Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Селекционно-генетическая характеристика исходного материала Capsicum L. по основным хозяйственно-ценным признакам

Диссертация: Селекционно-генетическая характеристика исходного материала Capsicum L. по основным хозяйственно-ценным признакам
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Важное место в разработке новых генетико-селекционных направлений занимают клеточная и тканевая культура in vitro. Их давно пытаются использовать в генетических и селекционных исследованиях Capsicum L.(George, Natrayanaswamy, 1973; Dumas de Vaulex et al., 1981; Fari, Csillery, 1983; Fari, 1995). Хотя наибольшие успехи в ряде случаев и с практическим выходом достигнуты с помощью культуры пыльников… Читать ещё >

Содержание

  • ГЛАВА1. СОСТОЯНИЕ ГЕНЕТИКО-СЕЛЕКЦИОННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ У CAPSICUM L
    • 1. 1. Генетические исследования и их в клад в селекцию
    • 1. 2. Возможности оптимизации генетико-селекционных исследований овощного перца методами культуры тканей и клеток
    • 1. 3. История, основные направления и задачи селекции перца с комплексом хозяйственно-ценных признаков
  • ГЛАВА 2. МЕТОДОЛОГИЧЕСКИЙ ПОДХОД К ПРОВЕДЕНИЮ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 2. 1. Исследование спорофита
    • 2. 1. Л Проведение генетико-селекционных исследований
      • 2. 1. 2. Определение содержания витаминов в плод ах перцев
  • Л с tJ
    • 2. 1. 3. Исследование устойчивости к болезням
    • 2. 1. 4. Изучение соматического эмбриогенеза
    • 2. 1. 5. Изучение гемморизогенеза
    • 2. 2. Исследование гаметофита
    • 2. 2. 1. Определение жизнеспособности и оплодотворяющей способности мужского гаметофита
    • 2. 2. 2. Первичная очистка токсинов Verticillium dahlia Kleb
    • 2. 2. 3. Культура пыльников in vitro
  • ГЛАВА 3. СТРАТЕГИЯ ПРОВЕДЕНИЯ ГЕНЕТИКО-СЕЛЕКЦИОННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ ПО СОЗДАНИЮ ДОНОРОВ РАННЕСПЕЛОСТИ, ВЫСОКОГО СОДЕРЖАНИЯ БЕТА — КАРОТИНА В ПЛОДАХ, УСТОЙЧИВОСТИ К БОЛЕЗНЯМ
    • 3. 1. Оценка и скрининг генофонда С. аппиит по признакам раннеспелости, высокого содержания /? — каротина в плодах и устойчивости к болезням
      • 3. 1. 1. Оценка генофонда С. аппиит var.annuum по признаку раннеспелости
      • 3. 1. 2. Источники высокого содержания витамина С и (3 — каротина в популяции С. аппиит var.annuum
      • 3. 1. 3. Доноры устойчивости к болезням в генофонде
  • Capsicum
    • 3. 2. Норма реакции признаков раннеспелости, высокого содержания /? -каротина в плодах и устойчивости к болезням
      • 3. 2. 1. Проявление признаков раннеспелости и их наследование у представителей Grossum и Fasciculatum
      • 3. 2. 2. Изменчивость и наследование признака высокое содержание Р — каротина у представителей Grossum и
  • Fasciculatum
    • 3. 2. 3. Варьирование устойчивости к ВТМ и ее наследование в зависимости от экологических факторов, множественности инфекции и генотипической среды у представителей
  • Capsicum
    • 3. 3. Оптимизация методов оценки и отбора по признакам раннеспелости и устойчивости к болезням
    • 3. 3. 1. Методы селекции на раннеспелость и приемы, интенсифицирующие этот процесс
    • 3. 3. 2. Модуляция признаков раннеспелости и неспецифической устойчивости к заболеваниям под воздействием когерентного излучения
    • 3. 3. 3. Метод оценки исходного материала на устойчивость к вертициллезному увяданию по микрогаметофиту и спорофиту
  • ГЛАВА 4. ТЕОРЕТИЧЕСКИЕ ОСНОВЫ СОЗДАНИЯ ГЕНОФОНДА РАСТЕНИЙ С ГЕНЕТИЧЕСКИ ОБУСЛОВЛЕННЫМ КОМПЛЕКСОМ ХОЗЯЙСТВЕННО-ЦЕННЫХ ПРИЗНАКОВ
    • 4. 1. Оптимизация генетико-статистического метода анализа количественных признаков растений и возможности идентификации ключевых аллелей их кодирующих
    • 4. 2. Проявление и наследование комплекса хозяйственно-ценных признаков
    • 4. 3. Характеристика кластеризации и ее оптимальность
    • 4. 4. Состав и характеристика кластеров хозяйственно-ценных признаков овощного перца
    • 4. 5. Реконструкция регуляторных контуров глобальной генной сети важнейших хозяйственно-ценных признаков
  • ГЛАВА 5. ОСОБЕННОСТИ МЕТОДОЛОГИИ ИССЛЕДОВАНИЙ ГЕНОФОНДА С. ANNUUM VAR. ANNUUM ПО ПРИЗНАКУ «ПЕРЕКЛЮЧЕНИЕ'ФАЗ РЕПРОДУКЦИИ» С ПОМОЩЬЮ КУЛЬТУРЫ ТКАНЕЙ
    • 5. 1. Переключение фаз репродукции и особенности регенерации растений в культуре пыльников и незрелых зиготических зародышей in vitro
    • 5. 2. Генетические и эпигенетические фактороы, обуславливающие переключение фаз репродукции
    • 5. 3. Наследование признака переключения фаз репродукции в культуре in vitro
  • ГЛАВА 6. РЕЗУЛЬТАТЫ РЕАЛИЗАЦИИ ГЕНЕТИЧЕСКОЙ ПРОГРАММЫ ПО СОЗДАНИЮ ГЕНОФОНДА CAPSICUM С КОМПЛЕКСОМ ХОЗЯЙСТВЕННО-ЦЕННЫХ ПРИЗНАКОВ
    • 6. 1. Раннеспелые сорта с комплексной устойчивостью к заболеваниям и улучшенным биохимическим составом
    • 6. 2. Раннеспелые гибриды на стерильной основе с улучшенным биохимическим составом, толерантные к заболеваниям
    • 6. 3. Особенности семеноводства гибридов и материнских форм на стерильной основе и стабилизация проявления признака семенной продуктивности при неблагоприятных условиях
  • ВЫВОДЫ
  • РЕКОМЕНДАЦИИ ПО СОВЕРШЕНСТВОВАНИЮ СЕЛЕКЦИИ ПЕРЦА И
  • ВНЕДРЕНИЮ НОВЫХ СОРТОВ И ГИБРИДОВ
  • РЕКОМЕНДАЦИИ ДЛЯ ПРОИЗВОДСТВА И ПОТРЕБИТЕЛЕЙ

Селекционно-генетическая характеристика исходного материала Capsicum L. по основным хозяйственно-ценным признакам (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Проблема полного обеспечения населения овощами и продуктами их переработки, как в Российской Федерации, так и в Приднестровье остается нерешенной. Статистика свидетельствует, что уровень потребления всех овощей различными слоями населения достигает в среднем 70% от рекомендованных физиологических норм (140 кг в год). Поэтому создание принципиально новых высокоурожайных сортов и гибридов овощных культур, обеспечивающих получение высококачественной экологически чистой продукции, а также расширение их ассортимента, является одной из важнейших задач, стоящей перед селекционерами, направленной на обеспечение рационального питания и сохранения здоровья человека.

Перец (Capsicum аппиит L.) экономически значимая овощная культура во многих странах, в том числе в России и Приднестровье, обладает высокими пищевыми, технологическими и вкусовыми достоинствами. Овощной перец способствует более полноценному питанию населения за счет содержания в плодах уникального спектра витаминов, моносахаров, пектинов, органических кислот, минеральных солей и др. биологически активных соединений, и может быть отнесен в разряд культур, способствующих сохранению генофонда и здоровья нации. Если в 70−80 гг. 20-го столетия основными направлениями селекции перца овощного являлись устойчивость к вертициллезному увяданию и продуктивность, то после успешного создания серии сортов с различной степенью устойчивости к болезни трансформировались и требования к культуре. На первый план выдвинулись такие показатели сортов как разнообразие по длине фенологических фаз, форме, цвету и качеству плодов. Кроме того повышенные требования потребителя к комплексу признаков, изменения климатических условий и форм собственности диктовали необходимость скорейшего создания гибридов F, которые в начале 90-х практически отсутствовали в производстве, и у которых легче сочетать необходимый комплекс хозяйственно-ценных признаков (ХЦП). В связи с началом создания гибридов Б] овощного перца необходимо было и одновременная работа по совершенствованию их семеноводства на стерильной основе, обеспечивающая достаточным количеством семян согласно требованиям производства и потребителей.

Для проведения селекционного процесса и выведения новых сортов и гибридов, отвечающих современным требованиям, предъявляемым к культуре производством и потребителем, необходимы фундаментальные исследования растительных генетических ресурсов на предмет наличия и выявления источников и доноров хозяйственно-ценных признаков, которые должны быть всесторонне изучены на молекулярном, клеточном, организменном и популяционном уровнях. Поэтому мониторинг генофонда с идентификацией генотипов по основным ХЦП, выявлением характера их проявления и степени выраженности, включая закономерности наследования полигенов, контролирующих эти признаки, определение механизмов их функционирования являются актуальными и приоритетными исследованиями. Сведения по этим вопросам по культуре перца не многочисленны и недостаточно обобщены. И связано это с двумя причинами. Во-первых, с тем, что фундаментальные основы функционирования растительных полигенных систем до конца не определены и в частности не выявлены детальные механизмы их работы. А во-вторых, перец, будучи экономически значимой культурой, в тоже время не входит в число приоритетных генетических объектов, является трудным для обычных цитолого — генетических исследований, так как имеет специфическое не дифференцированное строение наследственного аппарата. Большинство его хромосом являются метацентрическими, одинаковыми по размеру, поэтому морфологически практически не различимыми. До сих пор для этого объекта отсутствует полные хромосомные карты, отображающие имеющиеся 12 групп сцепления. Удачным решением, сдвинувшим картирование признаков у перца, было создание трисомной коллекции по 12 хромосомам, что удалось французским исследователям еще в начале семидесятых годов прошлого столетия. Трисомики классифицировались с помощью метода дифференциальной окраски, что давало возможность определения групп сцепления для конкретных генов, в том числе и селекционно-ценных. К сожалению, на наш взгляд большим недостатком созданной коллекции явилось то, что в основе ее положен восприимчивый в сильной степени к вертициллезному увяданию сорт Doux-des-Landes. Возможно, это как раз и было одной из причин ослабления интереса к данной работе. Основное внимание исследователей переключилось на молекулярно — генетическое направление. Считалось, что оно даст более точный и быстро получаемый результат в сравнении с классическими методами. Были сделаны неоднократные попытки создания рестрикционных карт перца. Отмечалось, что предлагаемые молекулярно — генетические методы и особенно для количественных признаков у перца часто имеют ограничения в силу низкого ДНК полиморфизма, который в свою очередь зависит от генетического фона или от комбинации скрещивания. Вследствие этого молекулярной маркировке поддавались на первых порах только около 25% изучаемых качественных и количественных признаков у С.аппиит. В тоже время известно, что большинство основных ХЦП определяются именно как полигенные. Однако совсем недавно, изменив подходы и используя феномен синтении, DNK LandMarks в сотрудничестве с Корнельским университетом, New York USA объявили о полном завершении работы с рестрикционной картой перца, которая находится в свободном доступе на сайте университета (Pick, 2009; Wu et al., 2009). Сообщается, что это первая полная генетическая карта генома перца, основанная на серии общих генов, распределенных как у видов семейства пасленовых: томата, картофеля, баклажана, — так и модельного растения Arabidopsis thaliana. Таким образом, полученная карта в большей степени виртуальная, и поэтому ее пригодность к практической работе все-таки требует конкретного уточнения и подтверждения. В тоже время наличие такой карты, несомненно, является хорошей методической основой и инструментом для изучения конкретных количественных признаков (КП), что остается на данном этапе существенной и актуальной задачей. Но в целом, для молекулярно-генетического направления отмечается как недостаточность набора уже идентифицированных полигенов, так и методов их изучения (Чесноков и др., 2008). Кроме того, высокая стоимость подобных изысканий на данный момент и возможные осложнения, вызванные неблагоприятными сцеплениями у ХЦП, остаются одними из главных препятствий для массового использования этих методов в практической селекции для большинства отечественных, да и ряда зарубежных селекционных учреждений (Paran et al., 1998; Barchi et al., 2007). В результате использование молекулярно-генетических методов в генетико-селекционных исследованиях пока ограничено, и альтернативным подходом остается применение биометрических методов генетики. Наибольшее распространение в практике анализа КП получили генетико-статистические методы, и в частности диаллельный анализ, предложенный Хейманом (Hayman, 1954), либо его модификации. Метод имеет ряд ограничений: при наличии материнского эффекта и эпистатических генных взаимодействий он не может использоваться. В тоже время в наследовании большинства ХЦП отмечаются различные генные взаимодействия. Кроме того, используя метод Хеймана, невозможно провести сравнительную эколого-генетическую идентификацию доминантных аллелей исследуемых генотипов, т.к. метод дает только процентное соотношение доминантных аллелей у генотипов и не определяет их идентичность. Но селекционеру для получения принципиально новых результатов нужно четко представлять, подбирая пары для скрещивания, насколько различаются исходные формы и различаются ли вообще. Поэтому совершенствование как уже существующих, так и разработка принципиально новых методов, дифференцирующих КП растений, остается актуальной задачей, имеющей не только новизну, но и большую практическую значимость.

