Молекулярно-генетический анализ вакцинных и вирулентных штаммов пестивирусов

ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Разработан комплект реагентов для штаммовой дифференциации вируса классической чумы свиней с помощью ПЦР и секвенирования фрагментов генов Е2, И85 В и 5'-нетранслируемой области, утверждены методические рекомендации. Жидков С. А., Лебедев А. И., Гоголев М. М. и др. Роль вирусной диареи в этиологии респираторных и желудочно-кишечных болезней телят// Вестник Российской академии сельскохозяйственных… Читать ещё >

Содержание

1. Список сокращений
2. Введение
3. Обзор литературы
- 3. 1. Общая характеристика и систематическое положение представителей рода Ревйу^ив
- 3. 2. Клинические признаки и патогенез классической чумы свиней
- 3. 3. Клинические признаки и патогенез вирусной диареи крупного рогатого скота
- 3. 4. Эпизоотологические данные заболеваний, вызываемых вирусами рода Ревйу^ив
  - 3. 4. 1. Эпизоотологические данные по классической чуме свиней
  - 3. 4. 2. Эпизоотологические данные по вирусной диарее крупного рогатого скота
- 3. 5. Морфология и молекулярно-биологическая характеристика представителей рода Ревйу^ив
  - 3. 5. 1. Строение вириона представителей рода Резйу1гиз
  - 3. 5. 2. Структура генома представителей рода Реэйуииз
- 3. 6. Генетическая вариабельность пестивирусов и филогенетический анализ
  - 3. 6. 1. Филогенетический анализ геномов вирусов
  - 3. 6. 2. Генетическая вариабельность вируса классической чумы свиней
  - 3. 6. 3. Генетическая вариабельность вируса вирусной диареи крупного рогатого скота
- 3. 7. Диагностика и специфическая профилактика заболеваний, вызываемых пестивирусами 33 3.7.1. Диагностика заболеваний, вызываемых пестивирусами
  - 3. 7. 2. Специфическая профилактика классической чумы свиней
  - 3. 7. 3. Специфическая профилактика вирусной диареи крупного рогатого скота 38
Заключение по обзору литературы
4. Собственные исследования
- 4. 1. Материалы и методы
- 4. 2. Материалы
  - 4. 2. 1. Штаммы и изоляты вирусов классической чумы свиней и диареи крупного рогатого скота
    - 4. 2. 1. 1. Штаммы и изоляты вируса диареи крупного рогатого скота
    - 4. 2. 1. 2. Штаммы и изоляты вируса классической чумы свиней
    - 4. 2. 1. 3. Анализируемые штаммы из базы данных вепБапк
  - 4. 2. 2. Химические реагенты
  - 4. 2. 3. Реагенты и наборы для проведения ПНР и секвенирования
  - 4. 2. 4. Оборудование
  - 4. 2. 5. Расходные материалы и лабораторная посуда
- 4. 3. Методы
  - 4. 3. 1. Реакция иммунофлуоресценции
  - 4. 3. 2. Выделение вирусной РНК
  - 4. 3. 3. Проведение «гнездовой» ПЦР с обратной транскрипцией для выявления РНК вирусов классической чумы свиней и диареи крупного рогатого скота
    - 4. 3. 3. 1. Праймеры и режимы проведения ПЦР для наработки трёх фрагментов генома вируса диареи крупного рогатого скота
    - 4. 3. 3. 2. Праймеры и режимы проведения ПЦР для наработки трёх фрагментов генома вируса классической чумы свиней
  - 4. 3. 4. Электрофорез ДНК в агарозном геле
  - 4. 3. 5. Определение нуклеотидной последовательности фрагментов генома
  - 4. 3. 6. Компьютерный анализ полученных первичных структур и построение филогенетических дендрограмм
5. Результаты собственных исследований
- 5. 1. Разработка систем праймеров для анализа методом ПЦР и последующего секвенирования трёх участков генома вируса диареи крупного рогатого скота, используемых для филогенетического анализа
- 5. 2. Филогенетическая характеристика полевых изолятов вируса диареи крупного рогатого скота, циркулирующих на территории России
- 5. 3. Филогенетическая характеристика полевых изолятов вируса классической чумы свиней, циркулировавших на территории бывшего СССР и России
- 5. 4. Анализ генома вакцинного штамма ЛК-К, вируса классической чумы свиней
6. Обсуяедение
7. Выводы

Молекулярно-генетический анализ вакцинных и вирулентных штаммов пестивирусов (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

7. ВЫВОДЫ.

