Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Функционирование репродуктивной системы самцов крыс при хроническом воздействии природных токсикантов

Диссертация: Функционирование репродуктивной системы самцов крыс при хроническом воздействии природных токсикантов
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Провести исследование морфо-функциональных характеристик семенников и эпидидимисов крыс в норме (масса, объем, общее количество клеток ряда сперматогенеза, концентрация сперматогоний, концентрация сперматоцитов, концентрация сперматид, концентрация сперматозоидов, соотношение между разными типами сперматогенных клеток, морфологию сперматозоидовдля эпидидимиса дополнительно — содержание активно… Читать ещё >

Содержание

  • ГЛАВА 1. РЕГУЛЯЦИЯ СПЕРМАТОГЕНЕЗА (обзор литературы)
    • 1. 1. Сперматогенез у крыс
    • 1. 2. Эндокринные факторы регуляции
    • 1. 3. Паракринные и аутокринные факторы регуляции

Функционирование репродуктивной системы самцов крыс при хроническом воздействии природных токсикантов (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность исследования.

В настоящее время в России наблюдается нарастание проявлений экологического кризиса, затронувшего уже многие регионы. Одним из таких регионов является Нижнее Поволжье. Создавшаяся неблагополучная ситуация обусловлена комплексом антропогенных и техногенных факторов. Крайне сложная экологическая обстановка побуждает проводить интенсивное изучение воздействия агрессивных экологических факторов на биологические объекты [11, 36].

Природный газ Астраханского газоконденсатного месторождения имеет уникальный состав с высоким содержание сероводорода — 24% от состава газа, кроме того в газа входят и другие высокотоксичные соединения, например, сероокись углерода — 1200−2000 мг/м3, метили этилмеркаптаны (преимущественно — метилмеркаптан) — 700−800 мг/м3, сероуглерод и другие. Поэтому природный газ Астраханского газоконденсатного месторождения различные его компоненты и их дериваты занимают одну из центральных позиций в комплексе агрессивных экологических факторов, характерных для Нижнего Поволжья [25, 36].

Наиболее актуально исследование именно хронического влияния малых доз природного газа, так как в условиях реального производства большинства компонентов природного газа находятся в пределах ПДК или превышают их умеренно (не более, чем в 2,0−2,5 раза): сероводород — 2,3+0,4 мг/м3, диоксид серы — 6,1+0,9 мг/м3, оксиды азота (в пересчете на 02) — 1,2+0,2 мг/м3, углеводороды (в сумме) — 49,7+4,8 мг/м3, меркаптаны — 0,8+0,06 мг/м3, оксид углерода -10,2±2,1 мг/м3.

Традиционно при изучении действия токсиканта оцениваются его канцерогенные свойства, мутагенность, эмбриотоксичность, тератогенные эффекты и ряд других [50, 57, 63]. При этом крайне мало уделяется внимания исследованию влияния токсиканта на морфо-функциональное состояние репродуктивной системы, на процесс сперматогенеза, на формирование оплодотворяющей способности эякулята экспериментальных животных [23, 102, 119]. Хотя известно, что все мужское бесплодие в настоящее время приобретает все большие масштабы [21, 39]. А между тем, при дисфункции репродуктивной системы самцов, их субфертильности и инфертильности, все прочие исследования могут потерять свою актуальность из-за отсутствия потомства.

Во многом столь явный пробел в оценке действия экологических факторов обусловлен отсутствием доступной модели, которая позволила бы объективно и адекватно с хорошей воспроизводимостью осуществлять контроль над процессом сперматогенеза и морфо-функциональным состоянием органов генеративной системы самцов экспериментальных животных [15, 16, 17, 43, 85, 138]. В то же время, подобные исследования позволили бы не только контролировать воздействие экологических факторов на прокреативную функцию, но и проводить эффективный поиск новых методов протекции и реабилитации репродуктивной системы самцов при воздействии тех или иных неблагоприятных экологических факторов.

Цель исследования.

Изучить влияние природного газа Астраханского месторождения на морфо-функциональное состояние органов репродуктивной системы самцов крыс и провести поиск методов протекции сперматогенеза от неблагоприятных экологических факторов.

Основные задачи исследования.

1. Провести исследование морфо-функциональных характеристик семенников и эпидидимисов крыс в норме (масса, объем, общее количество клеток ряда сперматогенеза, концентрация сперматогоний, концентрация сперматоцитов, концентрация сперматид, концентрация сперматозоидов, соотношение между разными типами сперматогенных клеток, морфологию сперматозоидовдля эпидидимиса дополнительно — содержание активно подвижных, слабо — подвижных, неподвижных сперматозоидов, скорость сперматозоидов, длительность сохранения двигательной активности, количество мертвых сперматозоидов, наличие явления агглютинации, агрегации сперматозоидов).

2. Оценить последствия влияние малых доз природного газа Астраханского газоконденсатного месторождения на фертильность крыс.

3. Изучить хроническое влияние малых доз природного газа Астраханского месторождения на функциональную активность биосинтеза тестостерона, через определение активности основного фермента биосинтеза тестостерона — А5−3|3-гидроксистероиддегидрогеназы.

4. Определить коррелятивные связи между различными морфо-функциональными характеристиками семенников, морфо-функциональными характеристиками эпидидимисов, клеточным составом семенников и его морфологическими и функциональными характеристиками, клеточным составом эпидидимисов и его морфологическими и функциональными характеристиками, динамикой активности Д5−3(3-гидроксистероиддегидрогеназы, а так же оплодотворяющими свойствами эякулятов крыс в норме. На основе этого определить звенья сперматогенеза наиболее чувствительные к воздествию малых доз природного газа Астраханского месторождения.

5. Разработать методы протекции и восстановления нормальной морфо-функциональной организации репродуктивной системы самцов экспериментальных животных во время и после хронического воздействия малых доз природного газа Астраханского месторождения.

Научная новизна.

Впервые дана характеристика последствий длительного воздействия малых доз природного газа Астраханского газоконденсатного месторождения на морфо-функциональное состояние органов репродуктивной системы самцов крыс, исследована динамика ферментативной активности Д5-Зр-гидроксистероиддегидрогеназы и другие биохимические изменения, протекающие в семенниках крыс после подобного воздействия.

Впервые на основе последних достижений микроэлементологии проведен поиск новых методов протекции и восстановления оплодотворяющей способности эякулята, нарушенной под влиянием неблагоприятных экологических факторов.

Практическое значение работы.

Дана характеристика функциональных нарушений репродуктивной системы, развивающихся под воздействием природного газа Астраханского газоконденсатного месторождения.

Выявлены наиболее чувствительные звенья сперматогенеза, первыми реагирующие на воздействие природного газа. Показано неблагоприятное воздействие природного газа на биосинтез андрогенов в семенниках.

Предложены принципы протекции сперматогенеза от неблагоприятного воздействия природного газа Астраханского газоконденсатного месторождения на основе использования эссенциального микроэлемента селена.

Внедрение результатов работы в практику.

Полученные результаты используются в практической работе Центра планирования семьи и репродукции человека г. Астрахани при выявлении факторов риска развития субфертильности и инфертильности у мужчин и при выборе оптимальных комплексных схем лечения выявленных нарушений оплодотворяющей способности эякулята.

Результаты диссертационной работы используются в качестве учебного материала для студентов, интернов и ординаторов Астраханской государственной медицинской академии.

Основные положения, выносимые на защиту.

1. Обнаружено отрицательное воздействие длительного контакта с малыми дозами природного газа Астраханского газоконденсатного месторождения на мужскую репродуктивную функцию.

2. Установлены звенья сперматогенеза, поражающиеся при длительном контакте с малыми дозами природного газа Астраханского газоконденсатного месторождения.

3. Активность Д5-Зр-гидроксистероиддегидрогеназы под действием природного газа Астраханского газоконденсатного месторождения снижается в 2 раза по сравнению с нормой.

4. Микроэлемент селен может использоваться для коррекции нарушений сперматогенеза, развивающихся при воздействии природного газа Астраханского газоконденсатного месторождения.

Апробация результатов.

Результаты работы представлены и доложены на:

— Научной конференции молодых ученых научно-исследовательских учреждений и высших медицинских учебных заведений Поволжья и Северного Кавказа (Нижний Новгород, 2000 г.);

— Западно-Сибирском терапевтическом^ форуме «Актуальные вопросы диагностики, лечения, профилактики наиболее распространенных заболеваний внутренних органов» (Тюмень, 2000 г.);

— Итоговых научных конференциях Астраханской государственной медицинской академии (Астрахань, 2000 г., 2001 г.);

— Международной конференции «Структурные преобразования органов и тканей на этапах онтогенеза в норме и при воздействии антропогенных факторов. Экология и здоровье населения. Актуальные проблемы биологии и медицины» (Астрахань, 2000 г.);

— Ill и IV Всероссийских конференциях «Эколого-биологические проблемы Волжского региона и Северного Прикаспия» (Астрахань, 2000 г., 2001 г.);

— Международной научной конференции «Белки-маркеры патологических состояний» (Астрахань, 2001 г.).

