Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Диагностическое и прогностическое значение неоптерина и sCD30 при трансплантации печени

Диссертация: Диагностическое и прогностическое значение неоптерина и sCD30 при трансплантации печени
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Трансплантация печени является эффективным, а иногда и единственным методом лечения пациентов с заболеваниями печени в терминальной стадии. Более 80% пациентов после трансплантации живут пять и более лет и продолжают вести активный образ жизни. С 1997 года в России функционирует педиатрическая программа родственной трансплантации печени, реализация которой позволила эффективно излечивать детей… Читать ещё >

Содержание

  • Страница
  • Глава 1. Маркеры активации иммунной системы при трансплантации печени и других солидных органов (обзор литературы)
    • 1. 1. Особенности структуры и клеточного состава печени
      • 1. 1. 1. Уникальная структура и функции печени
      • 1. 1. 2. Иммунные клетки печени
    • 1. 2. Значение неоптерина в клинической трансплантологии
      • 1. 2. 1. Неоптерин — маркер активации макрофагов
      • 1. 2. 2. Роль неоптерина при трансплантации солидных органов
      • 1. 2. 3. Клиническое значение неоптерина при трансплантации печени
    • 1. 3. Использование бСБЗО в клинической трансплантологии
      • 1. 3. 1. бСБЗО — маркер активации Т-клеток
      • 1. 3. 2. Роль бСЭЗО при трансплантации солидных органов
      • 1. 3. 3. эСБЗО при трансплантации печени

Диагностическое и прогностическое значение неоптерина и sCD30 при трансплантации печени (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Трансплантация печени является эффективным, а иногда и единственным методом лечения пациентов с заболеваниями печени в терминальной стадии. Более 80% пациентов после трансплантации живут пять и более лет и продолжают вести активный образ жизни [Готье С.В. и соавт., 2008; НаБе§ ауа К., 2005]. С 1997 года в России функционирует педиатрическая программа родственной трансплантации печени, реализация которой позволила эффективно излечивать детей раннего возраста с циррозом печени в исходе врожденных и наследственных заболеваний гепато-билиарной системы.

К настоящему времени, когда благодаря решению организационных вопросов, достижениям в хирургии, совершенствований} анестезиологического обеспечения, адекватной периоперационной терапии и иммуносупрессии накоплен достаточный клинический опыт трансплантации печени и существенно улучшились результаты операций, большую актуальность приобретают вопросы наблюдения за течением послеоперационного периода, прогнозирования развития осложнений с использованием, по возможности, неинвазивных и информативных методов. Последнее особенно важно для детей раннего возраста.

В последние годы в клинической трансплантологии активно исследуются биомаркеры, уровень которых в крови может отражать активность процессов, непосредственно определяющих реакцию организма на присутствие трансплантата и динамку течения посттрансплантационного периода. Среди таких маркеров важное место занимают неоптерин и растворимая форма СБЗО (бСБЗО).

Неоптерин — производное гуанозинтрифосфата, продуцируемый преимущественно моноцитами/макрофагами в результате их активации в процессе иммунного ответа. В трансплантологии этот маркер используется для прогнозирования и мониторинга острого и хронического отторжения, оценки эффективности лечения, а также для дифференцирования инфекционных осложнений и острого отторжения после трансплантации сердца и почки [Fuchs D. et. al. 1992; Шевченко.

0.П. и соавт., 2003].

CD30 — поверхностный трансмембранный гликопротеин, член суперсемейства рецепторов фактора некроза опухоли, преимущественно экспрессируется Т лимфоцитами человека. Показано, что повышение концентрации растворимой формы CD30 (sCD30), присутствующей в плазме крови, является эффективным предиктором отторжения у реципиентов почки и сердца. [Weimer R. et al., 2006; Kim K.H., et at., 2006]. Диагностическое и прогностическое значение неоптерина и sCD30 при трансплантации печени изучено мало, а у детей таких исследований практически нет.

Цель исследования:

Определить диагностическое и прогностическое значение неоптерина и sCD30 при трансплантации печени детям с врожденными и наследственными заболеваниями гепато-билиарной системы.

Задачи.

1. Оценить содержание неоптерина и sCD30 в плазме крови детей с врожденными и наследственными заболеваниями гепато-билиарной системы и связь этих показателей с клиническими и лабораторными данными.

2. Оценить связь уровня неоптерина и sCD30 у детей с врожденными и наследственными заболеваниями гепато-билиарной системы с концентрацией биомаркеров воспаления (С-реактивного белка), тромбообразования (растворимой формы лиганда CD40, sCD40L) и регулятора обмена железа (гепсидина).

3. Изучить динамику уровней неоптерина и яСЭЗО у реципиентов печени в посттрансплантационном периоде.

4. Изучить динамику концентраций неоптерина и бСБЗО у реципиентов печени при дисфункции трансплантата, её связь с изменением уровней рутинных лабораторных показателей, а также оценить прогностическое значение исходных уровней неоптерина и яСОЗО, определяемых на этапе дооперационного обследования.

5. Охарактеризовать содержание неоптерина и бСБЗО при бактериальных инфекциях у реципиентов печени в посттрансплантационном периоде.

6. Рассчитать показатели чувствительности и специфичности тестов на неоптерин и бСБЗО при развитии дисфункции трансплантата у реципиентов печени.