Важное место в разработке новых генетико-селекционных направлений занимают клеточная и тканевая культура in vitro. Их давно пытаются использовать в генетических и селекционных исследованиях Capsicum L.(George, Natrayanaswamy, 1973; Dumas de Vaulex et al., 1981; Fari, Csillery, 1983; Fari, 1995). Хотя наибольшие успехи в ряде случаев и с практическим выходом достигнуты с помощью культуры пыльников in vitro (Dumas de Vaulex et al., 1981; Daubeze et al., 1990, Mityco et al., 1995a-Venczel, Gemesne Juhasz, 1998), большие надежды возлагаются и на соматический эмбриогенез (Fari, 1995, Binzel et al, 1996). При получении регенерантов у растений in vitro имеет место переключение гетерофазной репродукции на гомофазную, сопровождаемое сменой бипарентального наследования на унипарентальное (органогенез, партеногенез, соматический эмбриогенез) (Батыгина, Васильева, 2002). Анализируя имеющиеся литературные источники по культуре in vitro у Capsicum, можно отметить основные трудности, возникающие при переключении фаз репродукции. К ним относятся как дифференцированная способность генотипов к индуцированному переключению, так и низкий выход регенерантов в расчете на один эксплант или полное отсутствие регенерации, слабая повторяемость результатов, низкая эффективность укоренения после длительного пассирования. При изучении индуцированного органогенеза, соматического эмбриогенеза и партеногенеза особый интерес представляет, на наш взгляд, не эмпирическая разработка протоколов различных методов для отдельных генотипов, а фундаментальные исследования генетики развития изучаемого объекта и экспрессии конкретных генов. Решение этих вопросов в первую очередь позволит выделить ряд надежных доноров по признаку образования эмбриоидов из незрелых микроспор в культуре пыльников, используемых для дальнейшей регенерации гомозиготных линий. Решение поставленных задач, кроме того, может выявить оригинальную генетическую систему у перца, ответственную за размножение. Ее использование на практике разрешит ряд вопросов, связанных с трансгенозом, апомиксисом, микроклональным размножением, а также будет способствовать усовершенствованию методов гибридного семеноводства на стерильной основе.

Для получения максимальных результатов при минимальных затратах принципиальным вопросом является также и выбор модельного объекта исследований. Наш выбор объекта Capsicum продиктован, прежде всего, тем, что овощной перец во многих странах получил статус экономически значимой культуры, селекция которой прогрессивно развивается. Имеются и определенные достигнутые отечественные приоритеты по этой культуре, которые нельзя упустить. Потребовались новые подходы для упрочения, закрепления и совершенствования селекционного процесса. В связи с этим целью наших исследований явилась комплексная эколого — генетическая идентификация ключевых аллелей хозяйственно-ценных признаков и их использование в селекции на основе мониторинга генофонда Capsicum. Для этого решались следующие задачи:

1. Изучение проявления, степени выраженности, изменчивости и наследования во взаимосвязи со средой признаков раннеспелости, высокого" содержания р — каротина в плодах, устойчивости к болезням и переключения фаз репродукции в культуре in vitro.

2. Изучение проявления и наследования комплекса хозяйственно-ценных признаков.

3. Совершенствование методов оценки и отбора по признакам раннеспелость и устойчивость к болезням.

4. Разработка регрессионно-кластерного анализа полигенов ХЦП.

5. Эколого-генетическая идентификация ключевых аллелей ХЦП.

6. Уточнение структуры организации полигенов ХЦП.

7. Определение состава комплекса информативных аллельных эффектов, связанных с проявлением гетерозиса в изучаемых условиях и возможного его моделирования.

8. Создание генофонда Capsicum с комплексом ХЦП.

Исходя из общего состояния генетических исследований у овощного перца и современных запросов по селекции этой культуры, в результате выполнения настоящей работы на защиту выносятся следующие положения:

1. Генетический мониторинг полигенов ХЦП генофонда Capsicum включающий:

• Систему методов оценки проявления, степени выраженности, варьирования и наследования ХЦП, обеспечивающую их достоверную идентификацию.

• Регрессионно-кластерный анализ генотипов с генетически обусловленным комплексом ХЦП.

• Эколого-генетическую идентификацию генотипов по норме реакции с визуализацией аллелей, контролирующих важнейшие ХЦП.

• Изучение структуры взаимосвязей ХЦП и организации контролирующих их полигенов.

• Идентифицированные доноры перца по важнейшим ХЦП: болезнеустойчивости, раннеспелости, содержанию (3 — каротина и витамина., С, генам жизненной стратегии, определяющих тип репродукции в условиях in vitro.

2. Практическое осуществление генетической программы по созданию доноров ХЦП, отвечающих современным требованиям селекции перца для различных условий возделывания.

3. Особенности семеноводства родительских форм и гибридов F| овощного перца для условий пленочных теплиц.

В настоящей работе представлены результаты исследований, выполненных в 1976;1998 гг. в Приднестровском научно-исследовательском институте сельского хозяйства на базе лабораторий частной генетики овощных культур, иммунитета и селекции, а также параллельно в 1996;2009 гг. в Государственном университете им. Т. Г. Шевченко на базе научно-исследовательских лабораторий: «Когерентная оптика и голография» и «Биоинформатика».

ВЫВОДЫ.

1) Результаты проведенных исследований показали эффективность генетического мониторинга генофонда Capsicum, выявляющего идентифицированные источники и доноры ХЦП: болезнеустойчивости, раннеспелости, высокого содержания (3 — каротина и витамина С, способности к переключению фаз репродукции в условиях in vitro, а также комплекса признаков, обуславливающих повышенную продуктивность.

2) Генетический мониторинг генофонда Capsicum показал организацию полигенов и блоков генов хозяйственно-ценных признаков в виде генных сетей, функционирующих в соответствии с теорией эколого-генетического контроля количественных признаков, причем смена условий выращивания адекватно переопределяет структуру связей ХЦП, как за счет координированного изменения эффектов аллелей, так и переполюсовки взаимосвязей.

3) Предложена методика регрессионно-кластерного изучения количественных признаков растений эффективная при наличии материнского эффекта и эпистатических генных взаимодействий.

4) Разработан подход по сравнительной эколого-генетической идентификации генотипов согласно их нормы реакции с визуализацией структуры взаимосвязей важнейших ХЦП.

5) Информация о лимитирующих факторах среды, нормы реакции признаков, состава ГС, определяющей признак, и эффекта переопределения доминантных аллелей ХЦП позволяет моделировать конечную функцию — формирование признака в моделируемом пространстве.

6) Представлен подход по стабилизации выраженности ХЦП в условиях воздействия биотических и абиотических стрессоров, облучая микрогаметофит и спорофит чувствительных генотипов электромагнитным излучением с длиной волны бЗОнм и энергией 6,85 Дж.

7) Уточнена система методов оценки проявления, варьирования и наследования, важнейших ХЦП по микрогаметофиту и по спорофиту в динамике, обеспечивающая их достоверную идентификацию.

8) Создано в соавторстве методом рекуррентной селекции 5 раннеспелых сортов, а также 2 гибрида на стерильной основе для выращивания в пленочных теплицах и открытом грунте в результате практического осуществления генетической программы по созданию и использованию доноров с комплексом ХЦП. Они включены в Государственный реестр по Российской Федерации и Республике Беларусь с допуском к использованию. По ряду из них получены патенты.

9) Отработана технология выращивания гибридных семян новых гибридов, позволяющая в производственных условиях получать 10 — 35 г/м урожая семян в зависимости от возможностей хозяйства.

РЕКОМЕНДАЦИИ по совершенствованию селекции перца и внедрению новых сортов и гибридов.

1. Применять в селекционной практике регрессионно — кластерный анализ для оценки и идентификации генотипов с комплексом ХЦП. Используя результаты идентификации генотипов по комплексу признаков, визуализировать упрощенные схемы генных сетей ХЦП конкретных генотипов для целенаправленного подбора пар для скрещивания и моделирования конечной функции — формирования признака в моделируемом пространстве.

2. Для создания раннеспелых сортов овощного перца с комплексом ХЦП использовать в качестве доноров генотипы с укороченными 1 -ой, 2 -ой и 3 -ей фенофазами: Л-3/98, Л-5/98, Винни-Пух, Венти, Тополин и другие, толерантные к болезням с высокой продуктивностью и хорошим качеством плодов.

3. Для создания разнообразных по цвету и форме перикарпия раннеспелых материнских форм на стерильной основе с генами ядерной мужской стерильности, использовать метод рекуррентной селекции, сочетая беккроссирование и самоопыление лучших отборов по комплексу ХЦП.

4. Для получения 3-х, 4-х поколений в год и экспресс оценки раннеспелости использовать эмбриокультуру в комбинации с выращиванием полученных растений в защищенном грунте.

5. Для повышения рентабельности семеноводства раннеспелой материнской формы в стрессовых условиях (высокая температура) использовать облучение пыльцы перед опылением красным светом с длиной волны ^=630−660 пт и энергией 6,85 Дж.

6. Создание сортов и гибридов с комплексной толерантностью к болезням проводить на провокационных фонах по возбудителям увядания, мозаики и грибных гнилей. Использовать в качестве доноров раннеспелости и комплексной толерантности к болезням сорта Добрыня.

Никитич, Катюша, Тополин, Венти, Ермак, а в случае появления новых рас и штаммов возбудителей — резервный фонд источников устойчивости. Для ускорения скринирования генотипов на устойчивость к вертициллезному увяданию применять методику оценки исходного материала овощного перца по микрогаметофиту и ранним фазам спорофита в условиях in vitro.

7. Для повышения качества и улучшенного биохимического состава плодов перца вести селекцию с использованием доноров с комплексом ХЦП: JI-49, JI-29, Т-119/8, сорт Прометей и др. Учитывать в программе селекции на улучшенный биохимический состав и окраску перикарпия выявленные взаимодействия генов be и у, дифференцированную жизнеспособность гамет с этими генами, наличие цис-транс-эффекта, обуславливающего нестабильное наследование окраски в потомстве рецессивных форм.

