Π”ΠΈΠΏΠ»ΠΎΠΌ, курсовая, ΠΊΠΎΠ½Ρ‚Ρ€ΠΎΠ»ΡŒΠ½Π°Ρ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π°
ΠŸΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒ Π² написании студСнчСских Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚

Π‘Π΅Π·Ρ€Π΅Π°Π³Π΅Π½Ρ‚Π½Ρ‹Π΅ биосСнсоры Π½Π° основС элСктрохимичСских Ρ€Π΅Π°ΠΊΡ†ΠΈΠΉ Π² Π³Π΅Ρ‚Π΅Ρ€ΠΎΠ³Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… систСмах

Π”ΠΈΡΡΠ΅Ρ€Ρ‚Π°Ρ†ΠΈΡΠŸΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒ Π² Π½Π°ΠΏΠΈΡΠ°Π½ΠΈΠΈΠ£Π·Π½Π°Ρ‚ΡŒ ΡΡ‚ΠΎΠΈΠΌΠΎΡΡ‚ΡŒΠΌΠΎΠ΅ΠΉ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹

Π’ΠΎΠ·ΠΌΠΎΠΆΠ½ΠΎΡΡ‚ΡŒ провСдСния Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ·Π° Π±Π΅Π· ΠΏΡ€ΠΎΠ±ΠΎΠΏΠΎΠ΄Π³ΠΎΡ‚ΠΎΠ²ΠΊΠΈ, низкая ΡΡ‚ΠΎΠΈΠΌΠΎΡΡ‚ΡŒ, Π΄ΠΎΡΡ‚ΡƒΠΏΠ½ΠΎΡΡ‚ΡŒ ΠΈ ΠΏΡ€ΠΎΡΡ‚ΠΎΡ‚Π° Π²Ρ‹Π³ΠΎΠ΄Π½ΠΎ ΠΎΡ‚Π»ΠΈΡ‡Π°ΡŽΡ‚ биосСнсоры ΠΎΡ‚ ΡƒΠ½ΠΈΠ²Π΅Ρ€ΡΠ°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… аналитичСских систСм, Π½Π°ΠΏΡ€ΠΈΠΌΠ΅Ρ€, Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΎ-масс-спСктромСтрии. ΠŸΡ€ΠΈ этом критичСски Π²Π°ΠΆΠ½Ρ‹ΠΌΠΈ свойствами биосСнсоров ΡΠ²Π»ΡΡŽΡ‚ΡΡ Π±Π΅Π·Ρ€Π΅Π°Π³Π΅Π½Ρ‚Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ, высокая ΡΠ΅Π»Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ ΠΈ ΠΎΠΏΠ΅Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΎΠ½Π½Π°Ρ ΡΡ‚Π°Π±ΠΈΠ»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΡŒ. Π‘Π΅Π·Ρ€Π΅Π°Π³Π΅Π½Ρ‚Π½ΠΎΠ΅ ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ Π±ΠΈΠΎΠΌΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ» элСктрохимичСскими ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Π°ΠΌΠΈ… Π§ΠΈΡ‚Π°Ρ‚ΡŒ Π΅Ρ‰Ρ‘ >

Π‘ΠΎΠ΄Π΅Ρ€ΠΆΠ°Π½ΠΈΠ΅

  • 1. Π’Π’Π•Π”Π•ΠΠ˜Π•
  • 2. ΠžΠ‘Π—ΠžΠ  Π›Π˜Π’Π•Π ΠΠ’Π£Π Π«
    • 2. 1. БиосСнсоры
      • 2. 1. 1. ΠŸΡ€ΠΈΠ½Ρ†ΠΈΠΏΡ‹ ΠΈ ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΡ
      • 2. 1. 2. ΠšΠ»Π°ΡΡΠΈΡ„ΠΈΠΊΠ°Ρ†ΠΈΡ ΠΏΠΎ Ρ‚ΠΈΠΏΡƒ Ρ‚Ρ€Π°Π½ΡΠ΄ΡŒΡŽΡΠ΅Ρ€Π°
      • 2. 1. 3. ΠšΠ»Π°ΡΡΠΈΡ„ΠΈΠΊΠ°Ρ†ΠΈΡ ΠΏΠΎ Ρ‚ΠΈΠΏΡƒ Ρ€Π°ΡΠΏΠΎΠ·Π½Π°ΡŽΡ‰Π΅Π³ΠΎ элСмСнта
    • 2. 2. ΠœΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Ρ‹ ΠΈΠΌΠΌΠΎΠ±ΠΈΠ»ΠΈΠ·Π°Ρ†ΠΈΠΈ Π”ΠΠš Π·ΠΎΠ½Π΄Π°
    • 2. 3. БСнсоры для прямого опрСдСлСния Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ² ΠΈ Π½ΡƒΠΊΠ»Π΅ΠΈΠ½ΠΎΠ²Ρ‹Ρ… кислот
      • 2. 3. 1. ΠœΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ ΠΏΠ»Π°Π·ΠΌΠΎΠ½Π½ΠΎΠ³ΠΎ рСзонанса
      • 2. 3. 2. Π’Ρ€Π°Π½ΡΠ΄ΡŒΡŽΡΡΠ΅Ρ€Ρ‹ Π½Π° ΠΎΡΠ½ΠΎΠ²Π΅ ΠΏΡŒΠ΅Π·ΠΎΠΊΡ€ΠΈΡΡ‚Π°Π»Π»ΠΎΠ²
      • 2. 3. 3. ЭлСктрохимичСскиС ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Ρ‹
    • 2. 4. Π“Ρ€Π°Π½ΠΈΡ†Ρ‹ Ρ€Π°Π·Π΄Π΅Π»Π° Π½Π΅ΡΠΌΠ΅ΡˆΠΈΠ²Π°ΡŽΡ‰ΠΈΡ…ΡΡ ТидкостСй
      • 2. 4. 1. ΠžΠ±Ρ‰ΠΈΠ΅ полоТСния
      • 2. 4. 2. Π‘Ρ‚Ρ€ΠΎΠ΅Π½ΠΈΠ΅ ΠΈ ΡΠ²ΠΎΠΉΡΡ‚Π²Π° ГРНЭ
      • 2. 4. 3. РавновСсия Π½Π° Π³Ρ€Π°Π½ΠΈΡ†Π΅ Π΄Π²ΡƒΡ… ТидкостСй
      • 2. 4. 4. ВСрмодинамичСскоС описаниС. УравнСния НСрнста
      • 2. 4. 5. ΠŸΠΎΠ»ΡΡ€ΠΈΠ·Π°Ρ†ΠΈΡ Π³Ρ€Π°Π½ΠΈΡ†Ρ‹ Π½Π΅ΡΠΌΠ΅ΡˆΠΈΠ²Π°ΡŽΡ‰ΠΈΡ…ΡΡ растворов элСктролитов
      • 2. 4. 6. ΠšΠΈΠ½Π΅Ρ‚ΠΈΠΊΠ° пСрСноса ΠΈΠΎΠ½Π°
      • 2. 4. 7. Π˜Π½Π΄ΡƒΡ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π½Ρ‹ΠΉ пСрСнос ΠΈΠΎΠ½ΠΎΠ²
      • 2. 4. 8. Адсорбция органичСских ΠΌΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ» Π½Π° Π“РНЭ
    • 2. 5. Π“Ρ€Π°Π½ΠΈΡ†Π° Ρ€Π°Π·Π΄Π΅Π»Π° Π²ΠΎΠ΄Π½ΠΎΠΉ Ρ„Π°Π·Ρ‹ ΠΈ Ρ‚ΠΎΠ½ΠΊΠΎΠΉ ΠΆΠΈΠ΄ΠΊΠΎΠΉ ΠΏΠ»Ρ‘Π½ΠΊΠΈ органичСского растворитСля

Π‘Π΅Π·Ρ€Π΅Π°Π³Π΅Π½Ρ‚Π½Ρ‹Π΅ биосСнсоры Π½Π° основС элСктрохимичСских Ρ€Π΅Π°ΠΊΡ†ΠΈΠΉ Π² Π³Π΅Ρ‚Π΅Ρ€ΠΎΠ³Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… систСмах (Ρ€Π΅Ρ„Π΅Ρ€Π°Ρ‚, курсовая, Π΄ΠΈΠΏΠ»ΠΎΠΌ, ΠΊΠΎΠ½Ρ‚Ρ€ΠΎΠ»ΡŒΠ½Π°Ρ)

ΠΠΊΡ‚ΡƒΠ°Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΡŒ ΠΏΡ€ΠΎΠ±Π»Π΅ΠΌΡ‹. На ΡΠ΅Π³ΠΎΠ΄Π½ΡΡˆΠ½ΠΈΠΉ дСнь элСктрохимичСскиС биосСнсоры ΡΠ²Π»ΡΡŽΡ‚ΡΡ Π½Π°ΠΈΠ±ΠΎΠ»Π΅Π΅ Π΄Π΅ΡˆΠ΅Π²Ρ‹ΠΌΠΈ ΠΈ ΠΏΡ€ΠΎΡΡ‚Ρ‹ΠΌΠΈ устройствами, ΠΏΠΎΠ·Π²ΠΎΠ»ΡΡŽΡ‰ΠΈΠΌΠΈ ΠΏΡ€ΠΎΠ²ΠΎΠ΄ΠΈΡ‚ΡŒ экспрСссный химичСский Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ· с Π²Ρ‹ΡΠΎΠΊΠΎΠΉ Ρ‡ΡƒΠ²ΡΡ‚Π²ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΡŒΡŽ ΠΈ ΡΠ΅Π»Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒΡŽ. Π‘Ρ€Π΅Π΄ΠΈ ΡˆΠΈΡ€ΠΎΠΊΠΎΠ³ΠΎ ΠΊΡ€ΡƒΠ³Π° ΠΈΡ… Π·Π°Π΄Π°Ρ‡, ΠΌΠΎΠΆΠ½ΠΎ Π²Ρ‹Π΄Π΅Π»ΠΈΡ‚ΡŒ ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ спСцифичСских Π±ΠΈΠΎΠΌΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ» для Ρ†Π΅Π»Π΅ΠΉ клиничСской диагностики ΠΈ ΠΏΠΈΡ‰Π΅Π²ΠΎΠΉ ΠΏΡ€ΠΎΠΌΡ‹ΡˆΠ»Π΅Π½Π½ΠΎΡΡ‚ΠΈ.