Научная новизна исследования.

Впервые установлено, что у детей с врожденными и наследственными заболеваниями гепато-билиарной системы содержание в плазме крови неоптерина и бСБЗО выше, чем у здоровых лиц, детей и взрослых, что указывает на активацию различных звеньев иммунной системы.

Впервые охарактеризована динамика неоптерина и бСБЗО у детей раннего возраста после родственной трансплантации фрагмента печени и выявлена связь повышения концентрации этих маркеров с развитием дисфункции трансплантата.

Новыми являются данные о прогностическом значении неоптерина и бСБЗО в посттрансплантационном периоде при дисфункции печенрчного трансплантата.

Практическая значимость исследования.

Измерение концентрации неоптерина и бСБЗО в плазме крови реципиентов после трансплантации печени позволяет прогнозировать развитие дисфункции трансплантата за 1−3 дня до увеличения уровня биохимических показателей, отражающих состояние гепато-билиарной системы.

Исследование уровней неоптерина и эСБЗО позволяет сделать предположение о природе дисфункции трансплантата: повышение концентрации маркеров активации макрофагов и Т-лимфоцитов в плазме крови может указывать на участие иммунных механизмов.

Установленная высокая чувствительность и специфичность тестов на неоптерин и бСБЗО позволяет рекомендовать их использование при наблюдении за течением посттрансплантационного периода у детей-реципиентов печени.

Положения, выносимые на защиту.

1. У детей с циррозом печени в исходе врожденных и наследственных заболеваний печени и желчевыводящих путей повышено содержание маркера активации макрофагов — неоптерина и маркера активации Т-лимфоцитов — бСЭЗО в плазме крови, что отражает активацию различных звеньев иммунной системы. После трансплантации печени происходит постепенная нормализация этих показателей.

2. У реципиентов печени динамика уровней маркеров активации иммунной системы связана с течением посттрансплантационного периода.

3. Увеличение концентрации неоптерина и бСБЗО в плазме крови при развитии дисфункции трансплантата предшествует повышению уровней рутинных биохимических показателей состояния гепато-билиарной системы.

Публикации.

По теме диссертации опубликовано 9 научных работ, из них 2 статьи в центральных рецензируемых журналах, 2 — за рубежом.

Апробация работы.

Апробация работы состоялась 13 октября 2011 года в ФГБУ *.

Федеральный научный центр трансплантологии и искусственных органов имени академика В. И. Шумакова Минздравсоцразвития России" (ФНЦТИО им. академика В.И. Шумакова).

Материалы и основные положения диссертации доложены и обсуждены: на IV, V всероссийских съездах трансплантологов (Москва, 9−10 ноября 2008 г., 8−10 октября 2010 г), всероссийской конференции с международным участием «Трансплантация печени в России: 20 лет спустя» (Москва, 14 февраля 2010 г.), XXIII International Congress of the Transplantation Society (Vancouver, Canada, 15−19 August, 2010.).

Объем и структура диссертации.

Диссертация состоит из введения, обзора литературы, характеристики больных и методов исследования, 2 глав собственных исследований, обсуждения результатов и заключения, 6 выводов, практических рекомендаций и указателя используемой литературы. Работа изложена на 119 страницах машинописного текста, иллюстрирована 10 таблицами и 28 рисунками.

Список литературы

включает 37 отечественных и 115 зарубежных источников.

выводы.

1. У детей с врожденными и наследственными заболеваниями гепато-билиарной системы уровни неоптерина, отражающего активацию макрофагов, и бСБЗО, отражающего активацию Т-лимфоцитов, выше, чем у здоровых лиц, детей и взрослых, что указывает на активацию различных звеньев иммунной системы. Концентрация неоптерина и бСОЗО в плазме крови не зависит от пола, содержания альбумина, билирубина, креатинина, а также активности ферментов, отражающих состояние гепато-билиарной системы: аланинаминотрансферазы, аспартатаминотрансферазы, гаммаглутамилтранспептидазы, щелочной фосфатазы.

2. Уровни неоптерина и зСБЗО в плазме крови реципиентов печени не зависят от концентрации биомаркеров воспаления (С-реактивного белка), тромбообразования (зС040Ь) и регулятора обмена железа (гепсидина), но связаны между собой (г=0,44- р=0,039).

3. После трансплантации печени детям с врожденными и наследственными заболеваниями гепато-билиарной системы происходит постепенное снижение уровней неоптерина и бСБЗО в плазме крови реципиентов: спустя месяц (28,8±22,3 нмоль/л, 72,2±35,9 нг/мл соответственно), а также через год (16,4±10,4 нмоль/л, 63,1 ±23,1 нг/мл соответственно) концентрация маркеров активации иммунной системы ниже, чем до трансплантации (22,8±17,9 нмоль/л, 84,9±43,8 нг/мл соответственно).

4. У реципиентов печени с развившейся на 26−32 сутки дисфункцией трансплантата уровни неоптерина и бСБЗО выше, чем у реципиентов без дисфункции. Повышение концентрации неоптерина отмечается за 1−2 дня, а бСОЗО — за 2−3 дня до возрастания активности ферментов цитолиза. Исходно высокие уровни неоптерина и бСБЗО, определяемые на этапе дооперационного обследования, не связаны с развитием дисфункции трансплантата.