8. Для создания раннеспелых материнских линий с комплексом ХЦП насыщать лучшие линии генами мужской стерильности и высокого содержания ß—каротина. Для ускоренного получения выровненного и стабильного генетического материала использовать культуру пыльников и доноры признака образования эмбриоидов: Добрыня Никитич, Л-49, Прометей, Колобок. Вести селекцию гибридов F| на основе новых стерильных линий, учитывая их комбинационную способность.

9. Использовать для организации гибридного семеноводства перца уточненную технологию выращивания, обеспечивающую получение урожая семян 10—35 г с 1 м².

РЕКОМЕНДАЦИИ ДЛЯ ПРОИЗВОДСТВА И ПОТРЕБИТЕЛЕЙ.

1. Выращивать в открытом и защищенном грунте новые раннеспелые высокоурожайные сорта и гибриды: Ермак, Добрыня Никитич, Катюша, Тополин, Юбилейный Семко, отвечающие современным требованиям раннего овощеводства и обеспечивающие урожайность в зависимости от зон и условий выращивания от 2 до 10 кг/м .

2. Выращивать в открытом и защищенном грунте новый сорт Прометей и гибрид Витамин предназначенные для функционального питания, отличающиеся повышенным содержанием антиоксидантов: ß—каротина и витамина С, благотворно влияющих на здоровье человека.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

