common cause of persistent infections // Science. 1999. — Vol. 284, № 5418. — P. 1318−1322.
  150. Costerton J.W., Veeh R., Shirtliff M. et al. The application of biofilm science to the study and control of chronic bacterial infections // Clin. Invest. -2003.-Vol. 112, № 10.-P. 1466−1477.
  151. Darveau R.P., Tanner A., Page R.C. The microbial challenge in periodontitis: Rev. // Periodontol. 2000. — Vol. 14. — P. 12−32.
  152. Davey M.E., O’Toole G.A. Microbial biofilms: from ecology to molecular genetics // Microbiol. Mol. Genet. 2000. — Vol. 64, № 4. — P. 847−867.
  153. Davies D. Understanding biofilm resistance to antibacterial agents // Nat. Rev. Drug Discov. 2003. — Vol. 2, № 2. — P. 114−122.
  154. Dell’Anno A., Corinaldesi C. Degradation and turnover of extracellular DNA in marine sediments: ecological and methodological considerations // Appl. Environ. Microbiol. 2004. — Vol. 70, № 7. — P. 4384−4386.
  155. Dell’Anno A., Danovaro R. Extracellular DNA plays a key role in deep-sea ecosystem functioning // Science. 2005. — Vol. 309, № 5744. — P. 2179.
  156. Denepitiya L., Kleinberg I. A comparison of the microbial compositions of pooled human dental' plaque and salivary sediment // Arch. Oral Biol. 1982. — Vol. 27, № 9. — P. 739−745.
  157. DeStefano F., Anda R.F., Kahn H.S. et al. Dental disease and risk of coronary heart disease and mortality // BMJ. 1993. — Vol. 306, № 6879. — P. 688−691.
  158. Di Murro C. et al. The clinical and microbiological evaluation of the efficacy of oral irritation on the periodontal tissues of patients wearing fixed orthodontic appliances. Minerva Stomatologica (1992) 41:499−506.
  159. Donlan R.M. Role of biofilms in antimicrobial resistance // ASAIO J. -2000. Vol. 46, № 6. — P. S47-S52.
  160. Donlan R.M., Costerton J.W. Biofilms: survival mechanisms of clinically relevant microorganisms // Clin. Microbiol. Rev. 2002. — Vol. 15, № 2. — P. 167−193.
  161. Drangsholt M.T. A new casual model of dental diseases associated with endocarditis // Ann. Periodontol. 1998. — Vol. 3, № 1. — P. 184−196.
  162. Ehlers L.J. Gene transfer in biofilms // Community structure and cooperation in biofilms / Ed. by D.G. Allison et al. Cambridge, 2000.
  163. J. Бактерии общаются друг с другом // Новое в стоматологии. — 2005.-№ 4.-С. 54−56.
  164. Eliades Т., Athanasiou А.Е. In vivo aging of orthodontic alloys: implications for corrosion potential, nickel release, and biocompatibility // Angle Or-thod. 2002. — Vol .72, № 3. — P. 222−237.
  165. Ericsson I. The combined effects of plaque and physical stress on periodontal tissues//J. Clin. Periodontol.- 1986.-Vol. 13,№ 10. P. 918−922.
  166. Essential microbiology for dentistry / Ed. by L.P. Samaranayake. — 3rd ed. — Edinburg: Churchill&Livingstone, 2006.
  167. Flemming H.-C., Wingender J., Mayer C. Physico-chemical properties of biofilms // Biofilms: recent advances in their study and control / Ed. by L.V. Evans. Amsterdam, 2000. — P. 19−34.
  168. Flores de Jacoby L., Muller H.P. Zusammensetzung der subgingivalen Mundflora bei Tragern abnehmbarer kieferorthopadischer Gerate // Dtsch. Zahnarztl. Z. 1982. — Bd. 37, № 11. — S. 925−928.
  169. Fragner F., Stupecky J., Dosoudil J. Vyskyt kvasinek v dutine ustni osob mladych a mladistvych, ortodonticky lecenych // Cesk. Stomatol. 1977. — T. 77, № l.-S. 14−22.
  170. Gastrointestinale Mikroflora des Menschen / Hrsg. von H. Bernhardt, M. Knocke // Mikrobielle Umwelt und antimikrobielle Massnahmen. Leipzig, 1980.-Bd. 4.-254S.i
  171. Ghigo J.M. Natural conjugative plasmids induce bacterial biofilm development // Nature. 2001. — Vol. 412, № 6845. — P. 442−445.