5. Бактериальные инфекции у реципиентов печени характеризуютсяповышением уровня неоптерина и умеренным повышением уровня эСОЗО, что коррелирует со значительным (96,4±38,7 мг/л) повышением концентрации С-реактивного белка.

6. Диагностическая чувствительность сочетанного определения неоптерина и бСБЗО в плазме крови реципиентов при дисфункции трансплантата составляет 100%, а специфичность — 86%.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ.

1. Определение уровня неоптерина и бСОЗО у реципиентов печени целесообразно для наблюдения за течением раннего посттрансплантационного периода.

2. Повышение уровня неоптерина выше 15,9 нмоль/л и бСБЗО выше 60,5 нг/мл в посттрансплантационном периоде может являться ранним признаком, предшествующем развитию дисфункции трансплантированной печени.

3. Обнаружение в посттрансплантационном периоде повышения уровней неоптерийа, эСОЗО и С-реактивного белка характерно для развития бактериальной инфекции у реципиентов печени.

Показать весь текст

Список литературы

  1. C.B., Ватазин A.B., Москалец О. В. и соавт. Иммунологический мониторинг и роль sCD30 в диагностике острого отторжения трансплантированоой почки. Вестник трансплантологии и искусственных органов. — 2008. — № 4. — С. 1114.
  2. A.B., Казаков Э. Н., Кормер, А .Я. и соавт. Роль растворимого CD30 (sCD30) при трансплантации сердца. III конгресс Московских хирургов. «Неотложная и специализированная хирургическая помощь». — Москва, 14−15 мая 2009 г. — С. 136−137.
  3. A.B., Орлова О. В., Казаков Э. Н. и соавт. Прогностическое значение растворимой формы CD30 (sCD30) при отторжении трансплантированного сердца. Вестник трансплантологии и искусственных органов. — 2010. — Приложение. С. 167−168.
  4. C.B., Мойсюк Я. Г., Цирульникова О. М. и соавт. Иммуносупрессивная терапия при трансплантации печени. // Иммуносупрессия при трансплантации солидных органов. -Москва, 2011.-С. 115−150.
  5. C.B., Константинов Б. А., Цирульникова О. М. Трансплантация печени: Руководство для врачей. Москва, ООО «Медицинское информационное агентство», 2008. -248 с.
  6. C.B., Цирульникова О. М., Мойсюк Я. Г. и соавт. Трансплантация печени у детей. Вестник трансплантологии и искусственных органов: Материалы V Всероссийского съезда трансплантологов. — 2010. — С. 112−113.
  7. C.B., Шевченко О. П. Новые лабораторные тесты новое в клинической трансплантологии. — «Лаборатория в современной клинике». — Москва, изд-во «Лабора», 2010. — С. 117−128.
  8. C.B. Трансплантация печени: современное состояние проблемы. Альманах института хирургии им. A.B. Вишневского. -2008.-№ 3,-С. 9−17.
  9. C.B., Цирульникова О. М., Габриэлян Н. И. и соавт. Инфекционные осложнения после трансплантации печени. -Инфекции в трансплантологии. ООО «Издательство «Триада», 2010.-С. 13−54.
  10. C.B., Андрейцева О. И., Чугунов А. О. и соавт. Особенности подготовки и обследования пациентов перед трансплантацией печени. Хирургия, Приложение. — 2007. — № 2. -С. 68−72.
  11. В.Т. Механизмы иммунной толерантности и патологии печени. Российский журнал гастроэнтерологии, Гепатологии, колопроктологии. -2009. -Т. 19.- № 2. — С. 8−13.
  12. В.Т., Лапина Т. Л. Гастроэнтерология: национальное руководство. ГЭОТАР-Медиа, Москва. — 2008. — 754 с.
  13. Клиническая трансплантология. Под ред. Б. А. Константинова. — М.: Аир-Арт, 2004. 304 с.
  14. Е.Л. Современные направления иммунологических исследований при хронических воспалительных и аутоиммунных заболеваниях человека. Тер. архив. — 2001. — № 8. — С.43- 46.
  15. В. В. Барышников А. Ю., Караулов А. В. Растворимые формы мембранных антигенов клеток иммунной системы. -Иммунология. 2007. — № 4. — С. 249−253.
  16. O.B. Неоптерин у больных сердечной недостаточностью и реципиентов сердца. Вестник Российского государственного медицинского университета. — 2010. — № 1. — С. 48−53.
  17. О.В., МанцаеваР. Б., Шевченко О. П. Диагностическое значение неоптерина при инфицировании вирусами пациентов с пересаженным сердцем. Клиническая лабораторная диагностика. -2006.-№ 2.-С. 10−12.
  18. Ч. С., Андрейцева О. И., Мусселиус С. Г. и соавт. Частота и факторы риска развития отторжения печени после трансплантации. Российский журнал гастроэнтерологии, Гепатологии, колопроктологии. — 2003. — № 1. — С. 26−35.
  19. В.Г., Шабров A.B., Зиновьева В. Н. Основы клинической гепатологии. Заболевания печени и билиарной системы. 2005. — С. 19−26.