1. В результате проведения филогенетического анализа изолятов вируса КЧС за период с 1980 по 2007 годы и филогенетического анализа изолятов вируса диареи КРС, выделенных в 2006 и 2007 годах, на территории Российской Федерации установлена циркуляция вирусов КЧС, относящихся к генетическим группам 1 (подгруппы 1.1 и 1.2) и 2 (подгруппы 2.1, 2.2 и 2.3), и циркуляция вируса диареи КРС первого и второго генотипов.

2. Установлено, что в 80-е годы прошлого столетия доминировал вирус подгрупп 1.2, 2.3, 2.2 и единичные случаи — 1.1 и 2.1- в 90-е годы и до 2002 г. — подгрупп 1.1 и 2.3- в 2002;2007 гг. — подгруппы 2.3. Таким образом, показано постепенное замещение циркулирующих групп вируса КЧС в Российской Федерации.

3. Впервые на территории Российской Федерации выявлен факт циркуляции 2-го генотипа вируса диареи КРС.

4. Определена нуклеотидная последовательность вакцинного штамма ЛК-К вируса классической чумы свиней. Данный штамм принадлежит к генетической группе 1, подгруппе 1.1.

5. По данным проведенного филогенетического анализа не обнаружено ни одного полевого изолята, эволюционно близкого к вакцинным штаммам КС и ЛК-ВНИИВВиМ.

6. Разработан комплект реагентов для штаммовой дифференциации вируса классической чумы свиней с помощью ПЦР и секвенирования фрагментов генов Е2, И85 В и 5'-нетранслируемой области, утверждены методические рекомендации.

1. Безбородова C.B. Усовершенствование генетических методов лабораторной диагностики классической чумы свиней // Автореф. Канд. Дис., Владимир, 2000. -С.21.

2. Вишняков И. Ф., Мищенко Н. К., Куринов В. В. и др. Классическая чума свиней // Ветеринария. 1998. -№ 11. — С. 16−22.

3. Глотов А. Г., Глотова Т. И., Рябчикова Е. И. и др. Выделение и характеристика изолятов вируса диареи крупного рогатого скота // Вопросы Вирусологии.-2006.-№ 1 .-С.42−45.

4. Жидков С. А., Лебедев А. И., Гоголев М. М. и др. Роль вирусной диареи в этиологии респираторных и желудочно-кишечных болезней телят// Вестник Российской академии сельскохозяйственных наук. -1995. № 3. — С. 50−53.

5. Забережный А. Д. Получение рекомбинантных вирусов классической чумы свиней и респираторно — синцитиального вируса человека на основе инфекционных копий их геномов// Докт. Дис., Москва, 2004. С. 254.

6. Куриннов В. В., Коломыцев A.A., Сергеев В. А. и др. Эпизоотология классической чумы свиней в Российской Федерации (1990;2007 гг.).-2008.

7. Прокофьев М. А. Экспериментальные методы исследования белков и нуклеиновых кислот // 1985. — Москва Изд-во МГУ.

8. Салганник Р. И. Методы молекулярной генетики и генной инженерии. //Новосибирск: Наука. Сиб. отд-ние, 1990.

9. Семенихин В. И., Пузырев А. Т., Орешкова С. Ф., Донченко A.C., Чекишев В. М., Ильичев A.A. Выявление вируса классической чумы свиней с помощью полимеразной цепной реакции // Молекулярная генетика, микробиология и вирусология-1999; 1-С.27−30.

10. Сергеев В. А., Непоклонов Е. А., Алипер Т. Н. Вирусы и вирусные вакцины//М.:Библионика, 2007.

11. Стариков A.M. Классическая чума свиней: территориальное распространение и анализ эпизоотического процесса в Волгоградской области // Автореф. канд. дис., Покров, 2005, -С. 26.

12. Сюрин В. Н., Самуйленко А. Я., Соловьёв Б. В., Фомина Н. В. Вирусные болезни животных //1998, Москва, ВНИТИБП.

