Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Исследование взаимосвязи липидного состава и функциональной активности иммунокомпетентных клеток

Диссертация: Исследование взаимосвязи липидного состава и функциональной активности иммунокомпетентных клеток
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Ключевое положение в иерархии систем управления клеток занимают мембраны, на которых сосредоточены многие функциональные системы клеток. Определяющая роль в молекулярной организации и функционировании биологических мембран принадлежит липидам. Липидный состав детерминирует физико-химическое состояние мембран: их эластические и реологические свойства, проницаемость, стабильность, заряд… Читать ещё >

Содержание

  • Список сокращений
  • Глава 1. Обзор литературы
    • 1. 1. Липидный состав и функциональные свойства клеток
      • 1. 1. 1. Состав, свойства липидов и их организация в клеточных мембранах
      • 1. 1. 2. Липидный состав иммунокомпетентных клеток
    • 1. 2. Роль лшшдного состава иммунокомпетентных клеток в регуляции их функциональной активности
    • 1. 3. Возможные механизмы взаимосвязи липидного состава и функциональной активности иммунокомпетентных клеток
    • 1. 4. Изменения липидного состава и функциональной активности иммунокомпетентных клеток в экспериментальных условиях
      • 1. 4. 1. Экспериментальные модели для изучения взаимосвязи липидного состава и функциональной активности клеток
      • 1. 4. 2. Влияние а-токоферола на липидный компонент и функциональную активность иммунокомпетентных клеток
  • Глава 2. Материалы и методы исследования
    • 2. 1. Материалы исследования
    • 2. 2. Методы исследования
    • 2. 3. Статистическая обработка результатов исследования
  • Глава 3. Результаты собственных исследований
    • 3. 1. Липидный состав мононуклеаров и полиморфноядерных лейкоч цитов периферической крови человека
    • 3. 2. Исследование зависимости между липидным составом и функциональной активностью иммунокомпетентных клеток
      • 3. 2. 1. Изучение взаимосвязи между липидным составом и адгезией, фагоцитарной, бактерицидной активностью полиморфноя-дерных лейкоцитов периферической крови человека
      • 3. 2. 2. Липидный состав и адгезия перигонеальных лейкоцитов крыс
      • 3. 2. 3. Определение связи между липидным составом и пролифера-тивной активностью лимфоцитов периферической крови человека
    • 3. 3. Изменения липидного состава и функциональной активности мононуклеаров и полиморфноядерных лейкоцитов периферической крови человека при приеме а-токоферола
  • Глава 4. Обсуждение результатов
    • 4. 1. Особенности липидного состава и функциональные свойства мононуклеаров и полиморфноядерных лейкоцитов периферической крови человека
    • 4. 2. Липидный состав и функциональная активность полиморфноядерных лейкоцитов, мононуклеаров периферической крови человека, перитонеальных лейкоцитов крыс
    • 4. 3. Влияние а-токоферола на липидный состав и функциональную активность мононуклеаров и полиморфноядерных лейкоцитов периферической крови человека
  • Выводы

Исследование взаимосвязи липидного состава и функциональной активности иммунокомпетентных клеток (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность исследования.

Ключевое положение в иерархии систем управления клеток занимают мембраны, на которых сосредоточены многие функциональные системы клеток. Определяющая роль в молекулярной организации и функционировании биологических мембран принадлежит липидам. Липидный состав детерминирует физико-химическое состояние мембран: их эластические и реологические свойства [14, 15, 36, 51], проницаемость [7, 18, 36], стабильность [18, 142], заряд [28, 36]. Современные исследования показывают, что липидные домены мембран создают функциональные «платформы» для множества сигнальных и транспортных путей клетки [66, 112, 144, 173]. Липидный состав влияет на экспонирование рецепторов на плазматической мембране ИКК [28, 118, 139], что может являться основной механизмов регуляции «отзывчивости» клеток на внешние сигналы. Некоторые липиды и продукты их метаболизма несут информационную нагрузку, действуя как вторичные посредники в клетке при передаче сигнала [12, 110, 141], включаясь в межклеточные [98] и межсистемные взаимодействия [45, 48]. Известно, что регуляция клеточных функций биологически-активными соединениями, в частности, гормонами, простагландинами опосредована изменениями в липидном составе мембран клеток-мишеней [23, 36, 47, 177]. Вследствие кооперативной организации липидного компонента даже незначительные сдвиги в содержании отдельных липидов способны реализоваться в крупномасштабной глобальной перестройке мембран с гигантским коэффициентом усиления [36]. Все это свидетельствует о том, что липиды занимают важное место среди факторов регуляции мембранных процессов клеток.

Специализированные клетки, к которым относят и ИКК, имеют ряд особенностей липидного состава. Как дифференцировка клеток, так и потеря клетками специфических функций сопровождается изменениями в организации и составе липидов мембран [5, 71, 125, 151]. Это позволяет полагать, что липид-ный состав может быть ответственен за проявление специфических функциональных свойств клеток. Гетерогенность популяций клеток иммунной системы и их глубокая морфо-функциональная специализация предполагают наличие особенностей в их липидном составе. Поэтому интерес представляет сравнительный анализ липидного состава популяций ИКК в связи с и их функциональными свойствами.

Функциональная активность ИКК также находится под контролем их липидного состава. Цитотоксическая активность киллеров [28], хемотаксис ней-трофилов [181], реакция бласттрансформации лимфоцитов на митогены [160, 165] существенно зависят от липидного состава этих клеток. При этом исследователи отмечают ведущую роль холестерина [23, 28, 112, 139] и жирных кислот [80, 113, 164, 184] в регуляции функциональной активности ИКК в связи с их существенным влиянием на физико-химическое состояние мембран, а также ФТИ, с которым ассоциированы многие рецепторы ИКК [28]. На клиническом материале показано, что нарушения функциональной активности ИКК сопровождаются изменениями в их липидном составе. Обнаружены изменения в липидном составе ИКК при состояниях гиперчувствительности, иммунодефици-тах [15, 45, 148]. Однако эти немногочисленные данные лишь открывают перспективу подобных исследований. Структурно-функциональная связь липидного состава с активностью ИКК остается не раскрытой и требует дальнейших исследований.

Для изучения взаимосвязи между лшшдным составом и функциональной активностью ИКК наряду с физиологическими используют различные экспериментальные модели, предполагающие модификацию липидного состава клеток. Липотропные и антиоксидантные свойства а-токоферола [180] позволяют рассматривать его как фактор модификации липидного состава ИКК. Кроме того, витамин Е действует на функциональную активность ИКК [78, 79]. Поэтому влияние а-токоферола на липидный состав ИКК может быть удобной моделью в рамках исследований взаимосвязи между изменениями липидного компонента и функциональной активности ИКК.