  172. Gianni E., Santoro E., Lasagni A. et al. Incidenza della Candida albicans nei bambini portatori di apparecchiature ortodontiche: indagine epidemiologica // Prev. Stomatol. 1984. — Vol. 10, № 5. — P. 39−51.
  173. Gokdal I., Kalkanci A., Pacal G., Altug Z. Ortodontik braketlerin yuzeyinde Candida kolonizasyonu ve bu suslarin yanak ici epitel hucrelerine adezyonu // Mikrobiyol Bui. 2002. — Vol.36, № 1. — P. 65−69.
  174. Goldberg S., Cardash H, Browning H. et al. Isolation of Enterobacteriaceae from the mouth and potential association with malodor // J. Dent Res. 1997. -Vol. 76, № 11.-P. 1770−1775.
  175. Graber T.M., Vanarsdall R.L. Orthodontics: Current principles and techniques. 2nd ed. — St. Louis etc.: Mosby, 1994. — 965 p.
  176. Graf W. Anaerobe. Myxobacterien, neue Mikroben in der menschliche Mundhohle //Arch. Hyg. Bakteriol. 1961. — Bd.-145. — S. 405−4591
  177. Greenberg E.P. Bacterial communication and group behavior // J. Clin. Invest. 2003. — Vol. 112, № 9. — P. 1288−1290.
  178. Gusberti- F.A. Klinische und mikrobiologische Parodontalaspekte bei kief-erorthopadischen Behandlungen // Schweiz. Monatsschr. Zahnmed. 1984. -Vol. 94, № 5. — P. 462−468.
  179. Haffajee A.D., Socransky S.S. Microbial etiological agents of destructive periodontal diseases // Periodontol. 2000: Vol. 5. — P. 78−1111.
  180. Hagg U., Kaveewatcharanont P., Samaranayake Y.H., Samaranayake L.P. The effect of fixed orthodontic appliances on the oral carriage of Candidaspecies and Enterobacteriaceae // Eur. J. Orthod. 2004. — Vol. 26, № 6. — P. 623−629.
  181. Harrison J.J., Ceri H., Roper N.J. et al. Persister cells mediate tolerance to metal oxyanions in Escherichia coli // Microbiology. — 2005. -Vol. 151, pt. 10.-P. 3181−3195.
  182. Hausner M., Wuertz S. High rates of conjugation in bacterial biofilms as determined by quantitative in situ analysis // Appl. Environ. Microbiol. 1999. -Vol. 65, № 8. — P. 3710−3713.
  183. Haynes W.G., Stanford C. Periodontal disease and atherosclerosis. From dental to arterial plaque // Thromb. Vase. Biol. 2003. — Vol. 23, № 8. — P. 1309−1311.
  184. Helm S., Petersen P.E. Individual changes in malocclusion from adolescence to 35 years of age // Acta Odontol. Scand. 1989. — Vol'. 47, № 4. -P.211−216.
  185. Herzberg M.C., Meyer M.W. Effects of oral flora on platelets: possible consequences in cardiovascular disease // J. Periodontal: 1996. — Vol. 67, № 10, Suppl.-P. 1138−1142. .
  186. Hirsch D.I., Kulbersh R., Kaczynski R. Assessment of pretreatment orthodontic patients using the BANA test N-benzoyl-DL-arginine-naphthylamide // Am. J. Orthod. Dentofacial Orthop. 1997. — Vol. 112, № 2. — P. 154−158.
  187. Ho H.P., Niederman R: Effectiveness of the Sonicare sonic toothbrush on reduction of plaque, gingivitis, probing pocket depth and subgingival bacteria in adolescent orthodontic patients // J. Clin. Dent. 1997. — Vol.8, № 1, Spec. №. — P. 15−19.
  188. Hope C.K., Wilson M. Analysis of the effects of chlorhexidine on oral biofilm vitality and structure based on viability profiling and an indicator of membrane integrity // Antimicrob. Agents Chemother. 2004. — Vol. 48, № 5.-P. 1461−1468.
  189. Huber M.A., Terezhalmy G.T. The patient with a transient bacteremia: Rev. // Gen. Dent. 2005. — Vol. 3, № 2. — P. 130−143.