13. Херрингтон С., Макги Д. Молекулярная клиническая диагностика. Методы// 1999. Москва, Мир.

14. Шульпин М. И., Аянот П. К., Мищенко В. А. Индикация вируса диареи крупного рогатого скота, генотипирование и филогенетический анализ изолятов, выявленных на территории Российской Федерации // Вопросы Вирусологии.-2003.-№ 5.-С.41−46.

15. Шульпин М. И. Выявление возбудителя вирусной диареи КРС с помощью полимеразной цепной реакции и генотипирование изолятов, циркулирующих на территории Российской Федерации // Дис. канд. биол. наук: 03.00.06: Владимир, 2004.-С. 132.

16. Щербаков А. В., Кукушкин С. А., Тимина A.M. и др. Мониторинг инфекционных болезней среди кабанов // Вопросы Вирусологии.-2007. № 3 -С. 29−33.

17. Agapov E.V., Murray С. L., Frolov I. et. al. Uncleaved NS2−3 is required for production of infectious bovine viral diarrhea virus // J. Virol. 2004. — Vol.78. — pp.2414−2425.

18. Balint A., Baule C., Palfi V., et al. Retrospective genome analysis of a live vaccine strain of bovine viral diarrhea virus // J. Vet. Res. 2005.-Vol.36-pp. 89−99.

19. Becher P., Orlich M., Shannon A., Phylogenetic analysis of pestivimses from domestic and wild ruminants // J. of General Virology.-1997.-Vol. 78.-pp. 1357−1366.

20. Becher P., Ramirez R.A., Orlich M., et al. Genetic and antigenetic characterization of novel pestivirus genotipes: implications for classification // Virology-2003 .-Vol.311-pp. 96−104.

21. Bezborodova S., Andreev V., Drygin V. et al. XI International congress of virology 9−13 august 1999 Sydney 1999.-p.329.

22. Booker C.W., Abutarbush S.M., Morley P. S., et all. The effect of bovine viral diarrhea virus infections on health and performance of feedlot cattle // Can. Vet. J.- 2008.-Vol. 49. pp. 253−260.

23. Brock, K.V. The persistence of bovine viral diarrhea virus // Biologicals-2003. Vol.31 .-pp. 131 -135.

24. Brock, K.V., Deng R., and Riblet S. M. Nucleotide sequencing of 5' and 3' termini of bovine viral diarrhea virus by RNA ligation and PCR II Virol. Methods.- 1992.-pp. 38, 39−46.

25. Bruschke C. J., Hulst M. M., Moormann R. J. et. al. Glycoprotein of pestiviruses induces apoptosis in lymphocytes of several species // J. Virol. 1997. — Vol.71. — pp.6692−6696.

26. Collett M. S., Moennig V., Horzinek M. C. Recent Advances in Pestivirus Research // J. Jen. Virol. 1989. — Vol.70, part 2. — pp.253−266.

27. Dong X. N., Chen Y. H. Marker vaccine statagies and candidate CSFV marker vaccines // Vaccine. — 2007. Vol.25. — pp.205−230.

28. Edwards S., Moenning V., Wensvoort G. The development of an international referens panel of monoclonal antibodies for the differentiation of hog cholera virus from pestiviruses // Vet. Microbiol. — 1991. Vol.29. -pp.101−108.

29. Elbers K., Tautz N., Becher P. et. al. Processing in the pestivirus E2-NS2 region: identification of proteins p7 and E2p7 // J. Virol. 1996.1. Vol.70.-pp.4131−4135.

30. Ericson G.A. Hog Cholera (Swine fever)// In: Vet. Diagn. Virology. Mosby year book. USA, Ed. A.E. Castro, W.P.Heushele, 1992.-pp. 228 230.

31. Fauquet C.M., Mayo M.A., Maniloff J. Eighth Report of the International Committee on Taxonomy of Viruses // Elsevier. 2005.

32. Felsenstein, J. Phylip phylogeny inference package (version 3.5c) // Cladistics.- 1989. Vol.5, -pp. 164−166.

33. Fletcher S. P., Jackson R. J. Pestivirus internal ribosome entry site (IRES) structure and function: elements in the 5' nontranslated region important for IRES function // J. Virol. 2002. — Vol.76. — pp.5024−5033.

