Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Анализ переноса агробактериальной Т-ДНК в генеративные клетки кукурузы

Диссертация: Анализ переноса агробактериальной Т-ДНК в генеративные клетки кукурузы
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

При проведении трансформации в условиях in planta во время цветения, не вполне ясен вопрос, какие именно клетки являются мишенями для Т-ДНК. При проведении обработки пыльцы кукурузы суспензией клеток агробактерий in vitro показано, что Т-ДНК может проникать в прорастающее пыльцевое зерно и встраиваться в геном одного из ядер мужского гаметофита. Данный факт подтверждает возможность участия… Читать ещё >

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
  • ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Общая характеристика основных методов генетической трансформации растений
      • 1. 1. 1. Методы прямого переноса ДНК в клетки растений
      • 1. 1. 2. Методы непрямого переноса ДНК в клетки растений
    • 1. 2. Аргобактериальная трансформация растений
      • 1. 2. 1. Общая характеристика процесса агробактериальной трансформации растений
      • 1. 2. 2. Функциональная организация Ti-плазмид
      • 1. 2. 3. Процесс агробактериальной трансформации
      • 1. 2. 4. Векторы для агробактериальной трансформации растений
      • 1. 2. 5. Агробактериальная трансформация in vitro
      • 1. 2. 6. Агробактериальная трансформация irt planta
      • 1. 2. 7. Факторы, влияющие на эффективность аргобактериальной трансформации
    • 1. 3. Практическое и фундаментальное значение генетической трансформации растений
    • 1. 4. Проблемы генетической трансформации растений
  • ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ 3 8 2. 1 Материалы
    • 2. 1. 1. Использованные штаммы A. tumefaciens
    • 2. 1. 2. Среды
      • 2. 1. 2. 1. Среды для культивирования A. tumefaciens
      • 2. 1. 2. 2. Среда для проращивания пыльцы
      • 2. 1. 2. 3. Инокуляционные среды
      • 2. 1. 2. 4. Среды для выращивания растений
      • 2. 1. 3. Растения
    • 2. 2. Методы
      • 2. 2. 1. Агробактериальная трансформация растений
        • 2. 2. 1. 1. Приготовление суспензии бактериальных клеток
        • 2. 2. 1. 2. Обработка растений агробактериальной суспензией
        • 2. 2. 1. 3. Отбор трансформантов
        • 2. 2. 1. 4. Выделение тотальной ДНК растений
        • 2. 2. 1. 5. Выделение тотальной ДНК агробактерий
        • 2. 2. 1. 6. ПЦР-анализ
        • 2. 2. 1. 7. Электрофорез
        • 2. 2. 1. 8. Обработка данных
      • 2. 2. 2. Определение плоидности у растений кукурузы
      • 2. 2. 3. Выявление присутствия агробактериальной ДНК в растительном материале
      • 2. 2. 4. Определение активности p-глюкуронидазы в листьях проростков кукурузы после трансформации
      • 2. 2. 5. Определение экспрессии гена gfp в корнях проростков после трансформации
      • 2. 2. 6. Определение содержания свободного пролина в тканях кукурузы
      • 2. 2. 7. Трансформация пыльцевых зерен кукурузы in vitro
  • ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЯ 53 3.1 Влияние различных факторов на частоту агробактериальной трансформации кукурузы в условиях in planta
    • 3. 1. 1. Частота трансформации кукурузы в условиях in planta при различной температуре
    • 3. 1. 2. Зависимость частоты трансформации от способа инокуляции кукурузы A tumefaciens
      • 3. 1. 2. 1. Частота встройки Т-ДНК в геном кукурузы при различных способах нанесения суспензии агробактерий
      • 3. 1. 2. 2. Частота встройки Т-ДНК в геном кукурузы при разных вариантах нанесения пыльцы и суспензии А. Ыте/аЫет на пестичные нити кукурузы
      • 3. 1. 3. Анализ растительного материала на наличие агробактериальной ДНК
    • 3. 2. Трансформация пыльцевых зерен кукурузы
      • 3. 2. 1. Трансформация пыльцевых зерен кукурузы in vitro
        • 3. 2. 1. 1. Трансформация пыльцевых зерен кукурузы in vitro штаммом A. tumefaciens LBA4404, несущим векторную конструкцию с генами nptll и gus-intron
        • 3. 2. 1. 2. Трансформация пыльцевых зерен кукурузы in vitro штаммом A. tumefaciens AGL0, несущим векторную конструкцию с генами nptll и ф
      • 3. 2. 2. Трансформация пыльцевых зерен кукурузы в условиях in planta
    • 3. 3. Трансформация женского гаметофита кукурузы в условиях in planta
    • 3. 4. Определение экспрессии генов, перенесенных в составе Т-ДНК, в растениях кукурузы
      • 3. 4. 1. Экспрессия гена nptll у растений кукурузы
      • 3. 4. 2. Экспрессия гена gus-intron в листьях кукурузы
      • 3. 4. 3. Экспрессия гена gfp в корнях кукурузы
      • 3. 4. 4. Определение концентрации пролина у трансгенных растений кукурузы, несущих антисмысловую последовательность гена пролиндегидрогеназы
    • 3. 5. Анализ наследования встроек Т-ДНК у кукурузы
  • ЗАКЛЮЧЕНИЕ
  • ВЫВОДЫ 97 БЛАГОДАРНОСТИ
  • СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ
  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ И ОБОЗНАЧЕНИЙ ПЦР — полимеразная цепная реакция
  • АПГП — антисмысловая последовательность гена пролиндегидрогеназы
    • 3. MCIT — Зародышевый маркер саратовский пурпурный
  • ЗМС — Зародышевый маркер саратовский
  • KMC — Коричневый маркер саратовский
  • ПДГ — пролиндегидрогеназа
  • ZRNase II — рибонуклеаза циннии {Zinnia elegans) — gfp — ген зеленого флуоресцентного белка- gus- ген Р-глюкуронидазы- nptll- ген неомицинфосфотрансферазы
  • МС — среда Мурасиге и Скуга

Анализ переноса агробактериальной Т-ДНК в генеративные клетки кукурузы (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность проблемы.

Кукуруза является одной из важнейших зерновых культур в мире, ее ежегодное производство составляет около 700 млн. т. (http://www.rosinvest.com/dir/analysis/40/43/), в том числе в России около 3 млн. т. (http://www.newsru.com/russia/17jul2008/luzhkov). В настоящее время кукуруза используется в качестве кормовой и пищевой культуры, в промышленных целях используют материалы, полученные из кукурузного сырья. В связи с этим получение новых сортов кукурузы, обладающих необходимыми для этих целей признаками, является важной практической задачей. Одним из способов управления генетической изменчивостью организмов, используемых в селекционной практике, служит генная инженерия. Получение трансгенных растений, несущих определенные признаки, при помощи методов генной инженерии является актуальным направлением биотехнологии. Со временем возрастает роль трансгенных растений в производстве пищевых продуктов, медицинских и промышленных материалов (Daniell et al., 2001; Rabotyagova et al., 2009). Технология доставки функциональных генов в растительный геном в составе Т-ДНК (transfer DNA) агробактерий зарекомендовал себя как надежный способ получения трансгенных двудольных растений. Перенос Т-ДНК из Agrobacterium tumefaciens в хромосомы вегетативных клеток однодольных растений впервые зарегистрирован более двадцати пяти лет назад (Slogteren et al., 1984), в том числе в кукурузу в 1986 году (Graves, Goldman, 1986). Основные способы получения генетически-модифицированных растений на основе метода агробактериальной трансформации базируются на переносе Т-ДНК в культивируемые in vitro растительные клетки с последующей регенерацией трансформированных растений. Однако трансформация каллусных клеток имеет ряд ограничений и недостатков, процесс ее осуществления является трудоемким, длительным и затратным. Существенные трудности возникают при трансформации однодольных растений с низкой регенерационной способностью. Кроме того, трансформация однодольных растений с использованием Agrobacterium tumefaciens происходит с меньшей эффективностью по сравнению с трансформацией двудольных. В связи с вышесказанным, особенно актуальной задачей является разработка методов трансформации однодольных растений без стадии культуры тканей. Поэтому ведется поиск нетрадиционных подходов для осуществления переноса агробактериальной Т-ДНК в однодольные растения, одним из которых может быть трансформация генеративных клеток. Половые клетки высших растений являются наиболее интересным объектом и инструментом для генетической трансформации. Их естественная способность передавать генетическую информацию следующему поколению может быть использована для внедрения фрагментов ДНК в растительный геном. Разработка способов генетической трансформации растений через генеративные клетки является актуальной задачей биотехнологии, способствующей решению, как фундаментальных проблем, так и прикладных задач генетики и селекции.

Цель исследования.

Изучение агробактериальной трансформации генеративных клеток кукурузы в условиях in planta.

Задачи исследования.

1. Исследовать эффективность встраивания Т-ДНК штаммов A. tumefaciens LBA4404 и AGL0 в геном кукурузы (линии АТ-3, ЗМС, 3MCig, КМС, ЗМСП, гибриды ФГНУ РосНИИСК «Россорго») при использовании метода агробактериальной трансформации в условиях in planta.

2. Определить эффективность трансформации генеративных клеток кукурузы при различных условиях.

3. Определить клетки-мишени для агробактериальной Т-ДНК.

4. Осуществить перенос функциональных генов (антисмыслового супрессора гена пролиндегидрогеназы и гена экстраклеточной рибинуклеазы циннии) в геном кукурузы методом агробактериальной трансформации в условиях in planta.

Научная новизна работы.

Впервые показано, что использование технологии агробактериальной трансформации в условиях in planta позволяет получать инсерции Т-ДНК в геном кукурузы всех исследованных гибридных комбинаций и с использованием штаммов агробактерий с различными генетическими конструкциями.