  190. Hurst J.E., Madonia J.V. The effect of an oral irrigating device on the oral hygiene of orthodontic patients // J: Am. Dent. Assoc. 1970. — Vol. 81, № 3. -P. 678−682.
  191. Hussain M., Wilcox M.H., White P.J. The slime of coagulase-negative staphylococci: biochemistry and relation to adherence // FEMS Microbiol. Rev. 1993. — Vol. 104, № 3−4. — P. 191−208.
  192. Kaan M., Fejerdy P., Kaan M. et al. «Corega Junior» kivehetofogsza-balyozokeszulek-tisztito tabletta hatasanak klinikai vizsgalata // Fogorv. Sz. — 1997. Vol. 90, № 9. — P. 259−265.
  193. Kayser F.H. Bacteria as human pathogens // Kayser F.H. Medical Microbiology. New York, 2005. — P. 229−346.
  194. Keren I., Shah D., Spoering A. et al. Specialized persister cells and the mechanism of multidrug tolerance in Escherichia coli // J. Bacteriol. — 2004. -Vol. 186, № 24. P. 8172−8180.
  195. Kunzel W. The impact of changing patterns in dental diseases on the practice of orthodontics // Int. Dent. J. 1987. — Vol. 37, № 2. — P. 77−85.
  196. Kuramitsu’H.K. Molecular genetic analysis of the virulence of oral bacterial pathogens: an historical perspective // Crit. Rev. Oral Biol. Med. 2003. -Vol. 14, № 5. -P.' 331−344.
  197. Lasa I. Towards the identification of the common features of bacterial’biofilm development // Int. Microbiol. 2006. — Vol. 9, № 1. — P. 21−28.
  198. Lewandowski Z. Structure and function of biofilms // Biofilms: recent advances in their study and control / Ed. by L.V. Evans. Amsterdam, 2000. -P. 1−17.
  199. Lewis E.A., Ogle R.E., Sorensen S.E., Zysik D.A. Clinical and laboratory evaluation of visible light-cured denture base resins and their application to orthodontics // Am. J. Orthod. Dentofacial Orthop. 1988. — Vol. 94, № 3. -P. 207−215.
  200. Li X., Kolltveit K.M., Tronstad L., Olsen I. Systemic diseases caused by oral infection // Clin. Microbiol. Rev. 2000. — Vol. 13, № 4. — P. 547−558.
  201. Li Y.H., Hanna M.N., Svensater G. et al. Cell density modulates acid adaptation in Streptococcus mutans: implications for survival in biofilms // J. Bac-teriol'. 2001'. — Vol. 183, № 23. — P. 6875−6884.
  202. Li Y.H., Tang N., Aspiras M.B., Lau P.C. et al. A quorum-sensing signaling system essential for genetic competence in Streptococcus mutans is involved in biofilm formation // J. Bacteriol. 2002. — Vol. 184, № 10. — P. 2699−2708.
  203. Loesche W.J., Grossman N.S. Periodontal disease as a specific, albeit chronic, infection: diagnosis and treatment // Clin. Microbiol. Rev. 2001. — Vol. 14, № 4.-P. 727−752.
  204. Lucas V.S., Omar J., Vieira A., Roberts G.J. The relationship between odontogenic bacteraemia and orthodontic treatment procedures // Eur. J. Orthod. -2002. Vol.24, № 3. — P. 293−301.
  205. Lukas D., Schulte W. Die Physik der Selbstreinigung des Interdentalraumes // Dtsch. Zahnarztl. Z. 1972. — Bd. 27, № 4. — S. 269−272.
  206. Lynch M.J., Swift S., Kirke D.F., Keevil C.W., Dodd C.E., Williams P. The regulation of biofilm development by quorum sensing in Aeromonas hy-drophila // Environ. Microbiol. 2002. — Vol. 4, № 1. — P. 18−28.
  207. Mackie T.J., McCartney J.E. Medical microbiology: A guide to the lab. diagnosis a. control of infection. 13th ed. — Edinburgh etc.: Churchill Livingstone, 1978.-750 p.
  208. Macpherson L.M., MacFarlane T.W., Stephen K.W. An intra-oral appliance study of the plaque microflora associated with early enamel demineralization //J. Dent. Res. 1990. — Vol. 69, № 11. — P. 1712−1716.