Π’ΠΎΠ·ΠΌΠΎΠΆΠ½ΠΎΡΡ‚ΡŒ провСдСния Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ·Π° Π±Π΅Π· ΠΏΡ€ΠΎΠ±ΠΎΠΏΠΎΠ΄Π³ΠΎΡ‚ΠΎΠ²ΠΊΠΈ, низкая ΡΡ‚ΠΎΠΈΠΌΠΎΡΡ‚ΡŒ, Π΄ΠΎΡΡ‚ΡƒΠΏΠ½ΠΎΡΡ‚ΡŒ ΠΈ ΠΏΡ€ΠΎΡΡ‚ΠΎΡ‚Π° Π²Ρ‹Π³ΠΎΠ΄Π½ΠΎ ΠΎΡ‚Π»ΠΈΡ‡Π°ΡŽΡ‚ биосСнсоры ΠΎΡ‚ ΡƒΠ½ΠΈΠ²Π΅Ρ€ΡΠ°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… аналитичСских систСм, Π½Π°ΠΏΡ€ΠΈΠΌΠ΅Ρ€, Ρ…Ρ€ΠΎΠΌΠ°Ρ‚ΠΎ-масс-спСктромСтрии. ΠŸΡ€ΠΈ этом критичСски Π²Π°ΠΆΠ½Ρ‹ΠΌΠΈ свойствами биосСнсоров ΡΠ²Π»ΡΡŽΡ‚ΡΡ Π±Π΅Π·Ρ€Π΅Π°Π³Π΅Π½Ρ‚Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ, высокая ΡΠ΅Π»Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ ΠΈ ΠΎΠΏΠ΅Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΎΠ½Π½Π°Ρ ΡΡ‚Π°Π±ΠΈΠ»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΡŒ. Π‘Π΅Π·Ρ€Π΅Π°Π³Π΅Π½Ρ‚Π½ΠΎΠ΅ ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ Π±ΠΈΠΎΠΌΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ» элСктрохимичСскими ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Π°ΠΌΠΈ Π·Π°Ρ‚Ρ€ΡƒΠ΄Π½Π΅Π½ΠΎ Ρ‚Π΅ΠΌ, Ρ‡Ρ‚ΠΎ Π±Π΅Π»ΠΊΠΈ ΠΈ Π½ΡƒΠΊΠ»Π΅ΠΈΠ½ΠΎΠ²Ρ‹Π΅ кислоты, Π° Ρ‚Π°ΠΊΠΆΠ΅ ΠΈΡ… ΠΊΠΎΠΌΠΏΠ»Π΅ΠΊΡΡ‹ Π² ΠΎΡΠ½ΠΎΠ²Π½ΠΎΠΌ Π½Π΅ ΡΠ»Π΅ΠΊΡ‚Ρ€ΠΎΠ°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹, ΠΏΠΎΡΠΊΠΎΠ»ΡŒΠΊΡƒ Π½Π΅ ΡΠΎΠ΄Π΅Ρ€ΠΆΠ°Ρ‚ рСдокс-Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹Ρ… Π³Ρ€ΡƒΠΏΠΏ. ΠŸΠΎΡΡ‚ΠΎΠΌΡƒ ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ Π±ΠΈΠΎΠΌΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ» с ΠΏΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒΡŽ биосСнсоров Ρ‚Ρ€Π΅Π±ΡƒΠ΅Ρ‚ Ρ€Π°Π·Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚ΠΊΠΈ Π°Π»ΡŒΡ‚Π΅Ρ€Π½Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹Ρ… ΠΏΠΎΠ΄Ρ…ΠΎΠ΄ΠΎΠ².

Одним ΠΈΠ· ΠΏΠ΅Ρ€ΡΠΏΠ΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹Ρ… Π½Π°ΠΏΡ€Π°Π²Π»Π΅Π½ΠΈΠΉ Π² ΡΠ»Π΅ΠΊΡ‚Ρ€ΠΎΠ°Π½Π°Π»ΠΈΠ·Π΅ являСтся использованиС Π³Ρ€Π°Π½ΠΈΡ†Ρ‹ Ρ€Π°Π·Π΄Π΅Π»Π° Π½Π΅ΡΠΌΠ΅ΡˆΠΈΠ²Π°ΡŽΡ‰ΠΈΡ…ΡΡ ТидкостСй для рСгистрации рСдокс-Π½Π΅Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹Ρ… ΠΈΠΎΠ½ΠΎΠ². Π‘Π΅Π»ΠΊΠΈ ΠΈ Π½ΡƒΠΊΠ»Π΅ΠΈΠ½ΠΎΠ²Ρ‹Π΅ кислоты содСрТат заряТСнныС Π³Ρ€ΡƒΠΏΠΏΡ‹ ΠΈ ΠΌΠΎΠ³ΡƒΡ‚ Π±Ρ‹Ρ‚ΡŒ рассмотрСны Π² ΠΊΠ°Ρ‡Π΅ΡΡ‚Π²Π΅ полиэлСктролитов. Π’ ΡΠ²ΡΠ·ΠΈ с ΡΡ‚ΠΈΠΌ прСдставляСтся Π²ΠΎΠ·ΠΌΠΎΠΆΠ½Ρ‹ΠΌ ΠΈΡ… Π΄Π΅Ρ‚Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ Π½Π° Π³Ρ€Π°Π½ΠΈΡ†Π΅ Ρ€Π°Π·Π΄Π΅Π»Π° Π½Π΅ΡΠΌΠ΅ΡˆΠΈΠ²Π°ΡŽΡ‰ΠΈΡ…ΡΡ ТидкостСй.

Π‘ Π΄Ρ€ΡƒΠ³ΠΎΠΉ стороны, использованиС систСмы Π½Π°Π½ΠΎΠΏΠΎΡ€ Π² ΠΈΠ½Π΅Ρ€Ρ‚Π½ΠΎΠΉ ΠΌΠ΅ΠΌΠ±Ρ€Π°Π½Π΅ пСрспСктивно для увСличСния Ρ‡ΡƒΠ²ΡΡ‚Π²ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΠΈ элСктрохимичСской рСгистрации Π°Ρ„Ρ„ΠΈΠ½Π½ΠΎΠ³ΠΎ связывания биологичСских ΠΌΠ°ΠΊΡ€ΠΎΠΌΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ», ΠΏΠΎΡΠΊΠΎΠ»ΡŒΠΊΡƒ ΠΎΠ±Ρ€Π°Π·ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ Π½Π°Π½ΠΎΡ€Π°Π·ΠΌΠ΅Ρ€Π½Ρ‹Ρ… комплСксов Π²Π½ΡƒΡ‚Ρ€ΠΈ Π½Π°Π½ΠΎΠΏΠΎΡ€ Π±ΡƒΠ΄Π΅Ρ‚ Π±Π»ΠΎΠΊΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Ρ‚ΡŒ ΠΏΠΎΡ‚ΠΎΠΊ ΠΈΠΎΠ½ΠΎΠ² ΠΊ ΠΏΠΎΠ²Π΅Ρ€Ρ…ности элСктрода.

По ΠΏΡ€ΠΈΠ½Ρ†ΠΈΠΏΡƒ Π±Π΅Π·Ρ€Π΅Π°Π³Π΅Π½Ρ‚Π½ΠΎΠ³ΠΎ Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ·Π° Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π°ΡŽΡ‚ Ρ‚Π°ΠΊΠΆΠ΅ биосСнсоры Ρ‚Ρ€Π΅Ρ‚ΡŒΠ΅Π³ΠΎ поколСния, Ρ‚ΠΎ Π΅ΡΡ‚ΡŒ ампСромСтричСскиС сСнсоры Π½Π° ΠΎΡΠ½ΠΎΠ²Π΅ биоэлСктрокатализа с ΠΏΡ€ΡΠΌΡ‹ΠΌ ΠΎΠ±ΠΌΠ΅Π½ΠΎΠΌ элСктрона ΠΌΠ΅ΠΆΠ΄Ρƒ Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹ΠΌ Ρ†Π΅Π½Ρ‚Ρ€ΠΎΠΌ Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π° ΠΈ ΡΠ»Π΅ΠΊΡ‚Ρ€ΠΎΠ΄ΠΎΠΌ. Π­Ρ‚ΠΎ явлСниС, ΠΎΡ‚ΠΊΡ€Ρ‹Ρ‚ΠΎΠ΅ совСтскими ΡƒΡ‡Π΅Π½Ρ‹ΠΌΠΈ Ρ‚Ρ€ΠΈ дСсятилСтия Π½Π°Π·Π°Π΄, Π² Π½Π°ΡΡ‚оящСС врСмя интСнсивно ΠΈΡΡΠ»Π΅Π΄ΡƒΡŽΡ‚ Π² ΡΠ²ΡΠ·ΠΈ с Π²Ρ‹Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ΠΌ Π½ΠΎΠ²Ρ‹Ρ… Ρ‚ΠΈΠΏΠΎΠ² оксидорСдуктаз, Ρ€Π°Π·Π²ΠΈΡ‚ΠΈΠ΅ΠΌ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠ² Π±ΠΈΠΎΠΈΠ½ΠΆΠ΅Π½Π΅Ρ€ΠΈΠΈ ΠΈ ΡΠΎΠ·Π΄Π°Π½ΠΈΠ΅ΠΌ Π½ΠΎΠ²Ρ‹Ρ… элСктродных ΠΌΠ°Ρ‚Π΅Ρ€ΠΈΠ°Π»ΠΎΠ². ΠœΠΎΠ΄ΠΈΡ„ΠΈΠΊΠ°Ρ†ΠΈΡ повСрхности ΠΈΠΌΠ΅Π΅Ρ‚ большоС Π·Π½Π°Ρ‡Π΅Π½ΠΈΠ΅ для ΠΏΠΎΠ²Ρ‹ΡˆΠ΅Π½ΠΈΡ эффСктивности биоэлСктрокатализа Π·Π° ΡΡ‡Π΅Ρ‚ облСгчСния ΠΊΠΎΠΌΠΌΡƒΠ½ΠΈΠΊΠ°Ρ†ΠΈΠΈ Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΠ³ΠΎ Ρ†Π΅Π½Ρ‚Ρ€Π° Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π° с ΡΠ»Π΅ΠΊΡ‚Ρ€ΠΎΠ΄ΠΎΠΌ.