Впервые для кукурузы показано, что клетками-мишенями для агробактериальной Т-ДНК служат клетки женского и мужского гаметофита.

Впервые показана инсерция агробактериальной Т-ДНК в геном кукурузы при температуре воздуха во время инокуляции кукурузы агробактерлями выше 30 °C.

Научно-практическая значимость работы.

В ходе работы получены доказательства инсерции в геном кукурузы Т-ДНК, несущей ген рибопуклеазы циннии и супрессор гена пролиндегидрогеназы. Показано, что инсерция Т-ДНК, несущей антисмысловой супрессор гена пролиндегидрогеназы, сопровождается накоплением свободного пролина в тканях кукурузы. Полученные трансформанты могут быть использованы в дальнейшей работе по получению растений с повышенной устойчивостью к дефициту влаги и засолению.

Исследовано влияние температурного фактора на частоту агробактериальной трансформации кукурузы in planta, что позволяет предложить ряд технологических мероприятий при проведении трансформации в условиях повышенных температур.

Основные положения диссертации, выносимые на защиту.

1. Обработка пестичных нитей кукурузы суспензией клеток агробактерий с активированными генами вирулентности позволяет получать трансгенные растения всех исследованных гибридных комбинаций при ист ользований штаммов A. tumefaciens, несущих различные генетические конструкции.

2. Перенос агробактериальной Т-ДНК в геном кукурузы в условиях in planta наблюдается в температурном диапазоне 18−35 °С.

3. Перенос агробактериальной Т-ДНК при трансформации в условиях in planta происходит в клетки женского и мужского гаметофитов кукурузы.

4. Встройка антисмыслового супрессора гена пролиндегидрогеназы в геном кукурузы сопровождается достоверным увеличением содержания свободного пролина в тканях проростков кукурузы.

Личный вклад диссертанта и результаты, полученные совместно с другими исследователями.

Личный вклад соискателя состоит в получении всех представленных экспериментальных данных по анализу встройки Т-ДНК в клетки женского и мужского гаметофитов кукурузы, экспрессии функциональных генов у кукурузы, а также в описании и обработке полученных данных. Опыты по обработке растений при трансформации кукурузы in planta, часть экспериментов по анализу экспрессии маркерных генов проведены при участии сотрудников лаборатории биоинженерии ИБФРМ РАН И. В. Волоченной, В. А. Беликова, что отражено в совместных публикациях. Планирование экспериментов, интерпретация экспериментальных данных, подготовка результатов к публикации проводились под руководством Чумакова М.И.

Работа выполнена в лаборатории биоинженерии ИБФРМ РАН в течение 2007;2010 гг. в рамках плановой темы НИР «Исследование переноса ДНК-белковых комплексов в эукариотические клетки», № госрегистрации 1 200 606 182- научный руководитель — доктор биологический наук.

М.И. Чумаков. Исследования поддержаны грантом Федерального агентства по науке и инновациям в рамках Федеральной Программы «Исследования и разработки по приоритетным направлениям развития научно-технологического комплекса России на 2007;2012 годы» «Технологии биоинженерии» (мероприятие 1.2 Программы) шифр «2007;2−1.2−09−01−137» по теме: «Разработка технологии переноса Т-ДНК в генеративные клетки кукурузы».

Апробация работы.

Материалы диссертации были представлены на: III Саратовском салоне изобретений, инноваций и инвестиций (Саратов, 2007), школе-конференции по физико-химической биологии и биотехнологии «Биомика — наука XXI века» (Уфа, 2007), IV и V Всероссийских конференциях молодых ученых «Стратегия взаимодействия микроорганизмов и растений с окружающей средой» (Саратов, 2008, 2010), Международной школе-конференции «Генетика микроорганизмов и биотехнология» (Пущино, 2008), III Международной школе молодых ученых «Эмбриология, генетика и биотехнология» (Саратов, 2009), Всероссийской молодежной выставке-конкурсе прикладных исследований, изобретений и инноваций (Саратов, 2009), XXI Conference Maize and sorghum breeding in the genomic era (Bergamo, Italy, 2009), Международной научно-практической конференции «Вавиловские чтения — 2009» (Саратов, 2009), Международной научной конференции «Биотехнология начала III тысячелетия» (Саранск, 2010), AB-RMS PhD courses and symposium «Molecular Biotechnology Adaptation to Climate Change in the Baltic Sea Region: Contributions from Plant and Microbial Biotechnology» (Mikkeli, Finland, 2010).

Публикации.

По теме диссертации опубликованы 13 работ, в том числе 2 статьи в рецензируемых журналах, входящих в Перечень ВАК.

Объем и структура диссертации.

Диссертационная работа состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов исследования, главы с изложением и обсуждением собственных результатов, заключения, выводов и списка использованной литературы, включающего 276 источников. Диссертация изложена на 126 печатных страницах, содержит 19 рисунков и 14 таблиц.

выводы.

1. Встраивание агробактериальной Т-ДНК в геном кукурузы после обработки пестичных нитей в условиях in planta наблюдается у всех использованных гибридных комбинаций и при использовании различных штаммов A tumefaciens.

2. Перенос агробактериальной Т-ДНК в геном кукурузы в условиях in planta наблюдается в исследованном диапазоне температур 18−35 °С с частотой от 0,2 до 16,1% от числа использованных в опыте зерновок. При температуре выше 28 °C наблюдается статистически достоверное уменьшение частоты трансформации на початок.

3. Проведение предварительной совместной инкубации пыльцы и агробактериальных клеток приводит к увеличению эффективности трансформации. Способ и очередность нанесения бактериальных клеток и пыльцы кукурузы на пестичные нити не влияют на частоту трансформации в условиях in planta.

4. Встраивание агробактериальной Т-ДНК после обработки пестичных нитей кукурузы суспензией агробактерий с активированными генами вирулентности и последующим искусственным опылением происходит в геном клеток женского и мужского гаметофитов.

5. Встраивание антисмыслового супрессора гена пролиндегидрогеназы в геном кукурузы методом агробактериальной трансформации в условиях in planta сопровождается увеличением содержания свободного пролина в тканях проростков кукурузы.

БЛАГОДАРНОСТИ.

Автор признателен сотрудникам каф. генетики Саратовского госуниверситета: зав. каф. генетики, д.б.н., проф. B.C. Тырнову, с.н.с., к.б.н.

A.Н. Завалишиной, с.н.с., д.б.н. О. И. Юдаковой, О. И. Гуторовой за консультации и предоставленные линии кукурузы;

Э.С Пирузян (ИоГен РАН) и A.B. Кочетову (ИЦиГ СО РАН) автор перизнателен за предоставленные генетические конструкциисотрудникам лаборатории Биоинженерии ИБФРМ РАН: с.н.с., к.б.н. И. В. Волохиной, с.н.с., к.б.н. В. А. Беликову, лаб-исслед. И. Б. Ивановой выражаю признание за сотрудничество, обсуждение результатов и помощьвед. науч. сотр. лаборатории нанобиотехнологий ИБФРМ РАН, д.б.н., доц. каф. биофизики ФНП СГУ В. А. Богатыреву за консультации по микроскопии, прочтение рукописи и критические замечаниязав. лаб. кукурузы и сорго ФГНУ РосНИИСК «Россорго» д.с.-х.н.,.

B.А. Жужукину автор признателен за предоставленные гибриды кукурузы.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

В рамках диссертационной работы было проведено исследование факторов, влияющих на эффективность трансформации генеративных клеток кукурузы в условиях in planta.

Значимым фактором, влияющим на процесс агробактериальной трансформации, является температура. Полученные экспериментальные данные показали, что перенос агробактериальной Т-ДНК в геном кукурузы наблюдается в исследованном диапазоне температур 18−35 °С с частотой от 0,2 до 16,1%. При температуре выше 28 °C наблюдается статистически достоверное уменьшение частоты трансформации на початок.

Одним из преимуществ метода трансформации генеративных клеток перед традиционными методами агробактериальной трансформации клеток вегетативных органов является возможность использования любых сортов трансформируемой культуры. Полученные данные показали, что встройка агробактериальной Т-ДНК в геном кукурузы происходит при использовании различных гибридных комбинаций, что подтверждает проведенный ПЦР-анализ на маркерные (nptll, gus-intron) или целевые гены (супрессор гена пролиндегидрогеназы и ген рибонуклеазы циннии). Показана экспрессия перенесенных генов (, gfp, nptll, gus-intron, супрессор гена пролиндегидрогеназы) в гибридах кукурузы использованных линий.

Результаты исследований показали, что штамм агробактерий и линии кукурузы также являются факторами, влияющими на эффективность трансформации кукурузы в условиях in planta.

С целью оптимизации метода трансформации была изучена эффективность трансформации при различных способах нанесения пыльцы и суспензии клеток агробактерий. Было показано, что нанесение бактериальной суспензии при помощи пипетки или аэрозоля не оказывало влияния на эффективность трансформации, однако, завязываемость зерен при использовании аэрозольного метода была выше. Поэтому аэрозольный метод нанесения можно использовать для получения початков с большим количеством зерен. Проведение предварительной инкубации пыльцевых зерен с суспензией клеток различных штаммов агробактерий в среде с сахарозой, а также одновременное нанесение пыльцы и агробактериальной суспензии на пестичные нити кукурузы, способствовало увеличению эффективности трансформации. Отдельное нанесение пыльцы и агробактерий на пестичные нити оказалось менее предпочтительным способом трансформации кукурузы. Кроме того, проведение предварительной инкубации пыльцы и клеток агробактерий при пониженной температуре приводило к увеличению трансформации, что может быть использовано при проведении трансформации в условиях in planta при температуре окружающей среды выше 28 °C.