  209. Maeda S., Ito M., Ando T. et al. Horizontal transfer of nonconjugative plas-mids in a colony biofilm of Escherichia coli // FEMS Microbiol. Lett. 2006. -Vol. 255, № 1.-P. 115−120.
  210. Marsh P.D. Dental plaque. // Microbial biofilms / Ed. by H.M. Lappin-Scott, J.W. Costerton. Cambridge, 1995. — P. 282−300.
  211. Marsh P.D., Bradshaw D.J. Dental plaque as a biofilm // J. Industr. Microbiol. 1995.-Vol. 15,№ 3.-P: 169−175.
  212. McCracken A.W., Cawson R.A. Clinical and oral microbiology. Washington etc.: Hemisphere- New York etc.: McGraw-Hill, 1983. — X, 629 p.
  213. McGaw T. Periodontal disease and pretern delivery of low-birth weight infants // J. Can. Dent. Assoc. 2002. — Vol. 68, № 3. — P. 165−169.
  214. Mins M., Dockrell H.M., Goering R.V. et al. Medical microbiology. 3rd ed. — Edinburgh etc.: Mosby, 2004. — XI, 660 p.
  215. Molin S., Tolker-Nielsen T. Gene transfer occurs with enhanced efficiency in biofilms and induces enhanced stabilisation of the biofilm structure // Curr. Opin. Biotechnol. 2003. — Vol. 14, № 3. — P. 255−261.
  216. Moore W.E., Moore L.V. The bacteria of periodontal diseases: Rev. // Periodontal. 2000. — Vol. 5. — P. 66−77.
  217. Muller H.P. The effect of artificial crown margins at the gingival margin on the periodontal conditions in a group of periodontally supervised patients treated with fixed bridges // J. Clin. Periodontol. 1986. — Vol. 13, № 2. — P. 97−102.
  218. Muller H.P., Flores de Jacoby L. Zusammensetzung der subgingivalen Mundflora bei Tragern festsitzender kieferorthopadischer Gerat // Dtsch. Zahnarztl. Z. 1982. — Bd. 37, № 10. — S. 855−860.
  219. Neskovic P., Vojinovic M., Scepan V. et al. Nalaz gljivica iz rada kandida u usnoj duplji kod osoba sa ortodontskim aparatima // Stomatol. Glas Srb. -1973. T. 20, № 5. — S. 337−342.
  220. O’Toole G.A., Kaplan H.B., Kolter R. Biofilm formation as microbial development // Ann. Rev. Microbiol. —2000. Vol. 54. — P. 49−79
  221. Offenbacher S., Katz V., Fertik G. et al. Periodontal infection as a possible risk factor for preterm low birth weight // J. Periodontol. 1996. — Vol. 67, № 10.-P. 1103−1113.
  222. Pagnacco A., Miotti F., Zamperetti N. et al. Indagine epidemiologica sulla prevalenza di carie, parodontopatie e malocclusioni in una populazione sco-lastica // Mondo Ortod. 1991. — Vol. 16, № 2. — P. 197−207.
  223. Palmer R.J., Wu R., Gordon S. et al. Retrieval of biofilms from the oral cavity//Methods Enzymol.-2001.-Vol. 337.-P. 393−403.
  224. Paul J.H., Jeffrey W.H., DeFlaun M.F. Dynamics of extracellular DNA in the marine environment // Appl. Environ. Microbiol. 1987. — Vol. 53, № 1. -P. 170−179.
  225. Petersen F.C., Pecharki D., Scheie A.A. Biofilm mode of growth of Streptococcus intermedius favored by a competence-stimulating signaling peptide // J. Bacteriol. 2004. — Vol. 186, № 18. — P. 6327−6331
  226. Petersen F.C., Tao L., Scheie A.A. DNA binding-uptake system: a link between cell-to-cell communication and biofilm formation // J. Bacteriol. -2005.-Vol. 187, № 13.-P. 4392−4400.
  227. Piccolomini R., Di Bonaventura G., Catamo G. et al. Frequency of detection of Actinobacillus actinomycetemcomitans in young patients during fixed orthodontic therapy // New Microbiol. 1996. — Vol. 19, № 4. — P. 345−349.
  228. Platiau R. Microbiologie buccale, plaque dentaire et incidence de la carie chez des enfants porteurs ou non porteurs d’un appareil orthodontique amovible // Acta Stomatol. Belg. 1988. — Vol. 85, № 4. — P. 299−311.