34. Franki R.I. B., Faquet C.M., Knudson D.L., Brown F. (editors), 1991. Fifth Report of the International Committee on Taxonomy of Viruses. Archives of Virology // Supplementum 2,-pp. 223−233.

35. Frolov I, McBride M. S, Rice C.M. cis-acting RNA elements required for replication of bovine viral diarrhea virus-hepatitis C virus 5' nontranslated region chimeras RNA // 1998.-Vol.4-pp. 1418−1435.

36. Gil L. H., Ansari I. H., Vassilev V. et. al. The amino-terminal domain of bovine viral diarrhea virus Npro protein is necessary for alpha/beta interferon antagonism // J. Virol. 2006. — Vol.80. — pp.900−911.

37. Grassmann C. W., Isken O., Tautz N., Behrens S. E. Genetic analysis of the pestivirus nonstructural coding region: defects in the NS5A unit can be complemented in trans // J. Virol. 2001. — Vol.75. — pp.7791−7802.

38. Grebennikova T.V., Zaberezhny A.D., Paton D.J., McGoldrick A., Aliper T.I., Nepoklonov E.A. Sequencing analysis of the Classical Swine.

39. Fever Virus. O.I.E. Symposium on Classical Swine Fever (Hog Cholera)// Birmingham (United Kindom), 1998.-9−10 July, -p.53.

40. Greiser-Wilke I., Grummer B., Moenning V. Bovine viral diarrhoea eradication and control programmes in Europe // Biologicals-2003.-Vol.31-pp. 113−118.

41. Goens D. S. The evolution of bovine viral diarrhea: a review//Can. Vet. J.- 2002,-Vol. 43. pp. 946−954.

42. Gu B., Liu C., Lin-Goerke J. et. al. The RNA helicase and nucleotide triphosphatase activities of the bovine viral diarrhea virus NS3 protein are essential for viral replication // J. Virol. 2001. — Vol.74. — pp. 1794−1800.

43. Harada T., Tautz N., Thiel H. J. E2-p7 region of the bovine viral diarrhea virus polyprotein: processing and functional studies // J. Virol. -2000. Vol.74. — pp.9498−9506.

44. Heinz F.X., Collett M.S., Purcell R.H., et al. Virus Taxonomy. Seventh Report of the International Committee on Taxonomy Viruses // 2000. -Academic Press San Diego.- pp. 859−878.

45. Hilton L., Moganeradj K., Zhang G. et. al. The Npro product of bovine viral diarrhea virus inhibits DNA binding by interferon regulatory factor 3 and targets it for proteasomal degradation // J. Virol. 2006. — Vol.80. -pp.11 723−11 732.

46. Hoff H. S, Donis R.O. Induction of apoptosis and cleavage of poly (ADP-ribose) polymerase by cytopathic bovine viral diarrhea virus infection // Virus Res.- 1997.-Vol.49-pp. 101−113.

47. Hofmann M.A., Brechtbuchl K., Stauber N. Rapid characterization of new Pestivirus strain by direct sequencing of PCR-amplified cDNA from5' noncoding region // Arch. Virol., 1994; Vol. 139-pp.217−229.

48. Houe H. Epidemiological features and economical importance of bovine viral diarrhea virus (BVDV) infection // Vet. Microbiol.- 1999.-Vol 64-pp. 89−107.

49. Houe H., Lindberg A., Moennig V. Test strategies in bovine viral diarrhea virus control and eradication campaigns in Europe // J. Vet. Diagn. Invest.-2006.-Vol. 18.-pp. 427−436.

50. Isken O., Grassman C. W., Yu H., Behrens S.-E. Complex signals in the genomic 3' nontranslated region of bovine viral diarrhea virus coordinate translation and replication of the viral RNA // RNA. — 2004. — Vol.10.-pp. 1637−1652.

51. Kim I., Hyun B., Shin J., et al. Identification of Bovine Viral Diarrhea Virus type 2 in Korean native goat (Capra hircus) // J. Virus Research-2006.-Vol.l21-pp. 103−106.

