Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Стресс-реакции пресноводных амфипод в условиях гипертермии и при интоксикации ксенобиотиками

Диссертация: Стресс-реакции пресноводных амфипод в условиях гипертермии и при интоксикации ксенобиотиками
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Глобальные климатические изменения являются еще одним источником опасности для водных экосистем. Причины, лежащие в основе изменения климата, активно обсуждаются мировым научным сообществом, но сам факт изменений неоднократно подтвержден проведенными научными исследованиями. Так, например, по данным «Межгосударственной группы экспертов по изменению климата ООН» (МГЭИК), средняя температура… Читать ещё >

Содержание

  • ОБОЗНАЧЕНИЯ И СОКРАЩЕНИЯ
  • 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Стратегии адаптации организмов к стрессовым факторам
    • 1. 2. Ксенобиотики в водных экосистемах
      • 1. 2. 1. Токсичность ксенобиотиков для гидробионтов
      • 1. 2. 2. Воздействие тяжелых металлов на гидробионтов
      • 1. 2. 3. Воздействие гуминовых веществ на гидробионтов
    • 1. 3. Температура как фактор среды
      • 1. 3. 1. Воздействие температуры на гидробионтов
    • 1. 4. Ключевые механизмы клеточной стресс-резистентности
      • 1. 4. 1. Система детоксикации ксенобиотиков. Механизм множественной резистентности к ксенобиотикам
        • 1. 4. 1. 1. Конъюгация с глутатионом
        • 1. 4. 1. 2. Роль ABC — транспортеров в механизме множественной резистентности к ксенобиотикам
        • 1. 4. 1. 3. Р-гликопротеин. Основные свойства, функции и механизм работы
        • 1. 4. 1. 4. MXR и Р-гликопротеин как биомаркер состояния водоёмов
      • 1. 4. 2. Белки теплового шока (БТШ)
        • 1. 4. 2. 1. Классификация БТШ
        • 1. 4. 2. 2. Функции БТШ
        • 1. 4. 2. 3. Функциональная роль БТШ в защите гидробионтов от токсического воздействия
        • 1. 4. 2. 4. Функциональная роль БТШ в защите гидробионтов при температурном воздействии
    • 1. 5. Фауна Байкала как уникальный объект для экофизиологических исследований
      • 1. 5. 1. Биоразнообразие, вопросы эволюции и явление несмешиваемости
      • 1. 5. 2. История исследований механизмов адаптации к абиотическим факторам среды у эндемичных гидробионтов оз. Байкал
    • 1. 6. выводы из обзора литературы. постановка цели и задач исследования. положения, ~ выносимые на защиту
  • 2. ОБЪЕКТ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. объект исследования
      • 2. 1. 1. Систематика и экология изучаемых видов
      • 2. 1. 2. Сравнительные уровни термо- и гоксикорезистентности изучаемых видов
      • 2. 1. 3. Методика сбора и содержания амфипод
    • 2. 2. методы проведения экспериментов
      • 2. 2. 1. Эксперименты по оценке выводящей активности Р-гликопротеина у амфипод
      • 2. 2. 2. Эксперименты по оценке воздействия хлорида кадмия на амфипод
      • 2. 2. 3. Эксперименты по оценке воздействия препарата HS1500 на амфипод
      • 2. 2. 4. Эксперименты по оценке воздействия гипертермии на амфипод
    • 2. 3. Методы биохимического анализа
      • 2. 3. 1. Определение содержания родамина С в тканях амфипод
      • 2. 3. 2. Определение активности фермента глутатион S-трансферазы
        • 2. 3. 2. 1. Подготовка образцов
        • 2. 3. 2. 2. Определение активности глутатион S-транферазы
        • 2. 3. 2. 3. Определение концентрации общего белка по методу Бредфорд
      • 2. 3. 3. Определение содержания белков теплового шока
        • 2. 3. 3. 1. Выделение общего белка
        • 2. 3. 3. 2. Определение концентрации общего белка по методу Лоури
        • 2. 3. 3. 3. Электрофорез белков в полиакриламидном геле
        • 2. 3. 3. 4. Иммуноблоттинг
    • 2. 4. Методы молекулярного анализа
      • 2. 4. 1. Выделение общей РНК, очистка мРНК. Обратная транскрипция
      • 2. 4. 2. Определение нуклеотидной последовательности генов бтш70, P-gp и fi-актина
        • 2. 4. 2. 1. Полимеразная цепная реакция (ПЦР)
        • 2. 4. 2. 2. Очистка ПЦР продукта из агарозного геля
        • 2. 4. 2. 3. Клонирование ПЦР продукта в клетках Е. col
        • 2. 4. 2. 4. Подготовка плазмид для секвенирования
        • 2. 4. 2. 5. Секвенирование и анализ полученных нуклеотидных последовательностей генов
        • 2. 4. 2. 6. Быстрая амплификация концов кДНК (RACE)
      • 2. 4. 3. Количественная ПЦР в реальном времени (кПЦР)
    • 2. 5. Расчет и статистическая обработка данных
  • 3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
    • 3. 1. Изменение выводящей активности Р-гликопротеина у байкальских и палеарктических амфипод в условиях воздействия стрессовых факторов
      • 3. 1. 1. Изменение выводящей активности Р-гликопротеина у амфипод, экспонированных при температуре 25 °С
      • 3. 1. 2. Изменение выводящей активности Р-гликопротеина у амфипод, экспонированных в растворах CdCl
      • 3. 1. 3. Изменение выводящей активности Р-гликопротеина у амфипод, экспонированных в растворах HS
    • 3. 2. Изменение активности глутатион S-трансферазы у амфипод вида G. lacustris в условиях воздействия стрессовых факторов
      • 3. 2. 1. Изменение активности глутатион S-трансферазы у амфипод вида G. lacustris, экспонированных при температуре 25°С
      • 3. 2. 2. Изменение активности глутатион S-трансферазы у амфипод вида G. lacustris, экспонированных в растворах CdCl
      • 3. 2. 3. Изменение активности глутатион S-трансферазы у амфипод вида G. lacustris, экспонированных в растворах HS
    • 3. 3. Изменение содержания белков теплового шока семейства БТШ70 у байкальских и палеарктических амфипод в условиях воздействия стрессовых факторов
      • 3. 3. 1. Изменение содержания белков теплового шока семейства БТШ70 у амфипод, экспонированных при температуре 25°С
      • 3. 3. 2. Изменение содержания белков теплового шока семейства БТШ70 у амфипод, экспонированных в растворах CdCl
      • 3. 3. 3. Изменение содержания белков теплового шока семейства БТШ70 у амфипод, экспонированных в растворах HS
    • 3. 4. Изменение экспрессии генов бтш70 у байкальских и палеарктических амфипод в условиях воздействия стрессовых факторов.1 о
      • 3. 4. 1. Изменение экспрессии генов бтш70 у амфипод, экспонированных при температуре 25°С
      • 3. 4. 2. Изменение экспрессии генов 6тш70 у амфипод, экспонированных в растворах CdCl
      • 3. 4. 3. Изменение экспрессии генов бтш70 у амфипод, экспонированных в растворах HS
    • 3. 5. Изменение экспрессии генаР-сру палеарктического G. lacustris в условиях воздействия стрессовых факторов
      • 3. 5. 1. Изменение экспрессии гена I'-gp у амфипод вида G. lacustris, экспонированных при температуре 25°С
      • 3. 5. 2. Изменение экспрессии генаР-gp у амфипод вида G. lacustris, экспонированных в растворах CdCl2. ПО
      • 3. 5. 3. Изменение экспрессии TQH&P-gp у амфипод вида G. lacustris, экспонированных в растворах HS
    • 3. 6. Общее обсуждение
  • ВЫВОДЫ

Стресс-реакции пресноводных амфипод в условиях гипертермии и при интоксикации ксенобиотиками (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Живые организмы постоянно сталкиваются с изменениями условий окружающей среды, в том числе и с большим количеством негативных воздействий, ведущих к угнетению жизненных функций. Изменения факторов окружающей среды вызывают в организме серию защитных реакций, в первую очередь действующих на поведенческом уровне. В случае если организм не способен избежать негативного воздействия, включается серия взаимосвязанных процессов, как на уровне отдельных клеток, так и на уровне биологических молекул, что дает ему возможность эффективно справляться с последствиями стрессового воздействия и выживать в новых условиях. Способность организмов противостоять различным стрессовым воздействям получила название стресс-адаптации (Тимофеев, 2010).

В настоящее время развитие всех без исключения отраслей промышленности ведет к возрастающей антропогенной нагрузке на водные экосистемы. Загрязнение окружающей среды является неотъемлемым последствием индустриального развития общества. Загрязнение ксенобиотиками, в том числе и токсическими, представляет собой наиболее распространенный вид антропогенного загрязнения пресноводных водоемов (ОкёуБЬеу & а1., 2001; Сатаг§ о & а1., 2006; СЬшко, 2007). Накопление токсических веществ в среде обитания крайне отрицательно влияет на гидробионтов, поскольку приводит к нарушению стабильности условий их существования.

В то же время, следует учесть тот факт, что большинство организмов в ходе своей эволюции не успели сформировать высокоэффективные механизмы защиты от токсического воздействия загрязняющих веществ антропогенной природы. Поэтому в защите организмов от интоксикации современными ксенобиотиками принимают участие уже существующие неспецифические механизмы резистентности к неблагоприятным условиям среды.

Глобальные климатические изменения являются еще одним источником опасности для водных экосистем. Причины, лежащие в основе изменения климата, активно обсуждаются мировым научным сообществом, но сам факт изменений неоднократно подтвержден проведенными научными исследованиями. Так, например, по данным «Межгосударственной группы экспертов по изменению климата ООН» (МГЭИК), средняя температура поверхности Земли за последние 100 лет повысилась на 0,7°С. Другие исследователи прогнозируют повышение средней температуры поверхности Земли в следующем столетии на величину от 1,1 до 6,4°С (Kerr, 2005). Изменение температурного режима водоема приводит к смене ключевых параметров среды обитания, таких как газовый режим и растворимость веществ, в том числе и токсических компонентов, поступающих в водоем с грунтовыми и сточными водами. Известно, что повышение температуры воды может усугубить негативное влияние ксенобиотиков на водные организмы (Rehwoldt et al., 1972; Heugens et al., 2003). В настоящее время большую актуальность приобретают исследования, направленные на изучение стресс-реакции у водных организмов в условиях температурного и токсического стрессовых воздействий.

Недостаточная изученность развития стресс-реакции гидробионтов затрудняет оценку и прогнозирование последствий антропогенного воздействия на водные экосистемы. Особенно это актуально для уникальных древних пресноводных экосистем, эволюционное развитие фауны которых длительное время происходило в стабильных и изолированных условиях и, следовательно, могло привести к развитию специфических механизмов стресс-резистентности.

Примером такой уникальной древней экосистемы является озеро Байкал. Фауна Байкала представлена огромным количеством эндемичных видов, которые длительное время эволюционировали в специфических и стабильных условиях среды, таких как: низкая минерализация воды, высокое содержание кислорода, низкие температуры и большие глубины. В настоящее время в результате хозяйственного освоения Байкальского региона происходит непрерывное поступление токсических веществ в озеро. Основными источниками загрязнения озера являются Байкальский целлюлозно-бумажный комбинат, промышленные объекты г. Северобайкальска и сельскохозяйственные стоки в реку Селенгу. Благодаря высокоэффективной системе биологического самоочищения озера вредные вещества не получают значительного распространения от источника загрязнения. Однако в локальных участках озера содержание токсических веществ может превышать допустимые значения, что в свою очередь может приводить к развитию стрессового ответа у организмов (Efremova, 2002).

Помимо токсического загрязнения, для озера Байкал существует угроза со стороны глобальных климатических изменений в виде повышения температуры воды, что может негативно отразиться на жизнедеятельности гидробионтов. Так, в ряде публикаций показано, что глобальные климатические изменения уже отразились на структуре планктонных сообществ озера Байкал (Kozhova, 1987; Поповская, 1989; Bondarenko, 1999; Hampton et al., 2008). Климатические изменения и увеличивающаяся антропогенная нагрузка на озеро могут привести к изменениям и в других сообществах озера, в частности, бентосных. Одной из уникальных и ключевых фаунистических бентосных групп озера является группа байкальских амфипод. Данная группа насчитывает более 300 видов и подвидов, которые населяют все глубины озера (Тахтеев, 2000). Каждой зоне глубин и каждому виду грунта соответствует свой уникальный комплекс видов. В своем большинстве байкальские амфиподы, узко приспособленные к условиям зон их обитания, негативно переносят отклонения от этих условий. У ряда видов отмечены крайне слабые резистентные способности (Тимофеев, 2010). Таким образом, фауна амфипод озера Байкал представляет собой особый интерес для изучения спектра механизмов стресс-адаптации (Тимофеев, 2010).

Данная работа направлена на сравнительное изучение особенностей стресс-реакции при температурном и токсическом стрессовых воздействиях у байкальских эндемичных организмов и их палеарктических аналогов.

Сравнительное исследование байкальских и палеарктических организмов необходимо для выявления специфических особенностей функционирования защитных механизмов у байкальских эндемиков, а также для более полного понимания того, как факторы окружающей среды и длительная изоляция могут воздействовать на формирование защитных систем у гидробионтов в целом.

1 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

выводы.

1. Экспонирование амфипод в растворах хлорида кадмия (5 мг/л) и в растворах низкомолекулярного гуминсодержащего препарата Н81 500 (10 мг/л РОУ) ведет к ингибированию функциональной активности мембранного белка переносчика Р-гликопротеина у всех исследованных видов. В условиях гипертермии (25°С) происходит усиление активности Р-гликопротеина у байкальских видов, в то время как у палеарктического С. 1аст1г1 $ данная активность не изменяется.

2. Экспонирование палеарктического С. acustris в растворах хлорида кадмия (5 мг/л) приводит к увеличению активности фермента глутатион Б-трансферазы, напротив, экспонирование амфипод в растворах низкомолекулярного гуминсодержащего препарата Ш1500 (10 мг/л РОУ) и в условиях гипертермии (25°С) на активность фермента не влияет.

3. Экспонирование токсикочувствительных видов амфипод в растворах хлорида кадмия (5 мг/л) ведет к увеличению содержания БТШ70, в то время как у токсикорезистентных видов уровень данного белка не увеличивается. Экспозиция амфипод в растворах низкомолекулярного гуминсодержащего препарата Н81 500 (10 мг/л РОУ) не ведет к изменениям содержания БТШ70 у байкальских видов, однако вызывает увеличение содержания БТШ70 у палеарктического (7. acustris.

4. У всех видов амфипод, экспонированных в растворах хлорида кадмия (5 мг/л), происходит увеличение уровня экспрессии генов бтш70, кодирующего белок БТШ70. При экспонировании амфипод в растворах низкомолекулярного гуминсодержащего препарата Ш1500 (10 мг/л РОУ) наблюдается снижение уровня экспрессии генов бтш70 у байкальских амфипод и увеличение уровня экспрессии у палеарктического О. 1астЬч$.

5. В условиях гипертермии (25°С) происходит увеличение содержания БТШ70, а также рост уровня экспрессии генов бтш70 у всех исследованных видов, при этом у термочувствительных амфипод реакция происходит раньше, чем у терморезистентных.

6. В условиях гипертермии (25°С) и при экспонировании в растворах хлорида кадмия (5 мг/л) происходит рост уровня экспрессии гена Р^р, кодирующего белок Р-гликопротеин, у всех видов амфипод. Экспонирование в растворах низкомолекулярного гуминсодержащего препарата Н81 500 (10 мг/л РОУ) не оказывает влияния на уровень экспрессии гена Р-%р амфипод.

Показать весь текст

Список литературы

  1. А.И. Пероксид-зависимое окисление субстратов полусинтетическим флавоцитохромом 2В4 / А. И. Арчаков, В. В. Шумянцева, Ю. Л. Авдеенко, Т. Л. Москвитинв, А. Н. Осипов, Т. В. Булко // Вопросы медицинской химии. 1998. -№ 4. — С. 369−375.
  2. .К. Влияние клеточной трансплантации на индукцию белков теплового шока в поврежденном сердце / Б. К. Бадуев, Г. Б. Боровский, В. К. Войников, и др.// Клеточные технологии в биологии и медицине. 2009. — № 3. — С. 149 -153.
  3. А. Я. Амфиподы оз. Байкал / А. Я. Базикалова // Труды Байкальской Лимнологической станции АН СССР. 1945. — Т. 11. — 440 с.
  4. А. Я. Об амфиподах реки Ангары / А. Я. Базикалова // Труды Байкальской Лимнологической станции. 1957. — Т. XV. — С. 377 — 387.
  5. Д.С., Ингибирование пероксидазы при интоксикации солями кадмия / Д. С. Бедулина, Ж. М. Шаталина // Вестник Российского государственного медицинского университета. М.: РГМУ, 2005. — № 3 (42). — С. 156.
  6. Д.С. Влияние температурного фактора на биохимические и клеточные механизмы резистентности у байкальских и палеарктических амфипод / Д. С. Бедулина // Дисс. кан. биол. наук. Борок, 2009. — 163 с.
  7. М.Ю. Биология и продукционные возможности некоторых байкальских и сибирских бокоплавов / М. Ю. Бекман, А. Я. Базикалова // Тр. Труды Байк. Лимн. Ст. АН СССР. 1954. — Т. XIV. — С. 268 -311.
  8. М.Ю. Биология Gammarus lacustris Sars в прибайкальских озерах: Тр. Байкальской лимнологической станции АН СССР / М. Ю. Бекман. 1954. — Т. XIV.-С. 268 -311.
  9. М.Ю., Деньгина P.C. Население бентали и кормовые ресурсы рыб Байкала // Биологическая продуктивность водоемов Сибири. М., 1969. — С. 4247.
  10. JI. С. Климат и жизнь / JI. С. Берг. М.: Госиздат, 1922. — С. 28 — 53.
  11. Л.С. Рыбы пресных вод СССР и сопредельных стран / JI.C. Берг. Л.: Изд-во АН СССР. — 1949. — Т. 2. — С. 469−929.
  12. А.Е. Влияние высокоминерализованных вод на почвенно-растительный покров в районах нефтедобычи / А. Е. Березин, В. А. Базанов, Т. А. Минеева и др. // Вестник ТГУ. 2008. — № 306. — С. 142 — 148.
  13. H.A. Межвидовые взаимодействия амфипод Gammarus lacustris и Gmelinoides fasciatus / H.A. Березина//Экология. 2009. — T. 2. — С. 91−95.
  14. Я.А. Высшие раки (Malacostrata) / Я. А. Бирштейн // Жизнь пресных вод. 1940.-Т. 1.-С. 405−430.
  15. С. В. Фармакология препаратов гуминовых веществ и их применение для повышения резистентности и продуктивности животных: Дис. д-ра вет. наук: 16.00.04 / C.B. Бузлама. Воронеж, 2008. — 361 с.
  16. Г. В. Болезни рыб: Справочник /Г. В. Васильков, Л. И. Грищенко, В. Г. Енгашев и др.- Под ред. В. С. Осетрова. Москва, 1989. — 287 с.
  17. И.В. Сообщества макрозообентоса каменистого пляжа озера Байкал: Дис. канд. биол. наук / И. В. Вейнберг. Иркутск, 1995. — 180 с.
  18. И.В., Камалтынов P.M. Сообщества макрозообентоса каменистого пляжа озера Байкал / И. В. Вейнберг, P.M. Камалтынов // Зоологический журнал. 1998. -1.11. — № 3. — С.259 — 265.
  19. В.Б. 2009. Тепловая и соленостная устойчивость эврибионтного бокоплава Gmelinoides fasciatus (Stebbing) при разных условиях акклимации/ В. Б. Вербицкий, H.A. Березина // Журнал общей биологии. 2009. — Т. 70, № 3.- С. 249−256.
  20. Г. Ю. Два типа биологических комплексов Байкала / Г. Ю. Верещагин // Тр. Байкальской лимнологической станции АН СССР. 1935. — Т. 6.-С. 113−140.
  21. Л.И. Стрессоры, стрессы и выживаемость бактерий (обзор) / Л. И. Воробьева // Прикладная биохимия и микробиология. 2004. — Т. 40, № 3. — С. 261−269.
  22. Г. Б. К вопросу о времени размножения амфипод и изопод оз. Байкал / Г. Б. Гаврилов // Докл. АН СССР. 1949. — T. LXIV, № 5. — С.139 — 742.
  23. Г. И. Байкал в вопросах и ответах / Г. И. Галазий. Иркутск: Восточно -Сибирское книжное изд-во, 1987. — 384 с.
  24. Т.А. Термоустойчивость некоторых байкальских ракообразных / Т. А. Гиль // Биоразнообразие Байкальского региона: Тр. биол.-почвенного ф-та ИГУ. Иркутск: Изд-во Иркут. ун-та, 2000. — Вып.2. — С. 104.
  25. И.И. Амфиподы пресных и солоноватых вод юго-запада СССР / И. И. Дедю // Кишинев: Штиинца, 1980. — 221с.
  26. Т.А. Температурно-временные закономерности развития пойкилотермных животных / Т. А. Детлаф М.: Наука, 2001. — 211 с.
  27. Н. В. Окислительный стресс, индуцируемый кадмием, в тканях двустворчатого моллюска Modiolus modiolus / H.B. Довженко, A.B. Куриленко, H.H. Бельчева, и др. //Биология моря. 2005. — Т. 31, № 5. — С. 358−362.
  28. Ербаева Э. A. Gammarus lacustris Sars водоемов восточной Сибири / Э. А. Ербаева, Г. П. Сафронов // Вид и его продуктивность в ареале: Материалы V Всесоюз. Совещ. Вильнюс, 1988. — С. 239 — 240.
  29. К. Н. Что такое химическая экотоксикология / К. Н. Зеленин // Соросовский образовательный журнал. 2000. — Т.6, № 6. — С. 32−36.
  30. А.Г. Стрессовые условия среды и генетическая изменчивость в популяциях животных / А. Г. Имашева // Генетика. 1999. — Т. 35, № 4. — С.421−431.
  31. В.А. Введение в химическую экотоксикологию / В. А. Исидоров. -СПб., Химиздат, 1999. 144 с.
  32. Н.И. Токсикологическая химия. Метаболизм и анализ токсикантов / Под ред. Н. И. Калетиной. М.: Гэотар-медиа, 2008. — 1016 с.
  33. P.M. Сообщества амфипод Юга Байкала и их изменение под воздействие сточных вод Байкальского целлюлозно-бумажного комбината. -Авторефер. дис. канд. биол. наук: 03.00.16 / P.M. Камалтынов. Иркутск, 1970.-34 с.
  34. P.M. Токсикологическая устойчивость амфипод / Р. М Камалтынов // Экология Южного Байкала. Иркутск, 1983. — С. 251−262.
  35. А. Г. Влияние нефтяного загрязнения на популяцию раковинных амёб // А. Г. Карташев, Т. В. Смолина // Известия Томского политехнического университета. 2006. — Т. 309, № 8. — С. 185−187.
  36. К.А. Индукция анаэробных процессов при гипертермии / К. А. Кириченко, К. П. Чернышева // Вестник РГМУ. 2005. — № 3. — С. 173.
  37. К. А. Отношение байкальских и палеарктических амфипод к кислороду как фактору среды и механизмы адаптации при снижении его уровня / К.А. Кириченко// Дисс. кан. биол. наук. Иркутск, 2007. — 134 с.
  38. А. А. Действие температуры на байкальских и общесибирских турбеллярий / А. А. Ключевская // Материалы научной конференции «Студент и научно-технический прогресс», 11−13 апреля 2006 г. Тез. докл.-Новосибирск, 2006. — Т. 2.- С. 178.
  39. А.А. Сравнение экологических особенностей некоторых байкальских планарий и общесибирской Phagocata sibirica в эксперименте -Дис. канд. биол. наук, Иркутск, 2007. 132 с.
  40. М. М. Новый вид Gastropoda из озера Байкал / М. М. Кожев // Рус. гидробиол. журн. 1930 — Т. 8, № 10 — 12. — С. 300−304.
  41. М.М. Биология озера Байкал / М. М. Кожов. М. Изд-во АН СССР, 1962. -315 с.
  42. М. М. Очерки по Байкаловеденью / М. М. Кожов. Иркутск: Вост. Сиб. кн. изд-во, 1972. — 254 с.
  43. Н. И. Экология байкальского омуля в раннем пстэмбриогенезе Coregonus autunalis miatorius / Н. И. Козлова // Автореф. дисс. канд. наук.-Иркутск, 1997. 19 с.
  44. .И. Дыхательный коэффициент у байкальских гидробионтов / Б. И. Колупаев // Экология. 1984. — № 2. — С. 79 — 81.
  45. .И. Дыхание гидробионтов в норме и патологии / Б. И. Колупаев. -Казань, 1989. 190 с.
  46. Е.Ю. БТШ70 способен подавлять апоптоз, связываясь с каспазами 3 и 7 / Комарова Е. Ю., Афанасьева Е. А., Маргулис Б. А., и др. // Цитология. 2003. -№ 9.-С. 887 — 888.
  47. A.C. Общая гидробиология: Учеб. для студентов биол. спец. Вузов / A.C. Константинов. 4-е изд., перераб. и доп. — М.: Высш. шк., 1986. -472 с.
  48. В.И. Роль системы глутатиона в процессах детоксикации и антиоксидантной защиты / В. И. Коржов, В. Н. Жадан, М. И. Коржов // Теоретична медицина. 2007. — Т. 13, № 1. — С. 3 — 19.
  49. В.Н. Действие фенола промышленных стоков ЦБП на двигательную активность гидробионтов / В. Н. Косолапов, JI.H. Синева // Токсикогенетические и экологические аспекты загрязнения окружающей среды. Иркутск. 1982. — С. 96 — 102.
  50. О.Н. Белки теплового шока и устойчивость растений к стрессу / О. Н. Кулаева // Соросовский образовательный журнал. 1997. — № 2. — С. 5 — 13.
  51. В.И. Обезвреживание ксенобиотиков / В. И. Кулинский // Соросовский образовательный журнал. 1999. — № 1. — С. 8 — 12.
  52. С.А. Основы токсикологии / С. А. Куценко. С.Пб., 2002. — 395 с.
  53. И.М. К вопросу о причинах несмешиваемости байкальской и палеарктической фауны / И. М. Леванидова // Труды Байкальской лимнологической станции АН СССР. 1948. — Т. 12. — С. 57 — 81.
  54. Г. Ф. Ракушковые рачки (Ostracoda) Байкала / Г. Ф. Мазепова -Новосибирск. Наука, 1990. 472 с.
  55. Г. Г. Третичная фауна моллюсков Восточного Прибайкалья / Г. Г. Мартисон // Труды Байкальской Лимнологической станции АН СССР. 1951. -Т. 13.-С. 30 -90.
  56. А. А. Белок теплового шока (БТШ70) медиатор объемной передачи сигналов в обонятельной коре мозга крыс / А. А. Мокрушин, А. Ю. Плеханов // Докл. РАН. — 2005. — № 1. — С. 124−128.
  57. A.B. Прогностическая значимость Р-гликопротеина в развитии химиорезистентности при онкологических заболеваниях / A.B. Моргун // Сибирский медицинский журнал. 2007. — № 3. — С. 12−15.
  58. Н.К. Мультидоменная организация ферментов / Н. К. Наградова, В. И. Муронец // Итоги науки и техники. Сер. биологическая химия .- 1991. -Т. 38.-С-162.
  59. Н.К. Внутриклеточная регуляция формирования нативной пространственной структуры белков / Н. К. Наградова //Соросовский образовательный журнал. 1997. — № 7. — С.10 — 18.
  60. И.Н. Влияние органических токсикантов на выживаемость и газообмен байкальских амфипод Е. verrucosus II И. Н. Наделяев // Круговорот веществ и энергии в водоемах. Иркутск, 1981. — Вып. 2. — С. 146 — 148.
  61. А.И. Влияние температурного режима водоема на модель размножения Gammarus lacustris Sars / А. И. Нестерович // Вид в ареале биология, экология и продуктивность водных беспозвоночных. Мн.: Навука i тэхнка, 1990. — С. 42 — 49.
  62. А.И. Особенности размножения Gammarus lacustris (Sars) в прибайкальском водоеме / А. И. Нестерович, В. Е. Рощин // Проблемы экологии Прибайкалья: Тез. докл. Иркутск, 1988. — С. 72.
  63. Г. В. Экология рыб /Г.В. Никольский. М.: «Высшая школа», 1974. — 356 с.
  64. Н. Д. Механизмы адаптации / Н. Д. Озернюк. М.: Наука, 1992. — 272 с.
  65. Г. П. Грибные сообщества как объекты регионального мониторинга и биоиндикации загрязнений тяжелыми металлами / Г. П. Островерхова, С. В. Донников, A. Л. Мерзляков и др. // Сибирский экологический журнал. 2002. — № 1. — С. 35 — 40.
  66. И. С. Вид в ареале, биология, экология и продуктивность водных беспозвоночных / И. С. Островский // Мн., Навука i тэхнжа, 1990. С. 37 — 42.
  67. О.О. Структура и свойства малых белков теплового шока / О. О. Панасенко, М. В. Ким, Н. Б. Гусев // Успехи биологической химии. 2003. — Т. 43. — С. 59- 98.
  68. В. К. Основы энзимологии/ В. К. Плакунов.- М: Логос, 2001. 126 с.
  69. А. Ю. Белок теплового шока пресноводных простейших и его участие в адаптации к изменению солености среды обитания / А. Ю. Плеханов, Ю. И. Подлипаева, JI. О. Иванова и др. // Цитология. 2006. — Т. 48. — № 6. — С. 530 — 534.
  70. З.А. Распределение некоторых бокоплавов каспийского реликтового комплекса в термоградиентных условиях / З. А. Пономарева // Известия Гос. НИИОиРРХ. 1976 — Т. 110. — С. 36 — 40.
  71. Г. И. Изменения фитопланктона Малого моря / Г. И. Поповская // Изв. СО АН СССР. Сер. Биол. Науки. 1989. — Т. 1. — С.41 — 47.
  72. М.В. Механизмы неспецифической резистентности у байкальских и палеарктических амфипод в условиях интоксикации хлоридом кадмия / М. В. Протопопова // Дисс. кан. биол. аук. Красноярск, 2011. — 144 с.
  73. С.Н. Реакция избегания байкальской воды некоторыми гидробионтами / С. Н. Раев, А. Э. Балаян, Д. И. Стом // Природные условия, история и культура Западной Монголии и сопредельных регионов: Матер. V Междунар. конф., 2024 сентября 2001. Ховда, 2001.
  74. А. А. Дрожжевой шаперон Hspl04 регулирует экспрессию генов на посттранскрипционном уровне / A.A. Рубель, А. Г. Лада, A.A. Нижников и др. // Молекулярная биология. 2008. — Т. 42, № 1. — С. 123 — 130.
  75. A.A. Уровень БТШ70 в миокарде и головном мозге при экспериментальной гиперхолестеринемии, коррегируемой трансплантацией неонатальных гепатоцитов / А. А. Рунович, Б. К. Бадуев, Т. Е. Курильская,
  76. Ю.И.Пивоваров, Г. Б. Боровский // Современные наукоемкие технологии. -2004. -№ 3-С. 116−117
  77. В.П. Введение в биохимическую экологию: учеб. пособие / В. П. Саловарова, А. А. Приставка, О. А. Берсенева. Иркутск: Изд-во ИГУ, 2007. -159 с.
  78. Г. П. Состав и экология видов рода Gammarus fabricius Юга Восточной Сибири / Г. П. Сафронов // Дис. канд. биол. наук. Иркутск, 1993. -176 с.
  79. Г. На уровне целого организма / Г. Селье. М., 1982. — 246 с.
  80. В. П. Нефтезагрязненные почвы: свойства и рекультивация / В. П. Середина, Т. А. Андреева, Т. И. Бурмистрова и др. Томск: Изд-во ТПУ, 2006. — 270 с.
  81. В. П. Альтернативные функции клеточного дыхания /В.П.Скулачев // Соросовский Образовательный Журнал. 1998. — № 8. — С. 2 — 7.
  82. В.П. Эволюция митохондрий и кислород/ В. П. Скулачев // Соросовский образовательный журнал. 1999. — Т. 6. — № 9. — С. 1 — 7.
  83. А. О. Белок теплового шока семейства Hsp70 у эвригалинной инфузории Paramecium nephridiatum и его участие в адаптации к изменению солености среды / А. О. Смуров, А. В. Гудков, Ю. И. Подлипаева // Цитология. -2007. Т. 49, № 4. — С. 292 — 295.
  84. JI. Н. Бентос Истокского сора / Л. Н. Снимщиков // Лимнология прибрежно-соровой зоны Байкала. Новосибирск: Изд-во «Наука», 1977. — С. 191 — 198.
  85. Г. А. Введение в токсикологию / под ред. Б. А. Курляндского, В. А. Филова // Общая токсикология. М.: Медицина, 2002. — С. 12−31.
  86. Я. И. Фауна моллюсков и зоогеогрфическое районирование континентальных водоемов земного шара / Я. И. Старобогатов Л.: Наука, 1970. — 256 с.
  87. A.A. Транспортные белки семейства ABC и множественная лекарственная устойчивость опухолевых клеток / A.A. Ставровская, Т. П. Стромская // Биохимия. 2008. — Т. 73, № 5. — С. 735 — 750.
  88. Д. И. О реакции избегания Gammarus lacustris Sars байкальской воды/ Д. И. Стом, М. А. Тимофеев // Сибирский экологический журнал. 1999. — № 6. -С. 649 — 655.
  89. А. Д. Эколого-биологические характеристики некоторых байкальских и прибайкальских ручейников / А. Д. Стом // Дис. канд. биол. наук. Иркутск, 2007, 115 с.
  90. В. В. Фауна бокоплавов прибрежной зоны Байкала в районе Б. Котов. Методические указания / В. В. Тахтеев Иркутск: ИГУ, 1993. — 30 с.
  91. В. В. Жизненные формы амфипод озера Байкал / В. В. Тахтеев //Проблемы систематики, экологии и токсикологии беспозвоночных. Иркутск: Изд-во ИГУ, 2000. — С. 12 — 21.
  92. В. В. Очерки о бокоплавах озера Байкал (систематика, сравнительная экология, эволюция) / В. В. Тахтеев Иркутск: Изд-во Иркут. ун-та, 2000. — 355 с.
  93. В. В. Экологические механизмы эндемичной эволюции бокоплавов (Crustacea Amphipoda) озера Байкал / В. В. Тахтеев, И. В. Механикова, Е. Б. Говорухина // Сибир. эколог, журн. 2003. — № 3. — С. — 305 — 310.
  94. М.А. Сравнительная оценка отношения байкальских гаммарид и голарктического Gammarus lacustris к абиотическим факторам / М. А. Тимофеев. Дис. канд. биол. Наук. — Иркутск, 2000. — 140 с.
  95. М. А. Экспериментальная оценка роли абиотических факторов в ограничении распространения эндемиков за пределы оз. Байкал, на примере амфипод/ М. А. Тимофеев, К. А. Кириченко // Сибирский экологический журнал. 2004. — № 1. — С. 41 — 50.
  96. М.А. Токсичность солей кадмия для байкальских эндемичных амфипод, некоторые биохимические последствия / М. А. Тимофеев, Ж. М. Шаталина, А. В. Колесниченко // Сибирский экологический журнал. 2006. — № 2. — С. 243 — 248.
  97. М.А. Экологические и физиологические аспекты адаптации к абиотическим факторам среды эндемичных байкальских и палеарктических амфипод / М. А. Тимофеев // Дис. д-ра биол. наук: 26.10.10. Томск, 2010. — 384 с.
  98. В.П. Основы физиологии насекомых / В. П. Тыщенко. Л., 1976. — Ч. 1. — 134 с.
  99. М.А. Использование БТШ70 для нормализации последствий неизбегаемого стресса у крыс / М. А. Флеров, Н. Э. Ордян, Б. А. Маргулис и др. // Бюл. эксперим. биол. и мед. 2003. — № 8. — С. 138 — 141.
  100. П. Биохимическая адаптация / П. Хочачка, Дж. Сомеро. М.: Мир, 1988.- 568 с.
  101. П. Стратегия биохимической адаптации / П. Хочачка, Дж. Сомеро. М.: Мир, 1977. 398 с.
  102. В. В. Зообентос прибрежно соровых участков Северного Байкала / В. В. Черепанов, В. Н. Александров, Р. М. Камалтынов и др. — Новосибирск: Изд-во «Наука», 1977. — С. 198 — 207.
  103. В. В. Зообентос прибрежно-соровых участков Северного Байкала/ В. В. Черепанов, М. А. Арипова, Т. Д. Евстигнеева и др. // Круговорот веществ и энергии в водоемах. Иркутск, 1981. Вып. 2. — С. 142- 143.
  104. .М. Влияние абиотических стрессовых факторов на содержание, синтез и активность ряда стрессовых белков у байкальских и палеарктических амфипод / Ж. М. Шаталина // Дис. канд. биол. наук. Иркутск, 2004. — 147 с.
  105. . М. Особенности активации механизмов антиоксидантной защиты у эндемичных байкальских амфипод / Ж. М. Шаталина, Д. С. Бедулина, М. А. Тимофеев // Вестник Томского государственного университета, Серия «Естественные науки». 20 046. — № 11. — С. 144.
  106. В.М. Основы ксенобиологии: Учебное пособие / В. М. Юрин. Мн.: БГУ, 2001.-234 с.
  107. Achard М. Induction of a multixenobiotic resistance protein (MXR) in the Asiatic clam Corbicula fluminea after heavy metals exposure / M. Achard, M. Baudrimont, A. Boudou, J.P. Bourdineaud // Aquatic Toxicology. 2004. — V. 67. — P. 347 — 357.
  108. Alevy Y. G. Increased Expression of the Hdj-2 Heat Shock Protein in Biopsies of Human Rejected Kidney 1 / Y. G. Alevy, D. Brennan, S. Durriya et al. // Transplantation. 1996. — V. 61,1. 6. — P. 963 — 967.
  109. Allen R. G. Oxidative stress and gene regulation / R. G. Allen, M. Tressini // Free Radical Biol. Med. -2000. V. 28. P. 463 — 499.
  110. Araoz R. Translation activity under ultraviolet radiation and temperature stress in the cyanobacterium Nostoc sp. / R. Araoz, M. Lebert, D. P. Hader // Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology. 1998. — V. 47,1. 2−3. P. 115 — 120.
  111. Bard S.M. Induction of the multixenobiotic resistance transporter and cytochrome P450 1A in intertidal fish exposed to environmental contaminants / Bard S.M., Woodin В., Stegeman J.J. // Toxicol. Sci. 1999. — Vol. 42. — P. 16.
  112. Bard S.M. Multixenobiotic resistance as a cellular defense mechanism in aquatic organisms / Shanonn Mala Bard // Aquatic Toxicology. 2000 — Vol. 48. — P. 357 389.
  113. Barnard J. L. Fresh Water Amphipoda of the World / J. L. Barnard, С. M. Barnard Mt. Vernon. Virginia, 1983. — 830 p.
  114. Bedulina D. Different natural organic matter isolates cause similar stress response patterns in the freshwater amphipod Gammarus pulex / D. Bedulina, M. Timofeyev,
  115. M. Zimmer, E. Zwirnmann, R. Menzel, C. E. W. Steinberg // Environmental Science and Pollution Research. 2010. — V. 17. — P. 261−269.
  116. Berger E. M. Small heat shock proteins in Drosophila may confer thermal tolerance / E.M. Berger, M.P. Woodward // Exp. Cell. Res. 1983. — Y.147,1.2. — P. 437 — 442.
  117. Biemans-Oldehinkel E. ABC-transporter architecture and regulatory roles of accessory domains / Esther Biemans-Oldehinkel, Mark K. Doeven, Bert Poolman // FEBS Letters. 2006. — Vol. 580. — P. 1023 — 1035.
  118. Bittner M. Changes of AhR-mediated activity of humic substances after irradiation / M. Bittner, K. Hilscherova, J. P. Giesy // Chemosphere. 2007. — V. 33. — P. 812 -816.
  119. Blokhina O. Antioxidants, oxidative damage and oxygen deprivation stress: a review / O. Blokhina, E. Violainen, K.V. Fagerstedt // Ann. Bot. 2003. — V. — 91. — P. 179 -194.
  120. Bondarenko N.A. Floral shift in the phytoplankton of Lake Baikal, Siberia: Recent dominance of Nitzschia acicularis / N.A. Bondarenko // J. Plankton Biol. Ecol. 1999. -V. 46,1.1.-P. 18−23.
  121. Boon-Niermeijer E.K. Evidence for Two States of Thermotolerance / E.K. Boon-Niermeijer, M. J. M. Tuijl, M. van de Scheur // International Journal of Hyperthermia. 1986. — V. 2,1. 1. — P. 93 — 65.
  122. Bosch T. C. Thermotolerance and synthesis of heat shock proteins: these responses are present in Hydra attenuata but absent in Hydra oligactis / T. C. Bosch, S. M. Krylow, H. R. Bode et al. // PNAS. 1988. — V. 85,1. 21. — P. 7927 — 7931.
  123. Bose S. Chaperone function of Hsp90- associated proteins / S. Bose, T. Weikl, H. Bug // Buchner J. Science. 1996. — V. 274. — P. 1715 — 1717.
  124. Boston R. S. Molecular chaperones and protein folding in plants / R. S. Boston, P. V. Viitanen, E. Vierling // Plant Molecular Biology. 1996. — V. 32, I. 1−2. — P. 191 -222.
  125. Braakman I. Role of ATP and disulfide bonds protein during protein folding in the endoplasmic reticulum /1. Braakman // Nature. 1992 — V. 356 — P. 260 — 271.
  126. Bradford M.M. A Rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding / M.M. Bradford // Anal Biochem. 1976 — V. 10 — P. 491 — 497.
  127. Brennecke Th. The lack of a stress response in Hydra oligactis is due to reduced hsp70 mRNA stability / Th. Brennecke, K. Gellner, T.C. Bosch. // European Journal of Biochemistry. 1998. — V. — 255. — P. 703 — 709.
  128. Brover R.W. Pressure effect on thermal preference behavior in gammarid amphipods from 600−1000 m in Lake Baikal / R.W. Brover, M. R. Vordan, G. I. Galazii // J. Threm. Biol. 1984. -1. 3. — P. 305 — 313.
  129. Callaghan R. P-glycoprotein: So many ways to turn it on / R. Callaghan, E. Crowley, S. Potter, I.D. Kerr // J. Clin. Pharmacol. 2008. — V. 48. — P. 365 — 378.
  130. Camargo J. A. Ecological and toxicological effects of inorganic nitrogen pollution in aquatic ecosystems: A global assessment / J. A. Camargo, A. Alonso // Environment International. 2006. — V. 32,1. 6. — P. 831 — 849.
  131. Chiang H. L. A role for a 70-kilodalton heat shock protein in lysosomal degradation of intracellular proteins / H. L. Chiang, S. R Terlecky, C.P. Plant et al. // Science. -1989. V. 246,1. 4928. — P. 382 — 385.
  132. Clegg J. S. Metabolic consequences of the extent and disposition of the aqueous intracellular environment / J.S. Clegg // J. Exp. Zool. 1981. — V. 215. — P. 303 — 313.
  133. Correi A. D. Effects of water-borne cooper on metallothionein and lipid peroxidation in the marine amphipod Gammarus locusta / A.D. Correi, D.R. Livingstone, M.H. Costa // Mar. Environ. Res. 2002. — V. 54. — P. 357 — 360.
  134. Dandapat J. An in vitro study of metal ion-induced lipid peroxidation in giant fresh water prawn Macrobrachium rosenbergii (de MAN) / J. Dandapat, K. J. Rao, G. B. N. Chainy 11 Biometals. 1999. — V. 12,1. 1. — P. 89 — 97.
  135. Dassa E. The ABC of ABCs: a phylogenetic and functional classification of ABC systems in living organisms / Elie Dassa, Philippe Bouige // Res. Microbiol. 2001. -V. 152. — P. 211 -229.
  136. Dietz T. J. The threshold induction temperature of the 90-kDa heat shock protein is subject to acclimatization in eurythermal goby fishes (genus Gillichthys) / T. J. Dietz, G. N. Somero // PNAS. 1992. — V. 89,1. 8. — P. 3389 — 3393.
  137. Dix D. J. Hsp-70 expression and function during game-togenesis / D. J. Dix // Cell Stress and Chaperones. 1997. — V. 2. — P. 73 — 77.
  138. Downs C. A. Assessing the health of grass shrimp (.Palaeomonetes pugio) exposed to natural and anthropogenic stressors: a molecular biomarker system / C. A. Downs, J. E. Fauth, C. M. Woodley // Marine Biotechnology. 2001. — V.3, 1.4. — P. 1436 -2236.
  139. Dunn J.R. An ultrastructural and histochemical study of the axial musculature in the african lungfish / J.R. Dunn, W. Davison, G.M. Maloiy // Cell and Tissue Ras. -1981. V.220.-P. 599 -609.
  140. Ellis C. Phosphorylation of GAP and GAP-associated proteins by transforming and mitogenic tyrosine kinases / C. Ellis, M. Moran, F. McCormick et al. // Nature. -1990.-V. 343.-P. 377- 381.
  141. Eufemia A., Epel D., The multixenobiotic defense mechanism in mussels is induced by substrates and non-substrates: implications for a general stress response // Marine Environment Researh. 1998. — V. 46. P. — 401 — 405.
  142. Fader S.C. Seasonal variation in heat shock proteins hsp70 in stream fish under natural conditions / S. C. Fader, Z. Yu, J. R. Spotila // J. Therm. Biol. 1994. — V.5. -P. 335 — 341.
  143. Feder M. E. Heat-shock proteins, molecular chaperones, and the stress response: evolutionary and ecological physiology/ M. E. Feder, G. E. Hofmann // Annual Review of Physiology. 1999. — V. 61. — P. 243 — 282.
  144. Feder M. E. The stress response and stress proteins / M. E. Feder, D. A. Parsell, S. L. Lindquist // Cell Biology of Trauma. 1995. — P.177−191.
  145. Forbes Y.E. Responses of aquatic organism to pollutant stress: theoretical implications. / V.E. Forbes, P. Calow // Environmental stress, adaptation and evolution. Basel: Birkhauser. — 1997. — P. 25−42.
  146. Gabai V. L. Role of Hsp70 in regulation of stress-kinase JNK: implications in apoptosis and aging / V. L. Gabai, A. B. Meriin, J. A. Yaglom et al. // FEBS Letters. -1998. -V. 438,1. 1−2. P. 1 -4.
  147. Gaitanaris G. Renaturation of denatured lambda repressor requires heat shock proteins / G. Gaitanaris, P. Rubock, A. G. Papavassiliou et al. // Cell. 1990. — V. 61, I. 6.-P. 1013 — 1020.