ЦСлью Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹ являлось созданиС Π±Π΅Π·Ρ€Π΅Π°Π³Π΅Π½Ρ‚Π½Ρ‹Ρ… биосСнсоров для рСгистрации Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ² ΠΈ Π½ΡƒΠΊΠ»Π΅ΠΈΠ½ΠΎΠ²Ρ‹Ρ… кислот Π½Π° ΠΎΡΠ½ΠΎΠ²Π΅ элСктродов, Ρ‡ΡƒΠ²ΡΡ‚Π²ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… ΠΊ Ρ„ΠΈΠ·ΠΈΠΊΠΎ-химичСским процСссам Π½Π° Π³Ρ€Π°Π½ΠΈΡ†Π°Ρ… Ρ€Π°Π·Π΄Π΅Π»Π° Ρ„Π°Π·, Π° Ρ‚Π°ΠΊΠΆΠ΅ созданиС Π»Π°ΠΊΡ‚ΠΎΠ·Π½ΠΎΠ³ΠΎ биосСнсора Π½Π° ΠΎΡΠ½ΠΎΠ²Π΅ высокоэффСктивного прямого биоэлСктрокатализа Π¦Π”Π“. Π’ ΠΏΠΎΡΡ‚Π°Π²Π»Π΅Π½Π½Ρ‹Π΅ Π·Π°Π΄Π°Ρ‡ΠΈ Π²Ρ…ΠΎΠ΄ΠΈΠ»ΠΎ:

— Ρ€Π°Π·Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚ΠΊΠ° Π²Ρ‹ΡΠΎΠΊΠΎΡΡ‚Π°Π±ΠΈΠ»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… ΠΈ Π²ΠΎΡΠΏΡ€ΠΎΠΈΠ·Π²ΠΎΠ΄ΠΈΠΌΡ‹Ρ… элСктродов с ΠΏΠΎΠ»ΡΡ€ΠΈΠ·ΡƒΠ΅ΠΌΠΎΠΉ Π³Ρ€Π°Π½ΠΈΡ†Π΅ΠΉ Ρ€Π°Π·Π΄Π΅Π»Π° Π½Π΅ΡΠΌΠ΅ΡˆΠΈΠ²Π°ΡŽΡ‰ΠΈΡ…ΡΡ ТидкостСй, ΠΏΡ€Π΅Π΄Π½Π°Π·Π½Π°Ρ‡Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… для рСгистрации биомолСкулсозданиС Π±Π΅Π·Ρ€Π΅Π°Π³Π΅Π½Ρ‚Π½ΠΎΠ³ΠΎ Π”ΠΠš-сСнсора Π½Π° ΠΎΡΠ½ΠΎΠ²Π΅ Π”ΠΠš-Π·ΠΎΠ½Π΄Π°, ΠΈΠΌΠΌΠΎΠ±ΠΈΠ»ΠΈΠ·ΠΎΠ²Π°Π½Π½ΠΎΠ³ΠΎ Π½Π° Π³Ρ€Π°Π½ΠΈΡ†Π΅ Ρ€Π°Π·Π΄Π΅Π»Π° Π½Π΅ΡΠΌΠ΅ΡˆΠΈΠ²Π°ΡŽΡ‰ΠΈΡ…ΡΡ ТидкостСйполучСниС ΠΈ ΠΈΡΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ элСктрохимичСской систСмы, Ρ‡ΡƒΠ²ΡΡ‚Π²ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΠΉ ΠΊ ΡΠΊΡΡ‚Ρ€Π°ΠΊΡ†ΠΈΠΈ Π±Π΅Π»ΠΊΠ° ΠΈΠ· Π²ΠΎΠ΄Ρ‹ Π² ΠΎΡ€Π³Π°Π½ΠΈΡ‡Π΅ΡΠΊΠΈΠΉ Ρ€Π°ΡΡ‚Π²ΠΎΡ€ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒ;

— Ρ€Π΅Π³ΠΈΡΡ‚рация Π±ΠΈΠΎΠ°Ρ„Ρ„ΠΈΠ½Π½ΠΎΠ³ΠΎ взаимодСйствия1 Π½Π° ΡΠ»Π΅ΠΊΡ‚Ρ€ΠΎΠ΄Π΅, ΠΌΠΎΠ΄ΠΈΡ„ΠΈΡ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π½ΠΎΠΌ ΠΈΠ½Π΅Ρ€Ρ‚Π½Ρ‹ΠΌ ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€ΠΎΠΌ с ΡΠΈΡΡ‚Π΅ΠΌΠΎΠΉ Π½Π°Π½ΠΎΡ€Π°Π·ΠΌΠ΅Ρ€Π½Ρ‹Ρ… ΠΏΠΎΡ€, ΠΈ ΡΠΎΠ·Π΄Π°Π½ΠΈΠ΅ аптасСнсора Π½Π° Ρ‚Ρ€ΠΎΠΌΠ±ΠΈΠ½ΠΈΠ·ΡƒΡ‡Π΅Π½ΠΈΠ΅ прямого биоэлСктрокатализа Ρ†Π΅Π»Π»ΠΎΠ±ΠΈΠΎΠ·ΠΎΠ΄Π΅Π³ΠΈΠ΄Ρ€ΠΎΠ³Π΅Π½Π°Π·Π°ΠΌΠΈ ΠΈ ΠΏΠΎΠ²Ρ‹ΡˆΠ΅Π½ΠΈΠ΅ Π΅Π³ΠΎ эффСктивности Π·Π° ΡΡ‡Π΅Ρ‚ ΠΌΠΎΠ΄ΠΈΡ„ΠΈΠΊΠ°Ρ†ΠΈΠΈ повСрхности элСктрода рСдокс-Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹ΠΌΠΈ ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°ΠΌΠΈ с Ρ†Π΅Π»ΡŒΡŽ получСния Π±ΠΎΠ»Π΅Π΅ ΡΡ‚Π°Π±ΠΈΠ»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… ΠΈ Ρ‡ΡƒΠ²ΡΡ‚Π²ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… сСнсоров Π½Π° Π»Π°ΠΊΡ‚ΠΎΠ·Ρƒ.

Научная Π½ΠΎΠ²ΠΈΠ·Π½Π° ΠΈ ΠΏΡ€Π°ΠΊΡ‚ичСская Ρ†Π΅Π½Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹. Π‘ΠΎΠ·Π΄Π°Π½ Π±Π΅Π·Ρ€Π΅Π°Π³Π΅Π½Ρ‚Π½Ρ‹ΠΉ Π”ΠΠš-сСнсор Π½Π° ΠΎΡΠ½ΠΎΠ²Π΅ ΠΏΡ€ΠΈΠ½Ρ†ΠΈΠΏΠΈΠ°Π»ΡŒΠ½ΠΎ Π½ΠΎΠ²ΠΎΠ³ΠΎ ΠΏΠΎΠ΄Ρ…ΠΎΠ΄Π° — ΠΈΠΌΠΌΠΎΠ±ΠΈΠ»ΠΈΠ·Π°Ρ†ΠΈΠΈ Π”ΠΠš-Π·ΠΎΠ½Π΄Π° Π½Π° Π³Ρ€Π°Π½ΠΈΡ†Π΅ Ρ€Π°Π·Π΄Π΅Π»Π° Π½Π΅ΡΠΌΠ΅ΡˆΠΈΠ²Π°ΡŽΡ‰ΠΈΡ…ΡΡ ТидкостСй. АналитичСскиС характСристики сСнсора прСвосходили описанныС Π² Π»ΠΈΡ‚Π΅Ρ€Π°Ρ‚ΡƒΡ€Π΅. Π’ Ρ‡Π°ΡΡ‚ности, минимальная рСгистрируСмая концСнтрация составила 1 β€’ 10″ 8 M, Π° ΡΠ΅Π»Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ ΠΏΠΎ ΠΎΡ‚Π½ΠΎΡˆΠ΅Π½ΠΈΡŽ ΠΊ ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΠΈ Π½ΡƒΠΊΠ»Π΅ΠΎΡ‚ΠΈΠ΄ΠΎΠ² ΠΏΠΎΠ·Π²ΠΎΠ»ΠΈΠ»Π° Π·Π°Ρ€Π΅Π³ΠΈΡΡ‚Ρ€ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Ρ‚ΡŒ Ρ‚ΠΎΡ‡Π΅Ρ‡Π½ΡƒΡŽ ΠΌΡƒΡ‚Π°Ρ†ΠΈΡŽ, Ρ‚ΠΎ Π΅ΡΡ‚ΡŒ Π·Π°ΠΌΠ΅Π½Ρƒ ΠΎΠ΄Π½ΠΎΠ³ΠΎ азотистого основания Π΄Ρ€ΡƒΠ³ΠΈΠΌ. БСнсор ΠΌΠΎΠΆΠ΅Ρ‚ Π±Ρ‹Ρ‚ΡŒ ΠΈΠ·Π³ΠΎΡ‚ΠΎΠ²Π»Π΅Π½ простым ΠΈ Π΄Π΅ΡˆΠ΅Π²Ρ‹ΠΌ способом.

ΠŸΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½ элСктрохимичСский ΠΎΡ‚ΠΊΠ»ΠΈΠΊ Π² ΠΎΡ‚Π²Π΅Ρ‚ Π½Π° ΡΠΊΡΡ‚Ρ€Π°ΠΊΡ†ΠΈΡŽ Π±Π΅Π»ΠΊΠ° Π² ΠΎΡ€Π³Π°Π½ΠΈΡ‡Π΅ΡΠΊΠΈΠΉ Ρ€Π°ΡΡ‚Π²ΠΎΡ€ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒ. ИсслСдования ΠΏΠΎ Π΄Π°Π½Π½ΠΎΠΌΡƒ Π½Π°ΠΏΡ€Π°Π²Π»Π΅Π½ΠΈΡŽ проводятся Π²ΠΏΠ΅Ρ€Π²Ρ‹Π΅ ΠΈ Π²Π½ΠΎΡΡΡ‚ сущСствСнный Π²ΠΊΠ»Π°Π΄ Π² ΠΈΠ·ΡƒΡ‡Π΅Π½ΠΈΠ΅ пСрСноса заряда Ρ‡Π΅Ρ€Π΅Π· Π³Ρ€Π°Π½ΠΈΡ†Ρƒ Ρ€Π°Π·Π΄Π΅Π»Π° Π½Π΅ΡΠΌΠ΅ΡˆΠΈΠ²Π°ΡŽΡ‰ΠΈΡ…ΡΡ ТидкостСй. Высокая Ρ‡ΡƒΠ²ΡΡ‚Π²ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΡŒ (Π΄ΠΎ 5 A/M) ΠΈ ΡΠ΅Π»Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ взаимодСйствия ΠŸΠΠ’-Π±Π΅Π»ΠΎΠΊ ΠΎΡ‚ΠΊΡ€Ρ‹Π²Π°ΡŽΡ‚ пСрспСктивы совмСщСния ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠ² мицСллярной энзимологии ΠΈ ΡΠ»Π΅ΠΊΡ‚Ρ€ΠΎΠ°Π½Π°Π»ΠΈΠ·Π° для получСния Π½ΠΎΠ²Ρ‹Ρ… аналитичСских систСм.

Π’ΠΏΠ΅Ρ€Π²Ρ‹Π΅ продСмонстрирована Π²ΠΎΠ·ΠΌΠΎΠΆΠ½ΠΎΡΡ‚ΡŒ элСктрохимичСской рСгистрации образования комплСкса Π°ΠΏΡ‚Π°ΠΌΠ΅Ρ€-Ρ‚Ρ€ΠΎΠΌΠ±ΠΈΠ½ ΠΏΠΎ Π±Π»ΠΎΠΊΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΡŽ ΠΏΠΎΡ‚ΠΎΠΊΠ° ΠΈΠΎΠ½ΠΎΠ² Ρ‡Π΅Ρ€Π΅Π· систСму Π½Π°Π½ΠΎΠΏΠΎΡ€ Π² ΠΈΠ½Π΅Ρ€Ρ‚Π½ΠΎΠΌ изоляторС. Для этих Ρ†Π΅Π»Π΅ΠΉ Ρ€Π°Π·Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π°Π½Ρ‹ элСктроды, экранированныС пористыми полисилоксановыми ΠΌΠ°Ρ‚Ρ€ΠΈΡ†Π°ΠΌΠΈ. Π˜ΡΠΏΠΎΠ»ΡŒΠ·ΡƒΡ прСимущСства Π΄Π°Π½Π½ΠΎΠ³ΠΎ ΠΏΠΎΠ΄Ρ…ΠΎΠ΄Π°, Π²ΠΎΠ·ΠΌΠΎΠΆΠ½ΠΎ созданиС Π΄Π΅ΡˆΠ΅Π²Ρ‹Ρ… аптасСнсоров, Ρ„ΡƒΠ½ΠΊΡ†ΠΈΠΎΠ½ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΡ… Π±Π΅Π· использования ΠΌΠ΅Ρ‡Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… биологичСских ΠΌΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ».