На основе генетического мониторинга Capsicum проведена селекционно-генетическая характеристика генофонда перца, выделены источники и доноры ХЦП и разработаны соответствующие подходы для ускорения селекционного процесса. Эффективность, доступность и надежность разработанных подходов апробированы при создании новых сортов и гибридов, что позволяет рекомендовать их для использования в селекционной практике при создании нового исходного материала с заданными параметрами.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Аграрный сектор США в конце XX века./Сб. под редакцией д.э.н. Чернякова Б. А., Москва, 1997, 1−392.
  2. Ю.В., Выговский Ю. Н., Гаткин Е. Я., Дорогобид Я. С., Кручинин Л. Е., Малов А. Н., Малов С. Н., Молоцило В. Ю., Тимина О. О., Фещенко B.C., Фещенко Л. В. Физика лазерной биостимуляции. М.: MeDia, 2000. 71 с.
  3. А., Умаров З. М. Влияние миоинозита на морфогенез недозрелых зародышей хлопчатника in vitroZ/Узб. Биол. ж., 1985,5, 4950
  4. A.B. Селекция овощных на раннеспелость и толерантность к низким температурам.// Генетика, 1963, 529−534.
  5. A.B. Подбор родительских компонентов для получения высокоурожайных гибридов овощных культур. В кн.: Гетерозис в овощеводстве, Л., 1968, с.71−92
  6. Е.А. 2008. Разработка технологии реконструкции и компьютерного анализа генных сетей и ее применение в биологических исследованиях.// Дис. Канд. Биол. Наук, Новосибирск, РАН, Сибирское отделение, Ин -т цитологии и генетики, с. 1−229.
  7. Ю.Аникеенко B.C. Использование цитоплазматической мужской стерильности в селекции перца (Capsicum аппиит L.). Автореферат дис. канд. с.-х. наук, Л., 1977, 1−24.
  8. П.Багиров Ф. М. Изучение биологических особенностей и хозяйственно-ценных признаков различных сортов перцев и баклажанов в условиях Апшерона.- Автореферат, канд. с.-х. наук, 1970, Баку, стр. 1−29.
  9. H.H., Король М.М, Тимина О. О., Рущук, B.C. Генетические основы селекции овощных культур на устойчивость к ВТМ, Кишинев, «Штиинца», 1983, 1−114.
  10. H.H., Бронштейн А. И., Простакова Ж. Г. и др. Способ оценки устойчивости сортов сои к Fusarium oxysporum. А.с.№ 1 593 589, СССР БИ, 1990, № 35.
  11. БалашоваН.Н., Морозова H.A., Простакова Ж. Г. и др. Пыльцевая селекция сельскохозяйственных растений на устойчивость к возбудителям грибных болезней.//Известия АН РМ: Биологические и химические науки, 1992,№ 2:3−11
  12. Т.Б., Васильева В. Е. Размножение растений. Изд-во Петербургского университета: Ст.-Петербург, 1−223
  13. Боровиков В. Statistika. Искусство анализа данных на компьютере: Для профессионалов. 2-е изд. (+CD).- СПб.: Питер, 2003. 688с.
  14. Н.И. 1919. Иммунитет растений к инфекционным заболеваниям. // Известия Петровской сельскохозяйственной академии. 1−4, с. 1−174
  15. Н.И. Учение об иммунитете растений к инфекционным заболеваниям. 1935. В кн.: Теоритические основы селекции растений, т.1, М. — Л., Сельхозгиз, с.1−100
  16. Н.И. 1967. Селекция как наука. Избр. произведения, т.1, Л., Наука, с.328−342
  17. В.В. Оценка сортов ячменя ярового по адаптивной стабильности.// Селекщя I насшництво, 2011.Вып. 100.-С.96−100.
  18. Д.А. Изучение мутагенной и рекомбиногенной активности физических факторов на примере томатов. Автореферат канд.биол. наук, М., 1978, 1−24.
  19. А., Харрисон Б. Основы вирусологии растений. М., 1978, 419с.
  20. Г. С. Перец Capsicum Tourn. (Биологические особенности видовое и сортовое разнообразие и его селекционное использование). Автореф. дис. доктора с.-х. наук, Ленинград, 1974, с. 1−55.
  21. Г. С. Овощные культуры (перцы).(Учебное пособие для студентов плодфака). Краснодар, 1979, с. 1−99.
  22. Г. Сравнительная биохимия каротиноидов. Москва, 1954, с. 1−205.
  23. Государственный реестр селекционных достижений, допущенных к использованию. Сорта растений (официальное издание), М., 2002
  24. Н.Д., Зубкова С. М., Лапрун И. Б., Макеева Н. Д. Физико-химические механизмы биологического действия лазерного излучения.//Успехи современной биологии, 1987, 103,1:31−43.
  25. Дикий С. П, Студенцова Л. Н. Исходный материал для селекции сладкого перца. Научные труды Майкопской опытной станции ВИР, 1974, вып.7, стр. 159−163.
  26. С.П., Аникеенко B.C. Гетерозисные гибриды перца на стерильной основе. Тезисы докл. конф. «Селекция и генетика овощных культур», ч. З, Кишинев, 1975, стр. 71−72.
  27. С.П. Гибриды перца на стерильной основе. Доклады советских ученых к 19-му международному конгрессу по садоводству, М., Колос, 1974, стр. 373−377.
  28. С.П. Гибриды сладкого перца на стерильной основе. Бюл. ВНИИ растениеводства, 1976, вып.64, стр. 18−22.
  29. С.П., Аникеенко B.C. Комбинационная способность сортов сладкого перца.- Научн.-техн. бюл. ВНИИ растениеводства, 1986, № 166, стр.75−78.
  30. В.А. К проблеме генетического анализа полигенных количественных признаков растений. СПб.:ВИР, 2003, 1−35
  31. В.А., Драгавцева E.B. Механизм сдвигов доминирования количественных признаков яровой пшеницы в разных географических точках.//Генетика. 2011. Т.47. № 5. С.691−686.
  32. В.А., Литун П. П., Шкель Н. М., Нечипоренко H.H. Модель эколого-генетического контроля количественных признаков растений.// Докл. АН СССР. 1984. Т.274, 3:720−723
  33. Л.В. Влияние низкоинтенсивного лазерного излучения на процессы роста и развития в растительной ткани. Автореферат дис. канд. биол. наук, Иркутск, СИФИБР СО РАН, 1−24.
  34. Т.И., Дьячук П. А. Культура пыльников злаков: современное состояние, проблемы, перспективы (обзор).//Сельскохозяйственная биология, 1989, 5: 3−10
  35. Х.К., Высоцкий В. А., Плотникова Г. А. Развитие зародышей вишни и черешни в культуре in vitro, изолированных на ранних фазах эмбриогенеза.// С.-х. биология, 1984, 11, 46−48.
  36. В.Л. Возделывание перца сладкого в МССР (рекомендации). -Кишинев: Молдагроинформреклама, 1990. 16 с.
  37. В.М., Ковалева В. Ю. Многомерный аналих биологических данных. Учебное пособие.- Горно-Алтайск:РиО Горно-Алтайского университета, 2007.-58с.
  38. П.М. Культурные растения как сородичи.- Издание 3-е перераб. и доп.-Л., 1971, с. 1−752.
  39. З.И. Теория и практика вегетационного метода. -М.-.Наука, 1968.-267с.
  40. A.A. Проблема адаптации в селекции, сортоиспытании и семеноводстве сельскохозяйственных культур. /Генетические основы селекции сельскохозяйственных растений, М., 1995, 3−15
  41. A.A. Эколого-генетические основы адаптивности системы селекции растений. Селекция и семеноводство, 1999, № 4, 5−16
  42. A.A. Адаптивная система селекции растений (эколого-генетические основы): Монография в двух томах. М.: Изд-во РУДН, 2001. Том 1:405−407
  43. A.A., — Аидрющенко В.К., Король М. М., и др. Изменчивость и наследование хозяйственно-ценных признаков у томата. Картя Молдовеняскэ, Кишинев, 1973, 19−26.
  44. А.П., Болгов А. Н., Фролова А. Г. Исходный материал для селекции перца на жаростойкость. Науч.-техн. бюл. ВИР, 1988, вып. 186, стр. 12−16.
  45. Т.С. Изучение гетерозиса у сладкого перца в Молдавии.-Материалы науч.-техн. конф. по орошаемому земледелию и овощеводству, 1968, вып. 2, Кишинев, стр.
  46. Т.С. Селекция сладкого перца в Молдавии. Автор, дис. канд. с.-х. наук, Кишинев, 1971, 1−29
  47. H.A., Макеева E.H., Мезенко А. М. Генетика. Энциклопедический словарь. Минск: Тэхналопя. 1999. — 448 с.
  48. Т.Н. О молекулярных механизмах терапевтического воздействия низкоинтенсивных лазеров.// ДАН СССР (биофизика), 1986, 291: 12 451 248
  49. X., Кляйнхемпель А., Эртель К., Презерер Г., Шмидт X., Шпар Д. Борьба с вирусными болезнями растений. М., Агропромиздат, 1985, с.302−307
  50. A.B., Хотылева JI.B. Метод оценки адаптивной способности и стабильности генотипов, дифференцирующей способности среды. Сообщение 1. Обоснование метода.// Генетика, 1985а. 21, 9: 1481−1490
  51. A.B., Хотылева Л. В. Метод оценки адаптивной способности и стабильности генотипов, дифференцирующей способности среды. Сообщение 2. Числовой пример и обсуждение.// Генетика. 19 856. т. 21, № 9. С.1491−1498.
  52. H.A., Ананько Е. А., Колпаков Ф. А., Подколодная O.A., Игнатьева Е. В., Горячковская Т. Н., Степаненко И. Л. Генные сети// Молекулярная биология, 2000, т. 34, № 4, с. 533−544
  53. Т.Н., Баврина Т. В., Аксенова Н. П. Особенности регуляции цветения у фотопериодически чувствительных и нейтрального табака in vivo и in укго//Физиол. Раст., 1976, т.23, № 2, 365−372
  54. Л.И. Биология индивидуального развития (генетический аспект): Учебник. М.:МГУ, 2002, 1−264.
  55. Н.В., Драгавцев В. А. Введение в теорию эколого-генетической организации полигенных признаков растений и теорию селекционных индексов. СПб: СЦДБ. 2008. 88с.
  56. Кочиева Е. З. Геномный полиморфизм представителей семества
  57. Solanaceae (род Solanum, род Lycopersicon, род Capsicum). Дисс. доктора биол. наук. Московская сельскохозяйственная академия им. К. А. Тимирязева, М, 2004, с.350
  58. А.Н., Лях В.А., Тодераш Л. Г., и др. Методы гаметной и зиготной селекции томатов., Кишинев, Штиинца, 1988, 152 с.
  59. В.Д., Иванов В. А., Храмов Р. Н., Кособрюхов A.A. Низкоэнергетический красный свет повышает устойчивость фотосинтетического аппарата проростков шпината к УФ-В.// Вестник Башкирского университета, 2001, 2, 1:50−52.
  60. Г. А. Применение изолированной культуры зародышей и тканей при отдаленной гибридизации плодовых растений. В кн.: Тканевые и клеточные культуры в селекции растений/Всесоюз. Академ.с.-х. наук им. В. И. Ленина. М., 1979, 70−77
  61. Г. Ф. Биометрия, М., Высшая школа, 1990, 1−352
  62. Лазурьевский «Г.В., Гуцу Е. В. Метоболиты стручкового перца./Кишинев: Штиинца, 1983, стр. 1−65.
  63. В.А., Гикало Г. С., Гиш P.A. Культура перца на Северном Кавказе. КГАУ, Краснодар, 1999, 214с.
  64. Лях В.А., Калинова М. Г., Сорока А. И. Микрогаметофитный отбор на устойчивость к пониженной температуре у рапса ярового// Цитология и генетика., 1997,№ 3:71−76
  65. А.Н., Тимина О. О., Фещенко B.C. Биостимуляция модулированным лазерным излучением. В кн.: Применение лазеров в науке и технике, ИФИЛФ СО РАН, Иркутск, 1997, 9:159−163.
  66. А.Н., Молоцило В. Ю., Тимина О. О., Фещенко B.C., Фещенко Л. В. Влияние регуляторной структуры электромагнитного поля на биостимуляцию растений. В кн.: Мартынович Е. Ф. (Ред.),
  67. Люминесценция и сопутствующие явления. Изд-во Иркутского университета, 1999, 186−190.
  68. М.И., Пышная О. Н. Селекция раннеспелых гетерозисных гибридов Fi перца сладкого /Тези доповідей міжнародної наукової конференції: Селекція овочевих і баштанних культур на гетерозис», 1996, Харьків, 42−43.
  69. М.И., Пышная О. Н., Харченко В. А. Методические рекомендации по использованию функциональной мужской стерильности в производстве гибридных семян томата и сладкого перца, М, 2000, 12с.
  70. Г. С. Перспективные гетерозисные гибриды перца./Селекция и семеноводство овощных и бахчевых культур, М., 1998, с. 130−131.
  71. Л.Г. Пыльцевая селекция томата на устойчивость к токсинам Alternaria solani S.- В кн.: Селекция растений: новые генетические подходы и решения. Кишинев. 1991:245−252
  72. Методика проведения испытаний на отличимость, однородность и стабильность. Перец Capsicum annuum L. /Официальный бюллетень государственной комиссии РФ по испытанию и охране селекционных достижений при Минсельхозе России, 1996, № 10, 781−796
  73. Методические указания по оценке и отбору томата и моркови на высокое содержание З-каротина. М., 1991, 1−54.
  74. Методические указания по селекции сортов и гибридов перца, баклажана для открытого и защищенного грунта. М., 1997,1−88.
  75. Методические указания по гаметной селекции сельскохозяйственных растений (методология, результаты и перспективы)/ Под ред. В. Ф. Пивоварова. РАСХН — ВНИИССОК — МПНТ РФ, М, 2001.-386 с.
  76. Нормы физиологических потребностей в энергии и пищевых веществах для различных групп населения Российской Федерации //
