Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Культура растительных тканей in vitro как метод повышения стрессоустойчивости яровой мягкой пшеницы сибирской селекции

Диссертация: Культура растительных тканей in vitro как метод повышения стрессоустойчивости яровой мягкой пшеницы сибирской селекции
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Разработанная технология создания стрессоустойчивых форм пшеницы in vitro на основе материала сибирской селекции рекомендуется для использования в селекционных учреждениях Сибири, имеющих в своем составе биотехнологические лаборатории. В отборе предпочтительно использовать в качестве эксплантов незрелые зародыши в возрасте 20−21 сутки от начала колошенияв среде введения уровень 2,4-Д — 1 мг/л… Читать ещё >

Содержание

  • Глава 1. Проблемы повышения продуктивности растений в экстремальных условиях произрастания
    • 1. 1. Влияние стрессовых эдафических и климатических факторов на рост и развитие растений
    • 1. 2. Механизмы устойчивости растений к неблагоприятным условиям произрастания
      • 1. 2. 1. Физиологическая устойчивость
      • 1. 2. 2. Морфологические особенности стрессоустойчивых растений
    • 1. 3. Характеристика условий возделывания пшеницы в Красноярском крае
    • 1. 4. Традиционные методы повышения урожайности культурных растений в экстремальных условиях произрастания
      • 1. 4. 1. Агротехника
      • 1. 4. 2. Селекция
        • 1. 4. 2. 1. Методы скрининга адаптивных генотипов
    • 1. 5. Биотехнологические методы в селекции сельскохозяйственных культур
  • Глава 2. Объекты и методы исследования
    • 2. 1. Объекты исследования
    • 2. 2. Биотехнологические методы
    • 2. 3. Модификация метода оценки кислотоустойчивости пшеницы
    • 2. 4. Физиологическая оценка линий-регенерантов
    • 2. 5. Полевая оценка линий-регенерантов
    • 2. 6. Статистическая обработка данных
  • Глава 3. Использование культуры изолированных тканей для повышения устойчивости яровой пшеницы к стрессовым факторам
    • 3. 1. Разработка протокола селекции стрессоустойчивых форм пшеницы
      • 3. 1. 1. Подбор гормонального состава сред и параметров эксплантов
      • 3. 1. 2. Подбор уровней давления селектирующих факторов
      • 3. 1. 3. Имитация засухи in vitro
    • 3. 2. Множественная регенерация растений в условиях светокультуры
  • Глава 4. Оценка линий-регенерантов мягкой яровой пшеницы, полученных на селективных средах
    • 4. 1. Сравнительная характеристика солеустойчивости
    • 4. 2. Характеристика кислотоустойчивости
    • 4. 3. Полевая оценка линий-регенерантов
  • Выводы

Культура растительных тканей in vitro как метод повышения стрессоустойчивости яровой мягкой пшеницы сибирской селекции (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность темы

Яровая пшеница является ведущей зерновой культурой в Красноярском крае. В связи с повышенным спросом на продовольственное зерно ее возделывают во всех почвенно-климатических зонах, где среди прочих факторов, лимитирующих ее урожайность, значительный ущерб наносят засуха, засоление и высокая кислотность почв [Ведров, Никитина, 1991; Танделов, 1998, 2001, 2003; Шаманин и др., 2005]. В борьбе с данными влияниями сорт является самым дешевым и доступным средством роста урожайности [Семина, Мачнева, 2005; Бёзе, 2005]. Классическая адаптивная селекция до настоящего времени остается основным методом создания новых сортов. Тем не менее, она характеризуется чрезмерной трудоемкостью и длительным сроком отбора [Dorffling et al., 1993]: новый сорт приходит на поля и начинает приносить ощутимую прибыль лишь через 12−20 лет. Современные технологии, включающие в себя генную инженерию, радиологический и химический мутагенез и культуру тканей in vitro, позволяют значительно сократить сроки выведения новых сортов [Ahloowalia, Maluszynski, 2001; Jain, 2001]. С использованием данных методов появляется возможность повысить необходимую для адаптации к эдафическому стрессу клеточную устойчивость [Maas, Poss, 1989; Mansour et al., 2003; Kochian et al., 2004; Амосова и др., 2007; Зобова, Конышева, 2007], что, в свою очередь, обеспечивает высокую полевую выживаемость растений, являющуюся самым значительным элементом продуктивности, характеризующим их хорошую или плохую адаптивность [Иванов, 1975; Дмитриев, 2005].

Вместе с тем методы генетической модификации имеют ряд недостатков: дороговизна материалов, сложность процедур и, в конечном итоге, ограниченность введения полученных таким образом растений в рацион человека из-за возможного, по мнению ряда ученых, вреда здоровью.

Фридт, 2005]. Радиологический мутагенез требует наличия специального оборудования и строгих мер безопасности.

Таким образом, культура изолированных растительных тканей представляется наиболее экологически безопасной, малозатратной по времени и ресурсам технологией создания адаптивных форм зерновых, использующей природные резервы изменчивости растений. Многие ее приемы уже успешно применяются селекционерами по всему миру [Farooq & Azam, 2001; Zairl et al., 2003; Almansouri et al., 2001; Bajji et al., 2004].

Цель работы — повышение эффективности процесса селекции стрессоустойчивых форм яровой мягкой пшеницы для условий Красноярского края методами каллусной культуры растений.