Π’ΠΏΠ΅Ρ€Π²Ρ‹Π΅ ΠΏΠΎΠΊΠ°Π·Π°Π½ΠΎ ΡƒΠ²Π΅Π»ΠΈΡ‡Π΅Π½ΠΈΠ΅ эффСктивности биоэлСктрокатализа Ρ†Π΅Π»Π»ΠΎΠ±ΠΈΠΎΠ·ΠΎΠ΄Π΅Π³ΠΈΠ΄-Ρ€ΠΎΠ³Π΅Π½Π°Π·ΠΎΠΉ Π·Π° ΡΡ‡Π΅Ρ‚ ΠΌΠΎΠ΄ΠΈΡ„ΠΈΠΊΠ°Ρ†ΠΈΠΈ элСктрода ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠ°Π½ΠΈΠ»ΠΈΠ½ΠΎΠΌ, Π° Ρ‚Π°ΠΊΠΆΠ΅ ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠ°Π½ΠΈΠ»ΠΈΠ½ΠΎΠΌ с Π²ΠΊΠ»ΡŽΡ‡Π΅Π½Π½Ρ‹ΠΌΠΈ ΡƒΠ³Π»Π΅Ρ€ΠΎΠ΄Π½Ρ‹ΠΌΠΈ Π½Π°Π½ΠΎΡ‚Ρ€ΡƒΠ±ΠΊΠ°ΠΌΠΈ. На ΠΎΡΠ½ΠΎΠ²Π΅ ΠΌΠΎΠ΄ΠΈΡ„ΠΈΡ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π½Ρ‹Ρ… элСктродов созданы Π±Π΅Π·Ρ€Π΅Π°Π³Π΅Π½Ρ‚Π½Ρ‹Π΅ биосСнсоры Π½Π° Π»Π°ΠΊΡ‚ΠΎΠ·Ρƒ, ΠΎΠ±Π»Π°Π΄Π°ΡŽΡ‰ΠΈΠ΅ Π½Π° ΠΏΠΎΡ€ΡΠ΄ΠΎΠΊ ΡƒΠ»ΡƒΡ‡ΡˆΠ΅Π½Π½Ρ‹ΠΌΠΈ значСниями Ρ‡ΡƒΠ²ΡΡ‚Π²ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΠΈ ΠΈ ΠΎΠΏΠ΅Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΎΠ½Π½ΠΎΠΉ ΡΡ‚Π°Π±ΠΈΠ»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΠΈ. ΠŸΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½Π½Ρ‹Π΅ биосСнсоры ΠΌΠΎΠ³ΡƒΡ‚ Π±Ρ‹Ρ‚ΡŒ вострСбованы Π² ΠΏΠΈΡ‰Π΅Π²ΠΎΠΉ ΠΏΡ€ΠΎΠΌΡ‹ΡˆΠ»Π΅Π½Π½ΠΎΡΡ‚ΠΈ для Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ·Π° Π»Π°ΠΊΡ‚ΠΎΠ·Ρ‹ Π² ΡΠ»ΠΎΠΆΠ½Ρ‹Ρ… ΠΌΠ°Ρ‚Ρ€ΠΈΡ†Π°Ρ….

Апробация Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹. ΠžΡΠ½ΠΎΠ²Π½Ρ‹Π΅ Ρ€Π΅Π·ΡƒΠ»ΡŒΡ‚Π°Ρ‚Ρ‹ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹ прСдставлСны Π½Π° ΠΊΠΎΠ½Ρ„СрСнциях: 57th Annual Meeting of the International Society of Electrochemistry (Edinburgh, United Kingdom, 2006), International congress on analytical science (Moscow, Russia, 2006), 11th International Conference on Electroanalysis (Bordeaux, France, 2006), ΠœΠ΅ΠΆΠ΄ΡƒΠ½Π°Ρ€ΠΎΠ΄Π½Π°Ρ конфСрСнция ΠΌΠΎΠ»ΠΎΠ΄Ρ‹Ρ… ΡƒΡ‡Ρ‘Π½Ρ‹Ρ… «Π›ΠΎΠΌΠΎΠ½ΠΎΡΠΎΠ² — 2006» ΠΈ «Π›ΠΎΠΌΠΎΠ½ΠΎΡΠΎΠ² — 2007» (Москва, Россия), II Π’сСроссийская конфСрСнция ΠΏΠΎ Π°Π½Π°Π»ΠΈΡ‚ичСской Ρ…ΠΈΠΌΠΈΠΈ (ВуапсС, Россия, 2007), NATO ASI «Sensors for Environment, Health and Security» (Vichy, France, 2007), ΠœΠ΅ΠΆΠ΄ΡƒΠ½Π°Ρ€ΠΎΠ΄Π½Π°Ρ Π½Π°ΡƒΡ‡Π½ΠΎ-практичСская конфСрСнция «Π‘иотСхнология. Π’ΠΎΠ΄Π° ΠΈ ΠΏΠΈΡ‰Π΅Π²Ρ‹Π΅ ΠΏΡ€ΠΎΠ΄ΡƒΠΊΡ‚Ρ‹» (Москва, Россия, 2008), International Conference on Electrochemical Sensors (Dobogoko, Hungary, 2008).

ΠŸΡƒΠ±Π»ΠΈΠΊΠ°Ρ†ΠΈΠΈ. По ΠΌΠ°Ρ‚Π΅Ρ€ΠΈΠ°Π»Π°ΠΌ исслСдований ΠΎΠΏΡƒΠ±Π»ΠΈΠΊΠΎΠ²Π°Π½ΠΎ 17 Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚, Π² Ρ‚ΠΎΠΌ числС 4 ΡΡ‚Π°Ρ‚ΡŒΠΈ Π² ΠΌΠ΅ΠΆΠ΄ΡƒΠ½Π°Ρ€ΠΎΠ΄Π½Ρ‹Ρ… ΠΈ ΠΎΡ‚СчСствСнных ΠΆΡƒΡ€Π½Π°Π»Π°Ρ… ΠΈ 13 тСзисов Π½Π°ΡƒΡ‡Π½Ρ‹Ρ… ΠΊΠΎΠ½Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΠΉ.

ОбъСм ΠΈ ΡΡ‚Ρ€ΡƒΠΊΡ‚ΡƒΡ€Π° Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹. ДиссСртационная Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π° состоит ΠΈΠ· Π²Π²Π΅Π΄Π΅Π½ΠΈΡ, ΠΎΠ±Π·ΠΎΡ€Π° Π»ΠΈΡ‚Π΅Ρ€Π°Ρ‚ΡƒΡ€Ρ‹, ΡΠΊΡΠΏΠ΅Ρ€ΠΈΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠΉ части, обсуТдСния Ρ€Π΅Π·ΡƒΠ»ΡŒΡ‚Π°Ρ‚ΠΎΠ², Π²Ρ‹Π²ΠΎΠ΄ΠΎΠ² ΠΈ ΡΠΏΠΈΡΠΊΠ° Ρ†ΠΈΡ‚ΠΈΡ€ΡƒΠ΅ΠΌΠΎΠΉ Π»ΠΈΡ‚Π΅Ρ€Π°Ρ‚ΡƒΡ€Ρ‹ (165 Π½Π°ΠΈΠΌΠ΅Π½ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠΉ). Π Π°Π±ΠΎΡ‚Π° ΠΈΠ·Π»ΠΎΠΆΠ΅Π½Π° Π½Π° 130 страницах ΠΈ ΡΠΎΠ΄Π΅Ρ€ΠΆΠΈΡ‚ 46 рисунков ΠΈ 8 Ρ‚Π°Π±Π»ΠΈΡ†.

Π²Ρ‹Π²ΠΎΠ΄Ρ‹.

1. Π Π°Π·Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π°Π½Ρ‹ ΡΡ‚Π°Π±ΠΈΠ»ΡŒΠ½Ρ‹Π΅ ΠΈ Π²ΠΎΡΠΏΡ€ΠΎΠΈΠ·Π²ΠΎΠ΄ΠΈΠΌΡ‹Π΅ элСктроды, экранированныС Ρ‚ΠΎΠ½ΠΊΠΈΠΌ слоСм органичСского растворитСля. БистСмы ΠΎΠ±Π»Π°Π΄Π°Π»ΠΈ Ρ‡ΡƒΠ²ΡΡ‚Π²ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΡŒΡŽ ΠΊ ΠΊΠΎΠ½Ρ†Π΅Π½Ρ‚Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΈ ΠΏΡ€ΠΈΡ€ΠΎΠ΄Π΅ рСдокс-Π½Π΅Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹Ρ… ΠΈΠΎΠ½ΠΎΠ², Ρ‡Ρ‚ΠΎ обуславливало ΠΈΡ… ΠΏΡ€ΠΈΠΌΠ΅Π½ΠΈΠΌΠΎΡΡ‚ΡŒ для рСгистрации Π±ΠΈΠΎΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€ΠΎΠ².

2. Π‘ΠΎΠ·Π΄Π°Π½ Π±Π΅Π·Ρ€Π΅Π°Π³Π΅Π½Ρ‚Π½Ρ‹ΠΉ элСктрохимичСский Π”ΠΠš-сСнсор с ΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»ΠΎΠΌ обнаруТСния ΠΎ Π― 7.

1−10' M ΠΈ Π»ΠΈΠ½Π΅ΠΉΠ½Ρ‹ΠΌ Π΄ΠΈΠ°ΠΏΠ°Π·ΠΎΠ½ΠΎΠΌ 1−10″ -5−10″ М. БСнсор ΠΎΠ±Π»Π°Π΄Π°Π» высокой ΡΠ΅Π»Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒΡŽ, ΠΏΠΎΠ·Π²ΠΎΠ»ΡΡŽΡ‰Π΅ΠΉ Π·Π°Ρ€Π΅Π³ΠΈΡΡ‚Ρ€ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Ρ‚ΡŒ Ρ‚ΠΎΡ‡Π΅Ρ‡Π½ΡƒΡŽ ΠΌΡƒΡ‚Π°Ρ†ΠΈΡŽ. По ΡΠ²ΠΎΠΈΠΌ аналитичСским характСристикам Ρ€Π°Π·Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π°Π½Π½Ρ‹ΠΉ Π”ΠΠš-сСнсор прСвосходил Π΄Π°Ρ‚Ρ‡ΠΈΠΊΠΈ Π½Π° ΠΎΡΠ½ΠΎΠ²Π΅ повСрхностного ΠΏΠ»Π°Π·ΠΌΠΎΠ½Π½ΠΎΠ³ΠΎ рСзонанса ΠΈ ΠΊΠ²Π°Ρ€Ρ†Π΅Π²Ρ‹Ρ… микровСсов.

