Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Изучение функционального состояния периферического отдела слухового анализатора в постнатальном онтогенезе (клинико – экспериментальное исследование)

Диссертация: Изучение функционального состояния периферического отдела слухового анализатора в постнатальном онтогенезе (клинико – экспериментальное исследование)
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Результаты исследования внедрены в клиническую практику консультативно — диагностической поликлиники в кабинете аудиометрии ГБУЗ «Морозовская ДГКБ ДЗМ» — в отделении патологии новорожденных № 1 и № 2 ГБУЗ «ГБ № 8 ДЗМ» — в учебный процесс кафедры оториноларингологии педиатрического факультета ГБОУ ВПО РНИМУ им. Н. И. Пирогова. На основании полученных результатов опубликована медицинская технология… Читать ещё >

Содержание

  • Глава I. Обзор литературы
    • 1. 1. Развитие слуховой функции в постнатальном онтогенезе
    • 1. 2. Современное представление об этиологии нарушения 20 слуха у недоношенных детей
    • 1. 3. Влияние антибиотиков аминогликозидного ряда на 27 слуховой анализатор
  • Глава II. Материалы и методы исследования
    • 2. 1. Клинический раздел
    • 2. 2. Экспериментальный раздел
    • 2. 3. Методы статистической обработки
  • Глава III. Результаты аудиологического обследования недоношенных 67 детей различного гестационного возраста
    • 3. 1. Сравнительное обследование недоношенных детей в 6 68 месяцев жизни двумя классами вызванной отоакустической эмиссии
    • 3. 2. Сравнительное обследование недоношенных детей в 1 80 год жизни двумя классами вызванной отоакустической эмиссии
    • 3. 3. Формирование вызванного акустического ответа у недоношенных детей
  • Глава IV. Результаты экспериментальных исследований
    • 4. 1. Динамика созревания слухового анализатора 107 по данным КСВП и ПИОАЭ
    • 4. 2. Влияние терапевтических доз амикацина на слуховой 118 анализатор неполовозрелых кроликов
    • 4. 3. Влияние терапевтических доз нетромицина на 126 анализатор неполовозрелых кроликов
    • 4. 4. Сравнительный анализ действия амикацина и 141 нетромицина на орган слуха в эксперименте

Изучение функционального состояния периферического отдела слухового анализатора в постнатальном онтогенезе (клинико – экспериментальное исследование) (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

В течение последних лет в связи с ухудшением демографической ситуации в России значительное внимание стало уделяться выживаемости недоношенных детей. Внедрение перинатальных технологий, улучшение материальнотехнической базы родильных учреждений и создание централизованной помощи новорожденным в многопрофильных детских больницах всех регионов страны направлено также на снижение детской и материнской заболеваемости.

В частности медико-организационные мероприятия, проводимые Департаментом Здравоохранения г. Москвы, привели к заметному снижению показателей смертности всех категорий недоношенных детей, в том числе родившихся с экстремально низкой массой тела. Результатами реализации данных мероприятий явились: снижение неонатальной и младенческой смертности недоношенных и маловесных детей в 1,3−1,5 раза, уменьшение ранней инвалидности с детства на 20−30% и более.

Недоношенные новорожденные — это дети, родившиеся до окончания нормального срока беременности и, зачастую, уже имеющие какую-либо патологию. Недоношенным считается ребенок, родившийся на сроке беременности до 37 нед., и, как правило, имеющий массу менее 2500 г и рост менее 45 см.

Частота рождения недоношенных детей остается стабильной в течение длительного времени и составляет примерно 5−10% от числа родившихся детей. Частота преждевременных родов в Санкт-Петебурге -7,4−6,7% (19 992 002). В США из 3,7 млн. ежегодно рождающихся младенцев 10,8% - дети, родившиеся с массой тела менее 2500 г, и 1,1% - родившихся ранее 32 нед и с массой менее 1250 г [104] В связи с этим в практику внедряются многочисленные неонатальные скрининговое программы (выявление фенилкетонурии, врожденного гипотиреоза, муковисцидоза, адреногенитального синдрома, галактоземии, УЗИ головного мозга в раннем неонатальном периоде, мониторинг сердечно-сосудистых заболеваний, выявление ретинопатии).

Обязательным стал аудиологический скрининг новорожденных, которому посвящено в последнее время значительное количество исследований. Раннее выявление снижения слуха, с последующей своевременной коррекцией позволяет существенно улучшить речевое развитие, адаптировать ребенка в социальную среду. Первый год жизни является во многих отношениях самым важным для развития речи, познавательных и эмоциональных навыков. Слуховая функция имеет ведущее значение при формировании второй сигнальной системы, т. е. речи, для развития которой решающее значение имеет полноценный слух, что было показано еще в работах Волохова А.А.(1934), Гершуни Г. В. (1937), Орбели Л. А. (1955). Именно в этот период лишение ребенка нормальной слухоречевой обстановки может оказать необратимое воздействие на последующую способность использовать потенциальные возможности своего остаточного слуха. Ребенок не слыша речь взрослых, не имеет возможности подражать, самостоятельно ее воспроизводить и в конечном итоге говорить. Стойкие поражения слуха у детей, независимо от их причин и уровня поражения слухового анализатора, влекут за собой те или иные нарушения речи.

В Российской Федерации в настоящее время насчитывается около 600 тыс. детей и подростков с нарушениями слуха.

Данные о частоте и характере нарушений слуха у новорожденных и детей грудного возраста разноречивы.

Предполагается, что у недоношенных детей к моменту рождения анатомически все отделы слухового анализатора сформированы, но функционально незрелы. В связи с чем, необходимо помнить, что эти структуры внутреннего уха очень чувствительны к разного рода воздействиям.

Исследование слуховой функции у новорожденных по приказу МЗ РФ должно проводиться в родильном доме на 4 сутки жизни [87,88]. Однако провести аудиологическое обследование у детей, рожденных раньше срока, не представляется возможным, поскольку большинство детей рождается в критическом состоянии, и требуют проведения комплекса сердечно-легочных реанимационных мероприятий уже в родильном зале [73].

Однако в последнем Приказе № 369 ДЗ г. Москвы от 25.04.2011 г. по выполнению аудиологического скрининга новорожденных детей, введена такая категория новорожденных как недоношенные, где уже учтено, что недоношенные дети рождаются с функционально незрелым периферическим отделом слухового анализатора. В нем говорится о возможности проведения скринингового аудиологического обследования у недоношенных в возрасте 14 дней — 1 месяц.

Но, несмотря на это, сведения о слуховой функции у недоношенных детей, полученные методом ВОАЭ на первом году жизни, пока не достаточно полны. Анализ соответствующей литературы не позволяет ответить на ряд вопросов: как долго сроки гестации оказывают влияние на показатели вызванного ответа, какова динамика формирования акустического ответа в течение первого года жизни у недоношенных детей, и как зависит она от сроков гестациикакой из классов ВОАЭ является наиболее информативным, и поэтому оптимальным, при обследовании недоношенных детей разных гестационных групп в течение первого года жизни.

Остается также не ясным, как влияют современные, широко используемые в клинической практике антибиотики аминогликозидного ряда на несозревший слуховой анализатор недоношенных детей.

Цель исследования: проследить изменения слуховой функции в течение первого года жизни у недоношенных детей в зависимости от сроков гестации и экспериментально оценить степень влияния амикацина и нетромицина на несозревший слуховой анализатор неполовозрелых животных.

Задачи исследования:

1. Провести динамическое аудиологическое обследование методом ВОАЭ у недоношенных детей различных гестационных групп на первом году жизни и проанализировать полученные результаты в зависимости от сроков гестации.

2. Проследить формирование вызванного акустического ответа у недоношенных детей в течение первого года жизни в зависимости от сроков гестации по данным регистрации отоакустической эмиссии на частоте продукта искажения.

3. Провести сравнительный анализ результатов исследований, полученных двумя классами ВОАЭ, с целью выявления зависимости времени созревания от сроков гестации и определения класса, обладающего большей информативностью.

4. Исследовать динамику созревания слуховой функции у неполовозрелых животных по данным записи коротколатентных слуховых вызванных потенциалов (КСВП) и регистрации вызванной отоакустической эмиссии на частоте продукта искажения (ПИОАЭ) с целью возможности дальнейшего изучения влияний ототоксических препаратов на незрелый слуховой анализатор.

5. Провести экспериментальную оценку влияний амикацина и нетромицина на слуховую функцию неполовозрелых животных в постнатальном онтогенезе.

Новизна исследования.

1. Выявлена зависимость формирования акустического ответа от сроков гестации у недоношенных детей в течение первых шести месяцев жизни. У детей, рожденных в срок гестации менее 32 недель, созревание периферического отдела слухового анализатора не завершено к первому году жизни.

2. Выявлено, что на ОР-грамме доминантный пик у всех недоношенных детей в течение первого года жизни всегда регистрируется на частоте 2 кГц, а минимальный-на частоте 1кГц.

3. Обоснована необходимость обращать внимание на ОР-грамме на наличие «высокоуровневых» значений амплитуд у недоношенных детей в течение первого года жизни.