  77. Методические рекомендации под ред. Тутельян В. А. 2008. М.П.2.3.1.2432−08.
  78. О.Т. Мучнистая роса перцев. Научные труды Майкопской опытной станции ВИР, 1974, вып.7, стр. 193−194.
  79. Н.С. Фитофторовые грибы. Д., Наука, 1974, 1−207
  80. Н.В. Перспективные гибриды перца овощного, — Тр. Кубан. с.-х. ин-та, 1976, вып. 123 (151), стр.37−40.
  81. В.Ф., Балашова H.H., Лебедева А. Т., Агапова С. А. Теоретические, методические и практические аспекты селекции овощных культур.-Селекция овощных культур. Сб. науч. трудов, 1998, вып. 35, стр. 3−21.
  82. А.Ю., Попова H.A., Тюрин A.B. Физическая модель воздействия низкоинтенсивного лазерного излучения на биологические объекты.// Оптика и спектроскопия, 2007, 103, 4:690−697.
  83. Е.К., Чесноков Ю. В. Современные методы геномного анализа в исследованиях генетики количественных признаков.//Сельскохозяйственная биология, 2005, 3:3−18.
  84. И.И., Калягина Л. Г. Исходный материал для селекции сладкого перца в условиях Средней Азии.- Использование мир. коллекций культ, раст. для селекции. Ташкент, 1985, стр. 3−11.
  85. П.Ф. Введение в статистическую генетику. Минск, Вышейшая школа, 1974, 1−148.
  86. А.Б. Биофизика в 2-х томах. Т.2. Биофизика клеточных процессов, 2-е издание, М., Университет, 2000,
  87. Руководство по апробации овощных культур и кормовых корнеплодов. T. W Под ред. И. Г. Эйхельда. ОШЗ — Сельхозгиз, 3-е издание, переработанное и дополненное, М-Л, 1948, с. 71−86.
  88. Руководство по апробации овощных культур. -1982
  89. И.JI., Рымин O.A. Анализ генетических моделей систем диалельных скрещиваний.//Генетика. 1989. Т.25 (10):1892−1895
  90. И.Л. Разрешающая способность генетического анализа количественных признаков по Хейману: Автореф. Дис. канд. биол. наук. Л.: ВИР, 1991,24 с.
  91. В.О. Оценка коллекции перца сладкого с целью выделения перспективных сортообразцов для селекционного использования в условиях Узбекистана.-Тр. УзбНИИ овощебахчевых культур и картофеля., 1987, вып.27, стр. 56−66.
  92. В. А. Система фитохромов: фотобиофизика и фотобиохимия in vivoV/Биологические мембраны, 1998, 5:549−572.
  93. В.В., Захаров В. Т., Кривобочек В. Г. и др. Метод оценки гомеоадаптивности в системе экологической селекции яровой мягкой пшеницы/Методические указания, Безенчук, — 2007.-С. 1−5.
  94. А.П. О методике создания инфекционного фона для оценки перцев и баклажанов к болезням увядание.- Тр. МолдНИИОЗиО.- 1968, т.8, вып.2, стр. 151−157.
  95. А.П., Загинайло H.H., Ильенко Т. С. Некоторые итоги селекции сладкого перца на устойчивость к вертициллезу.- Тр. V Всес. совещания по иммунитету растений, Киев, 1969, вып. 13, стр. 48−52.
  96. Харьковй А. Г1., Загинайло H.H., Ильенко Т. С. Селекция сладкого перца на устойчивость к вертициллезу ./Защита растений, 1974, № 1, с.22−23.
  97. А.П. Селекция овощных пасленовых культур на устойчивость к болезням /Кишинев, Штиинца, 1994, 1−179
  98. А.Г. Каротиновый состав сыворотки крови разных групп населения и влияние на него пищевых продуктов, обогащенных бета-каротином.//Автореф. канд. мед. наук, М, 1998, Институт питания АМН, 1−24.
  99. A.C., Черемушкин Е. С. Обработка микрочиповых данных с помощью алгоритма нечеткой кластеризации.//Выч. методы и программирование, 2006, 7: 1−5.
  100. О.Ю. Создание гибридов Fi с улучшенным биохимическим составом на стерильной основе. Автореферат дисс. кандидата с.-х. наук, ВНИИО, М, 2005:1−24.
  101. О.О. Поражаемость сортов перца мозаикой.// Защита растений, 1978, 7:38
  102. О.О. Фитопатологическая характеристика перца ОCapsicum Ь.).//Известия АН МССР. Серия биол. и хим. Наук, 1980, 3:45−48.
  103. О.О. Фитопатологическая характеристика генофонда рода Capsicum L. Рукопись дис. канд. с.-х. наук, Тирасполь, 1981.
  104. О.О. Фитопатологическая характеристика генофонда рода Capsicum L. Автореферат канд. с.-х. наук, Самохваловичи, Мин. обл., 1981, стр. 1−24.
  105. О.О. Использование культуры in vitro в селекции на иммунитет к болезням. Рук. Деп. В Молд. НИТМ Защита растений 0627, 1988, № 1032-М, Р. Ж. Защита сельскохозяйственных растений от вредителей и болезней, 4, 1989, 54с.
  106. О.О. Хозяйственно-биологическая характеристика стерильных линий сладкого перца в связи с селекцией нагетерозис.//Тезисы международной научной конференции «Селекция овощебахчевых культур на гетерозис», Харьков, 1996,12−1А.
  107. Тимина О. О. Селекция на устойчивость к фитофторозу перца. В кн.: Генетика и селекция растений и животных в Республике Молдова, 7-ой съезд генетиков и селекционеров, Кишинев, 1998, 529−532.
  108. Тимина О. О. Соматический эмбриоидогенез у высших растений (механизм образования, экспрессия) в культуре in vitro.// Международный симпозиум по селекции и семеноводству овощных культур (1−4 марта 1999), Материалы докладов, сообщений, М., 1999, 344−352.
  109. О.О. Идентификация доноров раннеспелости овощного перца Capsicum аппиит L. регрессионно-кластерным анализом.// Овоч1вництво i баштанництво, вип. 51, 2005, 264−281.
  110. О.О., Балашова H.H. Изучение устойчивости генофонда рода Capsicum к вирусу табачной мозаики.// Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции, 1979, т.64, вып.1: 153−155.
  111. О.О., Балашова H.H. Специализированная форма вируса табачной мозаики на перце.- В кн.: Штаммы вирусов растений и их практическое использование. Труды JICXA, 1981, вып. 181:136−138.
  112. О.О., Балашова H.H. Генетика устойчивости перца к комплексу ВТМ+Х-вирус картофеля.// Известия АН МССР. Серия биол. и хим. наук, 1982, 1:22−23.
  113. О.О., Жученко A.A., Грати В. Г., Балашова H.H. Особенности несовместимости видов перца при гибридизации.// Известия АН МССР. Серия биол. и хим. наук, 1982, 2:30−34.
  114. О.О., Седов Г. И., Кинтя П. К., Демидов Е. С. Морфогенез сладкого перца в культуре in vitro.// Известия АН МССР, серия биологических и химических наук, 1987, 2:
  115. О.О., Ильенко Т. С. Сладкий и острый перец / Наука -овощеводству Молдавии, Кишинев, Картя Молдовеняскэ, 1990, 40−48.
  116. О.О., Цыкалюк P.A., Орлов П. К. Наследование и экспрессия способности к индукции соматического эмбриогенеза in vitro в онтогенезе растений перца сладкого.//Сельскохозяйственная биология, 2005,3:61−75.
  117. О.О., Фещенко B.C., Малов А. Н., Корфуненко O.A. Экспрессия хозяйственно-ценных признаков у сладкого перца под воздействием когерентного излучения.// Материалы 2-ой Байкальской школы по фундаментальной физике, Иркутск, 1999, 2:378−384
  118. Тимофеев-Ресовский Н.В. О фенотипическом проявлении генотипа. 1. Геновариация radius incompletes у Dr. Funebris// Журнал экспериментальной биологии, 1925, Сер. А, 1:93−142
  119. B.C., Еналеева Н. Х. Автономное развитие зародыша и эндосперма у кукурузы.//ДАН СССР, 1983, 272, 3:722−725
  120. Г. Б. Создание исходного материала для селекции перца с использованием культуры пыльников. В кн.: Методические указанияпо селекции сортов и гибридов перца, баклажана, для открытого и защищенного грунта, РАСХН, ВНИИССОК, М., 1997,19−23
  121. А.И. Перцы и баклажаны. Сельхозгиз., 1956, с. 1−367
  122. М.А., Силис Д. Я., Смиряев A.B. Статистические методы генетического анализа, М., Колос, 1980, 85−111
  123. Ю.В. Картирование локусов количественных признаков у растений. СПб: ВИР, 2009, 100с.
  124. Р.Н., Галимзянов A.B. Моделирование реальных зукариотических управляющих генных подсетей на основе метода обобщенных пороговых моделей.// Молекул, биология, 2001, т.35:1088−1094.
  125. Эмбриология цветковых растений. Терминология и концепции. Т. З/ Под ред. Т. Б. Батыгиной. СПб., 2000. — 639 с.
  126. Даскалов- С. Получаване на хибридни семена от пипер.-Градинарство, 1974, т. 16, кн.8, стр. 5−7.
  127. С., Милкова Л. Хетерезисна селекция при пипера на стерильна основа.- Генетика и селекция, НРБ, 1978, 11, № 2−3, стр. 155 161.
  128. Л., Даскалов С. Хетерезисна селекция при пипера.-Градин. И лозар. Наука., 1981, 18, № 2, стр.38−44.
  129. Т., Тодоров И. Влияние на някой фактори на средата върку развитието на сортове пипер за ранно производство. /Растениевъд. науки, 1989, 26 № 3: 70−74
  130. Ahmed G.A., Daube ze A.M., Lafortune D., Depestre T., Nono
  131. Womdim R., Duranton C., Berke T., Gaddagimath N.B., Nemonchi G.,
  132. T., Palloix A. 2001. Constracting multiresistant Genotypes of sweetthpepper for Cultivation in the Tropics. In.: XI meeting on Genetics and Breeding of Capsicum and Eggplant, Antalya Turkey, p.293−297
  133. Albar L., Bangratz-Reyser M., Hebrard E., Ndjiondjop M.N., Jones M., Ghesquiere A. Mutations in the elF (iso)4G translation initation factor confer high resistance of rice to Rice yellow mottle virus./7 Plant Journal, 2006, 47:417−426.
  134. Alcantara T.P., Bosland P.W. An inexpensive disease screening technique for foliar blight of chile seedlings.// Hort Science, 1994, 29:11 821 183
  135. Almela L., Lopez-Roca J.M., Candela M.E., Alcazar M.D. Carotenoid Composition of New Cultivars of Red Pepper for Paprika. //J. Agric Food Chemistry, 1991, vol. 39, p. 1606−1609
  136. Ananko E., A., Podkolodny N.L., Stepanenko I. L, Ignatieva E.V., Podkolodnaya O.A., Kolchanov N.A. GeneNet: a database on structure and functional organization of gene networks.// Nucleic Acids Res., 2002, 30 (1):398−401.
  137. Andrasfalvy A., Csillery G. Cytoplasmic systems of interspecific hybrids in Capsicum. In: EUCARPIA V-th Meeting on Genetics and Breeding of Capsicum and Eggplant, Plovdiv, Bulgaria, pp. 18−20
  138. E., Basim E. 2001. Determination of fungal pathogens pfthpepper and eggplant in the province of Isparta and Burdur. In.: XI meeting on Genetics and Breeding of Capsicum and Eggplant, Antalya -Turkey, April 9−13,2001 p.320−322
  139. Arumuganathan K., Earle E.D. Nuclear DNA content of some important plant species.-Plant Mol. Biol. Rep., 1991, 9, 208−219
  140. Arteaga L., Ortega G. Low temperature can also break Capsicum chinense resistance to tomato spotted wilt virus. //Proc. of the X-th EUCARPIA Meeting on Genetics and Breeding on Capsicum and Eggplant, Sept. 7−11, 1998, Avignon, France: 145−147
  141. Asins M.J., Carbonell E.A. Detection of linkage between restriction fragment length polymorphism markers and quantitative traits.//Theor.Appl. Genet., 2000.101:962−969
  142. Atkins W.R.G., Sherrard G.P. The pigments of fruits in relation to some genetic experiments of Capsicum annuum L.-Sci.Proc.R.Dublin Soc. N.S., 1915, 14: 328−335.
  143. Baral J.B., Bosland P.W. An Updated Synthesis of the Capsicum Genus.// Capsicum and Eggplant Newsletter, 21, 2002, 11−21
  144. Baral J.B., Sy O., Bosland P.W. A comparison between a Detached Leaf and a Whole Plant method for Screening Phytophthora Foliar Blight in Chile (Capsicum annuum) CENL. 2004, 23:125−128
  145. Barchi L., Bonnet J., Boudet C., Signoret P., Nagy I., Lanteri S., Palloix A., Lefebvre V. A high-resolution intraspecific linkage map of pepper (Capsicum annuum L.) and selection of reduced RIL subsets for fast mapping.//Genome, 2007, 50: 51−60
  146. Eggplant, Antalya Turkey, April 9−13,2001, p.288−292
  147. Belletti P., Marzachi C., Nada E., Lanteri S. Nuclear DNA content in different species of Capsicum measured by flow cytometry. Capsicum and Egglplant Newsletter, 1995, 14,30−33.
  148. Bergh B.O., Lippert L.F. Six new mutant genes in the pepper, Capsicum annuum L.-Jour. Hered., 1964, 55: 296−300.
  149. Bergh B.O., Lippert L.F. Inheritance of axilary shooting in Capsicum.-Bot.Gaz., 1975, 136: 141−145.
  150. Blauth J.R. Genetic analysis of resistance to pepper mottle potyvirus and tobacco etch potyvirus in pepper, genus Capsicum. PhD thesis, 1998, Cornell University, USA, 90 p.
  151. Bino R.G. Effects of Alternaria alternate f.sp. lycopersicon toxins on pollen//Theor and Appl Gen., 1988, 78, 2:104−106
  152. Binzel M., L., Sankhla N., Joshi S., Sankhla D. Induction of direct embryogenesis and plant regeneration in pepper (Capsicum annuum L.).//Plant Cell Reports, 1996, 15:536−540.