3. ЗарСгистрирована ΡΠ»Π΅ΠΊΡ‚Ρ€ΠΎΠ°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ², Π½Π΅ ΡΠΎΠ΄Π΅Ρ€ΠΆΠ°Ρ‰ΠΈΡ… рСдокс-Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹Ρ… Π³Ρ€ΡƒΠΏΠΏ. Показано, Ρ‡Ρ‚ΠΎ наблюдаСмая ΡΠ»Π΅ΠΊΡ‚Ρ€ΠΎΠ°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ являСтся Ρ€Π΅Π·ΡƒΠ»ΡŒΡ‚Π°Ρ‚ΠΎΠΌ экстракции Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ² Π² ΠΎΡ€Π³Π°Π½ΠΈΡ‡Π΅ΡΠΊΠΈΠΉ Ρ€Π°ΡΡ‚Π²ΠΎΡ€ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒ. Π§ΡƒΠ²ΡΡ‚Π²ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΡŒ ΠΏΡ€ΠΈ рСгистрации Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ² достигала 5 A/M, Π° ΡΠ΅Π»Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»ΡΠ»Π°ΡΡŒ ΡΠΏΠ΅Ρ†ΠΈΡ„ΠΈΡ‡Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒΡŽ ΠΈΡ… ΡΠΊΡΡ‚Ρ€Π°ΠΊΡ†ΠΈΠΈ.

4. ΠŸΡ€Π΅Π΄Π»ΠΎΠΆΠ΅Π½ Π½ΠΎΠ²Ρ‹ΠΉ ΠΏΠΎΠ΄Ρ…ΠΎΠ΄ для рСгистрации образования Π°Ρ„Ρ„ΠΈΠ½Π½ΠΎΠ³ΠΎ комплСкса, основанный Π½Π° ΠΌΠΎΠ΄ΠΈΡ„ΠΈΠΊΠ°Ρ†ΠΈΠΈ элСктрода ΠΏΠΎΠΊΡ€Ρ‹Ρ‚ΠΈΠ΅ΠΌ с ΡΠΈΡΡ‚Π΅ΠΌΠΎΠΉ Π½Π°Π½ΠΎΡ€Π°Π·ΠΌΠ΅Ρ€Π½Ρ‹Ρ… ΠΏΠΎΡ€. Π‘ ΠΈΡΠΏΠΎΠ»ΡŒΠ·ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ΠΌ этого ΠΏΠΎΠ΄Ρ…ΠΎΠ΄Π° создан аптасСнсор Π½Π° Ρ‚Ρ€ΠΎΠΌΠ±ΠΈΠ½.

5. Показано ΡƒΠ²Π΅Π»ΠΈΡ‡Π΅Π½ΠΈΠ΅ эффСктивности прямого биоэлСктрокатализа Π¦Π”Π“ Π·Π° ΡΡ‡Π΅Ρ‚ ΠΌΠΎΠ΄ΠΈΡ„ΠΈΠΊΠ°Ρ†ΠΈΠΈ повСрхности элСктрода элСктроактивным ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€ΠΎΠΌ, Π½Π°Π½ΠΎΡ‚Ρ€ΡƒΠ±ΠΊΠ°ΠΌΠΈ ΠΈ ΠΈΡ… ΠΊΠΎΠΌΠΏΠΎΠ·ΠΈΡ‚ΠΎΠΌ. ΠŸΡ€ΠΈ этом достигнуты Π² 5 Ρ€Π°Π· Π±ΠΎΠ»Π΅Π΅ высокиС Ρ‚ΠΎΠΊΠΈ окислСния субстрата ΠΏΡ€ΠΈ ΡƒΠΌΠ΅Π½ΡŒΡˆΠ΅Π½ΠΈΠΈ ΠΏΠΎΡ‚Π΅Π½Ρ†ΠΈΠ°Π»Π° Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‡Π΅Π³ΠΎ элСктрода Π΄ΠΎ 0 ΠΌΠ’. Показана Π±ΠΎΠ»Π΅Π΅ высокая опСрационная ΡΡ‚Π°Π±ΠΈΠ»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΡŒ Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π½Ρ‹Ρ… элСктродов Π½Π° ΠΎΡΠ½ΠΎΠ²Π΅ ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠ°Π½ΠΈΠ»ΠΈΠ½Π°. ΠŸΡ€ΠΎΠ΄Π΅ΠΌΠΎΠ½ΡΡ‚Ρ€ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π° Π²ΠΎΠ·ΠΌΠΎΠΆΠ½ΠΎΡΡ‚ΡŒ использования биосСнсора Π½Π° ΠΎΡΠ½ΠΎΠ²Π΅ Π¦Π”Π“ для Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ·Π° Π»Π°ΠΊΡ‚ΠΎΠ·Ρ‹ Π² Ρ€Π΅Π°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… ΠΎΠ±ΡŠΠ΅ΠΊΡ‚Π°Ρ….