При проведении трансформации в условиях in planta во время цветения, не вполне ясен вопрос, какие именно клетки являются мишенями для Т-ДНК. При проведении обработки пыльцы кукурузы суспензией клеток агробактерий in vitro показано, что Т-ДНК может проникать в прорастающее пыльцевое зерно и встраиваться в геном одного из ядер мужского гаметофита. Данный факт подтверждает возможность участия мужского гаметофита при трансформации in planta. Встройка Т-ДНК в геном матроклинных гаплоидных растений показывает возможность проникновения Т-ДНК в зародышевый мешок (женский гаметофит) посредством прорастающей пыльцевой трубки. При этом трансформация спермиев не обязательна. Таким образомтрансформация кукурузы в условиях in planta происходит посредством мужского гаметофита, а клетками — мишенями могут быть и спермий, и яйцеклетка.

При использовании метода трансформации кукурузы in piar ta показана возможность наследования перенесенного в составе Т-ДНК гена во втором поколении.

В работе получены трансгенные растения кукурузы, несущие функциональные гены — антисмысловой супрессор гена пролиндегидрогеназы и ген рибонуклеазы циннии. В наших экспериментах с использованием штамма A. tumefaciens LBA4404, встройка антисмыслового супрессора гена пролиндегидрогеназы сопровождалась повышенным содержанием свободного пролина в тканях листа трансгенных растений кукурузы по сравнению с контролем. Полученные растения кукурузы с повышенным содержанием пролина могут быть использованы для дальнейшего анализа на устойчивость к засухе и засолению.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Викторэк-Смагур А., Хнатушко-Конка К., Кононович А. К. Сравнение двух методов трансформации Arabidopsis thaliana: погружение цветочных почек и вакуумная инфильтрация // Физиология растений. 2009. — Т. 56, № 4. — С. 619−628.
  2. С.А., Кузнецов В. В., Долгих Ю. И. Новый эффективный метод генетической трансформации кукурузы с использованием агробактериального газона // Физиология растений. 2009. — Т. 56, № 2. — Р. 258−263.
  3. Дун В., Мао И. Ф., Ли В. Факторы, влияющие на перенос Т-ДЫС в пыльцу лилии in vitro / Физиология растений. 2007. — Т. 54, № 3. — Р. 475−480.
  4. Н.Х., Тырнов B.C., Селиванова Л. П., Завалишина А. Н. Одинарное оплодотворение и проблема гаплоиндукции у кукурузы // Докл. Акад. Наук. 1997. -Т. 353, № 3. — С. 405−407.
  5. Н.С., Каляева М. А., Бурьянов Я. И. Индуцирование процессинга агробактериальной Т-ДНК экссудатами однодольных растений // Физиология растений. 1999. — Т. 46. — С. 266−275.
  6. О.В., Соловова Т. К., Панасенко В. И., Чумаков М. И. Колонизация агробактериями корней пшеницы // Известия РАН. — 2004. — № 6 — С. 1−10.
  7. Я.С., Титов С. Е., Кочетов A.B., Комарова М. Л., Романова A.B., Коваль B.C., Шумный В. К. Оценка солеустойчивости растений табака, несущих антисмысловой супрессор гена пролиндегидрогеназы. // Генетика. 2006. — Т. 42. -С. 278−281.
  8. A.B., Титов С. Е., Колодяжная Я. С., Комарова М. Л. Повышение содержания пролина и осмотического давления клеточного сока у трансформантов табака, несущих антисмысловой супрессор гена пролиндегидрогеназы. // Генетика. — 2004.-Т. 40.-С. 282−285.
  9. И.В., Чумаков М. И. Образование внеклеточных структур, содержащих VirB2 белки в скрещивающихся культурах агробактерий // Биологические мембраны. 2000. — Т. 17, № 2. — С. 158−161.
  10. Т., Фрич Э., Сэмбрук Д. Методы генетической инженерии. Молекулярное клонирование. — М.: Мир, 1984. 480 с.
  11. З.П. Практикум по цитологии растений. М.: Агропромиздат, 1988.-271с.
  12. В.А., Смирнов В. А., Коростелева С. П., Билинская E.H., Елисеева А. Генетическая трансформация пшеницы (Triticum aestivum L.) с помощью Agrobacterium tumefaciens II Генетика. — 1996. Т. 32. — С. 1596−1600.
  13. В.А., Соловьев A.A., Бадаева Е. Д., Юрцев В. Н. Практикум по цитологии и цитогенетике растений. М.: Колос, 2007. — 198с.
  14. С.С. Изучение роли экстраклеточных рибонуклеаз на модели трансгенных растений табака (Nicotiana tabacum L.): Автореф. дис. канд биол. наук. -Новосибирск, 2010. 16 с.
  15. С.С., Трифонова Е. А., Титов С. Е., Романова A.B., Колодяжная Я. С., Комарова M.JI. Эффективная экспрессия гена экстраклеточной рибонуклеазы Zinnia elegans в растениях табака Nicotiana tabacum SRI II Генетика. — 2007. Т. 43, №. 7.-С. 1002−1005.
  16. Г., Кондороши А., Хукас П. Rhyzobiacea. Молекулярная биология бактерий, взаимодействующих с растениями / Пер. под ред. И. А. Тихоновича и H.A. Проворова — Санкт-Петербург, 2002. — 556 с.
  17. С.Е., Кочетов A.B., Коваль B.C., Шумный В. К. Тра гсгенез как способ повышения устойчивости растений к абиотическим стрессам. // Успехи соврем, биолог. 2003. — Т. 123. — С. 487−494.
  18. B.C. Гаплоидия у растений: научное и прикладное значение. М.: Наука, 1998.-53 с.
  19. B.C., Завалишина А. Н. Индукция высокой частоты возникновения матроклинных гаплоидов кукурузы // Докл. Акад. Наук. — 1984. — Т. 276. — С. 735−738.
  20. С.С., Тырнов B.C., Гришина Е. В., Давоян Н. И., Зайцева JI.C. Гаплоидия и селекция. М.: Наука, 1976. -221с.
  21. А.А. Эмбриология кукурузы. Кишинев: Штиинца, 1972. — 383с.
  22. М.И., Курбанова И. В. Локализация VirBl белка на поверхности агробактерий // Биологические мембраны. —1998. Т. 15, Вып. 6. — С. 719−721.
  23. М.И., Курбанова И. В., Соловова Г. К. Агробактериальная трансформация неповрежденных растений // Физиология растений. — 2002. Т. 49, № 6.-С. 898−903.
  24. М.И., Рожок Н. А., Беликов В. А., Тырнов B.C., Волохина И. В. Трансформация кукурузы путем инокуляции агробактериями пестичных нитей inplanta II Генетика. 2006. — Т. 42, № 8. — С. 1083−1088.
  25. Л.А., Равин Н. В., Лешко Е. В., Волохина И. В., Чумаков М. И., Скрябин К. Г. Агробактериальная трансформация растения сорго в условиях in planta II Биотехнология. 2009. — № 1. — С. 23−30.
  26. О.И. Методы цитоэмбриологического анализа. Саратов: изд-во Саратовского университета, 1999. — 20 с.
  27. Ahokas Н. Transfection by DNA-associated liposomes evidenced of pea pollination. // J. Hereditas. 1987. — Vol. 106. — P. 129−138.
  28. Ahokas H. Transfection of germinating barley seed electrophoretically with exogenous DNA // Theor. Appl. Genet. 1989. — Vol. 77. — P. 469−472.
  29. Akella V., Lurguin P.F. Expression in cowpea seedlings of chimeric transgenes after electroporation into seed-derived embryos // Plant Cell Rep. — 1993. Vol. 12. — P. 110−117.
  30. Akiyoshi D.E., Klee H., Amasino R.M., Nester E.W., Gordon M.P. T-DNA of Agrobacterium tumefaciens encodes an enzyme of cytokinin biosynthesis // Prot. Natl. Acad. USA. 1984. — Vol.81. — P. 5994−5998.
  31. Albright L.M., Yanofsky M.F., Leroux B. Ma D.Q., Nester E.W. Processing of the T-DNA of Agrobacterium tumefaciens generates border nicks and linear, single-stranded T-DNA // J. Bacteriol. 1987. -Vol. 169. — P. 1046−1055.
  32. Alt-Moerbe J., Kuhlmann H., Schroder J. Differences in induction of Ti plasmid virulence genes virG and virD, and control of virD expression by four external factors // Molec. Plant-Microbe Interact. 1989. — Vol. 2, №.6. -P.301−308.
  33. Alt-Moerbe J., Neddermann P., Lintig J., Weiler e.W., Schroder J. Temperature-sensitive step in Ti plasmid vz’r-region induction and correlation with cytokinin secretion by Agrobacteria II Mol. Gen. Genet. 1988. — Vol. 213. — P. 1−8.
  34. Anderson A., Moore L. Host specificity in the genus Agrobacterium // Phytopathology. 1979. — Vol. 69. — P. 320−323.
  35. Ankenbauer R.G., Nester E.W. Sugar-mediated induction of Agrobacterium tumefaciens vilulence genes: structural specificity and activities of monosaccharides // Journal of Bacteriology. 1990. — Vol. 172. — P. 6442−6446.
  36. Arencibia A.D., Carmona E.R.C., Tellez P., Chan M.T., Yu S.M., Trujillo L.E., Oramas P. An efficient protocol for sugarcane (Saccharum spp. U) transformation mediated by Agrobacterium tumefaciens II Transgenic Res. 1998. — Vol. 7. — P. 213−222.
  37. Aulinger E., Peter S.O., Schmid J.E., Stamp P. Gametic embryos of maize as a target for biolistic transformation: comparison to immature zygotic embryos // Plant Cell Rep. -2003. Vol. 21, № 6. — P. 585−591.
  38. Bahieldin A., Dyer W.E., Qu R. Concentration effects of dicamba on shoot regeneration in wheat // Plant Breed. 2000. — Vol. 119. — P. 437−439.