  153. Boese B.N., Marshall D.E. Breeding Capsicum peppers for Mechanical harvest, Part 1 genetics. — X-th EUCARPIA Meeting on Genetics and Breeding on Capsicum and Eggplant, 1998 — Avignon, France: 41−45.
  154. Bosland P.W. Phytophthora: a multifarious challenge for Capsicum breeders. In: Niemirowicz-Szczytt K. (Ed.), Progress in Research on Capsicum and. Eggplant. Warsaw University of Life Sciences Press, Warsaw, Poland, 2007, p.51−58
  155. Bosland P.W., Lindsey D.L. A seedling screen for Phytophthora root rot of peppers, Capsicum annuum. H Plant. Dis.1991, 75:1048−1050
  156. Boukema I.W., Jansen K., Hofman K. Strains for TMV and genes for resistance in Capsicum. In: Proc. 4-th EUCARPIA Meeting, Wageningen, The Netherlands, 1980: 44−48.
  157. Boukema I.W. Resistance to TMV in Capsicum chacoense Hunz. Is governed by and allele of the L-lokus. 11 Capsicum Newsletter, 1984, 3: 4748.
  158. Braat Arie K., Sandra van de Water, Jeroen Korving, Danica Zivkovic. A Zebrafish vasa morphant abolishes vasa protein but does not affect the establishment of the germline.//Genesis, 2001, 30,183−185.
  159. Brauer O., Untersuchungen ueber Qualitatseigenschaften in F| -Hybriden von Paprika, Capsicum annuum L., Z. Fuer Pflanzenzuecht, 1962, 48, 259−276.
  160. Brenils G., Pochard E. Essay de fabrication de l’hybride de piment «Lamuyo-INRA» avec utilization d’une sterilite genetique (ms 509). Ann. Amelior. Plantes., 1975, 25: 399−409.
  161. Briggs W.K., 01ney M.A. Photoreceptors in Plant Photomorphogenesis to Date. Five Phytochromes, two Cryptochromes, one Phototropin, and one Superchrome.// Plant Physiol., 2001, 125:85−88.
  162. Caranta C., Lefebvre V., Palloix A. Polygenic resistance of pepper to potyyviruses consists of a combination of isolate-specific and broadspectrum quantitative trait loci. Mol. Plant-Microb Interact, 1997, 10 (7), 872−878.
  163. Chaine-Dogimount C. Genetic analysis of three resistance systems by hypersensitivity or sequestration to the main pepper viruses./Thesis, INRA Paris-Grignon, France, 1993, 194.
  164. Christov S., Manuelyan K., Elenkov E., Kovachev A. Breeding of uniform ripening pepper varieties./Genetics and Breeding of Capsicum, Proceedings of the Meeting EUCARPIA, Budapest, 1974, 205−210.
  165. Cook A.A. Genetics of resistance in Capsicum annuum to two virus diseases. /Phytopathology, 1960, 364−367.
  166. Cook A.A. Inheritance of mutant-1 phenotype in pepper.// J. Hered., 1961, 52: 154−158.
  167. Cook A.A., Stall R.E. Inheritance of resistance in pepper to bacterial spot. Phytopathology, 1963,53: 1060−1062.
  168. Cook A.A., Anderson C.W. Multiple virus disease resistance in a strain of Capsicum annuum. /Phytopathology, 1959, 49: 198−201.
  169. Cordis S., Kranz E., Brettschneider R., Lorz H., Dresselhaus T. Isolation and characterization of genes which are strongly down-regulated after fertilization//Maize Genet. CooperNewsl., 1998, 72:31−32.
  170. Csillery G. New capsicum mutants found on seedling, growth type, leaf, flower and fruit. In: EUCARPIA Pro. V-th Meet. Capsicum and Eggplant Working Group, 4−7 July, 1983, Plovdiv, 127−130.
  171. Csillery G. Self eliminating genes suitable for the purpose of hibrid seed production. In: EUCARPIA Capsicum Working Group, IV-th Meeting, Wageningen, 1980 b, 27−28.
  172. Csillery G. Gene mapping of the pepper needs more initiatives (Contribution to the gene list). In: EUCARPIA Capsicum Working Group, IV-th Meeting, Wageningen, 1980a, 5−9.
  173. Dale E.E. Inheritance of dwarf in Capsicum- Papers Michigan Acad.Sci., 1930, 13: 1−4.
  174. Daskalov S. Investigations on mutagenesis and heterosis in pepper (Capsicum annuum L.). D.Sc. Thesis.
  175. Daskalov S. A male sterile (C. annuum L.) mutant. Theor. Appl. Genet., 1968,38:370−372.
  176. Daskalov S. Two new male sterile mutants by pepper (C. annuum L.) — C.R. Acad. Sci. Agr. Bild., 1971, 4: 291−294.
  177. Daskalov S. Three new male sterile mutants by pepper (C. annuum L.) — C.R. Acad. Sci. Agr. Bild., 1973c, 6: 39−41.
  178. Daskalov S. Intestigation of induced mutants in Capsicum annuum L. Ill Mutants in the variety Zlaten medal. Genet Plant Breed. 1973 b., 6, 419 429 (in Bulgarian).
  179. Daskalov S. Investigations on induced mutants in sweet pepper {Capsicum annuum L.). In: EUCARPIA Genetics and Breeding of Capsicum, Budapest, 1974, 1−4 July, 81−90.
  180. Daskalov S., Mihailov L. A new method for hybrid seed production based on cytoplasmic male sterility combined with a lethal gene and a female sterile pollenizer in Capsicum annuum L. Theor. Appl. Genet., 1988, 76: 530−532.
  181. Daskalov S., Ilieva E., Sotirova V., Kiselova J. Sweet pepper1. th
  182. Capsicum annuumL.) lines resistant to Phytophthora capsici. In.: X
  183. Meeting on Genetics and Breeding of Capsicum and Eggplant, Antalya -Turkey, 2001, p.279−283
  184. Daskalov S., Poulos F.M. Updated Capsicum gene list. Capsicum and Egglplant Newsletter, 1994, 13, 15−26.
  185. Daubeze A.M., Palloux A., Pochard E. Resistance of androgenic autodiploid lines of pepper to Phytophthora capsici and tobacco mosaic virus under high temperature. Capsicum Newsletter, 1990, 8−9: 47−48.
  186. DellaPenna D, Pogson B.J. Vitamin synthesis in plants: tocopherols and carotenoids. Annual Review of Plant Biology, 2006, 57:711−738
  187. Deli J, Matus Z, Szabolcs J. Carotenoid composition in the fruits of black paprika (Capsicum annuum var. longum nigrum) during ripening. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 1992, 40:2072−2076.
  188. Deshpande R.B. Studies in Indian chillies. 3. The inheritance of some characters in Capsicum annuum L. Indian Jour. Agr. Sci., 1933, 3: 219 300.
  189. Deshpande R.B. Studies in Indian chillies. 4. Inheritance of pungency in Capsicum annuum L. Indian Jorn. Agr. 1935, 5, 513−516.
  190. Deshpande R.B. Studies in Indian chillies. 5. Inheritance of anther color and its relation to color in petal and nodes in Capsicum annuum L. Indian Jorn. Agr. Sci. 1939, 9, 185−192.
  191. Deshpande A.A., Anand N., Pathak C.S. Inheritance of marcescent calyx and erect growth habit in chili pepper (C. annuum L.) Proc V-th Meeting on Genetics and Breeding on Capsicum and Eggplant. Zaragoza, Spain, 1986.
  192. Dumas de Vaulex R., Chambonnet D., Pochard E. Culture in vitro a antheres des piment (Capsicum annum L.): amelioration destaux dobtention de plantes chez differents genotypes par des traite mentsa' +35°C.//Agronomie, 1981, 1: 859−864
  193. Eberhart S.A., Russell W.A. Stability parameter for compering varieties.//Crop.Sci., 1966, 6, 1: 36−40.
  194. Ekker S.C., Larson J.D. Morphant technology in model developmetal systems.//Genesis, 2001, 30, 89−93.
  195. Fari M., Csillery G. In vitro shoot tip cultures of some Capsicum species J/Capsicum Newsletters, 1983, 2:66−68.
  196. Fari M. Impact of cell and tissue culture techniques on the breeding of Capsicum. In: IX-th EUCARPIA Meeting on genetics and breeding on Capsicum and Eggplant, Budapest (Hungary), August 21−25, 1995:53−63.
  197. Fisher R. A/ The genetical theory of netural selection. 2nd ed. New York, 1958
  198. H.H. 1971. Current status of the gene-for-gene concept.// Phytopathol., v.9, 275−296
  199. Gaborjanyi R., Horvath J., Kovacs J., Kazinczi G. Role of viruses in pepper decline, in Hungary. //Proc. Of the X-th EUCARPIA Meeting on Genetics and Breeding on Capsicum and Eggplant, Sept. 7−11, 1998, Avignon, France: 129−132.
  200. Gao Z., Johansen E., Eyers S., Tomas C.T. Noel E., Maule A. The Potyvirus recessive resistance gene, sbml, identifies a novel role fortranslation initation factor elF4E incell-to-cell trafficking.// Plant Journal, 2004, 40:376−385.
  201. Garcia-Dominguez M., Muro-Pastor M.I., Reyes J.C., Florencio F.J. Light-Dependent Regulation of Cyanobacterial Phytochrome Expression.// Journal of Bacteriology, 2000, 182, 1:38−44.
  202. Gebre-Selassie K.E., Marchoux G., Pochard E. Biological and selological characterization of potato virus y strains affecting peppers and other related strains. /Capsicum Newsletter, 1983, 2: 134−136.
  203. Gebre-Selassie K.E., Marchoux G., Pochard E. Variabilite naturelle des souches de virus y de la pomme de terre dans les cultures de piment du sudest de la France. Caracterisation et classification en pathotypes. //Agronomic, 1985, 5: 621−630
  204. George L., Narayanaswamy S. Haploid Capsicum through experimental androgenesis.//Protoplasma, 1973, 78, 467−470
  205. Gerashchenkov G., Rozhnova N. Genetic control of gametophytic apomixes: current status of knowledge.// Proceedings of the Latvian Academy of Sciences, Section B, 2004, v.58, № 5/6 (634/635): 167−174
  206. Giacomo Z. Bridazione intercifica nel miglioramento genetico del peperone.//Colt. Prot., 1974, v.3, № 10: 21−23.
  207. Gopalakrishnan T.R., Gopalakrishnan P.K., Peter K.V. Heterosis and combining ability analysis in chili.- Indian J. Genet, and Plant Breed., 1987, 47, № 2, 205−209.
  208. Gopalakrishnan T.R., Gopalakrishnan P.K., Peter K.V. Inheritance of clusterness and fruit orientation in chilli (Capsicum annuum L.). Indian J. Genet. And Plant Breed., 1989, № 2, 49, 219−222.
  209. Greenleaf W.H. Inheritance of resistance to tobacco etch virus in Capsicum frutescens and Capsicum annuum. /Phytopathology, 1956, 46: 371−375.
  210. Greenleaf W.H. Pepper breeding. In: Basset M.J.(Ed.) Breeding Vegetable Crops. AVI publishing Co.-inc., Wesport, Connecticut (USA), 1986, pp. 67−134.
  211. Greenleaf H.G., Hearn W.H. A round leaf mutant in Bighart pimiento pepper (Capsicum annuum L.).-Hort. Sci., 1976, 11: 463−464.
  212. Green S.K., Kim J.S. Sources of resistance to viruses of pepper 0Capsicum spp.): a catalog.// Technical Bulletin № 20, 1994, (AVRDC), 172
  213. Guerrero-Moreno A., Laborde J.A. Current status of pepper breeding for resistance to Phytophthora capsici in Mexico. Synopses of the IVth meeting of the Capsicum Working Group of Eucarpia. I.V.T., Wageningen, The Netherlands, 1980, pp.52−56
  214. Hadson M., Ringli C., Boylan M.T., Quail P. The Far 1 locus encodes a novel nuclear protein specific to phytochrome A signaling.// Genes and Development, 1999, 13(15):2017−2027.
  215. Hagiwara T., Oomura Y. On linkage in Capsicum annuum L. Jap. Jour. Genet. Supp., 1947, 1, 86−96.
  216. Harini I., Lakshmi Sita G. Direct somatic embryogenesis and plant regeneration from immature embryos of chilli (Capsicum annuum L.).// Plant Sci., 1993, 89:107−112.
  217. Hasebe M., Ando T., Watsuki K. Intrageneric relationship of maple trees based on the chloroplast DNA restriction fragment length polymorphisms.// J. Plant Res., 1998,111: 441 -451.
  218. Hasebe M., Wenc K., Kato M., Banks. Characterization of MADS homeotic genes in the fern Ceratopteris richardii. il Proc. Natl. Acad. Sci., USA, 1998, 95:6222−6227
  219. Hayman B.I. The theory and analysis of diallel crosses. //Genetics. 1954. V.39.N3: 789−809.
  220. Heiser C.B. The Paradoxical Plants.-San Francisco Freeman and1. Compani, 1969, p. 7−27.
  221. Heiser C.B., Pickersgill B. Names for the cultivated Capsicum species (solanaceal).- Taxon volume, 1969, v. 18, p. 277−283.
  222. Hibberd A.M., Bassett M.J., Stall R.E. Allelism tests of three dominant genes for hypersensitive resistance to bacterial spot of pepper. Phytopathology, 1987, 77: 1304−1307.
  223. Hibberd A.M., Stall R.E., Bassett M.J. Three resistance systems to bacterial spot of pepper in a plant intoduction line (abstr.). Phytopathology, 1984, 74: 791.
  224. Hibberd A.M., Stall R.E., Bassett M.J. Quantitatively assessed resistance to bacterial leaf spot of pepper that simply inherited. -Phytopathology, 1988, 78: 607−612.
  225. Hilhorst H.W.M., Karssen C.M. Dual effect of light on the gibberellins and nitrate-stimulated seed germination of Sisymbrium officinale and Arabidopsis thaliana.//Plant Physiol., 1988, 86:591−597
  226. Hirschfeld M., Tepperman J.M., Clack T., Quail P. H., Sharrock R., A. Coordination of Phytochrome levels in phy B mutants of Arabidopsis as revealed by apoprotein-specific monoclonal antibodies.// Genetics, 1998, 149:523−535.
  227. Hisada A., Hauzawa H., Weller J., L., Nagatani A., Reid J.B., Furuga M. Light-Induced Nuclear Translocation of Endogenous Pea Phytochrome A Visualized by Immunocytochemical Procedures. //Plant cell, 2000,12:10 631 078.
  228. Holmes F.O. Inheritance of ability to localize tobaco-mosaic virus.-Phytopathology, 1934, 24: 984−1002
  229. Holmes F.O. Inheritance of resistance to tobacco-mosaic disease in the pepper.// Phytopathology, 1937, 27: 637−642.
  230. J. 1986. Compatible and incompatible relations between Capsicum species and viruses. I. Review.// Acta Phytopathologica et Entomologica Hungarica, 21: 35−49
  231. Hosp J., Simmone Faria de Maraschin, Touraev A., Boutilier K. Functional genomics of microspore embryogenesis.// Euphytica, 2007, v. 158,№ 3,275−285
  232. Hurtado-Hernandes H., Smith P.G. Inheritance of mature Fruit color in Capsicum annuum L.-Heredity, 1985, 76, 211−213.
  233. B., Popova D. 1977. Intervarietal red pepper hybrids with high resistance to big bud virus.// Bulgarski Plodove, Zelenchutsi I Konservi, 8:31−32
  234. Irikova T., Rodeva V. Anther culture of pepper {Capsicum annuum L.): The effect of nutrient media J/Capsicum and Eggplant Newsletter, 2004, 23,101−104
  235. Jeswani L.M., Deshpande R.B., Joshi A.B. Inheritance of some fruit characters in chilli.- Indian Jour. Genet. Plant Breed., 1956, 16: 138.
  236. Kaiser S. The factors governing shape and size in Capsicum frutescens- a genetic and developmental analysis.-Bull, of the Forrey Club, 1935,62: 433−454.
  237. Kanner J., Budowski P. Carotene oxidizing factors in red pepper fruits {Capsicum annuum L.): Effect of ascorbic acid and copper in (3-carotene -linoleic acid solid model // J. Food Science. 1978. V. 43. № 2. P. 524−526.
  238. Karu T. Journal Photochem. and Photobiol., 1999, 49, 1:1−17.
  239. Kendrick R.E., Kronenberg G.H.M. Photomorphogenesis in plants. 2nd ed., (Ed.) Kluwer, Dordrecht, the Netherland, 1994, p.
  240. Khambanonda I. Quantitative inheritance of fruit size in red pepper (Capsicum frutescens L.).//Genetics, 1950, 35: 322−343.
  241. Kim B.D., Kang B.C., Nahm S.H.,. Kim B.S., Kim N.S., Lee M.H., Ha K.S. Construction of molecular linkage map and development of a molecular breeding technique. G. Plant Biology, 1997, 40, 156−163.
  242. Kounovasky J.S., Todorova J.J., Stoimenova E.S. C. chinense source of resistance to Leveillula solanacearum F. and tobacco mosaic virus. 11 Capsicum Newsletters, 1987, № 6, 68−69.
  243. Kormos J., Kormos J. Softe green pepper.-Novenytermeles, 1957, 6: 33−44.
  244. Kormos F. Einige Bemerkungen ueber die Karotenfarben der Paprikafrucht.- ActaBot. (Acad. Sci. Hung.), 1962, 8, 279−281.
  245. Kormos J., Kormos J. Determinate growth in paprika.-Novenytermeles, 1956, 5: 1−10.
  246. Kormos F., Kormos K. Die genetischen Typen der Carotinoid.-Systeme der Paprikafrucht.- Acta Bot. (Acad. Sci. Hung.), 1960, 6, 305−319.
  247. Korzeniewska A., Sztangret J., Niemirowicz-Szczytt K. Improved male sterility of sweet pepper (capsicum annuum L.). In.: Xr Meeting on Genetics and Breeding of Capsicum and Eggplant, Antalya Turkey, 2001, p.66−68.
  248. D., Todorov I., Christova D. 1989. Search for tolerant genotypes in Capsicum sp. to cucumber mosaic virus (CMV) in Bulgaria. In: EUCARPIA, VII-th Meeting on Genetics and Breeding of Capsicum, Kragujevac, Yugoslavia, 1989, 27−30 June, 211−215.
  249. Krieger U., Lippman Z.B., Zamir D. The flowering gene Single Flower Truss drives heterosis for yield in tomato.//Nature Genetics, 2010, 42,459−463.
  250. Kwong R.W., Bui A.Q., Lee H., Kwong L., W., Fischer R., L., Goldberg R.B., Yarada J.J. Leafy cotyledon-like defines a class of regulators essential for embryo development// Plant Cell, 2003, 15, 1:5−18
  251. Lefebvre V., Kuntz M., Camara B., Palloix A. The capsanthin -capsorubin synthase gene: a candidate gene for the y locus controling the red fruit colour in pepper.-Plant Mol. Biol. 1998, 36: 785−789.
  252. Lefebvre V., Caranta C., Pflieger S., Moury B., Daubeze A-M., Blattes A., Ferriere C., Phaly T., Nemouchi J., Ruffmatto A., Palloix A. Updated Intraspecific Maps of pepper.- Capsicum and Egglplant Newsletter, 1997, 16, 36−41.
  253. Lefebvre V., Palloix A., Caranta C., Pochard E. Construction of an intraspecific integrated linkage map of pepper using molecular markers and doubled haploid progenies. Genome, 1995, 38, 1120−21.
  254. Lefebvre V., Palloix A. Both epistatic and additive effects of QTZs are involved in polygenic induced resistance to disease: a case study, the interaction pepper.- Phytophthora capsici Leonian. Theor. Appr. Genet., 1996, 93,503−511.
  255. Lellis A.D., Kasschau K.D., Whithman S.A., Carrington J.C. Loss-of-susceptibility mutants of Arabidopsis thaliana reveal an essential role for elF4{iso)4E during Potyvirus infection. // Current Biology, 2002, 12: 10 461 051.
  256. Lin Q, Kanchana-Udomkarn C., Jaunet T., Mongkolporn O. Inheritance of resistance to pepper anthracnose caused by Colletotrichum capsici. Capsicum and Eggplant Nswl, 2002,21:85−88
  257. Lippert L.F., Bergh B.O., Smith P.Y. Gene list for the pepper four. Hered., 1965, 56, 30−34.
  258. Lippert L.F., Smith P.G., Bergh B.O. Cytogenetics of the vegetable crops.-Garden pepper, Capsicum sp.-Bot.Rev., 1966, 32: 24−55.
  259. Litvin O., Causton H.C., Bo-Juen Chen, Peer D. Modularity and interection in the genetics of gene expression. www.pnas.org/cgi/doi/10.1073/pnas.810 208 106,1 -6.
  260. Livingstone K.D., Zhang Y., Lackney V.K., Prince J. P., Blauth J., Kylefahm M.M. An update on Capsicum mapping activities at Cornell. X-th Meeting on Genetics and Briding of Capsicum and Egglplant, Avignon-France-September 7−11, 1998, 231−234.
  261. Loaiza-Figueroa F., Tanksley S.D. Genetics of a second locus determining pungency in chilli peppers (Capsicum). J. Heredity, 1988, 79, 314−315.
  262. Lutes D.D. Inheritance of resistance to systemic tobacco mosaic infection in pepper. /Dis. Abstr., 1954, 14: 1900−1901.
  263. Mamedov M.I., Pyshnaja O.N. Dreeding of sweet pepper for earliness /IX-th Meeting on Genetics and Breeding on Capsicum and Eggplant, Budapest (Hungary), August 21−25, 1995, 120−123.
  264. Mamedov M.I., Pyshnaja O.N. Ex mutation in sweet pepper and its use in hybrid seed production. In.: XIth Meeting on Genetics and Breeding of Capsicum and Eggplant, Antalya — Turkey, April 9−13, 2001 p. 77−78.
  265. Manikantan Nair P., G. Mary K., Mohanakumaran N. Heterosis in chilli (Capsicum annuum L.)./Agr.Res.J.Kerala, 1986, 24, № 2, 93−100.
  266. Marinkovic N., Miladinovic Z., Aleksic Z. Inheritance of resistance to verticillium wilt in Capsicum annuum L. In: Vl-th Meeting on Genetics and Breeding on Capsicum and Eggplant, Zaragoza (Spain), October, 21 -24, 1986: 151−156.
  267. Mather K. The genetical theory of continuous variation//Hereditas, 1949, Suppl.V.
  268. Matsunaga H., Sato T., Monma S. Inheritance of bacterial wilt resistance in the sweet pepper cv. mie-midori. In: X-th EUCARPIA Meeting on Genetics and Breeding on Capsicum and Eggplant, 1998 -Avignon, France, 172.
  269. Matus Z, Deli J, Szabolcs J. Carotenoid composition of yellow pepper during ripening: isolation of B-cryptoxanthin 5,6-epoxide. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 1991, 39:1907−1914
  270. McCamon K.R., Honma S. Genetics of the «umbrela» branching habit in Capsicum annuum L.-Theor.Appl. Genet., 1984, 68: 541−545.
  271. Meshram L.D. Clustered Mutant in Chilli (Capsicum annuum L.). Jour. Nucl. Agr. Biol., 1983, 12, 50−51.
  272. Mihailova B., Stoimenova E., Ilieva E., Daskalov S. Breeding sweetpepper (Capsicum annuum L.) lines with complex resistance to cucumber• th •mosaic virus and Phytophthora capsici Leonian. In: XI Meeting on
  273. Genetics and Breeding of Capsicum and Eggplant, Antalya Turkey, April 9−13, 2001, p.270−274
  274. J., Andrasfalvy A., Csillery G., & Fari M. Anther culture response in different genotypes and F i-hybrids of pepper (Capsicum annuum L.).//Plant Breeding, 1995a, 114: 78−80
  275. Munyon I.P., Hubstenberger J.F., Phillips G.C. In vitro cellular and Developmental Biology, March, Part 1, 1989, 25,3: 293−296.
  276. Muchmer J.K. Sweet peppers can be a hot crop. Breeding and management for Ontario /Highlights, 1988, 11 № 2:10−13
  277. Murthy N.S.K., Murthy B.S. Inheritance studies on chilli (Capsicum annuum).- Andhra. Agr. Jour., 1962, 9: 140−144.
  278. Mustilli A.C., Bowler C. Turning into the signals controlling photoregulated gene expression in plants.// The EMBO Jornal, 1997,16 (19): 5801−5806.
  279. Nachmias A., Bucher V., Krikum J. Differential diagnosis of V. dahlia in potato with antisera to partially purified pathogen produced extra cellular antigens// Potato Res., 1982., 25:321−328
  280. Nagy F.,'Schafer E. Nuclear and cytosolic events of light-induced, phytochrome-regulated signaling in higher plants.// The EMBO Journal, 2000, 19,2:157−163.
  281. Nagy F., Polley A., Ganal M. Development and characterization of microsatellite markers in pepper.
  282. Neff M.M., Fankhauser C., Chory J. Light: an indicator of time and place. //Gene and Development, 2000, 14, 3:257−271
  283. Nervo G., Ferrari V., Caporali E. Evaluation of anther culture derived plants of pepper. In: IX-th Meeting on genetics and breeding on Capsicum and Eggplant, Budapest, Hungary, August 21−25, 1995:72−75.
  284. Nieto C., Morales M., Orjeda G., Clepet C., Monfort A., Sturbois B., Puigdomecnech P., Pitrat M., Caboche M., Bendahmane A. An elF4E allele confers resistance to an uncapped and non-polyadenylated RNA virus in melon. //Plant Journal, 2006, 48:452−462.
  285. Novae F., Betlach J., Dubovski. Cytoplasmic male sterility in sweet pepper (Capsicum annuum L.). 1. Phenotype and inheritance of male sterile character. Pflanzenzuecht, 1971, 65: 129−140.
  286. Nowaczyk P. Mozliwosci wykorzystania wybranych odmian-papryki (Capsicum annuum L.) w hodowli heterozyjnej.- Rocz. AR Poznanin: Oyrod, 1984, 11, 107−116.
  287. Nowaczyk P., Nowaczyk L. The quality features and the fertility of pepper (Capsicum annuum L.) hybred initial forms. In: Xl-th Meeting on Genetics and Breeding on Capsicum and Eggplant, Antalya, Turkey, April 9−13,2001,53−56.
  288. Odland M.L. Inheritance studies in the pepper Capsicum frutescens.-Minnesota Agr. Exp. Sta. Tech. Bull., 1948, 179: 1−32.
  289. Obdland M.L. Interitance of flower color in Capsicum annuum L.Proc. Amer. Soc. Hort. Sci., 1960, 76, 475−481
  290. Odland M.L., Porter L.M. Inheritance of the immature fruit color of peppers.- Proc. Amer. Soc. Hort. Sci., 1938, 36: 647−551.
  291. Ottaviano E., Mulcahy D., L., Sari-Goria M. Gapacita competitira del gametofitomaschile in mais {Zea mays) determination aploide ed efett- sulla progenie sporofitica.//Gen. Agr., 1980, 34,1−2:178−179.
  292. Ottaviano E., Sari-Goria M, Mulcahy D., L. Pollen selection: efficiency and monitoring//Isozymes: Structure, function and use in boil. And medicine. Wiley-Liss, Inc., 1990:575−588.
  293. Pahlen A. Undulatum and viridisia, two new mutations in pepper (Capsicum annuum L.). Bol. Genet. Inst. Fitotech. Castelar, 1966, 3: 4648.
  294. Palloix A. Diseases of pepper and perspectives for genetic control. -In: VHI-th EUCARPIA Meeting on Genetics and Breeding on Capsicum and Eggplant, Roma (Italy), 7−10 September, 1992: 120−126.