ΠŸΠΎΠΊΠ°Π·Π°Ρ‚ΡŒ вСсь тСкст

Бписок Π»ΠΈΡ‚Π΅Ρ€Π°Ρ‚ΡƒΡ€Ρ‹

  1. Π­. Π’Π΅Ρ€Π½Π΅Ρ€, БиосСнсоры: основы ΠΈ ΠΏΡ€ΠΈΠ»ΠΎΠΆΠ΅Π½ΠΈΡ, ed. Π­. Π’Π΅Ρ€Π½Π΅Ρ€, И. ΠšΠ°Ρ€ΡƒΠ±Π΅ ΠΈ Π”. Уилсон. 1992, М.: ΠœΠΈΡ€.
  2. D.R. Thevenot, К. Toth, R.A. Durst, G.S. Wilson. Electrochemical biosensors: recommended definitions and classification // Pure and Applied Chemistry. -1999.-V.17(12).-P.2333.
  3. S.M. Borisov, O.S. Wolfbeis. Optical biosensors // Chemical Review. -2008.-V. 108(2).-P.423.
  4. A.A. Karyakin, Encyclopedia of sensors. Biosensors based on conductive polymers and electroactivepolycrystals.. 2006: Am. Sei. Publ. 329−351.
  5. M.A. Cooper, V.T. Singleton. A survey of the 2001 to 2005 quartz crystal microbalance biosensor literature: applications of acoustic physics to the analysis of biomolecular interactions // Journal of molecular recognition. -2007.-V.20.-P. 154.
  6. K. Lange, B.E. Rapp, M. Rapp. Surface acoustic wave biosensors: a review // Analytical and bioanalytical chemistry. -2008.-V.391.-P.1509.
  7. J. Fritz. Cantilever biosensors // Analyst. -2008.-V.133.-P.855.
  8. A. Heller, B. Feldman. Electrochemical glucose sensors and their applications in diabetes management // Chemical review. -2008.-V.108.-P.2482−2505.
  9. N. Nikolaus, Π’. Strehlitz. Amperometric lactate biosensors and their application in (sports) medicine, for life quality and wellbeing // Microchim Acta. -2008.-V.160.-P. 1555.
  10. T.M.-H. Lee. Over-the-counter biosensors: past, present, and future // Sensors. -2008.-V.8.-P.5535.
  11. D. Hernandez-Santos, M. Diaz-Gonzalez, M.B. Gonzalez-Garcia, A. Costa-Garcia. Enzymatic genosensor on streptavidin-modifled screen-printed carbon electrodes // Analytical chemistry. -2004.-V.76(23).-P.6887.
  12. N.C. Tansil, H. Xie, F. Xie, Z. Gao. Direct detection of DNA with an electrocatalytic threading intercalator// Analytical chemistry. -2005.-V.77.-P.126−134.
  13. M. Steichen, C. Buess-Herman. Electrochemical detection of the immobilization and hybridization of unlabeled linear and hairpin DNA on gold // Electrochemistry Communications. -2005.-V.7.-P.416−420.
  14. V. Laitala, A. Ylikoski, H.-M. Raussi, P. Ollikka, I. Hemmila. Time-resolved detection probe for homogeneous nucleic acid analyses in one-step format // Analitical biochemistry. -2007.-V.361 .-P. 126.
  15. M.T. Castaneda, A. Merkocui, M. Pumera, S. Alegret. Electrochemical genosensors for biomedical applications based on gold nanoparticles // Biosensors & bioelectronics. -2007.-V.22.-P. 1961.
  16. H. Cai, Y.Q. Wang, P.G. He, Y.H. Fang. Electrochemical detection of DNA hybridization based on silver-enhanced gold nanoparticle label // Analytica chimica acta. -2002.-V.469.-P.165.
  17. X.C. Zhou, L.Q. Huang, S.F.Y. Li. Microgravimetric DNA sensor based on quartz crystal microbalance: comparison of oligonucleotide immobilization methods and the application in genetic diagnosis // Biosensors and bioelectronics. -2001.-V.16.-P.85.
  18. F. Azek, C. Grossiord, M. Joannes, B. Limoges, P. Brossier. Hybridization assay at a disposable electrochemical biosensor for the attomole detection of amplified human cytomegalovirus DNA // Analitical biochemistry. -2000.-V.284.-P. 107.
  19. J. Wang, G. Rivas, J.R. Femandes, J.L.L. Paz, M. Jiang, R. Waymire. Indicator-free electrochemical DNA hybridization biosensor // Analytica chimica acta. -1998.-V.375.-P.197.
  20. T.M. Heme, M.J. Tarlov. Characterization of DNA probes immobilized on gold surfaces //J. Am. Chem. Soc. -1997.-V.119.-P.8916−8920.
  21. D.-H. Jung, B.H. Kim, Y.K. Ko, M.S. Jung, S.K. Jung, S.Y. Lee, H.-T. Jung. Covalent attachment and hybridization of DNA oligonucleotides on patterned single-walled carbon nanotube films // Langmuir. -2004.-V.20.-P.8886.
  22. H. Gu, X.D. Su, K.P. Loll. Electrochemical Impedance Sensing of DNA Hybridization on Conducting Polymer Film-Modified Diamond // The journal of physical chemistry B. -2005.-V.109.-P.13 611.
  23. Y.-D. Zhao, D.-W. Pang, S. Hu, Z.-L. Wang, J.-K. Cheng, H.-P. Dai. DNA-modified electrodes- part 4: optimization of covalent immobilization of DNA on self-assembled monolayers // Talanta. -1999.-V.49.-P.751.
  24. B.P. Corgier, C.A. Marquette, L. Blum. Direct electrochemical addressing of immunoglobulins: Immuno-chip on screen-printed microarray // Biosensors and bioelectronics. -2007.-V.22.-P. 1522.
  25. S. Cosnier. Biomolecule immobilization on electrode surfaces by entrapment or attachment to electrochemically polymerized films. A review // Biosensors and bioelectronics. -1999.-V.14.-P.443.
  26. H. KorriYoussoufi, F. Gamier, P. Srivastava, P. Godillot, A. Yassar. Toward bioelectronics: Specific DNA recognition based on an oligonucleotide-functionalized polypyrrole // JACS. -1997.-V.119(31).-P.7388.
  27. A. Ramanaviciene, A. Ramanavicius. Pulsed amperometric detection of DNA with an ssDNA/polypyrrole-modified electrode // Analytical and bioanalytical chemistry. -2004.-V.79(2).-P.287.
  28. C.D. Riccardi, H. Yamanaka, M. Josowicz, J. Kowalik, B. Mizaikoff, C. Kranz. Labelfree DNA detection based on modified conducting polypyrrole films at microelectrodes // Analytical chemistry. -2006.-V.78 (4).-P.1139.
  29. F. Davis, A.V. Nabok, S.P.J. Higson. Species differentiation by DNA-modified carbon electrodes using an ac impedimetric approach // Biosensors and bioelectronics. -2005.-V.20.-P.1531.
  30. K. Krishnamoorthy, R.S. Gokhale, A.Q. Contractor, A. Kumar. Novel label-free DNA sensors based on poly (3,4-ethylenedioxythiophene) // Chemical communications. -2004.-V.7.-P.820.
  31. A. Dupont-Filliard, A. Roget, T. Livache, M. Billon. Reversible oligonucleotide immobilisation based on biotinylated polypyrrole film // Analytica chimica acta. -2001.-V.449.-P.45.
  32. J. Homola. Surface plasmon resonance sensors for detection of chemical and biological species // Chemistry review. -2008.-V.108.-P.462.
  33. V. Silin, A. Plant. Biotechnological applications of surface plasmon resonance // Trends Biotechnol. -1997.-V.15(9).-P.353−359.
  34. A. Otto. Excitation of nonradiative surface plasma waves in silver by method of frustrated total reflection // Zeitschrift fur physik. -1968.-V.216.-P.398.
  35. C.K. O’Sullivan, G.G. Guilbault. Commercial quartz crystal microbalances theory and applications // Biosensors and bioelectronics. -1999.-V.14(8−9).-P.663.
  36. K.A. Marx. Quartz crystal microbalance: A useful tool for studying thin polymer films and complex biomolecular systems at the solution-surface interface // Biomacromolecules. -2003.-V.4(5).-P.1099.
  37. S. Bruckenstein, M. Shay. Experimental aspects of use of the quartz crystal microbalance in solution // Electrochimica acta. -1985.-V.30(10).-P.1295.
  38. J. Rickert, A. Brecht, W. Gopal. QCM operation in liquids: Constant sensitivity during formation of extended protein multilayers by affinity // Analytical chemistry. -1997.-V.69(7).-P.1441.
  39. H. Matsuura, F. Mizutani, Y. Hasebe, S. Uchiyama. Study on a highly sensitive determination method for protein in aqueous solution using a quartz-crystal microbalance // Bunseki kagaku. -2001.-V.50(12).-P.903.
  40. F. Patolsky, A. Lichtenstein, I. Willner. Amplified microgravimetric quartz-crystal-microbalance assay of DNA using oligonucleotide-functionalized liposomes or biotinylated liposomes // JACS. -2000.-V.122.-P.418.
  41. I. Willner, F, Patolsky, Y. Weizmann, B. Willner. Amplified detection of single-base* mismatches in DNA using microgravimetric quartz-crystal-microbalance transduction // Talanta. -2002.-V.56.-P.847.
  42. X.L. Mao, L.J. Yang, X.L. Su, Y.B. Li. A nanoparticle amplification based quartz crystal microbalance DNA sensor for detection of Escherichia coli 0157: H7 // Biosensors and bioelectronics. -2006.-V.21.-P.1178.
  43. E. Kim, K. Kim, H. Yang, Y.T. Kim, J. Kwak. Enzyme-amplified electrochemical detection of DNA using electrocatalysis of ferrocenyl-tethered dendrimer // Analytical chemistry.-2003.-V.75(21).-P.5665.
  44. E. Palecek, S. Billova, L. Havran, R. Kizek, A. Miculkova, F. Jelen. DNA hybridization at microbeads with cathodic stripping voltammetric detection // Talanta. -2002.-V.56(5).-P.919.
  45. J. Wang. Nanoparticle-based electrochemical DNA detection // Analytica chimica acta. -2003.-V.500(l-2).-P.247.
  46. E. Palecek. Oscillographic polarography of highly polymerized deoxyribonucleic acid // Nature.-1960.-V.188.-P.656.
  47. G. Chiti, G. Marrazza, M. Mascini. Electrochemical DNA biosensor for environmental monitoring // Analytica chimica acta. -2001.-V.427(2).-P.155.
  48. F. Lucarelli, A. Kicela, I. Palchetti, G. Marrazza, M. Mascini. Electrochemical DNA biosensor for analysis of wastewater samples // Bioelectrochemistry. -2002.-V.58(l).-P.113.
  49. J. Wang, A.J. Bard. Monitoring DNA Immobilization and Hybridization on Surfaces by Atomic Force Microscopy Force Measurements // Anal. Chem. -2001.-V.73.-P.2207−2212.
  50. K. Kerman, Y. Morita, Y. Takamura, E. Tamiya. Label-free electrochemical detection of DNA hybridization on gold electrode // Electrochemistry communications. -2003.-V.5.-P.887.
  51. K. Kerman, D. Ozkan, P. Kara, A. Erdem, B. Meric, P.E. Nielsen, M. Ozsoz. Label-free bioelectronic detection of point mutation by using peptide nucleic acid probe // Electroanalysis. -2003.-V.25(7).-P.667.
  52. M. Vestergaard, K. Kerman, E. Tamiya. An overview of label-free electrochemical protein sensors // Sensors. -2007.-V.7.-P.3442.
  53. F.A. Armstrong, Bioelectrochemisrty, ed. G.S. Wilson. 2002: Wiley-VCH: Weinheim. 11−29.
  54. M. Tomschik, L. Havran, M. Fojta, E. Palecek. Constant current chronopotentiometric stripping analysis of bioactive peptides at mercury and carbon Electrodes. // Electroanalysis. -1988.-V. 10.-P.403.
  55. J.A. Reynaud, B. Malfoy, A. Bere. The electrochemical oxidation of three proteins: RNAase A, bovine serum albumin and concanavalin A at solid electrodes // Journal of electroanalytical chemistry. -1980.-V.116.-P.595.