  229. Porter S.R., ScullyC. Oral malodour (halitosis) // BMJ. 2006. — Vol. 333, № 7569.-P. 632−635.
  230. Proffit W.R. Contemporary orthodontics. St. Louis etc.: Mosby, 1986. -579 p.
  231. Pussinen P.J., Jousilahti P., Alfthan G. et al. Antibodies to periodontal pathogens are associated with coronary heart disease // Arterioscler. Thromb. Vase. Biol. 2003. — Vol." 23, № 7. — P. 1250−1254.
  232. Quivey R.G. Periodontal diseases // Oral microbiology and immunology / Ed. by R.J. Lamont. Washington, 2006.
  233. Reisner A., Haagensen J.A., Schembri M.A. et al. Development and maturation of Escherichia coli K-12 biofilms // Mol. Microbiol. 2003. — Vol. 48, № 4.-P. 933−946.
  234. Roberts A.P., Pratten J., Wilson M., Mullany P. Transfer of a conjugative transposon, Tn5397 in a model oral biofilm // FEMS Microbiol. Lett. 1999. -Vol. 177, № l.-P. 63−66.
  235. Ro9as I.N., Baumgartner J.C., Xia T., Siqueira J.F. Prevalence of selected bacterial named species and uncultivated phylotypes in endodontic abscesses from two geographic locations // J. Endod. 2006. — Vol. 32, № 12. — P-1135−1138.
  236. Sakamaki S.T., Bahn A.N. Effect of orthodontic banding on localized oral lactobacilli // J. Dent. Res. 1968. — Vol. 47, № 2. — P. 275−279.
  237. Sakamoto M., Siqueira J.F., Ro9as I.N., Benno Y. Diversity of spirochetes in endodontic infections // J. Clin. Microbiol. 2009. — Vol. 47, № 5. — P. 13 521 357.
  238. Sallum E.J., Nouer D.F., Klein M.I. et al. Clinical and microbiologic changes after removal of orthodontic appliances // Am. J. Orthod. Dentofacial Orthop. -2004. Vol. 126, № 3. — P. 363−366.
  239. Samuels R.H., Jones M.L. Orthodontic facebow injuries and safety equipment // Eur. J. Orthod. 1994. — Vol. 16, № 5. — P. 385−394.
  240. Sandt C., Barbeau J., Gagnon M.A., Lafleur M. Role of the ammonii-un group in the diffusion of quaternary ammonium compounds in. Streptococcusmutans biofilms // J. Antimicrob. Chemother. 2007. — Vol. 60, № 6. — P. 1281−1287.
  241. Scannapieco F.A. Role of oral bacteria in respiratory infection // J. Periodon-tol. 1999. — Vol. 70, № 7. — P. 793−802.
  242. Scannapieco F.A., Mylotte J.M. Relationships between periodontal disease and bacterial pneumonia // J. Periodontol. 1996. — Vol. 67, № 10, Suppl. -P. 1114−1122.
  243. Scannapieco F.A., Papandonatos G.D., Dunford R.G. Associations between oral conditions and respiratory disease in a national sample survey population // Ann. Periodontol. 1998. — Vol. 3, № 1. -P. 251−256.
  244. Schauder S., Shokat K., Surette M.G., Bassler B.L. The LuxS family of bacterial autoinducers: biosynthesis of a novel quorum-sensing signal molecule //• Mol. Microbiol. 2001. — Vol. 41, № 2. — P. 463−476:
  245. Scheie A. A Mechanisms of dental plaque formation: Rev. // Adv. Dent. Res. 1994. — Vol. 8, № 2. — P. 246−253.
  246. Shimoyama K. Changes observed in’the oral microflora in orthodontic patient with multibanded appliance // Shigaku. 1973: — Vol. 61, № 2. — P. 396 422.
  247. Sinclair P.M., Berry C.W., Bennett C.L., Israelson H. Changes in gingiva and gingival flora with bonding and banding // Angle Orthod. 1987. — Vol. 57, № 4.-P. 271−278.
  248. Siqueira J.F., Rotpas I.N. The microbiota^ of acute apical abscesses // J. Dent. Res. 2009. — Vol. 88, № 1. — P. 61−65.