4. Предложен и рассчитан коэффициент прироста амплитуды ответа ПИОАЭ у недоношенных детей различного гестационного возраста на первом году жизни как показатель темпа формирования акустического ответа.

5. Продемонстрирована более высокая чувствительность ПИОАЭ по сравнению с задержанной вызванной отоакустической эмиссией (ЗВОАЭ) при обследовании одного и того же контингента недоношенных детей двумя классами ВОАЭ.

6. Прослежена динамика созревания слуховой функции у кроликов с помощью двух объективных методов исследования (КСВП, ПИОАЭ). Выявлена неоднородность и неравномерность созревания функциональной активности наружных волосковых клеток (НВК) по данным ПИОАЭ.

7. Выявлен повреждающий эффект терапевтических доз амикацина и нетром ицина на слуховую функцию кроликов с незрелым слуховым анализатором, проявляющийся в стойком повышении порогов I пика КСВП, и снижении на БР-грамме амплитуды ответа для 2 кГц и 4 кГц.

Практическая значимость работы 1. Выявленный значительный процент непрохождения теста при первичном обследовании (в установленные сроки) недоношенных детей и его прохождение при последующих обследованиях свидетельствует о вероятной незрелости слухового анализатора во время первичного обследования.

2. Правильность выбора необходимого класса ВОАЭ в зависимости от сроков гестации для обследования недоношенных детей в 6 месяцев и 1 год жизни увеличит эффективность проведения аудиологического обследования.

3. Рассчитанный коэффициент прироста амплитуды ответа ПИОАЭ необходим в клинической практике для контроля темпов созревания периферического отдела слухового анализатора недоношенных детей в течение первого года жизни.

4. Экспериментально обоснована необходимость проведения обязательного контрольного аудиологического обследования недоношенным детям с незрелым слуховым анализатором с помощью КСВП и ВОАЭ после применения ототоксических антибиотиков. Это повысит вероятность выявления нарушения слуховой функции и обеспечит своевременную постановку диагноза.

Внедрение в практику.

Результаты исследования внедрены в клиническую практику консультативно — диагностической поликлиники в кабинете аудиометрии ГБУЗ «Морозовская ДГКБ ДЗМ" — в отделении патологии новорожденных № 1 и № 2 ГБУЗ «ГБ № 8 ДЗМ" — в учебный процесс кафедры оториноларингологии педиатрического факультета ГБОУ ВПО РНИМУ им. Н. И. Пирогова. На основании полученных результатов опубликована медицинская технология «Методика аудиологического обследования недоношенных детей различного гестационного возраста методом регистрации вызванной отоакустической эмиссии» (под редакцией Богомильского М. Р., Володина H.H., 2010), разработаны Методические рекомендации № 10 по Организации аудиологической помощи недоношенным детям различного гестационного возраста в условиях поликлинических отделений, утвержденные Департаментом здравоохранения г. Москвы от 12.04.2012 г.

Апробация результатов исследования.

Основные результаты диссертационной работы доложены на Всероссийской научной конференции «Прикладная и фундаментальная наука российской оториноларингологии» (Санкт-Петербург, 2010), на IX Всероссийском конгрессе оториноларингологов «Наука и практика в оториноларингологии» (Москва, 2010), на XV Конгрессе педиатров России (Москва, 2011), на XVIII Съезде оториноларингологов России (Санкт-Петербург, 2011), на 5 th Europaediatrcs (Vienna, Austria, 2011), на XXII Biennial Symposium of the International Evoked Response Audiometry Study Group (Moscow, 2011), на X Российском конгрессе «Инновационные технологии в педиатрии и детской хирургии» (Москва, 2011).

Объем и структура диссертации.

Выводы.

1. Динамическое наблюдение за слуховой функцией недоношенных детей в течение первого года жизни показало, что непрохождение теста при первичном скрининговом обследовании методом ВОАЭ может быть объяснено незрелостью слуховой функции, а не ее отсутствием.

2. Вызванный акустический ответ улитки у недоношенных детей формируется в зависимости от сроков гестации. Наибольший прирост мощности акустического ответа по данным ПИОАЭ наблюдается у детей, рожденных в срок гестации менее 28 недель, в течение первых 6 месяцев фактической жизни. Неоднородная динамика формирования амплитудных показателей на ОР-грамме свидетельствует о неравномерном созревании рецепторного отдела улитки.

3. По данным амплитудных показателей ВОАЭ у детей, рожденных в срок гестации менее 32 недель, созревание периферического отдела слухового анализатора не завершено к первому году жизни. У детей, рожденных в срок гестации 33−37 недель, акустический ответ окончательно сформирован к 6 месяцам жизни.

4. Анализ БР-грамм в 6 и 12 месяцев жизни у недоношенных детей показал, что независимо от возраста гестации доминантный пик, с амплитудой превышающей 11,5 дБ, регистрируется на частоте 2 кГц. Амплитуда ответа в области низких частот (1 кГц) в течение первого года жизни никогда не достигает высокоуровневых значений.

5. Одновременное обследование детей двумя классами ВОАЭ обнаружило больший процент зарегистрированных ответов при проведении ПИОАЭ, чем при ЗВОАЭ, что свидетельствует о более высокой чувствительности метода ПИОАЭ по сравнению с методом ЗВОАЭ.

6. Коротколатентные слуховые вызванные потенциалы отчетливо регистрируются у кроликов на 12 день после рождения. Созревание периферического отдела слухового анализатора по данным КСВП у кроликов происходит к 26 дню жизни, о чем свидетельствует стабилизация значений пороговых величин I пика, отсутствие статистически значимых различий аппроксимирующих кривых зависимости латентных периодов I пика от интенсивности раздражителя между указанным периодом и последующими обследованиями. Центральные отделы слухового анализатора созревают после 35 дня жизни, о чем свидетельствует отсутствие статистически значимых различий в центральном времени проведения на кривой КСВП после 35-го дня жизни животных.

7. Регистрация ПИОАЭ возможна у кроликов к 19 дню жизни. К 26 дню мощность вызванного акустического ответа у кролика в целом сформирована и соответствует амплитудам половозрелых животных. Максимальный прирост мощности ответа зарегистрирован между 19 и 26 днем жизни. Наименьшая амплитуда ответа характерна для частоты 1 кГц, наибольшая — для частоты 6 кГц, меньшая статистически достоверно не отличная от 6 кГц амплитуда ответа — для 4 кГц. Рост амплитуды ответов на тестируемых частотах происходит неравномерно: для частоты 4 и 6 кГц он прекращается к 26 дню жизни, для частоты 2 кГц — к 35 дню, на частоте 1 кГц-к 45 дню жизни.

8.

Введение

терапевтических доз амикацина кроликам с незрелым слуховым анализатором по данным КСВП приводит к постепенному и стойкому повышению порогов регистрации I пика (40±3 дБ) без изменения центрального времени проведения. На БР-грамме ПИОАЭ отмечается снижение амплитуды ответа на частотах 2 кГц и 4 кГц без изменения общей мощности ответа улитки.

9.

Введение

терапевтических доз нетромицина кроликам с незрелым слуховым анализатором сопровождается временным общетоксическим эффектом. На записи КСВП регистрируется повышение порогов I пика (28,6±2 дБ). На БР-грамме ПИОАЭ зарегистрировано временное снижение мощности ответа улитки и стойкое снижение амплитуды ответа на частотах 2 кГц и 4 кГц.

Практические рекомендации.

1. Исследование слуховой функции у детей, рожденных в срок гестации менее 28 недель, до шести месяцев фактической жизни следует проводить преимущественно методом ПИОАЭ.

2. Исследование функционирования периферического отдела слухового анализатора у недоношенных детей, рожденных в срок гестации более 29 недель, начиная с шести месяцев жизни можно проводить с использованием любого класса ВОАЭ.

3. В связи с тем, что у детей, рожденных в срок гестации менее 32 недель, созревание периферического отдела слухового анализатора не завершено к первому году жизни, сроки аудиологического мониторинга для данного контингента детей необходимо расширять.

4. Полученные коэффициенты прироста мощности акустического ответа в течение первого года жизни необходимы в клинической практике для контроля темпов созревания периферического отдела слухового анализатора, отражающих активность функционирования наружных волосковых клеток.

5. Малые коэффициенты прироста мощности ответа за один месяц доказывают, что нет необходимости обследовать недоношенных детей каждый месяц.

6. В экспериментах на кроликах после введения амикацина и нетромицина на БР-грамме было выявлено статистически значимое устойчивое снижение амплитуды ответа на 2 кГц и 4 кГц с одновременным повышением пороговых величин I пика КСВП. В связи с этим всем недоношенным детям, получавшим в неонатальном периоде амикацин или нетромицин, следует рекомендовать длительный контроль врача оториноларинголога-аудиолога с проведением расширенного аудиологического обследования (КСВП, ПИОАЭ, ЗВОАЭ).