  295. Palloix A., Kyle M. Proposal revision of gene nomenclature for potyvirus resistance genes in Capsicum sp. Capsicum and Egglplant Newsletter, 1995, 14, 26−29.
  296. Paran I., Grube R.C., Ben-Chaim A. e.a. Biometrical and molecular analysis of quantitative traits in pepper {Capsicum annuum). Proc. Xth EUCARPIA Meeting on genetics and breeding of Capsicum & Eggplant. Avignon, France, 1998: 243−244.
  297. Pasko P., Arteaga M.Z., Ortega R.G. Different kinds of reactions to PVY 1−2 in Capsicum annuum L. cv «SCM 334». In: VHI-th EUCARPIA Meeting on Genetics and Breeding on Capsicum and Eggplant, Roma (Italy), 7−10 September, 1992: 153−156.
  298. Pearson O.H. Heterosis in vegetable crops. In: Frankel R. (Ed.), Monographs on Theoretical and Applied Genetics, 1983.
  299. Pelham I. TMV resistance.// Ann.Rep. Glasshouse Crops Res. Inst., 1967, 1968: 45−48.
  300. Peterson P.A. Cytoplasmically inherited male sterility in Capsicum. -Amer.Nat., 1958, 92: 111−119.
  301. Pickersgill B. Dissertation abstracts, 1966, № 67, 3702- The science and Engineering, 1967, v.27, № 10, 3419B.
  302. Pickersgill B. Chromosomes and evolution in Capsicum. In: «Capsicum 77″, C.R. Zeme congres Eucarpia sur la genetique et la selection du piment, 5−8 J. uillet 1977, Montfavet Avignon (France), (Ed.) Pochard E., 1977, 27−38.
  303. Pickersgill B. The genus Capsicum: a multidisciplinary approach to the taksonomy of cultivated and wild plants. Biol. Zent. Bl., 1988, 107, 381−389.
  304. Pickersgill B. Barriers to interspecific hybridization in Capsicum. //Proc. of Intern. Congr. of EUCARPIA, Capsicum Working Group, Rome, Capsicum Newsletter, Special Issue, 1992.-p.57−60
  305. Pochard E. Description des trisomiques de piment (Capsicum annuum L.) obtenus dans la descendance d’une plante haplade.- Ann. Amelior. Plant, 1970, 20, 233−256.
  306. Pochard E. Induction of three male sterility mutations in red pepper (C. annuum L.) by mutagenic treatment of monoploid material. In: La sterilite male chez les plantes hort, France, EUCARPIA, 1970, 93−95.
  307. Pochard E., Breuils J., Florent A. Localization of genes Capsicum annuum L., by trisomic analysis.-Jenetics and Breeding of Capsicum. Proceedings of the Meeting held in Budapest, July 1−4, 1974, 17−32.
  308. Pochard E. Localization of genes Capsicum annuum L., by trisomic analysis.- Ann. Amelior. Plant, 1977, 27, 255−266.
  309. Pochard E. Dumas de Vaulx. Localization of vy 2 and fa genes by trisomic analysis. Capsicum Newsletter, 1982, 1, 54−56.
  310. Poulos J.M., Reifschneider F.J.B., Coffamn W.R. Heritability and gai from selection for quantitative resistance to Xanthomonas campestris pv. vericatoria in Capsicum annuum L. -Euphytica, 1991, 56: 161−167.
  311. Pick C. Completion of a genetic Map of Pepper. The Sol News Letter, 2009, 22,
  312. Prince J.» P., Pochard E., Tanksley S.D. Construction of molecular linkage map of pepper and a comparison of synteny with tomato. Genome, 1993,36, 404−417.
  313. Rast A.T. Pepper tobamoviruses and pathotypes used in resistance breeding. /Capsicum Newsletter, 1988, 7: 20−23.
  314. Saccardo F., Cristinzio G., La Vioia N. Induced mutations in pepper for resistance to Phytophthora capsici. In: EUCARPIA Proc. Vl-th Meet. Capsicum and Eggplant Working Group, Zaragoza, 1986,145−151
  315. Sahrigy M.A., Seehy M.A. Cytogenetical studies in the genus Capsicum L. a morphogenetic study of Capsicum pedicels.-Egypt J., Genet. Cytol., 1980 9(1): 1−13.
  316. Samitsu Y., Hosaka K. Molecular marker analysis of 24 and 25-chromosome plants obtained from Solanum tuberosum L. subsp. Andigena (2n=4x=48) pollinated with a Solanum phureja haploid inducer// Genome, 2002, 45,3:577−583
  317. Sharma H.C., Gill B.S. Effect of embryoage andculture media on plant growth andvernalization response in winter wheat.//Euphytica, 1982, 31,629−634.
  318. Shifriss C., Frankel R. A new male sterility gene in Capsicum annuum L. J. Amer. Soc. Hort. Sci., 1969, 94: 385−387.
  319. Shifriss C., Rylski I. A male sterile (ms2) gene in «California Wonder» pepper (C. annuum L.). Hort. Sci., 1972, 7: 36.
  320. Shifriss C. Male sterility in pepper {Capsicum annuum L.).// Euphytica, 1997, 93: 83−88.
  321. Somos A. The Paprica. Akademiai Kiado, Budapest, Hungary, p. l-302.
  322. Son Byung H. Чосон манчжучжун инмин конхвачук ноноп квахаквон хакпо. Селекция и агротехника новых раннеспелых сортов овощного перца./Acta Acad. Agr.Sci.D.P.R. Korea., 1990, № 3: 20−27 (кор).
  323. Smith P.G., Kimble К.A., Grogan R.G., Millett A.H. Inheritance of resistance in peppers to Phytophthora Root Rot.// Phytopathology, 1967, 57:377−379
  324. Smith P.G. Brown, mature fruit color in pepper (Capsicum frutescens). Science, 1948, 107, 345−346.
  325. Smith P.G. Inheritance of brown and green color in peppers.- Jour. Hered., 1950,41,314−315.
  326. Smith P.G. Deciduous ripe fruit character in peppers.-Proc.Amer.Soc.Hort Sci., 1951, 57: 343−344.
  327. Soylu S., Kurt S. Occurrence and distribution of fungal diseases onth
  328. Greenhouse grown pepper plants in Hatay Province. In: XI meeting on Genetics and Breeding of Capsicum and Eggplant, Antalya Turkey, April 9−13, 2001, p.315−319
  329. Spasojevic V. Easily separation of pepper fruit from its calyx and importance of this characteristic for mechanization of harvesting and for improvement of biological value of the fruit.-Poljopriveda, 1976, 23: 2731.
  330. Spasojevic V., Webb R.E. Inheritance of abscission of ripe pepper fruit from its calyx.-Arhiv.Bioloskih.Nauka, 1971, 23(¾): 115−119.
  331. Stepowska A. The history and presence of sweet pepper cultivation under covers in Poland. In: Niemirowicz-Szczytt K. (Ed.), Progress in Research on Capsicum and Eggplant. Warsaw University of Life Sciences Press, Warsaw, Poland, 2007, p.311−324
  332. Subramanya R., Ozaki H.Y. Inheritance of flower in pepper. Euphytica, 1984,33, 13−16.
  333. Subramanya R., Ozaki H.Y. Cleistogamy in Pepper (Capsicum annuum L.) and its inheritance. In: EUCARPIA Proc. V-th Meet. Capsicum and Eggplant Working Group, 1983, 4−7 July, Plovdiv, 53−56.
  334. Shuh D.M., Fontenot J.F. Gene transfer of multiple flowers and pubescent leaf from Capsicum chinense into Capsicum annuum L. J. Amer. Soc. Hort. Sci., 1990, 115, 499−502.
  335. Szarka J., Csillery G. Defence systems against Xanthomonas campestris pv. vericatoria in pepper. IX-th Meeting on Genetics and Breeding on Capsicum and Eggplant, Budapest, 1995, 184−187.
  336. Sy O., Bosland P.W., Steiner R. Inheritance of phytophthora stem blight resistance as compared to phytophthora root rot and foliar blight in Capsicum annuum L.// J.Amer. Soc. Hort. Sci. 2005, 130:75−78
  337. Tamietti G., Bruatto R. Genetic improvement of the pepper Quadratod Asti for the resistance to Phytophthora capsici Leonian present status. In: EUCARPIA Proc. Vl-th Meet. Capsicum and Eggplant Working Group, Zaragoza, 1986,129−135
  338. Tang X., Xie M., Kim Y.L., Zhou J., Klessing D.F., Martin G.B. Overexpression' of Pto activates defense responces and confers broad resistance// Plant Cell, 1999,11:15−30
  339. Tanksley S.D., Zamir D., Rick C.M. Evidence for extensive overlap of sporophytic and gametophytic expression in Lycopersicon esculentumJ/Science. 1981,231:453−455
  340. Tanksley S.D., Bernatzolyk, Lapitan N., Prince J. P. Conservation of gene repertoire but not gene order in pepper and tomato. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1988, 85, 6419−6423.
  341. Timin O.Y., Timina O.O. Creation of sweet pepper hybrid with increased content of 3-carotene.// In.: The 17-th International Pepper Conference, 2004, 14−16. 11.04., Naples, Florida, USA, p.31
  342. Timina O.O., Tsykaliuk R.A., Orlov P.A. Somatic embryos of Capsicum annuum L., genetic specialities of formation .//Capsicum and Eggplant Newsletter, 2003, 22:103−106
  343. Timina O.O., Tsykaliuk R.A., Orlov P.A. Forming of somatic embryoids of Capsicum annuum L., induction, expression and inheritance.// In.: The 17-th International Pepper Conference, 2004, 14−16. 11.04., Naples, Florida, USA, p.30
  344. Timina O.O., Tsykaliuk R.A., Orlov P.A. The identification of genotypes quantitative characters by regressive cluster analysis.// Capsicum and Eggplant Newsletter, 2004, 23, pp.37−40.
  345. Timina O.O., Timin O.Y. Genetic-breeding description of be gene. In: 19-th International Pepper Conference, Sept. 7−10, 2008, Atlantic City, New Jersey, p. 19
  346. Thorup T. A, Tanyolac B, Livinstone K.D., Popovsky S, Paran I, Jahn M. Candidate gene analysis of organ pigmentation loci in the Solanaceae. Proceedings of the National Academy of Sciences, USA, 2000, 97:11 192— 11 197
  347. Tomlecova N.B., Timina O.O., Timin O.Y. Achievements and perspectives of sweet pepper breeding towards high p-carotene. //Acta Horticulturae, 2009, 1, 205−209
  348. Touraev A., Vicente O., Heberle-Bors E. Initiation of microspore embryogenesis by stress.// Trends in Plant Science, 1997, 2:297−302
  349. Tyrnov V.S.Producing of parthenogenetic fors in maize//Maize Genet. Cooper. Newsl., 1997, 71:73−74
  350. Uzo J.O. Hybrid vigor and gene action of two qualitative traits of flavor peppers in Nigeria.//Scientia Horticulturae, 1984, 22, 321−326
  351. Vagera J&Havranek P. Stimulating effect of activated charcoal in the induction of in vitro androgenesis in Capsicum annuum L.// Capsicum Newsletter, 1983, 2:63−65
  352. Vagera J&Havranek P. In vitro induction of androgenesis in Capsicum annuum L. and its genetic aspects.//Biol. Plantarum (Prague), 1985, 27:1021
  353. Vagera J. In: I. Bajaj Y.P.S.(Ed.). Biotechnology in agriculture and foresty, haploids in crop improvement, Springer-Verlag, Berlin, Heidelberg, 1990, 12: 374−392
  354. Venczel G., Gemesne Juhasz A. Pepper breeding methods andiLstrategies related with in vitro haploid research. In.: Proc. X EUCARPIA Meeting on genetics and breeding of Capsicum & Eggplant. Avignon, France, 1998: 96−97
  355. Walker S., Bosland P.W. Inheritance of phytophthora root rot and foliar blight resistance in pepper.// J. Amer. Soc. Hort. Sei., 1999, 124:14−18
  356. Wang D.Y., Wang M. Inheritance of Resistance to Phytophthora blight in hot pepper. II Capsicum and Eggplant Newsletter, 1996, № 15: 6162
  357. Wang D., Bosland P. The Genes of Capsicum.// HortScience, 2006, 41(5): 1169−1187
  358. Weining C. Limits to adaptive plasticity: temperature and photoperiod influence shade-avoidance responses.// American Jornal of Botany, 2000, 87 (11): 1660−1668
  359. Wolf P.G., Pryer K.M., Smith A.R., Hasebe M. Phylogenetic studies of extant Pteriophytes. In: Soltis D., et al. (Eds.), Molecular systematics of Plants (2 nd), Chapman and Hall, New York, 1998: 541−556
  360. Yoshii M., Nishikiori M., Tomita K., Yoshioka N., Kozuka R., Naito S., Ishikawa M. The Arabidopsis Cucumovirus Multiplication 1 and 2 loci encode translation initation factors 4T and 4G. // Journal of Virology, 2004, 78:6102−6111
  361. Zagorska.N.A., Pundeva R.S. In vitro androgenesis in Lycopersicon, Medicago and Capsicum. Proc. Of the V-th Intern. Congress on Plant Cell and Tissue Culture, 1982, IAPTC, Minnesota, USA, p. 123
  362. Zamir D.S., Tansley S.D., Jones R.A. Low temperature effecton selective fertilization bypollen mixtures of wild and cultivated tomato species.// Theor. and Appl. Gen., 1981,59,6:253−258
  363. Zitter T.A. Naturally occurring pepper virus strains in south Florida. -Plant Dis. Reptr., 1972, 56: 586−590
  364. Zitter T.A., Cook A.A. Inheritance of tolerance to a pepper virus in Florida. /Phytopathology, 1973, 63: 1211−1212
  365. Zubrzycki H., Pahlen A.-Rev.Agron N.O. Argrnt, 1974, 11: 87−91
Заполнить форму текущей работой

На отлично!