  39. Barker R.F., Idler K.B., Thompson D.V., Kemp J.D. Nucleotide sequence of the T-DNA region from the A. tumefaciens octopine Ti plasmid pTi 15 955 // Plant Mol. Biol. -1983.-Vol.2.-P. 335−350.
  40. Barry G.F., Rogers S.G., Fraley R.T., Brand L. Identification of a cloned cytokinin biosynthetic gene II Prot. Natl. Acad. USA. 1984. — Vol.81. — P. 4776−4780.
  41. Bates G.W. Electroporation of plant protoplasts and tissues // Methods Cell Biol. 1995. — Vol. 50. — P. 363−373.
  42. Bates L.E., Waldren R.P., Teare I.D. Rapid determination of free proline for waterstress studies II Plant and soil. 1973. — T. 39. — P. 205−207.
  43. Bechtold N., Ellis J., Pelletier G. In planta Agrobacterium-mQdiated gene transfer by infiltration of adult Arabidopsis thaliana plants // C.R. Academy of Sciences Paris, Life Science. 1993. — Vol. 316. — P. 1194−1199.
  44. Bechtold N., Jaudeau B., Jolivet S., Maba B., Vezon D., Voisin R., Pelletier G. The maternal chromosome set is the target of the T-DNA in the in planta transformation of Arabidopsis thaliana II Genetics. 2000. — Vol. 155. — P. 1875−1887.
  45. Becker D., Brettschneider R., Lorz H. Fertile transgenic wheat from microprojectile bombardment of scuteller tissue // Plant J. 1994. — Vol. 5. — P. 299−307.
  46. Beijersbergen A.A., Dulk-Ras R., Schilperroort R.A., Hooykaas P. Conjugative transfer by the virulence system of Agrobacterium tumefaciens II Science. — 1992. Vol. 256. — P.1324−1326.
  47. Belanger C., Loubens I., Nester E.W., Dion P. Variable efficiency of a Ti plasmid-encoded VirA protein in different agrobacterial host // J. Bacteriol. — 1997. -Vol.179, №.7.-P. 2305−2313.
  48. Binns A.N., Thomashow M.F. Cell biology of Agrobacterium infection and transformation of plants // Ann. Rev. Microbiol. 1988. — Vol. 42. — P. 575−606.
  49. Boynton J.E., Gillham N.W. Genetics and transformation of mitochondria in the green alga Chlamydomonas II Methods in Enzymology. 1996 Vol. 264. — P. 279−296.
  50. Braun A.C. Plant tumors // Biochim Biophys Acta. 1978. — Vol. 516. -P. 167−191.
  51. Brettschneider R., Becker D., Lorz H. Efficient transformation of scutellar tissue of maize embryos // Theor. Appl. Genet. 1997. — Vol. 94. — P. 737−748.
  52. Brisibe E. A, Gajdosava A., Olsen A., Andersen S.B. Cytodifferentiation and transformation of embryogenic callus lines derived from anther culture of wheat. // J. Exp. Bot.-2000.-Vol. 51.-P. 187−196.
  53. Buchmann I., Mamer F.J., Schroder G., Waffenschmidt S., Schroder J. Tumor genes in plants: T-DNA encoded cytokinin biosynthesis // EMBO J. 1985. — Vol. 4. — P. 853−859.
  54. Bundock P., Dulk-Ras A., Beijersbergen A., Hooykaas P.J.J. Trans kingdom T-DNA transfer from Agrobacterium tumefaciens to Saccharomyces cerevisiae IIEMBO J. -1995.-Vol. 14.-P. 3206−3214.
  55. Bundock P., Hooykaas P.J.J. Integration of Agrobacterium tumefaciens T-DNA in the Saccharomyces cerevisiae genome by illegitimate recombination // Proc. Natl. Acad. Sci. USA.- 1996.-Vol. 93.-P. 12 172−12 175.
  56. Cadoza V., Stewart C.N. Increased Agrobacterium mediated transformation and rooting efficiencies in canola (Brassica napus L.) from hypocotyls segment expiants // Plant Cell Rep. 2003. — Vol. 21. — P. 599−604.
  57. Cangelosi GA., Ancenbauer R.G., Nester E.W. Sugar induces the Agrobacterium virulence genes through a periplasmic binding protein and a transmembrane signal protein // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1990. — Vol. 87. — P. 67 086 712.
  58. Castillo A.M., Vasil V., Vasil I.K. Rapid production of fertile transgenic plants of rye (Secale cereale L.) II BioTechnology. 1994. — Vol. 12. — P. 1366−1371.
  59. Catlin D., Ochoa O., Me. Cormick S., Quiras C.F. Celery transformation by A. tumefaciens cytological and genetic analysis of transgenic plants // Plant Cell Rep. -1988.-Vol. 7.-P. 100−103.
  60. Chang S.S., Park S.K., Kim B.C., Kang B.J., Kim D.U., Nam H.G. Stable genetic transformation of Arabidopsis thaliana by Agrobacterium inoculation in planta. Plant Journal. 1994. -Vol. 5. — P. 551−558.
  61. Charles T.C., Nester E.W. A chromosomaly encoded two component sensory transduction system is required for virulence of Agrobacterium tumefaciens II J.Bacteriol. 1993. — Vol. 175. -P. 6614−6625.
  62. Cheng M., Fry J.E., Pang S., Zhou I., Hironaka C., Duncan D.R.I., Conner T.W.L., Wang Y. Genetic transformation of wheat mediated by Agrobacterium tumefaciens II Plant. Physiol. 1997. — Vol. 115. — P. 971−980.
  63. Cheng M., Hu T., Layton J.I., Liu C-N., Fry J.E. Desiccation of plant tissues post-Agrobacterium infection enhances T-DNA delivery and increases stabletransformation efficiency in wheat // In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant. 2003. — Vol. 39. -P. 595−604.
  64. Chilton M.- D., Drummond M.H., Merlo D.J., Sciaky D., Montoya A.L., Gordon M.P., Nester E.W. Stable incorporation of plasmid DNA into higher plant cells: the molecular basis of crown gall tumorigenesis // Dept. Bioch. 1977. — Vol.11. -P. 263−271.
  65. Christie P.J. Agi’obacterium tumefaciens T-complex transport apparatus: a paradigm for a new family of multifunctional transporters in eubacteria // J. Bacteriol. — 1997. Vol. 179. — P. 3085−3094.
  66. Christie P.J., Ward J.E., Winans S.C., Nester E.W. The Agrobacterium tumefaciens virE2 gene product is a sinle-stranded-DNA-binding protein that associates with T-DNA // J. Bacteriol. 1988. — Vol. 170, № 6. — P. 2559−2667.
  67. Chowrira G.M., Akella V., Lurquin P.F. Electroporation-mediated gene transfer into intact nodal meristems in planta II Molecular Biotechnology. 1995. — Vol. 3. -P. 17−23.
  68. Chu C.C., Wang C.C., Sun C.S., Hsu C., Yin K.C., Chu C.Y., Bi F.Y. Establishment of an efficient medium for anther culture of rice through comparative experiments on the nitrogen sources // Sci. Sip. 1995. — Vol. 18. — P. 659−668.
  69. Chung M.H., Chen M.-K., Pan S.-M. Floral spray transformation can efficiently generate Arabidopsis transgenic plants // Trangenic research. 2000. — Vol. 9. -P. 471−476.
  70. Chyi Y.S., Jorgensen R.A., Goldstein D., Tanksley S.D., Loaiza-Figueroa F. Locations and stability of Agrobacterium-mQdiztQd T-DNA insertions in the Lycopersicon genome //Mol. Gen. Genet. 1986. — Vol. 204.-P. 64−69.
  71. Citovsky V., Warnick D., Zambryski P. Nuclear import of Agrobacterium VirD2 and VirE2 proteins in maize and tobacco // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1994. — Vol. 91. -P. 3210−3214.
  72. Citovsky V.C., Wong M.L., Zambryski P. Cooperative interaction of Agrobacterium VirE2 protein with single-stranded DNA: implications for the T-DNA transfer process // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1989. — Vol.86. — P. 1193−1197.
  73. Citovsky V., Zupan J., Warnick D., Zambriski P. Nuclear localization of Agrobacterium VirE2 protein in plant cells // Science. 1992. — Vol. 256, № 5065. -P. 1802−1805.
  74. Clough S.J., Bent A.F. Floral dip: a simplified method for Agrobacterium mediated transformation of Arabidopsis thaliana II The Plant Journal. 1998. — Vol. 16. -P. 735−743.
  75. Cook D.M., Li P.L., Ruchaud F., Padden S., Farrand S.K. Ti plasmid conjugation is independent of vir: reconstitution of the tra functions from pTiC58 as a binary system. J. Bacteriol. 1997. — Vol. 179.-P. 1291−1297.
  76. Crossway A., Oakes J.V., Irvine J.M., Ward B., Knauf V.C., Shewmaker C.K. Integration of foreign DNA following microinjection of tobacco mesophyll protoplasts // Mol. Gen. Genet. 1986.-Vol. 202.-P. 179−185.
  77. Gurel S., Gurel E., Kaur R., Wong J., Meng L., Tan H., Lemaux P.G. Efficient, reproducible Agrobacterium-mediated transformation of sorghum using heat treatment of immature embryos // Plant Cell Rep. 2009. — Vol. 28. — P. 429−444.
  78. Curtis I.S., Nam H.G. Transgenic radish (Raphanus sativus L. longipinnatus Bailey) by floral-dip method — plant development and surfactant are important in optimizing transformation efficiency // Transgenic Research. 2001. — Vol. 10. -P. 363−371.
  79. D’Halluin K., Bonne E., Bossut M., De Beuckeleer M., Leemans J. Transgenic maize plants by tissue electroporation // Plant Cell. 1992. — Vol. 4. — P. 1495−1505.
  80. Daniell H., Streatfield S., Wycoff K. Medical molecular farming: production of antibodies, biopharmaceuticals and edible vaccines in plants // Trends in Plant Sci. — 2001. -Vol. 6.-P. 219−226.