  148. Gething M.J. Protein folding in the cell / M.J. Gething, J. Sambrook // Nature. 1992. — V.355. — P. 33 -46.
  149. Gladyshev Metal Concentrations in the Ecosystem and Around Recreational and Fish-Breeding Pond Bugach / M.I. Gladyshev, I.V. Gribovskaya, E.A. Ivanova et al. // Water Resources. 2001. — V. 28,1. 3. — P. 288 — 296.
  150. Gladyshev M.I. Content of metals in compartments of ecosystem of a Siberian pond / M.I. Gladyshev, I.V. Gribovskaya, A.V. Moskvicheva // Archives of Environmental Contamination and Toxicology. 2001a. — V. 41,1. 2. — P. 157 — 162.
  151. Glazier D. S. Energetic of amphipods in ion-poor waters: Stress resistance is not invariably linked to low metabolic rates /D.S Glazier, B.L. Sparks // Functional Ecology. 1997. -V. 11,1. 1. — P. 126- 128.
  152. Gornati R. Arsenic toxicity and HSP70 expression in Xenopus laevis embryos / Gornati R., Monetti C., Vigetti D. et al. // Alternatives to laboratory animals. 2002. -V. 30,1. 6. — P. 597 — 603.
  153. Gottesman M.M. The molecular basis of multidrug resistance in cancer: The early years of P-glycoprotein research / M.M. Gottesman, V. Ling // FEBS Letters. 2006. — V. 580. — P. 998 — 1009.
  154. Habig W. Glutathione S-transferases — the first enzymatic step in mercapturic acid formation / W. Habig, M.J. Pabst, W.B. Jakoby // Journal of Biologycal Chemistry -1974. V.- 249. -P. 7130−7139.
  155. Hahn G. M. Thermotolerance, thermoresistance, and thermosensitization / G. M. Hahn, G. C. Li // Stress Proteins in Biology and Medicine. 1990. — P. 79 — 100.
  156. Hampton S. E. Sixty years of environmental change in the world’s largest freshwater lake Lake Baikal, Siberia / S. E. Hampton, L.R. Izmest’eva, M.V. Moore et al.// Global Change Biology. — 2008. — V. 14,1. 8. — P. 1947 — 1958.
  157. Handy R. D. Physiological responses: their measurements and use as environmental biomarkers in ecotoxicology / R. D. Handy, M. H. Depledge // Ecotoxicology. -1999.-V. 8.-P. 329−349.
  158. Hartl F. U. Molecular chaperones in cellular protein folding / F.U. Hartl // Nature. -1996.-V. 381.-P. 571 579.
  159. Hayes R. L. Induction of 70-kD heat shock protein in scleractinian corals by elevated temperature: significance for coral bleaching / R. L. Hayes, C. M. King // Mol Mar Biol Biotechnol. 1995. — V.4. -1. 1. — P. 36 — 42.
  160. Heikkila J.J. Heat-shock gene expression in animal embryonic systems / J. J. Heikkila, L.W. Browder, L. Gedamu et al. // Can. J. Genet. Cytol. 1986. — V. 28. — P. 1093 — 1108.
  161. Henderson B. Integrating the cell stress response: A new view of molecular chaperones as immunological and physiological homeostatic regulators/ B. Henderson // Cell Biochemistry and Function. 2010. — V. 28,1. 1. — P. 1 — 14.
  162. Hennessy M. A primer on the mechanics of P-glycoprotein the multidrug transporter / M. Hennessy and J.P. Spiers // Pharmacol. Res. 2007. — V. 55. — P. 1 -15.
  163. Heugens E. W. Temperature-dependent effects of cadmium on Daphnia magna: accumulation versus sensitivity / E. W. Heugens, T. Jager, R. Creyghton, M. S.
  164. Kraak, A. J. Hendriks, Nicom V. Straalen, W. Admiraal // Environ. Sci. Technol. -2003.-V. 37.-P. 2145−2151
  165. Higgins C.F. ABC-transporters: physiology, structure and mechanism an overview /Christopher F. Higgins // Res. Microbiol. — 2001. — V. 152. — P. 205 — 210.
  166. Higgins C.F. The ATP switch model for ABC transporters / Christopher F. Higgins, Kenneth J. Linton // Nature Structural & Molecular Biology. 2004. — V. 11,1. 10. -P. 918 -926.
  167. Higgins C.F. Multiple molecular mechanisms for multidrug resistance transporters /Christopher F. Higgins // Nature. 2007. — V. 446. — P. 749 — 757.
  168. Hofmann G. E. Heat-shock protein expression is absent in the antarctic fish Trematomus bernacchii (family Nototheniidae) / G. E. Hofmann, B. A. Buckley, S. Airaksinen et al. // The J. of experimental Biol. 2000. — V. 203. — P. 2331 — 2339.
  169. Horst M. Import into and Degradation of Cytosolic Proteins by Isolated Yeast Vacuoles / M. Horst, E. C. Knecht, P. V. Schu // Mol Biol Cell. 1999. — V. 10. -1. 9.- P. 2879 2889.
  170. Hohfeld J. From the cradle to the grave: molecular chaperones that may choose between folding and degradation / J. Hohfeld, D. M. Cyr, C. Patterson // EMBO Rep.- 2001. V. 2.-1.10.-P. 885 — 890.
  171. Janosek J. AhR mediated and antiestrogenic activity of humic substances / J. Janosek, M. Bittner, K. Hilscherova, L. Blaha, J. P. Giesy, I. Holoubek // Chemosphere. -2007.-V. 67.-P. 1096- 1101.
  172. Kamaltynov R. M. On the higher classification of lake baikal amphipods / R. M. Kamaltynov // Crustaceana. 1999. — V. 72.1. 8. — P. 933 — 944.
  173. Karakurt S. The effects of phenolic compound tannic acid on phase II and cytochrome P450 dependent enzymes in rabbit liver and kidney: Thesis for the degree of Master of Science in Biochemistry / S. Karakurt. 2005. — P. 129.
  174. Karaman G.S. Freshwater Gammarus species from Europe, North Africa and adjacent regions of Asia (Crustacea-Amphipoda). Part I. Gammarus pulex-group and related species / G.S. Karaman, S. Pinkster // Bijdr. Dierk. 1977. — T. 47,1.1. — P. 1 -97.
  175. Karaman G.S. New genus of family Gammaridae from Baikal Lake, Abludogammarus, n.gen. with reference to genus Ommatogammarus Stebb. (Contribution to the knowledge of the Amphipoda 108) / G.S. Karaman. -Природ.наука, 1980. P. -149 — 169.
  176. Kelly S. Searching for the biological pathways between stress and health / S. Kelly, C. Hertzman, M. Daniels // Annu. Rev. Public Health. 1997. V. 18. — P. 437 — 462.
  177. Kelly S.A. Oxidative stress in toxicology: Established mammalian and emerging model systems / S. A. Kelly, С. M. Havrilla, Т. C. Brady et al. // Environmental Health Perspectives. 1998. — V. 106,1. 7. — P. 375 — 384.
  178. Keppler J. and A. H. Ringwood. Expression of P-glycoprotein in southeastern oysters, Crassostrea virginica. Marine Environmental Research. 2001. — V. 52,1. 1. -P. 81 -96.
  179. Kerr R. A. Atlantic climate pacemaker for millennia past, decades hence? / R.A. Kerr // Science. 2005. — V. 309. — P. 41 — 42.
  180. Kim K.T. Oxidative stress responses of Daphnia magna exposed to Ti02 nanoparticles according to size fraction / K. T. Kim, S. J. Klaine, J. Cho et al. // Science of the Total Environment. 2010. — V. 408,1. 10. — P. 2268 — 2272.
  181. Kimura Y. Mechanism of multidrug recognition by MDR1/ABCB1 / Y. Kimura, S.Y. Morita, M. Matsuo, K. Ueda // Cancer Sei. 2007. — V. 98. — P. 1303 — 1310.
  182. Koban M. Molecular adaptation to environmental temperature: heat-shock response of the eurythermal teleost Fundulus heteroclitus / M. Koban, A.A. Yup, L.B. Agellon et al. // Mol. Mar. Biol. Biotechnol. 1991. — V. 1. — P. 1 — 17.
  183. Koehn R.K. Towards a physiological and genetically understanding of the stress response / R.K. Koehn, B.L. Bayne // Biol. J. Linn. Soc. 1989. — V. 37. — P. 151 -171.
  184. Kozhova O. M. Phytoplankton of Lake Baikal: structural and functional characteristics / O. M. Kozhova // Arch. Hydrobiol. Beih. Ergebn. Limnol. 1987. -V.25. — P. 19−37.
  185. Kozhova O.M. Lake Baikal: Evolution and Biodiversity / O. M. Kozhova, L. R. Izmesteva. The Netherlands: Backhuys Publishers. Leiden. — 1998. — 447 p.
  186. Kurelec B. Induction and reversion of multixenobiotic resistance in the marine snail Monodonta turbinata / B. Kurelec, D. Lucic, B. Pivcevic, S. Krca // Mar. Biol. -1995a.-V. 123.-P. 305 -312.
  187. Kurelec. B. Determination of pollutants with multixenobiotic resistance inhibiting properties / B. Kurelec, W. E. G. Muller // Marine Environmental Research. 1995b. -V. 39,1. 1−4.-P. 261 -265.
  188. Kurelec B. Inhibition of Multixenobiotic Resistance Mechanism in Aquatic Organisms Ecotoxic Consequences / B. Kurelec // Science of the Total Environment. — 1995c. — V. 171,1. 1−3. — P. 197 — 204.
  189. Kurelec B. Expression of multixenobiotic resistance mechanism in a marine mussel Mytilus galloprovincialis as a biomarker of exposure to polluted environment / B. Kurelec, S. Krca, D. Lucic // Comp. Biochem. Physiol. 1996. — V. 113. — P. 283 -289.
  190. Kurelec B. The modulation of functional and toxic expression of the induced multixenobiotic resistance mechanism in a clam Corbicula fluminea / B. Kurelec, P. Waldmann, R.K. Zahn II Mar. Environ. Res. 1996a. — V. 42. — P. 383 — 387.
  191. Marshall J.S. Identification of heat shock protein hsp70 homologues in chloroplasts / J.S. Marshall, A. E. DeRocher, K. Keegstra // PNAS. 1990. — V. 87,1. 1. — P. 374 -378.
  192. McCutcheon S.C. Some fundamental advances for xenobiotic chemicals / S.C. McCutcheon, J.L. Schnoor, J.P. Schwitzguebel, Т. Vanek // Phytoremediation: Transformation and Control of Contaminants. 2003. — P. 123 — 157.
  193. Menone M.L. Endosulfan induces oxidative stress and changes on detoxication enzymes in the aquatic macrophyte Myriophyllum quitense / M.L. Menone, S.F. Pesce, M.P. Diaz, V.J. Moreno, D.A. Wunderlin // Phytochemistry. 2008. — V. 69. -P. 1150- 1157.
  194. Minier C. Induction of multixenobiotic resistance in mussel blood cells / C. Minier and M. N. Moore // Marine Environmental Research. 1996. — V. 42,1. 1−4. — P. 389 -392.
  195. Minier C. The multi-xenobiotic resistance phenotype as a tool to biomonitor the environment / C. Minier, N. Eufemia, D. Epel / Biomarkers. 1999. — V. 4,1. 6. — P. 442 — 454.
  196. Minier C. Seasonal variation of MXR and stress proteins in the common mussel, Mytilus galloprovincialis / C. Minier, V. Borghi, M. N. Moore, C. Porte. / Aquatic Toxicology. 2000. — V. 50,1. 3. — P. 167−176.
  197. Minier C. Expression and activity of a multixenobiotic resistance system in the Pacific oyster Crassostrea gigas / C. Minier, N. Djemel, F. Rodet, R. Tutundjian, P.
  198. Favrel, M. Mathieu, F. Leboulenger / Mar. Environ. Res. 2002. — V. 54,1. 3−5. — P. 455 — 459.
  199. Mitchell-Olds T. Chaperones as buffering agents? / T. Mitchell-Olds, C. A. Knight // Science. 2002. — V. 296. — P. 2348 — 2349.
  200. Morimoto R.I. Cells in stress: transcriptional activation of heat shock genes / R.I. Morimoto // Science. 1993. — V. 259. — P. 1409 — 1410.
  201. Mosser D. D. Temperature ranges over which rainbow trout fibroblasts survive and synthesize heat-shock proteins / D. D. Mosser, J. J. Heikkila, N. C. Bols // Journal of Cellular Physiology. 1987. — V. 128,1. 3. — P. 432 — 440.
  202. Mosser D. D. Relationship between heat-shock protein synthesis and thermotolerance in rainbow trout fibroblasts / D. D. Mosser, N. C. Bols // Journal of Comparative Physiology, Part B. 1988. — V. 158. — P. 457 — 467.
  203. Mueller W.E.G. Cold stress defense in the freshwater sponge Lubomirskiabaicalensis: Role of okadaic acid produced by symbiotic dinoflagellates / W.E.G. Mueller, S.I. Belikov, O.V. Kaluzhnaya et al. / FEBS Journal. 2007. — V. 274.-I. l.-P. 23 -36.
  204. Nardi S. Physiological effects of humic substances on higher plants / S. Nardi, D. Pizzeghello, A. Muscolo, A. Vianello // Soil Biol. Biochem. 2002. — V. 34. — P. 1527 — 1536.
  205. Nimptsch J. Substrate specificities of cytosolic glutathione-S-transferases in five different species of the aquatic macrophyte Myriophyllum / J. Nimptsch, S. Pflugmacher // J. Appl. Bot. Food Qual. 2005. — Vol. 79. — P. 94 — 99.
  206. Nover L. Heat Shock Response / L. Nover. CRC Press, Boca Raton, FL. — 1991. -511 p.
  207. Ozturk O. Age-related changes of antioxidant enzyme activities, glutathione status and lipid peroxidation in rat erythrocytes after heat stress / O. Ozturk, S. Gumuslu // Life Sci. 2004. — V. 75,1. 13. — P. 1551 — 1565.
  208. Pain S. Multixenobiotic defence mechanism (MXDM) in bivalves / S. Pain and M. Parant // Comptes Rendus Biologies. 2003. — V. 326,1. 7. — P. 659 — 672.
  209. Paciolla M.D. The reduction of dissolved iron species by humic acid and subsequent production of reactive oxygen species / M.D. Paciolla, S. Kolla, S.A. Jansen // Advances in Environmental Research. 2002. V. 7,1. 1. — P. 169- 178.
  210. Pavlichenko V.V. Increased environmental temperature induced P-glycoprotein geneexpression in common freshwater amphipod, Gammarus lacustris Sars / V.V.th
  211. Pavlichenko, T. Luckenbach, M.A. Timofeyev //4 International symposium on the environmental physiology of ectotherms and plants (Rennes, July 18 22, 2011). -2011.-P. 110.
  212. Pelham H. R. The retention signal for soluble proteins of the endoplasmic reticulum / H. R. Pelham // Trends Biochem. Sei. 1990. — V. 15,1. 12. — P. 483 — 486.
  213. Pflugmacher S. Activity of Phase I and Phase II Detoxication Enzymes in Different Cormus Parts of Phragmites australis / S, Pflugmacher, К, Geissler and C, Steinberg // Ecotoxicology and Environmental Safety. 1999. — Vol. 42. — P. 62 — 66.
  214. Pflugmacher S. Cytochrome P450 Monooxygenases for Fatty Acids and Xenobiotics in Marine Macroalgae / S. Pflugmacher, H. Sandermann Jr. // Plant physiology. -1998.-V. 117.-P. 123 128.
  215. Phillips G. J. Heat-shock proteins DnaK and GroEL facilitate export of LacZ hybrid proteins in E. coli / G. J. Phillips, T. J. Silhavy // Nature. 1990. — V. 344. — P. 882 -884.
  216. Playle R.C. Copper and cadmium binding to fish gills: modification by dissolved organic carbon and synthetic ligands /R.C. Playle, D. Dixon, K. Burnison // Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. 1993. — V. 50. — P. 2667 — 2677.
  217. Polla B. S. Mitochondria are selective targets for the protective effects of heat shock against oxidative injury / B. S. Polla, S. Kantengwa, D. Francois et al. // PNAS. -1996. V. 93,1. 13. — P. 6458 — 6463.
  218. Queltsch C. Hsp90 as a capacitor of phenotypic variation / C. Queltsch, T. A. Sangster, S. Lindquist // Nature. 2002. — V. 417. — P. 618 — 624.
  219. Quentin Y. ABCdb: an ABC Transporter Database / Yves Quentin and Gwennaele Fichant // J. Mol. Microbiol. Biotechnol. 2000. — V. 2,1. 4. — P. 501 — 504.
  220. Radman M. Evolution-driving genes / M. Radman, F. Taddei, I. Matic // Research in Microbiology. 2000. — V. 151,1. 2. — P. 91 — 95.
  221. Rassow J. Protein folding and import into organelles / J. Rassow // Post-translational Processing: A Practical Approach. 1999. — P. 43−94.
  222. Reemtsma T. On-line coupling of size exclusion chromatography with electrospray ionisation-tandem mass spectrometry for the analysis of aquatic fulvic and humic acids / T. Reemtsma, A. These // Analytical Chemistry. 2003. — V. 75. — P. 1500 -1507.
  223. Rehwoldt R. The effect of increased temperature upon the acute toxicity of some heavy metal ions / R. Rehwoldt, L. W. Menapace, B. Nerrie, D. Alessandrello // Bulletin of Environmental Contamination & Toxicology. 1972. -V. 8,1. 2. — P. 91 -96.
  224. Rewitz K.F. Marine invertebrate cytochrome P450: Emerging insights from vertebrate and insect analogies / K.F. Rewitz, B. Styrishave, A. L0bner-Olesen, et al. // Comparative Biochemistry and Physiology 2006. — Vol. 143. — P. 363 — 381.
  225. Ritossa F. A new puffing pattern induced by heat shock and DNP in Drosophila / F. Ritossa // Experientia. 1962. — V. 18. — P. 571 — 582.
  226. Robert J. Evolution of heat shock protein and immunity / J. Robert // Developmental and Comparative Immunology. 2003. — V. 27. — P. 449 — 464.
  227. Roberts D.A. Heat-shock protein expression in Mytilus californianus: acclimatization (seasonal and tidal-height comparisons) and acclimation effects / D. A. Roberts, G. E. Hofmann, G. N. Somero // Biol. Bull. 1997. — V. 192. — P. 309 — 320.
  228. Roberts D. A. Field and laboratory simulations of storm water pulses: Behavioural avoidance by marine epifauna / D. A. Roberts, E. L. Johnston, S. Miiller et al. // Environmental Pollution. 2008. — V. 152,1. 1. — P. 153 — 162.
  229. Rubin D. M. Genomic structure and sequence analysis of Drosophila melanogaster HSC70 genes / D.M. Rubin, A.D. Mehta, J. Zhu et al. // Gene. 1993. — V. 128,1. 2. -P. 155 — 163.
  230. Rutherford S. L. Protein folding and the regulation of signaling pathways / S.L. Rutherford, C. S. Zuker // Cell. 1994. — V. 79,1. 7. — P. 1129 — 1132.
  231. Rutherford S. Hsp90 as a capacitor for morphological evolution / S. Rutherford, S. Lindquist // Nature. 1998. — V. 396,1 6709. — P. 336 — 342.
  232. Sachse A. Classification of dissolved organic carbon (DOC) in river systems: influence of catchment characteristics and autochthonous processes / A. Sachse, R. Henrion, J. Gelbrecht, et al. // Organic Geochemistry. 2005. — V. 36. — P. 923 — 935.
  233. Sandermann H. Plant metabolism of xenobiotics / H. Sandermann // Trends Biochem. Sei.- 1992.-V. 17.-P. 82- 84.
  234. Sanders B. M. The role of the stress proteins response in physiological adaptation of marine mollusks / B. M. Sanders // Marine Environmental Research. 1988. — V.24, I. 1−4. — P. 207−210.
  235. Sanders B. M. Characterization of stress protein response in two species of Collisella limpets with different temperature tolerances / B. M. Sanders, C. Hope, V. M. Pascoe et al. // Physiol. Zool. 1991. — V. 64. — P. 1471 — 1489.
  236. Sanders B.M. Stress proteins in aquatic organisms: an environmental perspective / B.M. Sanders // Critical Reviews in Toxicology. 1993. — V. 23,1. 1. — P. 49 — 75.
  237. Sauerborn R. Identification of the multidrug resistance-associated protein (mrp) related gene in red mullet (Mullus barbatus) / R. Sauerborn, D. S. Polancec, R. Zaja, T. Smital / Mar. Environ. Res. 2004. — V. 58,1. 2−5. — P. 199−204.
  238. Schroeder H.C. Stress response in Baikalian sponges exposed to pollutants / H.C. Schroeder, S.M. Efremova, B.A. Margulis et al. / Hydrobiologia 2006 — V. 568, 1. 1- P. 277 287.
  239. Scott G.I. Assessment of risk reduction strategies for the management of agricultural nonpoint source pesticide runoff in estuarine ecosystems / G.I. Scott, M.H. Fulton, D.W. Moore, et al. // Toxicol. Ind. Health. 1999. V. 15. — P. 200 — 213.
  240. Shapiro A.B. Transport of LDS-751 from the cytoplasmic leaflet of the plasma membrane by the rhodamine-123-selective site of P-glycoprotein / A.B. Shapiro and V. Ling// Eur. J. Biochem. 1988. — V. 254. — P. 181 — 188.
  241. Sharom F.J. Shedding light on drug transport: Structure and function of the P-glycoprotein multidrug transporter (ABCB1) / Sharom F.J. // Biochem. Cell. Biol. -2006. V. 84. — P. 979 — 992.
  242. Sharom F.J. ABC multidrug transporters: Structure, function and role in chemoresistance / F.J. Sharom / Pharmacogenomics. 2008. — V. 9. — P. 105 — 127.
  243. Shilova V.I. Small heat shock proteins and adaptation to hypertermia in various Drosophila species // V.I. Shilova, D.G. Garbuz, M.B. Evgen’ev et al. // Molekuliarnaia biologiia. 2006. — V. 40,1. 2. — P. 271 — 276.
  244. Shugart L.R. DNA damage as biomarker of exposure / L.R. Shugart // Ecotoxicology.- 2000. V. 9. — P. 329 — 340.
  245. Shilova V.I. Small heat shock proteins and adaptation to hypertermia in various Drosophila species // V.I. Shilova, D.G. Garbuz, M.B. Evgen’ev et al. // Molekuliarnaia biologiia. 2006. — V. 40,1. 2. — P. 271 — 276.
  246. Skowyra D. The E. coli dnaK gene product, the hsp70 homolog, can reactivate heat-inactivated RNA polymerase in an ATP hydrolysis-dependent manner / D. Skowyra, C. Georgopoulos, M. Zylicz // Cell. 1990. — V. 62,1. 5. — P. 939 — 944.
  247. Slaninov A. Oxidative stress in fish induced by pesticides / A. Slaninov, M. Smutna, H. Modra et al. //Neuroendocrinology Letters. 2009. — V. 30,1. 1. — P. 2 — 12.
  248. Smit J.J.M. Homozygous disruption of the murine mdr2 P-glycoprotein gene leads to a complete absence of phospholipid from bile and to liver disease / J.J.M. Smit, A.H.Schinkel, R.P.J. Oude Elferink, et al. // Cell. 1993. — V. 75. — P. 451 — 462.
  249. Smital T. The activity of multixenobiotic resistance mechanism determined by Rhodamine B-efflux method as a biomarker of exposure / T. Smital, B. Kurelec // Mar. Environ. Res. 1998. — V. 46,1. 1. — P. 443 — 447.
  250. Smital T. The chemosensitizers of multixenobiotic resistance mechanism in aquatic invertebrates: a new class of pollutants / Tvrtko Smital, Branko Kurelec // Mutation Research. 1998. — V. 399. — P. 43 — 53.
  251. Snimschikova L. N. Oligochaete fauna of Lake Baikal / L. N. Snimschikova, T. W. Akinshina // Hydrobiologia. 1994. — V. 278,1. 1−3. — P. 27−34.
  252. Song M. Y. Osmotic effects as a factor modifying insecticide toxicity on Aedes and Artemia / M. Y. Song, J. J. Brown // Ecotoxicol. Environ. Saf. 1998. — V. 141. — P. 195 -202.
  253. Spees J. L. Molt cycle-dependent molecular chaperone and polyubiquitin gene expression in lobster / J. L. Spees, S. A. Chang, D. L. Mykles et al. // Cell Stress & Chaperones. 2003. V. 8,1. 3. — P. 258 — 264.
  254. Steinberg C.E.W. Pure humic substances have the potential to act as xenobiotic chemicals — a review / C.E.W. Steinberg, A. Paul, S. Pflugmacher, T. Meinelt, R. Klocking, C. Wiegand // Fresenius Environ. Bull. 2003. — V. 12. — P. 391 — 401.
  255. Steinberg C.E.W. Dissolved humic substances — ecological driving forces from the individual to the ecosystem level? / C.E.W. Steinberg, S. Kamara, V. Yu. Prokhotskaya, et al. // Freshw. Biol. 2006. — V. 51. — P. 1189 — 1210.
  256. Steinberg C.E.W. Dissolved Humic Substances: Interactions with Organisms / C.E.W Steinberg, M.A. Timofeyev, R. Menzel // In: Gene. E. Likens (Editor). Encyclopedia of Inland Waters. Oxford: Elsevier. 2009. — V. 2. — P. 747 — 753.
  257. Stephen J. R. Molecular responses of Prunus avium (wild cherry) embryonic axes to temperatures affecting dormancy / J. R. Stephen, K. C. Dent, W. E. Finch-Savage // New Phytologist. 2004. — V. — 161,1. 2. — P. 401 — 413.
  258. Stieger B. Twenty years of ATP-binding cassette (ABC) transporters / B. Stieger, C. F. Higgins // Pflugers Arch. Eur. J. Physiol. — 2007 — V. 453,1 5. — P. 543.
  259. Storey K.B. Intermediary metabolism during low temperature acclimation in the overwintering gall fly larva, Eurosta solidaginis / K.B. Storey, J.G. Baust, J.M. Storey // J. Comp. Physiol. 1981. — V. 144. — P. 183 — 190.
  260. Sun J. PI3K-mTORCl attenuates stress response by inhibiting Cap-independent Hsp70 translation / J. Sun, C. S. Conn, Y. Han, V. Yeung, Sh-B Qian // The Journal of Biological Chemistry. 2011. — V. 286. — P. 6791 — 6800.
  261. Szakacs G. Targeting multidrug resistance in cancer / G. Szakacs, J. K. Paterson, J. A. Ludwig, et al. // Nature. 2006. — V. 5. — P. 219 — 234.
  262. Taddei F. Genetic variability and adaptation to stress / F. Taddei, M. Vulic, M. Radman et al. // Environmental stress, adaptation and evolution. Basel: Boston: Berlin: Birkhauser. — 1997. — P. 271 — 290.
  263. Timofeyev M. Impact of natural organic matter (NOM) on freshwater amphipods / M. Timofeyev, C. Wiegand, B. K. Burnison, et al. // The Science of the Total Environment. 2004. — V. 319,1. 1−3. — P. 115 — 121.
  264. Timofeyev M. Thermal stress defense in freshwater amphipods from contrasting habitats with emphasis on small heat shock proteins (sHSPs) / M.A. Timofeyev, Z.M. Shatilina, M.V. Protopopova et al. // Journal of Thermal Biology. 2009. — V. 34.-P. 281 -285.
  265. Tissieres A. Protein synthesis in salivary glands of Drosophila melanogaster: Relation to chromosome puffs / A. Tissieres, H.K. Mitchell, U.M. Tracy // Journal of molecular biology. 1974. — V.85,1. 3. — P. 389 — 398.
  266. Tranter M. Coordinated post-transcriptional regulation of HSP70.3 gene expression by micro-RNA and alternative polyadenylation / M. Tranter, R.N. Helsley, W.R. Paulding, et al. // The Journal of Biological Chemistry. 2011. — V. 286. — P. 29 828 -29 837.
  267. Trevisan, S. Humic substances biological activity at the plant-soil interface: From environmental aspects to molecular factors / S. Trevisan, O. Francioso, S. Quaggiotti, S. Nardi // Plant Signaling and Behavior. 2010. — V. 5,1. 6. — P. 1 — 9.
  268. Tusnady G.E. Membrane topology distinguishes a subfamily of the ATP-binding cassette (ABC) transporters / G. E. Tusnady, E. Bakos, A. Varadi, et al. // FEBS Letters. 1997. — V. 402. — P. 1 — 3.
  269. Tutundjian R. Rhodamine exclusion activity in primary cultured turbot {Scophthalmus maximus) hepatocytes / R. Tutundjian, C. Minier, F. Le Foil, et al. / Marine Environmental Research. 2002. — V. 54,1. 3−5. — P. 443−447.
  270. Wang W.H. The fate of 14C-labelled humic substances in rice cell in cultures / W.H. Wang, C.M. Bray, M.N. Jones // Journal of Plant Physiology. 1999. — V. 154. — P. 203 -211.
  271. Werner I. Stress proteins HSP60 and HSP70 in three species of amphipods exposed to cadmium, diazinon, dieldrin and fluoranthene / I. Werner, R. Nagel // Envir. Toxicol, and Chem. 1997. — V.16,1. 11. — P. 2393 — 2403.
  272. Wetzel R.G. Limnology. Lake and River Ecosystems: 3rd edition. Academic Press, San Diego, CA., 2001. — P. 1006.
  273. Wiens M. Axial (Apical-Basal) Expression of Pro-apoptotic and Pro-survival Genes in the Lake Baikal Demosponge Lubomirskia baicalensis / M. Wiens, S. I. Belikov, O. V. Kaluzhnaya at al./ DNA and Cell Biology 2006. — V. 25,1. 3 — P. 152 — 164.
  274. Zhu Y. Transcriptional elongation factor P-TEFB is required for HIV-1 Tat transactivation in vitro / Y. Zhu, T. Pe’ery, J. Peng et al. // Genes Dev. 1997. -V. 11. — P. 2622 — 2632.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!