52. Lackner T., Muller A., Pankraz A. et. al. Temporal modulation of an autoprotease is crucial for replication and pathogenicity of an RNA virus // J. Virol. -2004. Vol.78, — pp. 10 765−10 775.

53. Lackner T., Thiel H. J., Tautz N. Dissection of a viral autoprotease elucidates a function of a cellular chaperone in proteolysis // Proc. Natl. Acad. Sei. U.S.A. 2006. — Vol. 103. — pp. 1510−1515.

54. Langedijk J. P. Translocation activity of C-terminal domain of Pestivirus Erns and ribotoxin L3 loop // J. Biol. Chem. 2002. — Vol.277, -pp.5308−5314.

55. Leforban J., Edwards S., Ibata G., Vannier P. A blocking ELISA to differentiate hog cholera virus antibodies in pig sera from those due to other pestiviruses // Ann. Rech. Vet.-1990.-Vol. 21-pp.119−129.

56. Lindenbach B. D., Rice C.M. Flaviviridae: the viruses and their replication. // In: Knipe D.M., Howley P.M., Griffin D.E. et. al. (Eds.), Fields Virology. Lippincott Williams and Wilkins, Philadelphia 2001.pp.991−1041.

57. Liang R., Babiuk A.L. and Van Drunen Littel-van den Hurk S. Compatibility of plasmids encoding bovine viral diarrhea virus type 1 and type 2 E2 in a single DNA vaccine formulation // 2007. VaccineVol. 25-pp. 5994−6006.

58. Lowings J.P., Ibata G., Needham J., Paton D.J. Classical swine fever virus diversity and evolution//J. Gen. Virol.-1996.-Vol.77.-pp. 1311−1321.

59. Lowings J.P., Paton D.J., Sands J.J., De Mia G.M., Rutili D. Classical swine fever: genetic detection and analysis of differences between virus isolates//J. Gen. Virol.-1994.-Vol.75.-pp.3461−3468.

60. Mengeling W. L., Packer R. A. Pathogenesis of chronic hog cholera: host response // American Journal of Veterinary Research. 1966. -Vol.30.-pp.409−417.

61. Meyers G., Saalmuller A., Buttner M. Mutation abrogating the RNase activity in glycoprotein Erns of the pestivirus classical swine fever virus lead to virus attenuation // J. Virol. 1999. — Vol.73. — pp. 10 224−10 234.

62. Meyers G., Thiel H.-J. Molecular characterization of pestiviruses // Adv. Virus Res. 1996. — Vol.47. — pp.53−118.

63. Moening V. Introduction to classical swine fever: virus, disease and control policy // J. Veterinary Microbiology.- 2000.-Vol.73. pp. 93−102.

64. Moening V., Liess B. Pathogenesis of intrauterine infections with bovine viral diarrhea virus // Vet Clin N Am Food Anim Pract 1995. -Vol. 11-pp. 477−487.

65. Moennig V., Plagemann P. G. W. The pestiviruses // Advances in Virus Research. 1992. — Vol.41. — pp.53−98.

66. Moening V., Schageman G., Dahle J. et al. A new approach for the diagnosis of hog cholera//Dtsch. Tierdtztl., Wsch.-1990.-Vol. 97-pp.91−93.

67. Moormann R. J. M., Van Gennip H. G. P., Miedema G. K. W., Hulst M. M., Van Rijn P. A. (1996): Infection RNA transcribed from anengineered full-length cDNA template of the genome of a pestivirus // J. Virol.-1996.-Vol.70.-pp. 763−770.

68. Murray C.L., Marcotrigiano J., Rice C.M. Bovine Viral Diarrhea Virus Core Is an Intrinsically Disordered Protein That Binds RNA // J. Virol.-2007. Vol.82.-pp. 1294−1304.

69. Nagai M, Hayashi M., Sugita S., et al. Phylogenetic analysis of bovine viral different viruses using five different genetic regions // Virus Research.-2004.-Vol.99- pp. 103−113.79.

70. Nagai M., Sakoda Y., Mori M., et al. Insertion of cellular sequence and RNA recombination in the structural protein coding region of cytopathogenic bovine viral diarrhoea virus // J. Gen. Virol.- 2003.-Vol.84(Pt 2).-pp. 447−452.