Основные задачи:

1. Разработать протоколы селекции in vitro адаптивных форм пшеницы.

2. На селективных средах получить регенеранты пшеницы с физиологической устойчивостью к засухе, засолению и закислению почв.

3. Дать сравнительную характеристику физиологических и морфологических параметров полученных регенератов и их родительских форм.

Основные положения, выносимые на защиту:

• Технология создания соле-, кислотои засухоустойчивых форм мягкой яровой пшеницы in vitro.

• Каллусная культура пшеницы на селективных средах — эффективный метод оценки стрессоустойчивости селекционных образцов.

• Усовершенствованная методика лабораторной оценки кислотоустойчивости пшеницы.

Научная новизна. На материале сибирской селекции проведена разработка и оптимизация технологии создания в культуре тканей in vitro форм пшеницы, толерантных к засухе, засолению и низкой кислотности почв. Выявлены ранее неизвестные закономерности регенерации каллусных культур пшеницы.

Получены новые формы мягкой яровой пшеницы с устойчивостью к указанным стрессорам, подтвержденной физиологическими лабораторными методами. Усовершенствован метод оценки кислотоустойчивости зерновых культур. В сравнительных полевых испытаниях линий-регенерантов пшеницы и их родительских форм на нейтральных почвенных фонах в условиях Сибири выявлена тенденция к превосходству линий-регенерантов по отдельным элементам структуры урожая.

Практическая значимость. Разработана детальная технология селекции in vitro соле-, кислотои засухоустойчивых форм мягкой яровой пшеницы для использования на материале сибирской селекции. Повышена объективность метода оценки кислотоустойчивости зерновых культур.

Линии регенерантов, превзошедшие родительские формы в физиологических тестах на устойчивость к засолению — РС (Минуса)3.13, РС (КС-1607) 1.21, РС (КС-1607)2.9, и низкой рН — РК (Минуса)1.31 рекомендованы в качестве источников устойчивости и как самостоятельные селекционные образцы в работе по созданию новых адаптивных форм пшеницы для сибирского региона.

Апробация работы: По результатам исследований опубликовано 9 работ, из них 1 в журнале, рекомендованном ВАК. Материалы диссертации доложены и обсуждены на IV Московском международном конгрессе «Биотехнология: состояние и перспективы развития» (Москва, 2007), Международной конференции молодых ученых «Молодые ученыеаграрной науке» (Омск, 2007), III Международной научно-практической конференции молодых ученых «Новейшие направления развития аграрной науки в работах молодых ученых» (Краснообск, 2008), IX Международной конференции «Биология клеток растений in vitro и биотехнология» (Звенигород, 2008), конференции «Роль науки в развитии сельского хозяйства Приенисейской Сибири» (Красноярск, 2008), научно-практической конференции «Селекция сельскохозяйственных культур на продуктивность и качество» (Красноярск, 2009).

Структура и объем диссертации

Диссертация изложена на 112 страницах машинописного текста, состоит из введения, четырех глав, практических рекомендаций, выводов, списка использованной литературы, приложений, содержит 23 таблицы и 14 рисунков.

Список литературы

включает 169 наименований, в том числе зарубежных авторов — 62.

Выводы.

1. Для материала сибирской селекции разработана технология создания in vitro форм мягкой яровой пшеницы, устойчивых к засухе, засолению и высокой кислотности почв. Оптимизированы гормональный состав сред, уровни давления селектирующих факторов, подобраны параметры эксплантов и выделены генотипы, наиболее отзывчивые к условиям каллусной культуры.

2. Выявлены закономерности развития каллусной культуры мягкой яровой пшеницы. Впервые исследован феномен множественной регенерации растений in vitro у данного вида. Установлена его связь с кустистостью донорных растений, сформировавшихся регенерантов и их вегетационным периодом.

3. Подтверждена состоятельность методики культивирования каллусных культур на селективных средах in vitro для оценки физиологической устойчивости к засухе и высоким концентрациям NaCl.

4. В физиологических лабораторных тестах показана высокая устойчивость к засолению и закислению среды линий-регенерантов, сформировавшихся на селективных средах, что подтверждает эффективность отбора, проведенного в культуре каллусных тканей.

5. Высокий регенерационный потенциал, отмеченный у линий-регенерантов, полученных с нейтральной среды, объясняется наличием своего рода отбора по этому признаку в условиях каллусной культуры.

6. В однолетних полевых опытах выявлена тенденция к превосходству линий-регенерантов над их родительскими генотипами по отдельным элементам структуры урожая.

Практические рекомендации.

Разработанная технология создания стрессоустойчивых форм пшеницы in vitro на основе материала сибирской селекции рекомендуется для использования в селекционных учреждениях Сибири, имеющих в своем составе биотехнологические лаборатории. В отборе предпочтительно использовать в качестве эксплантов незрелые зародыши в возрасте 20−21 сутки от начала колошенияв среде введения уровень 2,4-Д — 1 мг/л, в среде пролиферации — 0,5 мг/л. На третьем этапе культивирования для регенерации растений рекомендуется использование прописи среды, используемой в работе с ячменем.

Для отбора стрессоустойчивых форм предлагается использовать следующие уровни селективных агентов: засухоустойчивых форм — 18% вес/объем ПЭГ (6000) — солеустойчивых форм in vitro — 0,84% NaClкислотоустойчивых форм — рН 4,0.

Каллусные культуры яровой мягкой пшеницы на селективных средах предлагается использовать для скрининга генотипов данной зерновой культуры на физиологическую устойчивость к засухе и засолению почв.

В качестве селекционного материала при создании сортов рекомендуется использовать для возделывания на нейтральных и кислых почвах регенерант: РК (Минуса) 1−31−06- на засоленных — регенеранты: РС (Минуса)3.13.06, РС. КС-1607.1.21.06, РС. КС-1607.2.9.06.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Н.В., Николаева О. Н., Сынзыныс Б. И. Механизмы алюмотолерантности у культурных растений // Сельскохозяйственная биология. Серия: Биология растений. 2007. № 1. С. 36−42.
  2. И.Н. Влияние почвенной засухи на накопление и распределение основных элементов минерального питания в растениях яровой пшеницы // Продуктивность и устойчивость зерновых к засухе: бюллетень ВИУА. М.:ВИУА, 1990. № 94. С. 17−22
  3. Г. Р., Сабиржанова И. Б., Веселов Д. С., Фрике В. Участие гормонов в возобновлении роста побегов пшеницы при кратковременном засолении NaCl // Физиология растений. 2005. Т.52. № 6. С. 891−896.
  4. Дж. Сельскохозяйственная экология. М., 1959. В кн.: Емельянов Л. Г., Анкуд С. А. Водообмен и стресс-устойчивость растений. Минск: Навука i тэхшка, 1992. С. 30.
  5. Н.Н., Жук Б.Н., Стручалин М. С. Эффективность препарата силк // Земледелие. 2001. № 1. С. 29−31.
  6. С.Я. Рекомендации по оценке качества воды для орошения сельского хозяйства. М.: Наука, 1984. 120 с.
  7. С. Мало влаги, а пшеницы много! // Новое сельское хозяйство. 2005. № 6. С.46−48.
  8. Ю.Д., Шевякова Н. И., Карнаухов Т. Б. Пластиды и адаптация растений к засолению. Ростов-н/Д: Изд-во Ростовского унта, 1990. 48 с.
  9. В.Ю., Гурова Т. А. Автоматизированный комплекс измерительной аппаратуры для оценки устойчивости растений к стрессовым факторам среды // Достижения науки и техники АПК. 2006. № 11. С. 15−17.
  10. В.П., Боровиков И.П. Statistical статистический анализ и обработка данных в среде Windows. М.: Филинъ, 1997. 592 с.
  11. Р.Г. Биотехнология растений: культура клеток. М.: Агропромиздат, 1989. 290 с.
  12. Н.Г., Никитина В. И. Оценка исходного материала яровой пшеницы по экологической стабильности в условиях Сибири // Сибирский вестник сельскохозяйственной науки. 1991. № 2. С. 31−37.
  13. Д.С., Шарипова Г. В., Кудоярова Г. Р. Сравнительное изучение реакции растений ячменя (Hordeum vulgaris) и пшеницы (Triticum durum) на кратковременное и длительное действие натрий-хлоридного засоления // Агрохимия. 2007. № 7. С. 41−48.
  14. Е.А. Биотехнологические методы получения растений, устойчивых к тяжелым металлам. 2. Получение растений, толерантных к ионам кадмия и свинца // Биотехнология. 2006а. № 4. С. 87−92.
  15. Е.А., Долгих Ю. И., Бирюков В. В., Гладкова О. В. Биотехнологические методы получения растений устойчивых к тяжелым металлам. 3. Клеточная селекция газонных трав, толерантных к ионам меди // Биотехнология. 20 066. № 5. С. 63−66.
  16. П.JI. Селекция растений в Сибири на адаптивность // Достижения науки и техники АПК. 2006. № 1. С. 13−15.
  17. Т.Н. Селекцентры Сибири и их значение в развитии селекции сельскохозяйственных культур в регионе // Вестник ВОГиС. 2005. Т9. № 3. С. 407−414.
  18. Т.К. Фотосинтетический аппарат растений и условия среды. Л.: Изд-во ЛГУ, 1989. 204 с.
  19. А., Инал А., Адак М. С., Багци Е. Г., Цицек Н., Ераслан Ф. Влияние засухи до и после зацветания растений нута на ряд физиологических параметров — возможных критериев засухоустойчивости // Физиология растений. 2008. Т.55. № 1. С. 64−72.
  20. В. А. Количественные характеристики устьичного аппарата растений яровой пшеницы сорта Саратовская 29 при остром дефиците воды // Сельскохозяйственная биология. Серия: Биология растений. 2007. № 5. С. 90−93.
  21. В.Е. Экология и технология возделывания яровой пшеницы в Красноярском крае. Красноярск: Краснояр. гос. аграр. унт, 2005. 267 с.
  22. .А. Методика полевого опыта (с основами статистической обработки результатов исследований). 5-е изд., доп. и перераб. М.: Колос, 1985. 351 с.
  23. Л.Г., Анкуд С. А. Водообмен и стресс-устойчивость растений. Минск: Навука i тэхшка, 1992. 144 с.
  24. О.С. Неорганическая химия. 10 (11) класс. М.: АСТ-пресс школа, 2006. 512 с.
  25. О.А., Барышев В. Н., Жидкин В. И., Чернавина М. В. Физиологические основы устойчивости растений: курс лекций. Саранск: Изд-во Сарат. ун-та. Саран, фил., 1989. 44 с.