Автор приносит благодарность за большую консультативную и методическую помощь ведущему науч. сотруднику отдела андрологии НИИ урологии МЗ РФ д-ру мед. наук, профессору В. В. Евдокимову, старшему науч. сотруднику, канд. мед. наук Л. А. Гончаровой, зав. лабораторией биохимии и иммунологии Научно-исследовательского центра «Экологическая медицина» старшему науч. сотруднику, канд. мед. наук В. А. Бочановскому, зав. лабораторией генетики нарушений репродукции НИИ клинической генетики Медико-генетического научного центра РАМН, д-ру биол. наук, профессору Я Ф. Курило, а также всем сотрудникам кафедры общей и биоорганической химии Астраханской государственной медицинской академии.

ВЫВОДЫ.

1) Общее количество сперматогенных клеток в семеннике крыс в норме составляет в среднем 5223±460 млн. Для разных типов сперматоргенных клеток характерно определенное достаточно устойчивое процентное соотношение: сперматогонии составлялют в среднем 22,5±2,0%, сперматоциты — 20,7+2,1%, сперматиды — 21,6±2,3%, сперматозоиды — 35,2±2,7%.

2) Хроническое воздействие малых доз природного газа Астраханского месторождения вызывает нарушение фертильности крыс, проявляющиеся в снижении среднего количества плодов в 2 раза, повышение процента мертворожденных в 10 раз. Нарушения репродуктивной функции самцов имеют более выраженный характер — у них развивается инфертильность.

3) Хроническое воздействие природного газа Астраханского месторождения приводит к изменениям морфо-функциональных характеристик репродуктивной системы самцов крыс. Характерно, по сравнению с контролем: снижение общего количества сперматогенных клеток в семеннике более чем в 7 раз, резкое нарушение отношения различных типов сперматогенных клеток, снижение количества сперматогоний, снижение общего количества эпидидимальных сперматозоидов в 1,5 раза, их подвижности.

95 до 0,35%, морфологически нормальных до 55,6%, жизнеспособных сперматозоидов до 44,8%.

4) Под влиянием хронического воздействия малых доз природного газа в семенниках в 2 раза снижается активность фермента биосинтеза тестостерона — Д5−3[3-гидроксистеро-иддегидрогеназы.

5) Наиболее чуствительными к воздействию природного газа являются: процесс образования сперматогоний-А, процесс дифференцировки сперматид в сперматозоиды и этап перехода сперматоцитов в сперматиды.

6) Микроэлемент селен проявляет свойства протектора сперматогенеза в условиях хронического воздействия малых доз природного газа Астраханского месторождения.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

В результате проведенного исследования были определены нормальные функциональные и морфологические показатели семенников и эпидидимисов крыс, выявлено, что соотношение между различными типами сперматогенных клеток (сперматогониями, сперматоцитами, сперматидами и сперматозоидами) является достаточно стабильным показателем. Определена активность фермента биосинтеза тестостерона (Д5-Зр-гидроксистеро-иддегидрогеназы) в семенниках крыс в норме.

Было показано, что хроническое воздействие даже малых доз природного газа Астраханского месторождения приводит к нарушению репродуктивной функции. Причем мужская репродуктиная функция страдает в большей степени, чем женская.

Токсическое влияние малых доз природного газа Астраханского месторождения приводит к повреждению отдельных, наиболее чувствительных звеньев и этапов процесса сперматогенез. Ими оказались: процесс образования сперматогоний-А, процесс дифференцировки сперматид в сперматозоиды и этап перехода сперматоцитов в сперматиды.

Кроме непосредственного повреждающего действия природный газ Астраханского месторождения может при хроническом воздействии нарушать процесс биосинтеза андрогенов, за счет подавления ферментативной активности Д5-Зр-гидроксистеро-иддегидрогеназы (являющейся ключевым ферментом при синтезе андрогенов как по Д5-пути, так и по Д4-пути).

Исследования возможностей протекции и коррекции нарушений мужской репродуктивной функции позволили выявить у микроэлемента селена свойства протектора сперматогенеза при хроническом воздействии малых доз природного газа Астраханского месторождения. Протекторное действие селена опосредуется через несколько механизмов. Одним из них может являться конкуренция селена с серой за место в селенопептиде хвоста сперматозоидов, который имеет важное структурно-функциональное значение. Другим является участие селена в системе антиоксидантной защиты (селен входит активные центры ряда ферментов, например, глутатионпероксидазы), мембранстабилизирующие свойства селена способствуют более успешной адаптации и востановлению процесса сперматогенеза при токсическом действии природного газа Астраханского месторождения.

Таким образом, в ходе проведенной работы собран не только фактический материал, свидетельствующий о повреждающем действии природного газа Астраханского месторождения на процесс сперматогенеза и детализированы участки этого процесса подверженные наибольшему влиянию, но и на основании анализа полученных данных и экспериментального подтверждения, сделанных умозаключений, намечены пути коррекции выявленных нарушений процесса сперматогенеза и протекции репродуктивной мужской функции.