  56. V. Brabec, I. Schindlerova. Electrochemical behaviour of proteins at graphite electrodes. // Bioelectrochemistry and bioenergetics. -1981.-V.8.-P.451.
  57. K. Kerman, M. Vestergaard, M. Chikae, S. Yamamura, E. Tamiya. Label-free electrochemical detection of phosphorylated and non-phosphorylated forms of peptides based on tyrosine oxidation. // Electrochemistry communications. -2007.-V.9.-P.976.
  58. M. Vestergaard, K. Kerman, M. Saito, N. Nagatani, Y. Takamura, E. Tamiya. A rapid label-free electrochemical detection and kinetic study of alzheimer’s amyloid beta aggregation //JACS. -2005.-V.127.-P.11 892.
  59. E. Souteyrand, J.P. Cloarec, J.R. Martin, C. Wilson, I. Lawrence, S. Mikkelsen, M.F. Lawrence. Direct detection of the hybridization of synthetic homo-oligomer DNA sequences by field effect // The journal of physical chemistry B. -1997.-V.101.-P.2980.
  60. B. Pejcic, R. De Marco. Impedance spectroscopy: Over 35 years of electrochemical sensor optimization // Electrochimica Acta. -2006.-V.51.-P.6217.
  61. C. Gautier, C. Cougnon, J.F. Pilard, N. Casse. Label-free detection of DNA hybridization based on EIS investigation of conducting properties of fiinctionalized polythiophene matrix // Journal of electroanalytical chemistry. -2006.-V.587.-P.276.
  62. J. Travas-Sejdic, H. Peng, P.A. Kilmartin, M.B. Cannell, G.A. Bowmaker, R.P. Cooney, C. Soeller. Label-free electrochemical DNA sensor based on functionalised conducting copolymer // Synthetic metals. -2005.-V.152.-P.37.
  63. Y. Fu, R. Yuan, Y. Chai, L. Zhou, Y. Zhang. Coupling of a Reagentless Electrochemical DNA Biosensor with Conducting Polymer Film and Nanocomposite as Matrices for the Detection of the HIV DNA Sequences // Analytical letters. -2006.-V.39.-P.467.
  64. Z. Li, Y. Chen, X. Li, T.I. Kamins, K. Nauka, R.S. Williams. Sequence-specific labelfree DNA sensors based on silicon nanowires // Nano Letters. -2004.-V.4.-P.245.
  65. Z. Gao, A. Agarwal, A. Trigg, N. Singh, C. Fang, C.-H. Tung, Y. Fan, K.D. Buddharaju, J. Kong. Silicon Nanowire Arrays for Label-Free Detection of DNA // Analytical chemistry.-2007.-V.79.-P.3291.
  66. W. Nernst. Uber die loslichkeit von mischkrystallen // Z.Phys.Chem. -1892.-V.9.-P.137−140.
  67. V.E. Baur. Ein modell des elektrischen organs der fische // Zeitschrift fur elektrochemie. -1913.-V. 19.-P.590−592.
  68. J. Koryta, P. Vanysek, M. Brezina. Electrolysis with an electrolyte dropping electrode // J. Electroanal. Chem. -1976.-V.67(2).-P.263.
  69. Z. Samec. Electrochemistry at the interface between two immiscible electrolyte solutions (IUPAC Technical Raport) // Pure Appl. Chem. -2004.-V.76(12).-P.2147−2180.
  70. M.A. Leich, G.L. Richmond. Recent experimental advances in studies of liquid/liquid interfaces // Faraday Discuss. -2005.-V.129.-P.1−21.
  71. J.M. Kovaleski, M.J. Wirth. Lateral diffusion of acridine orange at liquid hydrocarbon/water interfaces // J. Phys. Chem. -1995.-V.99.-P.4091−4095.
  72. G.M. Luo, S. Malkova, S.V. Pingali, D.G. Schultz, B.H. Lin, M. Meron, I. Benjamin, P. Vanysek, M.L. Schlossman. Structure of the interface between two polar liquids: Nitrobenzene and water // Journal of physical chemistry B. -2006.-V.110(10).-P.4527.
  73. T. Kakiuchi. Limiting behavior in equilibrium partitioning of ionic components in liquidliquid two-phase systems // Analytical chemistry. -1996.-V.68(20).-P.3658−3664.
  74. F. Reymond, D. Fermin, H.J. Lee, H.H. Girault. Electrochemistry at liquid/liquid interfaces: methodology and potential applications // Electrochimica acta. -2000.-V.45(15−16).-P.2647.
  75. A.N. Frumkin. // Dokl. Acad. Nauk SSSR. -1952.-V.85.-P.373.
  76. T. Kakiuchi, T. Kondo, M. Kotani, M. Senda. Ion permeability of dilauroylphosphatidylethanolamine monolayer at the polarized nitrobenzene/water interface // Langmuir. -1992.-V.8(1).-P.169−175.
  77. J.A. Manzanares, R.M. Allen, K. Kontturi. Enhanced ion transfer rate due to the presence of zwitterionic phospholipid monolayers at the ITIES // J. Electroanal. Chem. -2000.-V.483(l-2).-P.188−196."
  78. T. Kakiuchi. Potential-dependent adsorption and partitioning of ionic components at a liquid liquid interface // J. Electroanal. Chem. -2000.-V.496(l-2).-P.137−142.'.
  79. R.A. Iglesias, S.A. Dassie, A.M. Baruzzi. Adsorption of phenosafranin at the water vertical bar 1,2-DCE interface: a voltammetric approach // J. Electroanal. Chem. -2000.-V.483(l-2).-P.157−162.
  80. G.P. Luis, M.J. ValenciaGonzalez, M.E. DiazGarcia. Enzymes in reverse micellar media // Anales de quimica. -1996.-V.92(5).-P.312−319.
  81. T.K. De, A. Maitra. Solution behaviour of Aerosol OT in non-polar solvents // Adv. Colloid Interface Sci. -1995.-V.59.-P.95−193.
  82. B.A. Andrews, D.L. Pyle, J.A. Asenjo. The effects of pH and ionic strength on the partitioning of four proteins in reverse micelle systems // Biotechnol. Bioeng. -1994.-V.43.-P. 1052−1058.
  83. A. Shioi, M. Harada, H. Takahashi, M. Adachi. Protein Extraction in a Tailored Reversed Micellar System Containing Nonionic Surfactants // Langmuir. -1997.-V.13.-P.609−619.
  84. V.M. Paradkar, J.S. Dordick. Mechanism of extraction of chymotrypsin into isooctane at very-low concentrations of aerosol ot in the absence of reversed micelles // Biotechnol. Bioeng. -1994.-V.43(6).-P.529−540.
  85. B.D. Kelley, D.I.C. Wang, T.A. Hatton. Affinity-based reversed micellar protein extraction: II. Effect of cosurfactant tail length // Biotechnol. Bioeng. -1993.-V.42.-P.1209−1217.
  86. B.D. Kelley, D.I.C. Wang, T.A. Hatton. Affinity-based reversed micellar protein extraction: I. Principles and protein-ligand systems // Biotechol. Bioeng. -1993.-V.42.-P.l 199−1208.
  87. J.M. Woll, T.A. Hatton, M.L. Yarmush. Bioaffinity separations using reversed micellar extraction // Biotechnol. Prog. -1989.-V.5(2).-P.57−62.
  88. A.J. Storm, C. Storm, J. Chen, H. Zandbergen, J.-F. Joanny, C. Dekker. Fast DNA Translocation through a Solid-State Nanopore 11 Nano letters. -2005.-V.5(7).-P.l 1 931 197.
  89. J. Niedziolka, E. Rozniecka, J. Chen, M. Opallo. Changing the direction of ion transfer across o-nitrophenyloctyletherjwater interface coupled to electrochemical redox reaction // Electrochemistry Communications. -2006.-V.8.-P.917−921.
  90. S. Amemiya, X. Yang, T.L. Wazenegger. Voltammetry of the phase transfer of polypeptide protamines across polarized liquid/liquid interfaces // J. Am. Chem. Soc. -2003.-V.125.-P.11 832.
  91. A.A. Karyakin, M.Y. Vagin, S.Z. Ozkan, G.P. Karpachova. Thermodynamics of ion transfer across the liquidjliquid interface at a solid electrode shielded with a thin layer of organic solvent // Journal of physical chemistry B. -2004.-V.108.-P.11 591.
  92. M. Shinshi, Π’. Sugihara, Π’. Osakai, М. Goto. Electrochemical Extraction of Proteins by Reverse Micelle Formation // Langmuir. -2006.-V.22.-P.5937−5944.
  93. L.C. Clark, C. Lyons. Electrode system for continous monitoring in cardiovascular surgery // Ann. NY Acad. Sci. -1962.-V.102:-P.29.
  94. K.P. Volkl, N. Opitz, D.W. Lubbers. Continuous measurement of concentrations of alcohol using a fluorescence-photometric enzymatic method // Fresenius zeitschrift fur analytische chemie. -1980.-V.301(2).-P.162.
  95. S.R. Betso, M.H. Klapper, L.B. Anderson. Electrochemical studies of heme proteins. Coulometric, polarographic and combined spectroelectrochemical methods for reduction of the heme prostetic group in cytochrome с // JACS. -1972.-V.94.-P.8197.
  96. M.J. Eddowes, H.A.O. Hill. A novel method for investigation of the electrochemistry of metalloproteins: cytochrome с // Journal of the chemical society-chemical communications. -1977.-V.21.-P.771.
  97. P.M. Allen, H. Allen, O. Hill, N.J. Walton. Surface modifiers for the promotion of direct electrochemistry of cytochrome с // J. Electroanal. Chem. -1984.-V.178.-P.69−86.
  98. L. Gorton, A. Lindgren, T. Larsson, F.D. Munteanu, T. Ruzgas, I. Gazaryan. Direct electron transfer between heme-containing enzymes and electrodes as basis for third generation biosensors // Analytica chimica acta. -1999.-V.400.-P.91.
  99. H.A.O. Hill, N.J. Walton, I.J. Higgins. Electrochemical reduction of dioxygen using a terminal oxidase // FEBS Letters. -1981.-V.126.-P.282.
  100. И.Π’. Π‘Π΅Ρ€Π΅Π·ΠΈΠ½, Π’. А. Богдановская, Π‘. Π”. Π’Π°Ρ€Ρ„ΠΎΠ»ΠΎΠΌΠ΅Π΅Π², М. Π . ВарасСвич, А. И. Π―Ρ€ΠΎΠΏΠΎΠ»ΠΎΠ², БиоэлСктрокатализ. РавновСсный кислородный ΠΏΠΎΡ‚Π΅Π½Ρ†ΠΈΠ°Π» Π² ΠΏΡ€ΠΈΡΡƒΡ‚ствии Π»Π°ΠΊΠΊΠ°Π·Ρ‹. //Π”ΠΎΠΊΠ». АН Π‘Π‘Π‘Π . -1978.-V.240.-P.615.
  101. I.V. Berezin, S.D. Varfolomeev, M.V. Lomonosov. Principles of bioelectrocatalysis // Enzyme Eng. -1980.-V.5.-P.95−100.
  102. М.Π . ВарасСвич, B.A. Богдановская, Π’.Π‘.Π‘. (Ρ€Π΅Π΄.). БиоэлСктрокатализ. Π€Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Ρ‹ ΠΊΠ°ΠΊ ΠΊΠ°Ρ‚Π°Π»ΠΈΠ·Π°Ρ‚ΠΎΡ€Ρ‹ элСктрохимичСских Ρ€Π΅Π°ΠΊΡ†ΠΈΠΉ. Π’: ΠŸΡ€ΠΎΠ±Π»Π΅ΠΌΡ‹ элСктрокатализа. // Москва, Наука. -1980.-Π .234−67.
  103. S. Shleev, A. Jarosz-Wilkolazka, A. Khalunina, О. Morozova, A. Yaropolov, Π’. Ruzgas, L. Gorton. Direct electron transfer reactions of laccases from different origins on carbon electrodes // Bioelectrochemistry. -2005.-V.67(l).-P.l 15.
  104. S. Tsujimura, Π’. Nakagawa, К. Капо, Π’. Ikeda. Kinetic study of direct bioelectrocatalysis of dioxygen reduction with bilirubin oxidase at carbon electrodes // Electrochemistry. -2004.-V.72(6).-P.437.
  105. S. Shleev, J. Tkac, A. Christenson, T. Ruzgas, A.I. Yaropolov, J.W. Whittaker, L. Gorton. Direct electron transfer between copper-containing proteins and electrodes // Biosensors and bioelectronics. -2005.-V.20(12).-P.2517.
  106. А.И. Π―Ρ€ΠΎΠΏΠΎΠ»ΠΎΠ², Π’. Маловик, Π‘. Π”. Π’Π°Ρ€Ρ„ΠΎΠ»ΠΎΠΌΠ΅Π΅Π², И. Π’. Π‘Π΅Ρ€Π΅Π·ΠΈΠ½. ЭлСктровосстановлСниС пСроксида Π²ΠΎΠ΄ΠΎΡ€ΠΎΠ΄Π° Π½Π° ΡΠ»Π΅ΠΊΡ‚Ρ€ΠΎΠ΄Π΅ с ΠΈΠΌΠΌΠΎΠ±ΠΈΠ»ΠΈΠ·ΠΎΠ²Π°Π½Π½ΠΎΠΉ пСроксидазой // Π”ΠΎΠΊΠ». АН Π‘Π‘Π‘Π . -1979.-V.249.-P.1399−401.
  107. А.И. Π―Ρ€ΠΎΠΏΠΎΠ»ΠΎΠ², А. А. ΠšΠ°Ρ€ΡΠΊΠΈΠ½, Π‘. Π”. Π’Π°Ρ€Ρ„ΠΎΠ»ΠΎΠΌΠ΅Π΅Π². БиоэлСктрокатализ Ρ„Π΅Π½ΠΎΠΌΠ΅Π½ ускорСния Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°ΠΌΠΈ элСктродных процСссов // ВСстник ΠœΠ“Π£. -1983.-V.24.-P.523−35.