  26. Н.В., Конышева Е. Н. Использование биотехнологических методов в повышении соле- и кислотоустойчивости ярового ячменя. Новосибирск: СО Россельхозакадемии, 2007. 124 с.
  27. Зоз Н. Н. Химический мутагенез у высших растений и новые высокоактивные мутагены // Экспериментальный мутагенез. Прага: Издательство Чехословацкой Академии Наук, 1966. С. 317−335.
  28. П.К. Высокие урожаи яровой пшеницы. М.: Колос, 1975. 392 с.
  29. В.М. Адаптивная реакция фотосинтеза на субклеточном уровне организации фотосинтетического аппарата // Регуляция функций мембран растительных клеток. Минск: Изд-во БГУ, 1979. С. 147−199.
  30. Каталог сортов сельскохозяйственных культур, созданных учеными Сибири и районированных (включенных в Госреестр РФ) в 1929—1998 гг. 2-е изд., доп. Новосибирск: РАСХН. Сиб. отд-ние, 1999. 208 с.
  31. Каталог сортов сельскохозяйственных культур, созданных учеными Сибири и включенных в Госреестр РФ (районированных) в 1929—2008 гг.: выпуск 4. В 2 томах. Т. 1. Новосибирск: Рос. акад. с.-х. наук. Сиб. регион, отд-ние, 2009. 208 с.
  32. .М., Хамоков Х. А. Фотосинтетическая деятельность и продуктивность сои в условиях недостаточного увлажнения // Зерновое хозяйство. 2005. № 2. С. 17−18.
  33. Ю.Б., Шаймярдянов Н. А. Реакция на пинцеровку колоса как показатель засухоустойчивости сортов яровой пшеницы // Известия ТСХА. 2004. Вып.З. С. 45−53.I
  34. JI.A. Адаптивные свойства сортов мягкой озимой пшеницы по содержанию хлорофилла // Доклады Российской академии сельскохозяйственных наук. 2004. № 4. С. 19−21.
  35. Л.А., Пак Д.Н. Экологическая устойчивость сортов озимой пшеницы по содержанию белка в зерне // Зерновое хозяйство. 2005. № 7. С. 22−23.
  36. Л.А., Пак Д.Н., Ситоленко С. А. Экологическая устойчивость сортов озимой пшеницы по содержанию каротиноидов в зерне // Зерновое хозяйство. 2005. № 8. С. 23−25.
  37. И. А. Методические указания по определению кислотоустойчивости зерновых культур. СПб: ВИР. 1995. 20 с.
  38. Н.Н., Батыгина Т. Б., Горбунова В. Ю. и др. Эмбриологические основы андроклинии пшеницы: атлас / отв.ред. И. И. Шамров. М.: Наука, 2005. 99 с.
  39. Вл. В., Радюкина Н. Л., Шевякова Н. И. Полиамины при стрессе: биологическая роль, метаболизм и регуляция // Физиология растений. 2006. Т.53. № 5. С. 658−683.
  40. С.А., Климачев Д. А., Якушкина Н. И. Изменение гормонального баланса пшеницы в зависимости от условий засоления NaCl и экзогенной обработки цитокининами // Агрохимия. 2005. № 8. С. 29−33.
  41. B.C. Влияние многолетних трав на солевой режим засоленных почв // Земледелеие. 2005. № 4. С. 10−11.
  42. , Г. Биометрия. М.: Высш. шк., 1980. 290 с.
  43. Ли М., Ван Г., Лин Ц. Кальций способствует адаптации культивируемых клеток солодки к водному стрессу, индуцированному полиэтиленгликолем // Физиология растений. 2004. Т.51. № 4. С. 575 581.
  44. А.Н. Селекция мягкой яровой пшеницы в Сибири. Новосибирск: РАСХН. Сиб. отд-ние. ГНУ СибНИИРС, 2006. 372 с.
  45. Методические указания по изучению мировой коллекции ячменя и овса / под ред. В. Д. Кобылянского, А .Я. Трофимовской. 3-е изд., перераб. Л.: Всесоюз. НИИ растениеводства им. Н. И. Вавилова, 1981. 32 с.
  46. A.M., Ралдугина Г. Н., Холодова В. П., Кузнецов Вл. В. Аккумуляция осмолитов растениями различных генотипов рапса при хлоридном засолении // Физиология растений. 2006. Т.53. № 5. С. 732 738.
  47. Ф., Бозкук С. Влияние засоления на содержание полиаминов и некоторых других соединений в различающихся по-солеустойчивости растениях подсолнечника // Физиология растений. 2005. Т.52. № 1. С. 36−42.
  48. Е.В. Продуктивность и качество зерна яровой пшеницы в зависимости от кислотности почвы и обеспеченности минеральными и органическими элементами // Сельскохозяйственная биология. 2004. № 1. С. 56−61.
  49. Най П.Х., Тинкер П. Б. Движение раствора в системе почва-растение. М., 1980. В кн.: Емельянов Л. Г., Анкуд С. А. Водообмен и стресс-устойчивость растений. Минск: Навука i тэхшка, 1992. С. 30.
  50. В.И., Личко В. И. Почвенно-агрохимические условия оптимизации водного режима растений // Доклады РАСХН. 2005. № 5. С.20−24.
  51. Н.Т. Характеристика и влияние засух, свойственных Нечерноземью, на продуктивность и основные процессыжизнедеятельности зерновых культур // Продуктивность и устойчивость зерновых к засухе: бюллетень ВИУА. М.:ВИУА, 1990. № 94. С. 3−13.
  52. В.И., Грибовская И. В., Волкова Э. К. О разнокачественности семян пшеницы по способности к набуханию и прорастанию в растворах осмотика // Сельскохозяйственная биология. Серия: Биология растений. 2004. № 5. С. 63−67.
  53. Н.А., Рутц Р. И. Индуцированный мутагенез и гибридизация в решении проблемы качества зерна яровой мягкой пшеницы // Доклады РАСХН. 2006. № 3. С.3−4.
  54. Практикум по растениеводству: учеб. пособие / Н. Г. Ведров, Е. Т. Загородняя, Е. М. Нестеренко, И. Н. Фролов / под ред. Н.Г. Ведрова- Красноярск: Изд-во Краснояр. ун-та, 1992. 384 с.
  55. В.В., Букина С. Н., Аканов Э. Н. Фотосинтетическая реакция сортов ярового ячменя на действие водного стресса // Известия ТСХА. 2006. Вып.З. С.29−35.
  56. И. А. Карбонильные соединения и химический механизм мутаций // ДАН СССР. 1947. Т.58. № 1. С. 119−124.
  57. Н.И. Адаптационные изменения в белковом и аминокислотном обмене у растений в условиях водного стресса // Стрессовые белки растений. Новосибирск: Наука. Сиб. отд-ние, 1989. С. 113−142.
  58. Н.И., Гамбург К. З., Маркова Т. А. Влияние водного дефицита на содержание триптофана и его производных в листьяхрастений II Рост и устойчивость растений. Новосибирск: Наука. Сиб. отд-ние, 1988. С. 183−189.
  59. Р.И. Научные основы и практические результаты селекции яровой пшеницы и озимых мятликовых культур в Западной Сибири. Новосибирск: РАСХН. Сиб. отд-ние. ГНУ СибНИИРС, 2005. 624 с.
  60. Садат-Нури С.А., Сохансанж А. Растения пшеницы, содержащие ген осмотина, проявляют повышенную способность к образованию корней при высоких концентрациях NaCl // Физиология растений. 2008. Т.55. № 2. С. 279−282.
  61. Н.С. Засуха и неурожай без знака равенства // Агромир Черноземья. 2007. № 8. С. 38−39.
  62. С.А., Мачнева В. В. Урожай и качество зерна яровой мягкой пшеницы в зависимости от сорта // Зерновой хозяйство. 2005. № 3. С. 23−24.
  63. И.И., Ниловская Н. Т., Обуховская Л. В., Верниченко И. В. Влияние доз азота и обработки семян цинком на продуктивность яровой пшеницы при различной водообеспеченности // Агрохимия. 2005. № 6. С. 54−58.
  64. М.И., Логинов И. В. Статистические характеристики, маркирующие морфогенез в каллусных культурах яровой пшеницы // Физиология растений. 2004. Т. 51. № 2. С. 287−296.
  65. О. Д. Прикладная статистика на компьютере. Краснообск: ГУП РПО СО РАСХН, 2004. 162 с.
  66. .П. Физиологические основы солеустойчивости растений при разнокачественном засолении. М.: Наука, 1962. 366 с.
  67. .П., Кабанов В. В., Шевякова Н. И. Структура и функция клеток растений при засолении. Новые подходы к изучению солеустойчивости. М.: Наука, 1970. 318 с.
  68. .И., Рухляда Н. Н. Роль органических кислот в снижении фитотоксического действия алюминия на некоторые сорта российских пшениц // Вестник РАСХН. 2004. № 3. С. 42−45.
  69. В.В., Таланов А. В., Титов А. Ф. Динамика фотосинтеза и транспирации проростков огурца в начальный период хлоридного засоления и при действии фитогормонов // Доклады РАСХН. 2006а. № 2. С. 10−13.
  70. В.В., Топчиева JI.B., Титов А. Ф. Влияние абсцизовой кислоты на устойчивость проростков огурца к комбинированному действию высокой температуры и хлоридного засоления // Известия РАН. Серия Биологическая. 20 066. № 6. С. 757−761.
  71. Ю.П., Ерышова О. В. Состояние плодородия кислых почв Приенисейской Сибири, эффективность минеральных удобрений и химических мелиоратов. М.: Изд-во МГУ, 2001. 115 с.
  72. Ю.П., Ерышова О. В. Особенности кислых почв Красноярского края и эффективность известкования: учеб. пособие. Красноярск: Краснояр. гос. аграр. ун.-т, 2003. 147с.
  73. , Ю.П. Плодородие почв и эффективность удобрений в Средней Сибири. М.: Изд-во МГУ, 1998. 302с.
  74. Технология целлюлозно-бумажного производства: справочные материалы/ под ред. П. С. Осипова. СПб: Политехника, 2003. 253 с.
  75. Н.Н., Аканов Э. Н., Кондратьев Н. В., Клочкова Н. М. С02-газообмен яровой пшеницы при изменении осмотического давления в корневой зоне (имитация почвенной засухи) // Известия ТСХА. 2004. Вып.1. С. 48−54.
  76. Д.Л., Каменьков А. В. Агроклиматические и агротехнические факторы выращивания яровой пшеницы в Восточной Сибири // Вестник РАСХН. 2004. № 4. С. 48−51.
  77. Г. В. Солеустойчивость культурных растений. Л.: Колос, 1977. 215 с.
  78. Г. В., Олейманова Т. В., Кожушко Н. Н. и др. Методика диагностики устойчивости растений (засухо-, жаро-, соле- и морозоустойчивости). Л.: ВИР, 1974. 74 с.
  79. Р., Костин Я., Зубец А., Дагаргулия К., Асеев В. Эдафический фактор устойчивости почв к подкислению // Международный сельскохозяйственный журнал. 2005. № 2. С. 63−64.
  80. Р.Н., Косорукова Т. Ю. Повышение устойчивости зерновых культур к почвенной засухе при использовании калийных удобрений // Известия ТСХА. 2004. Вып.З. С. 63−66.
  81. Физиология и биохимия сельскохозяйственных растений / Н. Н. Третьяков, Е. И. Кошкин, Н. М. Макрушин и др. / под ред. Н. Н. Третьякова. 2-е изд. М.: КолосС, 2005. 656 с.
  82. В. Генная инженерия: возможности и ограничения // Новое сельское хозяйство. 2005. № 1. С. 62−65.
  83. Т.Д., Хусаинов М. А., Шакирова Ф. М., Хлебникова И. В. Оценка влияния препарата фэтил на рост и гормональный статус проростков пшеницы // Успехи современного естествознания. 2007. № 2. С. 76−77.
  84. M.JI. Проблема экспериментального получения мутаций у растений под влиянием Х-лучей // Тр. по прикл. ботан., генет. и селекции. Сер. А. Соц. раст. 1936. № 18. С. 149−159.
  85. К.В. Ростстимулирующее и антистрессовое действие препарата Фэтил на растения пшеницы: дис.. канд. биол. наук. М.: ПроСофт-М, 2005. 126 с.
  86. С.В. Водный баланс и состояние растений. Алма-Ата: Наука, 1987. 168 с.
  87. А.С., Базаров А. К. Вопросы платного водопользования // Аграрная наука. 2005. № 11. С. 18−21.
  88. В.П. Селекция яровой мягкой пшеницы для засушливых условий Западной Сибири и Южного Урала: автореф. дис. д-ра с.-х. наук. Новосибирск, 1994. 34 с.
  89. B.C., Гончаров П. Л., Сечняк Л. К., Кривченко В. И., Ишин А. Г. Биологические резервы селекции на засухоустойчивость //
  90. Обеспечение устойчивого развития сельскохозяйственного производства и борьба с засухой: по материалам сессии ВАСХНИЛ (Волгоград, 26−28 мая 1987 г.). М.: Агропромиздат, 1988. С. 151−173.
  91. B.C., Калашникова Е. А., Воронин Е. С. и др. Сельскохозяйственная биотехнология: учеб. / под ред. B.C. Шевелухи. 2-е изд., перераб. и доп. М.: Высш. шк., 2003. 469 с.
  92. Н.И. Полиамины, рост и адаптация растений к стрессам // Рост и устойчивость растений. Новосибирск: Наука. Сиб. отд-ние, 1988. С. 168−175.
  93. И.Г., Абубакирова Р. И., Карпова Е. М., Кучин А. В. Оценка Na-солей суммы тритерпеновых кислот Abies sibirica L. в качестве регуляторов роста и стресспротектора яровой пшеницы // Агрохимия. 2007. № 1. С. 52−56.
  94. Экологическая биофизика: учебное пособие. В 3 т. / под ред. И. И. Гительзона и Н. С. Печуркина. Т. 1. Фотобиофизика экосистем. М.: Логос, 2002. 360 С.
  95. Засуха в России погубила 20 млрд рублей Электронный ресурс. // BFM.ru: ежеден. интернет-изд., 2009. 8 сент. URL: http://www.bfm.ru/articles/2009/09/08/zasuha-v-rossii-pogubila-20-mlrd-rublej.html (дата обращения 10.10.2009).
  96. Каталог продукции ЗАО «Омскреактив» Электронный ресурс. URL: http://www.omskreaktiv.ru/index.php7menu-4 (дата обращения 15.05.2009).
  97. Adkins S.W., Kunanuvatchaidach R., Godwin I.D. Somaclonal variation drought tolerance and other agronomic chaeacters // Australian Journal of Botany. 1995. V.43. P. 201−209.
  98. Ahloowalia B.S., Maluszynski M. Induced mutations A new paradigm in plant breeding // Euphytica. 2001. V. 118. P. 167−173.
  99. Ahmad A., Zhong H., Wang W., Sticklen M. Shoot apical meristem: in vitro regeneration and morphogenesis in wheat (Triticum Aestivum L.) // In vitro Cell. Dev. Biol.-Plant. 2002. V.38. P. 163−167.
  100. Almansouri M., Kinet J.-M., Lutts S. Effect of salt osmotic stress on germination in durum wheat (Triticum durum Desf.) // Plant and Soil. 2001. V.231.1.2. P.243−254.
  101. Bajji M., Kinet J.-M., Lutts S. The use of electrolyte leakage method for assessing cell membrane stability as a water stress tolerance test in durum wheat // Plant Growth Regulation. 2002. V.36. P.61−70.
  102. Bajji M., Bertin P., Lutts S., Kinet J.-M. Evaluation of drought-resistance-related traits in durum wheat somaclonal lines selected in vitro // Australian Journal of Experimental Agriculture. 2004. V.44. P.27−35.
  103. Bakarat M.N., Abdel-Latif Т.Н. In vitro selection of wheat callus tolerant to high levels of salt and plant regeneration // Euphytica. 1996. V.91.I.2. P.127−140.
  104. Benkirane H., Sabounji K., Chlyah A., Chlyah H. Somatic embryogenesis and plant regeneration from fragments of immature inflorescence and coleoptiles of durum wheat // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 2000. V.61. P. 107−113.
  105. Bertin P., Bouharmont J., Kinet J.-M. Somaclonal variation and improvement in chilling tolerance in rice: changes in chilling-induced electrolyte leakage // Plant Breeding. 1996. V. l 15. P.268−272.
  106. Birsin M. A., Ozgen M. A. Comparison of callus induction and plant regeneration from different embryo explants of triticale (x Triticosecale Wittmack) // Cellular & Molecular Biology Letters. 2004. V.9. P.353−361.