  81. Das A. Agrobacterium tumefaciens virE operon encodes a single-stranded DNA-binding protein // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1988. — Vol. 85, № 9. — P. 2909−2913.
  82. De Cleene M., De Ley J. The host range of crown gall // Bot. Rev. 1976. -Vol. 42, №. 4.-P. 389−466.
  83. De Groot M.J.A., Bundock P., Hooykaas P.J.J., Beijersbergen A.G.M. Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation of filamentous fungi // Nat. Biotechnol. 1998. — Vol. 16. — P. 839−842.
  84. Dennehey B.K., Retersen W.L., Ford-Santino C., Pajeau M., Armstrong C. Comparison of selective agents for use with the selectable marker gene bar in maize transformation // Plant cell, tissue and organ culture. 1994. — Vol. 36. — P. 1−7.
  85. Desfeux C., Clough S.J., Bent A.F. Female reproductive tissues are the primary target of Agrobacterium-mQdizted transformation by the Arabidopsis floral-dip // Methods Plant Physiol. 2000. — Vol. 123. — P. 895−904.
  86. Dill en W., De Clercq J., Kapila J., Zambre M., Van Montagu M., Angenon G. The effect of temperature on Agrobacterium tumefaciens-mQdi&tQd gene transfer to plants // Plant J. 1997. — Vol. 12. — P. 1459−1462.
  87. Duckely M., Hohn B. The VirE2 protein of Agrobacterium tumefaciens: the Yin and Yang of T-DNA transfer // FEMS Microbiology Letters. 2003. — Vol. 223. — P. 1−6.
  88. Dumas F., Duckely M., Pelczar P., Van Gelder P., Hohn B. An Agrobacterium VirE2 channel for transferred-DNA transport into plant cells // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2001. — Vol.98. — P. 485−490.
  89. Dupuis J., Pace G.M. Gene-transfer to maize male reproductive structure by particle bombardment of tassel primordia // Plant Cell Rep. 1993. — Vol. 12. -P. 607−611.
  90. Durrenberger F., Crameri A., Hohn B., Koukolikova-Nicola Z. Covalently bound VirD2 protein of Agrobacterium tumefaciens protects the T-DNA from exonucleolytic degradation // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1989. — Vol.86, №. 23. — P. 9154−9158.
  91. Durrenberger M. B., Villiger W., Bachi T. Conjugational junctions: morphology of specific contacts in conjugating Escherichia coli bacteria // J. Struct. Biol. 1991. -Vol. 107.-P. 146−156.
  92. Eisenbrandt R., Kalkum M., Lai E.M., Lurz R., Kado C. I., Lanka E. Conjugative pili of IncP plasmids, and the Ti plasmid T-pilus are composed of cyclic subunits // J. Biol. Chem. 1999. — Vol. 274. — P. 22 548−22 555.
  93. Ellis D., Roberts D., Sutton B. Transformation of white spruce and other conifer species by A. tumefaciens II Plant Cell Rep. 1989. — Vol. 8. — P. 16−20.
  94. Enriquez-Obregon G.A., Vazquez-Padron R.I., Prieto-Samsonov D.L., De La Riva G.A., Selman-Housein G. Herbicide-resistant sugarcane (Saccharum officinarum L.) plants by Agrobacterium-mediated transformation // Planta. 1998. — Vol. 205.-P. 20−27.
  95. Escudero J., Neuhaus G., Hohn B. Intercellular Agrobacterium can transfer DNA to the cell nucleus of the host plant 11 Proc.Natl. Acad. Sci. USA. 1995. — Vol. 92. — P. 230−234.
  96. Feldmann K.A., Marks M.D. Agrobacterium-medmtQd transformation of germinating seeds of Arabidopsis thaliana: a non-tissue culture approach 11 Molecular and General Genetics. 1987. — Vol. 208. — P. 1−9.
  97. Fennell A., Hauptmann R. Electroporation and PEG delivery of DNA into maize microspores // Plant Cell Reports. 1992. — Vol. 11. — P. 567−570.
  98. Fromm M.E., Taylor L.P., Walbot V. Expression of genes transferred into monocot and dicot plant cells by electroporation // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1985. -Vol. 82.-P. 5824−5825.
  99. Fullner K., Stephens K., Nester E. An essential virulence protein of Agrobacterium tumefaciens, VirB4, requires an intact mononucleotide binding domain to function in transfer of T-DNA // Mol. Gen. Genet. 1994. — Vol. 245. — P. 704- 715.
  100. Fullner K.J., Lara J.C., Nester E.W. Pilus assembly by Agrobacterium T-DNA transfer genes // Science. 1996a. — Vol. 273. — P. 1007−1009.
  101. Fullner K. J, Nester E.W. Temperature affects the T-DNA transfer machinery of Agrobacterium tumefaciens II J. Bacteriol. 1996b. — Vol. 178. — P. 1498−1504.
  102. Garfinkel D.J., Nester E.W. Agrobacterium tumefaciens mutants affected in crown gall tumorigenesis and octopine catabolism 11 J. Bacteriol. 1980. — Vol. 144. -P. 732−743.
  103. Gheysen G., Villarroel R., Van Montagu M. Illegitimate recombination in plants: a model for T-DNA integration // Genes Dev. 1991. — Vol. 5. — P. 287−297.
  104. Graves A.C., Goldman S.L. The transformation of Zea mays seedlings with Agrobacterium tumefaciens // Plant Molec. Biol. 1986. — Vol. 7. — P. 43−50.
  105. Griesbach R.J. Chromosome-mediated transformation via microinjection // Plant Sci. 1987. — Vol. 50. — P. 69−77.
  106. Griesbach R.J. Hammond J. An improved method for transforming plants through electrophoresis // Plant Sci. 1994. — Vol. 102. — P. 81−89.
  107. I.Hansen G., Das A., Chilton M.-D. Constitutive expression of the virulence genes improves the efficiency of plant transformation by Agrobacterium II Proc. Natl Acad. Sci. USA. 1994,-Vol. 91. — P. 7603−7607.
  108. Hepburn A. G., White J. The effect of right terminal repeat deletion on the oncogenicity of the T-region of pTiT37 // Plant Mol. Biol. 1985. — Vol. 5. — P. 3−11.
  109. Herman L., Jacobs A., Van Montagu M., Depicker A. Plant chromosome marker gene fusion assay for study of normal and truncated T-DNA integration events // Mol. Gen. Genet. 1990. — Vol. 224. — P. 248−256.
  110. Herrera-Estrella A., Chen Z.-M., Van Montagu M., Wang K. VirD proteins of A. tumefaciens are required for the formation a covalent DNA-protein complex at the 5'termonus of T-strand molecules // EMBO J. 1988. — Vol.7. — P. 4055−4062.
  111. Herrera-Estrella L., Teeri T.H., Simpson J. Use of reporter genes to study gene expression in plant cells // Plant molecular biology manual. 1988. — Vol B1. — P. 1 -22.
  112. Hess D. Investigations on the intra- and interspecific transfer of anthocyanin genes using pollen as vectors // Z. Pflanzenphysiol. 1980. — Vol. 98. — P. 321−337.
  113. Hess D. Pollen-based techniques in genetic manipulation // Int. Rev. Cytol. -1987.-Vol. 107.-P. 367−395.
  114. Hess D., Dressier K., Nimmrichter R. Transformation experiments by pipetting Agrobacterium into the spikelets of wheat (Triticum aestivum L) // Plant Sci. 1990. -Vol. 72.-P. 233−244.
  115. Hiei Y., Ohta S., Komari T., Kumashiro T. Efficient transformation of rice {Oryza sativa L.) mediated by Agrobacterium and sequence analysis of the boundaries of the T-DNA // Plant Journ. 1994. — Vol. 6. — P. 271−282.
  116. Holm P.B., Olsen O., Schnorf M., Brinch-Pederse H., Knudsen S. Transformation of barley by microinjection into isolated zygote protoplasts // Transgen. Res. 2000. — Vol. 9. — P. 21−32.
  117. Horsch R.B., Klee J., Stachel S.,. Winans S. C, Nester E. W., Rogers S. G., Fraley R. T. Analysis of Agrobacterium tumefaciens virulence mutants in leaf disks // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1986. — Vol. 83. — P. 2571−2575.
  118. Huang M.L.W., Cangelosi G.A., Halperin W., Nester E.W. A chromosomal A. tumefaciens agent required for effective plant signal transduction // J. Bacteriol. 1990. -Vol. 172.-P. 1814−1822.
  119. Huang Y. VirA, coregulator of Ti-specified virulence genes, is phosphorylated in vitro II J.Bacteriol. 1990. — Vol. 172. — P. 1142−1144.
  120. Ishida Y., Saito H., Ohta S., Hiei Y., Komari T., Kumashiro T. High efficiency transformation of maize {Zea mays L.) mediated by Agrobacterium tumefaciens II Nature Biotechnol. 1996. — Vol. 14. — P. 745−750.
  121. James D.J., Passey A.J., Baker S.A. Transgenic apples display stable gene expression in the fruit and Mendelian segregation of the transgenes in the R1 progeny // Euphytica. 1995. — Vol. 85. — P. 109−112.
  122. Jarchow E., Grimsley N.H., Hohn B. VirF, the host-rangedetermining virulence gene of Agrobacterium tumefaciens, affects T-DNA transfer to Zea mays II Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1991. -P. 88. -P. 10 426−10 430.
  123. Jefferson R.A. Assaying chimeric genes in plants: the beta-glucuronidase fusion system // Plant Mol. Biol. Rep. 1987b. — Vol. 5. — P. 201−208.