В связи с этим целью работы явилось исследование взаимосвязи между липидным составом и функциональной активностью полиморфноядерных лейкоцитов, мононуклеаров периферической крови человека и перигонеальных лейкоцитов крыс.

В задачи исследования входило:

• изучить липидный состав мононуклеаров и ПМЯЛ периферической крови здоровых людей методом микротонкослойной хроматографии. Провести сравнительный анализ липидного состава мононуклеаров и ПМЯЛ в связи с их функциональными свойствами;

• исследовать зависимость между липидным составом ПМЯЛ и их функциональной активностью в тестах на адгезию, фагоцитоз, бактерицидность и взаимосвязь между липидным составом мононуклеаров и их пролиферативной активностью в РБТЛ;

• проанализировать липидный состав перитонеальных лейкоцитов крыс и его связь с фагоцитарной, бактерицидной активностью, адгезией этих клеток;

• определить липидный состав мононуклеаров и ПМЯЛ и их функциональную активность у здоровых людей при приеме а-токоферола.

Объектом исследования являлись иммунокомпетентные клетки: периферические мононуклеары и полиморфноядерные лейкоциты крови здоровых людей, перитонеальные лейкоциты крыс.

Предмет исследования — взаимосвязь липидного состава и функциональной активности иммунокомпетентных клеток. Научная новизна исследования.

В работе впервые изучены особенности липидного состава ПМЯЛ и мононуклеаров периферической крови человека и дан их сравнительный анализ.

Выявлены новые факты взаимосвязи между липидным составом ИКК и их функциональной активностью. Обнаружена зависимость между содержанием лизофосфолипидов в ПМЯЛ крови людей и пороговым характером изменения фагоцитарной активности этих клеток.

Показано, что уровень холестерина в ПМЯЛ крови человека является важным фактором, контролирующим проявление их бактерицидной активности, а от соотношения Хс/ФЛ зависит адгезия ПМЯЛ.

Выявлено, что адгезия перитонеальных лейкоцитов крыс к пластику связана с уровнем фракции фосфатидилинозитолов и фосфатидилсеринов.

Выявлены специфические изменения в липидном составе ПМЯЛ и мононуклеаров периферической крови человека под влиянием а-токоферола. Обнаружен феномен оптимизации функциональной активности лимфоцитов крови человека витамином Е.

Практическая значимость исследования.

Обнаруженная взаимосвязь между содержанием липидов и функциональной активностью ИКК указывает на то, что изменения в липидном составе могут быть важным патогенетическим звеном в нарушении функциональной активности ИКК. В связи с этим липидный состав ИКК можно рассматривать как мишень при выборе стратегии иммунокоррекции. Терапия, направленная на модификацию липидного состава может способствовать уменьшению повреждающих эффектов при патологии. С другой стороны, изменения в липидном спектре могут быть следствием нарушений функциональной активности ИКК. Поэтому показатели липидного состава могут иметь важное клинико-диагностическое значение. В экспериментальной иммунологии модификация липидного состава может использоваться как подход для моделирования функциональных состояний ИКК.

Положения, выносимые на защиту. 1. Липидный состав ПМЯЛ и мононуклеаров периферической крови человека различен. В пуле холестерина мононуклеаров преобладает свободный холестерин, в ПМЯЛ — эфирносвязанный, что соответственно определяет различие индексов этерификации и Хс/ФЛ между этими клетками. Выявленные особенности в липидном составе могут быть ответственны за проявление специфических функциональных свойств клеток.

2. Лизофосфолипиды являются фактором пороговой регуляция фагоцитарной активности ПМЯЛ крови человека.

3. Полиморфноядерные лейкоциты крови человека при относительно низком уровне свободного холестерина в клетках могут находиться как в состоянии спонтанной бактерицидности, так и в активном состоянии. В то же время при относительно высокой концентрации холестерина обнаруживаются состояния клеток, отвечающие только низкому уровню их активности.

4. Витамин Е снижает уровень свободного холестерина и увеличивает долю его эфиров в мононуклеарах крови человека и модулирует стимулированную ФГА пролиферативную активность лимфоцитов периферической крови человека.

Апробация результатов исследований.

Основные положения диссертации докладывались и обсуждались на: 6-ой Российской университетско-академической научно-практической конференции (Ижевск, 2003) — 5-ой Тихоокеанской международной научно-практической конференции молодых ученых «Актуальные проблемы экспериментальной, профилактической и клинической медицины» (Владивосток, 2004) — 69-ой межвузовской конференции молодых ученых (Курск, 2004) — 2 международной научно-практической конференции «Фундаментальные и прикладные исследования в системе образования», (Тамбов, 2004) — 8-ой Международной Путинской школе-конференции молодых ученых «Биология — наука XXI века», (Пущино, 2004), 59-ой межвузовской научно-практической конференции молодых ученых с международным участием «Актуальные вопросы современной медицинской науки и здравоохранения», (Екатеринбург, 2004) — III съезде иммунологов России, (Екатеринбург, 2004).

По теме диссертации опубликовано 10 работ, из них 3 в центральной печати.

105 Выводы.

1. Сравнительный анализ липидного состава мононуклеаров и полиморф-ноядерных лейкоцитов периферической крови здоровых людей выявил, что в пуле холестерина мононуклеаров преобладает свободный холестерин, тогда как в полиморфноядерных лейкоцитах — эфирносвязанный. За счет меньшего содержания свободного холестерина полиморфноядерные лейкоциты имеют более низкое молярное отношение Хс/ФЛ, чем мононуклеары. Особенности липидного состава полиморфноядерных лейкоцитов и мононуклеаров могут отражать различия в их функциональных свойствах.

2. Распределение показателей фагоцитарной активности в исследуемой выборке имеет двухвершинный характер, что указывает на существование двух дискретных функциональных состояний, отвечающих двум разным уровням фагоцитарной активности полиморфноядерных лейкоцитов людей. Обнаруженная взаимосвязь между уровнем лизофосфолипидов и фагоцитарной активностью полиморфноядерных лейкоцитов позволяет рассматривать лизофосфо-липиды как фактор пороговой регуляции фагоцитарной активности клеток.

3. Полиморфноядерные лейкоциты периферической крови человека при относительно низком уровне свободного холестерина в клетках могут находиться как в состоянии спонтанной бактерицидности, так и в активном состоянии. В то же время при относительно высокой концентрации холестерина в полиморфноядерных лейкоцитах обнаруживаются состояния клеток, отвечающие только низкому уровню их активности.

4. Увеличение соотношения Хс/ФЛ в мембранах полиморфноядерных лейкоцитов периферической крови человека можно рассматривать как один из механизмов усиления их адгезии. Адгезия перитонеальных лейкоцитов крыс к пластику положительно коррелирует с уровнем фосфатидилинозитолов и фос-фатидилсеринов.

5. При относительно высоком уровне свободного холестерина в лимфоцитах периферической крови человека снижается их пролиферативная активность в реакции бласттрансформации, стимулированной фитогемагглютинином.

6. а-токоферол при приеме в дозе 300 мг/день в течение 10 дней вызвал увеличение уровней фосфатидилсеринов и сфингомиелинов в полиморфноядерных лейкоцитах периферической крови человека, что может быть следствием избирательной антиоксидантной активности витамина Е. Изменений функциональной активности полиморфноядерных лейкоцитов в тестах фагоцитарной, бактерицидной активности и адгезии не обнаружено.

7. В мононуклеарах периферической крови человека отмечено снижение уровня свободного холестерина и увеличение его эфиров при приеме а-токоферола в дозе 300 мг/день в течение 10 дней. Выявлен модулирующий эффект а-токоферола на пролиферативную активность лимфоцитов в реакции бласттрансформации, вызванной фитогемагглютинином.

Показать весь текст

Список литературы

  1. А.Р. Иммуномодулирующее действие активаторов обмена углеводов и липидов при остром холодовом стрессе/ А. Р: Авакян, А. И. Лазарев, Л. Г. Прокопенко, Б. С. Утешев //Экспериментальная и клиническая фармакология. -2002. -№ 3.-С.50−53.
  2. Г. А. Влияние оксипина на тяжесть анафилактического шока и соотношение липидных фракций в лимфоцитах аллергизированных кроликов/ Г. А. Базанов, Л.Д. Смирнов//Бюлл. экспер. биол. и мед. 1995. -№ 4. — С.384−386.
  3. Л.Д. Исследование липидов и их молекулярной организации в искусственных и биологических мембранах/ Л.Д. Бергельсон//Биологические мембраны. 1984. — № 8. — С.794−812.
  4. Л.С. Влияние выработки условного рефлекса двустороннего избегания на липидную компоненту мозга крыс/ Л. С. Бикбулатова, А.Б. Оби-дин, Н. В. Гуляева, М. Г. Айрапетянц, Р.И. Кругликов//Бюлл. экспер. биол. и мед. 1990. -№ 4. — С.315−316.
  5. Биохимия мембран. Кн. 9. Клеточные мембраны и иммунитет: Учебное пособие/ Р. В. Петров, Р.И. Атауллаханов/Под ред. Болдырева А. А. М.: В.Ш., 1991.-144 с.
  6. Н.Г. Действие сверхмалых доз тиролиберина на микровязкость липидной компоненты биологических мембран/ Н. Г. Богданова, Т. В. Лемекова, Н.П. Пальмина//Бюлл. экспер. биол. и мед. 2000. — № 1. — С.38−40.
  7. JI.А. Уровень холестерина в лимфоцитах периферической крови: взаимосвязь с ишемической болезнью сердца у пациентов с различными типами гиперлипидемии/ Л. А. Волхова, Е.Ю. Соловьева//Бюлл. экспер. биол. и мед.- 1993. -№ 11. С.476−478.
  8. Ю.С. Клинические и биохимические параллели у больных псориазом в процессе комплексной терапии/ Ю. С. Бутов, Е. А. Хрусталева, Е. Г. Федорова, Л. Марченко, Т.И. Туркина//Медицинский научный и учебно-методический журнал. 2001. — № .3. — С.76−79.
  9. Введение в биомембранологию: Учебное пособие/Под ред. А.А. Болдырева- М.: МОГУ, 1990.-206с.
  10. Р.Б. Биомембраны: Молекулярная структура и функции/ Р. Б. Теннис. М.: Мир, 1997. — 622с.
  11. С.А. К механизму действия гидрокортизона на липиды лимфо-идных клеток/ С.А. Голованов//Проблемы эндокринологии. 1976. — Т. 12, №. 4.- С.79−81.
  12. А.Н. Исследование влияния липидного состава клеточных мембран на доменную структуру бислоя и латеральный транспорт/А.Н. Гольцов, В.Н. Каданцев//Физиология человека. 1995. — Т.21, № 6. — С.113−126.
  13. И.А. Изменение микровязкости мембран лимфоцитов и эритроцитов крови у онкологических больных/ И. А. Горошинская, Л. Ю. Голотина, Е. И. Горло, Т. А. Ровда, Ю.Н. Бордюшков//Вопросы мед. химии. 1999. -№ 1. -С.53−57.
  14. Г. А. О метаболических взаимоотношениях липидов/ Г. А. Грибанов/Лепехи современной биологии. 1979. — Т.87. — Вып 1. — С.16−33.
  15. Г. А. Методы анализа липидов. Лабораторный практикум для студентов химико-биологического факультета/ Г. А. Грибанов. Калининский госуниверситет, 1980. — 51с.
  16. Г. А. Особенности структуры и биологическая роль лизофосфоли-пидов/ Г. А. Грибанов//Вопросы мед. химии. 1991. — Т.37, № 4. С.2−10.
  17. Г. А. Об особенностях липидного состава некоторых иммуноком-петентных клеток крови человека/ JI.B. Бедулева, И. В. Меньшиков, JI.E. Ребров, В.Н. Мальцева//Биомедицинские технологии. 2002. — С.81- 85.
  18. Г. А. Липидные показатели кожи, мозжечка и продолговатого мозга при водно-иммерсионном стрессе у крыс/ Г. А. Грибанов, Н. В. Костюк, Ю. В. Абрамов, В. А. Быков, Л. Б. Ребров, Т. В. Володина, С.С. Перцов//Вопр. мед. химии. 1999. — № 2. — С.131−135.
  19. Е.О. Применение Т-активина при сахарном диабете у детей/ Е. О. Дорошенко, Е. И. Мартынова, В. Я. Арион, В.В. Смирнов//Медицинский научный и учебно-методический журнал. 2001. — № 3. — С.98−120.
  20. Э.А. Холестерин и липопротеины низкой плотности как эндогенные иммуномодуляторы/ Э. А. Доценко, Г. И. Юпатов, А.А. Чир-кин//Иммунопатология, аллергология, инфектология. -2001.-№ 3.-С.6−15.
  21. М.И. Влияние 25-гидроксихолестерина и прогестерона на эстери-фикацию холестерина, вязкость и белково-липидные взаимодействия мембран в макрофагах/ М. И. Душкин, Н. Г. Колосова, А.Ф. Сафина//Бюлл. экспер. биол. и мед. 2000. — № 2. — С. 145−148.
  22. Л.Г. Роль эйкозаноидов в регуляции фагоцитарной функции макрофагов фактором адгезии тромбоцитов при эндотоксическом шоке/ Л. Г. Зайцева, М. Ю. Вайсбурд, Г. М. Шапошникова, Е.Б. Мысякин//Бюлл. экспер. биол. и мед. 2000. — № 9. — С.309−312.
  23. Извекова В. А Роль эндогенных и экзогенных простагландннов в регуляции экспрессии Fc-рецепторов лимфоцитов и значение липидного состава мембран: Автореф. дис. канд. мед. наук/В.А.Извекова. М., 1987. 22 с.
  24. В.А. Липиды мембран и функции иммунокомпетентных клеток в норме и патологии/ В.А. Извекова//Успехи современной биологии. 1991. -Вып. 4. -Т.111. -С.577−588.
  25. КагаваЯ. Биомембраны/ Я. Кагава. М.: В.Ш., 1985. — 302 с.
  26. Капралов, А А. Продукция супероксида нейтрофилами крови человека при действии токоферола/ А. А. Капралов, А. Г. Федорчук, А. И. Масюк, Г. В. Дон-ченко, Г. Д. Петров//Иммунология. 1997. -№ 6. — С. 15−16.
  27. Е.П. Влияние гиперлипидемии на чувствительность тимоцитов к апоптозу у мышей линии СВА и С57В1/6/ Е. П. Киселева, В. П. Пузырева, Р. П. Огурцов, И.Г. Ковалева// Бюлл. экспер. биол. и мед. 2000. — № 8. — С.200−202.
  28. М.В. Состав липидов мембран эритроцитов и их биофизические характеристики у детей с инсулинзависимым сахарным диабетом в процессетерапии/ M.B. Колосова, В. В. Новицкий, Е. А. Степовая, Е.Б.//Клин. лаб. диагностика. 2001. -№ 1. — С. 10−12.
  29. С.В. Структурная лабильность биологических мембран и регулятор-ные процессы/ С. В. Конев. Минск: «Наука и техника», 1987. — 238 с.
  30. Г. Ф. Биометрия/ Г. Ф. Лакин. М: В. Ш., 1973. — 342 с.
  31. И.В. Витамин Е и аэробная работоспособность спортсменов в условиях нормо- и гипертермии/ И. В. Меньшиков, Л. А. Иоффе, В.Е. Сусеков//Физиология человека. 1994. — Т. 20, № 4. — С. 110−115.
  32. И.В. Основы иммунологии. Лабораторный практикум: Учебное пособие/И.В. Меньшиков, Л. В. Бедулева. -Ижевск: УдГУ, 2001. 133 с.
  33. Методы биохимических исследований/Под ред. Прохоровой М. И. Л., 1982.-С.56.
  34. Е.Л. Биохимия фосфолипидов/Материалы сайта http://cir.msk.ru.
  35. Д.К. Оценка иммунного статуса/ Д. К. Новиков, В. И. Новикова. -Витебск, 1996, — 281с.
  36. Е.И. Липиды плазматических мембран и липидные медиаторы воспаления у детей с атопическими заболеваниям/ Е. И. Прахин, С.Ю. Терещен-ко//Педиатрия. 2000. — № 2. — С.82−88.
  37. Л.М. Липиды плазматичеких мембран лимфоцитов у больных атеросклерозом и их детей/ Л. М. Рыжова, Г. А. Суханова, И. А. Ковалев, Г. П. Фил-липов// Клин.лаб.диаг. 2001. -№ 3. — С.10−12.
  38. П.В. Стероидные гормоны модуляторы липидного спектр лизосо-мальных мембран фибробластов кожи/ П. В. Сергеев, Т. В. Ухина, А.В. Семей-кин, Ю.С. Акулов//Бюлл. экспер. биол. и мед. — 1998. — Т. 125, № 2. — С. 165−167.
  39. Р.Н. Влияние ганглиозидов на пролиферацию и синтез антител лимфоцитами периферической крови больных аутоиммунными заболеваниями/ Р. Н. Степаненко, С. В. Скопцова, М.М. Кондрашева//Иммунология. 2001. — № 1. — С.26−30.
  40. Т.А. Влияние гидрокортизона на метаболизм липидов в плазматических мембранах гепатоцитов/ Т. А. Сухова, Т.В. Ухина//Бюлл. экспер. биол. и мед. 1986. — Т.102, № ю. — С.436−437.
  41. Ю.В. Роль фосфолипидов в изменении стабильности лизосо-мальных мембран в условиях хронической алкогольной интоксикации/ Ю. В. Тадевосян, К. Г. Карагезян, Г. А. Геворкян, Т.Б. Батикян//Бюлл. экспер. биол. и мед. 1985. — № 11. — С. 553−554.
  42. В.Н. Функциональная роль холестерина, различие пулов холестерина в клетке и отдельных классах липопротеинов крови/ В.Н. Титов//Клин. лаб. ди-аг. 2000. — № 3. — С.3−10.
  43. В.Н. Атеросклероз патология полиеновых жирных кислот/ В.Н. Ти-тов//Клин. лаб. диаг. — 2001. — № 1. — С.3−9.
  44. Т.Н. Сравнительные аспекты изменения показателей метаболизма липидов в мембранах лимфоцитов и эритроцитов у детей, больных сахарным диабетом/ Т. Н. Туркина, В. А. Извекова, Л. Ф. Марченко, Л.В. Сапелки-на//Педиатрия. 1991. — № 2. — С.30−33.
  45. P.M. Экологическая иммунология/ P.M. Хаитов, Б. В. Пинегин, Х. И. Истамов. М: ВНИРО, 1995. — С.147−148.
  46. .С. Фосфолипидный состав разных участков пораженного органа при раке легкого/ Б. С. Хышиктуев, Ю. Р. Агапова, И. В. Жилин, В.Н. Ива-нов//Вопр. мед. химии. 1999. -№ 4. — С.350−354.
  47. Г. В. Ксимедон снижает мембранную экспрессию фосфатидилсе-рина, вызванную проапоптогенным дефицитом сывороточных факторов роста в
  48. Т-клетках Jurkat/ Г. В. Черепнев, Ф. Керн, Р.С. ГараевЮкспериментальная и клиническая фармакология. 2002. — № 3. — С.40−43.
  49. В.М. Изменения показателей липидного обмена в семенниках крыс при воздействии жира печени минтая/ В. М. Чертков, Т. А. Ботвич, М. А. Хасина, О.А. Артюкова//Бюлл. экспер. биол. и мед. -2001. № 2. — С. 144−147.
  50. М.М. Липидная структура и функциональное состояние иммунокомпетентных клеток у беременных с гипертонической болезнью, ассоциированной с ожирением/ М. М. Шехтман, Ю.Г. Расуль-заде, В. И. Иванов, В.Т. Бор-ников//Иммунология. 1998. — № 5. — С.55−59.
  51. А.А. Основы иммунологии/ А. А. Ярилин. М.: Медицина, 1999. -606 с.
  52. Adolfsson О. Vitamin E-enhanced IL-2 production in old mice: naive but not memory T cells show increased cell division cycling and IL-2-producing capacity/ O. Adolfsson, B.T. Huber, S.N. Meydani//J. Immunol. 2001. — Vol. 167. — P.3809−3817.
  53. Alvarez E. Age-dependent modification of lipid composition and lipid structural order parameter of rat peritoneal macrophage membranes/ E. Alvarez, V, Ruiz-Gutierrez, C. Santa Maria, A. Machado//Mech. Ageing Dev. 1993. — Vol. 71. -P.1−12.
  54. Anderson H.A. Concentration of MHC class II molecules in lipid rafts facilitates antigen presentation/ H.A. Anderson, E.M. Hiltbold, P.A. Roche//Nat. Immunol. -2001.-Vol. 2.-P. 3.
  55. Balamuth F. Distinct patterns of membrane microdomain partitioning in Thl and th2 cells/ F. Balamuth, D. Leitenberg, J. Unternaehrer, I. Mellman, K. Bottomly //Immunity. 2001. — Vol. 15. -P.729−738.
  56. Beisel W.R. Impact of infectious disease upon fat metabolism and immune functions/ W.R. Beisel//Cancer Res. 1981. — Vol 41. — P.3797−3798.
  57. Bini L. Extensive temporally regulated reorganization of lipid raft proteome following T-cell antigen receptor triggering/ L. Bini, S. Pacini, S. Liberatori, S. Valen-sin, M. Pelligini, R. Raggiaschi//Biochem. J. 2003. — Vol. 369. — P.301−309.
  58. Blatt D.H. Vitamin E kinetics and function of tocopherol regulatory proteins/ D.H. Blatt, S.W. Leonard, M.G. Traber//Nutrition. 2001. — Vol. 17. — P.799−805.
  59. Bonini I.C. Sphingomyelin composition and physical asymmetries in native acetylcholine receptor rich membranes/ I.C. Bonini, S.S. Antollini, C. Gutierrez-Merino// Eur. Biophys J. 2002. — Vol. 31. — P. 417−427.
  60. Brigelius-Flohe R. Vitamin E: function and metabolism/ R. Brigelius-Flohe, M.G. Traber//FASEB Journal. 1999. — Vol. 13.-P.l 145−1155.
  61. Brown D. Structure and function of membrane rafts/ D. Brown //J. Med. Microbiol. 2002. — Vol. 291. — P.433−437.
  62. Brunet S. Modulation of endoplasmic reticulum-bound cholesterol regulatory enzymes by iron/ascorbate-mediated lipid peroxidation/ S. Brunet, L. Thibault, G. Lepage, E.G. Seidman, N. Dube, E. Levy//Free Radic. Biol. 2000. — Vol. 28. — P. 46−54.
  63. Calder P.C. Effects of feeding lipids of different fatty acid compositions upon rat lymphocyte proliferation/ P.C. Calder, L.F. Costa-Rosa, R. Curi//Life Sci. 1995. -Vol. 56. -P.455−463.
  64. Chabot M.C. Ether-linked phosphoglyceride content of human leukemia cells/ M.C. Chabot, D.G. Greene, J.K. Brockschmidt, R.L. Capizzi, R.L. Wykle//Cancer Res. 1990. — Vol. 50. -P.7174−7178.
  65. Chekhun V.F. Phospholipid and cholesterol levels in the tumor cell plasma membranes with different sensitivity to doxorubicin/ V.F. Chekhun, V.P. Tryndiak, I.M. Todor, V.M. Mykhailenko//Ukr. Biochim. Zh. 2003. — Vol. 75. — P. 120−125.
  66. Christie W.W. The lipid composition of the spleen and intestinal and popliteal lymph nodes in the sheep/ W.W. Christie, R.C. NobMLipids. 1985. — Vol. 20. -P.389−392.
  67. Curi R. The effect of propionate on lipid synthesis in rat lymphocytes/ R. Curi, L.F. Rosa, M. Yano, J.A. Bond, E.A. Newsholme//Gen. Pharmacol. 1994. — Vol. 25.-P. 1411−1416.
  68. Damen J. Effect of dietary lipids on plasma lipoproteins and fluidity of lymphoid cell membranes in normal and leukemic mice/ J. Damen, J. Widt, H. Hilkmann, W.J. Van Blitterswijk//Biochim. Biophys. Acta. 1988. -Vol. 943. -P.l66−174.
  69. De la Fuente M. Changes in macrophage and lymphocyte functions in guinea-pigs after different amounts of vitamin E ingestion/M. De la Fuente, M. Carazo, R. Correa, M. Del Rio//Br. J. Nutr. 2000. — Vol. 84. — P.25−29.
  70. De la Fuente M. Antioxidants as modulators of immune function/ M. De la Fuente, V. Victor//Immunol. Cell Biol. 2000. — Vol. 78. — P.49−54.
  71. Del Buono B.J. Plasma membrane lipid organization and the adherence of differentiating lymphocytes to macrophages/ B.J. Del Buono, S.M. White, P.L. Williamson, R.A. Schlegel/Л. Cell Physiol. 1989. — Vol. 138. — P.61−69.
  72. Del Buono B.J. Alterations in plasma membrane lipid organization during lymphocyte differentiation/ B.J. Del Buono, P.L. Williamson, R.A. Schlegel //J. Cell Physiol. 1986. — Vol. 126. -P.379−388.
  73. Diplock A. T .The modulating influence of vitamin E in biological membrane unsaturated phospholipid metabolism/ A.T. Diplock//Acta Vitaminol. Enzymol. 1982. -Vol. 4.-P. 303−309.
  74. Draber P. Lipid rafts in mast cell signaling/ P. Draber, L. Draberova//Mol. Immunol. 2002. — Vol. 38. — P. 1247.
  75. Drobnik W. Apo AI/ABCA1-dependent and HDL3-mediated lipid efflux from compositionally distinct cholesterol-based microdomains/ W. Drobnik, H. Bor-sukova, A. Pfeiffer, G. Liebisch, H. Schindler, G. Schmitz//Traffic. 2002. — Vol. 3. -P. 268−278.
  76. Edidin M. Membrane cholesterol, protein phosphorylation and lipid rafts/ M. Edidin//Sci. STKE 2001. №. 67. — PE1.
  77. Fan Y.Y. Dietary (n- 3) polyunsaturated fatty acids remodel mouse T-cell lipid rafts/ Y.Y. Fan, D.N. McMuiray, L.H. Ly, R.S. Chapkin //J.Nutr. 2003. — Vol.133. -P. 1913−1920.
  78. Fernandes G. Dietary lipids and risk of autoimmune disease/G. Fernandes //Clin. Immunol. Immunopathol. 1994. — Vol. 72. — P.193−197.
  79. Garnacho Montero J. Lipids and immune function/ J. Garnacho Montero, J. Shou, C. OrtizLeyba//Nutr. Hosp. 1996. — Vol. 11. -P.230−237.
  80. Gillett M.P. Lecithin: cholesterol acyltransfer, dyslipoproteinaemia and membrane lipids in uraemia/ M.P. Gillett, E.N. Obineche, M.S. Lakhani, A. Abdulle, M. Sulaiman//J. Nephrol. 2001. — Vol. 14. -P.472−480.
  81. Goebel J. Differential localization of IL-2- and -15 receptor chains in membrane rafts of human T cells/ J. Goebel, K. Forrest, L. Morford, T.L. Roszman//J. Leukoc. Biol. 2002. — Vol. 72. — P.199−206.
  82. Goppelt M. Lipid composition of functional domains of the lymphocyte plasma membrane/ M. Goppelt, R. Eichhorn, G. Krebs, K. Resch/ZBiochim. Biophys. Acta. -1986. Vol. 854. -P.184−190.
  83. Gousset K. Evidence for a physiological role for membrane rafts in human platelets/ K. Gousset, W.F. Wolkers, N.M. Tsvetkova, A.E. Oliver, C.L. Field, N.J. Walker, J.H. Crowe, F. Tablin//J. Cell Physiol. 2002. — Vol. 190. — P. 117−128.
  84. Grandmaison P.A. Externalization of phosphatidylserine during apoptosis does not specifically require either isoform of phosphatidylserine synthase/ P.A. Grandmaison, T.S. Nanowsky, J.E. Vance//BBA 2004. -Vol. 1636. — P. 1−11.
  85. Grimble R.F. Modulation of pro-inflammatory cytokine biology by unsaturated fatty acids/ R.F. Grimble, P. S. Tappia//Z Ernahrungswiss. 1998. — Vol. 37. — P.57−65.
  86. Grosman N. Similar effect of ether phospholipids, PAF and lyso-PAF on the Ca (2+)-ATPase activity of rat brain synaptosomes and leucocyte membranes/ N. Grosman//Int. Immunopharmacol. -2001. Vol 1. — P. 1321−1329.
  87. Harbige L.S. Dietary n-6 and n-3 fatty acids in immunity and autoimmune disease/ L.S. Harbige//Proc. Nutr. Soc. 1998. — Vol. 57. — P.555−562.
  88. Healy D.A. Effect of low-to-moderate amounts of dietary fish oil on neutrophil lipid composition and function / D.A. Healy, F.A. Wallas, E.A. Miles, P.C. Calder, P. Newsholm// Lipids. 2000. — Vol. 35. — P.763−768.
  89. Herrera E. Vitamin E: action, metabolism and perspectives/ E. Herrera, C. Bar-das//J. Physiol. Biochem. 2001. — Vol. 57. — P.43−56.
  90. Jindrichova S. Corticosteroid effect on Caco-2 cell lipids depends on cell differentiation/ S. Jindrichova, O. Novakova, J. Bryndova, E. Tvrzicka, V. Lisa, F. Novak, J. Pacha//J. Steroid Biochem Mol. Biol.-2003. Vol. 87.-P. 157−165.
  91. Kabarowski J.H. Lysophosphatidylcholine as a ligand for the immunoregulatory receptor G2A/ J.H. Kabarowski, K. Zhu, L.Q. Le, O.N. Witte, Y. Xu//Science. 2001. — Vol. 293. — P.702−705.
  92. Kabouridis P. S. Cholesterol depletion disrapts lipid rafts and modulates the activity signaling pathways in T lymphocytes/ P. S. Kabouridis, J. Janzen, A. Magee //Eur. J. Immunol. 2000. — Vol. 30. — P. 954−963.
  93. Komatsua H. Glycerylphosphorylcholine inhibits the transfer function of phos-phatidylinositol transfer protein/ H. Komatsua, J. Westermanb, G. Snoekb, T. Ta-raschia, N. Janesa//Bochim. Biophys. Acta. 2003. — Vol. 1632. — P.72−79.
  94. Kusner D.J. Protease priming of neutrophil superoxide production. Effects on membrane lipid order and lateral mobility/ D.J. Kusner, J.N. Aucott, D. Franceschi, M.M. Sarasua, P. J. Spagnuolo, C.H. King//J. Biol. Chem. 1991. — Vol. 266. -P.16 465−16 471.
  95. Laganiere S. Study on the lipid composition of aging Fischer-344 rst lymphoid cells: effect of long-term calorie restriction/ S. Laganiere, G. Fernandes//Lipids-1991.-Vol. 26.-P. 472−478.
  96. Lee C.Y. Vitamin E supplementation improves cell-mediated immunity and oxidative stress of Asian men and women/ C.Y. Lee, Man-Fan Wan J.//J. Nutr. -2000. Vol. 130. — P. 2932−2937.
  97. Lehto M.T. Pi-specific phospholipase С cleavage of a reconstituted GPI-anchored protein: modulation by the lipid bilayer/ M.T. Lehto, F. J. Sha-rom//Biochemistry. -2002. -Vol. 41. -P.1398−1408.
  98. Leitinger B. The involvement of lipid rafts in the regulation of integrin function/ B. Leitinger, N. Hogg//J. Cell Sci. 2002. — Vol. 115. — P. 963−972.
  99. Lin B.F. Dietary fat influences la antigen expression, cytokines and prostaglandin E2 production of immune cells in autoimmune-prone NZB x NZW F1 mice/ B.F.1.n, C.H. Huang, B.L. Chiang, S.J. Jeng //Br. J. Nutr. 1996. — Vol. 75. — P. 711 722.
  100. Madara J.L. Structural features of and cholesterol distribution in M-cell membranes in guinea pig, rat, and mouse Peyers patches/ J.L. Madara, W. A Bye, J.S. Trier//Gastroenterology. 1984. — Vol. 87. — P.1091−1103.
  101. Malapati S. The influence of CD40 on the association of the В cell antigen receptor with lipid rafts in mature and immature cells/ S. Malapati, S.K. Pierce//Eur. J. Immunol. 2001. — Vol. 31. — P.3789−3797.
  102. Marmor M.D. Role for lipid rafts in regulating interleukin-2 receptor signaling/ M.D. Marmor, M. Julius//Blood. 2001. — Vol. 98. -P.1489−1497.
  103. Martelli A.M. Diacylglycerol kinases in nuclear lipid-dependent signal transduction pathways/ A.M. Martelli, R. Bortul, G. Tabellini, R. Bareggi, L. Manzoli, P. Narducci, L. Cocco//Cell Mol. Life. Sci. 2002. — Vol. 59. -P.l 129−1137.
  104. Massey J.B. Interfacial properties of phosphatidylcholine bilayers containing vitamin E derivates/ J.B. Massey //Chem. Phys. Lipids. 2001. — Vol. 109. — P.157−174.
  105. Masuda M. Decreased fluidity of polymorphonuclear luekocyte membrane in streptozocin-induced diabetic rats/ M. Masuda, T. Murakami, H. Egawa, K. Mu-rata//Diabetes. 1990. — Vol. 39. — P.466−470.
  106. Milhiet P.E. Cholesterol is not crucial for the existence of microdomains in kidney brush-border membrane models/ P.E. Milhiet, M.C. Giocondi, C. Le Grimel-lec//J. Biol. Chem. 2002. — Vol. 277. -P. 857−858.
  107. Millan J. Lipid rafts mediate biosynthetic transport to the T lymphocyte uropod subdomain and are necessary for uropod integrity and function/ J. Millan, M.C. Montoya, D. Sancho, F. Sanchez-Madrid, M.A. Alonso//Blood. 2002. — Vol. 99. -P.978−984.
  108. Mitchell J.S. Lipid microdomain clustering induces a redistribution of antigen recognition and adhesion molecules on human T lymphocytes/ J.S. Mitchell, O. Kanca, B.W. Mclntyre//J. Immunol. 2002. — Vol. 168. — P.2737−2744.
  109. Miura S. Modulation of intectinal immune system by dietary fat intake: relevance to Crohn’s disease/ S. Miura, Y. Tsuzuki//J. Gastroenterol. Hepatol. 1998. -Vol.13.-P. 1183−1190.
  110. Moriguchi S. The role of vitamin E in T-cell differentiation and the decrease of cellular immunity with aging/ S. Moriguchi, M. Hamada, K. Yamauchi, K. Sakai, S. Yamamoto//J. Med. Invest. 1998. — Vol. 45. — P. 1−8.
  111. Morrow W.J. Dietary fat and immune function. Antibody responses, lymphocyte and accessory cell function in (NZB x NZW) F1 mice/ W.J. Morrow, Y. Ohashi, J. Hall, J. Pribnov, S. Hirose, T. Shirai, J.A. Levy//J. Immunol. 1985. — Vol. 135. -P.3857−3863.
  112. Moussa M. In vivo effects of oil-based lipid emulsion on limphocyte activation in rats/ M. Moussa, J. Le Boucher, J. Garcia, J. Tkaczuk //Clinical Nutrition. 2000. -Vol. 19.-P.49−54.
  113. Moussa M. Relationship between the fatty acid composition of rat lymphocytes and immune functions/ M. Moussa, J. Tkaczuk, J. Ragab, J. Garcia, M. Abbal, E. Ohayon, J. Ghisolfi, J. P. Thouvenot //Br. J. Nutr. 2000. — Vol. 83. — P.327−333.
  114. Murawski U. Age-related changes of lipid fractions and total fatty acids in the serum of female and male rats aged from 37 to 1200 days/ U. Murawski, K. Kri-esten, H. Egge// Сотр. Biochem. Physiol. 1989. — Vol. 94. — P.525−536.
  115. Neufeld N.D. Effects of caloric restriction and exercise on insulin receptors in obesity: association with changes in membrane lipids/ N.D. Neufeld, C. Ezrin, L. Corbo, D. Long, M.A. Bush //Metabolism. 1986. — Vol. 35. — P.580−587.
  116. Nguyen D.H. CXCR4 function requires membrane cholesterol/ D.H. Nguyen, D. Taub//J. Immunol. 2002. — Vol. 168. — P.4121−4126.
  117. Ohanian J. Sphingolipids in mammalian cell signaling/ J. Ohanian, V. Oha-nian//Cell Moll. Life Sci. 2001. — Vol. 58. — P. 2053−2068.
  118. Petrequin P.R. Differential responses to adjuvants of macrophages from young virgin, aging virgin and aging breeder mice/ P.R. Petrequin, A.G. JohnsonvVInt. J. of Immunopharmacology. 1986. — Vol. 8. — P.261−268.
  119. Pierce S.K. Lipid rafts and B-cell activation/ S.K. Pierce //Nat. Rev. Immunol. -2002.-Vol. 2. P.96−105.
  120. Pike M.C. Lipid requirements for leukocyte chemotaxis and phagocytosis: effects of inhibitors of phospholipid and cholesterol synthesis/ M.C. Pike, R. Snyder-man//J. Immunol. 1980. — Vol. 124. -P.1963−1969.
  121. Pilot J.D. Effects of phospholipid headgroup and phase on the activity of diacyl-glycerol kinase of Escherichia coli/ J.D. Pilot, J.M. East, A.G. Lee//Biochemistry. -2001.-Vol. 40.-P. 14 891−14 897.
  122. Pozzi D. Role of Alcata cell membrane fluidity in susceptibility to Epstein-Barr virus infection/ D. Pozzi, A. Lisi, S. Grimaldi//Res. Virol. 1995. -Vol. 146. -P.301−305.
  123. Pratt V.C. Alteration in lymphocyte function and relation to phospholipid composition after burn injury in humans/ V.C. Pratt, E.E. Tredget, M.T. Clandinin, C.J. Field//Crit Care Med. 2002. — Vol. 30. -P.1753−1761.
  124. Radu C.G. T cell chemotaxis to lysophosphatidylcholine through the G2A receptor/ C.G. Radu, L.V. Yang, M. Riedinger, M. Au, O.N. Witte//Proc. Natl. Acad Sci USA. 2004. — Vol. 101. -P.245−250.
  125. Ricardo M.J. Lipid composition of alveolar macrophage plasma membrane during postnatal development/ M.J. Ricardo, G.W. Small, Q. N. Myrvik, L.S. Kucera//J. Immunol. 1986. — Vol. 136. -P.1054−1056.
  126. Salgado J. Alpha-tocopherol interacts with natural micelle-forming single-chain phospholipids stabilizing the bilayer phase/ J. Salgado, J. Villalain, J.C. Gomez-Fernandez//Arch. Biochem. Biophys. 1993. — Vol. 306. -P.368−376.
  127. Samuni A.M. Damage to liposomal lipids: protection by antioxidants and cholesterol-mediated dehydration/ A.M. Samuni, A. Lipman, Y. Barenholz//Chem. Phys. Lipids. -2000. Vol. 105. — P. 121−134.
  128. Sanchez-Migallon M.P. Interaction between alpha-tocopherol and heteroacid phosphatidylcholines with different amounts of unsaturation/ M.P. Sanchez-Migallon, F.G. Aranda, J.C. Gomez-Fernandes//Bochim. Biophys. Acta. 1996. -Vol. 1279. -P.251−258.
  129. Sanderson P. Effects of dietary lipid manipulation upon graft vs host and host vs graft responses in the rat/ P. Sanderson, P. Yaqoob, P. Calder//Cellular Immunology. 1995. — Vol. 164. — P.240−247.
  130. Schade A.E. Lipid raft heterogeneity in human peripheral blood T lymphoblasts: a mechanism for regulating the initiation of TCR signal transduction/A.E. Schade, A.D. Levine//J. Immunol. 2002. — Vol.168. — P.2233−2239.
  131. Sedwick C.E. Ordered just so: lipid rafts and lymphocyte function C.E. Sed-wick, A. Altman//Sci. STKE. 2002. № 122 — PE 2.
  132. Serafini M. Dietary vitamin E and T cell-mediated function in the elderly: effectiveness and mechanism of action/ M. Serafini//Int. J. Dev. Neurosci. 2000. -Vol. 18. -P.401−410.
  133. Seres I. Alteration of lymphocyte membrane phospholipids and intracellular free calcium concentrations in hyperlipidemic subjects/ I. Seres, M. Freyss-Beguin, A.
  134. Mohacsi, В. Kozlovsky, J. Simon, M. Devynck, T. Fulop// J. Atherosclerosis. 1996. -Vol. 121. — P.175−183.
  135. Shiratsuchi A. Phosphatidylserine-mediated phagocytosis of influenza A virus-infected cells by mouse peritoneal macrophages/ A. Shiratsuchi, M. Kaido, T. Taki-zawa, Y. Nakanishi//J. Virol. 2000. — Vol. 74. — P.9240−9244.
  136. Simons M. Assembly of myelin by association of proteolipid protein with cholesterol- and galactosylceramide-rich membrane domains/ M. Simons, E. Kramer, C. Thiele, W. Stoffel, J. Trotter//J. Cell. Biol. 2000. — Vol. 151. — P.143−153.
  137. Smith D.M. Plasma membrane lipid packing and leukocyte function-associated antigen-1-dependent aggregation of lymphocytes/ D.M. Smith, P.L. Williamson, R.A. Schlegel//J. Cell Physiol. 1993. — Vol. 156. — P.182−188.
  138. Stulnig T.M. Immunomodulation by polyunsaturated fatty acids: mechanisms and effects/ T.M. Stulnig//Int. Arch. Allergy Immunol. 2003. — Vol. 132. — P.310−321
  139. Stulnig T.M. Altered switch in lipid composition during T-cell blast transformation in the healthy elderly/ T.M. Stulnig, E. Buhler, G. Bock, C. Kirchebner, D. Schonitzer, G. Wick//J. Gerontol. A Biol. Sci. Med. Sci. 1995. — Vol. 50. — P.383−390.
  140. Stulnig T.M. Polyunsaturated eicosapentaenoic acid displaces proteins from membrane rafts by altering raft lipid composition/ T.M. Stulnig, J. Huber, N. Leit-inger, E. Imre, P. Angelisova//J. Biol Chem. 2001. — Vol. 276. — P.37 335−37 340.
  141. Szewczenlco-Pawlikowski M. Accumulation of unsaturated lipids in monocytes during early phase pyrogen tolerance/ M. Szewczenko-Pawlikowski, W. Kozalc //Biochim. Biophys. Acta. 2000. — Vol. 1484. — P. 183−194.
  142. Terrasa A. Selective inhibition of the non-enzymatic lipid peroxidation of phos-phatidylserine in rod outer segments by alpha-tocopherol/ A. Terrasa, M. Guajardo, A. Catala//Mol. Cell Biochem. 2000. — Vol. 211. -P.39−45.
  143. Thewke D. Transcriptional homeostatic control of membrane lipid composition/ D. Thewke, M. Kramer, M. Sinensky//Biochem. Biophys. Res. Commun. 2000. -Vol. 273.-P. 1−4.
  144. Traill K.N. Lymphocyte membrane lipid composition and mitogen responsiveness in chickens: role of membrane fluidity/ K.N. Traill, K. Ratheiser, R. Pfeil-schifter//Eur. J. Immunol. 1986. — Vol. 16. — P.75−82.
  145. Т. В cell signaling/ T. Tsubata, J. Wienands//Int. Rev. Immunol. -2001.-Vol.20.-P.675−678.
  146. Tuosto L. Organization of plasma membrane functional rafts upon T cell activation/ L. Tuosto, I. Parolini, S. Schroder, M. Sargiacomo, A. Lanzavecchia, A. Vi-ola//Eur. J. Immunol. 2001. — Vol.31. — P.345−349.
  147. Uchida T. Inhibition of cell growth by macrophage membrane lipid molecule/ T. Uchida, S. Naito, J. Mizuguchi//Int. Arch. Allergy Immunol. 1995. — Vol.106. -P.107−112.
  148. Van Laethem F. Membrane lipid rafts: new targets for immunoregulation/ F. Van Laethem, O. Leo//Curr. Mol. Med. 2002. — Vol. 2. — P.557−570.
  149. Van Laethem F. Glucocorticoids alter the lipid and protein composition of membrane rafts of a murine T cell hybridoma/ F. Van Laethem, X. Liang, F. Andris, J. Urbain, M. Vandenbranden, Т. M. Stulnig, O. Leo//J. Immunol. 2003. — Vol. 170. -P.2932−2939.
  150. Wallace F.A. Dietary fats affect macrophage-mediated cytotoxicity towards tumour cells/ F.A. Wallace, S.J. Neely, E.A. Miles, P.C. Calder//Immunol. Cell Biol. -2000.-Vol. 78.-P. 40−48.
  151. Wang X. The location and function of vitamin E in membranes/ X. Wang, P.J. Quinn//Mol. Membr. Biol. 2000. — Vol. 17. — P.143−156.
  152. Wolach B. Improved chemotactic ability of neonatal polymorphonuclear cells induced by mild membrane rigidification/ B. Wolach, M. Ben Dor, O. Chomsky, R. Gavrieli, M. Shinitzky//J. Leukoc. Biol. 1992. — Vol.51. — P. 324−328.
  153. Yaqoob P. Lipids and the immune response/ P. Yaqoob//Current Opinion in Clinical Nutrition and Metabolic Care. 1998. № 1. — P. 153−161.
  154. Yaqoob P. Fatty acids as gatekeepers of immune cell regulation/ P. Yaqoob //Trends Immunol. 2003. — Vol. 24. — P.639−645.
  155. Yaqoob P. Effect of dietary lipid manipulation upon inflammatory mediator production by murine macrophages/ P. Yaqoob, P. Calder//Cell. Immunol. 1995. -Vol. 163.-P. 120−128.
  156. Yaqoob P. The effect of dietary lipid manipulation on rat lymphocyte subsets and proliferation/ P. Yaqoob, E.A. Newsholme, P. Calder//Immunology. 1994. -Vol. 82. — P.603−610.
  157. Yaqoob P. Influence of cell culture conditions on diet-induced changes in lymphocyte fatty acid composition/ P. Yaqoob, E.A. Newsholme, P. Calder//Biochim. Biophys. Acta. 1995. — Vol. 1255. — P. 333−340.
  158. Zeyda M. LAT displacement from lipid rafts as a molecular mechanism for the inhibition of T cell signaling by polyunsaturated fatty acids/ M. Zeyda, G. Staffler, V. Horejsi, W. Waldhausl, T.M. Stulnig//J. Biol. Chem. 2002. — Vol. 277. -P.28 418−28 423.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!