  107. Blum A., Ebercon A. Cell membranes stability as measure of drought and heat tolerance in wheat // Crop Science. 1981. V.21. P.43−47.
  108. Das A., Gosal S.S., Sidhu J.S., Dhaliwal H.S. Induction of mutations for heat tolerance in potato by using in vitro culture and radiation // Euphytica. 2000. V. l 14. P.205−209.
  109. Del Zoppo M., Galleschi L., Onnis A., Pardossi A., Saviozzi F. Effect of salinity on water relations, sodium accumulation, chlorophyll content and proteolic enzymez in wild wheat // Biologia plantarum. 1999. V.42.1.1. P.97−104.
  110. Dencic S., Kastori K., Kobiljski В., Duggan B. Evaluation of grain yield and its components in wheat cultivates and landraces under near optimal and drought conditions // Euthytica. 2000. V. l 13. P. 43−52.
  111. Djilianov D., Dragiiska R., Yordanova R., Doltchinkova V., Yordanov Y., Atanassov A. Physiological changes in osmotically stresseddetached leaves of alfalfa genotypes selected in vitro // Plant Science. 1997. V.129. P.147−156.
  112. Dokuyucu Т., Akkececi S., Akkaya A., Kara R. Investigation of the response of bread wheat cultivars to salinity by using callus culture // J. Environ. Biol. 2005. V.26.1.2. P.251−255.
  113. Dorffling K., Dorfling H., Lesselich G. In vitro selection and regeneration of hydroxyproline-resistant lines of winter wheat with increased proline content and increased frost tolerance // Journal of Plant Physiology. 1993. V.142. P.222−225.
  114. El-Hannawy M.A. Salt tolerance in wheat using tissue culture techniques //Ann. Agr. Sci. 1996. V.41. P.785−803.
  115. El-Shintinawy F. Photosynthesis in two wheat cultivars differing in salt susceptibility// Photosynthetica. 2000. V.38.1.4. P.615−620.
  116. Farooq S., Azam F. Co-existence of salt and drought tolerance in Triticeae // Hereditas. 2001. V. 135.1.2−3. P.205−210.
  117. Flowers T.J. Improving crop salt tolerance // J. Exp. Bot. 2004. V.55. P.307−319.
  118. Foy C.D., Bums G.R., Brown J.C., Fleming A.L. Differential aluminum tolerance of two wheat varieties associated with plant-induced pH changers around their roots // Soil Science Society of America Proceedings. 1965. V.29. P.64−67.
  119. Fukutoku G., Yamada Y. Sources of proline-nitrogen in water-stressed soybean (Glycine max.). II. Fate of /15 N/-labelled protein // Ibid. 1984. V.61.1.4. P.622−628.
  120. Gulnaz A., Iqbal J., Farooq S., Azam F. Seed treatment with growth regulators and crop productivity. I. 2,4-D as an inducer of salinity tolerance in wheat (Triticum aestivum L.) // Plant and Soil. 1999. V.210. 1.2. P.209−218.
  121. Gulyaeva E.M., Mashkina O.S., Sivolapov A.I. Variability in poplar induced by chemical mutagens // Soviet genetics. 1984. V.20. 1.4. P.495−503
  122. Hsissou D., Bouharmont J. In vitro selection and characterization of drought-tolerant plants of durum wheat (Triticum durum Desf.) // Agronomie. 1994. V.2. P.65−70.
  123. Ни Y., Fromm J., Schmidhalter U. Effect of salinity on tissue architecture in expanding wheat leaves // Planta. 2005. V.220. P.838−848.
  124. Iqbal M., Ashraf M., Jamil A. Seed enhancement with cytokinins: changers in growth and grain yield in salt stressed wheat plants // Plant Growth Regulation. 2006. V.50.1.1. P.29−39.
  125. Iser M., Fettig S., Scheyhing F., Viertel K., Hess D. Genotype-dependent stable genetic transformation in German spring wheat varieties selected for high regeneration potential // J. Plant Physiol. 1999. V.154. P.509−516.
  126. Jain S.M. Tissue culture-derived variation in crop improvement // Euthytica. 2001. V. 118. P. 153−166.
  127. Kafi M., Stewart S., Borland A.M. Carbohydrate and praline contents in leaves, roots and apices of salt-tolerant and salt-sensitive wheat cultivars // Russian journal of plant physiology. 2003. V.50.1.2. P.155−162.
  128. Kendell E.J., Qureshi J.A., Kartha K.K., Leung N., Chevrier N., Caswell K., Chen T.H.H. Regeneration of freezing-tolerant spring wheat (Triticum aestivum L.) plants from cryoselected callus // Plant Physiol. 1990. V.94. P. 1756−1762.
  129. Kidd P. S., Proctor J. Why plants grow poorly on very acid soils: are ecologists missing the obvious? // Journal of experimental botany. 2001. V.52.1.357. P.791−799.
  130. Kochian L.V., Hoekenga O.A., Pineros M.A. How do crop plants tolerate acid soils? Mechanisms of aluminum tolerance and phosphorous efficiency // Annual Review of Plant Biology. 2004. V.55. P.459−493.