  20. Е. А., Телегина Т. А. Неоптерин и его восстановленные формы: биологическая роль и участие в клеточном иммунитете. -Успехи биологической химии. — 2005.- Т. 45. — С. 355—390.
  21. A.B. Оценка концентрации в сыворотке растворимого CD30 в диагностике ранней дисфункции почечного аллотрансплантата. Юншчна хгрурпя. — 2009. — № 10. — С 44−46.
  22. М.Ш., Олефиренко Г. А., Орлова О. В. И соавт. Клиническое значение неоптерина при трансплантации сердца и других органов. Вестник трансплантологии и искусственных органов. — 2001. — № 1. — С. 45−51.
  23. О.П., Олефиренко Г. А., Орлова О. В. Неоптерин. -Патохимиякрови для врачей. — Москва, Реафарм. — 2003. — 64 с.
  24. О.П., Олефиренко Г. А., Орлова О. В. Алгоритм дифференцирования инфекционных осложнений и острого отторжения у реципиентов сердца. Инфекции в трансплантологии. I2010.- С. 177−212.
  25. О.П., Харламова Л. В., Кушхова Д. Х. и совавт. Уровень неоптерина в крови у больных ишемической болезнью сердца.
  26. Якутский медицинский журнал. 2008.- № 1.- С. 12−15. *
  27. О.П., Хубутия М. Ш., Олефиренко Г. А. и соавт. Диагностическое значение неоптерина и С-реактивного белка при инфекционных осложнениях у пациентов с пересаженным сердцем. Вестник трансплантологии и искусственных органов. — 2003. -№ 2. — С.42−46.r
  28. О.П., Олефиренко Г. А., Пищулина М. Э. и соавт. Неоптернн при трансплантации печени детям с врожденными заболеваниями печени и желчевыводящих путей. Вестник трансплантологии и искусственных органов. — 2010. — № 2. -С.58−62.
  29. В.И., Хубутия М. Ш., Шевченко О. П. и соавт. Отторжение трансплантированного сердца. -М.: Реафарм, 2005. -240 с.
  30. В.И., Шевченко О. П., Хубутия М. Ш. и соавт., Васкулопатия трансплантированного сердца: синергизм провоспалительных, проатерогенных факторов и вирусной инфекции. Вестник Российской академии медицинских наук. -2006.- № 11.-С. 8−14.
  31. В.И. Трансплантация сердца. ООО «МедицинскоеVинформационное агентство», Москва, 2006. — 400 С.
  32. С.М., Попцова О. Н., Стародубцева Н. И. и соавт. Оценка информативности определения неоптерина и противовоспалительных цитокинов при вирусных инфекциях. -Клиническая лабораторная диагностика. 2002. — № 9. — С. 32.
  33. Ajuebor M.N., Wondimu Z., Hogaboam C.M. et al. CCR5 Deficiency Drives Enhanced Natural Killer Cell Trafficking to and Activation within the liver in Murine T Cell-Mediated Hepatitis. Am J
  34. Pathology.- 2007.- V. 170.- P.1975−1988. «
  35. Avanzas P., Arroyo-Espliguero R., Kaski J. Neopterin marker of coronary- disease activity or extension in patients with chronic stable angina.- Int J Cardiology. — 2009. V. 144- P. 1010−1016.
  36. Ayed K., Abdallah T.B., Bardi R. Plasma levels of soluble CD30 in kidney graft recipients as predictors of acute allograft rejection. -Transplant Proc. 2006.- V.38.- P. 2300−2302.
  37. Baier-Bitterlich G., Fuchs D., Murr C. et al. Effect of neopterin and 7,8-dihydroneopterin on tumor necrosis factor alpha induced programmed cell death.- FEBSLett.- 1995.- V. 364. P. 234−238.
  38. Bauwens A.M., Van de Graaf E.A., Van Ginkel W.G. et al. Pre-transplant soluble CD30 is associated with bronchiolitis obliterans syndrome after lung transplantation. J Heart Lung Transplant. -2006.- V.25.-P. 416−419.
  39. Baydar T., Yuksel O., Sahin T. Neopterin as a prognostic biomarker in intensive care unit patients. J Critical Care. 2009. — V.24. — P. 318 321.
  40. Berdowska A., Zwirska-Korczala K. Neopterin measurement in clinical diagnosis. J Clin Pharm Ther. — 2001. — V. 26. — P. 319−329.
  41. Bharat A., Narayanan K., Golocheikine A., et al. Elevated soluble CD30characterizes patients with hepatitis C virus-induced liver allograft cirrhosis.- Transplantation.- 2007.- V.84. P. 1704−1707.
  42. Bilzer M., Roggel F., Gerbes A.C. Role of Kupffer cells in host defense and liver disease. Liver Int.- 2006, — V.26. — P. 1175−1186.
  43. Biswas P., Cozzi-Lepri A., Delfanti F. et al. Significant link between sCD30 changes and HIV viremia in patients treated with HAART. J Medical Virology. — 2006. -V.78.- P. 1513−1519.
  44. Bowen D.G., Zen M., Holz L., et al. The site of primary T cell activation is a determinant of the balance between intrahepatic tolerance and immunity. J Clin Invest. — 2004.- V.114.- P. 701−712.
  45. Cesur S. Neopterin: a marker used for monitoring infections. -Microbiol Bull. 2005. — V. 39. — P. 251−260.
  46. Cerveny C.G., Law C.L. et al Signaling via the anti-CD30 mAb SGN-30 sensitizes Hodgkin’s disease cells to conventional chemotherapeutics. -Leukemia. 2005.- V.19.- P.1648−1655.
  47. Chin G.K., Adams C.L. et al. The value of serum neopterin, interferon gamma levels and interleukin 12B polymorphisms in predicting acute renal allograft rejection. Clin Exper Immunology. — 2008.- V.152. -P. 239−244.
  48. Ciferska H., HorakP. et al. The levels of sCD30 and of sCD40L in a group of patients with systemic lupus erythematodes and their diagnostic value.- Clinical Rheumatology. 2007.- V. 26.-P.223−228.
  49. Cinti P., Pretagostini R., Arpino A., et al. Evaluation of pretransplant immunologic status in kidney-transplant recipients by panel reactive antibody and soluble CD30 determinations. Transplantation. — 2005. -V.79. — P. 1154−1156.
  50. Crane M., Oliver, B. et al. Immunopathogenesis of Hepatic Flare in HIV/Hepatitis B Virus (HBV)-Coinfected Individuals after the Initiation of HBV-Active Antiretroviral Therapy. Journal of Infectious Diseases. — 2009.- V. 199. -P. 974−981.
  51. Crispe I.N., Giannandrea M., Klein I. et al. Cellular and molecular mechanisms of liver tolerance. -Immunol Rev. 2006. — V. 213. -P.101−118.
  52. De Lazzari F., Ravagnan P. et al. Circulating soluble-CD30 (sCD30) in patients with HCV-related chronic hepatitis and in patients withalcoholic liver disease. Hepatogastroenterology. — 2002. — V. 49. — P. 231−234.
  53. Del Prete G. The concept of type-1 and type-2 helper T cells and their cytokines in humans. Int Rev Immunol. — 1998. — V.16. — P. 427 — 455.
  54. De Rosa S., Cirillo P., Pacileo M. et al. Neopterin: from forgotten biomarker to leading actor in cardiovascular pathophysiology. Curr Vase Pharmacol. — 2011. — V. 9. — P. 188−99.
  55. Desai M., Neuberger J. Chronic Liver allograft rejection. Transplant. Proc.- 2009. -r V.41. — P. 773−776.
  56. Dong Z.J., Wei H.M., Sun R., et al. The roles of innate immune cells in liver injury and degeneration. Cell. Mol. Immunol. — 2007. — V.4. -P. 241−252.
  57. Duffield J.S., Forbes S.J., Constandinou C.M. et al. Selective depletion of macrophages reveals distinct, opposing roles during liver injury and repair. J Clin Invest. — 2005. — V. 115. — P. 56−65.
  58. Dunn C., Brunetto M., Reynolds G., et al. Cytokines induced during chronic hepatitis B virus infection promote a pathway for NK cellmediated liver damage. J Exp Med. — 2007. — V. 204. — P. 667−680.
  59. Elwy M.A., Galal Z.A., Hasan H.E. Immunoinflammatory markers and disease activity in systemic lupus erythematosus: something old, something new. East Med Health Journal. — 2010. — V.16. — P. 893 900.
  60. Engin A.B., Tuzun D., Sahin G. Evaluation of pteridine metabolism in battery workers chronically exposed to lead. Hum Exp Toxicol. — 2006. -V. 25- P. 353−359.
  61. Fallowfield J.A., Mizuno M., Kendall T.G. et al. Scar-associated macrophages are a major source of hepatic matrix metalloproteinase-13 and facilitate the resolution of murine hepatic fibrosis. J Immunol. -2007. — V. 178. — P. 5288−5295.
  62. Fabrega E., Unzueta M.G., Cobo M. et al. Value of soluble CD30 in liver transplantation. Transplant Proceed. — 2007. — V.39. — P. 2295−2296.
  63. Fishman J.A. Ihfection in solid-organ transplant recipients. N. Engl. Journal Med. — 2007. — V. 357. — P. 2601−2614.
  64. Frisaldi E., Conca R., Magistroni P. et al. Prognostic values of soluble CD30 and CD30 gene polymorphisms in heart transplantation. — Transplantation.- 2006.- V. 81. P. l 153−1157.
  65. Frezzolini A, Paradisi M, Ruffelli M, et al. Soluble CD30 in pediatric patients with atopic dermatitis. Allergy. — 1997. — V. 52. — P. 106— 109.
  66. Fuchs D., Albert J., Asjo B. et al. Association between serum neopterin concentration 'and in vitro replicative capacity of HIV-1 isolates. -Journal of Infectious Diseases. 1989. — V. 160. — P. 724−725.
  67. Fuchs D., Weiss G., Wachter H. The role of neopterin as a monitor of cellular immune activation in transplantation, inflammatory, infectious and malignant diseases. Crit Rev Clin Lab Sei. — 1992. — V.29. — P. 307−341.
  68. Fuchs D., Baier-Bitterlich G., Hausen A. et al. Neopterin as an immunodiagnostic parameter. Dtsch Med Wochenschr — 1995. — V. 120(16).- P. 567−570.
  69. Fuchs D., Avanzas P., Arroyo-Espliguero R. The role of neopterin in atherogenesis and cardiovascular risk assessment. Curr Med Chem. -2009.- V.16.-P. 4644−4653.
  70. Gale R.P., Sparkes R.S., Golde O.W. Bone-marrow origin of hepatic macrophages (Kupffer cells) in humans. Science. — 1978. — V. 201. -P. 937−938.
  71. Giannoli C., Bonnet M. et al. High pretransplantation soluble CD30 levels: impact in renal transplantation. Transplant Proceed. — 2007. -V. 39.-P. 2574−2575.
  72. Grebe S.O., Mueller T.F. Immune monitoring in organ transplantation using neopterin. Curr Drug Metab. — 2003. — V.3. — P. 189−202.
  73. Golocheikine A.S., Saini D., Ramachandran S. at al. Soluble CD30 levels as a diagnostic marker for bronchiolitis obliteranse syndrome following human lung transplantation. Transplant Immunol. — 2008. -V.18. — P. 260 -263.
  74. Hacini D., Guerin C., Berthoux P. et al. Monitoring of the serum neopterin/creatinin ratio in renal transplantation. Transplant Proc. -1987.- V.19. — P. 34−36.
  75. Hagberg L., Cinque P., Gisslen M. et al. Cerebrospinal fluid neopterin: an informative biomarker of central nervous system immune activation in HIV-1 infection. AIDS Research and Therapy. — 2010. — V. 7. -P.12−15.
  76. Hausen A., Aichberger C., Konigsrainer A. et al. Biliary and urinari neopterin concentrations in monitoring liver-allograft recipients. Clin Chem. — 1993. — V. 39 — P. 45−47.
  77. Haque T., Chaggar T. et al. Soluble CD30: A serum marker for Epstein-Barr virus-associated lymphoproliferative diseases. J of Med Virology. — 2011.- V.83.-P. 311−316.
  78. Havel M., Laczkovics A., Teufelsbauer H. et al. Neopterin as a new marker to detect acute rejection after heart transplantation. J Heart Transplant. — 1989. — V.8. — P. 167−170.
  79. Hetzer R., Potapov E., Muller J. et al. Daily noninvasive rejection monitoring improves long-term survival in pediatric heart transplantation. Ann Thorac Surg. — 1998. — V. 66. — P. 1343−1349.
  80. Hirsch B, Hummel M. et al. CD30-induced signaling is absent in Hodgkin’s cells but present in anaplastic large cell lymphoma cells. J Pathol.-2008.- V.172.- P. 510−520.
  81. Hoffmann G., Wirleitner B., Fuchs D. Potential role of immune system activation associated production of neopterin derivatives in humans. -Inflammation Res.-2003.-V.52.- P. 313−321.
  82. Holzer G., Pfandlsteiner Th., Blahover H et al. Serum concentrations of sCD30 and sCD40L in patients with malignant bone tumors. Wien Med Wochenschr. — 2003.- V.153.- P. 40−42.
  83. Humbert M., Delattre R.M., Cerrina J. et al. Serum neopterin after lung transplantation. Chest. — 1993. — V. 103. — P. 449−454.
  84. Ioachim H. et» al. Lymph node pathology. Chapter 9. Infectious Mononucleosis limphadenites. — 2008.- P. 81−98.
  85. Kakimi K., Guidotti L.G., Koezuka Y. et al. Natural killer T cell activation inhibits hepatitis B virus replication in vivo. J Exp Med. -2000.- V. 192.- P. 921−930.
  86. Karin M., Cao Y., Greten F.R. NF-kappaB in cancer from innocent bystander to major culprit. — Nat Rev Cancer. — 2002. — V.2. — P. 301 311.
  87. Kennedy M.K., Willis C.R., Armitage R.J. Deciphering CD30 ligand biology and its role in humoral immunity. Immunology. — 2006. -V.118.-P. 143−152.
  88. Kim K.H., Oh E.J., Jung E.S. et al. Evaluation of pre- and posttransplantation serum interferon-gamma and soluble CD30 for predicting liver allograft rejection. Transplant Proceed. — 2006. — V.38. -P. 1429−1431.
  89. Kinjo Y., Wu O., Kim G. et al. Recognition of bacterial glycosphingolipids by natural killer T cells. Nature. — 2005. — V.434 -P. 520−525.
  90. Knolle P.A. Involvement of the liver in the induction of CD8 T cell tolerance towards oral antigen. Gastroenterol. — 2006. — V.44. — P. 5156.
  91. Kotanko P., Margreiter R., Pfaller W. Urinary N-acetyl-beta-D-glucosaminidase and neopterin aid in the diagnosis of rejection and acute tubular necrosis in initially nonfunctioning kidney grafts. Nephrol. -2000.-V.84.-P. 228−235.
  92. Langhans B., Braunschweiger I. et al. Core-specific adaptive regulatory T-cells in different outcomes of hepatitis C. Clinical Science. — 2010. -V.119.-P. 97−109.
  93. Laroux F.S., Pavlick K.P., Hines I.N. et al. Role of nitric oxide in inflammation. Acta Physiol Scand. — 2001. — V. 173. — P. 113−118.
  94. Luedde T., Beraza N., Trautwein C. Evaluation of the role of nuclear factor-kappa B signaling in liver injury using genetic animal models. -Journal Gastroe’nlerol Hepatol. 2002. — V.21. — P. 43−46.
  95. Limmer A., Ohl J., Kurts C. Efficient presentation of exogenous antigen by liver endothelial cells to CD8 + T cells results in antigen-specific T-cell tolerance. Nat. Med. — 2000. — V.6. — P. 1348−1354.
  96. Margreiter R., Fuchs D., Hausen A. et al. Neopterin as a new biochemical marker for diagnosis of allograft rejection. Experience based upon evaluation of 100 consecutive cases. Transplantation. — 1983. -V.36.-P. 650−652.
  97. Matinlauri I., Hockerstedt K., Isoniemi H. High serum soluble CD30 does not predict acute rejection in liver transplant patients. Transplant Proc. — 2006. — V.38. — P. 3601−3604.
  98. Mattner J., Debord K. L., Ismail N. et al. Exogenous and endogenous glycolipid antigens activate NKT cells during microbial infections. -Nature. 2005. — V.434 — P. 525−529.
  99. McGovern P.C., Blumberg E.A. Differentiation between infection and rejection in the management of cardiac transplant patients. Current Medicine Group. — 2001. — V.3. -P.328−332.
  100. Melichar B., Solichova D., Svobodova I. Urinary neopterin in patients with liver tumors. Tumori. — 2006. — V. 92. — P. 318−22.
  101. Mildvan D., Solitzler J. et al. Serum neopterin, an immune activation marker, independently predicts disease progression in advanced HIV-1 infection. HIV/AIDS. CID. — 2005. — V.40. — P. 853−858.
  102. Muller T.F., Balzar E. et al. Low serial serum neopterin does not predict low risk for chronic renal graft rejection. Pediatr Nephrol. — 2001. -V.16. -P.11−14.
  103. Muller T.F., Trosch F., Ebel H. et al. Pancreas-specific protein, serum amyloid A and neopterin in the diagnosis of rejection after simultaneous pancreas and kidney transplantation. Transpl Int. — 1997. — V. 10. — P. 185−191.
  104. Nebling C., Chudy M. et al. Neopterin levels during the early phase of human immunodeficiency virus, hepatitis C virus, or hepatitis B virus infection. Transfusion. -2006. -V.46. — P. 1886−1891.
  105. Nazer B., Ray K., Sloan S. et al. Prognostic utility of neopterin and riskof heart failure hospitalization after an acute coronary syndrome.
  106. European Heart Journal 2010. — V.32. — P. 1390−1397. i
  107. Nikaein A, Spiridon C, Hunt J, et al. Pre-transplant level of soluble CD30 is associated with infection after heart transplantation. Clin Transplant. — 2007. — V.21. — P. 744−747.
  108. Oflazoglu E., Grewal I.S. et al. Targeting CD30 CD30L in oncology and autoimmune and inflammatory diseases. Adv. Exp. Med. Biol. — 2009. -V. 647.-P. 174−185.
  109. Pacileo M., Ciri^llo P., De Rosa S. The role of neopterin in cardiovascular disease. Monaldi Arch Chest Dis. — 2007. — V.68. — P. 68−73.
  110. Pelzl S., Opelz G., Weisel M. et al. Soluble CD30 as a predictor of kidney graft outcome. Transplantation. — 2002. — V.73. — P. 3−6.
  111. Pingle S.K., Tumane R.G., Jawade A.A. Neopterin: Biomarker of cellmediated immunity and potent usage as biomarker in silicisis and other occupational diseases. Intern J Occup Envir. Med. — 2008. — V.12. — P. 107−111.
  112. Pourakbari B, Mamishi S. et al. Evaluation of procalcitonin and neopterin level in serum of patients with acute bacterial infection. Braz J Infect Dis. — 2010. — V. 14. — P. 252−255.
  113. Platz K.P., Mueller A.R., Rossaint R. et al. Cytokine pattern during rejection and infection after transplantation improvements in postoperative monitoring. Transplantation. — 1996. — V.62. — P. 14 411 501.
  114. Racanelli Y., Rehermann B. The liver as an immunological organ. -Hepatology. 2006. — V.43. — P. 54−62.
  115. Rajakariar R., Jivanji N., Varagunam L. et al. High pre-transplant soluble CD30 levels are predictive of the grade of rejection. Am J Transplant. -2005. — V.5. — P. 1922−1925.
  116. Ray K.K., Morrow D.A., Sabatine M.S. et al. Long-term prognostic value of neopterin: a novel marker of monocyte activation in patientswith acute coronary syndrome. Circulation. — 2007. — V.115. — P. 3071−3078.y
  117. Razumovitch J.A., Semenkova G.N., Fuchs D., Cherenkevich S.N. Influence of neopterin on the generation of reactive oxygen species in human neutrophils. FEBS Lett. — 2003. — V.549. — P. 83−86.
  118. Rho Y.H., Solus J., Raggi P. et al. Macrophage activation and coronary atherosclerosis in systemic lupus erythematosus and rheumatoid arthritis. Arthritis Care Res. (Hoboken). — 2011. — V.63. — P.535−41.
  119. Sadeghi M., Sesal C. et al. Short communication: decreasing soluble CD30 and increasing IFN-gamma plasma levels are indicators of effective highly active antiretroviral therapy. AIDS Research and Human Retroviruses. — 2007. — V.23. — P. 886−890.