71. Pankraz A., Thiel H.-J., Becher P. Essential and nonessential elements in the 3' nontranslated region of bovine viral diarrhea virus // J. Virol. — 2005. Vol.79. — pp.9119−9127.

72. Paton D.J., Carlsson U., Lowings J.P., Sands J.J., Vilcek S., Alenius S. Identification of herd-specific bovine viral diarrhoea virus isolates from infected cattle and sheep // Veterinary microbiology.- 1995.-Vol. 43.-pp.283−294.

73. Paton D. J., McGoldrick A., Greiser-Wilke I., et al. Genetic typing of classical swine fever virus // J. Veterinary Microbiology.-2000.-Vol.73.-pp. 137−157.

74. Pellerin C., van de Hurk J., Lecomete J. et al. Identification of a newgroupe of bovine viral diarrhea virus strains associated with severe outbreaks and high mortalities // Virology- 1994.-Vol.203.-pp.260−268.

75. Qu L., McMullan L. K., Rice C. M. Isolation and characterization of noncytopathic pestivirus mutants reveals a role for nonstructural protein NS4B in viral cytopathogenicity // J. Virol. 2001. — Vol.75. — pp. 10 651−10 662.

76. Reimann I., Depner K., Trapp S., Beer M. An avirulent chimeric Pestivirus with altered cell tropism protects pigs against lethal infection with classical swine fever virus // Virology. 2004. — Vol.322. — pp. 143 157.

77. Ridpath J., Bolin S.R., Dubovi EJ. Segregation of bovine viral diarrhea virus into genotypes // Virology.-1994.-Vol.205.-pp.66−74.

78. Risatti G.R., Callahan J.D., Nelson W.M., Borca M.V. Rapid detection of classical swine fever virus by a portable real-time reverse transcriptase PCR assay // Journal of clinical microbiology.-2003;Vol. 41-pp.500−505.

79. Rumenapf T., Stark R., Meyers G., Thiel H.-J. Structural proteins of hog cholera virus expressed by vaccinia virus: futher characterization and induction of protective immunity// Journal of Virology.- 1991.-Vol. 65.-pp.589−597.

80. Schirrmeier H., Strebelow G., Depner K., et al. Genetic and antigenic characterization of an atypical pestivirus isolate, a putative member of a novel pestivirus species // J. of General Virology.-2004.-Vol. 85. pp. 3647−3652.

81. Schweizer M, Peterhans E. Oxidative stress in cells infected with bovine viral diarrhoea virus: A crucial step in the induction of apoptosis // J Gen Virol-1999.-Vol.80.-pp.l 147−1155.

82. Seki Y., Seimiya Y.M., Motokava M. et al. Application of Restriction Fragment Length Polymorphism Analysis to Simple and Rapid Genotiptng of Bovine Viral Diarrhea Virus Strains Isolated in Japan // J. Vet. Med.

83. Sci.-2008.-Vol.70(4)-pp. 393−395.

84. Stadejek T, Warg J, Ridpath JF. Comparative sequence analysis of the 5' noncoding region of classical swine fever virus strains from Europe, Asia, and America // Arch Virol.-1996.-Vol. 141.-pp.771−776.

85. Stark R., Rumenapf T., Meyers G., Thiel H.-J. 1990 Cenomic localization of hog cholera virus glycoproteins // Virology.-1990. Vol. 174.-pp. 286−289.

86. Steffens S., Thiel H.-J., Behrens S. E. The RNA-dependent RNA polymerases of different members of the family Flaviviridae exhibit similar properties in vitro // J. Gen. Virol. — 1999. Vol.80. — pp.25 832 590.

87. Susa M., Konig M., Saalmuller A. et. al. Pathogenesis of classical swine fever: B-lymphocyte deficiency caused by hog cholera virus // Journal of Virology. 1992. — Vol.66, -pp.1171−1175.

88. Terpstra C. Hog cholera: an update of present knowledge // Br. Vet. J.-1991 .-Vol. 147.-pp.397−406.

89. Thiel H.J., Plagemann P.G.W., Moenning V. Pestiviruses // Fields Virology, Third Edition.- 1996;pp. 1059−1071.

90. Thiel H.J., Stark R., Weiland E., Rumenapf T., Meyer G. Hog Cholera Virus: Molecular Composition of virions from a pestivirus //J. Of Virology.- 1991. Vol.65- pp.4705−4712.