Показать весь текст

Список литературы

  1. А. П., /Еаворонков А. А., Строчкова Л. С. Нарушения репродуктивной функции при некоторых микроэлементозах. // Вестн. АМН СССР. — 1986. — № 1. — С.9−15.
  2. А. П., /Еаворонков А. А., Риш М. А., Строчкова Л. С. Микроэлементозы человека. М., 1991.
  3. Андрогены и антиандрогены. / Под ред. С. Л. Джеффкоута: Пер. с англ. М., 1975.
  4. В. Н. Нейроэндокринология репродуктивной системы. // Пробл. эндокринол. 1998. — № 1. — С.3−12.
  5. М. С. Определение числа клеток в счетной камере с учетом свойств распределения Пуассона. // Клинич. лаб. диагностика. 1997. -№ 6. -С.11−11.
  6. Г. Л., Божедомов В. А. Репродуктивная функция и сексуальность человека. М., 2000.
  7. Биохимия гормонов и гормональной регуляции. / Юдаев Н. А., Афиногенова С. А., Булатов А. А. и др. М., 1976.
  8. Т. Г., Фомина Т. И., Филиппова М. В. и др. Морфология семенников крыс в ранние и отдаленные сроки после введения платидиама. // Эксп. клин, фармакол. 1996. -Т.59, № 2. — С.41−43.
  9. Воздействие на организм человека опасных и вредных экологических факторов. / Под ред. Л. К. Исаева. М., 1997. -Т. 1−2.
  10. Гистофизиология и регуляция функции репродуктивной системы. / Под ред. О. В. Волковой. М., 1978.
  11. Е. Д., Боровская Т. Г., Фомина Т. И. и др. Отдаленные эффекты повреждающего действия антибиотиков антрациклинового ряда на репродуктивную систему крыс. // Бюлл. эксп. биол. и мед. 1996. — Т.121, № 1. — С.55−58.
  12. Гормональная регуляция размножения у млекопитающих / Под ред. К. Остина, Р. Шорта: Пер. с англ. М., 1987.
  13. Л. В. Ультраструктурное исследование сперматогенеза. М., 1978.
  14. В. И. Ультраструктура клеток Сертоли и Лейдига у крыс в норме и в условиях длительного внутреннего облучения. // Цитология. 1980. -№ 10. — С. 1153−1157.
  15. В. В., Коденцова В. М., Вржесинская О. А. и др. Влияние радиационного облучения на витаминный статус и сперматогенез крыс. // Бюлл. эксп. биол. и мед. 1997. — Т.123, № 5. — С.524−527.
  16. В. В., Коденцова В. М., Курило Л. Ф. и др. Витаминный статус и сперматогенез у крыс в позднем периоде после облучения различными дозами. // Бюлл. эксп. биол. и мед. -1999.-№ 7.-С.42−44.
  17. В. В. Системное исследование эякулята при заболеваниях мужских репродуктивных органов: Автореф. дис.. д-ра мед. наук. Москва, 1999.
  18. Ю. В. Цитологические критерии состояния сперматогенеза в токсиколого-гигиенических исследованиях. // Гиг. и санит. 1986. — № 4. — С.52−55.
  19. Иммунология / Под ред. У. Пола: Пер. с англ. М., 1990. — Т. 1−3.
  20. М. Г., Габович Р. Д. Микроэлементы в медицине. -М., 1970.
  21. М. В., Акопян А. С. Структурный анализ причин мужского бесплодия. // Молекулярные исследования мужской субфертильности. / Под ред. А. А. Николаева. Астрахань, 2000. — С.41−58.
  22. Л. В., Кузьмина Е. Э., Авреньев Л. И., Тутельян В. А. Защитное действие селена при остром Т-2-микотоксикозе. // Вопр. мед. химии. 1990. — № 5. — С.36−39.
  23. Л. Ф., Зубинская В. П., Лильп И. Г. Эффект антенатального воздействия tioTEF на сперматогенез половозрелых мышей линии 101/N СВА. // Бюлл. эксп. биол. и мед. 1992.-Т.114, № 9. — С.307−308.
  24. Д. Л., Николаев А. А. Морфологическое исследование эякулята: Методическое пособие. Астрахань, 1999.
  25. Д. Л. Иммунохимическая и биохимическая характеристика спермоплазмы субфертильных мужчин: Автореф. дис.. канд. мед. наук. Москва, 2000.
  26. Д. Л., Николаев А. А. Способ оценки воздействия неблагоприятных экологических факторов на репродуктивную функцию мужчин // Клинич. лаб. диагностика. 2000. — № 10. -С.42−43.
  27. Д. Л., Николаев А. А. Корреляция биохимических и физико-химических свойств спермы и морфо-функциональных характеристик сперматозоидов. // Молекулярные исследования мужской субфертильности. / Под ред. А. А. Николаева. -Астрахань, 2000. С. 41 -58.
  28. В. П., Семенов Д. И. Метод определения количества сперматогенных клеток семенника в клеточной суспензии. // Цитология. 1976. — № 7. — С.913−915.
  29. Микроскопическая техника / Под ред. Д. С. Саркисова, Ю. Л. Перова. М., 1996.
  30. Н. М. Общая физиология. Регуляция функций. -Астрахань, 2000.
  31. Ю. И. Минеральный обмен. М., 1985.
  32. Неорганическая биохимия. / Под ред. Г. Эйхгорна: Пер. с англ. -М., 1978. Т. 1−2.
  33. А. А., Аншакова Н. И., Алтухов С. А. Образование интерполимерных комплексов белками семенной плазмы. // Вопр. мед. химии. 1990. — № 4. — С.98−101.
  34. А. А. Биохимическое и иммунохимическое изучение белков семенной плазмы человека: Автореф. дис.. д-ра мед. наук. Москва, 1994.
  35. А. А., Луцкий Д. Л., Бочановский В. А., Ложкина Л. В. Активность ферментов спермоплазмы в эякулятах различной фертильности. // У рол. и нефрол. 1997. — № 5. — С.35−39.
  36. А. А., Луцкий Д. Л. Влияние экологических факторов на репродуктивную функцию мужчин. // Мат. VIII междунар. конф.
  37. Эколого-физиологические проблемы адаптации". Москва, 1998. -С.79−79.
  38. А. а., Луцкий Д. Л. Функциональное состояние предстательной железы у жителей экологически неблагоприятных районов. II Мат. VIII междунар. конф. «Эколого-физиологические проблемы адаптации». Москва, 1998. — С. 7980.
  39. А. А., Луцкий Д. Л., Ложкина Л. В. Белковый спектр эякулятов различной фертильности. // У рол. и нефрол. 1998. -№ 2. — С.48−52.
  40. А. А., Луцкий Д. Л., Ложкина Л. В., Мичурин А. В. Репродуктивная функция мужчин, состоящих в бесплодном браке. // Сбор. науч. тр. «Актуальные вопросы дерматологии и венерологии». Астрахань, 1998. — С.169−175.
  41. А. А., Луцкий Д. Л. Биологическое и биохимическое исследование эякулята: Методическое пособие. Астрахань, 1999.
  42. А. А., Луцкий Д. Л. Фитопрепараты и микроэлементы в терапии бесплодия у мужчин с воспалительными заболеваниями репродуктивной системы. // Мат. II всеросс. конф. «Гомеостаз и инфекционный процесс». Саратов, 1998. — С.52−52.
  43. А. а., Луцкий Д. Л., Николаева Н. Н., Ложкина Л. В. Обмен Fe и негемовых ферропротеинов в эякулятах различной фертильности. // У рол. и нефрол. 1998. — № 5. — С.27−31.
  44. А. А., Луцкий Д. Л. Общая реп роду ктология. -Астрахань, 1998. i
  45. А. А., Луцкий Д. Л., Ложкина Л. В., Бочановский В. А., Гончарова Л. А. Применение селена для коррекции субфертильности у мужчин. // Урология. 1999. — № 4. — С.29−32.
  46. А. А., Луцкий Д. Л. Исследование межмолекулярных и молекулярно-клеточных взаимодействий в эякулированной сперме // Цитология. 2001. — Т.43, № 4. — С.361−362.
  47. М. А., Иванов А. А. Межклеточные взаимодействия. -М&bdquo- 1995.
  48. Показатели биологической нормы лабораторных животных (крыс) / Под ред. Т. Б. Кигель, А. В. Харабаджахьян, Н. А. Новодворжкиной. Ростов-на-Дону, 1978.
  49. Показатели биологической нормы у лабораторных животных в токсикологическом эксперименте / Под ред. И. М. Трахтенберг, Р. Е. Сова, В. О. Шефтель, Ф. А. Оникиенко. М., 1978.
  50. В. В., Воробьева О. А. Современные представления о роли факторов роста в системе внутретканевых регуляторов репродукции. // Пробл. эндокринол. 1993. — № 5. — С.58−62.
  51. Предельно допустимые концентрации вредных веществ в воздухе рабочей зоны. / Под ред. Н. Ф. Измерова. М., 1991.
  52. С. С. Травма семенника и аутоиммунитет. М., 1970.
  53. С. С. Сперматогенез и структурные основы его регуляции. М., 1985.
  54. А. Г. В мире гормонов. Киев, 1985.
  55. О. Г., Демченко В. М., Нищименко О. В. // Ф1зюл. журн. -1976. № 5.-С. 616−621.
  56. Репродуктивная эндокринология. / Под ред. С. С. К. Йена, Р. Б. Джаффе: Пер. с англ. М., 1998. — Т. 1−2.
  57. Рузен-Ранге Э. Сперматогенез у животных: Пер. с англ. Мм 1980.
  58. О. В. Репродуктивное здоровье семьи как проблема медицины труда. // Мед. труда и пром. экология. 1995. — № 9. -С. 1−4.
  59. М. Б. Методы системного анализа в медицинских исследованиях. М., 1989.
  60. Р. В., Чулкова Г. Ф. Влияние ослабленного магнитного поля Земли на клеточный состав эпителио-сперматогенного слоя яичек крыс. // Авиакосм, эколог, мед. 1992. — Т.26, № 2. — С.71−73.
  61. Сперматогенез и его регуляция / Под ред. Л. В. Даниловой. М., 1983.
  62. Справочник предельно допустимых концентраций вредных веществ в пищевых продуктах и среде обитания / Под ред. М. П. Беляева. М., 1993.
  63. О. Л., Михайличенко В. В. Андрология. СПб., 1999.
  64. И. М., Тимофиевская Л. А., Квятковская И. Я. Методы изучения хронического действия химических и биологических загрязнителей. Рига, 1987.
  65. Ухо в Ю. И., Астраханцев А. Ф. Морфометрические методы в оценке функционального состояния семенников. // Арх. анат., гистол. и эмбриол. 1983. — № 3. — С.66−73.
  66. И. Б., Евтеева М. С., Кулиничева М. М., Абрамов М. М. Ранние андрологические эффекты у крыс при сочетанном действии облучения и вибрации. //Авиакосм, эколог, мед. 1992. — Т.26, № 4. — С.67−70
  67. Л. Д., Мамина В. П. Действие шести валентного хрома на сперматогенный эпителий и процессы перикисного окисления липидов в гонадах лабораторных животных. // Гиг. и санит. -1997. № 5. — С.30−33.
  68. А. О., Dunne Е., Mather J. et al. Testicular germ cell populations in the adult rat after continuous in-vivo testicular infusion of inhibin-A and activin-A. // Int. J. Androl. 1996. — Vol.19, № 2. -P.69−76.
  69. Amann R. P. Use of animal models for detecting specific alterations in reproduction. // Fundam. Appl. Toxicol. 1982. — Vol.2, № 1. -P. 13−26.
  70. Anderson R. A., Irvine D. S., Balfour C. et al. Inhibin В in seminal plasma: testicular origin and relationship to spermatogenesis. // Hum. Reprod. 1998.-Vol.13, № 4. — P.920−926.
  71. Apostoli P., Porru S., Morandi C., Menditto A. Multiple determination of elements in human seminal plasma and spermatozoa. // J. Trace. Elem. Med. Biol. 1997. — № 3. — P. 182−184.
  72. Awoniyi C. A., Chandrashekar V., Hurst B. S. et al. The effects of chronic administration of pyrimethamine on spermatogenesis and fertility in male rats. // J. Androl. 1993. — Vol.14, № 3. — P. 174−179.
  73. Ayer-LeLievre C., Olson L., Ebendal T. et al. Nerve growth factor mRNA and protein in the testis and epididymis of mouse and rat. // Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 1988. — Vol.85, № 8. — P.2628−2632.
  74. Baarends W. M., Roest H. P., Grootegoed J. A. The ubiquitin system in gametogenesis. // Mol. Cell. Endocrinol. 1999. — Vol.151, № 1−2. — P.5−16.
  75. Baccetti В., Burrini A. G., Collodel G. et al. Immunocytochemistry and sperm pathology. // J. Submicrosc. Cytol. Pathol. 1988. — № 1. -P.209−224.
  76. Ban Y., Komatsu Т., Kemi M. et al. Testicular spermatid and epididymal sperm head counts as an indicator for reproductive toxicity in rats. // Exp. Anim. 1995. — Vol.44, № 4. — P.315−322.
  77. Bartlett J. M., Spiteri-Grech J., Nieschlag E. Regulation of insulin-like growth factor I and stage-specific levels of epidermal growth factor in stage synchronized rat testes. // Endocrinology. 1990. — Vol.127, № 2. — P.747−758.
  78. Bedwal R. S., Bahuguna A. Zinc, copper and selenium in reproduction. // Experientia. 1994. — Vol.50, № 7. — P.626−640.
  79. Behne D., Gessner H., Wolters G., Brotherton J. Selenium, rubidium and zinc in human semen and semen fractions. // Int. J. Androl. -1988. № 5.-P.415−423.
  80. Behne D., Weiler H., Kyriakopoulos A. Effects of selenium deficiency on testicular morphology and function in rats. // J. Reprod. Fertil. -1996. -№ 2. -P.291−297.
  81. Benahmed M. Role du tumor necrosis factor dans la gonade male. // Contracept. Fertil. Sex. 1997. — Vol.25, № 7−8. — P.569−571.
  82. Bilaspuri G. s., Kaur R. Spermatogenic cells and stages of the seminiferous epithelial cycle in the Indian gerbil field rat, Tatera indica. // Reprod. Fertil. Dev. 1994. — Vol.6, № 6. — P.699−704.
  83. Blume-Jensen P., Jiang G., Hyman R. et al. Kit/stem cell factor receptor-induced activation of phosphatidylinositol З'-kinase is essential for male fertility. // Nat. Genet. 2000. — Vol.24, № 2. -P.157−162.
  84. Brown C. D., Jacobson C. F., Miller M. G. Metabolism and testicular toxicity of 1,3-dinitrobenzene in the rat: evaluation of the stage-synchrony model. // Reprod. Toxicol. 1997. — Vol.11, № 1. — P.5767.
  85. Bujan L. Environnemerit et spermatogenese. // Contracept. Fertil. Sex. 1998.-Vol.26, № 1. -P.39−48.
  86. Calvin H. I. Selective incorporation of selenium-75 into a polypeptide of the rat sperm tail (1). // J. Exp. Zool. 1978. — № 3. — P.445−452.
  87. Calvin H. I. Electrophoretic evidence for the identity of the major zinc-binding polypeptides in the rat sperm tail. // Biol. Reprod. 1979. -№ 4. — P.873−882.
  88. Calvin H. I., Grosshans К., Musicant-Shikora S. R., Turner S. I. A developmental study of rat sperm and testis selenoproteins. // J. Reprod. Fertil. 1987. — Vol.81, № 1. — P.1−11.
  89. Cameron D. F. Regulating spermatogenesis. Mechanisms of reproductive hormones. // J. Fla. Med. Assoc. 1993. — Vol.80, № 3. -P. 193−197.
  90. Cancilla В., Davies A., Ford-Perriss M., Risbridger G. P. Discrete cell-and stage-specific localisation of fibroblast growth factors and receptor expression during testis development. II J. Endocrinol. -2000.-Vol.164, № 2. P.149−159.
  91. Carreau S., Foucault P., Drosdowsky M. A. La cellule de Sertoli. Aspects fonctionnels compares chez le rat, le pore et Thomme. II Ann. Endocrinol. Paris. 1994. — Vol.55, № 6. — P.203−220.
  92. L., Baig К., Око R. et al. Developmental expression, intracellular localization, and selenium content of the cysteine-rich protein associated with the mitochondrial capsules of mouse sperm. II Mol. Reprod. Dev. 1996. — № 3. — P.320−331.
  93. Caussanel V., Tabone E., Mauduit C. et al. Cellular distribution of EGF, TGFalpha and their receptor during postnatal development and spermatogenesis of the boar testis. // Mol. Cell. Endocrinol. 1996. -Vol.123, № 1. — P.61−69.I
  94. Cavicchia J. C., Sacerdote F. L., Morales A., Zhu В. C. Sertoli cell nuclear pore number changes in some stages of the spermatogenic cycle of the rat seminiferous epithelium. // Tissue. Cell. 1998. -Vol.30, № 2. — P.268−273.
  95. Cazorla О., Seek M., Pisselet С. et al. Anti-Mullerian hormone (АМН) secretion in prepubertal and adult rams. // J. Reprod. Fertil. 1998. -Vol.112, № 2. — P.259−266.
  96. Chapin R. E., Ku W. W. The reproductive toxicity of boric acid. // Environ. Health. Perspect. 1994. — Vol.102, Suppl.7. — P.87−91.
  97. Chaturvedi P. K., Johnson L. Architectural arrangement of stages of the spermatogenic cycle within human seminiferous tubules is related to efficiency of spermatogenesis. // Cell. Tissue. Res. 1993. -Vol.273, № 1. — P.65−70.
  98. Chowdhury A. R., Vachhrajani K. D., Chatterjee В. B. Inhibition of 3 beta-hydroxy-delta 5-steroid dehydrogenase in rat testicular tissue by mercuric chloride. // Toxicol. Lett. 1985. — Vol.27, № 1−3. — P.45−49.
  99. Chowdhury A. R., Gautam A. K., Patel K. G., Trivedi H. S. Steroidogenic inhibition in testicular tissue of formaldehyde exposed rats. // Indian. J. Physiol. Pharmacol. 1992. — Vol.36, № 3. — P.162 168.
  100. Chowdhury A. R. Spermatogenic and steroidogenic impairment after chromium treatment in rats. II Indian. J. Exp. Biol. 1995. — Vol.33, № 7. — P.480−484.
  101. Creasy D. M. Evaluation of testicular toxicity in safety evaluation studies: the appropriate use of spermatogenic staging. // Toxicol. Pathol. 1997. — Vol.25, № 2. — P.119−131.
  102. Dadoune J. P. The cellular biology of mammalian spermatids. // Bull. Assoc. Anat. Nancy. 1994. — Vol.78, № 243. — P.33−40.
  103. De-Franca L. R., Jackson A., Russell L. D. Hormone sensitivity of germ cells in stage XIV and in stage I of the rat spermatogenic cycle. // Tissue. Cell. 1994.-Vol.26, № 3. — P.375−383.
  104. De-Franca L. R., Ye S. J., Ying L. Morphometry of rat germ cells during spermatogenesis. // Anat. Rec. 1995. — Vol.241, № 2. -P.181−204.
  105. De-Kretser D. M., Catt K. J., Burger H. H., Smith G. C. Radioautographic studies on the localization of 125l-labelled human luteinizing and growth hormone in immature male rats. // J. Endocrinol. 1969. — Vol.43. — P.105−111.
  106. De-Kretser D. M., Catt K. J., Dufau M. L., Hudson B. Studies on rat testicular cells in tissue culture. // J. Reprod. Fert. 1971. — Vol.24. -P.311−318.
  107. De-Kretser D. M., Catt K. J., Paulsen C. A. Studies on the in vitro testicular binding of iodinated luteinizing in rats. // Endocrinology. -1971.-Vol.88.-P.332−337.
  108. De-Kretser D. M., Loveland K. L., Meinhardt A. et al. Spermatogenesis. // Hum. Reprod. 1998. — Suppl. 1. — P.1−8.
  109. De-Miguel M. P., De-Boer-Brouwer M., De-Rooij D. G. et al. Ontogeny and localization of an oncostatin M-like protein in the rat testis: its possible role at the start of spermatogenesis. // Cell. Growth. Differ. 1997. — Vol.8, № 5. — P.611−618.
  110. Demoulin A., Franchimont P. Regulation paracrine des fonctions testiculaires. //Acta. Urol. Belg. 1989.-Vol.57, № 1. -P.47−58.
  111. Depuydt С. E., Zalata A., de-Potter С. R. et al. The receptor encoded by the human C-MET oncogene is expressed in testicular tissue and on human spermatozoa. // Mol. Hum. Reprod. 1996. — Vol.2, № 1. -P.2−8.
  112. Depuydt С. E., De-Potter C. R., Zalata A. et al. Levels of hepatocyte growth factor/scatter factor (HGF/SF) in seminal plasma of patients with andrological diseases. II J. Androl. 1998. — № 2. — P.175−182.
  113. Dietz D. D., Elwell M. R., Chapin R. E. Subchronic (13-week) toxicity studies of oral phenolphthalein in Fischer 344 rats and B6C3F1 mice. // Fundam. Appl. Toxicol. 1992. — Vol. 18, № 1. — P.48−58.
  114. Dirami G., Ravindranath N., Pursel V., Dym M. Effects of stem cell factor and granulocyte macrophage-colony stimulating factor on survival of porcine type A spermatogonia cultured in KSOM. II Biol. Reprod. 1999. -Vol.61, № 1. — P.225−230.
  115. Djakiew D., Pflug В., Dionne C., Onoda M. Postnatal expression of nerve growth factor receptors in the rat testis. // Biol. Reprod. 1994. -Vol.51, № 2. — P.214−221.
  116. Doublie S. Preparation of selenomethionyl proteins for phase determination. II Methods. Enzymol. 1997. — № 276. — P.523−530.
  117. Droller M. J. Environment and the genitourinary tract. // Otolaryngol. Head. Neck. Surg. 1996.-Vol.114, № 2. — P.248−252.
  118. Du X., Everett E. Т., Wang G. et al. Murine interleukin-11 (IL-11) is expressed at high levels in the hippocampus and expression is developmental^ regulated in the testis. // J. Cell. Physiol. 1996. -Vol.168, № 2. — P.362−372.
  119. Dugast I., Jegou B. Cytokines et interactions cellules de Sertoli-cellules germinales. // Contracept. Fertil. Sex. 1994. — Vol.22, № 10.- P.631−634.
  120. Eggert-Kruse W., Schwalbach В., Gerhard I. et al. Influence of serum prolactin on semen characteristics and sperm function. // Int. J. Fertil.- 1991. Vol.36, № 4. — P.243−251.
  121. Evans L. W., Muttukrishna S., Groome N. P. Development, validation and application of an ultra-sensitive two-site enzyme immunoassay for human follistatin. //J. Endocrinol. 1998. — Vol.156, № 2. — P.275−282.
  122. Fenichel P., Rey R., Poggioli S. et al. Anti-Mullerian hormone as a seminal marker for spermatogenesis in non-obstructive azoospermia. // Hum. Reprod. 1999. — Vol.14, № 8. — P.2020−2024.
  123. Foresta C., Caretto A., Varotto A. et al. Epidermal growth factor receptors (EGFR) localization in human testis. // Arch. Androl. -1991.-Vol.27, № 1. P. 17−24.
  124. Franchimont P. Regulation of gonadal androgen secretion. // Horm. Res. 1983. — Vol.18, № 1−3. — P.7−17.
  125. Franchimont P., Valcke J. C. Influence des gonadotrophines sur la secretion d’inhibine. // Ann. Endocrinol. Paris. 1986. — Vol.47, № 2.- P.119−123.
  126. Fredricsson В., Carlstrom K., Ploen L. Steroid metabolism and morphologic features of the human testis. // J. Androl. 1989. -Vol.10, № 1. -P.43−49.
  127. I. В., Kopec В., Lam K., Vernon R. G. Effects of FSH on levels of androgen binding protein in the testis. // Hormone binding and targetcell activation in the testis. / Ed. M. L. Dufau, A. R. Neans. N. Y., Plenum press. — 1974. — P.311−327.
  128. Fritz I. B. Somatic cell-germ cell relationships in mammalian testes during development and spermatogenesis. // Ciba. Found. Symp. -1994.-Vol.182.-P.271−281.
  129. Fujisawa M., Kanzaki M., Okuda Y. et al. Stem cell factor in human seminal plasma as a marker for spermatogenesis. // Urology. 1998. — № 3. — P.460−463.
  130. Fusi F. M., Lorenzetti I., Vignali M, Bronson R. A. Sperm surface proteins after capacitation. Expression of vitronectin on the spermatozoan head and laminin on the sperm tail. // J. Androl. -1992.-№ 6.-P.488−497.
  131. Glander H. J., Kratzsch J., Weisbrich C., Birkenmeier G. Insulin-like growth factor-l and alpha 2-macroglobulin in seminal plasma correlate with semen quality. // Hum. Reprod. 1996. — № 11. -P.2454−2460.
  132. Gonzales G. F., Risbridger G. P., Hodgson Y. H. et al. Stage-specific inhibin secretion by rat seminiferous tubules. // Reprod. Fertil. Dev. -1989. Vol.1, № 3. — P.275−279.
  133. Greep R. O., Fevold H. L., Hisaw F. L. Effects of 2 hypophyseal gonadotropic hormones on reproductive system of male rat. // Anat. Rec. 1936. — Vol.65. — P.261−271.
  134. Greep R. O., Fevold H. L. The spermatogenic and secretory function of the gonads of hypophysectomized abult rats treated with pituitary FSH and LH. // Endocrinology. 1937. — Vol.21. — P.611−618.
  135. Guillaumot P., Benahmed M. Prolactin receptors are expressed and hormonally regulated in rat Sertoli cells. // Mol. Cell. Endocrinol. -1999. Vol.149, № 1−2.-P.163−168.
  136. Guven M. C., Can В., Ergun A. et al. Ultrastructural Effects of Cigarette Smoke on Rat Testis. // Eur. Urol. 1999. — Vol.36, № 6. -P.645−649.
  137. D. В., Diemer Т., Hales К. H. Role of cytokines in testicular function. // Endocrine. 1999. — Vol.10, № 3. — P.201−217.
  138. Han I. S., Sylvester S. R. Kim К. H. et al. Basic fibroblast growth factor is a testicular germ cell product which may regulate Sertoli cell function. // Mol. Endocrinol. 1993. — Vol.7, № 7. — P.889−897.
  139. Hansen J. C., Deguchi Y. Selenium and fertility in animals and man. // Acta. Vet. Scand. 1996. — № 1. — P. 19−30.
  140. Harris G. C., Nicholson H. D. Stage-related differences in rat seminiferous tubule contractility in vitro and their response to oxytocin. // J. Endocrinol. 1998.-Vol.157, № 2. — P.251−257.
  141. Hecht N. B. Molecular mechanisms of male germ cell differentiation. // Bioessays. 1998. — Vol.20, № 7. — P.555−561.
  142. Hibi H., Yokoi K., Yamamoto M. Effects of alpha-interferon on sperm production, concentration, and motility in the rat. II Int. J. Urol. -1997. Vol.4, № 6. — P.603−607.
  143. Hondo E., Kurohmaru M., Sakai S. et al. Prolactin receptor expression in rat spermatogenic cells. // Biol. Reprod. 1995. -Vol.52, № 6.-P. 1284−1290.
  144. Ishizaka K., Oshima H. Organization and regulation of spermatogenesis. // Nippon. Rinsho. 1997. — Vol.55, № 11. -P.2816−2821.
  145. Ivell R., Balvers M., Rust W. et al. Oxytocin and male reproductive function. // Adv. Exp. Med. Biol. 1997. — № 424. — P.253−264.
  146. Jegou В., Pineau C., Velez-de-la-Calle J. F. et al. Germ cell control of testin production is inverse to that of other Sertoli cell products. // Endocrinology. 1993. — Vol.132, № 6. — P.2557−2562.
  147. Jensen Т. K., Andersson A. M., Hjollund N. H. et al. Inhibin В as a serum marker of spermatogenesis: correlation to differences in sperm concentration and follicle-stimulating hormone levels // J. Clin. Endocrinol. Metab. 1997. — № 12. — P.4059−4063.
  148. W. Т., Hess R. A., Miller M. G. Testicular toxicity of molinate in the rat: metabolic activation via sulfoxidation. // Toxicol. Appl.
  149. Pharmacol. 1998.-Vol.149, № 2.-P. 159−166
  150. Jonsson С. K., Zetterstrom R. H., Hoist M. et al. Constitutive expression of interleukin-1 alpha messenger ribonucleic acid in rat Sertoli cells is dependent uponi interaction with germ cells. // Endocrinology. 1999. — Vol.140, № 8. — P.3755−3761.
  151. Johnson К. J., Patel S. R., Boekelheide K. Multiple cadherin superfamily members with unique expression profiles are produced in rat testis. // Endocrinology. -2000. Vol.141, № 2. — P.675−683.
  152. Johnson L. Efficiency of spermatogenesis. // Microsc. Res. Tech. -1995. Vol.32, № 5. — P.385−422.
  153. Kaido M., Mori K., Ide Y. et al. Testicular damage by high doses of vitamin B6 (pyridoxine) in rats: a light and electron microscopical study. // Exp. Mol. Pathol. 1991. — Vol.55, № 1. — P.63−82.
  154. Kaipia A., Parvinen M., Shimasaki S. et al. Stage-specific cellular regulation of inhibin alpha-subunit mRNA expression in the rat seminiferous epithelium. // Mol. Cell. Endocrinol. 1991. — Vol.82, № 2−3.-P.165−173.
  155. Kaipia A., Penttila T. L., Shimasaki S. et al. Expression of inhibin beta A and beta B, follistatin and activin-A receptor messenger ribonucleic acids in the rat seminiferous epithelium. // Endocrinology. 1992. -Vol.131, № 6. — P.2703−2710.
  156. Kalra S. P., Prasad M. R. N. Effect of FSH and testosterone propionate on spermatogenesis in immature rats treated withclomiphene. // Endocrinology. 1967. — Vol.81. — P.965−975.i
  157. Kaneto M., Kanamori S., Hishikawa A., Kishi K. Epididymal sperm motion as a parameter of male reproductive toxicity: sperm motion, fertility, and histopathology in ethinylestradiol-treated rats. // Reprod. Toxicol. 1999. -Vol.13, № 4. — P.279−289.
  158. Kaur R., Parshad V. R. Effects of dietary selenium on differentiation, morphology and functions of spermatozoa of the house rat, Rattus rattus L. // Mutat. Res. 1994. — № 1. — P.29−35.
  159. J. В., Maddocks S, Sharpe R. M. Testosterone and FSH have independent, synergistic and stage-dependent effects upon spermatogenesis in the rat testis. // Cell. Tissue. Res. 1992. -Vol.268, № 1. — P.179−189.
  160. Kerr J. B. Spontaneous degeneration of germ cells in normal rat testis: assessment of cell types and frequency during the spermatogenic cycle. // J. Reprod. Fertil. 1992. — Vol.95, № 3. -P.825−830.i
  161. Kerr J. B. Macro, micro, and molecular research on spermatogenesis: the quest to understand its control. // Microsc. Res. Tech. 1995. -Vol.32, № 5. — P.364−384.
  162. Kishi K., Kanamori S., Maruyama T. et al. Potential parameters of male reproductive toxicity: reproductive performance, histopathology and sperm evaluation in SD rats given nitrazepam. // J. Toxicol. Sci. -1995.-Vol.20, № 3. P.329−339.
  163. Klaij I. A., van Pelt A. M., Timmerman M. A. et al. Expression of inhibin subunit mRNAs and inhibin levels in the testes of rats with stage-synchronized spermatogenesis. // J. Endocrinol. 1994. -Vol.141, № 1. — P.131−141.j I
  164. Klingmuller D., Haidl G. Inhibin В in men with normal and disturbed spermatogenesis. // Hum. Reprod. 1997. — Vol.12, № 11. — P.2376−2378.
  165. Kononen J., Paavola M., Penttila T. L. et al. Stage-specific expression of pituitary adenylate cyclase-activating polypeptide (PACAP) mRNA in the rat seminiferous tubules. // Endocrinology. -1994.-Vol.135, № 5. P.2291−2294.
  166. H., Jagetia G. С., Jyothi P. Radioprotective effect of zinc aspartate on mouse spermatogenesis: a flow cytometric evaluation. // Mutat. Res. 1998. — Vol.401, № 1−2. — P.111−120.
  167. Ku W. W., Chapin R. E. Mechanism of the testicular toxicity of boric acid in rats: in vivo and in vitro studies. // Environ. Health. Perspect. -1994. Vol.102, Suppl.7. — P.99−105.
  168. Kula K., Rodriguez-Rigau L. J., Steinberger E. Synthesis of testosterone and 5 alpha-reduced androgens during initiation of spermatogenesis in the rat. // Andrologia. 1983. — Vol.15, № 6. -P.627−634.
  169. Lamb D. J. Growth factors and testicular development. // J. Urol. -1993.-Vol.150, № 2, Pt.2. P.583−592.
  170. Lamb d. J., Niederberger C. S. Animal models that mimic human male reproductive defects. // Urol. Clin. North. Am. 1994. — Vol.21, № 3. — P.377−387.
  171. Leblond C. P., Clermont Y. Spermiogenesis in rat, mouse, hamster and guinea pig as revealed by the «periodic asid-fuchsin sulfurouse acid» technique. // Amer. J. Anat. 1952. — Vol.90. — P.167−215.
  172. Leblond C. P., Clermont Y. Difinition of the stages of the cycle the seminiferous epithelium in the rat. // Ann. N.Y. Acad. Sci. 1952. -Vol.55. — P.548−573.
  173. Le-Gac F., Loir M., Le-Bail P. Y., Ollitrault M. Insulin-like growth factor (IGF-I) mRNA and IGF-I receptor in trout testis and in isolated spermatogenic and Sertoli cells. // Mol. Reprod. Dev. 1996. -Vol.44, № 1. — P.23−35.
  174. Levander О. A. Considerations in the design of selenium bioavailability studies. // Fed. Proc. 1983. — № 6. — P.1721−1725.
  175. Levander O. A. A global view of human selenium nutrition. // Annu. Rev. Nutr. 1987. — № 7. — P227−250.
  176. Li M., Nakayama K., Shuto Y. et ah Testis-specific prohormone convertase PC4 processes the precursor of pituitary adenylate cyclase-activating polypeptide (PACAP). // Peptides. 1998. -Vol.19, № 2. — P.259−268.
  177. Lissbrant E., Collin O., Bergh A. Pituitary adenylate cyclase-activating polypeptide (PACAP): effects on blood flow in the testis and caput epididymidis of the rat. // J. Androl. 1999. — Vol.20, № 3. — P. 366 374.
  178. Lutsky D. L., Nikolaev A. A. The correction of functional spermatozoa activity using the PSA. II International conference «Biocatalysis: fundamentals & applications 2000″. — Moscow, 2000. — P.119−120.
  179. Matsumoto K., Namiki M. Action mechanism of synthetic androgens. II Nippon. Rinsho. 1994. — Vol.52, № 3. — P.600−605.
  180. Mauduit C., Hamamah S., Hazout A. et al. Growth factors in the testicle. // Contracept. Fertil. Sex. 1999. — Vol.27, № 11. — P.735−742.
  181. Mauduit С., Hamamah S., Benahmed M. Stem cell factor/c-kit system in spermatogenesis. // Hum. Reprod. Update. 1999. — Vol.5, № 5. -P.535−545.
  182. McKinnell C., Sharpe R. M. Testosterone and spermatogenesis: evidence that androgens regulate cellular secretory mechanisms in stage VI-VIII seminiferous tubules from adult rats. // J. Androl. -1995. Vol.16, № 6. — P.499−509.
  183. McKinnell C., Sharpe R. M. Regulation of the secretion and synthesis of rat Sertoli cell SGP-1, SGP-2 and CP-2 by elongate spermatids. // Int. J. Androl. 1997. — Vol.20, № 3. — P.171−179.
  184. McLachlan R. I., Wreford N. G., Meachem S. J. et al. Effects of testosterone on spermatogenic cell populations in the adult rat. // Biol. Reprod. 1994. — Vol.51, № 5. — P.945−955.
  185. Means A. R. Mechanism of action of follicle-stimulating hormone (FSH). // The Testis. / Ed. A. D. Johnson, W. R. Gomes. N. Y., Acad, press. — 1977.-Vol.4. — P.163−189.
  186. Merino-Ruiz M. C., De-Leon-Cervantes M. G., Garcia-Flores R. F. Esterilidad masculina у su asociacion con patologia genital у factores ambientales. // Ginecol. Obstet. Мех. 1995. — Vol.63. — P.427−431.
  187. Miura Т., Miura C., Ohta T. et al. Estradiol-17beta stimulates the renewal of spermatogonia! stem cells in males. // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1999. — Vol.264, № 1. — P.230−234.
  188. Molecular investigation of male subfertility. / Ed. A. A. Nikolaev. -Astrakhan, 2000.
  189. Т. К., Miska W., Blocher S. et al. Elements of the kallikrein-kinin system are present in rat seminiferous epithelium. // Immunopharmacology. 1999. — Vol.45, № 1−3. — P.107−114.
  190. Mori K., Kaido M., Fujishiro K. et al. Effects of megadoses of pyridoxine on spermatogenesis and male reproductive organs in rats. // Arch. Toxicol. 1992. — Vol.66, № 3. — P. 198−203.
  191. Moseman R. F. Chemical disposition of boron in animals and humans. II Environ. Health. Perspect. 1994. — Vol.102, Suppl.7. -P.113−117.
  192. Mruk D. D., Cheng C. Y. Sertolin is a novel gene marker of cell-cell interactions in the rat testis. // J. Biol. Chem. 1999. — Vol.274, № 38.- P.27 056−27 068.
  193. Nakayama Y., Yamamoto Т., Abe S. I. IGF-I, IGF-II and insulin promote differentiation of spermatogonia to primary spermatocytes in organ culture of newt testes. II Int. J. Dev. Biol. 1999. — Vol.43, № 4.- P.343−347.
  194. Nathan E., Huang H. F., Pogach L. et al. Lead acetate does not impair secretion of Sertoli cell function marker proteins in the adult Sprague Dawley rat. //Arch. Environ. Health. 1992. — Vol.47, № 5. -P.370−375.
  195. Neve J., Vertongen F., Molle L. Selenium deficiency. // Clin. Endocrinol. Metab.-1985.-Vol.14, № 3. P.629−656.
  196. Newton S. C., Blaschuk O. W., Millette C. F. N-cadherin mediates Sertoli cell-spermatogenic cell adhesion. // Dev. Dyn. 1993. -Vol.197, № 1. — P.1−13.
  197. Niederberger C. S., Shubhada S., Kim S. J., Lamb D. J. Paracrine factors and the regulation of spermatogenesis. // World. J. Urol.1993. Vol. 11, № 2. — P. 120−128.
  198. O’Donnell L., McLachlan R. I., Wreford N. G., Robertson D. M. Testosterone promotes the conversion of round spermatids between stages VII and VIII of the rat spermatogenic cycle. // Endocrinology.1994. Vol.135, № 6. — P.2608−2614.
  199. Ohshiro K., Iwama A., Matsuno K. et al. Molecular cloning of rat macrophage-stimulating protein and its involvement in the male reproductive system. // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1996. -Vol.227, № 1. — P.273−280.
  200. Omu A. E., Dashti H., Mohamed А. Т., Mattappallil A. B. Significance of trace elements in seminal plasma of infertile men. // Nutrition.1995. Vol.11, 5 Suppl. — P.502−505.
  201. Omu A. E., Fernandes S., Mohammed A., Khan Z. Contribution of metal ions to enzymatic antioxidant activity in human seminal plasma:
  202. Superoxide dismutase and Glutathione peroxidase. // Molecular investigation of male subfertility. / Ed. A. A. Nikolaev. Astrakhan, 2000. — P.58−77.
  203. Ono A., Kawashima K., Sekita K. et al. Toluene inhalation induced epididymal sperm dysfunction in rats.// Toxicology. 1999. — Vol.139, № 3,-P. 193−205.
  204. Parizek J., Ostadalova I. The protective effect of small amounts of selenite in sublimate intoxication. // Experientia. 1967. — № 2. -P.142−143.
  205. F. H., Vreeburg J. Т., Stijnen T. et al. Serum inhibin В as a marker of spermatogenesis. II J. Clin. Endocrinol. Metab. 1998. -Vol.83, № 9. — P.3110−3114.
  206. Parshad R. K., Sud M. Effect of selenium-rich wheat on rat spermatogenesis. // Andrologia. 1989. — Vol.21, № 5. — P.486−489.
  207. Parvinen M., Soder O., Mali P. et al. In vitro stimulation of stage-specific deoxyribonucleic acid synthesis in rat seminiferous tubule segments by interleukin-1 alpha. // Endocrinology. 1991. — Vol.129, № 3. — P.1614−1620.
  208. Parvinen M., Pelto-Huikko M., Soder O. et al. Expression of beta-nerve growth factor and its receptor in rat seminiferous epithelium: specific function at the onset of meiosis. // J. Cell. Biol. 1992. -Vol.117, № 3. — P.629−641.
  209. F. H., Vreeburg J. Т., Stijnen T. et al. Serum inhibin В as a marker of spermatogenesis. II J. Clin. Endocrinol. Metab. 1998. -Vol.83, № 9,-P.3110−3114.
  210. Piquet-Pellorce C., Dorval I., Jegou B. Controle paracrine des cellules souches de la spermatogenese: I’exemple du leukemiainhibitory factor. // Contracept. Fertil. Sex. 1997. — Vol.25, № 7−8. -P.565−568.
  211. Pogany G. C. A QuickBasic computer model of spermatogenesis. // Comput. Biol. Med. 1990. — Vol.20, № 3. — P.175−183.
  212. Raj a ram s., Baylink D. J., Mohan s. Insulin-like growth factor-binding proteins in serum and other biological fluids: regulation and functions. // Endocr. Rev. 1997. — № 6. — P.801−831.
  213. Rannikko A., Penttila T. L., Zhang F. P. et al. Stage-specific expression of the FSH receptor gene in the prepubertal and adult rat seminiferous epithelium. // Endocrinol. 1996. — Vol.151, № 1. -P.29−35.
  214. Reyes A., Chavarria E., Rodriguez-Medina С. M. et al. El factor masculino. I. Funcion testicular у gametogenesis. // Ginecol. Obstet. Мех. 1997.-Vol.65. — P.401−412.
  215. Roberts K. P., Zirkin B. R. Androgen regulation of spermatogenesis in the rat. //Ann. N.-Y. Acad. Sci. 1991.-Vol.637. — P.90−106.
  216. Russo M. A., Odorisio Т., Fradeani A. et al. Low-affinity nerve growth factor receptor is expressed during testicular morphogenesis and in germ cells at specific stages of spermatogenesis. // Mol. Reprod. Dev. 1994.-Vol.37, № 2. — P.157−166.
  217. Saez J. M., Perrard-Sapori M. H., Chatelain P. G. et al. Paracrine regulation of testicular function. // J. Steroid. Biochem. 1987. -Vol.27, № 1−3.-P.317−329.
  218. Sanborn В. M., Elkington J S. H., Tcholakian R. K. et al. Hormonal influences on the level of testicular androgen binding activity: Effect of FSH following hypophysectomy. // Endocrinology. 1975. -Vol.96.-P.304−312.
  219. Saxena N., Paul P. K. Involvement of dietary glucose in adrenal steroidal regulation of spermatogenic and steroidogenic activities in prepubertal rat testis. // Indian. J. Exp. Biol. 1991. — Vol.29, № 7. -P.605−610.
  220. Sharpe R. M. Intratesticular factors controlling testicular function. // Biol. Reprod. 1984. — Vol.30, № 1. — P.29−49.
  221. Sharpe R. M., Maddocks S. Evaluation of the relative importance of endocrine and paracrine factors in control of the levels of inhibin in testicular interstitial fluid. // Int. J. Androl. 1989. — Vol.12, № 4. -P.295−306.
  222. Sharpe R. M. Intratesticular control of steroidogenesis. // Clin. Endocrinol. Oxf. 1990.-Vol.33, № 6. — P.787−807.
  223. Sharpe R. M., Maddocks S., Miilar M. et al. Testosterone and spermatogenesis. Identification of stage-specific, androgen-regulated proteins secreted by adult rat seminiferous tubules. // J. Androl. -1992. Vol.13, № 2. — P. 172−184.
  224. Shimonovitz S., Barak V., Zacut D. et al. High concentration of soluble interleukin-2 receptors in ejaculate with low sperm motility. // Hum. Reprod. 1994. — № 4. — P.653−655.
  225. Shubhada S., Glinz M., Lamb D. J. Sertoli cell secreted growth factor. Cellular origin, paracrine and endocrine regulation of secretion. // J. Androl. 1993. — Vol.14, № 2. — P.99−109.
  226. Simoni M., Weinbauer G. F., Gromoll J., Nieschlag E. Role of FSH in male gonadal function. // Ann. Endocrinol. 1999. — Vol.60, № 2. -P. 102−106.
  227. Soder O., Bang P., Wahab A., Parvinen M. Insulin-like growth factors selectively stimulate spermatogonia!, but not meiotic, deoxyribonucleic acid synthesis during rat spermatogenesis. // Endocrinology. 1992. — Vol.131, № 5. — P.2344−2350.
  228. Spiteri-Grech J., Nieschlag E. The role of growth hormone and insulin-like growth factor I in the regulation of male reproductive function. // Horm. Res. 1992. — Vol.38, Suppl.1. — P.22−27.
  229. Spiteri-Grech J., Nieschlag E. Paracrine factors relevant to the regulation of spermatogenesis. // J. Reprod. Fertil. 1993. — Vol.98, № 1. — P.1−14.
  230. Steinberger A., Dighe R. R., Diaz J. Testicular peptides and their endocrine and paracrine functions. // Arch. Biol. Med. Exp. Santiago. -1984.-Vol.17, № 3−4.-P.267−271.
  231. Stefanini M., Geremia R., Conti M., Rossi P. La regolazione della spermatogenesi nel mammifero. // Ital. J. Anat. Embryol. 1995. -Vol.100, № 4. — P.73−112.
  232. Stephan J., Melaine N., Ezan E. et al. Source, catabolism and role of the tetrapeptide N-acetyl-ser-asp-lys-Pro within the testis. // J. Cell. Sci. -2000. Vol.113, Pt.1. — P.113−121.
  233. Strauss E. Selenium’s role in infertility explained. // Science. 1999. -Vol.285, № 5432.-P. 1339−1340.
  234. Suarez-Quian C. A., Dai M. Z., Onoda M. Epidermal growth factor receptor localization in the rat and monkey testes. // Biol. Reprod. -1989.-Vol.41, № 5. P.921−932.
  235. Teerds K. J., Closset J., Rommerts F. F. et al. Effects of pure FSH and LH preparations on the number and function of Leydig cells in immature hypophysectomized rats. // J. Endocrinol. 1989. -Vol.120, № 1. — P.97−106.
  236. Teerds K. J., Dorrington J. H. Localization of transforming growth factor beta 1 and beta 2 during testicular development in the rat. // Biol. Reprod. 1993. — Vol.48, № 1. — P.40−45.
  237. Toppari J., Kangasniemi M., Kaipia A. Stage- and cell-specific gene expression and hormone regulation! of the seminiferous epithelium. II J. Electron. Microsc. Tech. 1991. — Vol.19, № 2. — P.203−214.
  238. Tsutsumi О., Kurachi H., Oka Т. A physiological role of epidermal growth factor in male reproductive function. // Science. 1986. -Vol.233, № 4767. — P.975−977.
  239. Turner K. J., McKinnell C., McLaren Т. T. et al. Detection of germ cell-derived proteins in testicular interstitial fluid: potential for monitoring spermatogenesis in vivo. // J. Androl. 1996. — Vol.17, № 2. — P. 127−136.
  240. Turner K. J., Morley M., Atanassova N. et al. Effect of chronic administration of an aromatase inhibitor to adult male rats on pituitary and testicular function and fertility. // J. Endocrinol. 2000. — Vol.164, № 2. — P.225−238.
  241. Untergasser G., Kranewitter W., Schwarzler P. et al. Organ-specific expression pattern of the human growth hormone/placental lactogen gene-cluster in the testis. // Mol. Cell. Endocrinol. 1997. — Vol.130, № 1−2.-P.53−60.
  242. Urry R. L. An overview of male reproductive physiology. // Prog. Clin. Biol. Res. 1984. — Vol.160. — P.261−274.
  243. Ursini F., Heim S., Kiess M. et al. Dual function of the selenoprotein PHGPx during sperm maturation. // Science. 1999. — Vol.285, № 5432. — P. 1393−1396.
  244. Vaishnav M. Y.- Moudgal N. R. Effect of specific FSH or LH deprivation on testicular function: of the adult rat. // Indian. J. Biochem. Biophys. 1991. — Vol.28, № 5−6. — P.513−520.
  245. Vaishnav M. Y., Moudgal N. R. Role of FSH in regulating testicular germ cell transformations in the rat: a study using DNA flow cytometry. //Andrologia. 1994. — Vol.26, № 2. — P. 111−117.
  246. Verhoeven G. Androgens and the testis. // Verh. K. Acad. Geneeskd. Belg. 1992. — Vol.54, № 4. — P.299−327.
  247. Verhoeven G. Spermatogenesis and spermatogenic control: a state of the art. //Verh. K. Acad. Geneeskd. Belg. 1999. — Vol.61, № 3. -P.417−432.
  248. Vezina D., Mauffette F., Roberts K. D., Bleau G. Selenium-vitamin E supplementation in infertile men. Effects on semen parameters and micronutrient levels and distribution. // Biol. Trace. Elem. Res.1996.-№ 1−3.-P.65−83.
  249. Vogt P. H. Molecular basis of male (in)fertility. // Int. J. Androl.1997.-Suppl. 3.-P.2−10.
  250. Von der Kali G., Beschmann H., Zimmer G., Ochsendorf F. R. Decreased membrane fluidity in spermatozoa of infertile men. // Molecular investigation of male subfertility. / Ed. A. A. Nikolaev. -Astrakhan, 2000. P.77−100.
  251. Vornberger W., Prins G., Musto N. A., Suarez-Quian C. A. Androgen receptor distribution in rat testis: new implications for androgen regulation of spermatogenesis. // Endocrinology. 1994. — Vol.134, № 5. — P.2307−2316.
  252. Wang J. E., Josefsen G. M., Hansson V., Haugen Т. B. Residual bodies and IL-1 alpha stimulate expression of mRNA for IL-1 alpha and IL-1 receptor type I in cultured rat Sertoli cells. // Mol. Cell. Endocrinol. 1998. — Vol.137, № 2. — P.139−144.
  253. Wang R. A., Zhao G. Q. Transforming growth factor beta signal transducer Smad2 is expressed in mouse meiotic germ cells, Sertoli cells, and Leydig cells during spermatogenesis. // Biol. Reprod. -1999.-Vol.61, № 4. P.999−1004.
  254. Watanabe Т., Endo A. Effects of selenium deficiency on sperm morphology and spermatocyte chromosomes in mice. // Mutat. Res. -1991.-Vol.262, № 2. P.93−99.
  255. Watrin F., Scotto L., Assoian R. K., Wolgemuth D. J. Cell lineage specificity of expression of the murine transforming growth factor beta 3 and transforming growth factor beta 1 genes. // Cell. Growth. Differ. -1991.-Vol.2, № 2. P.77−83.
  256. Weber J. E., Russell L. D. A study of intercellular bridges during spermatogenesis in the rat. //Am. J. Anat. 1987. — Vol.180, № 1. -P. 1−24.
  257. Weinbauer G. F., Nieschlag E. Gonadotrophin control of testicular germ cell development. // Adv. Exp. Med. Biol. 1995. — № 377. -P.55−65.
  258. G. F., Wessels J. „Paracrine“ control of spermatogenesis. //Andrologia. 1999. — Vol.31, № 5. — P.249−262.
  259. Wright W. W., Zabludoff S. D» Penttila T. L" Parvinen M. Germ cell-Sertoli cell interactions: regulation by germ cells of the stage-specific expression of СР-2/cathepsin L mRNA by Sertoli cells. // Dev. Genet. -1995.-Vol.16, № 2. P. 104−113
  260. Wrobel К. H., Bickel D., Schimmel M., Kujat R. Immunohistochemical demonstration of nerve growth factor receptor in bovine testis. // Cell. Tissue. Res. 1996. — Vol.285, № 2. — P. 189−197.
  261. Xu В., Chia S. E, Ong C. N. Concentrations of cadmium, lead, selenium, and zinc in human blood and seminal plasma. // Biol. Trace. Elem. Res. 1994. — № 1. — P.49−57.
  262. Yan W., Suominen J., Toppari J. Stem cell factor protects germ cells from apoptosis in vitro. // J. Cell. Sci. 2000. — Vol.113, Pt.1. -P.161−168.
  263. Yan Y. C., Sun Y. P., Zhang M. L. Testis epidermal growth factor and spermatogenesis. //Arch. Androl. 1998. — Vol.40, № 2. — P. 133−146.
  264. Yoshida K., Oshima H. The regulation of testicular function by paracrine mechanism. // Nippon. Naibunpi. Gakkai. Zasshi. 1994. -Vol.70, № 10.-P. 1047−1054.
  265. Zanato V. F., Martins M. P., Anselmo-Franci J. A. et al. Sexual development of male Wistar rats. // Braz. J. Med. Biol. Res. 1994. -Vol.27, № 5. — P.1273−1280.
  266. Zannini C., Turchetti S., Guarch R. et al. Cell counting and three-dimensional reconstruction to identify a cellular wave in human spermatogenesis. // Anal. Quant. Cytol. Histol. 1999. — Vol.21, № 4. — P.358−362.
  267. Zhu Q., Van-Thiel D. H., Gavaler J. S. Effects of ethanol on rat Sertoli cell function: studies in vitro and in vivo. //Alcohol. Clin. Exp. Res. -1997.-Vol.21, № 8. P. 1409−1417.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!