  120. Schennach H., Meyersbach P., Schonitzer D., Fuchs, D. Additional neopterin screening to improve safety of blood donations. Pteridines. -2000.-V.ll.-P. 76−80.
  121. Schlaf G., Altermann W.W., Rothhoff A. et al. Soluble CD30 serumlevel an adequate marker for allograft rejection of solid organs? -Histol Histopathol. — 2007. — V.22. — P. 1269−1279.
  122. Schmidt A., Tomasdottir H., Bengtsson A. Influence of cold ischemia time on complement activation, neopterin, and cytokine release in liver transplantation. Transplant Proc. — 2004 — V. 36. — P. 2796−2808.
  123. Schroecksnadel K., Winkler C., Fischer B. et al. Antioxidants down-regulate Thl-type immune response in vitro. Drug Metabol Lett. -2007.-V.l.- P. 166−171.
  124. Shevchenko O.P., Pitshulina M.E., Gichkun O.E. et al. Plasma levels of soluble CD30 and neopterin in pediatric living donors liver transplantation. XXIII International Congress of the Transplantation Society, august 15−19. — 2010. — Vancouver, Canada.
  125. Spiridon C., Hunt J., Mack M., et al. Evaluation of soluble CD30 as an immunologic marker in heart transplant recipients. Transplant Proc. -2006.-V.38.-P. 3689−3691.
  126. Spiridon C, Nikaein A. Lermman M., et al. CD30 a marker to detect the high-risk kidney transplant recipients. Clin Transplant. — 2008. — V.21. -P. 765−769.
  127. Sucher R., Schroecksnadel K., Weiss G. et al. Neopterin, a prognostic marker in human malignancies. Cancer Lett. — 2010. — V.287. — P. 1322.
  128. Susal C., Pelzl S., Dohler B. Identification of Highly Responsive Kidneyi
  129. Transplant Recipients Using Pretransplant Soluble CD30. Journal Am. Soc. Nephrol. -2002. -V. 13. — P. 1650−1656.
  130. Susal C., Dohler B., Sadeghi M. et al. Posttransplant sCD30 as a biomarker to predict kidney graft outcome. Transplantation. — 2011. -V. 91.-P. 1364−1369.
  131. Susal C., Pelzl S., Opelz G. Strong human leukocyte antigen matching effect in nonsensitized kidney recipients with high pretransplant soluble CD30. Transplantation. — 2003. — V.76. — P. 1231−1235.
  132. Spronk P.E., Bergkamp F.J.M., Ten Kate R.W. Changes in % CD8+CD30+ T-cells and viral load are related in HIV patients treated with two nucleoside analogues and a protease inhibitor. Immunology Letters. — 1997. — V. 56. — P. 136−137.
  133. Tacke F., Randolph G.J. Migratory fate and differentiation of blood monocyte subsets. Immunobiol. — 2006. — V.211. — P. 609−618.
  134. Tiegs G. Cellular and cytokine-mediated mechanisms of inflammation and its modulation in immune-mediated liver injury. Gastroenterol. -2007.-V.45.-P. 63−70.
  135. Truong D.Q., Darwish A.A., Gras J. Immunological monitoring after organ transplantation: potential role of soluble CD30 blood level measurement. Transpl Immunol. — 2007. — V. 17. — P. 283−287.
  136. Voet D., Voet J.G. Biochemistry. 3rd ed. John Wiley and Sons. -ISBN- 2004. -1?. 3923−3925.
  137. Vogl M., Andert S.E., Muller M. Tissue polypeptide specific antigen, neopterin, and CRP for monitoring heart transplant recipients. 1995. -V. 28.-P. 291−295.
  138. Winau F., Hegasy G., Weiskirchen R., et al. Ito cells are liver-resident antigen-presenting cells for activating T cell responses. Immunity. -2007.-V.26.-P. 117−129.
  139. Weiss G., Fuchs D., Hausen A. et al. Neopterin modulates toxicity mediated by reactive oxygen and chloride spcies. FEBS Lett. — 1993. -V.32. — P. 89−92.
  140. Wetlicka I., Jablecka A., Smolarek I. Neopterin as a prognostic marker in patients with chronic heart failure. Int Med J Exp Clin. Research. -2010.-V. 16.-P. 232−237.
  141. Winder B., Sepp N., Kowald E. et al. Enhanced tryptophan degradation in systemic lupus erythematosus. Immunobiology. — 2000. — V. 201. P. 621−30.
  142. Weimer R., Sesal C. et al. Post-Transplant sCD30 and Neopterin as Predictors of Chronic Allograft Nephropathy: Impact of Different Immunosuppressive Regimens. Am J Transplantation. — 2006. — V.6 (8).-P. 1865−1874.
  143. Wirleitner B., Hoffmann G., Fuchs D. Neopterin and 7,8 -dihydroneopterfn in TH1- type immune response. Mod Asp Immunobiol. — 2005. — V. 15. — P. 36−40.
  144. Wood K.L., Twigg H.L. et al. Dysregulation of CD8+ lymphocyte apoptosis, chronic disease, and immune regulation. Front. Biosci. -2009.-V. l.-P. 3771−3781.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!