  124. Jefferson R.A., Kavanagh T.A., Bevan M.W. Gus fusions: beta-glucuronidase as a sensitive and versatile gene fusion marker in higher plants // EMBO J. 1987a. — Vol. 6. -P. 3901−3907.
  125. Jen G.C., Chilton M.D. The right border region of pTiT37 T-DNA is intrinsically more active than the left border region in promoting T-DNA transformation // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1986. — Vol. 83. -P. 3895−3899.
  126. Jin S., Prusti R.K., Roitsch T. Phosphorylation of the VirG protein of A. tumefaciens by the autophosphorylated VirA protein // J. Bacteriol. 1990. — Vol. 172. -P. 4945−4950.
  127. Jin S., Song Y.-N., Deng W.-Y.3 Gordon M., Nester E.W. The regulatory VirA protein of Agrobacterium tumefaciens does not function at elevated temperatures // J. Bacteriol. 1993. — Vol. 175. — P. 6830−6835.
  128. Jones A. L., Lai E.-M., Shirasu K., Kado C. I. VirB2 is a processed pilin-like protein encoded by the Agrobacterium tumefaciens Ti plasmid // J. Bacteriol. 1996. -Vol. 178.-P. 5706−5711.
  129. Jones-Villeneuve E., Huang B., Prudhomme I., Bird S., Kemble R., Hattori J., Miki B. Assessment of microinjection for introducing DNA into uninuclear microspores of rapeseed // Plant Cell Tissue Org. Cult. 1995. — Vol. 40. — P. 97−100.
  130. Kaeppler H., Gu W., Somers D.A., Rines H.W. Cockburn A.F. Silicon carbide fiber-mediated DNA delivery into plant cells // Plant Cell Rep. 1990. — Vol. 9. -P. 415−418.
  131. Kahl G., Schell J. Molecular Biology of plant tumors. New York Academic Press, 1982.-354p.
  132. Katavic V., Haughn G.W., Reed D., Martin M., Kunst L. In planta transformation of Arabidopsis thaliana II Mol. Gen. Genet. 1994. — Vol. 245. '— P. 363−370.
  133. Ke J., Khan R., Johnson T., Somers D.A., Das A. High-efficiency gene transfer to recalcitrant plants by Agrobacterium tumefaciens I I Plant Cell Rep. — 2001. — Vol. 20. — P. 150−156.
  134. Klee H.J., White F.F., Iyer V.N., Gordon M. P., Nester E.W. Mutational analysis of the virulence region of an Agrobacterium tumefaciens Ti plasmid // J. Bacteriol. 1983.-Vol. 153.-P. 878−883.
  135. Klein T. M., Wolf E.D., Wu R., Sanford J.C. High-velocity microprojectiles for delivering nucleic acids into living cells // Nature. 1987. — Vol. 327. — P. 70−73.
  136. Knauf V.C., Panagopoulos C.G., Nester E.W. Genetic factors controlling the host range of A. tumefaciens II Phytopathology. 1982. — Vol. 72. — P. 1545−1549.
  137. Koncz C., Martini N., Mayerhofer R., Koncz-Kalman Z., Korber H., Redei G.P., Schell J. High-frequency T-DNA-mediated gene tagging in plants // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1989. — Vol. 86. — P. 8467−8471.
  138. Kumlehn J., Serazetdinora L., Hensel G., Becker D., Loerz H. Genetic transformation of barley (Hordeum vulgare L.) via infection of androgenetic pollen culture with Agrobacterum tumefaciens I I Plant Biotechnology J. 2006. — Vol. 4. — P. 251−258.
  139. Kunik T., Tzfira T., Kapulnik Y., Gafni Y., Dingwall C., Citovsky V. Genetic transformation of HeLa cells by Agrobacterium I I Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2001. -Vol. 98.-P. 1871−1876.
  140. Lai E-M., Kado C.I. Processed VirB2 is the major subunit of the promiscuos pilus of Agrobacterium tumefaciens II J.Bacteriol. 1998. — Vol.180. — P.2711−2717.
  141. Lai E.-M., Kado C.I. The T-pilus of Agrobacterium tumefaciens I I Trends Microbiol. 2000. — Vol. 8. — P. 361−369.
  142. Langridge P., Brettschneide R., Lazzeri P., Lorz H. Transformation of cereals via Agrobacterium and the pollen pathway: a critical assessment // The Plant Journal. -1992.-Vol. 2.-P. 631−638.
  143. Leedel P.J., Zhany G., Cass D.D. Transient gfp expression in sperm cells and zygotes of Zea mays L. // Plant Physiol. 1997. — Vol. 114. — P. 297−298.
  144. Lennon K.A., Roy S., Helper P.K., Lord E.M. The Structure of the transmitting tissue of Arabidopsis thaliana (L.) and the path of pollen tube growth // Sex. Plant Reprod. -1998.-Vol. 11.-P. 49−59.
  145. Lessl M., Balzer D., Pansegrau W., Lanka E. Sequence similarities between the RP4 Tra2 and the Ti- VirB region strongly support the conjugation model for T-DNA transfer // J. Biol. Chem. 1992. — Vol. 267. — P. 20 471−20 480.
  146. Lessl M., Lanka E. Common mechanisms in bacterial conjugation and Ti-mediated transfer to plant cells II Cell. 1994. — Vol. 77. — P.321−324.
  147. Li L., Qu R., de Kochko A., Fauquet C., Beachy R.N. An improved rice transformation system using the biolistic method // Plant Cell Rep. 1993. — Vol. 12. -P. 250−255.
  148. Linsmaier E.M., Skoog F. Organic growth factor requirements of tobacco tissue cultures // Physiol. Plant. 1965. — Vol. 18. — P. 100−127.
  149. Lippincott B.B., Lippincott J.A. Bacterial attachment to a specific wound site as an essential stage in tumor initiation by Agrobacterium tumefaciens II J.Bacteriol. 1969. -Vol. 97, №.2.-P. 620−628.
  150. Liu J., Iao S.Q., An L.3 Yang A. Transfer of a minimal linear marker-free and vector-free smgfp cassette into soybean via ovary-drip transformation // Biotechnol Lett. -2009.-Vol. 31.-P. 295−303.
  151. Liu F., Cao M.Q., Yao L., Li Y., Robaglia C., Tourneur C. In planta transformation of pakchoi (Brassica campestris L.ssp. Chinensis) by infiltration of adult plants with Agrobacterium I I Acta Hortic. 1998. — Vol. 467. — P. 187−192.
  152. Logemann E., Birkenbihl R.P., Ulker B., Somssich I.E. An improved method for preparing Agrobacterium cells that simplifies the Arabidopsis transformation protocol // Plant Methods. 2006. — Vol. 2. — P. 16−22.
  153. Lundquist R.C., Close T.J., Kado C.I. Genetic complementation of Agrobacterium tumefaciens Ti plasmid mutants in the virulence region // Mol. Gen. Genet. 1984.-Vol. 193.-P. 1−7.
  154. Luo Z.-X., Wu R. A simple method for the transformation of rice via the pollentube pathway II Molecular Biology Reporter. 1989. — Vol. 7. — P. 69−77.
  155. Lurquin P.F. Binding of plasmid loaded liposomes to plant protoplasts: validity of biochemical methods to evaluate the transfer of exogenous DNA // Plant Sci. Leu. -1981.-Vol. 21.-P. 31−40.
  156. Manoharan M., Dahleen L.S. Genetic transformation of the commercial barley (Hordeum vulgare L.) cultivar conlon by particle bombardment of callus // Plant Cell Rep. -2002.-Vol. 21.-P. 76−80.
  157. Matsumoto S., Ho Y., Hosoi T. Integration of Agrobacterium T-DNA into a tobacco chromosome: possible involvement of DNA homology between T-DNA and plant DNA // Mol. Genet. 1990. — Vol. 224. — P. 309−316.
  158. Matzk A., Mantell S., Schieman J. Location of persistence of engineered in transgenic tobacco plants // MPMI. 1996. — Vol. 9. — P.373−381.
  159. Mayerhofer R., Koncz-Kalman Z., Nawrath C., Bakkeren G., Crameri A., Angelis K., Redei G. P., Schell J., Hohn B., Koncz C. T-DNA integration: a mode of illegitimate recombination in plants // EMBO J. 1991. — Vol. 10. — P. 697−704.
  160. Messens E., Dekeyser R., Stachel S. Nontransformable Triticum monococcum monocotyledonous culture produces the potent Agrobacterium vzr-inducing compound ethyl ferulate // Proc. Natl.Acad.Sc.USA. 1990. — Vol. 87. — P. 4368−4372.
  161. Miller J.W., Crane G.L. Relative susceptibility of chrysanthemum cultivars to A. tumefaciens II Plant Disease Reporter. 1975. — Vol. 59. — P. 576−581.
  162. Miki B., Mc. Hunh S. Selectable marker genes in transgenic plants: applications, alternatives and biosafety // Biotechnology. 2004. — Vol. 107. — P. 193−232.
  163. Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures // Physiol. Plant. 1962. — Vol. 15. — P. 473−479.
  164. Mysori R.S., Bassuner D., Deng X.B., Darfmian N.S., Motchoulski A., Ream W. Role of Agrobacterium tumefaciens VirD2 protein in T-DNA transfer and integration I I MPMI. 1998. — Vol. 11, № 7. — P. 662−683.
  165. Nagatani N., Honda H., Shimada T., Kobayashi T. DNA delivery into rice cells and transformation using silicon carbide whiskers // Biotechnol. Techniq. 1997. — Vol. 11.-P. 781−786.
  166. Obermeyer G., Weisenseel M. H. Introduction of impermeable molecules into pollen grains by electroporation // Protoplasma. 1995. Vol. 187. — P. 132−137.
  167. Ohta Y. High efficiency genetic transformation of maize by a mixture of pollen and exogenous DNA II Proc Natl. Acad. Sci. USA. 1986. — Vol. 83. — P. 715−719.