Показать весь текст

Список литературы

  1. З.С. Электрофизиологические методы в ранней и дифференциальной диагностике нарушений слуха у детей // Дефектология. 1998. № 1.
  2. З.С. Формирование механизма слухового восприятия у детей раннего возраста в норме и при нарушении слуха // Альманах Института коррекционной педагогики РАО. 2000. № 2.
  3. З.С. Электрофизиологические методы диагностики нарушений слуха у недоношенных детей: Метер. конф. Ранняя психолого-педагогическая помощь детям с особыми потребностями и их семьям. Москва, 2003.С.193−198.
  4. Я.А., Таварткшадзе Г. А. Руководство по аудиологии //ДМК, Пресс. М. 359с.
  5. В.А., Пакунов А. Т. Действие канамицина на ушной лабиринт (экспериментальное исследование) // Вестн. оторинолар. 1980. № 6.1. С. 27−31.
  6. A.B. О побочных реакциях, вызываемых антибиотиками аминогликозидной группы // Рос. Вестник перинатологии и педиатрии. 1997. Т.42. № 2. С. 54−58.
  7. М.Р., Дьяконова И. Н. Кохлеарное протезирование, современное состояние и перспективы. // Республ. сб. научных трудов: Заболевание уха у детей. 1987. С. 46−51.
  8. М.Р., Дьяконова И. Н., Фитенко JI.H. и др. Изменения характера слуховых вызванных потенциалов в зависимости от интенсивности стимула в возрастном аспекте // Журнал ушных, носовых и горловых болезней. 1987. № 2. С. 29−32.
  9. М.Р., Чистякова В. Р. Детская оториноларингология. М. Медицина. 2001.
  10. М.Р., Древаль A.A., Дьяконова И. Н. и др. Особенности ототоксического мономицина на неполовозрелых животных // Вестн. оторинолар. 2009. № 5. С.26−29.
  11. М.Р., Дьяконова И.Н, Рахманова ИВ. и др. Электрофизиологическая оценка слуховой функции после введения цисплатина //Вестн. оторинолар. 2010. № 3. С. 24−26.
  12. H.A., Ильмер С. И. Труды Ленинградского сан. гиг. Мед. ин-та 1976. № 113. С. 72−76.
  13. H.H., Таварткшадзе Г. А., Козунь Ю. В. и др. Состояние слухового анализатора у детей, получавших интенсивную терапию в период новорожденное&trade-: Матер. IV конгресса педиатров России, г. Москва, 2000. С. 82.
  14. Е.С., Калмыкова И. В. Аудиологический скрининг новорожденных на базе родильного дома методом ЗВОАЭ: Матер. IV международного симпозиума «Современные проблемы физиологии и патологии слуха». Суздаль, 19−21.06.2001. С. 52−53.
  15. Е.С. Аудиологический скрининг глубоконедоношенных детей методом задержанной вызванной отоакустической эмиссии // Росс, оторинолар. 2005. № 1(14). С. 47−50.
  16. Е.С., Калмыкова И. В. Нейросенсорная тугоухость у недоношенных детей: Матер. 2-го национального конгресса аудиологов, 6-го международного симпозиума «Современные проблемы физиологии и патологии слуха», Суздаль, 28.05−01.06.2007. С.76−77.
  17. Е.С. Сравнительная характеристика отоакустической эмиссии у доношенных и недоношенных новорожденных: Дис.. .к.б.н. С. П-б., 2007.
  18. Т.Г. Возрастные изменения отоакустической эмиссии // Вестн. оторинолар., 2003. № 6. С.11−13.19 а Гершуни Г. В. Успехи электрофизиологического изучения органа слуха. //Успехи совр. биологии, 1937, т.6, с. 371−398.
  19. В.А. Интенсивная терапия дыхательных расстройств у новорожденных в критических состояниях: Дисс. .д.м.н. М., 1996.
  20. A.B. Регистрация различных классов вызванной отоакустической эмиссии в аудиологическом скрининге: Дис. .к.м.н. М., 1998.
  21. Г. М., Кушнарева М. В., Фролова М.И и др. Нетилмицин в комплексной терапии пневмонии у новорожденных // Антибиотики и хиотерапия. 2001.46 № 4. С. 22−25.
  22. Т.Г., Григоръянц Л. Я., Авдеева Т. Г., Румянцев А. Г. Наблюдения за глубоко недоношенными детьми. Медпрактика. М., 2006. 148с.
  23. С.Г., Мельников Ю. Д., Нурский КВ. и др. Отоакустическая эмиссия как метод оценки слуха некоторых лабораторных животных // Новости оториноларингологии и логопатологии. 2001. № 4. С. 114−116.
  24. С.Г., Томпсон В. В., Цвылева ИД. и др. Патоморфологические аспекты действия аминогликозидных антибиотиков на слуховой анализатор // Вест. Оторинолар. 2003. № 2. С.55−60.
  25. С.Г. Сенсоневральная тугоухость: молекулярно генетические, структурные и лечебно профилактические аспекты (клинико -экспериментальное исследование): Дисс. .д.м.н. С.- П-б, 2006.
  26. М.Е., Румянцева М. Г., Каменецкая С. Б. Нарушения слуха у взрослых и детей (эпидемиологическое исследование) // Актуальные проблемы оториноларингологии. 1997. С.48−51.
  27. М.Е., Румянцева М. Г., Каменецкая С. Б. и др. Возможности эпидемиологических методов исследования в совершенствовании помощидетям с нарушениями слуха // Новости оториноларингологии и логопатологии. 1998, № 4, С.9−12.
  28. М.Е., Румянцева М. Г., Дайняк Л. Б. Нарушения слуха у детей: эпидемиологическое исследование // Вестн. оторинолар. 2003. № 6. С.7−10.
  29. М.Е., Румянцева М. Г. Возможности своевременной ранней реабилитации детей с нарушениями слуха // Росс, оторинолар. Приложение № 1. 2008. С.257−261.
  30. Л., Ронкин М. А. Слуховые вызванные потенциалы. В кн. Функциональная диагностика нервных болезней. М. «Медицина», 1991, С. 239 254.
  31. Е.В. Матер. 15-го Съезда оториноларингологов России. С.Петербург. 1995- № 1. С. 167−170.
  32. Е.В., Атаманова Н. В. Экспериментальное исследование ультраструктуры спирального органа при введении канамицина и церулоплазмина//Вест, оторинолар. 1997. № 4. С.24−26.
  33. И.Б. Выявление факторов риска и предупреждение речевых нарушений у детей от 0 до 3 лет: Матер. XVIII съезда оториноларингологов. М., 2011. Том I. С.240−241.
  34. AM., Петрова С. А., Олендарь Н. В. Опыт выхаживания недоношенных новорожденных в Ярославском регионе: Матер. I Международного конгресса по перинатальной медицине, IV Ежегодного конгресса специалистов перинатальной медицины. М., 2011. С.88−89.
  35. М.П., Образцова Г. А. О зависимости первичных ответов слуховой области коры от интенсивности раздражения в онтогенезе у кролика // Доклады Академии наук. 1966. Том 169. № 6. С. 1471−1473.
  36. М.П., Образцова Г. А. Вызванные потенциалы слуховой корковой зоны в ответ на звуковые раздражения в онтогенезе у кролика // Журнал эволюционной биохимии и физиологии. 1968. Том 4. № 1. С.94−90.
  37. М.П. Функциональное развитие слуховой системы в раннем постнатальном онтогенезе у незрелорожденных животных: Дис. .д.б.н. М., 1979.
  38. Ю.В., Кибченко С.И Методические подходы к оценке состояния слухового анализатора у детей первых лет жизни // Вест. РГМУ. 2000. № 2(12). С. 115.
  39. КВ., Круглое A.B., Галунов В. И. Индивидуальная специфичность и стабильность характеристик вызванной отоакустической эмиссии // Физиология человека. 1995. Т.21. № 1. С. 87−90.
  40. И.В., Калмыкова И. В., Мегрелешвили С. М. и др. Ранняя диагностика центральных слуховых расстройств у детей: Матер. IV
  41. Международного симпозиума «Современные проблемы физиологии и патологии слуха». М., 2001. С 90−91.
  42. Ю.И., Иванов В. Н. Частные проблемы оториноларингологии: Сб научн. Трудов, посвященных 95-летию со дня рождения А. И. Коломийченко. Киев 1993. С.71−74.
  43. A.B. Вызванная отоакустическая эмиссия в норме и при различных формах тугоухости: Дис. .к.м.н. М., 1998.
  44. М.И. Характеристика слуховой функции у детей раннего возраста с преперинатальными поражениями центральной нервной системы: Дис. .к.м.н. М., 2009.
  45. H.JI., Поляков A.B., Маркова Т. Г. Практика медико-генетического консультирования при врожденной и ранней детской тугоухости // Вести, оторинолар. 2008. № 5. С. 18−22.
  46. М.В. Влияние нетилмицина, амикацина, цефтазидима и цефотаксима на адгезивные свойства микроорганизмов, выделенных у новорожденных детей // Антибиотики и химиотерапия, 2000. № 7. С. 17−21.
  47. A.A. Скрининг-исследование слуховой функции у недоношенных новорожденных различного гестационного возраста: Дисс. .к.м.н. М., 2009.
  48. М.Р. Сенсоневральная тугоухость у детей первого года жизни: Матер. IX Российской конференции оториноларингологов. Вестн. оторинолар. 2010. № 5. С.320−323.
  49. М.Р., Близнец Е. А., Маркова Т. Г. и др. Результаты аудиологического обследования детей первого года жизни с сенсоневральной тугоухостью, обусловленной мутациями в гене GJB2 // Вестн. оторинолар. 2011. № 3. С. 31−35.
  50. Левая-Смоляк А. М. Актуальность генетического скрининга тугоухости у новорожденных в Республике Беларусь: Матер. IX Российской конференции оториноларингологов. Вестн. оторинолар. 2010. № 5. С.323−325.
  51. Ю. В. Отоакустическая эмиссия в дифференциальной диагностике нейросенсорнойтугоухости: Дис. .к.м.н. М., 1999.
  52. Ю.В., Иванец КВ., Пальчун В. Т. Динамика возрастных изменений различных классов вызванной отоакустической эмиссии // Вестн. оторинолар. 2001. № 5. С. 22−23.
  53. Т.А. Место цефалоспоринов в терапии сепсиса новорожденных: Матер. I Международного конгресса по перинатальной медицине, IV Ежегодного конгресса специалистов перинатальной медицины. М., 2011. С. 4142.
  54. Т.Г., Лалаянц М. Р., Браэ/скина Н.Б. и др. Коннексиновая тугоухость ранняя диагностика и профилактика: Матер. IX Российской конференции оториноларингологов. Вестн. оторинолар. 2010. № 5. С.116−117.
  55. B.C. Нарушение слуха и гистологические изменения в кортиевом органе морских свинок при введении антибиотиков неомицинового комплекса и мономицина: Дисс. .к.м.н. М., 1964.
  56. Л.Б., Коротченко В. В., Терещенко О. Н. Морфологические изменения эпителия и нервных элементов улитки морских свинок под действием аминогликозидных антибиотиков // Вест, оторинолар. 1984. № 3. С. 16−21.
  57. Л.Б. Морфофункциональные изменения нервных элементов улитки в условиях аминогликозидного ототоксикоза и возможности их предупреждения: Дисс. .к.м.н., М., 1988.
  58. А.Т. Сочетанное действие шума и стрептомицина на рецепторные клетки спирального органа: Дисс. .к.м.н., М., 1975.
  59. В.Т., Асламазова В. И., Косяков С. Я. и др. Исследование парабиотических явлений в слуховом анализаторе при воздействии ототоксических антибиотиков // Вест, оторинолар. 1988. № 3. С.5−7.
  60. О.Г. Ототоксический эффект действия дигидрострептомицина и пути его предупреждения в эксперименте на животных: Дисс. .д.м.н. М., 1987.
  61. Д.А., Плужников М. С., Неворотин А. И. Ультраструктуры рецепторных слуховых клеток в условиях острой неомициновой интоксикации // Журнал ушных, носовых и горловых болезней. 1972. № 5. С. 53−59.
  62. М.С. Клиника и некоторые черты патогенеза кохлеарного невритаантибиотикового происхождения: Дисс.. д.м.н. JL, 1972.
  63. А.К., Несчетная Л. Б. Динамика морфологических изменений в нейрорецепторных структурах улитки в зависимости от сроков наблюдения после воздействия токсических доз канамицина // Журн. Ушных, носовых и горловых болезней. 1987. № 6. С.45−48.
  64. A.B., Таварткипадзе Г. А., Маркина Т. Г. Генетический скрининг нарушений слуха у новорожденных, сочетанный с аудиологическим скринингом // Вестн. оторинолар. 2010. № 3. С. 15−18.
  65. Л.П., Ширина Н. С. Вызванная отоакустическая эмиссия в диагностике нарушений слуха у новорожденных // Педиатрия. 2000. № 3. С. 100 102.
  66. Л.П., Ширина Н. С. Аудиологическое тестирование новорожденных детей // Вопросы современной педиатрии. 2004. Том 3. № 3. С.20−23.
  67. Л.П. Нарушение слуха у новорожденных детей // Лечащий врач. 2005. № 1. С.48−50.
  68. КВ., Ярыгин В. Н., Древаль A.A., Дьяконова H.H. Морфофункциональная характеристика спирального ганглия кошки в условиях нейросенсорной тугоухости. // Бюллетень эксп. биологии и медицины. 1993. -№ 5. С. 41−43.
  69. КВ., Милева О. В., Сапожников Я. М. и др. О подходе к оценке слуховой функции у недоношенных детей в предполагаемый срок родов // Вестн. РГМУ. 2010. № 2. С.54−57.
  70. .М., Пахомова О. Г. Воспроизведение ототоксического поражения улитки в электрофизиологическом эксперименте // Вестн. оторинолар. 1986. № 6. С. 3813.
  71. .М., Климов В. П. Раннее выявление различных форм нарушения функций слухового рецептора и слухового нерва с помощью КСВП. //Методические рекомендации. М., 1990. С. 15.
  72. Я.М., Богомильский М. Р. Современные методы диагностики, лечения и коррекции тугоухости и глухоты у детей. М., 2001. 247с.
  73. Я. М. Минасян B.C., Рахманова КВ. и др. Возможности метода регистрации вызванной отоакустической эмиссии на частоте продукта искажения в детской клинической практике: Матер. 1-го национального конгресса аудиологов. Суздаль, 2004. С. 166−167.
  74. Е.М., Кеишшян Е. С. Особенности психомоторного развития недоношенных детей, рожденных с массой менее ЮООг // Росс, вестник перинатологии и педиатрии. 2002. Том 47. № 4. С. 24−24.
  75. Е.М. Становление психомоторных функций и прогнозирование отклонений в развитии глубоконедоношенных детей на 1 2 году жизни: Дисс. к.м.н. М., 2003.
  76. Г. Ю., Кеишшян Е. С. Оценка слуховой функции у недоношенных детей различного гестационного возраста // Росс. вест, перинатологии и педиатрии. 2005. № 4. С. 13−17.
  77. ПО. Формирование речевой функции и созревание слухового ответа у недоношенных детей различного гестационного возраста в норме и при гипоксическом ишемическом поражении ЦНС: Дисс.. к.м.н. М., 2007.
  78. Соколов 10. К. Вызванная отоакустическая эмиссия и возможности ее использования при диагностике нарушений слуха 1989 (VII Съезд оториноларингологов Украинской ССР. 1989. С.156−157.
  79. H.H. Клиническая фармакокинетика амикацина у новорожденных: роль постнатального возраста и массы тела при рождении: Дисс.к.м.н. Смоленск, 1993.
  80. В.А., Володин H.H. Адаптация детей с очень низкой массой тела в неонатальном периоде // Вестн. АМН. 1990. № 8. С.8−14.
  81. Г. А., Круглое A.B. Вызванная отоакустическая эмиссия в аудиологической диагностике: Метод, реком. М., 1995.
  82. Г. А. и др. Единая система аудиологического скрининга: Метод, реком. М., 1996.
  83. Г. А. Раннее выявление нарушений слуха, начиная с периода новорожденное&trade- // Новости отолар. и логопатологии. 1996, № 3−4, № 7−8, С. 50−54.
  84. Г. А. и др. Методики эпидемиологического исследования нарушений слуха: Метод, реком. № 98/123. М., 1998.
  85. Г. А., Шматко Н. Д. Диагностика и коррекция нарушений слуховой функции у детей первого года жизни // Метод, пособие. М., 2001. 159 с.
  86. Д.И., Наседкин., Лебедев В. П. и др. Тугоухость у детей. М., 1984.
  87. Д.И., Тарасова Т. Д. Причины приобретенной детской тугоухости //Росс, вестн. перинатологии и педиатрии. 1998. № 6. С.23−26.
  88. П.В., Дубинин В. Б., Г.А.Новиков Кролик Советская наука, М., 1952. С. 48.
  89. A.M., Богомильский М. Р., Дьяконова H.H. Метод объективной оценки слуховой функции по данным коротколатентных слуховых вызванных потенциалов // Вест, оторинолар. 1994. № 3. С.8−10.
  90. А. В. Амикацин основные свойства и особенности применения // Антибиотики и химиотерапия. 1991. Т.36. № 11. С.47−52.
  91. A.A. Фармакокинетический мониторинг при лечении аминогликозидами// Антибиотики и химиотерапия. 1991. Т.36. № 11. С.35−37.
  92. В.П., Гусейнов Н. М. Модель для изучения ототоксических эффектов лекарственных средств в эксперименте // Вестн. оторинолар. 1996. № 1. С.25−28.
  93. B.JI. Регистрация различных классов отоакустической эмиссии в определении слуховой чувствительности в норме и при сенсоневральной тугоухости: Дис. .к.м.н. M., 2005.
  94. K.JI., Черкасов B.C. К вопросу о так называемых «невритах слухового нерва» // Журнал ушных, носовых и горловых болезней. 1967. № 2. С.10−15.
  95. А.Н. Характеристика различных форм сенсоневральной тугоухости и возрастные изменения слуха по данным регистрации различных классов отоакустической эмиссии: Дисс.. .д.м.н. М., 2003.
  96. Н.С. Электрическая стимуляция слухового нерва у человека (вопросы методики, значение для реабилитации при тяжелых нарушениях слуховой функции). В кн. «Сенсорные системы. Сенсорные взаимодействия. Протезирование». Д., 1983. С. 134−143.
  97. Н.С., Кеванишвили З. Ш. Слуховые вызванные потенциалы человека. Тбилиси, Сабчота сакартвело, 1985, 365 с.
  98. Н.П. Неонатология. В 2-х томах, М.: МЕДпресс информ, 2006. С.325−326 (I том).
  99. А. Г. Сешоков М.В. Ототоксическое действие антибиотиков. Иркутск. 1980.
  100. A.A. Влияние стрептомицина на слуховую функцию: Дисс.. .к.м.н. М., 1974.
  101. Яиг Т., Магнум Б. Клинический справочник по лекарственной терапии новорожденных детей. Neofax. M., 2006.
  102. A.A. Аудиологический скрининг у детей // Аудиоинфо. 2006. № 5. С. 22−25.
  103. A.A. Аудиологический скрининг, основанный на регистрации стационарных слуховых вызванных потенциалов: Дисс.. .к.м.н. М., 2006.
  104. Г. В. Руководство по неонатологии. М., МИА. 1998. 397с.
  105. Г. В. Руководство по неонатологии. М., Гардарики. 2004. 334с.
  106. Abdala С. Distortion product otoacoustic emission (2fl-f2) amplitude as a function of f2/fl frequency ratio and primary tone level separation in human adults and neonates // J Acoust Soc Am. 1996. Vol. 100. № 6.1. P. 3726−3740.
  107. Abdala C. A longitudinal study of distortion product otoacoustic emission ipsilateral suppression and input/output characteristics in human neonates // J Acoust Soc Am. 2003. № 114. P.3239−3250.
  108. Abdala C., Oba S.I., Ramanathan R. Changes in the DP-gram during the preterm and early postnatal period // Ear Hear. 2008. Vol.29. № 4. P.512−523.
  109. Abdel-Hady E., El Hamamsy M., Hedaya M. et al. The efficacy and toxicity of two dosing-regimens of amikacin in neonates with sepsis // J Clin Pharm Ther. 2011. Vol. 36 № 1. P.45−52.
  110. A i dan D., Lestang P., Avan P., Bonfils P. Characteristics of transient-evoked otoacoustic emissions (TEOES) in neonates // Acta Otolaryngol. 1997. Vol.117. № 1. P.25−30.
  111. Albuquerque A.S. Estudo Comparativo da Estrutura da Orelha Interna de Ratos e Cobaias Atraves da Microscopia Eletronica de Varredura. Monografia // Jaboticabal. 2006. P. 59.
  112. Am in S.B., Orlando M., Eddins A. et al. In utero iron status and auditory neural maturation in premature infants as evaluated by auditory brainstem response // J Pediatr. 2010. Vol. 156. № 3. P.377−381.
  113. Aquino T.J., Oliveira J.A., Rossato M. Ototoxicity and otoprotection in the inner ear of guinea pigs using gentamicin and amikacin: ultrastructural and functional aspects // Braz J 0torhinolaryngol.2008. Vol. 74. № 6. P.843−852.
  114. Ari-Even Roth D., Hildesheimer M., Maayan-Metzger A. et al. Low prevalence of hearing impairment among very low birthweight infants as detected by universal neonatal hearing screening // Arch Dis Child Fetal Neonatal Ed. 2006. № 91. P.257−262.
  115. Arpini A. Cornacchia L., Albiero L. et al. Auditory function in guinea pigs treated with netilmicin and other aminoglycosides // Arch. Otolaryngol. 1979. № 244. P. 137−142.
  116. Auriti C., Rava L., Di Ciommo V. et al. Short antibiotic prophylaxis for bacterial infections in a neonatal intensive care unit: a randomized controlled trial // Hospital Infection Society. 2005. 59 № 4. P.292−298.
  117. Ballachanda B.B., Moushegian G., Stillman R.D. Adaptation of the auditory brainstem response: effects of click intensity, polarity, and position // J Am Acad Audiol. 1992. Vol.3. № 4. P.275−282.
  118. Baradaranfar M.H., Atighechi S., Dadgarnia M.H. et al. Hearing status in neonatal hyperbilirubinemia by auditory brain stem evoked response and transient evoked otoacoustic emission // Acta Med Iran. 2011. Vol.49. № 2. P. 109−112.
  119. Basile A.S., Huang J.M., Xie C. et al. N-methyl-D-aspartate antagonists limit aminoglycoside antibiotic hearing loss //Nat. Med. 1996. № 2. P.1338−1343.
  120. Berard A., Le Tiec M, De Vera M.A. Study of the costs and morbidities of late-preterm birth // Arch Dis Child Fetal Neonatal Ed. 2012.
  121. Berardi A., Lugli L., Rossi C. et al. Infezioni da Streptococco B Delia Regione Emilia Romagna. Neonatal bacterial meningitis. // Minerva Pediatr. 2010. 62 № 3. P.51−54.
  122. Bergman B.M., Gorga M.P., Neely S.T. et al. Preliminary descriptions of transient-evoked and distortion-product otoacoustic emissions from graduates of an intensive care nursery // J Am Acad Audiol. 1995. Vol.6. № 2. P. 150−162.
  123. Bonfils P., Bertrand Y., Uziel A. Evoked otoacoustic emissions: normative data and presbycusis // Audiology. 1988. Vol. 27. № 1. P.27−35.
  124. Bonfils P., Avan P., Francois M. et al. Distortion-product otoacoustic emissions in neonates: normative data I I Acta Otolaryngol. 1992. Vol. 112. № 5. P. 739−744.
  125. Brown A.M., McDowell B., Forge A. Acoustic distortion products can be used to monitor the effects of chronic gentamicin treatment // Hear Res. 1989. Vol. 42. № 2−3. P. 143−156.
  126. Brown D.K., Bowman D.M., Kimberley B.P. The effects of maturation and stimulus parameters on the optimal f (2)/f (l) ratio of the 2f (l)-f (2) distortion product otoacoustic emission in neonates (l) // Hear Res. 2000. № 145. P. 17−24.
  127. BrummetR.E., Fox K.E., Brown R.T., Himes D.L. Comprative ototoxic liability of netilmicin and gentamicin // Arch. Otolaryngol. 1978. № 104. P.579−584.
  128. Caelers A., Monge A., Brand Y, Bodmer D. Somatostatin and gentamicin-induced auditory hair cell loss // Laryngoscope. 2009. Vol.119. № 5. P.933−937.
  129. Casali R.L., Santos M.F. Auditory Brainstem Evoked Response: response patterns of full-term and premature infants // Braz J Otorhinolaryngol. 2010. Vol.76. № 6. P.729−73 8.
  130. CoenraadS., Goedegebure A., van Goudoever J.B., Hoeve L.J. Risk factors for sensorineural hearing loss in NICU infants compared to normal hearing NICU controls // Int J Pediatr Otorhinolaryngol. 2010. Vol.74. № 9. P.999−1002.
  131. Coenraad S., Toll M.S., Hoeve H.L. et al. Auditory brainstem response morphology and analysis in very preterm neonatal intensive care unit infants // Laryngoscope. 2011. Vol.121. № 10. P. 2245−1149.
  132. Cone-Wesson B., Vohr B.R., Sininger Y.S. et al. Identification of neonatal hearing impairment: infants with hearing loss // Ear Hear. 2000. № 21. P. 488−507.
  133. Contopoulos-Ioannidis D.G., Giotis N.D., Baliatsa D.V. et al. Extended-interval aminoglycoside administration for children: a meta-analysis // Pediatrics. 2004. Vol. 114 № 1. P. lll-118.
  134. Cox C., Hack M., Metz D. Brainstem-evoked response audiometry: normative data from the preterm infant// Audiology. 1981. Vol. 20. № 1.1. P. 53−64.
  135. Dauman R., Roussey M., Belot V. et al. Screening to detect permanent childhood hearing impairment in neonates transferred from the newborn nursery // Int J Pediatr Otorhinolaryngol. 2009. Vol.73. № 3. P.457−465.
  136. Davis N.M., Doyle L. W., Ford G. W. et al. Auditory function at 14 years of age of very low birthweight children // Dev Med Child Neurol. 2001. № 43. P. 191−196.
  137. Dhar S., Abdala C. A comparative study of distortion-product-otoacoustic-emission fine structure in human newborns and adults with normal hearing // J Acoust Soc Am. 2007. Vol. 122. № 4. P.2191−2202.
  138. Dulon D., Aran J.M., Zajic G., Schacht J. Comparative uptake of gentamicin, netilmicin, and amikacin in the guinea pig cochlea and vestibule // Antimicrob. Agents Chemother. // 1986. Vol. 30. № 1. P.96−100.
  139. Dulon D., Hiel H., Aiirousseau C. et al. Pharmacokinetics of gentamicin in the sensory hair cells of the organ of Corti: rapid uptake and long term persistence // C. R. Acad. Sci. 1993. III. P. 682−687.
  140. De Klaver P.A., Hendriks J.G., van Onzenoort H.A. et al. Gentamicin Serum Concentrations in Patients With Gentamicin-PMMA Beads for Infected Hip Joints: A Prospective Observational Cohort Study // Ther Drug Monit. 2012. Vol. 34. № 1. P.67−71.
  141. EggermontJ.J. Defining and determining sensitive periods // Acta Otolaryngol. 1986. № 429. P.5−9.
  142. Eshraghi A., Francois M., Narcy P. Evolution of transient evoked otoacoustic emissions in preterm newborns: a preliminary study // Int J Pediatr Otorhinolaryngol. 1996. Vol. 37. № 2. P. 121−127.
  143. Fabiani M, Sohmer M, Tait C. et al. Functional measure of brain acnivity brainstem transmission time. // EEG and clinical Neurophysiology. 1979. Vol. 47. № 4. P. 483196.
  144. Fee W.E. Aminoglycoside ototoxicity in the human // Laryngoscope. 1980. № 10. P. 1−19.
  145. Fischel-Ghodsian N. Genetic factor in aminoglycoside ototoxicity // Ann NY Acad Sci. 1999. № 884. P.99−109.
  146. Fischel-Ghodsian N. Genetic factors in aminoglycoside toxicity. Pharmacogenomics // 2005. № 6. P.27−36.
  147. Friedmann I., Dadswell J.V., Bird E.S. Electron-microscope studies of the neuroepithelium of the inner ear in guinea-pigs treated with neomycin // J Pathol Bacteriol. 1966. Vol. 92. № 2. P. 415122.
  148. FrilingR, Rosen S.D., Monos T. et al. Retinopathy of prematurity in multiple-gestation, very low birth weight infants // J Pediatr Ophthalmol Strabismus. 1997. Vol.34. № 2. P.96−100.
  149. Fullas F., Padomek M.T., Thieman C.J. Comparative evaluation of six extended-interval gentamicin dosing regimens in premature and full-term neonates // Am J Health Syst Pharm. 2011. Vol.68. № 1. P.52−56.
  150. Garges H.P., Moody M. A, Cotton C.M. et al. Neonatal meningitis: what is the correlation among cerebrospinal fluid cultures, blood cultures, and cerebrospinal fluid parameters? // Pediatrics. 2006. № 117. P. 1094−1100.
  151. Garland S.M., Tobin J.M., Pirotta M. et al. The Problems trial: investigating the effects of probiotics on late onset sepsis in very preterm infants // BMC Infect Dis. 2011. № 4. P. 210.
  152. Gattell J.M., SanMigiiel J.G., Araojo V. et al. Prospective randomized doubleblind comparison of nephrotoxicity and auditory toxicity of tobramycin and netilmicin // Antimicrob. Agents Chemother. 1984. Vol.26. № 5. P.766−769.
  153. Gatell J.M., Ferran F., Araujo V. et al. Univariate and multivariate analyses of risk factors predisposing to auditory toxicity in patients receiving aminoglycosides // Antimicrob Agents Chemother. 1987. Vol.31. № 9. P. 1383−1387.
  154. Ghirri P., Liumbruno A., Lunardi S. et al. Universal neonatal audiological screening: experience of the University Hospital of Pisa // Ital J Pediatr. 2011. Vol. 11. № 37. P.16.
  155. Gkoritsa E., Tsakanikos M, Korres S. et al. Transient otoacoustic emissions in the detection of olivocochlear bundle maturation // Int J Pediatr Otorhinolaiyngol.2006. Vol.70. № 4. P.671−676.
  156. Gkoritsa E., Korres S., Psarommatis /. et al. Maturation of the auditory system: 1. Transient otoacoustic emissions as an index of inner ear maturation // Int J Audiol. 2007. Vol.46. № 6. P.271−276.
  157. Gongalves-Pereira J., Martins A., Povoa P. Pharmacokinetics of gentamicin in critically ill patients: pilot study evaluating the first dose // Clin Microbiol Infect. 2010. Vol. 16. № 8. P. 1258−1263.
  158. Gorga M.P., Neely S. T., Bergman B.M. et al. A comparison of transient-evoked and distortion product otoacoustic emissions in normal-hearing and hearing-impaired subjects // J Acoust Soc Am. 1993. Vol.94. № 5. P.2639−2648.
  159. Gorga M.P., Norton S.J., Sininger Y.S. et al. Identification of neonatal hearing impairment: distortion product otoacoustic emissions during the perinatal period // Ear Hear. 2000. Vol.21. № 5. P.400124.
  160. Grohskopf L.A., Huskins W.C., Sinkowitz-Cochran R.L. et al. Use of antimicrobial agents in United States neonatal and pediatric intensive care patients // Pediatric Infectious Disease Journal. 2005. Vol.24. № 9. P.766−773.
  161. Harding G.W., Bohne B.A. Distribution of focal lesions in the chinchilla organ of Corti following exposure to a 4-kHz or a 0.5-kHz octave band of noise // Hear Res.2007. Vol. 225. № 1−2. P.50−59.
  162. Hoff D.S., Wilcox R.A., Tollefson L.M. et al. Pharmacokinetic outcomes of a simplified, weight-based, extended-interval gentamicin dosing protocol in critically ill neonates//Pharmacotherapy. 2009. Vol.29. № 11. P. 1297−1305.
  163. Gafni M., Sohmer H., Gross S. et al. Analysis of auditory nerve brainstem responses in neonatas and very young infants. //Arch. Oto-Rhino-Laryngol. 1980. Vol. 229. № 3−4. P. 167−177.
  164. Gaan M.X. Prevalence of mitochondrial 12S rRNA mutations associated with aminoglycoside ototoxicity // Volta Rev. 2005. № 105. P. 211−227.
  165. Guthrie O. W. Aminoglycoside induced ototoxicity // Toxicology. 2008. Vol.30. № 249 (2−3). P. 91−96.
  166. Hack M., Klein N.K., Taylor H.G. Long-term developmental outcomes of low birth weight infants//Future Child. 1995. Vol. 5. № 1. P.176−196.
  167. Hawkins J.J., Engstroem H. Effect of kanamycin on cochlear cytoarchitecture // Acta Otolaryngol Suppl. 1964. № 188. P. 100.
  168. Hille E.T., Straaten H.I., Verkerk P.H. Prevalence and independent risk factors for hearing loss in NICU infants // Acta Paediatr. 2007. Vol.96. № 8. P. 1155−1158.
  169. Hock R., Anderson R.J. Prevention of drug-induced nephrotoxicity in the intensive care unit//J Crit Care. 1995. Vol.10. № 1. P. 33−43.
  170. Huth M.E., Ricci A. J., Cheng A.G. Mechanisms of aminoglycoside ototoxicity and targets of hair cell protection // Int J Otolaryngol. 2011. ID:937 861.
  171. Hyppolito M.A. Ototoxicidade da cisplatina e otoprote
  172. Imamura S., Adams J.C. Distribution of gentamicin in the guinea pig inner ear after local or systemic application // J Assoc Res Otolaryngol. 2003. Vol. 4. № 2. P.176−195.
  173. Jahre J.A., Fu K.P., Neu H.C. Clinical evaluation of netilmicin therapy in serious infections // Am. J. Med. 1979. № 66. P.67−73.
  174. Jewett D., Romano M. Neonatal Development of auditory system potentials averageg from scalp of Rat a Cat. //Brain Res. 1972. № 36. P. 101−109.
  175. Jiang Z.D., Bros i D.M., Wilkinson A.R. Depressed brainstem auditory electrophysiology in preterm infants after perinatal hypoxia-ischaemia // J Neurol Sci. 2009. Vol.15. № 281. P.28−33.
  176. Jiang Z.D., Zhou Y., Ping L.L. et al. Brainstem auditory response findings in late preterm infants in neonatal intensive care unit // Acta Paediatr. 2011. Vol.100. № 8. P.51−54.
  177. Kadamhari S., Heath P.T., Sharland M. et al. Variation in gentamicin and vancomycin dosage and monitoring in UK neonatal units // J Antimicrob Chemother. 2011. Vol. 66. № 11. P.2647−2650.
  178. Kapoor R., Panda N. K Transient evoked otoacoustic emissions // Indian J Pediatr. 2006. Vol.73. № 4. P. 283−286.
  179. Kemp D. T. Evidence of mechanical nonlinearity and frequency selective wave amplification in the cochlea // Arch Otorhinolaryngol. 1979. Vol. 224. № 1−2. P. 3745.
  180. Kemp D.T., Bray P, Alexander L. et al. Acoustic emission cochleography-practical aspects // Scand Audiol Suppl. 1986. № 25. P. 71−95.
  181. Kemp DT, Ryan S, Bray P. A guide to the effective use of otoacoustic emissions//Ear Hear. 1990. Vol.11. № 2. P:93−105.
  182. Kemp D.T. Otoacoustic emission, their origin in cochlear function, and use // Br. Med. Bull. 2002. Vol.63. P.223−241.
  183. Klingenherg C., Smabrekke L., Lier T. et al. Validation of a simplified netilmicin dosage regimen in infants // Scandinavian journal of infectious diseases. 2004. Vol.36. № 6−7. P.474—479.
  184. Koi-venranta E., Lehtonen L., Peltola M. et al. Morbidities and hospital resource use during the first 3 years of life among very preterm infants // Pediatrics. 2009. Vol.124. № 1. P. 128−134.
  185. Kosa J.L., Guendelman S., Pearl M. et al. The association between prepregnancy BMI and preterm delivery in a diverse southern California population of working women // Matern Child Health J. 2011. Vol.15. № 6. P. 772−781.
  186. Kuhn R.J., Nakata M.C., Powell D.A. et al. Pharmacokinetics of netilmicin in premature infants // European journal of clinical pharmacology. 1986. Vol.29. № 5. P.635−637.
  187. Lautermann J., Dehne N., Schacht J., Jahnke K. Aminoglycoside- and cisplatin-ototoxicity: from basic science to clinics // Laryngorhinootologie. 2004. Vol.83. № 5. P.317−323.
  188. Lenoir M., Daudet N., Humbert G. et al. Morphological and molecular changes in the inner hair cell region of the rat cochlea after amikacin treatment // J Neurocytol. 1999. Vol.28. № 10−11. P.925−937.
  189. Lerner A.L., Reyes N.P., Cone L.A. et al. Randomize, controlled trial of the comparative efficacy, auditory toxicity and nephrotoxicity of tobramicin and netilmicin // Lancet. 1983. № 1. P. 1123−1126.
  190. Li H., Steyger P. S. Synergistic ototoxicity due to noise exposure and aminoglycoside antibiotics // Noise Health. 2009. Vol.11. № 42. P.26−32.
  191. Li M., Tzagolojf A., Underbrink-Lyon K. et al. Identification of the paromomycin-resistance mutation in the 15 S rRNA gene of yeast mitochondria // J Biol Chem. 1982. Vol.257. № 10. P. 5921−5928.
  192. Li Z.H., LiR., Chen J. et al. Mutation analysis of the mitochondrial 12S rRNA gene in Chinese pediatric subjects with aminoglycoside-induced and non-syndromic hearing loss // Hum Genet. 2005. Vol.117. № 1. P.9−15.
  193. Lin C.D., Oshima T., Oda K. et al. Ototoxic interaction of kanamycin and 3-nitropropionic acid// Acta Otolaryngol. 2008. Vol. 128. № 12. P. 1280−1285.
  194. Marco J., Morant A., Caballero J. et al. Distortion product otoacoustic emissions in healthy newborns: normative data // Acta Otolaryngol. 1995. Vol.115. № 2. P. 187−189.
  195. Marcoux A.M. Maturation of auditory function related to hearing threshold estimations using the auditory brainstem response during infancy // Int J Pediatr Otorhinolaryngol. 2011. Vol.75. № 2. P. 163−170.
  196. Meyer C., Witte J., Hildmann A. et al Neonatal screening for hearing disorders in infants at risk: incidence, risk factors and follow up // Pediatrics. 1999. № 104. P. 900−904.
  197. Monge A., Nagy /., Bonabi S. et al. The effect of erythropoietin on gentamicin-induced auditory hair cell loss // Laryngoscope. 2006. Vol. 116. № 2. P.312−316.
  198. Morlet 71, Collet L., Duclaiix R. et al. Spontaneous and evoked otoacoustic emissions in pre-term and full-term neonates: is there a clinical application? // Int J Pediatr Otorhinolaryngol. 1995. Vol. 33. № 3.1. P.207−211.
  199. Morlet T., Durrant J.D., Lapillonne A. et al. Development of auditory asymmetry in transient evoked otoacoustic emissions in pre-term infants // J Am Acad Audiol. 2003. Vol.14. № 6. P.339−346.
  200. Newton V. Adverse perinatal conditions and the inner ear // Semin-Neonatol. 2001. Vol.6. № 6. P.543−551.
  201. Norton S.J., Gorga M.P., Widen J.E. et al. Identification of neonatal hearing impairment: transient evoked otoacoustic emissions during the perinatal period // Ear Hear. 2000. Vol.21. № 5. P.425142.
  202. Ohl C., Dornier L., Czajka C. et al. Newborn hearing screening on infants at risk. Int J Pediatr Otorhinolaryngol. 2009. Vol.73. № 12.1. P.1691−1695.
  203. Ohtani I., Ohtsuki K., Aikawa T. et al. Low ototoxicity and its mechanism of netilmicin// ORL J Otorhinolaryngol Relat Spec. 1985. Vol.47. № 2. P.84−89.
  204. Oliveira J.A.A., Canedo D.J.M., Rossato M. Autodefesa contra a ototoxicidade de antibioticos aminoglicosideos // Rev Bras Otorrinol. 2002. Vol.68. № 1. P.7−13.
  205. Oliveira J.A.A., Bernal T.M.O. Ototoxicidade de Aminoglicideos e Otoprotegao. In: Campos CAH. Costa HOO. Sao Paulo // Tratado de Otorrinolaringologia. 2003. Vol.2. P. 148−167.
  206. Oliveira J.A.A., Bernal T.M.O. Prevengao contra aminoglicosideos e otoprotegao experimental // In Otorrinolaringologia Principios e Pratica 2a Ed. Porto Alegre: Artmed. 2006. P.392−409.
  207. Olusanya B.O. Perinatal profile of very low birthweight infants under a universal newborn hearing screening programme in a developing country: a case-control study // Dev Neurorehabil. 2010. Vol.13. № 3. P.156−163.
  208. Olusanya B.O., Bamigboye B.A. Is discordance in TEOAE and AABR outcomes predictable in newborns? // Int J Pediatr Otorhinolaryngol. 2010. Vol.74. № 11. P. 1303−1309.
  209. Park J.C., Cohen G.M. Vestbular ototoxicity in the chick: effects of streptomycin on equilibrium and on ampulla dark cells // Am. J. Otolaryngol. 1982. № 3. P. 117−127.
  210. Paul A.K. Early identification of hearing loss and centralized newborn hearing screening facility-the Cochin experience // Indian Pediatr. 2011. Vol.48. № 5. P.355−359.
  211. Pavlidis P., Nikolaidis V., Gouveris H. et al. Ototoxicity caused by once- and twice-daily administration of amikacin in rabbits // Int J Pediatr Otorhinolaryngol. 2010. Vol.74. № 4. P. 361−364.
  212. Pereira P.K., Martins A.S., Vieira M.R., Azevedo M.F. Newborn hearing screening program: association between hearing loss and risk factors // Pro Fono. 2007. Vol.19. № 3. P.267−278.
  213. Pettigrew A.G., Moray A.L. Changes in the brainstem auditory evoked response of the rabbit during the first postnatal month // Brain res. 1987. Vol.430. № 2. P. 267 276.
  214. Piekarczyk A., Kaminska E., Taljanski W. et al. Pharmacokinetics of netilmicin in neonates // Medycyna wieku rozwojowego. 2003.Vol.7 (4 Pt 2). P. 547−555.
  215. Prieve B.A., Hancur-Bucci C.A., Preston J.L. Changes in transient-evoked otoacoustic emissions in the first month of life // Ear Hear. 2009. Vol.30. № 3. P. 330 339.
  216. Probst R., Lonsbwy-Martin B.L., Martin G.K. A review of otoacoustic emissions//J Acoust Soc Am. 1991. Vol. 89. № 5. P. 2027−2067.
  217. Probst R., Harris F.P., Hauser R. Clinical monitoring using otoacoustic emissions // Br J Audiol. 1993. Vol. 27. № 2. P.85−90.
  218. Psarommatis I., Florou V., Fragkos M. et al. Reversible auditory brainstem responses screening failures in high risk neonates // Eur Arch Otorhinolaryngol. 2011. Vol.268. № 2. P. 189−196.
  219. Porter C.A., Martin G.K., Stagner B.B. et al. Distortion-product otoacoustic emission suppression growth in normal and noise-exposed rabbits // J Acoust Soc Am. 2006. Vol. 120. № 2. P. 884−900.
  220. Spoendlin H. Innervation densities of the cochlea // Acta Otolaryngol. 1972. Vol. 73. № 2. P. 235−248.
  221. Spoendlin H. Neuroanatomical basis of cochlear coding mechanisms // Audiology. 1975. Vol.14. № 5−6. P. 383−407.
  222. Ramsebner R., Volker R., Lucas T. et al. High incidence of GJB2 mutations during screening of newborns for hearing loss in Austria // Ear Hear. 2007. Vol.28. № 3. P.298−301.
  223. Rengelshausen J., Beedgen B., Tsamouranis K. et al. Pharmacokinetics of a netilmicin loading dose on the first postnatal day in preterm neonates with very low gestational age // European journal of clinical pharmacology. 2006. Vol.62. № 9. P.773−777.
  224. Rizzi M.D., Hirose K. Aminoglycoside ototoxicity // Curr Opin Otolaryngol Head Neck Surg. 2007. Vol. 15. № 5. P.352−357.
  225. Robertson C.M., Howarth T.M., Bork D.L., Dinu I.A. Permanent bilateral sensory and neural hearing loss of children after neonatal intensive care because of extreme prematurity: a thirty-year study//Pediatrics. 2009. Vol.123. № 5. P.797−807.
  226. Saez-Llorens X., McCracken G.H. Bacterial meningitis in children // Lancet. 2003. № 361. P. 2139−2148.
  227. Sahlberg H., Salonen J., Jaaskelainen S. et al. Screening for hearing loss in newborns at Turku University Central Hospital // Duodecim. 2011. Vol. 127. № 18. P. 1934−1941.
  228. Salto T., Yamamoto /., Huang XL. et al. Effects of muscle relaxants on EEG, ABR and EMG in rabbits // Human & experimental toxicology. 1999. Vol. 18. № 12. P.718−723.
  229. Salamy A., McKean C.M., Bada F.B. Maturation changes in auditory transmitten as reflected in human brainstem potentials. // Brain Res. 1975. Vol.96. № 2. P. 361−366.
  230. Salamy A. Postmatal development of human brainstem om potentials during the first jear of life. //EEG.a.clin.Neurophysiol., -1976. № 40.1. P. 418—426.
  231. Schonweiler R., Schmidt C.M. Universal auditory screening of neonates and hearing disorders in childhood // Dtsch Arztebl Int. 2009. Vol.106. № 20. P.355−356.
  232. Sha S.H., Schacht J. Stimulation of free radical formation by aminoglycoside antibiotics //Hear Res. 1999. № 128. P. l 12−128.
  233. Shaikh K., Premji S.S., Rose M.S. et al. The association between parity, infant gender, higher level of paternal education and preterm birth in Pakistan: a cohort study // BMC Pregnancy Childbirth. 2011. Vol.2. № 11. P.88.
  234. Shi Y, Martin W.H. ABR and DPOAE detection of cochlear damage by gentamicin // J Basic Clin Physiol Pharmacol. 1997. Vol. 8. № 3. P.141−155.
  235. Siddiqi A., Khan D.A., Khan F.A. et al. Therapeutic drug monitoring of amikacin in preterm and term infants // Singapore Med J. 2009. № 50. P.486−489.
  236. Silva D.P.C., Martins R.H.G. Analise das emissoes otoacusticas transientes e dos potenciais evocados auditivos do tronco encefalico em neonatos com hiperbilirrubinemia // Braz J Otorhinolaryngol. 2009. Vol.75. № 3. P.381−386.
  237. Sleifer P., da Costa S.S., Coser P.L. et al. Auditory brainstem response in premature and full-term children // Int J Pediatr Otorhinolaryngol. 2007. Vol.71. № 9. P. 1449−1456.
  238. Smiechara M., Makowski A. Assessment of transient evoked otoacoustic emission (TEOAE) in preterm newborns with low birth weight // Otolaryngol Pol. 2002. Vol.56. № 3. P.353−356.
  239. Smarzynski J., Kim D.O. Distortion-product and click-evoked otoacoustic emissions of normally-hearing adults // Hear Res. 1992. Vol. 58. № 2. P. 227−240.
  240. Smurzynski J., Jung M.D., Lafreniere D. et al. Distortion-product and click-evoked otoacoustic emissions of preterm and full-term infants // Ear Hear. 1993. Vol.14. № 4. P.258−274.
  241. Smurzynski J. Longitudinal measurements of distortion-product and click-evoked otoacoustic emissions of preterm infants: preliminary results//Ear Hear. 1994. Vol.15. № 3.P.210−223.
  242. Spanggaard M.H., Honge B.L., Schonheyder H.C. et al. Short-term gentamicin therapy and risk of renal toxicity in patients with bacteraemia // Scand J Infect Dis. 2011. Vol. 43. № 11−12. P.953−956.
  243. Starr A.M., Amlie N. Dovelopment of auditory function in newborn infants revealed by auditory brainstem potentials. // Pediatrics. 1977. № 6. P. 831−842.
  244. Sim J.H., Li J., Huang P. et al. Early detection of hearing impairment in high-risk infants of NICU // Chinese journal of pediatrics. 2003. Vol.41. № 5. P.357−359.
  245. Taylor D.J., Mencher G.T. Neonate response. The effect of infant state and auditory stimuli. Arch Otolaryngol. 1972. Vol.95. № 2. P.120−124.
  246. Tognola G., Parazzini M., de Jager P. et al. Cochlear maturation and otoacoustic emissions in preterm infants: a time-frequency approach // Hear Res. 2005. № 199. P.71−80.
  247. Tomasik T., Godek J., Kwinta P. et al. Do infants treated in the neonatal intensive care unit need multi-stage, universal hearing screening testing? // Przegl Lek. 2011. Vol.68. № 1. P.47−53.
  248. Tran Ba Huy P., Bernard P., Schacht J. Kinetics of gentamicin uptake and release in the rat. Comparison of inner ear tissues and fluids with other organs // J Clin Invest. 1986. Vol. 77. № 5. P. 1492−1500.
  249. Tresman L, Parsons J., Santoro J. et al. Pharmacology and efficacy of netilmicin // Antimicrob. Agents Chemother. 1978. № 13. P.832−836.
  250. Turchetta R., Orlando M.P., Cammeresi M.G. et al. Modifications of auditory brainstem responses (ABR): observations in full-term and pre-term newborns // J Matern Fetal Neonatal Med. 2011. № 28.
  251. Urbaniec N., Namyslowski G., Morawski K. et al. Effects of intrauterine hypotrophy and perinatal hypoxia on cochlear function evaluated by click evoked otoacoustic emissions (TEOAE) // Otolaryngol Pol. 2004. Vol.58. № 2. P.365−372.
  252. Uus K., Bamford J. Effectiveness of population-based newborn hearing screening in England: ages of interventions and profile of cases // Pediatrics. 2006. Vol.117. № 5. P.887−893.
  253. Villanueva C.M., Gracia-Lavedan E., Iharluzea J. et al. Exposure to trihalomethanes through different water uses and birth weight, small for gestational age, and preterm delivery in Spain // Environ Health Perspect. 2011. Vol.119. № 12. P. 1824−1830.
  254. Vohr B.R., Widen J.E., Cone-Wesson B. et al. Identification of neonatal hearing impairment: characteristics of infants in the neonatal intensive care unit and well-baby nursery // Ear Hear. 2000. Vol.21. № 5. P.373−382.
  255. Wang J., Powers N.L., Hofstetter P. et al. Effects of selective inner hair cell loss on auditory nerve fiber threshold, tuning and spontaneous and driven discharge rate // Hear Res. 1997. № 107(1−2). P.67−82.
  256. Wang 0., Steyger P. S. Trafficking of systemic fluorescent gentamicin into the cochlea and hair cells // J Assoc Res Otolaryngol. 2009. Vol. 10. № 2. P. 205−219.
  257. Wang J., Powers N.L., Hofstetter P. et al Effects of selective inner hair cell loss on auditory nerve fiber threshold, tuningand spontaneous and driven discharge rate // Hear Res. 1997. Vol. 107. № 1−2. P.67−82.
  258. Wang X, Luo R., Wen R. et al. The characteristics of auditory brainstem response in preterm very low birth weight babies // Lin Chung Er Bi Yan Hou Tou Jing Wai Ke Za Zhi. 2009. Vol.23. № 16. P.746−748.
  259. Webster M., Webster D.B. Spiral ganglion neuron loss following organ of Corti loss: a quantitative study // Brain Res. 1981. Vol.212. № 1.1. P. 17−30.
  260. Widziszowska A., Namysiowski G., Genge A. et al. Assessment of retrocochlear hearing pathway activity in infants with central nervous system impairment occurring as an effect of perinatal asphyxia // Otolaryngol Pol. 2008. Vol.62. № 4. P.471-^75.
  261. Wu J., Ye Y, Wang S., Xing G. Newborn hearing screening in the neonatal intensive care unit: a preliminary study // Lin Chung Er Bi Yan Hou Tou Jing Wai Ke Za Zhi. 2009. Vol.23. № 10. P.445−447.
  262. Xie X, Liang Y Responsibility of mismatch negativity in neonates with hyperbilirubinemia // Lin Chung Er Bi Yan Hou Tou Jing Wai Ke Za Zhi. 2011. Vol.25. №l.P.23−27.
  263. Xu Z.M., Cheng WX, Yang XL. Performance of two hearing screening protocols in NICU in Shanghai // Int J Pediatr Otorhinolaiyngol. 2011. Vol.75. № 10. P. 1225−1229.
  264. Ye L., Tao Z., Hua Q. et al. Research on DPOAE of guinea pigs treated with gentamicin // Sheng Wu Yi Xue Gong Cheng Xue Za Zhi. 2008. Vol. 25. № 1. P.57−60.
  265. Yin R., Wilkinson A.R., Chen C. et al. No close correlation between brainstem auditory function and peripheral auditoiy threshold in preterm infants at term age // Clin Neurophysiol. 2008. Vol.119. № 4. P.791−795.
  266. Zhang H., Guo M, Li Y Characteristic of distortion product otoacoustic emissions for preterm newborn // Lin Chuang Er Bi Yan Hou Ke Za Zhi. 2004. Vol.18. №l.P.23−26.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!