  249. Siqueira J.F., Rofas I.N., Paiva S.S. et al. Cultivable bacteria in infected root canals as identified by 16S rRNA gene sequencing // Oral Microbiol. Immunol. 2007. — Vol. 22, № 4. — P. 266−271.
  250. Smith A.J., Robertson D., Tang M.K. et al. Staphylococcus aureus in the oral cavity: a three-year retrospective analysis of clinical laboratory data // Br. Dent. J. 2003. — Vol. 195, № 12. — P. 701−703.
  251. Speer C., Pelz K., Hopfenmuller W., Holtgrave E.A. Investigations on the influencing of the subgingival microflora in chronic periodontitis. A study in adult patients during fixed appliance therapy // J. Orofac. Orthop. 2004. -Vol. 65, № l.-P. 34−47.
  252. Spoering A.L., Gilmore M.S. Quorum sensing and DNA release in bacterial biofilms // Curr. Opin. Microbiol. 2006. — Vol. 9, № 2. — P. 133−137.
  253. Sponza D.T. Investigation of extracellular polymer substances (EPS) and physicochemical properties of different activated sludge floes under steady-state conditions // Enzyme Microb. Technol. 2003. — Vol. 32. — P. 375−385.
  254. Staffolani N., Cervini M., Giannoni C. et al. Influenza dei magneti ortodon-tici sulla flora microbica orale // Minerva Stomatol. 1991. — Vol. 40, № 7−8. -P. 483−486.
  255. Stewart P. S. Mechanisms of antibiotic resistance in bacterial biofilms // Int. J. Med. Microbiol. 2002. — Vol. 292, № 2. — P. 107−113:
  256. Stewart P. S., Costerton J.W. Antibiotic resistance of bacteria in biofilms // Lancet.-2001.-Vol. 358, № 9276.-P. 135−138.
  257. Sukontapatipark W., Agroudi M.A., Selliseth N.J. Bacterial colonization associated with fixed orthodontic appliances: a scanning electron microscopy study // Eur. J. Orthod. 2001. — Vol. 23, № 5. — P. 475−484.
  258. Sutherland I.W. Biofilm exopolysaccharides: a strong and sticky framework // Microbiology. 2001. — Vol. 147, pt. 1. — P. 3−9.
  259. Tetz V.V. Colony-like communities of bacteria // Microbios. 1994. -Vol.80, № 322.-P. 63−65.
  260. Tetz V.V. Formation and structure of mixed bacterial communities // APMIS. 1999. — Vol. 107, № 7. — P. 645−654.280- Tetz V.V. Rybalchenko O.V. Ultrastructure of colony-like communities of bacteria//APMIS.- 1997.-Vol. 105, № 2.-P. 99−107.
  261. Tetz V.V. The effect of antimicrobial agents and mutagen on bacterial cells in colonies II Med. Microbiol- Lett. 1996. — Vol. 5.-P. 426−436.
  262. Tetz V.V. The pangenome concept: a unifying view of genetic information // Med. Sei. Monit. 2005. — Vol. 11, № 7. — P. HY24-HY29.
  263. Tetz V.V., Korobov V.P., Artemenko N.K. et al. Extracellular phospholipids of isolated bacterial communities // Biofilms. 2004. — Vol.1. — P. 149 155.
  264. Tetz V.V., Rybalchenko O.V., Savkova G.A. Ultrastructure of surface film of bacterial colonies // J- Gen. Microbiol. 1993. — Vol. 137, № 4. — 10 811 088. •
  265. Themar P., Huard J.L., Allain P. et al. «Reimplantation» des incisivcs luxces: etat actuel de la question // Actual Odontostomatol (Paris). 1984. -№ 146. -P. 181−198.
  266. Thomas J.G., Nakaishi L.A. Managing the complexity of a dynamic biofilm II Jt Am. Dent. Assoc. 2006. — Vol. 137, SuppL -P: 10S-15S.,
  267. Tolker-Nielsen T., Molin S. Spatial organization of microbial biofilm communities// Microb. Ecol- 2000. — Vol. 40, № 2. — P. 75−84.
  268. Tosello A.L., Bertolini P. Influencia do aparelho ortodontico fixo, tipo multibandas, sobre a incidencia de «Streptococcus mutans» e suas implicacoes na saude bucal // Ars Curandi: Odontol- 1980. — Vol 7, № 6. — P., 260−264-
  269. Truchot G. L’appareil orthodontique multibague favorise-T-il le developpement des parasites et des champignons dans le milieu buccal? Consequences pathologiques et therapeutiques // Orthod. Fr. 1991. — Vol. 62, pt. 3. — P. 1019−1024.