  168. Ohyama K., Pelcher L.E., Schaefer A.E., Fowke L.C. In vitro binding of Agrobacterium tumefaciens to plant cells from suspension culture // Plant Physiol. 1979. -Vol.63.-P. 382−387.
  169. Olhoft P.M., Somers D.A. L-cysteine increases Agrobacterium-mediated T-DNA delivery into soybean cotyledonary-node cells // Plant Cell Rep. 2001. — Vol. 20. -P. 706−711.
  170. Olhoft P.M., Flagel L.E., Donovan C.M., Somers D.A. Efficient soybean transformation using hygromycin В selection in the cotyledonary-node method // Planta. -2003. Vol. 216. — P. 723−735.
  171. Pan S.Q., Charles Т., Jin S., Wu Z., Nester E.W. Preformed dimeric state of the sensor protein VirA is involved in plant -Agrobacterium signal transduction 11 Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1993. — Vol. 90. — P. 9939−9943.
  172. Pansegrau W., Lanka E. Enzymology of DNA transfer by conjugation mechanisms // Progress in Nucl. Acid Res. and Molec. Biol. 1996. — Vol. 54. -P. 197−251.
  173. G.J., Та C.N., Das A. Constitutive mutations of Agrobacterium tumefaciens transcriptional activator VirG // J. Bacterol. 1992. — Vol. 174, №.12. -P. 4109−4174.
  174. Peralta E. G., Ream L. W. T-DNA border sequences required for crown gall tumorigenesis // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1985. — Vol. 82. — P. 5112−5116.
  175. Picton J.M., Steer M.W. A model for the mechanism of tip extension in pollen tubes // J. of Theoret. Biol. 1982. — Vol. 98. — P. 15−20.
  176. Piers K.L., Heath J.D., Liang X., Stephens K.M., Nester E.W. Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation of yeast // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1996. -Vol. 93.-P. 1613−1618.
  177. Prasher D.C., Eckenrode V.K., Ward W.W., Prendergast F.G., Connier M.J., primary structure of the Aequorea Victoria green fluorescent protein // Gene. — 1992. -Vol. 111.-P. 229−233.
  178. Rabotyagova O.S., Cebe P., Kaplan D.L. Self-assembly of genetically engineered spider silk block copolymers // Biomacromolecules 2009. — Vol. 10. -P. 229−236.
  179. Raineri D.M., Boulton M.I., Davies J.W., Nester E.W. VirA, the plant-signal receptor, is responsible for the Ti-plasmid-specific transfer of DNA to maize by Agrobacterium 11 Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1993. — Vol .90. — P. 3549−3553.
  180. Rakoczy-Trojanowska M., Malepszy S. Genetic factors influencing the regeneration ability of rye (Secale cereal L.) II. immature embryos // Euphytica. 1995. -Vol. 83.-P. 233−239.
  181. Rashid H., Yokoi S., Toriyama K., Hinata K. Transgenic plant production mediated by Agrobacterium in indica rice // Plant Cell Rep. 1996. — Vol. 15. -P. 727−730.
  182. Regensburg-Tuink A.J.G., Hooykaas P.J.J. Transgenic N. glauca plants expressing bacterial virulence gene virF are converted intohosts for nopaline strains of A. tumefaciens II Nature. 1993. — Vol. 363. — P. 69−71.
  183. Roeckel P., Heizmann P., Dubois M., Duma C. Attempts to transform Zea mays via pollen grains. Effect of pollen and stigma nuclease activities // Sex. Plant. Reprod. -1988.-Vol. l.-P. 156−163.
  184. Rollo F., Galli M.G., Parisi B. Liposome-mediated transfer of DNA to carrot protoplasts: a biochemical and autoradiographic analysis // Plant Sci. Lett. 1981. -Vol. 20.-P. 347−354.
  185. Rossi L., Hohn B., Tinland B. Integration of complete transferred DNA units is dependent on the activity of virulence E2 protein of Agrobacterium tumefaciens II Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1996. — Vol. 93. — P. 126−130.
  186. Rout J. R., Lucas W.J. Characterization and manipulation of embryogenic response from in vitro cultured immature inflorescences of rice (Oryza sativa L.) // Planta. -1996.-Vol. 198.-P. 127−138.
  187. Rubin R. A. Genetic studies on the role of octopine T-DNA border regions in crown gall tumor formation // Mol. Gen. Genet. 1986. — Vol. 202. — P. 312−320.
  188. Sanford J.C., Skubik K.A., Reisch B.I. Attempted pollen-mediated plant transformation employing genomic donor // Theor. Appl. Genet. — 1985. Vol. 69. -P. 571- 574. DNA
  189. Satoh R., Nakashima K., Seki M. ACTCAT, a novel cis-acting element for proline- and hypoosmolarity-responsive expression of the ProDH gene encoding proline dehydrogenase in Arabidopsis. 11 Plant Physiol. 2002. — Vol. 130. — P. 709−719.
  190. Schafer W., Gorz A., Kahl G. T-DNA integration and expression in a monocot crop plant after induction of Agrobacterium 11 Nature. 1987. — Vol. 327. — P.529−532.
  191. Schnorf M., Neuhaus-Url G., Galli A., lida S., Potrykus I., Neuhaus G. An improved approach for transformation of plant cells by microinjection: molecular and genetic analysis // Transgenic Research. 1991. — Vol. 1, № 1 — P. 23−30.
  192. Schroder G., Waffenschmidt S., Weiler E., Schroder V. The T-region of Ti plasmids codes for an enzyme synthesizing indole-3-acetic acid // Eur. J. Biochem. -1984.-Vol. 138.-P. 387−391.
  193. Shen W.H., Escudero J., Schlappi M. T-DNA transfer to maize cells: histochemical investigation of beta-glucuronidase activity in maize tissues // Proc. Natl Acad Sci USA. 1993. — Vol. 90. — P. 1488−1492.
  194. Shimoda N., Toyoda-Yamamoto A., Nagamine J. Control of expression of Agrobacterium vir genes by synergestic actions of phenolic signal molecules and monosaccharids I I Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1990. — Vol. 87. — P.6684−6688.
  195. Slogteren G., Hoyokaas P.J.J., Schilperoort R.A. Expression of Ti plasmid genes in monocotyledonous plants infected with Agrobacterium tumefaciens II Nature. 1984. -Vol. 311.-P. 763−764.
  196. Somers D.A., Rines H.W., Gu W., Kappler H.F., Bushnell W.R. Fertile, transgenic oat plants // Biotechnology. 1992. — Vol. 10. — P. 1589−1594.
  197. Songstad D.D., Armstrong C.L., Petersen W.L., Hairston B. Production of transgenic maize plants and progeny by bombardment of Hi-II immature embryos // In Vitro Cell Dev. Biol. Plant. 1996. — Vol. 32. — P. 179−183.
  198. Songstad D.D., Somers D.A., Griesbach R.J. Advances in alternative DNA delivery techniques // Plant Cell Tissue Org. Cult. 1995. — Vol. 40. — P. 1−15.
  199. Stachel S.E., Messens E., van Montagu M., Zambryski P. Identification of the signal molecules produced by wounded plant cells that activate T-DNA transfer in Agrobacterium tumefaciens II Nature. 1985. — Vol. 318. — P. 624−629.
  200. Stachel S.E., Nester E.W., Zambryski P.C. A plant cell factor induces Agrobacterium tumefaciens vir gene expression // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1986. -Vol. 83.-P. 379−383.
  201. Stachel S.E., Zambryski P.C. Vir A and virG control the plantinduced activation of the T-DNA transfer process of A. tumefaciens II Cell. 1986. — Vol. 46. — P. 325−333.
  202. Staub J.M., Garcia B., Graves J., Hajdukiewicz P.T.J., Hunter P., Nehra N. High-yield production of a human therapeutic protein in tobacco chloroplasts // Nature Biotechnology:-2000.-Vol. 18.-P. 333−338.
  203. Stoger E., Benito Moreno R. M., Ylstra B. Comparison of different techniques for gene transfer into mature and immature tobacco pollen // Transgenic Research. -1992.-Vol. 1.-P. 71−78.
  204. Sudan C., Prakash S., Bhomkar P., Jain S., Bhalla-Sarin N. Ubiquitous presence of-glucuronidase (gus) in plants and its regulation in some model plants // Planta. -2006. Vol. 224. — P. 853−864.
  205. Sundberg C.D., Meek L., Carroll K., Das A., Ream W. VirEl protein mediated export of the single-stranded DNA binding protein VirE2 from Agrobacterium tumefaciens into plant cells II J.Bacteriol. 1996. — Vol. 178, № 4. — P. 1207−1212.
  206. Sykes L.C., Matthysse A.G. Time required for tumor induction by Agrobacterium tumefaciens. II Appl. Environm. Microbiol. 1986. — Vol. 52, № 3. -P. 597−598.
  207. Sawada H., Ieki H., Matsuda I. PCR detection of Ti and Ri plasmids from phytopathogenic Agrobacterium strains 11 Appl. Environ. Microbiol. 1995. — Vol. 61. -P. 828−831.
  208. Tague B.W., Mantis J. In Planta Agrobacterium-mediated transformation by vacuum infiltration // Methods Mol. Biol. 2006. — Vol. 323. — P. 215−223.
  209. Tang K., Wu A., Yao J., Qi H., Lu X. Development mediated transformation and genetic analysis based selection // Acta Biotech. — 2000. — Vol. 20. — P. 175−183.