  131. Larkin P.J., Scowcroft W.R. Somaclonal variation a novel source of variability from cell cultures for plant improvement // Theoretical and Applied Genetics. 1981. V.60. P. 197−127.
  132. Lerner H.R. Adaptation to salinity at the plant cell level // Plant and Soil. 1985. V.89.1.1−3. P.3−14.
  133. Lu D.B., Sears R.G., Paulsen G.M. Increasing stress resistance by in vitro selection for abscisic acid insensitivity in wheat // Crop Science. 1989. V.29. P.939−943.
  134. Lutts S., Almansouri M., Kinet J.-M. Salinity and water stress have contrasting effects on the relationship between growth and cell viability during and after stress exposure in durum wheat callus // Plant science. 2004. V.167. P.9−18.
  135. Maas E.V., Poss J.A. Salt sensitivity of wheat at various growth stages // Irrigation Science. 1989. V.10.1.1. P.29−40.
  136. Mansour M.M.F., Salamaa K.H.A., Mutawah M.M.A1. Transport proteins and salt tolerance in plants // Plant Science. 2003. V.164. 1.6. P. 891−900.
  137. Menke-Milczarek I., Zimny J. NH4+ and N03~ requirement for wheat somatic embryogenesis // Acta Physiol. Plant. 2001. V.23. P.37−42.
  138. Murray F.R., Hill A., Appels R., Brettell R.I.S. Transformation of australian wheat cultivars // Proceedings of 9th International Wheat Genetics Symposium (Saskatoon, Saskatchewan, Canada, 2−7 Augast). 1998. P.159−162.
  139. Mwanamwenge J., Loss S.P., Siddique K.H.M., Cocks P. S. Effect of water stress during floral initiation, flowering and podding on the growth and yield of faba bean (Vicia faba L.) // Eur. J. Agron. 1999. V. 11. P. 1 -11.
  140. Premachandra G.S., Shimada T. Evaluation of polyethylene glycol test of measuring cell membrane stability as a drought tolerance test in wheat// Journal of Agricultural Sciences, Cambridge. 1988. V.110. P.429−433.
  141. Rus A.M., Rios S., Olmos E., Santa-Cruz A., Bolarin M.C. Long-term culture modifies the salt response of callus lines of salt-tolerant and salt-sensetive tomato species // J. Plant. Physiol. 2000. V.157. P.413−420.
  142. Sairam R.K., Srivastava G.C., Agarwal S., Meena R.C. Differences in antioxidant activity in response to salinity stress in tolerant and susceptible wheat genotypes // Biologia Plantarum. 2005. V.49. 1.1. P.85−91.
  143. Sparks C., Rasco-Gaunt S., Riley A., Barcelo P., Lazzeri P.A. Development of tranformation systems for current wheat varieties // Proceedings of 9th International Wheat Genetics Symposium (Saskatoon, Saskatchewan, Canada, 2−7 Augast). 1998. P.212−214.
  144. Tang С., Asseng S., Diatloff E., Rengel Z. Modelling yield losses of aluminium-resistant and aluminium-sensitive wheat due to subsurface soil acidity: effects of rain fall, liming and nitrogen application // Plant and Soil. 2004. V.254. P.349−360.
  145. Taylor G.J., Foy Ch. D. Mechanisms of aluminum tolerance in Triticum aestivum L. (wheat). I. Differential pH induced by winter cultivars in nutrient solutions // Amer. J. Bot. 1985. V.72.1.5. P.695−701.
  146. Taylor H.M. Postponement of severe water stress in soybeans by rooting modifications: a progress report // World soybean res. Conf. 2. 1979. Proc. London, 1980. P.161−178.
  147. Timm D.A., Waskom R.M., Miller D.R., Nabos M.W. Greenhouse evaluation of regenerated spring wheat for enhanced salt tolerance // Cereal Research Communication. 1991. V. 19. P.451−457.
  148. Urbanski T. Chemistry and Technology of Explosives. Vol. 2. New York: Pergamon Press. Oxford, 1965. 480 p.
  149. Varshney A., Altpeter F. Satble transformation and tissue culture response in current European winter wheats (Triticum aestivum L.) // Molecular Breeding. 2001. V.8. P.295−309.
  150. Zairl I., Chlyah A., Sabounji K., Tittahsen M., Chlyah H. Salt tolerance improvement in some wheat cultivars after application of in vitro selection pressure // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 2003. V.73. 1.3. P.237−244.
  151. Zale J.M., Bochardt-Wier H., Kidwell K.K., Steber C.M. Callus induction and plant regeneration from mature embryos of a diverse set of wheat genotypes // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 2004. V.76. P.277−281.
  152. Zair I., Chlyah В., Chlyah H. Effect de deux etraits biologique sur Tembryogenese somayique et sur la retention de capacites de regeneration chez les cals de ble (Triticum aestivum) // Can. J. Bot. 1995. V.73. P.498−504.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!