  108. А.И. Π―Ρ€ΠΎΠΏΠΎΠ»ΠΎΠ², А. А. ΠšΠ°Ρ€ΡΠΊΠΈΠ½, И. Н. Π“ΠΎΠ³ΠΎΡ‚ΠΎΠ², Н. А. Π—ΠΎΡ€ΠΈΠ½, Π‘. Π”. Π’Π°Ρ€Ρ„ΠΎΠ»ΠΎΠΌΠ΅Π΅Π², И.Π’. β€’ Π‘Π΅Ρ€Π΅Π·ΠΈΠ½. БиоэлСктрокатализ. ΠœΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌ окислСния молСкулярного Π²ΠΎΠ΄ΠΎΡ€ΠΎΠ΄Π° наэлСктродС с ΠΈΠΌΠΌΠΎΠ±ΠΈΠ»ΠΈΠ·ΠΎΠ²Π°Π½Π½ΠΎΠΉ Π³ΠΈΠ΄Ρ€ΠΎΠ³Π΅Π½Π°Π·ΠΎΠΉ // Π”ΠΎΠΊΠ». АН Π‘Π‘Π‘Π . -1984.-V.274.-Π . 1434−7.
  109. A.I. Yaropolov, A.A. Karyakin, S.D. Varfolomeyev, I.V. Berezin. Mechanism of H2-electrooxidation with immobilized hydrogenase // Bioelectrochem. Bioenerg. -1984.-V.12.-P.267−77.
  110. A.A. Karyakin, S.V. Morozov, O.G. Voronin, N.A. Zorin, V.V. Perelygin, S. Cosnier. The limiting performance characteristics in bioelectrocatalysis of hydrogenase enzymes // Angewandte chemie-international edition. -2007.-V.46(38).-P.7244.
  111. A.A. Karyakin, S.V. Morozov, E.E. Karyakina, N.A. Zorin, V.V. Perelygin, S. Cosnier. Hydrogenase electrodes for fuel cells // Biochemical society transactions. -2005.-V.33.-P.73.
  112. C.X. Cai, J. Chen. Direct electron transfer of glucose oxidase promoted by carbon nanotubes // Analytical biochemistry. -2004.-V.332(l).-P.75.
  113. A. Guiseppi-Elie, C.H. Lei, R.H. Baughman. Direct electron transfer of glucose oxidase on carbon nanotubes //Nanotechnology. -2002.-V.13(5).-P.559.
  114. M.L. Yang, J. Wang, H.Q. Li, J.G. Zheng, N.Q.N. Wu. A lactate electrochemical biosensor with a titanate nanotube as direct electron transfer promoter // Nanotechnology. -2008.-V. 19(7).-P.article number 75 502.
  115. S. Zhao, K. Zhang, Y. Bai, W.W. Yang, C.Q. Sun. Glucose oxidase/colloidal gold nanoparticles immobilized in Nafion film on glassy carbon electrode: Direct electron transfer and electrocatalysis // Bioelectrochemistry. -2006.-V.69(2).-P.158.
  116. F. Palmisano, P.G. Zambonin, D. Centonze. Amperometric biosensors based on electrosynthesised polymeric films // Fresenius J. Anal. Chem. -2000.-V.366.-P.586−601.
  117. B.A. Gregg, A. Heller. Cross-linked redox gels containing glucose oxidase for amperometric biosensor applications // Analytical chemistry. -1990.-V.62.-P.258−263.
  118. P.D. Hale, T. Inagaki, H.I. Karan, Y. Okamoto, T.A. Skotheim. A new class of amperometric biosensor incorporating a polymeric electron-transfer mediator // J. Am. Chem. Soc. -1989.-V.il 1.-P.3482−3484.
  119. S. Cosnier. Electropolymerization of amphiphilic monomers for designing amperometric biosensors // Electroanalysis. -1997.-V. 9(12).-P.894−902.
  120. S. Yabuki, H. Shinohara, M. Aizawa. Electro-conductive enzyme membrane // Journal of the chemical society-chemical communications. -1989.-V.14.-P.945−946.
  121. T. Ruzgas, E. Csoregi, J. Emneus, L. Gorton, G. Marko-Varga. Peroxidase-modified electrodes: Fundamentals and application // Analytica chimica acta. -1996.-V.330(2−3).-P.123−138.
  122. B. Palysa, A. Bokuna, J. Rogalskib. Poly-o-phenylenediamine as redox mediator for laccase // Electrochimica acta. -2007.-V.52(24).-P.7075−7082.
  123. G. Henriksson, G. Johansson, G. Pettersson. A critical review of cellobiose dehydrogenases // Journal of Biotechnology. -2000.-V.78.-P.93−113.
  124. M. Zamocky, R. Ludwig, C. Peterbauer, B.M. Hallberg, C. Divne, P. Nicholls, D. Haltrich. Cellobiose dehydrogenase a flavocytochrome from wood-degrading, phytopathogenic and saprotropic fungi // Current protein and peptide science. -2006.-V.7.-P.255.
  125. K. Igarashi, M.F.J.M. Verhagen, M. Samejima, M. Schuleini, K.-E.L. Eriksson, T. Nishino. Cellobiose Dehydrogenase from the Fungi Phanerochaete chysosporium and Humicola insolens II The journal of biological chemistry. -1999.-V.274(6).-P.3338−3344.
  126. L. Stoica, R. Ludwig, D. Haltrich, L. Gorton. Third-Generation Biosensor for Lactose Based on Newly Discovered Cellobiose Dehydrogenase // Analytical chemistry. -2006.-V.78.-P.393−398.
  127. W. Harreither, V. Coman, R. Ludwig, D. ITaltricha, L. Gorton. Investigation of graphite electrodes modified with cellobiose dehydrogenase from the ascomycete myriococcum thermophilum // Electroanalysis. -2007.-V. 19(2−3).-P.172.
  128. M.S. Rogers, G.D. Jones, G. Antonini, M.T. Wilson, M. Brunori. Electron-transfer from phanerochaete-chrysosporium cellobiose oxidase to equine cytochrome-c and pseudomonas-aeruginosa cytochrome c-551 // Biochemical journal. -1994 -V.298.-P.329−334.
  129. M.D. Cameron, S.D. Aust. Kinetics and reactivity of the flavin and heme cofactors of cellobiose dehydrogenase from Phanerochaete chrysosporium // Biochemistry. -2000.-V.39(44).-P. 13 595−13 601.
  130. А.И. Π‘Π°Π²Π΅Ρ€, H.B. ΠšΠΎΠ²Π°Π»Ρ‘Π²Π°, Π“. А. Мишина, Π›. П. Π‘Π΅ΠΌΡ‘Π½ΠΎΠ²Π°. // Π₯имичСскиС Π²ΠΎΠ»ΠΎΠΊΠ½Π°. -1977.-V.1.-P.54.
  131. X. Liu, G. Bouchard, Н.Н. Girault, Π’. Testa, P.A. Carrupt. Partition coefficients of ionizable compounds in o-nitrophenyl octyl ether/water measured by the potentiometric method // Analytical chemistry. -2003.-V.75(24).-P.7036.
  132. F. Scholz. Recent advances in the electrochemistry of ion transfer processes at liquidliquid interfaces // Annu. Rep. Prog. Chem. Sect. C. -2006.-V.102.-P.43−70.
  133. G. Shul, M. Opallo. On transfer across liquid-liquid interface coupled to electrochemical redox reaction at carbon paste electrode // Electrochemistry communications. -2005.-V.7(2).-P.194−198.
  134. H.J. Watts, D. Yeung, H. Parkes. Real-time detection and quantification of DNA hybridization by an optical biosensor // Analytical chemistry. -1995.-V.67.-P.4283−4289.
  135. F. Caruso, E. Rodda, D.N. Furlong. Quartz crystal microbalance study of DNA immobilization and hybridization for nucleic acid sensor development // Analytical chemistry. -1997.-V.69.-P.2043−2049.
  136. Y. Okahata, Y. Matsunobu, K. Ijiro, M. Mukae, A. Murakami, K. Makino. Hybridization of nucleic acids immobilized on a quartz crystal microbalance // J. Am. Chem. Soc. -1992,-V.l 14(21).-P.8299−8300.
  137. S. Yamaguchi, T. Shimomura. Adsorption, immobilization, and hybridization of DNA studied by the use of quartz crystal oscillators // Analytical chemistry. -1993.-V.65.-P.1925−1927
  138. G. Marrazza, I. Chianella, M. Mascini. Disposable DNA electrochemical biosensors for environmental monitoring // Analytica chimica acta. -1999.-V.387.-P.297−307.
  139. S.R. Dungan, T. Bausch, T.A. Hatton, P. Plucinski, W. Nitsch. Interfacial transport processes in the reversed micellar extraction of proteins // Journal of colloid and interface science. -1991.-V.145(l).-P.33−50.
  140. K. Naoea, K. Nodaa, T. Konishi, M. Kawagoea, M. Imai. Liquid-liquid extraction of a-lactalbumin using reverse micellar organic solvent // BioFactors. -2004.-V.22.-P.347~ 351.
  141. Y. Sun, S. Ichikawa, S. Sugiura, S. Furusaki. Affinity extraction of proteins with a reversed micellar system composed of cibacron blue-modified lecithin // Biotechnology and bioengineering. -1998.-V.58(1).
  142. O.A. Saleh, L.L. Sohn. An artificial nanopore for molecular sensing // Nano Lett. -2003.-V.3(l).-P.37−38.
  143. J. Wang. Sol-gel materials for electrochemical biosensors // Analytica chimica acta. -1999.-V.399(l-2).-P.21.
  144. W. Jin, J.D. Brennan. Properties and applications of proteins encapsulated within sol-gel derived materials // Analytica chimica acta. -2002.-V.461(l).-P.l.
  145. E. ΠšΡƒΡ€ΠΈΡ†Ρ‹Π½Π°. БСнсоры Π½Π° ΠΎΡΠ½ΠΎΠ²Π΅ Π½Π°Π½ΠΎΡ€Π°Π·ΠΌΠ΅Ρ€Π½Ρ‹Ρ… ΠΏΠ»Π΅Π½ΠΎΠΊ ΠΈ ΡΡ‚Ρ€ΡƒΠΊΡ‚ΡƒΡ€ элСктрокатализатора // ДиссСртация Π½Π° ΡΠΎΠΈΡΠΊΠ°Π½ΠΈΠ΅ ΡƒΡ‡Π΅Π½ΠΎΠΉ стСпСни ΠΊΠ°Π½Π΄ΠΈΠ΄Π°Ρ‚Π° химичСских Π½Π°ΡƒΠΊ. -2006.-Π .90.
  146. Π•. Luzi, М. Minunni, S. Tombelli, М. Mascini. New trends in affinity sensing: aptamers for ligand binding // Trends in analytical chemistry. -2003.-V.22(l 1).-P.810.
  147. A. Bini, M. Minunni, S. Tombelli, S. Centi, M. Mascini. Analytical performances of aptamer-based sensing for thrombin detection // Analytical chemistry. -2007.-V.79(7).-P.3016.
  148. J.W. Goding. Use of staphylococcal protein a as an immunological reagent//Journal of Immunological Methods. -1978.-V.20.-P.241.
  149. I. Bjork, B.-A. Petersson, J. Sjoquist. Some physicochemical proprieties of protein A from Staphylococcus aureus II Eur. J. Biochem. -1972.-V.29.-P.579.
  150. A. Morrin, A.J. Killard, M.R. Smyth. Electrochemical characterization of commercial and home-made screen-printed carbon electrodes // Analytical letters. -2003.-V.36(9).-P.2021.
  151. M. Trojanowicz, A. Mulchandani, M. Mascini. Carbon nanotubes-modified screen-printed electrodes for chemical sensors and biosensors // Analytical letters. -2004.-V.37(15).-P.3185.
  152. J. Wang, M. Musameh. Carbon nanotube screen-printed electrochemical sensors // Analyst. -2004.-V.129(1).-P. 1−2.
  153. M. Trojanowicz. Application of conducting polymers in chemical analysis // Microchimica acta. -2003.-V.143.-P.75.
  154. E.M. Genies, A. Boyle, M. Lapkowski, C. Tsintavis. Polyaniline: a historical survey // Synthetic metals. -1990.-V.36.-P.139−182.
  155. E.M. Genies, M. Lapkowski, J.F. Penneau. Cyclic voltammetry of polyaniline: Interpretation of the middle peak // J. Electroanal. Chem. -1988.-V.249.-P.97.
  156. G. Zotti, S. Cattarin, C. Comisso. Cyclic potential sweep electropolymerization of aniline. The role of anions in the polymerization mechanism // Journal of Elecrroanalytical Chemistry. -1988.-V.239.-P.387.
  157. Y. Wei, Y. Sun, X. Tang. Autoacceleration and kinetics of electrochemical polymerization of aniline // The journal of physical chemistry. -1989.-V.93.-P.4878.
  158. W.W. Focke, G.E. Wnek, Y. Wei. Influence of oxidation-state, pH, and counterion on the conductivity of polyaniline // Journal of physical chemistry. -1987.-V.91(22).-P.5831.
  159. I. Willner, E. Katz. Integration of layered redox proteins and conductive supports for bioelectronic applications // Angewandte chemie-international edition. -2000.-V.39(7).1. P.1180.
Π—Π°ΠΏΠΎΠ»Π½ΠΈΡ‚ΡŒ Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΡƒ Ρ‚Π΅ΠΊΡƒΡ‰Π΅ΠΉ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚ΠΎΠΉ