Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Структурная характеристика матки крыс, рубца миометрия и подвздошных лимфатических узлов после повторных родов

ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

При изучении тканей матки крыс после однократных родов с рубцом ми-ометрия было обнаружено, что в процессе беременности и естественной родовой деятельности происходит повреждение не самого рубца на матке, а его пограничной с миометрием зоны, о чем свидетельствуют кровоизлияния и явления лимфостаза на границе рубца и миометрия у животных после родов. По результатам этих исследований было сделано… Читать ещё >

Содержание

  • Глава 1. Обзор литературы
    • 1. 1. Структурная организация матки
    • 1. 2. Особенности беременности и родов с рубцом на матке после кесарева сечения
    • 1. 3. Изменения лимфоидных органов при беременности и родах
  • Глава 2. Материал и методы исследования
    • 2. 1. Группы животных и сроки забора материала
    • 2. 2. Моделирование рубца миометрия
    • 2. 3. Объекты исследования
    • 2. 4. Подготовка материала и изучение методами световой микроскопии
    • 2. 5. Статистическая обработка полученных данных
  • Глава 3. Изменения тканей матки крыс после первых и повторных родов с рубцом на матке
    • 3. 1. Собственная пластинка слизистой оболочки матки
      • 3. 1. 1. Компоненты кровеносного и лимфатического русла в глубоких слоях собственной пластинки слизистой оболочки матки
      • 3. 1. 2. Цитограмма тканевых лейкоцитов глубоких слоев собственной пластинки слизистой оболочки матки
    • 3. 2. Миометрий
      • 3. 2. 1. Кровеносные и лимфатические сосуды в миометрии
      • 3. 2. 2. Цитограмма тканевых лейкоцитов миометрия
    • 3. 3. Ткань рубца на матке
      • 3. 3. 1. Состояние кровеносных и лимфатических сосудов в тканях рубца на матке
      • 3. 3. 2. Цитограмма тканевых лейкоцитов в рубце на матке
    • 3. 4. Ткани на границе рубца на матке и миометрия
      • 3. 4. 1. Компоненты кровеносного и лимфатического русла в тканях на границе рубца на матке и миометрия
      • 3. 4. 2. Цитограмма тканевых лейкоцитов на границе рубца на матке и миометрия
  • Глава 4. Реакция подвздошных лимфатических узлов крыс на первые и вторые роды с рубцом миометрия
    • 4. 1. Структурная организация подвздошных лимфатических узлов
    • 4. 2. Цитоархитектоника коркового плато подвздошных лимфатических узлов
    • 4. 3. Цитоархитектоника паракортикальной зоны подвздошных лимфатических узлов
    • 4. 4. Цитоархитектоника лимфоидных фолликулов без герминативных центров подвздошных лимфатических узлов
    • 4. 5. Цитоархитектоника мантийной зоны лимфоидных фолликулов с герминативными центрами подвздошных лимфатических узлов
    • 4. 6. Цитоархитектоника герминативных центров лимфоидных фолликулов подвздошных лимфатических узлов
    • 4. 7. Цитоархитектоника мякотных тяжей подвздошных лимфатических узлов
    • 4. 8. Цитограмма клеток в мозговых синусах подвздошных лимфатических узлов

Структурная характеристика матки крыс, рубца миометрия и подвздошных лимфатических узлов после повторных родов (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность темы

:

У женщин в России наличие рубца на матке после кесарева сечения до 90-х годов служило практически абсолютным показанием для повторных кесаревых сечений при последующих беременностях (Паллади Г. А., Штемберг М. И., 1980; Ярцева Л. Д., Абрамченко В. В., 1980; Кулавский В. А., Афанасьев А. А., 1986; Стрижаков А. Н., Лебедев В. А., 1991а, 19 916). Отношение к этой проблеме стало меняться только в последние 15 лет, когда начали появляться сообщения о родах после операции кесарева сечения (Белоусов М.А. и др., 1991; Мареева Л. С. и др., 1993; Краснопольский В. И. и др., 1994; Кохан И. А., 2002; Стариков Н. В., 2005; Поздняков И. М., 2006).

Примерно такая же картина наблюдается и в США, где даже в настоящее время вагинальное родоразрешение после кесарева сечения проводят намного реже, чем в Европе (Paul R.H., Miller D.A., 1995; Haddad S., Maria В., 1996; Flamm B.L., 2001).

Однако, преимущества, получаемые при естественных родах после кесарева сечения значительно превышают риски повторного кесарева сечения (Phelan J.P. et al., 1987; Nielsen T.F. et al., 1989; Rachagan S.P. et al., 1991; Berger D. et al., 1991; Mozurkewich E.L., Hutton E.K., 2000; Bretelle F. et al., 2001; Кохан И. А., 2002; Ben A.N. et al., 2003; Стариков H.B., 2005; Поздняков И. М., 2006).

О родах естественным путем, в том числе и стимулированных, после предыдущего кесарева сечения имеется много сообщений (Benifla J.L. et al., 1995; Zabransky F., 1995; Phelan J.P. et al., 1998; Vause S., Macintosh M., 1999; Rozenberg P. et al., 1996,1997,1999; Appleton B. et al., 2000; Shimonovitz S. et al., 2000; Wasef W.R., 2000; Scioscia M. et al., 2005). По некоторым данным, вагинальное родоразрешение у таких рожениц удается до 90% или даже более, частота разрывов матки при естественных родах у этой категории пациентов незначительно выше или не отличается от групп женщин без рубцов на матке (Zorlu C.G. et al., 1996; Dubuisson J.B. et al., 1996; Martin J.N. et al., 1997; Abbassi.

H. et al., 1998; Bretelle F. et al., 2000; Yap O.W. et al., 2001; Ben A.N. et al., 2003; Ofir K. et al., 2004; Hassan A., 2005).

Достаточно много исследователей изучали морфологическими, клиническими и другими методами особенности формирования рубца матки у беременных женщин и экспериментальных животных после исполнения кесарева сечения различными способами (Ruiz-Velasco V. et al., 1968; Dellenbach P. et al., 1968; Martella E. et al., 1968; Клименко 3.C., Гитман Г. И., 1969; Бульбаков K.C., Басин Б. Л., 1969; Wojdecki J., Grynsztajn A., 1970; Prochorow M., Lazar W., 1971; WaniorekA., 1972a, 19 726- ГорановМ., Попович Д., 1978a, 19 786- VanVugtP.J., 1979; Kanadys W., 1979; Макаров И. О. и др., 1989; Лебедев В. А. и др., 1991; Ко-хан И.А., 2002; Стариков Н. В., 2005; Якимова Н. В., 2006; Поздняков И. М., 2006).

При изучении тканей матки крыс после однократных родов с рубцом ми-ометрия было обнаружено, что в процессе беременности и естественной родовой деятельности происходит повреждение не самого рубца на матке, а его пограничной с миометрием зоны, о чем свидетельствуют кровоизлияния и явления лимфостаза на границе рубца и миометрия у животных после родов. По результатам этих исследований было сделано предположение, что после каждых новых родов все большее число животных с рубцом на матке будут иметь признаки несостоятельности тканей на границе миометрия и рубца и все большее количество крыс будут иметь противопоказания к последующим родам (Якимова Н.В., 2006; Якимова Н. В. и др., 2006; Поздняков И. М., 2006).

В оценке состоятельности рубцов матки после кесарева сечения немалую роль играет изучение сосудов и нервов этих рубцов (Якутина М.Ф., 1968). Степень васкуляризации, связь рубца с мышечной тканью, отсутствие воспалительных изменений могут служить признаком состоятельности рубца (Kiss D. et al., 1978; Лазаров Л., Стратиев С., 1993). Следует отметить, что даже минимальная воспалительная реакция приводит к рассасыванию коллагеновых волокон соединительной ткани и, таким образом, приводит к ослаблению рубца на матке после кесарева сечения (Шехтер А.Б., Милованова З. П., 1975).

В регионарных лимфатических узлах матки крыс при беременности возрастает относительный объем паракортикальной зоны, особенно в период с 13 по 17 день. Отек, вазодилятация и нейтрофильная инфильтрация были отмечены с 7 по 11 день. Эндотелий посткапиллярных вен был гипертрофирован, содержал множество мигрирующих лимфоцитов, которые были аккумулированы вокруг сосудов, объем самого микроциркуляторного русла был увеличен. Начиная с 17 суток в паракортикальной зоне появлялись плазмобласты, плазмоци-ты, клетки Мотта, моноциты и макрофаги. В В-зонах и мозговых синусах увеличивалось число бластов, плазмоцитов, моноцитов, макрофагов и делящихся клеток, сокращался процент ретикулярных клеток. При изучении ультраструктуры кровеносных капилляров подвздошных лимфатических узлов беременных крыс было найдено возрастание просвета этих капилляров, степени фенестра-ции артериальной и венозной частей, увеличение объема промежуточных синусов, числа микропиноцитозных везикул и активация формирования трансэндо-телиальных каналов (Бородин Ю.И. и др., 1982, 1986, 1987 В, 1988; Склянова Н. А. и др., 1987).

Согласно результатам исследований Н. В. Якимовой (2006), Н. В. Якимовой с соавт. (2006) и И. М. Позднякова (2006) в подвздошных лимфатических узлах крыс с рубцом на матке после однократных родов увеличена объемная плотность соединительной ткани, расширены мякотные тяжи и мозговые синусы, при этом уменьшена относительная площадь паракортекса. Данные изменения обусловлены физиологическими изменениями иммунитета и лимфотока в результате беременности и родов. Морфологические изменения данных лимфо-идных органов, специфичные для течения однократной беременности и родов в условиях наличия рубца миометрия у животных отсутствуют.

Подобные изменения (инволюция тимуса и увеличение размеров селезенки и парааортальных лимфатических узлов, возрастание числа антителсинтези-рующих клеток) были отмечены и у мышей. Эти изменения были отмечены и в послеродовом периоде, независимо от лактации (независимо от связанных с этим гормонов) (Hetherington С.М., Humber D.P., 1977; Ansell J.D. et al., 1978;

Sasaki К., Ito T., 1980; Newport A., Carter J., 1983; Carter J. et al., 1983; Carter J., Dresser D.W., 1983; Carter J., 1984; Sulila P. et al., 1988; Sulila P., Mattsson R., 1990; Dresser D.W., 1991; Bernadotte F., Mattsson R., 1992; Hegde U.C., Nainan R, 1998).

Таким образом, несмотря на большой объем литературных данных, посвященных структуре рубца на матке после кесарева сечения у оперированных женщин или экспериментальных животных, результаты исследования структуры рубцов на матке после однократных вагинальных родов — единичны, а после повторных — полностью отсутствуют. Кроме того, нет сведений об изменениях регионарных лимфатических узлов в достаточно отдаленные сроки после неоднократных родов, а также после повторного вагинального родоразрешения в условиях рубца миометрия.

Цель исследования: Выявить изменения оболочек матки, рубца миометрия и подвздошных лимфатических узлов крыс после первых и вторых естественных родов с рубцом на матке.

Задачи исследования:

1. Методом световой микроскопии изучить состояние сосудов микроциркуля-торного русла и воспалительную инфильтрацию различных отделов стенки матки крыс после однократных и двукратных естественных родов в условиях наличия рубца миометрия.

2. Исследовать состояние кровеносных и лимфатических капилляров и цито-грамму тканевых лейкоцитов в рубце миометрия после первых и повторных вагинальных родов у животных с рубцом на матке.

3. Определить изменения структур и цитоархитектоники различных зон подвздошных лимфатических узлов у крыс, рожавших один и два раза с рубцом миометрия.

4. Установить возможность неоднократного самопроизвольного родоразрешения при наличии рубца на матке в эксперименте.

Научная новизна:

Впервые в эксперименте продемонстрирована возможность второй беременности и повторного вагинального родоразрешения у крыс в условиях наличия рубца миометрия.

Впервые показано, что относительная плотность кровеносных и лимфатических сосудов на срезе глубоких слоев эндометрия и миометрия спустя 1,5−2 месяца достоверно не различается между интактными животными, нерожавшими крысами с рубцом на матке, однократно и двукратно рожавшими после лапаротомии и в условиях моделирования рубца миометрия.

Впервые установлено, что в состоянии кровеносных и лимфатических сосудов в рубце миометрия крыс после первых и вторых родов отсутствуют достоверные отличия от нерожавших животных с рубцом на матке.

Впервые найдено, что в миометрии животных, рожавших один или два раза с рубцом на матке, относительно интактных крыс, присутствует большее количество эритроцитов.

Впервые выявлено, что у животных с рубцом на матке при каждой беременности и естественной родовой деятельности повреждается не сам рубец, а его граница с миометрием. На это указывают кровоизлияния и явления лимфо-стаза, большее число лимфоцитов, нейтрофилов, моноцитов, макрофагов и эритроцитов в пограничных структурах между рубцом и миометрием у животных после первых и после вторых родов. Морфологические изменения тканей матки крыс после каждых родов, в том числе рубец и его граница с миометрием, практически полностью восстанавливаются к следующему естественному родоразрешению. Разрывы тканей не суммируются, а возникают вновь во время очередных родов и, далее, постепенно регенерируют. Если ткани рубца на матке и его границы с миометрием были состоятельны в процессе одних родов, то они будут состоятельными и при последующих беременностях и родоразреше-ниях через естественные родовые пути.

Впервые показано, что на поперечном срезе регионарных к матке общих подвздошных лимфатических узлов у однократно и двукратно рожавших животных увеличена объемная плотность соединительной ткани, расширены мя-котные тяжи и мозговые синусы, при этом уменьшена относительная площадь паракортекса. Данные изменения обусловлены физиологическими изменениями иммунитета и лимфотока в результате беременности и родов. Морфологические изменения этих лимфоидных органов, специфичные для течения первой и второй беременности и родов у животных с рубцом на матке, отсутствуют.

Впервые установлено, что у животных после первых и вторых родов с рубцом миометрия или без рубца во всех структурах подвздошных лимфатических узлов возрастает количество макрофагов и клеток с признаками деструкции, что связано с травмой при лапаротомии во время моделирования рубца на матке или суммированием этих воздействий с изменениями, обусловленными беременностями и родами. Вследствие антигенной стимуляции во время беременности у однократно и двукратно рожавших крыс во всех зонах данных лимфатических узлов возрастает число плазматических клеток. В синусной системе узлов животных, рожавших один или два раза с рубцом на матке, увеличено количество эритроцитов, что обусловлено наличием и рассасыванием геморра-гий на границе рубца с миометрием.

Впервые показано, что достоверные изменения структуры тканей матки, рубца миометрия и подвздошных лимфатических узлов крыс после повторных родов с рубцом на матке отсутствуют, относительно течения первой беременности и родоразрешения в аналогичных условиях.

Теоретическое и практическое значение работы:

В практической деятельности во время исследований состоятельности рубца миометрия в процессе установления показаний и противопоказаний к родам с рубцом на матке, клиническими методами кроме самого рубца необходимо исследовать и пограничную с ним зону мышечной оболочки матки, те участки, в которых возможны отрывы гладкомышечных клеток миометрия от гру-боволокнистой соединительной ткани рубца. При отсутствии симптомов несостоятельности рубца миометрия и окружающих тканей по результатам инструментальных методов обследования и клиническим данным допустимо проведение неоднократных естественных родов с рубцом на матке. Если ткани рубца на матке и его границы с миометрием были состоятельны в процессе одних родов, то они будут состоятельными и при последующих беременностях и родо-разрешениях через естественные родовые пути. Противопоказанием к естественному родоразрешению при наличии рубца на матке могут быть полости с жидкостью и геморрагии в самом рубце и пограничной с ним зоне, обнаруженные по данным УЗИ или других инструментальных исследований.

Внедрение результатов исследования в практику:

Результаты исследования внедрены в практику научно-исследовательской работы кафедры акушерства и гинекологии лечебного факультета Новосибирского государственного медицинского университета Росздрава, лаборатории общей патологии и патофизиологии ГУ НИИ региональной патологии и пато-морфологии СО РАМН и лечебную работу Муниципального городского перинатального центра г. Новосибирска.

На защиту выносятся следующие основные положения:

1. Состояние сосудов микроциркуляторного русла в глубоких слоях эндометрия, миометрии и его рубце достоверно не различается между интактными животными, нерожавшими крысами с рубцом на матке, однократно и двукратно рожавшими после лапаротомии и в условиях моделирования рубца миометрия.

2. В общих подвздошных лимфатических узлах у однократно и повторно рожавших животных увеличена объемная плотность соединительной ткани, расширены мякотные тяжи и мозговые синусы, при этом уменьшена относительная площадь паракортекса. Во всех зонах лимфатических узлов рожавших крыс возрастает количество макрофагов, плазмоцитов и клеток с признаками деструктивных изменений, после первых и вторых родов с рубцом на матке в системе мозговых синусов возрастает количество эритроцитов.

3. У крыс с поперечным рубцом тела матки возможно проведение неоднократных вагинальных родов.

Апробация материалов диссертации:

Основные положения диссертации доложены на 1-ом Сибирском съезде акушеров-гинекологов, дерматовенерологов и урологов с международным участием (Новосибирск, 2007), конференции, посвященной 65-летнему юбилею кафедры перинатологии, акушерства и гинекологии Красноярской государственной медицинской академии (Красноярск, 2007), на объединенном заседании сотрудников кафедр ГОУ ВПО Новосибирского государственного медицинского университета Росздрава и научных сотрудников лабораторий ГУ НИИ клинической и экспериментальной лимфологии СО РАМН и ГУ НИИ региональной патологии и патоморфологии СО РАМН (Новосибирск, 2007).

Публикации:

По теме диссертации опубликовано 4 печатные работы, 1 из которых в изданиях, рекомендованных ВАК РФ для публикации результатов диссертаций.

Структура и объем диссертации

:

Диссертация состоит из введения, обзора литературы, главы с описанием материала и методов исследования, 2 глав собственных результатов с их обсуждением, заключения, выводов, практических рекомендаций и списка литературы. Работа изложена на 207 страницах компьютерного текста, содержит 16 таблиц, иллюстрирована 80 рисунками.

Список литературы

включает 474 источника (124 русскоязычных и 350 иностранных авторов).

158 ВЫВОДЫ.

1. У крыс с поперечным рубцом тела матки возможно проведение неоднократных вагинальных родов. Если ткани рубца на матке и его границы с миомет-рием были состоятельны в процессе одних родов, то они будут состоятельными и при последующих беременностях и самопроизвольных родоразреше-ниях.

2. Относительная плотность кровеносных и лимфатических сосудов на срезе глубоких слоев эндометрия и миометрия спустя 1,5−2 месяца достоверно не различается между интактными животными, нерожавшими крысами с рубцом на матке, однократно и повторно рожавшими после лапаротомии и в условиях моделирования рубца миометрия.

3. В миометрии животных, рожавших один или два раза с рубцом на матке, относительно интактных крыс, присутствует большее количество эритроцитов, и имеются геморрагии в области прикрепления гладкомышечных клеток мышечной оболочки матки к ткани рубца.

4. У животных с рубцом на матке при каждой беременности и естественной родовой деятельности повреждается не сам рубец, а его граница с миометрием, на что указывают кровоизлияния и явления лимфостаза, большее число лимфоцитов, нейтрофилов, моноцитов, макрофагов и эритроцитов в пограничных структурах между рубцом и миометрием.

5. В общих подвздошных лимфатических узлов у однократно и двукратно рожавших животных, как ложнооперированных, так и с рубцом на матке, увеличена объемная плотность соединительной ткани, расширены мякотные тяжи и мозговые синусы, при этом уменьшена относительная площадь пара-кортекса.

6. У животных после первых и вторых родов с рубцом миометрия или без рубца во всех структурах подвздошных лимфатических узлов возрастает количество макрофагов, плазмоцитов и клеток с признаками деструктивных изменений. В синусной системе узлов животных, рожавших один или два раза с рубцом на матке, увеличено количество эритроцитов. 7. Достоверные изменения структуры тканей матки, рубца миометрия и подвздошных лимфатических узлов крыс после повторных родов с рубцом на матке не найдены, относительно течения первой беременности и родоразре-шения в аналогичных условиях.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ.

1.Во время исследований состоятельности рубца миометрия в процессе установления показаний и противопоказаний к родам с рубцом на матке, клиническими методами кроме самого рубца необходимо исследовать и пограничную с ним зону мышечной оболочки матки, те участки, в которых возможны отрывы гладкомышечных клеток миометрия от грубоволокнистой соединительной ткани рубца.

2. При отсутствии симптомов несостоятельности рубца миометрия и окружающих тканей по результатам инструментальных методов обследования и клиническим данным допустимо проведение неоднократных естественных родов с рубцом на матке. Если ткани рубца на матке и его границы с миометрием были состоятельны в процессе одних родов, то они будут состоятельными и при последующих беременностях и родоразрешениях через естественные родовые пути. Противопоказанием к естественному родоразрешению при наличии рубца на матке могут быть полости с жидкостью и геморрагии в самом рубце и пограничной с ним зоне, обнаруженные по данным УЗИ или других инструментальных исследований.

Показать весь текст

Список литературы

  1. М.Г. Гематологический атлас. М.: Медицина. 1985. 344 с.
  2. Г. Г. Морфометрия в патологии. М. Медицина, 1973. 248 с.
  3. Г. Г. Введение в количественную патологическую морфологию. -М.: Медицина, 1980. 216 с.
  4. Г. Г., Яблучанский Н. И., Губенко В. Г. Системная стереометрия в изучении патологического процесса. М.: Медицина, 1981. 192 с.
  5. Г. Г., Невзоров В. П., Невзорова О. Ф. Системный стереометрический анализ ультраструктур клеток. Кишинев: Штиница, 1984. 168 с.
  6. Г. Г. Введение в количественную патологическую морфологию. -М.: Медицина, 2002. 238 с.
  7. Ю.И., Юрина H.A., Котовский Е. Ф. и др. Гистология. М.: Медицина, 2001. 744 с.
  8. В.Н., Игнатков В. Я. Роль эстрогенчувствительных нейронов аркуат-ной области гипоталамуса в механизме освобождения лютеинизирующего гормона. // Пробл. Эндокринол. 1978. — Т. 24. — № 2. — С. 53−59.
  9. Т.В. Лимфатический регион матки крыс после введения химиоте-рапевтических средств с коррекцией экстрактом Pentaphylloides fruticosa: Дисс.. канд. мед. наук. Новосибирск, 2005. 201 с.
  10. М.А., Мареева Л. С., Мельников А. П. Применение эхографии в ведении родов у женщин с рубцом матки после кесарева сечения // Акушерст. и гинекол. -1991. № 8. — С. 49−50.
  11. A.B. Структурные основы моторной функции лимфангиона. // Проблемы функциональной лимфологии. Новосибирск, 1982. — С. 24−26.
  12. A.B. Структурные основы моторной функции лимфатического узла. // Функциональная морфология лимфатических узлов и других органов иммунной системы и их роль в иммунных процессах. М., 1983. — С. 21−22.
  13. A.B. Функциональная морфология лимфангиона. // Лимфатический сосуд. Л., 1984. — С. 5−16.
  14. A.B. Архитектоника, гистотопография и взаимосвязь миоцитов лимфатического сосуда и узла. // Лимфатический узел. Л, 1987. — С. 4−14.
  15. A.B. Лимфангион: итоги и перспективы. // Лимфаншон (анатомия, физиология, патология). Л, 1990. — С. 5−17.
  16. A.B. Принципы конструкции лимфатического сосуда в свете теории лимфангиона. // Структурно-функциональные аспекты лимфатической системы: Вып. 1. С-Пб, 1997. — С. 6−12.
  17. A.B. Теория конструкции лимфангиона. // Морфология. 1997. — Т. 112.-№ 5.-С. 7−17.
  18. Бородин Ю. И, Склянова H.A., Склянов Ю. И, Донских Н. В. Пути оттока лимфы от матки и ее региональные лимфатические узлы у крысы на различных стадиях беременности. // Арх. анат. гистол. и эмбриол. 1982. — Т. 83. -№ 8. — С. 49−53.
  19. Бородин Ю. И, Григорьев В. Н. Лимфатический узел при циркуляторных нарушениях. Новосибирск: Наука, 1986. 272 с.
  20. Бородин Ю. И, Склянова H.A., Склянов Ю. И, Патрушева C.B. Функциональная морфология лимфатической системы матки у крысы при беременности. //Арх. анат. гистол. и эмбриол. 1986. — Т. 90. — № 4. — С. 18−23.
  21. Бородин Ю. И, Григорьев В. Н, Склянова H.A. Ультраструктурная организация эндотелиоцитов кровеносных капилляров подколенных и подвздошных лимфоузлов крысы. // Арх. анат. гистол. и эмбриол. 1987. — Т. 92. — № 4.-С. 48−51.
  22. Бородин Ю. И, Склянов Ю. И, Склянова H.A. Внеорганное лимфатическое русло матки и внезародышевые органы при гипотензивном синдроме беременных (экспериментально-морфофункциональный аспект). // Акушер, и гинекол. 1987. — № 2. — С. 70−72.
  23. Бородин Ю. И, Успогов Е. Д, Склянова H.A., Склянов Ю. И. Изменения микроциркуляторного русла матки и ее регионарных лимфатических узлов во время беременности. // Арх. анат. гистол. и эмбриол. 1987. — Т. 93. — № 12. — С. 40−43.
  24. Ю.И., Склянова H.A., Иванов В. В., Склянов Ю. И., Семенюк A.B. Влияние низкомолекулярных токсикантов на органы иммунитета матери и потомства. // Арх. анат. гистол. и эмбриол. 1989. — Т. 96. — № 4. — С. 41−45.
  25. Ю.И., Склянова H.A., Склянов Ю. И., Патрушева C.B. Морфофунк-циональная характеристика лимфатических узлов у мышей разных линий при введении иммуномодуляторов. // Арх. анат. гистол. и эмбриол. 1990. -Т. 99.-№ 7.-С. 68−72.
  26. Ю.И., Вайда A.A., Устюгов Е. Д., Склянова H.A., Пасман Н.М.
  27. Структурно-функциональные преобразования подвздошных лимфатических узлов при беременности, осложненной кровопотерей. // Бюлл. эксп. биол. и мед. 1992. — Т. 114. — № 11. — С. 546−548.
  28. Ю.И., Широкова Н. В., Склянова H.A., Склянов Ю. И. Состояние лимфоидных органов материнского организма как отражение эффективности коррекции венозного застоя при беременности у крыс. // Морфол. 1992. -Т. 102.-№ 5.-С. 70−76.
  29. Ю.И., Курганов С. А., Дергачева Т. И., Ефремов A.B., Старкова Е. В. Состояние лимфатической системы при воспалении внутренних половых органов. // Морфол. 1999. — Т. 115. — № 2. — С. 30−33.
  30. С.Д., Эвеннет П. Д., Хоробин Р. В. Световая микроскопия в биологии. М.: Мир, 1992. 464 с.
  31. К.С., Басин Б. Л. Морфологические и гистохимические характеристики рубца стенки матки после корпорального кесарева сечения // Вопр. охран, материн, и детст. 1969. — Т. 14. — № 12. — С. 42−46.
  32. Э.Р. Морфометрия легких человека. М.: Медицина, 1970. 176 с.
  33. А.Л. Разрыв матки вдоль рубца после кесарева сечения // Вопр. охран, материн, и детст. -1967. Т. 12. — № 1. — С. 64−65.
  34. С.С. Регионарные особенности конструкции соединительнотканного остова лимфатических узлов человека: Дисс.. канд. мед. наук. М., 1971. 193 с.
  35. Воспаление. Ненаркотические анальгетики. Руководство для врачей. М.: Информационный Центр «Гера», 1997.
  36. Р., Ковачев К. Ултраструктурни промени на маточния епител и имунокомпетентните клетки на дренирапггите матката лимфни вузли през бременността при свине. // Ветеринарно-медицински науки. 1986. — Т. 23. -№ 10. — С. 54−64.
  37. A.A. Геометрические методы количественного анализа агрегатов под микроскопом. Львов: Госгеолитиздат, 1941. 263 с.
  38. A.A. Геометрические методы количественного анализа агрегатов.
  39. М: Гос. изд-во. геологич. лит., 1941.
  40. В.Н. Морфологические методы исследования сосудистого русла. Новосибирск: СО РАМН, 1997. 440 с.
  41. В. Гематологический атлас. Братислава.: Словацкая Академия наук, 1963. 184 с.
  42. С.Н., Фрадков Г. Ф. Кинорентгенологическое исследование функции матки и рубца после кесарева сечения // Вопр. охр. материн, и детст. -1975.-Т. 20. -№ 2. -С. 67−72.
  43. И.М. Уретрально-вагинальная фистула и рубцовый стеноз мочеточников после акушерских и гинекологических операций // Акушерст. и гинекол. 1974. — № 8. — С. 59−60.
  44. М.А., Кульбах О. С., Подосинников И. О. Строение вилочковой железы, подвздошных и брыжеечных лимфатических узлов у крыс в разные периоды беременности. // Арх. анат. гистол. и эмбриол. 1985. — Т. 89. — № 10. — С. 71−76.
  45. A.B. Микролимфогемоциркуляция васкуляризированных комплексов тканей в разные сроки после их трансплантации: Дисс. канд. мед. наук. Новосибирск, 2000. 192 с.
  46. A.B. Патоморфология ангиогенеза и восстановления микроциркуляции в кожно-мышечном лоскуте после его трансплантации: Дисс.. докт. мед. наук. Новосибирск, 2006. 341 с.
  47. В.Г., Субботин М. Я., Афанасьев Ю. И., Котовский Е. Ф. Основы гистологии и гистологической техники. М.: Медицина, 1967. 268 с.
  48. И.П., Западнюк В. И., Захария Е. А., Западнюк Б. В. Лабораторные животные. Киев: Вица школа, 1983. 383 с.
  49. И.Ф., Ковальский П. А. Цитология, гистология и эмбриология. М.: Колос, 1976. 448 с.
  50. Г. С., Полонский Ю. З. К методике анализа количественных показателей в цитологии. // Цитология. 1970. — Т. 12. — № 3. — С. 399−403.
  51. З.С., Гитман Г. И. Гистологическая структура рубца матки послекесарева сечения // Педиатр., акушерст. и гинекол. 1969. — Т. 31. — № 6. — С. 45−47.
  52. К.П. Реваскуляризация трансплантированных сложных комплексов тканей: Дисс.. канд. мед. наук. Новосибирск, 2001. 180 с.
  53. Г. И., Сырачев Т. Г., Ашуров Г. Д. Атлас клеток крови и костного мозга. М.: Триада, 1998. 160 с.
  54. В.И., Мельман Е. П., Нейко Е. М., Шутка Б. В. Гистофизиология капилляров. СПб.: Наука, 1994.
  55. Л.Г. Зависимость диапедеза эозинофильных лейкоцитов в тканях матки и влагалища белых крыс от половых гормонов. Автореф. дисс.. канд. биол. наук. Тбилиси, 1991. 18 с.
  56. А., Тюрк Ж., Собен Л. Предложение по стандартизации гистологии лимфатического узла в связи с иммуннологической функцией // Бюлл. ВОЗ. 1973. — Т. 47. — Вып. 3. — С. 372−401.
  57. И. А. Морфология рубца миометрия после операции кесарева сечения и ушивания матки различными шовными материалами: Дисс.. канд. мед. наук. Новосибирск, 2002. 191 с.
  58. В.И., Мареева Л. С., Шалаев О. Н., Левашова И. И., Коваленко Т. М., Пурикова Т. С., Буреева В. Л., Бударецкая З. С. Роды у беременных женщин с предыдущими операциями на матке // Акушерст. и гинекол. -1994.-№ 6.-С. 41−45.
  59. М.И., Костюченок Б. М. Раны и раневая инфекция: Руководство для врачей: 2-е изд., перераб. и доп. М.: Медицина., 1990. 592 с.
  60. В.А., Афанасьев A.A. Ведение беременности и родов у женщин с рубцом матки // Акушерст. и гинекол. 1986. — № 1. — С. 74−77.
  61. О.С. Клеточный состав различных структурных зон подздошных и брыжеечных лимфатических узлов у крыс при беременности. // Арх. анат. гистол. и эмбриол. 1984. — Т. 86. — № 4. — С. 39−45.
  62. Л., Стратиев С. Морфологична характеристика на цикатрикса при повторно цезарево сечение. //Акушерство и гинекология (София). 1993. -Т. 32.-№ 2.-С. 12−14.
  63. В.А., Стрижаков А. Н., Железное Б. И. Эхографические и морфологические параллели в оценке состояния шва матки // Акушерст. и гинекол. -1991.-№ 8.-С. 44−49.
  64. Лейн-Петтер У. Обеспечение научных исследований лабораторными животными. М: Медицина, 1964. 194 с.
  65. Р. Патогистологическая техника и практическая гистохимия. М.: Мир, 1969. 648 с.
  66. И.В., Шевела А. И., Титова Л. В. Варианты и стадии склероза регионарных лимфатических узлов при лимфедеме. // Арх. патол. 1998. — Т. 60.-№ 2.-С. 47−51.
  67. И.В., Кохан И. А., Пекарев О. Г. Варианты структурной организации рубца на матке после абдоминального родоразрешения. // Инновации в охране здоровья людей: Мат. науч.-практ. конф. Новосибирск, 2001. — С. 119.
  68. И.В., Шевела А. И., Егоров В. А., Павлюк Е. Г., Майбородина В. И. Структурная организация паховых лимфатических узлов человека при первичной лимфедеме нижних конечностей. // Патология кровообращения и кардиохирургия. 2001. — № 4. — С. 48−54.
  69. И.В., Домников A.B., Ковалевский К. П. Количество тучных клеток как индикатор ангиогенеза в аутотрансплактированных тканях. // Морфология. 2003. — Т. 124. — № 6. — С. 66−70.
  70. И.В., Нимаев В. В., Шевела А. И., Домников A.B., Павлюк Е.Г.,
  71. В.А. Морфология кожи при лимфостазе и лимфоррее. // Бюлл. Сиб. отд-ния РАМН. 2005. — № 1. — С. 132−137.
  72. И.В., Нимаев В. В., Шевела А. И., Домников A.B., Павлюк Е. Г., Красильников С. Э., Тархов A.B., Герасимов A.B., Егоров В. А. Состояние кожи при лимфостазе после онкологических операций. // Проблемы клинической медицины. 2005. — № 3. — С. 28−32.
  73. И.О., Сидорова И. С., Леонтьева Г. В., Поляков В. Н., Фирсова Е. В. Экспериментальная оценка возможности фиксации швов матки после кесарева сечения полимерными материалами // Акушерст. и гинекол. 1989. — № 3. — С. 33−36.
  74. Л.С., Левашова И. И., Мильман Д. В. Оценка качества рубца матки после кесарева сечения // Акушерст. и гинекол. 1989. — № 3. — С. 37−38.
  75. Л.С., Левашова И. И., Мельников А. П., Зайцева З. С., Белоусов М. А., Оберг O.K. Проблемы и перспективы родов у беременных женщин с рубцом матки после кесарева сечения // Акушерст. и гинекол. 1993. — № 1. -С. 22−27.
  76. Ю.С. Паховые лимфатические узлы человека при хронической венозной недостаточности нижних конечностей: Дисс.. канд. мед. наук. Новосибирск, 2003. 308 с.
  77. Т.В. Структурная организация паховых лимфатических узлов человека при сочетанном поражении венозного и лимфатического русла нижней конечности: Дисс.. канд. мед. наук. Новосибирск, 2002. 183 с.
  78. И.В. Самопроизвольный разрыв шейки матки на 23−24 неделе беременности // Педиатр., акушерст. и гинекол. 1967. — Т. 4. — С. 61.
  79. Д.Б., Перлман П., Вигзель X. Лимфоциты: выделение, фракционирование и характеристика. М.: Медицина, 1980. 280 с.
  80. Л.М., Лушникова Е. Л., Непомнящих Г. И. Морфометрия и сте-реология гипертрофии сердца. Новосибирск: Наука, 1986. 303 с.
  81. Е.Г. Морфологические и клинические аспекты изменений структурной организации паховых лимфатических узлов при циркуляторных нарушениях нижних конечностей: Дисс.. докг. мед. наук. Новосибирск, 2005. 546 с.
  82. Г. А., Верховский A.JI., Иванцов Б. Ф. Применение тазовой флебографии матки для определения состоятельности рубца матки после классического кесарева сечения // Акушерст. и гинекол. 1972. — Т. 48. — № 6. — С. 56−59.
  83. Г. А., Штемберг М. И. Современные показания для абдоминального кесарева сечения // Акушерст. и гинекол. 1980. — № 11. — С. 21−24.
  84. Э. Гистохимия теоретическая и прикладная. М.: Изд-во иностр. лит., 1964. 964 с.
  85. H.A. Биометрия. М.: Изд-во Московского ун-та, 1970. 368 с.
  86. И.М. Патоморфология и клиника самопроизвольного родораз-решения у женщин с рубцом на матке после кесарева сечения: Дисс.. докт. мед. наук. Новосибирск, 2006. 328 с.
  87. Ю2.Полыпин В. В., Котава Л. Г., Мхитаров В. А. Особенности диапедеза эози-нофильных лейкоцитов в матке белых крыс. // Пробл. Эндокринол. 1984. -Т. 30.-№ 3.-С. 76−79.
  88. ЮЗ.Поташев Л. В., Бубнова H.A., Борисов A.B. и др. Современные представления о патогенезе лимфедемы нижних конечностей. // Структурно-функциональные основы лимфатической системы. СПб., 1997. — С.64−66.
  89. М.Р., Юрина H.A., Этинген Л. Е. Лимфатический узел. М.: Медицина, 1978. 272 с.
  90. Д.С., Перов Ю. Л. Микроскопическая техника: Руководство для врачей и лаборантов. М.: Медицина, 1996. 544 с.
  91. П.П., Метелкин А. И., Гудкова Е. И. Лабораторные животные. М:1. Медгиз., 1952. 316 с.
  92. Н.Д. Механизмы возрастных различий в условиях феномена постоянного эструса у крыс. Автореф. дисс.. канд. биол. наук. М., 1989. 18 с.
  93. Н.В. Критерии состоятельности рубце на матке у пациенток при беременности после операции кесарева сечения: Дисс.. канд. мед. наук. Новосибирск, 2005. 176 с.
  94. А.Н., Лебедев В. А. Клиническое значение факторов, влияющих на течение беременности и статус новорожденных детей, родившихся от женщин с рубцом на матке // Акушерст. и гинекол. -1991. № 4. — С. 13−18.
  95. А.Н., Лебедев В. А. Современные методы выбора рациональной процедуры ведения беременности и родов у женщин с рубцом на матке // Акушерст. и гинекол. -1991. № 2. — С. 8−13.
  96. А.И., Пауков B.C., Кауфман О .Я. Воспаление. // Общая патология человека. М.: Медицина, 1990. — Т. 2. — С. 3−74.
  97. И.Л., Чумаков Ф. И., Шатохина С. Н., Михайлова Г. Е. Цитологическая диагностика заболеваний ЛОР-органов // М.: МОНИКИ, 1995. 208 с.
  98. О.И., Прянишников В. А., Жемкова З. П. Биопсии эндометрия. М.: Медицина, 1978. 232 с.
  99. Н.Б., Шилов А. Г. Возможности применения стереологиче-ского анализа в изучении структурной организации клеток и тканей // Применение стереологическнх методов в цитологии. Новосибирск, 1974. -С. 54−62.
  100. Хэм А., Кормак Д. Гистология в 5-ти томах: Пер. с англ. М.: Мир, 1983.
  101. В.А. Ультраструктура артериального и венозного отделов капилляров. // Арх. анатом., гистол. и эмбриол. 1967. — Т. 52. — № 1. — С. 24
  102. Шехтер А. Б, Мштованова З.ГТ. Фибробласт-фибробласт: Ультраструктурные механизмы резорбции коллагеновых волокон при инволюции соединительной ткани // Арх. патол. 1975. — Т. 37. — № 3. — С. 13−19.
  103. Шиллер-Волкова Н. Н. Цитологическая диагностика злокачественных новообразований // М.: Медицина, 1964. 263 с.
  104. Н.В. Морфологические изменения матки и ее лимфатического аппарата после родов с рубцом миометрия (экспериментальное исследование): Дисс.. канд. мед. наук. Новосибирск, 2006. 194 с.
  105. М.Ф. Сосуды и нервы шва матки после кесарева сечения (клини-ко-экспериментальное исследование // Вопр. охран, материн, и детст. -1968.-Т. 13.-№ 6.-С. 50−57.
  106. М. Раждане след прекарано цезарово сечение. //Акушерство и гинекология (София). 2000. — Т. 39. — № 3. — С. 6−9.
  107. Ярцева Л. Д, Абрамченко В. В. Процедурные проблемы ведения беременности и родов у женщин, имевших в прошлом операции на матке // Аку-шерст. и гинекол. 1980. — № 11. — С. 41−43.
  108. Abbassi Н, Aboulfalah A, el Karroumi М, Bouhya S, Bekkay M. Vaginal birth after cesarean delivery: can the trial of labor be extended. // J. Gynecol. Obstet. Biol. Reprod. (Paris). 1998. — Vol. 27. — № 4. — P. 425−429.
  109. Abell D. A, Evan P.P. Rupture of a caesarean section scar in the second trimester of pregnancy. // S. Afr. Med. J. 1973. — Vol. 47. — № 41. — P. 1962−1964.
  110. Aboyeji A.P., Tjaiya M.D., Yahaya U.R. Ruptured uterus: a study of 100 consecutive cases in Ilorin, Nigeria. // J. Obstet. Gynaecol. Res. 2001. — Vol. 27. -№ 6.-P. 341−348.
  111. Ahmed S.M., Daffalla S.E. Incidence of uterine rupture in a Teaching Hospital, Sudan. // Saudi Med. J. 2001. — Vol. 22. — № 9. — P. 757−761.
  112. Aispuro Z.M.A. Radiologic control of post-cesarean cicatrization. Preliminary report. // Ginecol. Obstet. Mex. 1970. — Vol. 27. — № 161. — P. 359−366.
  113. Akar M.E., Yilmaz Z., Gokmen O. Zekai Fetal survival despite unrecognized uterine rupture resulting from previous unknown corporeal scar. // Arch. Gynecol. Obstet. 2001. — Vol. 265. — № 2. — P. 89−90.
  114. Alves M.F., Cordeiro A., Cardoso M.d., Graca L.M. Trial of labor after cesarean section. Two years' experience. // Acta Med. Port. 1993. — Vol. 6. — № 12. — P. 573−576.
  115. Anderson W.A., Gabriel B.W., Nerurkar S.G., Wyche J.H., Yates P.E., Hanker J.S. Peroxidases induced in rat uterus by estrogen administration, n. Cytochemi-cal and biochemical heterogeneity. // J. Submicrosc. Cytol. 1986. — Vol. 18. -№ 4.-P. 683−690.
  116. Ansell J.D., McDougall C.M., Speedy G,. Inchley C.J. Changes in lymphocyte accumulation and proliferation in the lymph nodes draining the pregnant uterus. // Clin. Exp. Immunol. 1978. — Vol. 31. — № 3. — P. 397−407.
  117. Appleton B., Targett C., Rasmussen M., Readman E., Sale F., Permezel M. Vaginal birth after Caesarean section: an Australian multicentre study. VBAC Study Group. //Aust. N. Z. J. Obstet. Gynaecol. 2000. — Vol. 40. — № 1. — P. 8791.
  118. Armstrong V., Hansen W.F., Van Voorhis B.J., Syrop C.H. Detection of cesarean scars by transvaginal ultrasound. // Obstet. Gynecol. 2003. — Vol. 101. — № 1.-P. 61−65.
  119. Arriaza C.A., Mena M.A., Tchernitchin A.N. Prenatal androgenization selectively modifies some responses to oestrogen in the prepubertal rat uterus. // J. Endocrinol. 1989. — Vol. 120. — № 3. — P. 379−384.
  120. Athanassakis I., Chaouat G., Wegmann T.G. The effects of anti-CD4 and anti-CD8 antibody treatment on placental growth and function in allogeneic and syngeneic murine pregnancy. // Cell. Immunol. 1990. — Vol. 129. — № 1. — P. 13−21.
  121. Baines M.G., Pross H.F., Millar K.G. Effects of pregnancy on the maternal lymphoid system in mice. // Obstet. Gynecol. 1977. — Vol. 50. — № 4. — P. 457−461.
  122. Baker A.P., Bergman F., Paul K.G. Studies of eosinophil granulocytes. 3. Steroid hormones and number of eosinophils in the uterus of the mouse and rat. // Acta Endocrinol. (Copenh). 1967. — Vol. 54. — № 4. — P. 696−706.
  123. Bakke O., Ronning O.W. The role of protein metabolism in glucocorticoid-induced prolongation of G1 phase in human NHIK 3025 cells. // J. Cell Physiol.- 1982. Vol. 113. — № 3. — P. 459−464.
  124. Bamberger A.M., Milde-Langosch K., Loning T., Bamberger C.M. The glucocorticoid receptor is specifically expressed in the stromal compartment of the human endometrium. // J. Clin. Endocrinol. Metab. 2001. — Vol. 86. — № 10. -P. 5071−5074.
  125. Barbot J. Hysteroscopy and hysterography. // Obstet. Gynecol. Clin. North. Am.- 1995. Vol. 22. — № 3. — P. 591−603.
  126. Baumann P., Tchernitchin A.N., Grunert G., Ball P. Effect of various doses of catecholestrogens on uterine eosinophilia in the immature rat. // Experientia. -1986. Vol. 42. — № 2. — P. 165−167.
  127. Bauminger S., Peleg S. Changes in immunological activity of rat lymphoid organs during pregnancy. // Clin. Exp. Immunol. 1978. — Vol. 32. — № 1. — P. 179 185.
  128. Bautrant E., Boubli L., Nadal F., Khouzami A., d’Ercole C., Azoulay P., Lavergne N., Blanc B. Delivery after 2 previous cesarean sections. A series of 41 uterine trials. // J. Gynecol. Obstet. Biol. Reprod. (Paris). 1993. — Vol. 22. -№ 5.-P. 543−547.
  129. Beard R.J., Johnson D.A. Fetal distress due to cord prolapse through a fenestration in a lower segment uterine scar. // J. Obstet. Gynaecol. Br. Commonw. -1972.-Vol. 79.-№ 8.-P. 763.
  130. Bedoya C., Bartha J.L., Rodriguez I., Fontan I., Bedoya J.M., Sanchez-Ramos J. A trial of labor after cesarean section in patients with or without a prior vaginal delivery. // Int. J. Gynaecol. Obstet. -1992. Vol. 39. — № 4. — P. 285−289.
  131. Ben A.N., Sadfi A., Gara F. Advantages and risk of a trial of vaginal delivery in the scarred uterus. // Tunis Med. 2003. — Vol. 81. — № 8. — P. 563−566.
  132. Benitez-Bribiesca L., Villanueva C., Amezcua J.L., Guevara R., Freyre R. Experimental uterine eosinophilia in the rat. The role of some inhibitors of arachi-donic acid metabolism. // Arch. Invest. Med. (Mex). 1989. — Vol. 20. — № 3. — P. 273−278.
  133. Berghahn L., Christensen D., Droste S. Uterine rupture during second-trimester abortion associated with misoprostol. // Obstet. Gynecol. 2001. — Vol. 98. — № 5.-Pt. 2.-P. 976−977.
  134. Bergman F., Damber M.G., Linden U., Paul K.G. Mast cells and eosinophilgranulocytes in the oestrogen-stimulated mouse uterus. // Acta Endocrinol. (Co-penh). 1972. — Vol. 69. — № 1. — P. 77−86.
  135. Bernadotte F., Mattsson R. A fraction of murine placental extract enhances IgA production in cultured splenocytes. // J. Reprod. Immunol. 1992. — Vol. 21. — № 2.-P. 189−202.
  136. Bischof R.J., Lee R., Lee C.S., Meeusen E. Dynamic changes in the lymphocyte subpopulations of pig uterine lymph nodes. // Vet. Immunol. Immunopathol. -1996. Vol. 51. — № 3−4. — P. 315−324.
  137. Blanco J.D., Collins M., Willis D., Prien S. Prostaglandin E2 gel induction of patients with a prior low transverse cesarean section. // Am. J. Perinatol. 1992. -Vol. 9.-№ 2.-P. 80−83.
  138. Boisselier P., Maghioracos P., Marpeau L., Hajali B., Barrat J. Changes in indications for cesarean section from 1977 to 1983. Apropos of 18,605 deliveries. // J. Gynecol. Obstet. Biol. Reprod. (Paris). 1987. — Vol. 16. — № 2. — P. 251−260.
  139. Bou Saba C., Nabhane G., Abboud J. Vaginal delivery with scarred uterus at the Hotel-Dieu of France, Beirut. // J. Med. Liban. 1992. — Vol. 40. — № 2. — P. 6872.
  140. Bowers D., McKenzie D., Dutta D., Wheeless C.R., Cohen W.R. Growth hormone treatment after cesarean delivery in rats increases the strength of the uterine scar. // Am. J. Obstet. Gynecol. 2001. — Vol. 185. — № 3. — P. 614−617.
  141. Bretelle F., Cravello L., Shojai R., Roger V., D’ercole C., Blanc B. Vaginal birth following two previous cesarean sections. // Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 2001. — Vol. 94. — № 1. — P. 23−26.
  142. Bretelle F., Cravello L., Shojai R., Roger V., D’ercole C., Blanc B. Vaginal birth following two previous cesarean sections. // Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 2001. — Vol. 94. — № 1. p. 23−26.
  143. Brown J.E., Nellor J.E. A relationship between ovarian and genital tract eosinophilic granulated cells.// Anat. Rec. 1968. — Vol. 621. — № 1. — P. 15−24.
  144. Buchheit H., Loskant G. Rupture of uterine scar in early pregnancy with continued pregnancy and surgical delivery of a mature infant. // Geburtshilfe Frauenheilkd. 1967. — Vol. 27. -№ 11. — P. 1081−1086.
  145. Buhimschi C.S., Buhimschi T.A., Patel S., Malinow A.M., Weiner C.P. Rupture of the uterine scar during term labour: contractility or biochemistry? // BJOG. -2005. Vol. 112. — № 1. — P. 38−42.
  146. Burmucic R., Hofinann P. Is palpation of the healed section scar after previous Cesarean section with subsequent vaginal delivery necessary? // Gynakol. Geburtshilfliche Rundsch. 1992. — Vol. 32. — Suppl 1. — P. 76−77.
  147. Carter J., Dresser D.W. Pregnancy induces an increase in the number of immu-noglobulin-secreting cells. // Immunology. 1983. — Vol. 49. — № 3. — P. 481−490.
  148. Carter J., Newport A., Keeler K.D., Dresser D.W. FACS analysis of changes in T and B lymphocyte populations in the blood, spleen and lymph nodes of pregnant mice. // Immunology. 1983. — Vol. 48. — № 4. — P. 791−797.
  149. Carter J. The maternal immunological response during pregnancy. // Oxf. Rev. Reprod. Biol. 1984. — Vol. 6. — P. 47−128.
  150. Casley-Smith J. The structure and Functioning of the Blood vessels, Interstitial tissues and Lymphatics. // Lymphangiology. Stuttgart, New York: Schattauer, 1983.-Ch. 2.-P. 27−143.
  151. Casley-Smith J.R. The phylogeny of the fine structure of blood vessels and lymphatics: similarities and differences. // Lymphology. 1987. — Vol. 20. — № 4. — P. 182−188.
  152. Castaneda S., Karrison T., Cibils L.A. Peripartum hysterectomy. // J. Perinat. Med. 2000. — Vol. 28. — № 6. — P. 472−481.
  153. Caterini H.R., Rubinos M., Kaminetzky H.A. Amniography during subsequent pregnancy for evaluating the post-cesarean section uterine scar. // Obstet. Gynecol. 1972. — Vol. 39. — № 5. — P. 717−720.
  154. Chambers S.P., Clarke A.G. Measurement of thymus weight, lumbar nodeweight and progesterone levels in syngeneically pregnant, allogeneically pregnant, and pseudopregnant mice. // J. Reprod. Fertil. 1979. — Vol. 55. — № 2. — P. 309−315.
  155. Chantakru S., Miller C., Roach L.E., Kuziel W.A., Maeda N., Wang W.C., Evans S.S., Croy B.A. Contributions from self-renewal and trafficking to the uterine NK cell population of early pregnancy. // J. Immunol. 2002. — Vol. 168. — № l.-P. 22−28.
  156. Chantakru S., Wang W.C., van den Heuvel M., Bashar S., Simpson A., Chen Q., Croy B.A., Evans S.S. Coordinate regulation of lymphocyte-endothelial interactions by pregnancy-associated hormones. // J. Immunol. 2003. — Vol. 171. — № 8.-P. 4011−4019.
  157. Chattopadhyay S.K., Sherbeeni M.M., Anokute C.C. Planned vaginal delivery after two previous caesarean sections. // Br. J. Obstet. Gynaecol. 1994. — Vol. 101.-№ 6.-P. 498−500.
  158. Chen K.C., Hsieh T.T. Rupture of gravid uterus: a eight-year clinical analysis and review of the literature. // Changgeng Yi Xue Za Zhi. 1992. — Vol. 15. — № l.-P. 15−22.
  159. Chmelik V., Suk K. Spiral cesarean section hysterography. // Zentralbl. Gyna-kol. — 1982. — Vol. 104. — № 23. — P. 1537−1540.
  160. Clark D.A., McDermott M.R. Impairment of host vs graft reaction in pregnant mice. I. Suppression of cytotoxic T cell generation in lymph nodes draining the uterus. // J. Immunol. 1978. — Vol. 121. — № 4. — P. 1389−1393.
  161. Clarke A.G. Pregnancy-induced involution of the thymus can be prevented by immunizing with paternal skin grafts: a strain-dependent effect. // Clin. Exp. Immunol. 1979. — Vol. 35. — № 3. — P. 421−424.
  162. Cohain J.S. The many ways to sew up a uterus. «Single-layer» vs. «double-layer» cesarean repair: what’s best? // Midwifery Today Int. Midwife. 2004. — № 70. -P. 32−34.
  163. Colombo L.L., Lopez M.C., Herkovits J., Roux M.E. T and B lymphocyte populations in uterus draining lymph nodes at estrus and diestrus in Wistar rats. //
  164. Am. J. Reprod. Immunol. Microbiol. 1988. — Vol. 16. — № 4. — P. 143−145.
  165. Cosson M., Dufour P., Nayama M., Vinatier D., Monnier J.C. Obstetrical prognosis of the post-cesarean uterus. 641 cases. // J. Gynecol. Obstet. Biol. Reprod. (Paris). 1995. — Vol. 24. — № 4. — P. 434−439.
  166. Daus K.M. Spontaneous rupture of low transverse cesarean scar. // South. Med. J. 1995. — Vol. 88. — № 5. — P. 600.
  167. Davydov S.N., Fradkov G.F. X-ray cinematography of uterine function after cesarean section. // Radiol. Diagn. (Berl). 1974. — Vol. 15. — № 1. — p. 27−38.
  168. Delarue T., Pele P. Prevention of rupture of the uterus before or during birth in women with previous caesarian sections: report on 14 cases. // J. Gynecol. Obstet. Biol. Reprod. (Paris). -1981. Vol. 10. — № 3. — P. 259−267.
  169. Dellenbach P., Gillet J.Y., Philippe E., Koritke J.G., Muller P. Experimental study on the female rabbit of various technics for repair of cesarean hysterotomy. // Gynecol. Obstet. (Paris). 1968. — Vol. 67. — № 4. — P. 469−478.
  170. Dellenbach P., Szwarcberg R., Walter J.P., Alaoui T., Muller P. Main causes of repetitive abortion revealed by hysterography. // J. Radiol. Electrol. Med. Nucl. -1971. Vol. 52. — № 8. — P. 522−523.
  171. Demianczuk N.N., Hunter D.J., Taylor D.W. Trial of labor after previous cesarean section: prognostic indicators of outcome. // Am. J. Obstet. Gynecol. 1982. — Vol. 142. — № 6. — Pt. 1. — P. 640−642.
  172. D’ercole C., Bretelle F., Piechon L., Shojai R., Boubli L. Is cesarean section indicated for the cicatricial uterus? // J. Gynecol. Obstet. Biol. Reprod. (Paris). -2000. Vol. 29. — Suppl. 2. — P. 51−67.
  173. Dhaifalah I. Spontaneous rupture of a previously scared uterus. A case report and an overview of risk factors in Yemen Republic. // Biomed. Pap. Med. Fac. Univ. Palacky Olomouc Czech Repub. 2001. — Vol. 145. — № 2. — P. 79−80.
  174. Diab A.E. Uterine ruptures in Yemen. // Saudi Med. J. 2005. — Vol. 26. — № 2. -P. 264−269.
  175. Dicle O., Kucukler C., Pirnar T., Erata Y., Posaci C. Magnetic resonance imaging evaluation of incision healing after cesarean sections. // Eur. Radiol.1997.-Vol. 7.-№ 1.-P. 31−34.
  176. Dresser D.W. The potentiating effect of pregnancy on humoral immune responses of mice. // J. Reprod. Immunol. -1991. Vol. 20. — № 3. — P. 253−266.
  177. Dubuisson J.B., Chapron C., Chavet X., Gregorakis S.S. Fertility after laparoscopic myomectomy of large intramural myomas: preliminary results. // Hum. Reprod. 1996. — Vol. 11. — № 3. — P. 518−522.
  178. Dunnihoo D.R., Otterson W.N., Mailhes J.B., Lewis D.F. Jr, Grafton W.D., Brown C.C. An evaluation of uterine scar integrity after cesarean section in rabbits. // Obstet. Gynecol. 1989. — Vol. 73. — № 3. — Pt. 1. — P. 390−394.
  179. Dyack C., Hughes P.F., Simbakalia J.B. Vaginal delivery in the grand multipara following previous lower segment cesarian section. // J. Obstet. Gynaecol. Res. -1997. Vol. 23. — № 2. — P. 219−222.
  180. Egwuatu V.E., Ezeh I.O. Vaginal delivery in Nigerian women after a previous cesarean section. // Int. J. Gynaecol. Obstet. 1990. — Vol. 32. — № 1. — P. 1−6.
  181. Ekele B.A., Audu L.R., Muyibi S. Uterine rupture in Sokoto, Northern Nigeria -are we winning? // Afr. J. Med. Med. Sci. 2000. — Vol. 29. — № 3−4. — P. 191 193.
  182. El Mansouri A. Delivery in the presence of cicatricial uterus. Apropos of 150 cases. //Rev. Fr. Gynecol. Obstet 1994. — Vol. 89. — № 12. — P. 606−612.
  183. Esposito M.A., Menihan C.A., Malee M.P. Association of interpregnancy interval with uterine scar failure in labor: a case-control study. // Am. J. Obstet. Gynecol. 2000. — Vol. 183. — № 5. — P. 1180−1183.
  184. Ezechi O.C., Mabayoje P., Obiesie L.O. Ruptured uterus in South Western Nigeria: a reappraisal. // Singapore Med. J. 2004. — Vol. 45. — № 3. — P. 113−116.
  185. Fabian G. Cyclic changes in lymph vessels in the pig uterus. Studies of the endometrium. //Z. Lymphol. 1988. — Vol. 12. — № 1. — P. 36−39.
  186. Faguer C. Uterine rupture due to placenta accreta at 22 weeks' pregnancy. Apropos of a case. //J. Gynecol. Obstet. Biol. Reprod. (Paris). 1998. — Vol. 17. — № 5. — P. 646−649.
  187. Farmer R.M., Kirschbaum T., Potter D., Strong T.H., Medearis A.L. Uterinerupture during trial of labor after previous cesarean section. // Am. J. Obstet. Gynecol. -1991. Vol. 165. — № 4. — Pt. 1. — P. 996−1001.
  188. Fasubaa O.B., Adetiloye V.A., Baraletei A.C., Owolabi A. T, Dare F. Rupture of uterine scar with extrusion of twin fetuses into the urinary bladder a case report. // West. Afr. J. Med. — 2001. — Vol. 20. — № 2. — P. 158−160.
  189. Feeney JG. Perforation of the uterus causing rupture in subsequent pregnancy. // Ir. J. Med. Sci. 1977. — Vol. 146. — № 6. — P. 175−178.
  190. Fischer R., Schaefer H.E. Enzymological and histochemical investigations on the problem of the origin of tissue leukocytes. // Verh. Dtsch. Ges. Pathol. -1965.-Vol. 49.-P. 271−273.
  191. Fischer R., Schaefer H.E. On the problem of the origin of tissue eosinophils in the rat and mouse uterus. // Naturwissenschaften. 1965. — Vol. 52. — № 16. — P. 479−480.
  192. Fischer R., Schaefer H.E. Comparative enzyme-histochemical studies on tissue eosinophils in the rat and mouse uterus. // Virchows Arch. Pathol. Anat. Physiol. Klin. Med. 1966. — Vol. 340. — № 3. — P. 231−242.
  193. Flamm B.L. Vaginal birth after caesarean (VBAC). // Baillieres Best Pract. Res. Clin. Obstet. Gynaecol. 2001. — Vol. 15. — № 1. — P. 81−92.
  194. Fochem K. The pathological findings of the hysterosalpingography. // Radiologe. 1975. — Vol. 15. -№ 1. — P. 11−18.
  195. Foley J.J., Kettle M.J. Rupture of lower uterine segment scar during abortion at twenty-two weeks. // J. Obstet. Gynaecol. Br. Commonw. 1967. — Vol. 74. — № 4.-P. 607.
  196. Forster B.B., Siu C.M., Murray J.B., Chung M.H. Transabdominal and transvaginal ultrasonography of uterine perforation following suction curettage. // Can. Assoc. Radiol. J. 1989. — Vol. 40. — № 6. — P. 318−319.
  197. Forster P.M., McLean J.M., Gibbs A.C. Lymphoid response to pregnancy and pseudopregnancy in the rat. // J. Anat. 1979. — Vol. 128. — Pt 4. — P. 837−845.
  198. Fukuda M., Fukuda K., Shimizu T., Natsuyama E., Mochizuki M. Two types of translucent membrane of caesarean section scar tissue. // Lancet. 1992. — Vol.339.-№ 8787.-P. 254−255.
  199. Galand P., Tchemitchin N, Tchernitchin A.N. Dissociation of uterine eosino-philia and water imbibition from other estrogen-induced responses by nafoxidine pretreatment. // Mol. Cell Endocrinol. 1985. — Vol. 42. — № 3. — P. 227−233.
  200. Gardeil F., Daly S., Turner M.J. Uterine rupture in pregnancy reviewed. // Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. -1994. Vol. 56. — № 2. — P. 107−110.
  201. Gaucherand P. Frequency and indications of cesarean section. // Rev. Fr. Gynecol. Obstet. -1990. Vol. 85. -№ 2. — P. 109−111.
  202. Gelpke W. Value of hysterography after cesarean section for the assessment of uterine scar. // Geburtshilfe Frauenheilkd. 1969. — Vol. 29. — № 1. — P. 26−32.
  203. Georgieva R. Dynamics of T-suppressor and T-helper lymphocytes and haemo-lytic plaque-forming cells during normal pregnancy in the sow. // J. Reprod. Immunol. 1984. — Vol. 6. — № 3. — P. 151−156.
  204. Giannopoulos G., Jackson K., Tulchinsky D. Specific glucocorticoid binding in human uterine tissues, placenta and fetal membranes. // J. Steroid Biochem. -1983. Vol. 19. — № 3. — P. 1375−1378.
  205. Gjoderum O., Rasmussen O.B., Grabe N. Total uterine rupture of a cesarean section scar during attempted vaginal delivery under epidural analgesia. // Ugeskr. Laeger. 1992. — Vol. 154. — № 36. — P. 2436−2437.
  206. Golan D., Aharoni A., Gonen R., Boss Y., Sharf M. Early spontaneous rupture of the post myomectomy gravid uterus. // Int. J. Gynaecol. Obstet. 1990. — Vol. 31.-№ 2.-P. 167−170.
  207. Goranov M., Popovich D. Anatomical and clinical correlations in uterine cicatrix after cesarean section (II). // Akush. Ginekol. (Sofiia). 1978. — Vol. 17. — № 2. -P. 119−125.
  208. Goranov M., Popovich D. Histological study of the uterine cicatrix after cesarean section (I). // Akush. Ginekol. (Sofiia). 1978. — Vol. 17. — № 1. — P. 14−20.
  209. Gottesman S.R., Stutman O. Cellular immunity during pregnancy. I. Proliferative and cytotoxic reactivity of paraaortic lymph nodes. // Am. J. Reprod. Immunol. 1980. — Vol. 1. — № 1. — P. 10−17.
  210. Gottesman S.R., Stutman O. Cellular immunity during pregnancy. II. Response to T and B cell mitogens. // Am. J. Reprod. Immunol. 1981. — Vol. 1. — № 2. — P. 78−82.
  211. Gouon-Evans V., Pollard J.W. Eotaxin is required for eosinophil homing into the stroma of the pubertal and cycling uterus. // Endocrinology. 2001. — Vol. 142. -№ 10.-P. 4515−4521.
  212. Grunert G, Porcia M, Neumann G, Sepulveda S, Tchernitchin AN. Progesterone interaction with eosinophils and with responses already induced by oestrogen in the uterus. // J. Endocrinol. 1984. — Vol. 102. — № 3. — P. 295−303.
  213. Grunert G., Porcia M., Tchernitchin A.N. Differential potency of oestradiol-17 beta and diethylstilboestrol on separate groups of responses in the rat uterus. // J. Endocrinol. 1986. — Vol. 110. — № 1. — P. 103−114.
  214. Gunin A.G. Effect of long-term glucocorticoid treatment on oestradiol-induced proliferation in the uterus of ovariectomized rats. // J. Endocrinol. 1998. — Vol. 157.-№ 3.-P. 481−488.
  215. Gunin A.G., Mashin I.N., Zakharov D.A. Proliferation, mitosis orientation and morphogenetic changes in the uterus of mice following chronic treatment with both estrogen and glucocorticoid hormones. // J. Endocrinol. 2001. — Vol. 169. -№ 1. — P. 23−31.
  216. Haddad S., Maria B. Delivery of women with cicatricial uterus. // Presse Med. -1996. Vol. 25. — № 17. — P. 813−817.
  217. Halperin M.E., Moore D.C., Hannah W.J. Classical versus low-segment transverse incision for preterm caesarean section: maternal complications and outcome of subsequent pregnancies. // Br. J. Obstet. Gynaecol. 1988. — Vol. 95. -№ 10.-P. 990−996.
  218. Harris W.J. Uterine dehiscence following laparoscopic myomectomy. // Obstet. Gynecol. 1992. — Vol. 80. — № 3. — Pt. 2. — P. 545−546.
  219. Haslam S.Z., McBlain W.A., Shyamala G. An empirical basis for the competition by dexamethasone to progesterone receptors as estimated with the synthetic progestin R5020. // J. Recept. Res. 1981. — Vol. 2. — № 5−6. — P. 435−451.
  220. Hassan A. Trial of scar and vaginal birth after caesarean section. // J. Ayub. Med. Coll. Abbottabad. 2005. — Vol. 17. — № 1. — P. 57−61.
  221. Head J.R., Seeling L.L. Jr. Lymphatic vessels in the uterine endometrium of virgin rats. // J. Reprod. Immunol. 1984. — Vol. 6. — № 3. — P. 157−166.
  222. Hebisch G., Kirkinen P., Haldemann R., Paakkoo E., Huch A., Huch R. Comparative study of the lower uterine segment after Cesarean section using ultrasound and magnetic resonance tomography. // Ultraschall. Med. 1994. — Vol. 15.-№ 3.-P. 112−116.
  223. Hegde U.C., Nainan R. T helper-2 type of interleukins with de novo germinal center formation in the spleen during murine pregnancy. // Am. J. Reprod. Immunol. 1998. — Vol. 40. — № 6. — P. 424−430.
  224. Helkjaer P.E., Petersen P.L. Rupture of the uterus in the 11th week of pregnancy. // Ugeskr. Laeger. 1982. — Vol. 144. — № 51. — P. 3836−3837.
  225. Heller C.L., Orti E., De Nicola A.F. Regulatory factors of glucocorticoid binding in early and term rat placenta. // J. Steroid Biochem. 1986. — Vol. 25. — № 1. — P. 53−58.
  226. Henderson T.A., Saunders P.T., Moffett-King A., Groome N.P., Critchley H.O.
  227. Steroid receptor expression in uterine natural killer cells. // J. Clin. Endocrinol. Metab. 2003. — Vol. 88. — № l.. p. 440−449.
  228. Hesse U., Debus-Thiede G., Meier B., Schussler B. Nuclear magnetic resonance of the pelvic floor an expansion of the anatomic image. // Gynakol. Rundsch.1991. Vol. 31. — Suppl. 2. — P. 312−313.
  229. Hetherington C.M., Humber D.P. The effect of pregnancy on lymph node weight in the mouse. // J. Immunogenet. 1977. — Vol. 4. — № 4. — P. 271−276.
  230. Ho C.K., Tetsuka M., Hillier S.G. Regulation of 1 lbeta-hydroxysteroid dehydrogenase isoforms and glucocorticoid receptor gene expression in the rat uterus. //J. Endocrinol. 1999. — Vol. 163. — № 3. — P. 425−431.
  231. Hofmann D., Scholz H. Rupture of the uterus. // Med. Klin. 1977. — Vol. 72. -№ 14.-P. 593−597.
  232. Hornung D., Dohrn K., Sotlar K., Greb R.R., Wallwiener D., Kiesel L., Taylor R.N. Localization in tissues and secretion of eotaxin by cells from normal endometrium and endometriosis. // J. Clin. Endocrinol. Metab. 2000. — Vol. 85. — № 7.-P. 2604−2608.
  233. Howe R.S., Lee Y.H., Fischkoff S.A., Teuscher C., Lyttle C.R. Glucocorticoid and progestin regulation of eosinophil chemotactic factor and complement C3 in the estrogen-treated rat uterus. // Endocrinology. 1990. — Vol. 126. — № 6. — P. 3193−3199.
  234. Hsu C.D., Chen S., Feng T.I., Johnson TR. Rupture of uterine scar with extensive maternal bladder laceration after cocaine abuse. // Am. J. Obstet. Gynecol.1992. Vol. 167. -№ 1. — P. 129−130.
  235. Izawa M., Satoh Y., Iwasaki K., Ichii S. Glucocorticoid receptor in the ratuterus. // Endocrinol. Jpn. 1984. — Vol. 31. — № 4. — P. 491−500.
  236. Johansson M., Bromfield J.J., Jasper M.J., Robertson S.A. Semen activates the female immune response during early pregnancy in mice. // Immunology. -2004. Vol. 112. — № 2. — P. 290−300.
  237. Johnston M., Elias R. The regulation of lymphatic pumping. // Lymphology. -1987. Vol. 20. — № 4. — P. 215−218.
  238. Josefsson B. Studies on eosinophil granulocytes. V. Evidence against the role of histamine as a mediator of eosinophilia in the uterus of the rat. // Acta Endocrinol. (Copenh). 1968. — Vol. 58. — № 3. — P. 532−536.
  239. Kamel S., Wood G.W. Immunoregulatory activity of cells from lymph nodes draining the uterus of allopregnant mice. // J. Reprod. Immunol. 1990. — Vol. 17. -№ 3. -P. 239−252.
  240. Kanadys W. Scar dehiscence after cesarean section. // Ginekol. Pol. 1979. -Vol. 50.-№ 8.-P. 713−715.
  241. Kaplan B., Royburt M., Peled Y., Hirsch M., Hod M., Ovadia Y., Neri A. Routine revision of uterine scar after prior cesarean section. // Acta Obstet. Gynecol. Scand. 1994. — Vol. 73. — № 6. — P. 473−475.
  242. Kapovic M., Rukavina D. Kinetics of lymphoproliferative responses of lymphocytes harvested from the uterine draining lymph nodes during pregnancy in rats. // J. Reprod. Immunol. -1991. Vol. 20. — № 1. — P. 93−101.
  243. Kapovic M., Rukavina D. Reactivity to alloantigens and polyclonal mitogens and CD4+/CD8+ cell ratio shifts of cervical lymph node and spleen cells during pregnancy in rats. //J. Reprod. Immunol. -1991. Vol. 20. — № 2. — P. 165−174.
  244. Katayama M.L., Federico M.H., Brentani R.R., Brentani M.M. Eosinophil accumulation in rat uterus following estradiol administration is modulated by laminin and its integrin receptors. // Cell Adhes. Commun. 1998. — Vol. 5. — № 5. P. 409−424.
  245. Kawakami S, Togashi K, Sagoh T, Kimura T, Noguchi M, Takakura K, Mori T, Konishi J. Uterine deformity caused by surgery during pregnancy. // J. Com-put. Assist. Tomogr. 1994. — Vol. 18. — № 2. — P. 272−274.
  246. Keirse M. J, Mingeot R.A. Dehiscent Caesarean section scar on hysterography. // Br. J. Radiol. 1974. — Vol. 47. — № 555. — P. 191−192.
  247. Kelenyi G, Nemeth A. Tissue eosinophil leucocytes. H Electron microscopy and histochemistry of the uterine eosinophil leucocytes in oestrogen-treated spayed rats. // Acta Biol. 1972. — Vol. 23. — № 3. — P. 253−267.
  248. Khan K. S, Rizvi A. The partograph in the management of labor following cesarean section. // Int. J. Gynaecol. Obstet. 1995. — Vol. 50. — № 2. — P. 151−157.
  249. Kiss D, Gyorik J, Rajkovits K. Histological examination of uterus healing following cesarean section. // Zentralbl. Gynakol. 1978. — Vol. 100. — № 5. — P. 309−312.
  250. Kleissl H P, Becker H, Falkert. Report on 21 uterine ruptures and the influence of single row uterotomy stitching on rupture prevention. // Geburtshilfe Frauen-heilkd. 1975. — Vol. 35. — № 7. — P. 533−538.
  251. Klemm P, Koehler C, Mangier M, Schneider U, Schneider A. Laparoscopic and vaginal repair of uterine scar dehiscence following cesarean section as detected by ultrasound. // J. Perinat. Med. 2005. — Vol. 33. — № 4. — P. 324−331.
  252. Knitza R, Scheidel P, Hepp H. Concealed rupture of the uterus during continuous epidural anaesthesia. // Geburtshilfe Frauenheilkd. 1980. — Vol. 40. — № 7. -P. 652−653.
  253. Kolle-Frick M, Prinz W, Jonatha W.D. The course of labor following cesarean section with special reference to peridural anesthesia. // Geburtshilfe Frauenheilkd. 1984. — Vol. 44. — № 3. — P. 146−149.
  254. Koob T. J, Jeffrey J. J, Eisen A. Z, Bauer E.A. Hormonal interactions in mammalian collagenase regulation. Comparative studies in human skin and rat uterus. //Biochim. Biophys. Acta. 1980. — Vol. 629. -№ 1. — P. 13−23.
  255. Lai K, Tsomo P. Comparative study of single layer and conventional closure ofuterine incision in cesarean section. // Int. J. Gynaecol. Obstet. 1988. — Vol. 27. — № 3. — P. 349−352.
  256. Lanyi E. Changes of the uterine wall after caesarian section revealed by hystero-graphy. // Cesk. Gynekol. 1982. — Vol. 47. — № 6. — P. 408−410.
  257. Largueche S., Merieh S., El Ariane F., Rozier J.Y., Oueslati R., Hadj Salem H, Ben Amor M.S. 2 cases of post-cesarean utero-parietal fistula. // Tunis Med. -1978. Vol. 56. — № 1. — P. 71−74.
  258. Lauweryns J.M., Cornillie F.J. Topography and ultrastructure of the uterine lymphatics in the rat. //Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 1984. — Vol. 18. -№ 5−6.-P. 309−327.
  259. Lazarov L. Rupture of the uterine cicatrix in vaginal delivery after a prior cesarean section. // Akush. Ginekol. (Sofiia). 1990. — Vol. 29. — № 5. — P. 15−19.
  260. Lazarus E.J. Early rupture of the gravid uterus. // Am. J. Obstet. Gynecol. -1978.-Vol. 132. -№ 2. -P. 224.
  261. Lecuru F., Neji K., Robin F., Darles C., de Bievre P., Taurelle R. Lymphatic drainage of the uterus. Preliminary results of an experimental study. // J. Gynecol. Obstet. Biol. Reprod. (Paris). 1997. — Vol. 26. — № 4. — P. 418−423.
  262. Ledward R.S. Delivery after previous hysterotomy: twelve months experience at a peripheral hospital. // Br. J. Clin. Pract. 1974. — Vol. 28. — № 5. — P. 166−169.
  263. Lee Y.H., Howe R.S., Sha S.J., Teuscher C., Sheehan D.M., Lyttle C.R. Estrogen regulation of an eosinophil chemotactic factor in the immature rat uterus. // Endocrinology. 1989. — Vol. 125. — № 6. — P. 3022−3028.
  264. Leiva M.C., Xu Q., Galman M., Lyttle C.R. Ontogeny of the production of an estrogen-regulated eosinophil chemotactic factor in the rat uterus. // Biol. Reprod. 1991. — Vol. 45. — № 6. — P. 818−823.
  265. Leung A.S., Farmer R.M., Leung E.K., Medearis A.L., Paul R.H. Risk factors associated with uterine rupture during trial of labor after cesarean delivery: a case-control study. // Am. J. Obstet. Gynecol. 1993. — Vol. 168. — № 5. — P. 1358−1363.
  266. Levrant S.G., Wingate M. Midtrimester uterine rupture. A case report. // J. Reprod. Med. -1996. Vol. 41. — № 3. — P. 186−190.
  267. Lierse W. The anatomy of the pelvis. // Rontgenblatter. 1990. — Vol. 43. — № 10.-P. 405−408.
  268. Ling C., Xu L. The prospective study of trial labor following previous cesarean section. // Zhonghua Fu Chan Ke Za Zhi. 1995. — Vol. 30. — № 12. — P. 721−723.
  269. Locatelli A., Regalia A.L., Ghidini A., Ciriello E., Biffi A., Pezzullo J.C. Risks of induction of labour in women with a uterine scar from previous low transverse caesarean section. // BJOG. 2004. — Vol. 111. — № 12. — P. 1394−1399.
  270. Lonky N.M., Worthen N., Ross M.G. Prediction of cesarean section scars with ultrasound imaging during pregnancy. // J. Ultrasound Med. 1989. — Vol. 8. — № 1.-P. 15−19.
  271. Lopez M., Castrillon M.A., Tchernitchin A.N. Colloidal carbon blocks oestrogen-induced migration of eosinophils to the uterus and the uterine water imbibition response. // J. Endocrinol. 1986. — Vol. 109. — № 1. — P. 89−95.
  272. Lurie S., Hagay Z., Goldschmit R., Insler V. Routine previous cesarean scar exploration following successful vaginal delivery. Is it necessary? // Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. -1992. Vol. 45. — № 3. — P. 185−186.
  273. Luzzani F., Gallico L., Glasser A. In vitro and ex vivo binding to uterine progestin receptors of the rat as a tool to assay progestational activity of glucocorticoids. // Methods Find Exp. Clin. Pharmacol. 1982. — Vol. 4. — № 4. — P. 237 242.
  274. Lynch J.C., Pardy J.P. Uterine rupture and scar dehiscence. A five-year survey. //Anaesth. Intensive Care. 1996. — Vol. 24. — № 6. — P. 699−704.
  275. Lyttle C.R., Medlock K.L., Sheehan D.M. Eosinophils as the source of uterine nuclear type II estrogen binding sites. // J. Biol. Chem. 1984. — Vol. 259. — № 5. -P. 2697−2700.
  276. Madsen P., Olsen C.E. Severe haemorrhage from the non-pregnant uterus as a result of cicatricial necrosis after cervical caesarian section. // Acta Obstet. Gynecol. Scand. 1977. — Vol. 56. — № 5. — P. 535−537.
  277. Magnin P., Thoulon J.M. Hysterographic study of the uterus after cesarean section. (Apropos of 90 cases) I. Prognostic value of hysterography. // Gynecol. Obstet. (Paris). -1968. Vol. 67. — № 1. — P. 119−136.
  278. Marcus S., Cheng E., Goff B. Extrauterine pregnancy resulting from early uterine rupture. // Obstet. Gynecol. -1999. Vol. 94. — № 5. — Pt. 2. — P. 804−805.
  279. Maria N.E., Mishra N., Mubarek M., Reginald P.W. Silent dehiscence of a cae-sarean section scar with placenta praevia accreta. // J. Obstet. Gynaecol. 2003. -Vol. 23.-№ 1.-P. 77.
  280. Markaverich B.M., Upchurch S., Clark J.H. Progesterone and dexamethasone antagonism of uterine growth: a role for a second nuclear binding site for estradiol in estrogen action. // J. Steroid Biochem. -1981. Vol. 14. — № 2. — P. 125 132.
  281. Markaverich B.M., Roberts R.R., Alejandro M.A., Clark J.H. Uterine type II estrogen-binding sites are not of eosinophil origin. // J. Biol. Chem. 1986. — Vol. 261.-№ 1.-P. 142−146.
  282. Martin J.N. Jr, Perry K.G. Jr, Roberts W.E., Meydrech E.F. The case for trial of labor in the patient with a prior low-segment vertical cesarean incision. // Am. J. Obstet. Gynecol. 1997. — Vol. 177. -№ 1. — P. 144−148.
  283. Mattsson R., Holmdahl R. Maintained allogeneic pregnancy in rats depleted of T cytotoxic/suppressor cells by 0X8 monoclonal antibody treatment. // J. Reprod. Immunol. 1987. — Vol. 12. — № 1. — P. 23−34.
  284. McLean J.M., Mosley J.G., Gibbs A.C. Changes in the thymus, spleen and lymph nodes during pregnancy and lactation in the rat. // J. Anat. 1974. — Vol. 118.-Pt2.-P. 223−229.
  285. Medynski M., Stankiewicz S. Uterine scar an increasing obstetrical problem. // Wiad. Lek. -1979. — Vol. 32. — № 3. — P. 161−165.
  286. Meehan F.P., Moolgaoker A.S., Stallworthy J. Vaginal delivery under caudal analgesia after caesarean section and other major uterine surgery. // Br. Med. J. -1972. Vol. 2. — № 816. — P. 740−742.
  287. Meehan F.P., Burke G., Kehoe J.T., Magani I.M. True rupture/scar dehiscence in delivery following prior section. // Int. J. Gynaecol. Obstet. 1990. — Vol. 31. -№ 3. — P. 249−255.
  288. Mejia R., Escalona A., Cabello A., Videla S. Post-cesarean uterine scar. // Rev. Chil. Obstet. Ginecol. 1989. — Vol. 54. — № 5. — P. 307−309.
  289. Mena M.A., Grunert G., Mansilla M.S., Lucia M.E., Pizarro M.I., Hidalgo P.A., Tchernitchin A.N. Inhibition of non-genomic responses to oestrogen in the rat uterus by testosterone propionate. // J. Reprod. Fertil. 1985. — Vol. 74. — № 1. -P. 1−7.
  290. Mesleh R.A., Kurdi A.M., Ayoub H.S. Can the rate of cesarean section be reduced?//Saudi Med. J. -2000. Vol. 21. -№ 11. -P. 1054−1058.
  291. Mishra A., Landzberg B.R., Parente J.T. Uterine rupture in association with al-kaloidal («crack») cocaine abuse. //Am. J. Obstet. Gynecol. 1995. — Vol. 173. -№ 1. — P. 243−244.
  292. Mislin H. The Lymphangion. // Lymphangiology. Stuttgart, New York: Schattauer, 1983.-Ch. 3.-P. 165−173.
  293. Molloy B.G., Sheil O., Duignan N.M. Delivery after caesarean section: review of 2176 consecutive cases. // Br. Med. J. (Clin. Res. Ed.). 1987. — Vol. 294. — № 6588.-P. 1645−1647.
  294. Monteagudo A., Carreno C., Timor-Tritsch I.E. Saline infusion sonohystero-graphy in nonpregnant women with previous cesarean delivery: the «niche» in the scar. // J. Ultrasound Med. 2001. — Vol. 20. — № 10. — P. 1105−1115.
  295. Mora O.A., Sanchez-Criado J.E., Guisado S. Role of the vomeronasal organ on the estral cycle reduction by pheromones in the rat. // Rev. Esp. Fisiol. 1985. -Vol. 41.-№ 3.-P. 305−310.
  296. Morris H. Surgical pathology of the lower uterine segment caesarean section scar: is the scar a source of clinical symptoms? // Int. J. Gynecol. Pathol. 1995. -Vol. 14.-№ 1.-P. 16−20.
  297. Mor-Yosef S., Zeevi D., Samueloff A., Donhin M., Frankfurter H., Schenker J.G. Vaginal delivery following one previous cesarean birth: nation wide survey. // Asia Oceania J. Obstet. Gynaecol. 1990. — Vol. 16. — № 1. — P. 33−37.
  298. Mor-Yosef S., Samueloff A., Schenker J.G. The Israel perinatal census. // Asia Oceania J. Obstet. Gynaecol. 1992. — Vol. 18. — № 2. — P. 139−145.
  299. Mosley J.G., McLean J.M., Gibbs A.C. The response of iliac lymph nodes to the fetal allograft. // J. Anat. 1975. — Vol. 119. — Pt 3. — P. 619−623.
  300. Moutsatsou P., Sekeris C.E. Steroid receptors in the uterus: implications in endometriosis. // Ann. N. Y. Acad. Sci. 2003. — Vol. 997. — P. 209−222.
  301. Mozurkewich E.L., Hutton E.K. Elective repeat cesarean delivery versus trial of labor: a meta-analysis of the literature from 1989 to 1999. // Am. J. Obstet. Gynecol. 2000. — Vol. 183. — № 5. — P. 1187−1197.
  302. Muller R., Kohler R., Schultze H., Wolansky D. A modified SarafofF suture for closure of the uterine wound in Cesarean section. // Zentralbl. Gynakol. 1990.
  303. Vol. 112.-№ 13.-P. 803−809.
  304. Nayki U., Taner C.E., Mizrak T., Nayki C., Derin G. Uterine rupture during second trimester abortion with misoprostol. // Fetal Diagn. Ther. 2005. — Vol. 20. -№ 5.-P. 469−471.
  305. Neeser E., Niehues U., Hirsch H.A. Maternal morbidity following cesarean section. Comparison of isthmo-corpus longitudinal section and isthmian transverse section in premature labor. // Geburtshilfe Frauenheilkd. 1988. — Vol. 48. — № 1. -P. 8−12.
  306. Negura A., Gavrilita L., Ardeleanu D. The trauma of the hysterotomy incision. // Rev. Fr. Gynecol. Obstet. -1988. Vol. 83. — № 3. — P. 161−164.
  307. Negura-Marderos A., Gavrilita L., Ardeleanu D. Trauma of the edges of the uterine wound in Cesarean section, a factor which affects the quality of the cicatrix. // Rev. Med. Chir. Soc. Med. Nat. Iasi. 1977. — Vol. 81. — № 2. — P. 219 222.
  308. Newport A., Carter J. Changes in T and B lymphocyte populations in the lymph nodes draining the uterus in pregnant mice. // J. Reprod. Fertil. 1983. — Vol. 67. — № 2. — P. 433−440.
  309. Ofir K., Sheiner E., Levy A., Katz M., Mazor M. Uterine rupture: differences between a scarred and an unscarred uterus. // Am. J. Obstet. Gynecol. 2004. -Vol. 191.-№ 2.-P. 425−429.
  310. Onoyama S., Ichii S. Nuclear binding sites in the liver for dexamethasone and in the ventral prostate for R1881. // Endocrinol. Jpn. 1982. — Vol. 29. — № 3. — P. 349−356.
  311. Ottolenghi A. The relationship between eosinophilic leukocytes and phospholi-pase B activity in some rat tissues. // Lipids. 1970. — Vol. 5. — № 6. — P. 531 538.
  312. Palliez R., Dubois R., Delecour M., Monnier J.C., Flipo B., Begueri F. Hystero-graphic study of the cesarean sectioned uterus: 56 cases. // Bull. Fed. Soc. Gynecol. Obstet. Lang. Fr. 1969. — Vol. 21. — № 1. — P. 48−50.
  313. Panko W.B., Clark J.H., Walters M.R. Glucocorticoid receptors: documentation in the rat uterus. // J. Recept. Res. -1981. Vol. 2. — № 1. — P. 29−45.
  314. Paraskevaides E., Stuart B., Gardeil F. Secondary postpartum haemorrhage from nondehisced lower caesarean section scar: a case for hysteroscopy. // Aust. N. Z. J. Obstet. Gynaecol. 1993. — Vol. 33. — № 4. — P. 427.
  315. Parmiani G., Invernizzi G. Depression of cellular immune response during syngeneic pregnancy as measured by the graft-versus-host reaction. // Transplantation. -1975. Vol. 19. -№ 5. — P. 363−368.
  316. Paul K.G., Kumlien A., Brody S. Studies on eosinophil granulocytes, n. The effect of cytostatics on the uterine response to oestrogen. // Experientia. 1966. -Vol. 22.-№ 12.-P. 799−800.
  317. Paul K.G., Kumlien A., Jakobsson S., Brody S. Eosinophil granulocytes. I. Identification of the uterus peroxidase. // Scand. J. Clin. Lab. Invest. 1967. — Vol. 20.-№ 1.-P. 11−16.
  318. Paul R.H., Miller D.A. Cesarean birth: how to reduce the rate. // Am. J. Obstet. Gynecol. 1995. — Vol. 172. — № 6. — P. 1903−1907- discussion 1907−1911.
  319. Pellerin M., Colau J.C., Rebibo G., Savey L. An MRI study of the normal pelvis in the immediate postpartum period. // J. Radiol. 1999. — Vol. 80. — № 6. — P. 579−584.
  320. Perez M.C., Furth E.E., Matzumura P.D., Lyttle C.R. Role of eosinophils in uterine responses to estrogen. // Biol. Reprod. 1996. — Vol. 54. — № 1. — P. 249−254.
  321. Perrotin F., Marret H., Fignon A., Body G., Lansac J. Scarred uterus: is routine exploration of the cesarean scar after vaginal birth always necessary? // J. Gynecol. Obstet. Biol. Reprod. (Paris). 1999. — Vol. 28. — № 3. — P. 253−262.
  322. Petrikovsky B. Intrapartum hysteroscopy. // Aust. N. Z. J. Obstet. Gynaecol. -1986. Vol. 26. — № 4. — P. 249−250.
  323. Petrikovsky B.M. Intrapartum fetoscopy: technique and indications. // Endoscopy. 1988. — Vol. 20. — № 4. — P. 142−143.
  324. Petrikovsky B.M. Endoscopic assessment of the integrity of the postcesarean uterine wall before a trial of labor. Transcervical Endoscopy Registry. // J. Reprod. Med. 1994. — Vol. 39. — № 6. — P. 464−466.
  325. Phelan J.P., Clark S.L., Diaz F., Paul R.H. Vaginal birth after cesarean. // Am. J. Obstet. Gynecol. 1987. — Vol. 157. -№ 6. — P. 1510−1515.
  326. Phelan J.P., Korst L.M., Settles D.K. Uterine activity patterns in uterine rupture: a case-control study. // Obstet. Gynecol. 1998. — Vol. 92. — № 3. — P. 394−397.
  327. Philippe H.J., Karanouh S., Rozenberg P., Dien D.T., Nisand I. Transvaginal surgery for uterine scar dehiscence. // Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. -1997. Vol. 73. — № 2. — P. 135−138.
  328. Picaud A., Mome-Nze A.R., Ogowet N., Engongah T., Ella-Ekogha R. Delivery in the scarred uterus. Apropos of 606 cases in 62,193 deliveries. // Rev. Fr. Gynecol. Obstet. -1990. Vol. 85. — № 6. — P. 387−392.
  329. Pridjian G. Labor after prior cesarean section. // Clin. Obstet. Gynecol. 1992. -Vol. 35.-№ 3.-P. 445−456.
  330. Prochorow M., Lazar W. Pattern of the scar in the lower segment of the uterus following cesarean section. // Ginekol. Pol. -1971. Vol. 43. — № 1. — P. 43−50.
  331. Praett K.M., Kirshon B., Cotton D.B. Unknown uterine scar and trial of labor. //
  332. Am. J. Obstet. Gynecol. 1988. — Vol. 159. — № 4. — P. 807−810.
  333. Rabin D.S., Johnson E.O., Brandon D.D., Liapi C., Chrousos G.P. Glucocorticoids inhibit estradiol-mediated uterine growth: possible role of the uterine estradiol receptor. // Biol. Reprod. -1990. Vol. 42. — № 1. — P. 74−80.
  334. Rachagan S.P., Raman S., Balasundram G., Balakrishnan S. Rupture of the pregnant uterus a 21-year review. // Aust. N. Z. J. Obstet. Gynaecol. — 1991. -Vol. 31.- № 1.- P. 37−40.
  335. Rakhim A.U. Hysterography following repeated cesarean section. // Akush. Gi-nekol. (Sofiia). 1976. — Vol. 15. — № 5. — P. 332−336.
  336. Ramos J.G., Varayoud J., Kass L., Rodriguez H., Munoz de Toro M., Montes G.S., Luque E.H. Estrogen and progesterone modulation of eosinophilic infiltration of the rat uterine cervix. // Steroids. 2000. — Vol. 65. — № 7. — P. 409−414.
  337. Ranzinger M., Fuentes A., Smyk L.V. Spontaneous rupture of a low transverse cesarean scar. // South. Med. J. 1994. — Vol. 87. — № 10. — P. 1001−1002.
  338. Rashmi, Radhakrisknan G., Vaid N.B., Agarwal N. Rupture uterus changing Indian scenario. // J. Indian Med. Assoc. — 2001. — Vol. 99. — № 11. — P. 634−637.
  339. Raskin K.S., Dachauer J.D., Doeden A.L., Rayburn W.F. Uterine rupture after use of a prostaglandin E2 vaginal insert during vaginal birth after cesarean. A report of two cases. //J. Reprod. Med. 1999. — Vol. 44. — № 6. — P. 571−574.
  340. Regnard C., Nosbusch M., Fellemans C., Benali N., van Rysselberghe M., Barlow P., Rozenberg S. Cesarean section scar evaluation by saline contrast sono-hysterography. // Ultrasound Obstet. Gynecol. 2004. — Vol. 23. — № 3. — P. 289 292.
  341. Rhen T., Grissom S., Afshari C., Cidlowski J.A. Dexamethasone blocks the rapid biological effects of 17beta-estradiol in the rat uterus without antagonizing its global genomic actions. // FASEB J. 2003. — Vol. 17. — № 13. — P. 1849
  342. Roberts R.G., Bell H.S., Wall E.M., Moy J.G., Hess G.H., Bower H.P. Trial of labor or repeated cesarean section. The woman’s choice. // Arch. Fam. Med. -1997. Vol. 6. — № 2. — P. 120−125.
  343. Robertson S.A., Mau V.J., Young I.G., Matthaei K.I. Uterine eosinophils and reproductive performance in interleukin 5-deficient mice. // J. Reprod. Fertil. -2000. Vol. 120. — № 2. — P. 423−432.
  344. Rojas A.M., Steinsapir J. Multiple mechanisms of regulation of estrogen action in the rat uterus: effects of insulin. // Endocrinology. 1983. — Vol. 112. — № 2. -P. 586−591.
  345. Ross R., Klebanoff S.J. The eosinophilic leukocyte. Fine structure studies of changes in the uterus during the estrous cycle. // J. Exp. Med. 1966. — Vol. 124. — № 4. — P. 653−660.
  346. Rouzi A.A., Hawaswi A.A., Aboalazm M., Hassanain F., Sindi O. Uterine rupture incidence, risk factors, and outcome. // Saudi Med. J. 2003. — Vol. 24. — № l.-P. 37−39.
  347. Rozenberg P., Goffinet F., Phillippe H.J., Nisand I. Ultrasonographic measurement of lower uterine segment to assess risk of defects of scarred uterus. // Lancet. 1996. — Vol. 347. — № 8997. — P. 281−284.
  348. Rozenberg P., Goffinet F., Philippe H.J., Nisand I. Echographic measurement of the inferior uterine segment for assessing the risk of uterine rupture. // J. Gynecol. Obstet. Biol. Reprod. (Paris). 1997. — Vol. 26. — № 5. — P. 513−519.
  349. Rozenberg P., Goffinet F., Philippe H.J., Nisand I. Thickness of the lower uterine segment: its influence in the management of patients with previous cesarean sections. // Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 1999. — Vol. 87. — № 1. — P.39.45.
  350. Rudigoz R.C., Chardon C. Cesarean section in 1988. Obstetrical problems posed by the scarred uterus. // Rev. Fr. Gynecol. Obstet. 1990. — Vol. 85. — № 2. — P. 105−108.
  351. Ruiz-Velasco V., Gongora-Lopez P., Rosas-Arceo J., Rio De La Loza F. Study of the cicatrization of the pregnant uterus. // Ginecol. Obstet. Mex. 1968. — Vol. 24.-№ 141.-P. 15−35.
  352. Ruiz-Velasco V., Rosas-Arceo J. Evaluation of the cesarean section cicatrix. // Rev. Fr. Gynecol. Obstet. -1971. Vol. 66. — № 2. — P. 83−93.
  353. Russell A.J., Hewlett P.M. A hysterographic study of the abdominal hysterotomy scar. // J. Obstet. Gynaecol. Br. Commonw. 1969. — Vol. 76. — № 8. — P. 721−723.
  354. Sasaki K., Ito T. Effects of pregnancy and lactation on the peripheral lymphatic tissue in the mouse: qualitative and quantitative morphology. // Arch. Histol. Jpn. 1980. — Vol. 43. — № 5. — P. 423−436.
  355. Satli M.A., Aron C. New data on olfactory control of estral receptivity of female rats. // C. R. Acad. Sci. Hebd. Seances Acad. Sci. D. 1976. — Vol. 282. — № 9. -P. 875−877.
  356. Schneider D., Bukovsky I., Caspi E. Safety of midtrimester pregnancy termination by laminaria and evacuation in patients with previous cesarean section. // Am. J. Obstet. Gynecol. 1994. — Vol. 171. — № 2. — P. 554−557.
  357. Schneider G. Palpation of the uterine scar after vaginal delivery. // CMAJ.1989.-Vol. 141.-№ 2.-P. 98.
  358. Schubert A.K. Effects of progesterone antagonists on the eosinophilic granulocytes in the rat uterus. // Anat. Anz. 1998. — Vol. 180. — № 5. — P. 401−408.
  359. Scioscia M, Pontrelli G, Vimercati A, Santamato S, Selvaggi L. A short-scheme protocol of gemeprost for midtrimester termination of pregnancy with uterine scar. // Contraception. 2005. — Vol. 71. — № 3. — P. 193−196.
  360. Sebhatu B. An experience with trial of scar in 66 Ethiopian women. // East. Afr. Med. J. 1994. — Vol. 71. — № 10. — P. 676−678.
  361. Seewald H. J, Stech D, Wetzel E. Hysterographic examinations following cesarean section. // Zentralbl. Gynakol. 1973. — Vol. 95. — № 37. — P. 1297−1301.
  362. Segal D, Marcus-Braun N, Katz M. Extrusion of fetus into the abdominal cavity following complete rupture of uterus: a case report. // Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 2003. — Vol. 109. — № 1. — P. 110−111.
  363. Sen S, Malik S, Salhan S. Ultrasonographic evaluation of lower uterine segment thickness in patients of previous cesarean section. // Int. J. Gynaecol. Obstet. 2004. — Vol. 87. — № 3. — P. 215−219.
  364. Sferruzzi-Perri A. N, Robertson S. A, Dent L.A. Interleukin-5 transgene expression and eosinophilia are associated with retarded mammary gland development in mice. // Biol. Reprod. 2003. — Vol. 69. — № 1. — P. 224−233.
  365. Shimonovitz S, Botosneano A, Hochner-Celnikier D. Successful first vaginal birth after cesarean section: a predictor of reduced risk for uterine rupture in subsequent deliveries. // Isr. Med. Assoc. J. 2000. — Vol. 2. — № 7. — P. 526−528.
  366. Silberstein T, Wiznitzer A, Katz M, Friger M, Mazor M. Routine revision of uterine scar after cesarean section: has it ever been necessary? // Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 1998. — Vol. 78. — № 1. — P. 29−32.
  367. Singhal S. R, Agarwal U, Sangwan K, Khosla A, Singhal S. Intrapartum posterior uterine wall rupture in lower segment cesarean section scarred uterus. // Acta Obstet. Gynecol. Scand. 2005. — Vol. 84. — № 2. — P. 196−197.
  368. Sirbu P., Vasiliu C., Goranov M. Uterine cicatrix after cesarean sections. Radiological study. // J. Gynecol. Obstet. Biol. Reprod. (Paris). -1972. Vol. 1. — № 6. -P. 563−574.
  369. Soto J., Tchernitchin A.N., Poloni P., Voigt G., Caro B., Agurto M. Effect of ke-totifen on the distribution and degranulation of uterine eosinophils in estrogen-treated rats. // Agents Actions. 1989. — Vol. 28. — № 3−4. — P. 198−203.
  370. Spencer F., Chi L., Zhu M.X. Dexamethasone-induced changes in endometrial growth and inducible nitric oxide synthase during decidualization in rats. // Clin. Exp. Pharmacol. Physiol. 1998. — Vol. 25. — № 3−4. — P. 240−245.
  371. Steinsapir J., Rojas A.M., Alarcon O., Tchernitchin A.N. Effect of insulin and epinephrine on some early oestrogenic responses in the rat uterus. // Acta Endocrinol. (Copenh). 1982. — Vol. 99. — № 2. — P. 263−271.
  372. Steinsapir J., Rojas A.M., Mena M., Tchernitchin A.N. Effects of thyroid hormone on some uterine responses to estrogen. // Endocrinology. 1982. — Vol. 110.-№ 5.-P. 1773−1779.
  373. Steinsapir J., Rojas A.M., Tchernitchin A. Theophylline-estrogen interaction in the rat uterus: role of the ovary. // Am. J. Physiol. 1982. — Vol. 242. — № 2. — P. E121-E126.
  374. Stewart K.S., Evans T.W. Recurrent bleeding from the lower segment scar a late complication of Caesarean section. // Br. J. Obstet. Gynaecol. — 1975. — Vol. 82.-№ 8.-P. 682−686.
  375. Stewart P.J., Zaloudek C.J., Inman M.M., Webster R.A. Effects of dexa-methasone and indomethacin on estrogen-induced uterine growth. // Life Sci. -1983. Vol. 33. — № 23. — P. 2349−2356.
  376. Stone J., Lockwood C.J., Berkowitz G.S., Lynch L., Alvarez M., Lapinski R.H., Berkowitz R.L. Morbidity of failed labor in patients with prior cesarean section. //Am. J. Obstet. Gynecol. 1992. — Vol. 167. -№ 6. — P. 1513−1517.
  377. Stone J.L., Lockwood C.J., Berkowitz G., Alvarez M., Lapinski R., Valca-monico A., Berkowitz R.L. Use of cervical prostaglandin E2 gel in patients with previous cesarean section. // Am. J. Perinatol. 1994. — Vol. 11. — № 4. — P. 309 312.
  378. Sturgis S.H., Velardo J.T. Antagonism of glucocorticoids and ACTH on estradiol 17beta induced uterine growth. // Surg. Forum. 1956. — Vol. 6. — № 1955. -P. 457−462.
  379. Sulila P., Lundkvist U., Mattsson R. Effects of pseudopregnancy on immu-noglobulin-secreting cells in mice. //J. Reprod. Immunol. 1988. — Vol. 13. — № 2.-P. 175−182.
  380. Sulila P., Mattsson R. Humoral immune activity in CBA/Ca mice during late pregnancy and the post-partum period. // J. Reprod. Immunol. 1990. — Vol. 18.- № 3. P. 259−269.
  381. Suzuki K., Tomasi T. B Jr. Immune responses during pregnancy. Evidence of suppressor cells for splenic antibody response. // J. Exp. Med. 1979. — Vol. 150.- № 4. P. 898−908.
  382. Tchernitchin A. Fine structure of rat uterine eosinophils and the possible role of eosinophils in the mechanism of estrogen action. // J. Steroid Biochem. 1973. -Vol. 4. — № 3. — P. 277−282.
  383. Tchernitchin A., Roorijck J., Tchernitchin X., Vandenhende J., Gal and F. Dramatic early increase in uterine eosinophils after oestrogen administration. // Nature. 1974. — Vol. 248. — № 444. — P. 142−143.
  384. Tchernitchin A., Rooryck J., Tchernitchin X., Vandenhende J., Galand P. Effects of Cortisol on uterine eosinophilia and other oestrogenic responses. // Mol. Cell Endocrinol. 1975. — Vol. 2. — № 5. — P. 331−337.
  385. Tchernitchin A., Tchernitchin X., Galand P. Correlation of estrogen-induced uterine eosinophilia with other parameters of estrogen stimulation, produced with estradiol-17beta and estriol. // Experientia. 1975. — Vol. 31. — № 8. — P. 993−994.
  386. Tchernitchin A., Tchernitchin X., Robel P., Baulieu E.E. The binding of estradiol to human polynuclear eosinophilic leukocytes // C. R. Acad. Sci. Hebd. Seances Acad. Sci. D. 1975. — Vol. 280. — № 12. — P. 1477−1480.
  387. Tchernitchin A., Tchernitchin X., Galand P. New concepts on the action of oestrogens in the uterus and the role of the eosinophil receptor system. // Differentiation. 1976. — Vol. 5. — № 2−3. — P. 145−150.
  388. Tchernitchin A., Tchernitchin X., Rodriguez A., Mena M.A., Unda C., Mairesse N., Galand P. Effect of propranolol on various parameters of estrogen stimulation in the rat uterus. // Experientia. 1977. — Vol. 33. — № 11. — P. 1536−1537.
  389. Tchernitchin A.N. Eosinophil-mediated non-genomic parameters of estrogen stimulation a separate group of responses mediated by an independent mechanism. //J. Steroid Biochem. — 1983. — Vol. 19. -№ 1A. — P. 95−100.
  390. Tchernitchin A.N., Galand P. Oestrogen levels in the blood, not in the uterus, determine uterine eosinophilia and oedema. // J. Endocrinol. 1983. — Vol. 99. — № l.-P. 123−130.
  391. Tchernitchin A.N., Barrera J., Arroyo P., Mena M.A., Vilches K., Grunert G.
  392. Degranulatory action of estradiol on blood eosinophil leukocytes in vivo and in vitro. // Agents Actions. 1985. — Vol. 17. — № 1. — P. 60−66.
  393. Tchernitchin X., Tchernitchin A., Galand P. Dynamics of eosinophils in the uterus after oestrogen administration. // Differentiation. 1976. — Vol. 5. — № 2−3. -P. 151−154.
  394. Terada N., Yamane T., Matsumoto K., Asai H., Kitamura Y. Estrogen-induced increase in eosinophil number and peroxidase activity in uterus of genetically mast cell-deficient WAVv mice. // Biol. Reprod. 1985. — Vol. 33. — № 4. — P. 899−901.
  395. Terada N., Yamamoto R., Yamamoto T., Nishizawa Y., Taniguchi H., Terakawa N., Kitamura Y., Matsumoto K. Effect of dexamethasone on uterine cell death. // J. Steroid Biochem. Mol. Biol. -1991. Vol. 38. -№ 1. — P. 111−115.
  396. Tischendorf D. The single-layer uterine suture in cesarean section. A comparative study. // Geburtshilfe Frauenheilkd. 1987. — Vol. 47. — № 2. — P. 117−120.
  397. Tomialowicz M., Flotjanski J., Zimmer M. The use of oxytocin and prostaglandin in pregnancies after cesarean delivery or uterine surgery. // Ginekol. Pol. 2000. — Vol. 71. — № 4. — P. 242−246.
  398. Tucker J.M., Hauth J.C., Hodgkins P., Owen J., Winkler C.L. Trial of labor after a one- or two-layer closure of a low transverse uterine incision. // Am. J. Obstet. Gynecol. 1993. — Vol. 168. — № 2. — P. 545−546.
  399. Twickler D.M., Lucas M.J., Balis A.B., Santos-Ramos R,. Martin L., Malone S., Rogers B. Color flow mapping for myometrial invasion in women with a prior cesarean delivery. // J. Matern. Fetal. Med. 2000. — Vol. 9. — № 6. — P. 330−335.
  400. Uzoigwe S.A., Fiebai P.O., MacPepple D.A. Spontaneous midtrimester uterine rupture: a case report. // Niger J. Med. 2004. — Vol. 13. — № 3. — P. 290−292.
  401. Valle R.F., Sciarra J.J. Hysteroscopy: a useful diagnostic adjunct in gynecology. // Am. J. Obstet. Gynecol. 1975. — Vol. 122. — № 2. — P. 230−235.
  402. Van Vugt P.J. The protrusions from the cervical canal at the scar of a previous cesarean section. // Acta Obstet. Gynecol. Scand. 1979. — Vol. 58. — № 4. — P. 327−334.
  403. Vause S., Macintosh M. Evidence based case report: use of prostaglandins to induce labour in women with a caesarean section scar. // BMJ. -1999. Vol. 318. -№ 7190.-P. 1056−1058.
  404. Vedat A., Hasan B., Ismail A. Rupture of the uterus in labor: a review of 150 cases. // Isr. J. Med. Sci. -1993. Vol. 29. — № 10. — P. 639−643.
  405. Veridiano N.P., Lopes J., Ohm H.K., Tancer M.L. Placenta percreta as a cause of uterine perforation during abortion. A case report. // J. Reprod. Med. 1986. -Vol. 31.-№ 11.-P. 1049−1050.
  406. Waidl E. Multiple cesarean section. // Med. Klin. 1966. — Vol. 61. — № 24. — P. 941−945.
  407. Wang F., Riley J.C., Behrman H.R. Immunosuppressive levels of glucocorticoid block extrauterine luteolysins in the rat. // Biol. Reprod. 1993. — Vol. 49. — № 1. -P. 66−73.
  408. Wang P.H., Yuan C.C., Chao H.T., Yang M.J., Ng H.T. Posterior uterine wall rupture during labour. // Hum. Reprod. 2000. — Vol. 15. — № 5. — P. 1198−1199.
  409. Waniorek A. Hysterography after cesarean section for evaluation of suturing technic. // Obstet. Gynecol. 1967. — Vol. 29. — № 2. — P. 192−199.
  410. Waniorek A. Segmental transverse cicatrix. Study of nonpregnant uterine specimens. // J. Gynecol. Obstet. Biol. Reprod. (Paris). 1972. — Vol. 1. — № 5. — P. 457−467.
  411. Waniorek A. Study of the different technics of repairing hysterotomy. (Experimental study on pregnant and non pregnant animals). // J. Gynecol. Obstet. Biol. Reprod. (Paris). 1972. — Vol. 1. — № 2. — P. 167−178.
  412. Wasef W.R. An audit of trial of labour after previous caesarean section. // J. Obstet. Gynaecol. 2000. — Vol. 20. — № 4. — P. 380−381.
  413. Webb J.C., Gilson G., Gordon L. Late second stage rupture of the uterus andbladder with vaginal birth after cesarean section: a case report and review of the literature. // J. Matern. Fetal. Med. 2000. — Vol. 9. — № 6. — P. 362−365.
  414. Wehbe A., Lechaux J.P., loan A. Rupture of a scarred gravid uterus at 28 weeks of amenorrhea. Conservative surgical management and results. // Rev. Fr. Gynecol. Obstet. -1994. Vol. 89. — № 3. — P. 137−141.
  415. Weibel E.R. Stereological methods. London: Academic Press, 1979. 415 p.
  416. Weidenbach A., Wallner H. Diagnosis and surgical treatment of abdominal wall fistula following abdominal cesarean section. // Zentralbl. Gynakol. 1972. -Vol. 94.-№ 2.-P. 70−72.
  417. Witte M.N., Witte C.L. Lymphangiogenesis and lymphologic syndroms. // Lym-phology. 1986. — Vol. 19. — № 1. — P. 21−28.
  418. Witte M.N., Witte C.L. Lymphatics and blood vessels, lymphangiogenesis and hemangiogenesis: from cell biology to clinical medicine. // Lymphology. 1987. -Vol. 20.-№ 4.-P. 257−266.
  419. Wojdecki J., Grynsztajn A. Scar formation in the uterus after cesarean section. // Am. J. Obstet. Gynecol. 1970. — Vol. 107. — № 2. — P. 322−324.
  420. Xu Q., Leiva M.C., Fischkoff S.A., Handschumacher R.E., Lyttle C.R. Leukocyte chemotactic activity of cyclophilin. // J. Biol. Chem. 1992. — Vol. 267. — № 17.-P. 11 968−11 971.
  421. Yap O.W., Kim E.S., Laros R.K. Jr. Maternal and neonatal outcomes after uterine rupture in labor. // Am. J. Obstet. Gynecol. 2001. — Vol. 184. — № 7. — P. 1576−1581.
  422. Yilmazturk A., Schluter W. Manual palpation of the uterine scar following vaginal delivery in previous cesarean section is it really necessary? // Zentralbl. Gynakol. -1991. — Vol. 113. -№ 13. -P. 773−775.
  423. Zabransky F. The cesarean section scar and subsequent labor. II. Criteria for subsequent vaginal delivery- risk factors for uterine rupture. // Ceska Gynekol. -1994. Vol. 59. — № 6. — P. 321−323.
  424. Zabransky F. The cesarean section scar and subsequent labor. III. Revision of the uterus possibilities of ultrasonography in the early puerperium — an algorithm for management of labor. // Ceska Gynekol. 1995. — Vol. 60. — № 2. — P. 93−94.
  425. Zelop C.M., Shipp T.D., Repke J.T., Cohen A., Caughey A.B., Lieberman E. Uterine rupture during induced or augmented labor in gravid women with one prior cesarean delivery. // Am. J. Obstet. Gynecol. 1999. — Vol. 181. — № 4. — P. 882−886.
  426. Zelop C.M., Shipp T.D., Repke J.T., Cohen A., Lieberman E. Effect of previous vaginal delivery on the risk of uterine rupture during a subsequent trial of labor. // Am. J. Obstet. Gynecol. 2000. — Vol. 183. — № 5. — P. 1184−1186.
  427. Zelop C.M., Shipp T.D., Cohen A., Repke J.T., Lieberman E. Trial of labor after 40 weeks' gestation in women with prior cesarean. // Obstet. Gynecol. 2001. -Vol. 97.-№ 3.-P. 391−393.
  428. Zhang J., Lathbury L.J., Salamonsen L.A. Expression of the chemokine eotaxin and its receptor, CCR3, in human endometrium. // Biol. Reprod. 2000. — Vol. 62.-№ 2.-P. 404−411.
  429. Zhou M., Mellor A.L. Expanded cohorts of maternal CD8+ T-cells specific for paternal MHC class I accumulate during pregnancy. // J. Reprod. Immunol. -1998. Vol. 40. — № 1. — P. 47−62.
  430. Ziadeh S.M., El-Jallad M.F., Sunn’a E.T. Obstetric uterine rupture: a four-year clinical analysis. // Gynecol. Obstet. Invest. 1999. — Vol. 48. — № 3. — P. 176 178.
  431. Zimmer E.Z., Bardin R., Tamir A., Bronshtein M. Sonographic imaging of cervical scars after Cesarean section. // Ultrasound Obstet. Gynecol. 2004. — Vol. 32.-№ 6.-P. 594−598.
  432. Zorlu C.G., Danisman N., Caglar T., Turan C., Isik A.Z., Kaleli B., Gokmen O. Vaginal birth following unmonitored labor in patients with prior cesarean section. // Gynecol. Obstet. Invest. 1996. — Vol. 42. — № 4. — P. 222−226.
Заполнить форму текущей работой