  270. Watnick P., Kolter R. Biofilm, city of microbes: Rev. // J. Bacteriol. 2000. — Vol. 182, № 10. — P. 2675−2679.
  271. Webb J.S., Givskov M., Kjelleberg S. Bacterial biofilms: prokaryotic adventures in multicellularity // Curr. Opin. Microbiol. 2003. — Vol. 6, № 6. — P. 578−585.
  272. Whitchurch C.B., Tolker-Nielsen T., Ragas P.C., Mattick J.S. Extracellular DNA required for bacterial biofilm formation // Science. 2002. — Vol. 295, № 5559.-P. 1487.
  273. Zhao H., Xie Y., Meng H. Effect of fixed appliance on periodontal status of patients with malocclusion // Zhonghua Kou Qiang Yi Xue Za Zhi. 2000. -Vol. 35, № 4. -P. 286−288.
  274. Zilberstein B., Quintanilha A.G., Santos M. A et al. Digestive tract microbio-ta in healthy volunteers // Clinics (Sao Paulo). 2007. — Vol. 62, № l.-P. 47−54.
  275. Я,, получил информацию о данном исследовании200 г.
  276. Подпись пациента или доверенного лица1. Информированное согласие
  277. Я, согласен (на) на использование материалов моего обследования и лечения, включая их тиражирование и публикацию, для учебной и научной работы, проводимой врачом-стоматологом Левкович Дарье Владимировне
  278. Материалы лечение и обследования включают, а себя: медицинскую документацию, рентгеновские снимки, цветные слайды."20 г.
  279. Подпись пациента или доверенного лица1. АНКЕТАв случае выбора варианта «ДА» — необходимо более полно раскрыть ответ на данный вопрос, 1. Ф.И.О.
  280. Дата рождения Место рождения1. Факультет Группа
  281. Находитесь ли Вы в настоящее время под наблюдением общего врача? По какой причине? ДА НЕТ
  282. Не страдаете ли Вы повышением (понижением) артериального давления? ДА НЕТ
  283. Болеете ли Вы ревматизмом, ревматическим поражением сердца, врожденными пороками сердца? ДА НЕТ
  284. Не страдаете ли Вы заболеваниями щитовидной железы? ДА НЕТ
  285. Больны ли Вы диабетом? ДА НЕТ
  286. Не страдаете ли Вы заболеваниями системы крови? ДА НЕТ
  287. Бывают ли у Вас припадки, обмороки? ДА НЕТ
  288. Не страдаете ли Вы заболеваниями дыхательной системы, бронхиальной астмой? ДА НЕТ
  289. Не страдаете ли Вы заболеваниями желудочно-кишечного тракта? ДА НЕТ
  290. Не страдаете ли Вы заболеваниями опорно-двигательной системы? ДА НЕТ
  291. Не бывает ли у Вас аллергических реакций на лекарственные препараты, пищевые продукты и др. ДА НЕТ
  292. Принимаете ли Вы какие-либо лекарства в настоящее время? ДА НЕТ
  293. Не было ли у Вас травмы головы, шеи, автомобильной ава- ДА НЕТ
  294. Имеете ли Вы какие-либо другие серьезные сопутствующие заболевания или перенесенные операции? ДА НЕТ
  295. Как часто Вы болеете простудными заболеваниями в течение года?
  296. Как часто Вы посещаете стоматолога? 1 раз в полгода 1 раз в год реже
  297. Страдаете ли вы гиперестезией зубов? ДА НЕТ
  298. Сколько раз в день вы чистите зубы? менее 2 2 раза чаще
  299. Пользуетесь ли Вы флоссами, зубными нитями, ершиками? ДА НЕТ
  300. Пользуетесь ли Вы ополаскивателями для полости рта? Какими? ДА НЕТ
  301. Какой зубной щеткой Вы пользуетесь? мануальной электрической
  302. Какой зубной пастой Вы пользуетесь в настоящее время (полное коммерческое название)?
  303. Преобладание каких продуктов питания Вы отмечаете в своем дневном рационе: мясные растительные злаковые злаковые
Заполнить форму текущей работой

На отлично!