  210. Tempe J., Petit A., Holsters M., Montagu M., Shell J. Termosensivity step associated with transfer of the Ti plasmid during conjugation possible relation to transformation in crown gall // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1977. — Vol. 711. -P. 2848−2849.
  211. Tepfer D. Transformation of several species of higher plants by Agrobacterium tumefaciens: sexual transmission of the transformed genotype and phenotype // Cell. — 1984.-Vol. 37.-P. 959−967.
  212. Thomashow M.F., Hugly S., Buchholz W.G., Reeves S., Thomashow L.S. Molecular basis for the auxin-independent phenotype of crown gall tumor tissues // Science. 1986.-Vol. 231.-P. 616−618.
  213. Thompson C.J., Mowa N.R., Tizard R., Crameri R., Davies J.E., Lauwereys M., Botterman J. Characterization of the herbicide-resistance gene bar from Streptomyces hygroscopicus IIEMBO J. 1987. — Vol. 6. — P. 2519−2523.
  214. Tian L., Levee V., Mentag R., Charest P. J., Seguin A. Green fluorescent protein as a tool for monitoring transgene expression in forest tree species // Tree Physiology. -1999.-Vol. 19.-P. 541−546.
  215. Tingay S., McElroy D., Kalla R., Fieg S., Wang M. Brettel R. Agrobacterium-mediated barley transformation // Plant J. 1997. — Vol. 11. — P. 13 691 376.
  216. Tinland B. The integration of T-DNA into plant genomes // Trends of Plant Science/- 1996.-Vol. 1.-P.178−184.
  217. Toro N., Datta A., Carmi O.A., Young C., Prusti R.K., Nester E.W. The Agrobacterium tumefaciens virCl gene product binds to overdrive, a T-DNA transfer enhancer// J. Bacteriol. 1989. — Vol. 171. — P. 6845−6849.
  218. Toro N., Datta A., Yanofsky M., Nester E. W Role of the overdrive sequence in T-DNA border cleavage in Agrobacterium II Proc. Natl. Acad. Sci. USA. — 1988. -Vol. 85.-P. 8558−8562.
  219. Urushibara S., Tozawa Y., Kawagishi-Kobayashi M., Wakasa K. Efficient transformation of suspension-cultured rice cells mediated by Agrobacterium tumefaciens II Breed. Sci.-2001.-Vol. 5.-P. 33−38.
  220. Van Haaren M.J.J., Sedee N.J.A, de Boer H.A., Schilperoort R.A., Hooykaas P.J.J. Bidirectional transfer from a 24 bp border repeat of Agrobacterium tumefaciens. Nucleic Acids Res. 1988. — Vol. 16. — P. 10 225−10 236.
  221. Veluthambi K., Ream W., Gelvin S.B. Virulence genes, borders, and overdrive generate single-stranded T-DNA molecules from the A6 Ti plasmid of Agrobacterium tumefaciens // J. Bacteriol. 1988. — Vol. 170. — P. 1523−1532.
  222. Volokhina I.V., Sazonova I.A., Velikov V.A., Chumakov M.I. Isolation, purification, and identification of the virulence protein VirE2 from Agrobacterium tumefaciens II Microbiol. Research. 2005. — V.160. — P. 167−178.
  223. Wagner V., Matthysse A.G. Involvement of a vitronectin-like protein in ttachment of Agrobacterium tumefaciens to carrot suspension culture cells // J.Bacteriol. — 1992.-Vol. 174, № 18. -P. 5999−6003.
  224. Wallroth M., Gerats A.G.M., Rogers S.G., Fraley R. T., Horsch R. Chromosomal localization of foreign genes in Petunia hybrida // Mol. Gen. Genet. -1986.-Vol. 202.-P. 6−15.
  225. Wan Y., Lemaux P.G. Generation of large numbers of independently transformed fertile barley plants II Plant Physiol. 1994. — Vol. 104. — P. 37−48.
  226. Wan Y., Widholm J.M., Lemaux P.G. Type I callus as a bombardment target for generating fertile transgenic maize (Zea mays L.) // Plant J. 1995. — Vol. 196. — P. 7−14.
  227. Wang K., Drayton P., Frame B., Dunwell J., Thompson J. Whisker-mediated plant transformation: an alternative technology // In Vitro Cell Dev. Biol. 1995. -Vol. 31.-P. 101−104.
  228. Wang K., Herrera-Estrella L., Van Montagu M., Zambryski P. Right 25 bp terminus sequence of the nopaline T-DNA is essential for and determines direction of DNA transfer from Agrobacterium to the plant genome // Cell. 1984. — Vol. 38. -P. 455−462.
  229. Wang K., Stachel S.E., Timmerman B., Van Montagu M., Zambryski P.C. Site-specific nick in the T-DNA border sequence as a result of Agrobacterium vir gene expression// Science. 1987. — Vol. 235. — P. 587−591.
  230. Ward E.R., Barnes W.M. VirD2 protein of A. tumefaciens very tightly linked to the 5'end of T-strand DNA // Science. 1988. — Vol. 242. — P.927−930.
  231. Watson B., Currier T.C., Gordon M.P., Chilton M.D., Nester E.W. Plasmid required for virulence of Agrobacterium tumefaciens 11 J. Bacteriol. — 1975. Vol. 123. -P. 255−264.
  232. Weeks I.T., Anderson J.D., Blechl A.E. Rapid production of multiple independent line of fertile transgenic wheat (Triticum aestivum) // Plant Physiol. — 1993. -Vol. 102.-P. 1077−1084.
  233. Wenck A. R., Quinn M., Whetten R.W., Pullman G., Sederoff R. High efficiency Agrobacterium-mediated transformation of Norway spruce (Picea abies) and loblolly pine {Pinus taeda) II Plant Mol. Biol. 1999. — Vol. 39. — P. 407−416.
  234. White P., Braun A.C. A Cancerous neoplasm of plants. Autonomous bacteria-free crown-gall tissue // Cancer Res. 1942. — Vol. 2. — P. 597−617.
  235. Willmitzer L., Simons G., Schell J. The TL-DNA in octopine crown-gall tumors codes for 7 well-defined polyadenylated transcripts 1982 // EMBO J. Vol. 1. -P. 139−146.
  236. Winans S.C., Kerstetter R.A., Nester E.W. Transcriptional regulation of the virA and virG genes of Agrobacterium tumefaciens II J.Bacteriol. 1988. — Vol. 170. -P. 4047−4054.
  237. Wu H., Sparks C., Amoah B., Jones H.D. Factors influencing successful Agrobacterium-mediated genetic transformation of wheat // Plant Cell Rep. 2003. -Vol. 21.-P. 659−668.
  238. Wu H.M., Wang H., Cheung A.Y.A Pollen tube growth stimulatory glycoprotein is deglycosylated by pollen tubes and displays a glycosylation gradient in the flower// Cell. 1995. — Vol. 82. — P. 395−403.
  239. Yang A., Su Q., An L. Ovary-drip transformation: a simple method for directly generating vector- and marker-free transgenic maize {Zea mays L.) with a linear gfp cassette transformation // Planta. 2009. — Vol. 229. — P. 793−801.
  240. Yanofsky M.F., Lowe B., Montoya A., Rubin R., Krul W., Gordon M., Nester E.W. Molecular and genetic analysis of factors controlling hostrange in Agrobacterium tumefaciens II Mol. Gen. Genet. 1985. — Vol. 201. — P. 237−246.
  241. Yanofsky M.F., Nester E.W. Molecular characterization of a host-range-determining locus from Agrobacterium tumefaciens 11 J. Bacteriol. 1986. — Vol. 168. — P. 244−250.
  242. Ye G.N., Stone D., Pang S.Z., Creely W., Gonzalez K., Hinchee M. Arabidopsis ovule is the target for Agrobacterium in planta vacuum infiltration transformation // The Plant J. 1999. — Vol. 19. — P. 249−257.
  243. Yusibov V.M., Steck T.R., Gupta V., Gelvin S.B. Association of single-strand transferred DNA from Agrobacterium tumefaciens with tobacco cells // Proc. Natl. Acad. USA. 1994. — Vol. 91. — P. 2994−2998.
  244. Zaenen L., Van Larebeke N., Teuchy H., Van Montagu M., Schell J. Supercoiled circular DNA in crown gall inducing Agrobacterium strains // J. Mol. Biol. — 1974.-Vol. 86.-P. 109−127.
  245. Zale J.M., Agarwal S., Loar S., Steber C.M. Evidence for stable transformation of wheat by floral dip in Agrobacterium tumefaciens II Plant Cell Rep. 2009. — Vol. 28. -P. 903−913.
  246. Zambrysky P., Depicker A., Kruger k., Goodman H.M. Tumor induction by A. tumefaciens: analysis of the bordaries of T-DNA // J. Mol. Appl. Genet. 1982. -Vol. 1.-P. 361−370.
  247. Zhang F.L., Takahata Y., Watanabe M. Agrobacterium-mediated transformation of cotyledonary explants of chined cabbage (Brassica campestris L. ssp. pekinensis) // Plant Cell Rep.-2000.-Vol. 19.-P. 569−575.
  248. Zhang H.M., Yang H., Rech E.L., Golds T.J., Davis A.S., Mulligan B.J., Cocking E.C., Davey M.R. Transgenic rice plants produced by electroporation mediated plasmid uptake into protoplasts // Plant Cell Rep. 1988. — Vol. 7. — P. 379−383.
  249. Zhao Z.Y., Cai T., Tagliani L., Miller M., Wang N., Pang H., Rudert M., Schroeder S., Hondred D., Seltzer J., Pierce D. Agrobacterium mediated sorghum transformation // Plant Mol. Biol. 2000. — Vol. 44. — P. 789−798.
  250. Zhou F.Y., Wang G.Y., Xie Y.J., Cui H.Z., Guo S. D, Dai J.R. Establishment of a genetic-transformation system for maize inbred P9−10 // Chin. Sci. Bull. 1999. -Vol. 44. — P. 624−627.
  251. Zhu Z., Sun B., Liu C., Xiao G., Li X. Transformation of wheat protoplasts mediated by cationic liposome and regeneration of transgenic plantlets // Chin. J. Biotech. 1993.-Vol. 9. — P. 257−261.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!