91. Trautwein G. Pathology and pathogenesis of the disease // In: Liess B. (Ed.), Classical Swine Fever and Related Infections. Martinus Nijhoff Publishing, Boston. 1988. -pp.24−27.

92. Van Oirschot J.T., Terpstra C. Hog cholera virus // Virus infections of porcines. Amsterdam, 1989. -pp.113−130.

93. Van Oirschot J. T., Terpstra C. A. Congenital persistent swine fever infection. I. Clinical and virological observations// Veterinary Micribiology. 1977. — Vol.2, — pp.121 — 132.

94. Vilcek S., Durcovic B., Kolesarova M., et al. Genetic diversity of international bovine viral diarrhoea virus (BVDV) isolates: identification of a new BVDV-1 genetic group // Vet Res.-2004.-Vol. 35- pp. 609−615.

95. Vilcek S., Nettleton P.F. Pestiviruses in wild animals // Veterinary Microbiology-2006.-Vol.l 16-pp. 1−12.

96. Vilcek S., Stadejek T., Ballagi-Pordany A. et al. Genetic variability of classical swine fever virus // Virus Res.-1996.-Vol.43.-pp. 137−147.

97. Vlasova A., Grebennikova T., Zaberezhny A., Greiser-Wilke I., Floegel-Niesmann G., Kurinnov V., Aliper T., Nepoklonov E. Molecular epidemiology of classical swine fever in the Russian Federation // J. Vet. Med.- 2003.-Vol.50-pp.363−367.

98. Wakeley P.R., Turner J.L., Ibata G et al. Characterisation of a type 2 bovine viral diarrhoea virus isolated from cattle in the UK // Vet.Microbiol.-2004.-Vol. 102.-pp. 19−24.

99. Warrener P., Collett M. S. Pestivirus NS3 (p80) protein possesses RNA helicase activity // J. Virol. 1995. — Vol.69. — pp.1720−1726.

100. Weiland F., Weiland E., Unger G. et. al. Localization of pestiviral envelope proteins Erns and E2 at the cell surface and on isolated particles //J. Gen. Virol. 1999. — Vol.80, — pp. 1157−1165.

101. Wengler G. Flaviviridae // Arch, of Virology.- 1991. (Suppl. 2).pp.223−233.

102. Wensvoort G., Terpstra C., deKluijver E.P., Kragten C., Warnaar J.C. Antigenic differentiation of pestivirus strains with monoclonal antibodies against hog cholera virus // Vet. Microbiol.- 1989. Vol.21- pp. 9−20.

103. Wiskerchen M., Beizer S. K., Collett M. S. Pestivirus gene expression: the first protein product of the bovine viral diarrhea virus large open reading frame, p20, possesses proteolytic activity // J. Virol. 1991. -Vol.65.-pp.4508−4514.

104. Wofmeyer A., Wolf G., Beer M et al. Genomic (5'-UTR) and serological differences among German BVDV field isolates // Arch.Virol.-1997.-Vol.l42.-pp.2049;2057.

105. Xia H., Liu L., Wahlberg N., et al. Molecular phylogenetic analysis of bovine viral diarrhea virus: A Bayesian approach // Virus Res.- 2007;Vol.45-pp. 2143−2152.

106. Xiao M., Gao J., Wang W. et. al. Specific interaction between the classical swine fever virus NS5B protein and viral genome // Eur. J. Biochem. -2004. Vol.271-pp.3888−3896.

107. Xu X., Zhang Q., Yu X., et al. Sequencing and comparative analysis of a pig bovine viral diarrhea virus genome // J. Virus Research-2006.-Vol.-122.-pp. 164−170.

108. Yu H., Grassman C. W., Behrens S.-E. Sequence and structural elements at the 3' terminus of bovine viral diarrhea virus genomic RNA: functional role during RNA replication // J. Virol. 1999. — Vol.73. -pp.3638−3648.

109. Zaberezny A.D., Grebennikova T.V., Kurinnov V.V., Tsybanov S.G.,.

Показать весь текст

Заполнить форму текущей работой